CN105331610B - 一种检测鲜活农产品中致病菌的五重pcr引物及探针和试剂盒 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种检测鲜活农产品中致病菌的五重PCR引物及探针和试剂盒，包括5对引物对，5对引物对分别为：沙门氏菌正向引物，沙门氏菌反向引物；金黄色葡萄球菌正向引物，金黄色葡萄球菌反向引物；大肠杆菌O‑157正向引物，大肠杆菌O‑157反向引物；副溶血弧菌正向引物，副溶血弧菌反向引物；单核细胞增生李斯特菌正向引物，单核细胞增生李斯特菌反向引物。序列信息见SEQ ID No.1‑10所示。本发明可同时检测5种致病菌，引物之间的干扰小，非特异性扩增反应少，保证了检测的灵敏度与特异性，既提高检测速度降又降低了检验成本。
Description
技术领域
本发明涉及致病菌检测技术领域，特别涉及一种检测鲜活农产品中致病菌的五重PCR引物及探针和试剂盒。
背景技术
鲜活农产品是我国消费者除粮食外最主要的食物营养来源，在日常生活中占据着举足轻重的位置。鲜活农产品在原料，加工，储藏，运输过程中容易受到多种病原微生物(主要是细菌和真菌)的侵染。因微生物侵染产生的病害发生后的交叉感染会造成果蔬的大量损失，失去商品价值，极大地限制了果蔬产业的发展。同时被各种病原微生物污染的鲜活农产品一旦被消费者购买、食用会造成食物中毒，疾病传播等严重后果，危害食品安全，给消费者的身体健康和生命安全带来巨大威胁。
基因芯片检测微生物的基本原理是在芯片表面合成待检验微生物的特异性核酸探针，微生物样品DNA经荧光标记PCR扩增，然后再与芯片上寡核苷酸点杂交，最后通过扫描仪分析荧光分布模式来确定检测样品是否存在某些特定微生物。与传统的检测方法(细菌培养、生化鉴定、血清分型等)相比，基因芯片技术的先进性主要体现在：①基因芯片可以实现微生物的高通量和并行检测，一次实验即可得出全部结果；②操作简便快速，整个检测只需24h基本可以出结果(而传统方法一般需4～7d)；③特异性强，敏感性高。
多重PCR(multiplex PCR)是在普通PCR的基础上加以改进，于一个PCR反应体系中加入多对特异性引物，针对多个DNA模板或同一模板的不同区域扩增多个目的片段的PCR技术。采用这一技术可同时扩增多种病原微生物特异核酸序列，可大大提高病原微生物的检测效率。目前同时对食品或食源性疾病多种病原菌进行分子诊断时常常采用多重PCR方法，因为该方法可同时检测3～4种病原菌，既提高检测速度降又降低了检验成本，由此得到广泛应用。但传统的多重PCR体系中，由于存在多对引物，引物之间的干扰以及引物与模板的错配而造成灵敏度下降与非特异性扩增反应增加等问题，制约多重PCR技术的发展。
发明内容
本发明的目的在于提供一种检测鲜活农产品中致病菌的五重PCR引物，可同时检测沙门氏菌、金黄色葡萄球菌、副溶血性弧菌、大肠杆菌O-157和单核细胞增生李斯特菌等5种致病菌，引物之间的干扰小，非特异性扩增反应少，保证了检测的灵敏度与特异性，既提高检测速度降又降低了检验成本。
本发明还提供了检测上述五重PCR引物扩增产物的探针。
同时本发明还提供了检测鲜活农产品中致病菌的试剂盒。
本发明解决其技术问题所采用的技术方案是：
一种检测鲜活农产品中致病菌的五重PCR引物，包括5对引物对，5对引物对分别为：沙门氏菌正向引物，序列信息见SEQ ID No.1所示，沙门氏菌反向引物序列信息见SEQID No.2所示；
金黄色葡萄球菌正向引物，序列信息见SEQ ID No.3所示，金黄色葡萄球菌反向引物序列信息见SEQ ID No.4所示；
大肠杆菌O-157正向引物，序列信息见SEQ ID No.5所示，大肠杆菌O-157反向引物序列信息见SEQ ID No.6所示；
副溶血弧菌正向引物，序列信息见SEQ ID No.7所示，副溶血弧菌反向引物序列信息见SEQ ID No.8所示；
单核细胞增生李斯特菌正向引物，序列信息见SEQ ID No.9所示，单核细胞增生李斯特菌反向引物序列信息见SEQ ID No.10所示。
本发明针对沙门氏菌、金黄色葡萄球菌、副溶血性弧菌、大肠杆菌O-157和单核细胞增生李斯特菌，筛选出各个菌种种间特异性强同时种内保守性强的基因区段设计引物。引物特异性强，本发明特定设计的5对引物对，引物之间的干扰小，非特异性扩增反应少，保证了检测的灵敏度与特异性，既提高检测速度降又降低了检验成本。
