CN105543185B - 一种从动物血块提取、纯化sod冻干粉的生产方法 - Google Patents
一种从动物血块提取、纯化sod冻干粉的生产方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN105543185B CN105543185B CN201610132505.2A CN201610132505A CN105543185B CN 105543185 B CN105543185 B CN 105543185B CN 201610132505 A CN201610132505 A CN 201610132505A CN 105543185 B CN105543185 B CN 105543185B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- sod
- clot
- liquid
- freeze
- dried powder
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/0004—Oxidoreductases (1.)
- C12N9/0089—Oxidoreductases (1.) acting on superoxide as acceptor (1.15)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Y—ENZYMES
- C12Y115/00—Oxidoreductases acting on superoxide as acceptor (1.15)
- C12Y115/01—Oxidoreductases acting on superoxide as acceptor (1.15) with NAD or NADP as acceptor (1.15.1)
- C12Y115/01001—Superoxide dismutase (1.15.1.1)
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明的目的是提供一种从动物血块提取、纯化SOD冻干粉的生产方法,是将动物血块经破碎后,经过乳化、溶血、沉淀、压滤、超滤、热变性、柱色谱、修饰、丙酮沉淀、冻干等工序,最后得到修饰SOD冻干粉产品。本发明采用的原料上使用凝固血块,而不用加抗凝剂的红血球,一般的提取是先按比例添加一定的抗凝剂而收集未凝固血液,再离心收集红血球,用生理盐水反复离心洗涤红血球,这样费时费力,离心负荷很大,且抗凝剂的比例掌握不好会发生凝血或溶血;而本发明是在收集血液时不加抗凝剂,也不用反复离心收集、洗涤红血球,直接用自然凝固的血块做原料,这样省时省力,也不用离心,适于规模化生产。本发明在沉淀血红蛋白时不用易挥发的乙醇,也不用有毒害的氯仿,而用无机盐,不仅沉淀效果好,又减少了环境污染和对生产人员的身体伤害。
Description
技术领域
本发明涉及生物化学技术领域,具体说是一种从动物血块提取、纯化 SOD冻干粉的生产方法,SOD冻干粉产品应用于食品、化妆品及药品等领域。
背景技术
自由基学说是在生命科学领域中,越来越被人们广泛接受的关于生命体衰老理论的学说,该学说认为自由基是造成生命体老化及诸多疾病的重要原因。据估计80~90%的老化性、退行性疾病都与自由基有关,其中包括癌症、老年痴呆症、帕金森氏症、皮肤色素沉积、白内障、心脏病等,所以清除自由基对维持健康体魄和保持年轻体态至关重要。
而SOD是专一的自由基清除剂。SOD是一种广泛存在于动物、植物和微生物中,具有催化超氧阴离子自由基发生歧化反应的生物酶,其催化的歧化反应式如下:
•O2¯ + •O2¯ + 2H+ → H2O2 + O2
