CN105409771A - 一种佛手参的快速繁殖方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种佛手参的快速繁殖方法,其利用多种物理和生物手段,成本低廉,操作方便,可以大幅提高种子的萌发率,原球茎的分化率,而且可以进行壮苗培养,炼苗后转入温室最终存活率高。
Description
技术领域
本发明涉及一种佛手参的快速繁殖方法,属于生物领域。
背景技术
兰科手参属植物为多年生草本植物,全世界共10种,我国有5种,包括西南手参、手参、短距手参、峨眉手参和角距手参。佛手参因具有可观的药用价值而被列入多部藏医药经典。
兰科植物的种子极小(每粒种子长1~2mm,直径0.1~0.2mm),由于其胚发育不完全,缺乏供给营养成分的胚乳,因此在自然条件下需要与生境中的真菌共生才能萌发,自然萌发率极低。兰科植物依其生长的环境可分为气生兰和陆生兰,生长于土壤中的陆生兰为了适应其分布地的生态环境,在长期的进化中发展了种皮厚及含有阻碍萌发的物质等特征,其种子比气生兰种子更难以萌发。兰科手参属植物为陆生兰类,佛手参的无性繁殖是由老手参根部仅增生一个小手参,当小手参长大时,老手参枯死,平均繁殖倍数低于2,而种子的自然萌发率也极低。解决佛手参的种苗规模化繁殖是实现其人工栽培、药用开发及种质资源保护的关键。
佛手参属于陆生兰类,其无性及有性繁殖均较为困难,人为的采挖导致了野生资源日益匮乏,迫切需要像天麻、石斛等药用兰科植物一样进行人工栽培,而种苗的规模化生产是实现人工栽培的关键技术。现有技术有人曾尝试利用佛手参的根、芽体和花梗为外植体进行离体培养研究,设计了大量不同植物生长物质组合的培养基,但接种的150个块根、150个花梗和20余个芽体无一例诱导成功,表明佛手参组织培养难度很大。该研究还首次对佛手参种子进行了非共生萌发研究,种子萌发率可达到20%,这已经是很重大的突破,但是萌发率还是非常低,而且将萌发后得到的原球茎进一步进行诱导分化处理,分化率最高仅仅为7%左右,而且后期分化得到的芽无法壮苗成活。
本发明旨在提供一种佛手参的快速繁殖方法,其利用多种物理和生物手段,成本低廉,操作方便,可以大幅提高种子的萌发率,原球茎的分化率,而且可以进行壮苗培养,炼苗后转入温室最终存活率高。
发明内容
基于背景技术存在的技术问题,本发明针对背景技术存在的问题,提供一种佛手参的快速繁殖方法,其利用多种物理和生物手段,成本低廉,操作方便,可以大幅提高种子的萌发率,原球茎的分化率,而且可以进行壮苗培养,炼苗后转入温室最终存活率高。
本发明的目的通过以下技术方案实现:
一种佛手参的快速繁殖方法,其特征在于,步骤如下:
种子萌发:
(1)预处理:
取佛手参中度成熟种子,未开裂且易与胎座剥离的黄色种子,用流水冲洗30min,然后加入预处理液中,置于恒温超声波发生器(功率:25KHz),在28℃恒温处理3min;
所述预处理液的配方为:苹果酸1g/L,漆酶0.8g/L(酶活为5000u/g),甘氨酸2g/L,其余为纯净水;
(2)萌发培养基培养:
预处理后,使用中性洗涤剂清洗,然后用蒸馏水冲洗5遍,在无菌条件下将其转至无菌瓶内;用无菌水冲洗3遍后,冲洗干净后用75%的酒精进行消毒20s,用无菌水冲洗5次,再加入0.1%汞溶液放在振荡器上进行振荡消毒5min,然后用无菌水冲洗5次以上,沥干水分;
用无菌手术刀片纵向割开果荚,挑出种子,散铺于萌发培养基中,接种后的种子在18℃黑暗条件下培养5d后,升温至25℃黑暗条件下继续培养1d,接着置于光照周期12h·d-1,光照强度3.2μmol·m-2·s-1的散光条件下培养;
所述萌发培养基的配方为:以MS为基础培养基,蔗糖11.8g/L、琼脂3.9g/L,复方中药提取液0.5g/L、椰汁8g/L、6-BA0.1mg/L、pH6.5;
所述复方中药提取液的制备方法为:
如下所述均为质量份;