一种用于检测五重PCR引物扩增的PCR产物的探针，包括5组探针，5组探针分别为：
检测沙门氏菌的探针20个，序列见SEQ ID No.132～151所示；
检测金黄色葡萄球菌的探针24个，序列见SEQ ID No.108～131所示；
检测大肠杆菌O-157的探针25个，序列见SEQ ID No.11～35所示；
检测副溶血弧菌的探针46个，序列见SEQ ID No.62～107所示；
检测单核细胞增生李斯特菌的探针26个，序列见SEQ ID No.36～61所示。
为了精确检测细菌加强检测效率，本发明针对五重PCR引物扩增的PCR产物设计了特定的DNA探针，探针固定在基因芯片上，便于大通量、快速检测，检测精度高。一种检测鲜活农产品中致病菌的检测试剂盒，包括五重PCR反应体系和具有针对5种致病菌设计的DNA探针的原位合成芯片，所述五重PCR反应体系以总体积50μL计，其组成如下：
10×Ex Taq buffer 10μL，
浓度为2.5mmol/L的dATP 1.0μL，
浓度为2.5mmol/L的dTTP 1.0μL，
浓度为2.5mmol/L的dGTP 1.0μL，
浓度为2.5mmol/L的dCTP 0.75μL，
浓度为1nmol/μL的cy3-dCTP 2.0μL，
引物混合物 5.0μL，
DNA模板 20ng或10ng，
浓度为5U/μL的Ex Taq酶 0.5μL，
ddH2O 补足至50μL。
本发明在反应体系中掺入一定比例的cy3-dCTP是为了在PCR产物中渗入荧光素，在后续的杂交反应中，如果带有荧光素的PCR产物与芯片上的探针成功杂交，则在杂交清洗完毕后，以扫描仪对芯片进行扫描时(扫描波长根据染料进行选择，比如cy3采用532nm)成功杂交的探针位置会发荧光，从而可以得知样品中是否存在探针对应的细菌。
本发明的试剂盒结合多重PCR技术和基因芯片技术，可同时检测沙门氏菌、金黄色葡萄球菌、副溶血性弧菌、大肠杆菌O-157和单核细胞增生李斯特菌等5种致病菌，该方法具有准确性高，灵敏度高，特异性强，高效快速等优点。
作为优选，所述引物混合物的由以下引物混合而成：
浓度为20mmol/L的沙门氏菌正向引物19μL，浓度为20mmol/L的沙门氏菌反向引物19μL；
浓度为20mmol/L的金黄色葡萄球菌正向引物20μL，浓度为20mmol/L的金黄色葡萄球菌反向引物20μL；
浓度为20mmol/L的大肠杆菌O-157正向引物7.3μL，浓度为20mmol/L的大肠杆菌O-157反向引物7.3μL；
浓度为20mmol/L的副溶血弧菌正向引物20μL，浓度为20mmol/L的副溶血弧菌反向引物20μL；
浓度为20mmol/L的单核细胞增生李斯特菌正向引物20μL，浓度为20mmol/L的单核细胞增生李斯特菌反向引物20μL。
作为优选，针对5种致病菌设计的DNA探针如下：
检测沙门氏菌的探针20个，序列见SEQ ID No.132～151所示；
检测金黄色葡萄球菌的探针24个，序列见SEQ ID No.108～131所示；
检测大肠杆菌O-157的探针25个，序列见SEQ ID No.11～35所示；
检测副溶血弧菌的探针46个，序列见SEQ ID No.62～107所示；
检测单核细胞增生李斯特菌的探针26个，序列见SEQ ID No.36～61所示。
本发明的有益效果是：五重PCR引物，可同时检测沙门氏菌、金黄色葡萄球菌、副溶血性弧菌、大肠杆菌O-157和单核细胞增生李斯特菌等5种致病菌，引物之间的干扰小，非特异性扩增反应少，保证了检测的灵敏度与特异性，既提高检测速度降又降低了检验成本。
附图说明
图1是荧光多重PCR验证结果图；图中：1、五种菌混合，2、副溶血弧菌(理论扩增长度440bp)3、沙门氏菌(理论扩增长度932bp)，4、金黄色葡萄球菌(理论扩增长度547bp)，5、单核细胞增生李斯特菌(理论扩增长度958bp)，6、大肠杆菌O-157(理论扩增长度350bp)，L、Marker。
图2是沙门氏菌荧光多重PCR产物杂交结果图。
图3是金黄色葡萄球菌荧光多重PCR产物杂交结果图。
图4是大肠杆菌O-157荧光多重PCR产物杂交结果图。
图5是副溶血弧菌荧光多重PCR产物杂交结果图。
图6是单核细胞增生李斯特菌荧光多重PCR产物杂交结果图。
具体实施方式
下面通过具体实施例，并结合附图，对本发明的技术方案作进一步的具体说明。