SOD能清除人体细胞内的超氧阴离子自由基(生物垃圾),因而被誉为人体的生物垃圾清道夫,而自由基过多则导致多种疾病,因此人体适时适量补充SOD,就能预防甚至治疗因自由基过多而导致的多种疾病,具有抗氧化、抗辐射、抗癌变、消炎等功能,用于治疗或辅助治疗心脑血管疾病、自身免疫性疾病、血液再灌注损伤、慢性炎症和癌症等,而且可用于日常的抗衰老保健,防治老年性疾病和慢性病等。
提取、纯化SOD冻干粉从上世纪80年代末开始在我国兴起,但到目前为止还没有形成一个较大的产业,固然有市场方面的原因,也有技术方面的不成熟。本发明在前人研究的基础上,突破了几个关键技术点,并在本公司实现了规模化生产。
发明内容
本发明的目的是提供了一种从动物血块提取、纯化SOD冻干粉的生产方法,可进行规模化生产。
本发明通过以下步骤来实现:动物血块经破碎、乳化、溶血、沉淀、压滤、超滤、热变性、柱色谱、修饰、丙酮沉淀、冻干等工序,得到修饰SOD冻干粉产品,其步骤如下:
1)、收集牦牛、黄牛、猪、羊等多种动物在屠宰时的血液,自然凝固后滤去血清得到的新鲜血块,或新鲜血块冷冻储藏后的冷冻血块;
2)、用破碎机将大血块破碎成小血块;
3)、将破碎后的小血块倒入乳化机中乳化15~40分钟;
4)、将乳化后的血液,泵入到1.2~2.0倍血液体积的二级反渗透水中,搅拌30~60分钟,使红血球破膜而溶血,得溶血液;
5)、在常温下,向溶血液中同时加入两种无机盐,使血红蛋白沉淀下来,SOD溶解在悬浊液中;所述的一种无机盐是氯化钠,重量占溶血液体积的1.5~5.0%;另一种无机盐是氯化铜,或硫酸铜,重量占溶血液体积的0.6~1.5%;
6)、将步骤5的悬浊液泵入到压滤缸中,加压过滤得到SOD压滤液;
7)、将SOD压滤液泵入到截留分子量为3000~10000D的中空纤维超滤器中,超滤浓缩,得到SOD浓缩液;
8)、将SOD浓缩液于55~65℃水浴中加热10~30分钟,冷却后离心,去除杂蛋白沉淀,收集SOD热变液;
9)、将SOD热变液上样到预先用平衡液平衡的Sepharose Fast Flow色谱柱中,再用平衡液平衡6~15小时,至柱流出液A280值为0.1以下;再用洗脱液洗脱,收集蓝绿色SOD色谱带的下柱液;所述的平衡液为pH 7.8的2.5 mmol/L的Tris-HCl缓冲液,所述的洗脱液为含0.1mol/L NaCl的pH 7.8的2.5 mmol/L的Tris-HCl缓冲液;
10)、把SOD下柱液置于48~55℃的水浴中,用碱溶液调pH值至9.0~9.5,缓慢加入蛋白质修饰剂,反应1.2~1.5小时,冷却后离心,得到修饰SOD液;所述的碱溶液是1 ~4mol/L的氢氧化钠溶液,或1 ~4 mol/L的氢氧化钾溶液,所述的蛋白质修饰剂是肉豆蔻酰氯;
11)、在修饰SOD液中加入1.4~2.0倍体积的冷丙酮,搅拌放置后SOD沉淀下来,再离心收集SOD沉淀;
12)、将SOD沉淀放置于冻干机中,进行真空冷冻干燥,得到修饰SOD冻干粉。
本发明具有以下几个特点:
1、本发明采用的原料上使用凝固血块,而不用加抗凝剂的红血球,一般的提取是先按比例添加一定的抗凝剂而收集未凝固血液,再离心收集红血球,用生理盐水反复离心洗涤红血球,这样费时费力,离心负荷很大,且抗凝剂的比例掌握不好会发生凝血或溶血;而本发明是在收集血液时不加抗凝剂,也不用反复离心收集、洗涤红血球,直接用自然凝固的血块做原料,这样省时省力,也不用离心,适于规模化生产。
2、本发明使用破碎机破碎大血块成小血块,便于下步的乳化,破碎机的产能大,1个班8小时1台普通破碎机就能破碎10吨以上的血块,适于规模化生产。
3、本发明在沉淀血红蛋白时不用易挥发的乙醇,也不用有毒害的氯仿,而用无机盐,不仅沉淀效果好,又减少了环境污染和对生产人员的身体伤害。
4、现有沉淀血红蛋白分离SOD时,一般在此步骤需加热整个溶血液(一罐1吨以上液体),导致能耗大,且传热不均,温度难以控制,SOD活性易损失。本发明在沉淀步骤加入无机盐,无需加热,用压滤缸压滤时分离效果好;仅在超滤浓缩后加热,用于去除杂蛋白,体积已缩小40倍左右(1吨清亮的SOD压滤液超滤浓缩至25L左右),这样能耗很小,温度易控制,SOD活性几乎无损失。