取6份罗汉果,3份天山雪莲,1份党参,1份淫羊藿,1.7份茯苓,0.8份连翘,上述药物按传统煎煮方法加300份煎煮至30份水时,过滤,紫外线灭菌于3℃备用;
实体镜下观察萌发情况并统计萌动率和萌发率。萌动指种子膨大;萌发指膨大的种子能够形成原球茎。
结果:培养30d后,萌动率达到99.8%,萌发率高达92.1%,这是对濒危植物佛手参种子育苗研究的重大突破。
诱导佛手参原球茎分化:
(3)获得佛手参种子萌芽得到的原球茎;
(4)愈伤组织形成:
将佛手参种子萌芽得到的原球茎移至诱导增殖培养基;
所述诱导增殖培养基的配方为:以MS为基础培养基,蔗糖15.8g/L、琼脂3.9g/L,海藻糖5g/L,复方中药提取液0.3g/L、椰汁5g/L、6-BA0.1mg/L、pH6.5;
所述复方中药提取液的制备方法为:
如下所述均为质量份;
取5份党参,2份天山雪莲,1份青果,1份淫羊藿,1.6份积雪草,0.5份凌霄花,上述药物按传统煎煮方法加300份煎煮至30份水时,过滤,紫外线灭菌于3℃备用;
(5)待根状茎和愈伤组织长出以后,将根状茎切为长约0.2cm的节段,愈伤组织切成0.2cm×0.2cm小块平铺于新鲜的诱导增殖培养基上;置于温度26℃,光照周期12h·d-1,光照强度22μmol·m-2·s-1的条件下培养,每45d继代一次,继代3次后的增殖倍数为4.1,分化率高达81.2%。
再生植株形成与生长
(6)分化出芽后,很快在芽基部长出多条根,这时转入壮苗培养基:
所述壮苗培养基的配方为:以MS为基础培养基,蔗糖18.8-20.1g/L、琼脂3.9g/L,胶原蛋白0.2-0.5g/L、海藻糖3-4g/L、椰汁6g/L、6-BA0.2-0.3mg/L、pH6.5;
置于温度26℃,光照周期12h·d-1,光照强度25μmol·m-2·s-1的条件下培养;
壮苗培养5周后,分化的芽发育形成健康的小苗,存活率为78.1-92.3%。
本发明利用多种物理和生物手段,成本低廉,操作方便,可以大幅提高种子的萌发率,原球茎的分化率,而且可以进行壮苗培养,成活率高,而且炼苗后转入温室最终存活率也很高。
本发明的有益之处在于:
本发明利用多种物理和生物手段,成本低廉,操作方便,可以大幅提高种子的萌发率,原球茎的分化率,而且可以进行壮苗培养,壮苗培养5周后,分化的芽发育形成健康的小苗,存活率为78.1-92.3%。
,而且炼苗后转入温室最终存活率也很高。
具体实施方式
实施例1:
一种佛手参的快速繁殖方法,其特征在于,步骤如下:
种子萌发:
(1)预处理:
取佛手参中度成熟种子,未开裂且易与胎座剥离的黄色种子,用流水冲洗30min,然后加入预处理液中,置于恒温超声波发生器(功率:25KHz),在28℃恒温处理3min;
所述预处理液的配方为:苹果酸1g/L,漆酶0.8g/L(酶活为5000u/g),甘氨酸2g/L,其余为纯净水;
(2)萌发培养基培养:
预处理后,使用中性洗涤剂清洗,然后用蒸馏水冲洗5遍,在无菌条件下将其转至无菌瓶内;用无菌水冲洗3遍后,冲洗干净后用75%的酒精进行消毒20s,用无菌水冲洗5次,再加入0.1%汞溶液放在振荡器上进行振荡消毒5min,然后用无菌水冲洗5次以上,沥干水分;
用无菌手术刀片纵向割开果荚,挑出种子,散铺于萌发培养基中,接种后的种子在18℃黑暗条件下培养5d后,升温至25℃黑暗条件下继续培养1d,接着置于光照周期12h·d-1,光照强度3.2μmol·m-2·s-1的散光条件下培养;
所述萌发培养基的配方为:以MS为基础培养基,蔗糖11.8g/L、琼脂3.9g/L,复方中药提取液0.5g/L、椰汁8g/L、6-BA0.1mg/L、pH6.5;
所述复方中药提取液的制备方法为:
如下所述均为质量份;
取6份罗汉果,3份天山雪莲,1份党参,1份淫羊藿,1.7份茯苓,0.8份连翘,上述药物按传统煎煮方法加300份煎煮至30份水时,过滤,紫外线灭菌于3℃备用;
实体镜下观察萌发情况并统计萌动率和萌发率。萌动指种子膨大;萌发指膨大的种子能够形成原球茎。