本发明中，若非特指，所采用的原料和设备等均可从市场购得或是本领域常用的。下述实施例中的方法，如无特别说明，均为本领域的常规方法。
仪器和试剂
仪器
梯度PCR仪器(MG96G杭州朗基)，电泳仪(EPS-100 1上海天能)，凝胶成像系统(TAN-2500天能)，微量分光光度计(ASP-3700 ATCGene)，扫描仪(GenePix 4000BMolecular Devices)。
试剂(市售)
Ex Taq(TaKaRa RR001A)
Deoxynucleotide(dNTP)Solution Set(NEB N0446S)
CY3-DCTP(GE Healthcare PA53021)
LCS_beads(LC Sciences)
20×SSPE(Ambion AM9767)
SDS(Sigma L-5750)
100×BSA(NEB B9001S)
EDTA(Shanghai Zeheng CSJ6088-500G Amresco分装)
Nuclease-free water(Qiagen 129117)
Formamide(HCONH2)(Amresco 4660C97)
Hybridization buffer(杂交液HB)：6×SSPE，25％Formamide(N-甲酰脱乙酰秋水仙碱)，PH 6.6 to 6.8
Wash buffer(洗液WB)：500μL HB，500μL H2O，20μL 10％SDS，注意，Wash buffer要现配现用。
100×heat-treated BSA：100×BSA(10mg/ml)60℃孵育30min降至室温。以0.2μm滤膜过滤后存储于-20℃备用。
Blocking buffer(封闭液BSA)：153μL HB，2μL of 100×heat-treated BSA*
Stripping buffer(解吸缓冲液SP)0.3mM EDTA，50％Formamide(N-甲酰脱乙酰秋水仙碱)pH＝6.63。
实施例：
1、引物设计
从NCBI数据库下载了5种病原菌132株系基因组，在每个菌种中选出1个株系基因组序列，将选出的基因组序列用BLAT软件进行两两比对，找出任意两个基因组之间的相似序列，对每一个菌种基因组，根据得到的各个有相似性比对结果的序列区间，做一个互补取反操作，得到特异于该菌种的序列区间。这一步的目的是初步筛选，缩小筛选范围。将这些筛选出来的区段在NCBI数据库上进行手工blast比对，筛选出种特异的基因区段。筛选得到的种特异基因区段再进行种内的alignment，最终找到在待检病原菌的基因序列中种内同源性＞95％，种间同源性＜75％的基因序列区段(各个菌种种间特异性强同时种内保守性强的基因区段)。作为引物探针设计的基础。
各菌种筛选出的备用序列所在基因见表1：
表1
| 菌种 | 筛选出的备用序列所在基因 |
| 沙门氏菌(Salmonella) | hila |
| 金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus) | SasH |
| 大肠杆菌O-157(O：157Escherichia coli) | O antigen polymerase |
| 副溶血弧菌(Vibrio parahaemolyticus) | DNA internalization-related competence protein ComEC/Rec2 |
| 单核细胞增生李斯特菌(Listeria monocytogenes) | hly |
根据筛选出的序列设计多重PCR引物，引物合成委托生物公司完成，引物序列见表2：
表2
2、病原菌定量菌液的制备
将上述病原菌的标准菌株培养至对数期，通过LB琼脂平板计数测得每mL菌落数，将菌样分别用生理盐水进行10倍连续稀释至10-8CFU/mL。
3、病原菌基因组DNA提取：
取2步定量细菌悬液1mL放入1.5mL eppendof管，15000rpm高速离心5min，倒去上清，以细菌基因组DNA提取试剂盒(天根生化科技DP302)进行DNA提取，得到的DNA溶液，定量后作为DNA模板使用。
4、荧光多重PCR
10×Ex Taq buffer 10μL，
dATP(2.5mmol/L) 1.0μL，
dTTP(2.5mmol/L) 1.0μL，
dGTP(2.5mmol/L) 1.0μL，