5、本发明在柱色谱时用Sepharose Fast Flow色谱介质,不仅流速快,而且该介质不受pH值、离子强度等因素的影响而膨胀或收缩,易于生产人员的操作。
6、本发明工艺简单,操作方便,获得的SOD比活性达10000 U/mg以上,蛋白含量达95%以上,每公斤血块生产出SOD的总活力达45万U以上,产品质量高。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明进一步说明。
实施例1
1)、收集新鲜黄牛血液,经过滤后得到黄牛血块500公斤;
2)、用破碎机将大血块破碎成小血块;
3)、将破碎后的小血块倒入乳化机中,乳化20分钟;
4)、将乳化后的血液,泵入到750L的电导率为3 us/cm的二级反渗透水中,搅拌40分钟,使红血球破膜而溶血,得溶血液1250L;
5)、在常温下,向溶血液中加入40公斤氯化钠和15公斤氯化铜,边加边搅拌,使血红蛋白沉淀下来,SOD溶解在悬浊液中;
6)、将步骤5的悬浊液泵入到压滤缸中,加压过滤得到SOD压滤液900L;最后压干的血渣可进一步提取氯化血红素;
7)、将SOD压滤液泵入到截留分子量为6000D的中空纤维超滤器中,超滤浓缩,得到SOD浓缩液22L;
8)、将SOD浓缩液于60℃水浴中加热15分钟,冷却后离心,去除杂蛋白沉淀,收集SOD热变液;
9)、将SOD热变液上样到预先用平衡液平衡的Sepharose Fast Flow色谱柱中(30×100cm(直径×高度)),再用pH 7.8的2.5 mmol/L的Tris-HCl平衡液平衡10小时,至柱流出液A280值为0.1以下;用含0.1mol/L NaCl的pH 7.8的2.5 mmol/L的Tris-HCl洗脱液洗脱,收集蓝绿色SOD色谱带的下柱液8L;
10)、把SOD下柱液置于50℃的水浴中,用2mol/L的氢氧化钠溶液调pH值至9.2,缓慢加入肉豆蔻酰氯液30ml,同时补加2 mol/L的氢氧化钠溶液,使pH值稳定在9.2左右,反应1.4小时,冷却后离心,得到修饰SOD液8.08L;
11)、在修饰SOD液中加入1.8倍体积的冷丙酮,搅拌放置后SOD沉淀下来,再离心收集SOD沉淀。
12)、将SOD沉淀放入冻干机中,进行真空冷冻干燥,得到修饰SOD冻干粉27克,经检测SOD比活性为1.12万U/mg,蛋白含量96.5%,每公斤血块产出SOD总活力为60.48万U。
实施例2
1)、收集新鲜牦牛血液,经过滤后得到牦牛血块600公斤,冷冻储藏(屠宰旺季时冷藏);
2)、屠宰淡季时解冻牦牛血块,用破碎机将大血块破碎成小血块;
3)、将破碎后的小血块倒入乳化机中,乳化40分钟;
4)、将乳化后的血液,泵入到1000L的电导率为1 us/cm的二级反渗透水中,搅拌60分钟,使红血球破膜而溶血,得溶血液1600L;
5)、在常温下,向溶血液中加入64公斤氯化钠和20公斤氯化铜,边加边搅拌,使血红蛋白沉淀下来,SOD溶解在悬浊液中;
6)、将步骤5的悬浊液泵入到压滤缸中,加压过滤得到SOD压滤液1200L;最后压干的血渣可进一步提取氯化血红素;
7)、将SOD压滤液泵入到截留分子量为3000D的中空纤维超滤器中,超滤浓缩,得到SOD浓缩液30L;
8)、将SOD浓缩液于65℃水浴中加热20分钟,冷却后离心,去除杂蛋白沉淀,收集SOD热变液;
9)、将SOD热变液上样到预先用平衡液平衡的Sepharose Fast Flow色谱柱中(30×100cm(直径×高度)),再用pH 7.8的2.5 mmol/L的Tris-HCl平衡液平衡12小时,至柱流出液A280值为0.1以下;用含0.1mol/L NaCl的pH 7.8的2.5 mmol/L的Tris-HCl洗脱液洗脱,收集蓝绿色SOD色谱带的下柱液12L;
10)、把SOD下柱液置于55℃的水浴中,用1mol/L的氢氧化钾溶液调pH值至9.5,缓慢加入肉豆蔻酰氯液50ml,同时补加1 mol/L的氢氧化钾溶液,使pH值稳定在9.5左右,反应1.5小时,冷却后离心,得到修饰SOD液12.15L;