结果:培养30d后,萌动率达到99.8%,萌发率高达92.1%,这是对濒危植物佛手参种子育苗研究的重大突破。
诱导佛手参原球茎分化:
(3)获得佛手参种子萌芽得到的原球茎;
(4)愈伤组织形成:
将佛手参种子萌芽得到的原球茎移至诱导增殖培养基;
所述诱导增殖培养基的配方为:以MS为基础培养基,蔗糖15.8g/L、琼脂3.9g/L,海藻糖5g/L,复方中药提取液0.3g/L、椰汁5g/L、6-BA0.1mg/L、pH6.5;
所述复方中药提取液的制备方法为:
如下所述均为质量份;
取5份党参,2份天山雪莲,1份青果,1份淫羊藿,1.6份积雪草,0.5份凌霄花,上述药物按传统煎煮方法加300份煎煮至30份水时,过滤,紫外线灭菌于3℃备用;
(5)待根状茎和愈伤组织长出以后,将根状茎切为长约0.2cm的节段,愈伤组织切成0.2cm×0.2cm小块平铺于新鲜的诱导增殖培养基上;置于温度26℃,光照周期12h·d-1,光照强度22μmol·m-2·s-1的条件下培养,每45d继代一次,继代3次后的增殖倍数为4.1,分化率高达81.2%。
再生植株形成与生长
(6)分化出芽后,很快在芽基部长出多条根,这时转入壮苗培养基:
所述壮苗培养基的配方为:以MS为基础培养基,蔗糖18.8g/L、琼脂3.9g/L,胶原蛋白0.5g/L、海藻糖3g/L、椰汁6g/L、6-BA0.3mg/L、pH6.5;
置于温度26℃,光照周期12h·d-1,光照强度25μmol·m-2·s-1的条件下培养;
壮苗培养5周后,分化的芽发育形成健康的小苗,存活率为78.1%。
实施例2:
一种佛手参的快速繁殖方法,其特征在于,步骤如下:
种子萌发:
(1)预处理:
取佛手参中度成熟种子,未开裂且易与胎座剥离的黄色种子,用流水冲洗30min,然后加入预处理液中,置于恒温超声波发生器(功率:25KHz),在28℃恒温处理3min;
所述预处理液的配方为:苹果酸1g/L,漆酶0.8g/L(酶活为5000u/g),甘氨酸2g/L,其余为纯净水;
(2)萌发培养基培养:
预处理后,使用中性洗涤剂清洗,然后用蒸馏水冲洗5遍,在无菌条件下将其转至无菌瓶内;用无菌水冲洗3遍后,冲洗干净后用75%的酒精进行消毒20s,用无菌水冲洗5次,再加入0.1%汞溶液放在振荡器上进行振荡消毒5min,然后用无菌水冲洗5次以上,沥干水分;
用无菌手术刀片纵向割开果荚,挑出种子,散铺于萌发培养基中,接种后的种子在18℃黑暗条件下培养5d后,升温至25℃黑暗条件下继续培养1d,接着置于光照周期12h·d-1,光照强度3.2μmol·m-2·s-1的散光条件下培养;
所述萌发培养基的配方为:以MS为基础培养基,蔗糖11.8g/L、琼脂3.9g/L,复方中药提取液0.5g/L、椰汁8g/L、6-BA0.1mg/L、pH6.5;
所述复方中药提取液的制备方法为:
如下所述均为质量份;
取6份罗汉果,3份天山雪莲,1份党参,1份淫羊藿,1.7份茯苓,0.8份连翘,上述药物按传统煎煮方法加300份煎煮至30份水时,过滤,紫外线灭菌于3℃备用;
实体镜下观察萌发情况并统计萌动率和萌发率。萌动指种子膨大;萌发指膨大的种子能够形成原球茎。
结果:培养30d后,萌动率达到99.8%,萌发率高达92.1%,这是对濒危植物佛手参种子育苗研究的重大突破。
诱导佛手参原球茎分化:
(3)获得佛手参种子萌芽得到的原球茎;
(4)愈伤组织形成:
将佛手参种子萌芽得到的原球茎移至诱导增殖培养基;
所述诱导增殖培养基的配方为:以MS为基础培养基,蔗糖15.8g/L、琼脂3.9g/L,海藻糖5g/L,复方中药提取液0.3g/L、椰汁5g/L、6-BA0.1mg/L、pH6.5;
所述复方中药提取液的制备方法为:
如下所述均为质量份;
取5份党参,2份天山雪莲,1份青果,1份淫羊藿,1.6份积雪草,0.5份凌霄花,上述药物按传统煎煮方法加300份煎煮至30份水时,过滤,紫外线灭菌于3℃备用;