11)、在修饰SOD液中加入1.4倍体积的冷丙酮,搅拌放置后SOD沉淀下来,再离心收集SOD沉淀。
12)、将SOD沉淀放入冻干机中,进行真空冷冻干燥,得到修饰SOD冻干粉32克,经检测SOD比活性为1.32万U/mg,蛋白含量99.5%,每公斤血块产出SOD总活力为70.4万U。
实施例3
1)、收集新鲜羊血液,经过滤后得到羊血块400公斤;
2)、用破碎机将大血块破碎成小血块;
3)、将破碎后的小血块倒入乳化机中,乳化15分钟;
4)、将乳化后的血液,泵入到800L的电导率为4us/cm的二级反渗透水中,搅拌30分钟,使红血球破膜而溶血,得溶血液1200L;
5)、在常温下,向溶血液中加入42公斤氯化钠和10公斤硫酸铜,边加边搅拌,使血红蛋白沉淀下来,SOD溶解在悬浊液中;
6)、将步骤5的悬浊液泵入到压滤缸中,加压过滤得到SOD压滤液1000L;最后压干的血渣可进一步提取氯化血红素;
7)、将SOD压滤液泵入到截留分子量为10000D的中空纤维超滤器中,超滤浓缩,得到SOD浓缩液25L;
8)、将SOD浓缩液于55℃水浴中加热30分钟,冷却后离心,去除杂蛋白沉淀,收集SOD热变液;
9)、将SOD热变液上样到预先用平衡液平衡的Sepharose Fast Flow色谱柱中(30×100cm(直径×高度)),再用pH 7.8的2.5 mmol/L的Tris-HCl平衡液平衡7小时,至柱流出液A280值为0.1以下;用含0.1mol/L NaCl的pH 7.8的2.5 mmol/L的Tris-HCl洗脱液洗脱,收集蓝绿色SOD色谱带的下柱液7L;
10)、把SOD下柱液置于48℃的水浴中,用4mol/L的氢氧化钾溶液调pH值至9.0,缓慢加入肉豆蔻酰氯液24ml,同时补加4 mol/L的氢氧化钾溶液,使pH值稳定在9.0左右,反应1.2小时,冷却后离心,得到修饰SOD液7.05L;
11)、在修饰SOD液中加入2.0倍体积的冷丙酮,搅拌放置后SOD沉淀下来,再离心收集SOD沉淀。
12)、将SOD沉淀放入冻干机中,进行真空冷冻干燥,得到修饰SOD冻干粉18克,SOD比活性为1.04万U/mg,蛋白含量95.3%,每公斤血块产出SOD总活力为46.8万U。
Claims (1)
1.一种从动物血块提取、纯化SOD冻干粉的生产方法,是将动物血块经破碎、乳化、溶血、沉淀、压滤、超滤、热变性、柱色谱、修饰、丙酮沉淀、冻干,得到修饰SOD冻干粉,其步骤如下:
1)、收集牦牛、黄牛、猪、或羊多种动物在屠宰时的血液,自然凝固后滤去血清得到的新鲜血块,或新鲜血块冷冻储藏后的冷冻血块;
2)、用破碎机将大血块破碎成小血块;
3)、将破碎后的小血块倒入乳化机中,乳化15~40分钟;
4)、将乳化后的血液,泵入到1.2~2.0倍血液体积的二级反渗透水中,搅拌30~60分钟,使红血球破膜而溶血,得溶血液;
5)、在常温下,向溶血液中同时加入两种无机盐,使血红蛋白沉淀下来,SOD溶解在悬浊液中;所述的一种无机盐是氯化钠,重量占溶血液体积的1.5~5.0%;另一种无机盐是氯化铜或硫酸铜,重量占溶血液体积的0.6~1.5%;
6)、将步骤5的悬浊液泵入到压滤缸中,加压过滤得到SOD压滤液;
7)、将SOD压滤液泵入到截留分子量为3000~10000D的中空纤维超滤器中,超滤浓缩,得到SOD浓缩液;
8)、将SOD浓缩液于55~65℃水浴中加热10~30分钟,冷却后离心,去除杂蛋白沉淀,收集SOD热变液;
9)、将SOD热变液上样到预先用平衡液平衡的Sepharose Fast Flow色谱柱中,再用平衡液平衡6~15小时,至柱流出液A280值为0.1以下;再用洗脱液洗脱,收集蓝绿色SOD色谱带的下柱液;所述的平衡液为pH 7.8的2.5 mmol/L的Tris-HCl缓冲液;所述的洗脱液为含0.1mol/L NaCl的pH 7.8的2.5 mmol/L的Tris-HCl缓冲液;
10)、把SOD下柱液置于48~55℃的水浴中,用碱溶液调pH值至9.0~9.5,缓慢加入蛋白质修饰剂,反应1.2~1.5小时,冷却后离心,得到修饰SOD液;所述的碱溶液是1 ~4mol/L的氢氧化钠溶液,或1 ~4 mol/L的氢氧化钾溶液;所述的蛋白质修饰剂是肉豆蔻酰氯;
11)、在修饰SOD液中加入1.4~2.0倍体积的冷丙酮,搅拌放置后SOD沉淀下来,再离心收集SOD沉淀;
12)、将SOD沉淀放置于冻干机中,进行真空冷冻干燥,得到修饰SOD冻干粉。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201610132505.2A CN105543185B (zh) | 2016-03-10 | 2016-03-10 | 一种从动物血块提取、纯化sod冻干粉的生产方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201610132505.2A CN105543185B (zh) | 2016-03-10 | 2016-03-10 | 一种从动物血块提取、纯化sod冻干粉的生产方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN105543185A CN105543185A (zh) | 2016-05-04 |
CN105543185B true CN105543185B (zh) | 2019-01-11 |
Family
ID=55822743
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201610132505.2A Active CN105543185B (zh) | 2016-03-10 | 2016-03-10 | 一种从动物血块提取、纯化sod冻干粉的生产方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN105543185B (zh) |
Families Citing this family (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN106011091A (zh) * | 2016-06-22 | 2016-10-12 | 绍兴文理学院 | 一种从三角帆蚌的蚌肉中提取纯化sod冻干粉的方法 |
CN112841406A (zh) * | 2021-01-25 | 2021-05-28 | 窦靖鑫 | 一种乌鸡的深加工工艺及乌鸡多肽蛋白粉 |
Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1081713A (zh) * | 1992-07-30 | 1994-02-09 | 静天玉 | 从血块制备超氧化物歧化酶的方法 |
CN1428422A (zh) * | 2001-12-24 | 2003-07-09 | 徐文中 | 超氧化物歧化酶大规模生产新工艺 |
CN1616655A (zh) * | 2004-08-14 | 2005-05-18 | 李维标 | 超氧化物歧化酶的制备方法 |
CN101768582A (zh) * | 2010-04-01 | 2010-07-07 | 成都新亚生物工程有限责任公司 | 一种sod修饰生产工艺 |
CN102925416A (zh) * | 2012-11-19 | 2013-02-13 | 景志刚 | 从哺乳动物血液中提取超氧化物歧化酶的方法 |
-
2016
- 2016-03-10 CN CN201610132505.2A patent/CN105543185B/zh active Active
Patent Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1081713A (zh) * | 1992-07-30 | 1994-02-09 | 静天玉 | 从血块制备超氧化物歧化酶的方法 |