(5)待根状茎和愈伤组织长出以后,将根状茎切为长约0.2cm的节段,愈伤组织切成0.2cm×0.2cm小块平铺于新鲜的诱导增殖培养基上;置于温度26℃,光照周期12h·d-1,光照强度22μmol·m-2·s-1的条件下培养,每45d继代一次,继代3次后的增殖倍数为4.1,分化率高达81.2%。
再生植株形成与生长
(6)分化出芽后,很快在芽基部长出多条根,这时转入壮苗培养基:
所述壮苗培养基的配方为:以MS为基础培养基,蔗糖20.1g/L、琼脂3.9g/L,胶原蛋白0.2g/L、海藻糖4g/L、椰汁6g/L、6-BA0.2mg/L、pH6.5;
置于温度26℃,光照周期12h·d-1,光照强度25μmol·m-2·s-1的条件下培养;
壮苗培养5周后,分化的芽发育形成健康的小苗,存活率为92.3%。
实施例3:
一种佛手参的快速繁殖方法,其特征在于,步骤如下:
种子萌发:
(1)预处理:
取佛手参中度成熟种子,未开裂且易与胎座剥离的黄色种子,用流水冲洗30min,然后加入预处理液中,置于恒温超声波发生器(功率:25KHz),在28℃恒温处理3min;
所述预处理液的配方为:苹果酸1g/L,漆酶0.8g/L(酶活为5000u/g),甘氨酸2g/L,其余为纯净水;
(2)萌发培养基培养:
预处理后,使用中性洗涤剂清洗,然后用蒸馏水冲洗5遍,在无菌条件下将其转至无菌瓶内;用无菌水冲洗3遍后,冲洗干净后用75%的酒精进行消毒20s,用无菌水冲洗5次,再加入0.1%汞溶液放在振荡器上进行振荡消毒5min,然后用无菌水冲洗5次以上,沥干水分;
用无菌手术刀片纵向割开果荚,挑出种子,散铺于萌发培养基中,接种后的种子在18℃黑暗条件下培养5d后,升温至25℃黑暗条件下继续培养1d,接着置于光照周期12h·d-1,光照强度3.2μmol·m-2·s-1的散光条件下培养;
所述萌发培养基的配方为:以MS为基础培养基,蔗糖11.8g/L、琼脂3.9g/L,复方中药提取液0.5g/L、椰汁8g/L、6-BA0.1mg/L、pH6.5;
所述复方中药提取液的制备方法为:
如下所述均为质量份;
取6份罗汉果,3份天山雪莲,1份党参,1份淫羊藿,1.7份茯苓,0.8份连翘,上述药物按传统煎煮方法加300份煎煮至30份水时,过滤,紫外线灭菌于3℃备用;
实体镜下观察萌发情况并统计萌动率和萌发率。萌动指种子膨大;萌发指膨大的种子能够形成原球茎。
结果:培养30d后,萌动率达到99.8%,萌发率高达92.1%,这是对濒危植物佛手参种子育苗研究的重大突破。
诱导佛手参原球茎分化:
(3)获得佛手参种子萌芽得到的原球茎;
(4)愈伤组织形成:
将佛手参种子萌芽得到的原球茎移至诱导增殖培养基;
所述诱导增殖培养基的配方为:以MS为基础培养基,蔗糖15.8g/L、琼脂3.9g/L,海藻糖5g/L,复方中药提取液0.3g/L、椰汁5g/L、6-BA0.1mg/L、pH6.5;
所述复方中药提取液的制备方法为:
如下所述均为质量份;
取5份党参,2份天山雪莲,1份青果,1份淫羊藿,1.6份积雪草,0.5份凌霄花,上述药物按传统煎煮方法加300份煎煮至30份水时,过滤,紫外线灭菌于3℃备用;
(5)待根状茎和愈伤组织长出以后,将根状茎切为长约0.2cm的节段,愈伤组织切成0.2cm×0.2cm小块平铺于新鲜的诱导增殖培养基上;置于温度26℃,光照周期12h·d-1,光照强度22μmol·m-2·s-1的条件下培养,每45d继代一次,继代3次后的增殖倍数为4.1,分化率高达81.2%。
再生植株形成与生长
(6)分化出芽后,很快在芽基部长出多条根,这时转入壮苗培养基:
所述壮苗培养基的配方为:以MS为基础培养基,蔗糖19.4g/L、琼脂3.9g/L,胶原蛋白0.4g/L、海藻糖3g/L、椰汁6g/L、6-BA0.3mg/L、pH6.5;
置于温度26℃,光照周期12h·d-1,光照强度25μmol·m-2·s-1的条件下培养;