CN1428422A (zh) * | 2001-12-24 | 2003-07-09 | 徐文中 | 超氧化物歧化酶大规模生产新工艺 |
CN1616655A (zh) * | 2004-08-14 | 2005-05-18 | 李维标 | 超氧化物歧化酶的制备方法 |
CN101768582A (zh) * | 2010-04-01 | 2010-07-07 | 成都新亚生物工程有限责任公司 | 一种sod修饰生产工艺 |
CN102925416A (zh) * | 2012-11-19 | 2013-02-13 | 景志刚 | 从哺乳动物血液中提取超氧化物歧化酶的方法 |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
动物血块中CuZn-SOD的提取研究;周全法 等;《再生资源研究》;20010425(第2期);34-36 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN105543185A (zh) | 2016-05-04 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN102488713B (zh) | 一种制备羊胎盘素和羊胎盘水解胶原浓缩液的方法 | |
CN105331665A (zh) | 一种猪脑蛋白酶解制备脑多肽和脑小分子肽的方法 | |
CN102526116B (zh) | 一种蜂毒的精制方法 | |
CN100535110C (zh) | 菠萝蛋白酶物理提取方法 | |
CN110760509A (zh) | 河豚精巢的鱼精成分提取方法 | |
CN101319208A (zh) | 一种菠萝蛋白酶的制造方法 | |
CN105543185B (zh) | 一种从动物血块提取、纯化sod冻干粉的生产方法 | |
CN1268220C (zh) | 水酶法提取玉米胚芽油及回收蛋白质的方法 | |
CN102093748B (zh) | 用红心萝卜制备萝卜红色素单聚体及萝卜原花青素的方法 | |
CN102286591A (zh) | 一种酵母来源活性多肽的制备方法 | |
CN101352616B (zh) | 采用膜分离集成工艺技术制备松树皮提取物的方法 | |
CN109966327A (zh) | 一种超声波、微波双辅助提取西番莲种籽油粕总黄酮的方法 | |
CN106119328A (zh) | 一种适合工业化生产的优质虾低聚肽粉制备方法 | |
CN103740797B (zh) | 一种利用高温花生粕制备高水解度功能性短肽的方法 | |
CN110551208B (zh) | 一种大豆胰蛋白酶抑制剂的提取方法 | |
CN101302505B (zh) | 一种分离提取糜蛋白酶的方法 | |
CN112480243A (zh) | 一种规模化水蛭素分离纯化生产工艺方法及设备 | |
CN104744601A (zh) | 一种阿魏菇多糖提取与纯化的方法 | |
CN101845089A (zh) | 一种适合规模化生产眼镜蛇蛇毒神经毒素并降低神经毒性的方法 | |
CN104844676B (zh) | 一种从菠菜中提取蜕皮激素的方法 | |
CN109385414A (zh) | 菠萝蛋白酶的纯化方法 | |
CN106086139A (zh) | 一种利用淡水鱼头蛋白酶解制备鱼头多肽的方法 | |
CN101768582B (zh) | 一种sod修饰生产方法 | |
CN101095454A (zh) | 一种采用膜分离技术从谷物籽粒中分离蛋白质的方法 | |
CN109172607A (zh) | 一种鲜驴胎盘提取胎盘素的工艺及方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
GR01 | Patent grant | ||
GR01 | Patent grant |