壮苗培养5周后,分化的芽发育形成健康的小苗,存活率为85.7%。
可见,本发明是对佛手参育苗的重大突破,其可分化得到大量健康的小苗,存活率为78.1-92.3%。
以上所述,仅为本发明较佳的具体实施方式,但本发明的保护范围并不局限于此,任何熟悉本技术领域的技术人员在本发明揭露的技术范围内,根据本发明的技术方案及其发明构思加以等同替换或改变,都应涵盖在本发明的保护范围之内。
Claims (2)
1.一种佛手参的快速繁殖方法,其特征在于,步骤如下:
种子萌发:
(1)预处理:
取佛手参中度成熟种子,未开裂且易与胎座剥离的黄色种子,用流水冲洗30min,然后加入预处理液中,置于恒温超声波发生器(功率:25KHz),在28℃恒温处理3min;
所述预处理液的配方为:苹果酸1g/L,漆酶0.8g/L(酶活为5000u/g),甘氨酸2g/L,其余为纯净水;
(2)萌发培养基培养:
预处理后,使用中性洗涤剂清洗,然后用蒸馏水冲洗5遍,在无菌条件下将其转至无菌瓶内;用无菌水冲洗3遍后,冲洗干净后用75%的酒精进行消毒20s,用无菌水冲洗5次,再加入0.1%汞溶液放在振荡器上进行振荡消毒5min,然后用无菌水冲洗5次以上,沥干水分;
用无菌手术刀片纵向割开果荚,挑出种子,散铺于萌发培养基中,接种后的种子在18℃黑暗条件下培养5d后,升温至25℃黑暗条件下继续培养1d,接着置于光照周期12h·d-1,光照强度3.2μmol·m-2·s-1的散光条件下培养;
所述萌发培养基的配方为:以MS为基础培养基,蔗糖11.8g/L、琼脂3.9g/L,复方中药提取液0.5g/L、椰汁8g/L、6-BA0.1mg/L、pH6.5;
所述复方中药提取液的制备方法为:
如下所述均为质量份;
取6份罗汉果,3份天山雪莲,1份党参,1份淫羊藿,1.7份茯苓,0.8份连翘,上述药物按传统煎煮方法加300份煎煮至30份水时,过滤,紫外线灭菌于3℃备用;
诱导佛手参原球茎分化:
(3)获得佛手参种子萌芽得到的原球茎;
(4)愈伤组织形成:
将佛手参种子萌芽得到的原球茎移至诱导增殖培养基;
所述诱导增殖培养基的配方为:以MS为基础培养基,蔗糖15.8g/L、琼脂3.9g/L,海藻糖5g/L,复方中药提取液0.3g/L、椰汁5g/L、6-BA0.1mg/L、pH6.5;
所述复方中药提取液的制备方法为:
如下所述均为质量份;
取5份党参,2份天山雪莲,1份青果,1份淫羊藿,1.6份积雪草,0.5份凌霄花,上述药物按传统煎煮方法加300份煎煮至30份水时,过滤,紫外线灭菌于3℃备用;
(5)待根状茎和愈伤组织长出以后,将根状茎切为长约0.2cm的节段,愈伤组织切成0.2cm×0.2cm小块平铺于新鲜的诱导增殖培养基上;置于温度26℃,光照周期12h·d-1,光照强度22μmol·m-2·s-1的条件下培养,每45d继代一次,继代3次后的增殖倍数为4.1,分化率高达81.2%;
再生植株形成与生长
(6)分化出芽后,很快在芽基部长出多条根,这时转入壮苗培养基:
所述壮苗培养基的配方为:以MS为基础培养基,蔗糖18.8-20.1g/L、琼脂3.9g/L,胶原蛋白0.2-0.5g/L、海藻糖3-4g/L、椰汁6g/L、6-BA0.2-0.3mg/L、pH6.5;
置于温度26℃,光照周期12h·d-1,光照强度25μmol·m-2·s-1的条件下培养。
2.权利要求1所述的提高濒危植物佛手参种子萌芽率的方法,其特征在于:
壮苗培养5周后,分化的芽发育形成健康的小苗,存活率为78.1-92.3%。
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2015
- 2015-11-30 CN CN201510844349.8A patent/CN105409771A/zh active Pending
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