dCTP(2.5mmol/L) 0.75μL，
cy3-dCTP(1nmol/μL) 2.0μL，
引物混合物 5.0μL，
DNA模板 20ng或10ng，
Ex Taq酶(5U/μL) 0.5μL，
ddH2O 补足至50μL。
引物混合物的配制：各个引物稀释至20mM，按照表3配制引物混合物：
表3
PCR扩增程序
在反应体系中掺入一定比例的cy3-dCTP是为了在PCR产物中渗入荧光素，在后续的杂交反应中，如果带有荧光素的PCR产物与芯片上的探针成功杂交，则在杂交清洗完毕后，以扫描仪对芯片进行扫描时(扫描波长根据染料进行选择，比如cy3采用532nm，)成功杂交的探针位置会发荧光，从而可以得知样品中是否存在探针对应的细菌。
荧光多重PCR验证结果见图1，结果可见，多重扩增效果良好，混合模板扩增中沙门氏菌和单核细胞增生李斯特菌扩增产物长度相差过小，无法用电泳进行分辨，但可在下一步芯片杂交中进行确认。
5、芯片探针设计
针对各个菌种的多重PCR产物序列进行探针设计，芯片探针序列见表4：
表4
芯片探针排布：五种病原菌检测探针单次重复构成一个16×10的亚阵列，16×10的亚阵列共九个，这九个亚阵列以3行空白为间隔，构成一个大阵列。与大阵列间隔3行空白另有一个五种病原菌检测探针单次重复构成的一个6×30的亚阵列。
6、多重PCR产物纯化和荧光渗入密度计算
荧光掺入多重PCR产物以LCS_beads磁珠进行纯化，去除多余的引物和杂质后，以ASP-3700微量分光光度计进行测量260nm和550nm吸光值以确定荧光渗入密度。荧光渗入密度的计算：
荧光掺入密度(FOI)＝(A/E)×10×106×【324.5/(吸光值260nm×50)】
FOI在20-50最适宜杂交。A＝cy3在550nm的吸光值。E＝消光系数：cy3＝150000。
产物荧光掺入情况：
| 荧光多重PCR产物 | A260 | A550 | FOI |
| 单核细胞增生李斯特菌(Listeria monocytogenes) | 0.012 | 0.241 | 21.54356846 |
| 副溶血弧菌(Vibrio parahaemolyticus) | 0.02 | 0.255 | 33.93464052 |
| 大肠杆菌O‐157(O：157Escherichia coli) | 0.02 | 0.333 | 25.98598599 |
| 金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus) | 0.015 | 0.215 | 30.18604651 |
| 沙门氏菌(Salmonella) | 0.009 | 0.182 | 21.3956044 |
各个样品均达到杂交标准。
7、芯片杂交和扫描
7.1芯片杂交流程
A清洗系统
连接通路，换上废旧芯片，用以下溶液进行清洗系统：
(1)1ml于95℃预热的1％SDS，在最高速下循环清洗20min；
(2)排除1％SDS于废液管后，用3ml Nuclease-free water(无核酸酶水)进行清洗；
(3)1ml于95℃预热的Nuclease-free water，在最高速下循环清洗5-6min；
(4)排除Nuclease-free water于废液管后，用3ml Nuclease-free water进行清洗。
B芯片清洗
(1)更换新的芯片，用1ml Stripping buffer(解吸缓冲液SP)于结合速度下循环清洗20min(注意转换进液方向以排除芯片中气泡)；
Stripping buffer成分：0.3mM EDTA，50％Formamide.PH 6.6 to 6.8，该缓冲液可以清洗掉已经杂交在探针上的核酸序列。
(2)扫描仪对清洗后的芯片进行扫描。
备注：以上系统清洗和芯片清洗过程中芯片台座温度均为40℃。
这一步骤是为了将芯片上可能存在的杂质以及可能杂交上的核酸序列清洗掉，得到比较干净均一的背景，准备杂交。
C样本杂交
(1)1ml Hybridization buffer(杂交液HB)于结合速度(500μl/min)下循环清洗10min；Hybridization buffer(杂交液HB)成分：6×SSPE，25％Formamide，PH 6.6 to 6.8，Hybridization buffer(杂交液HB)为杂交反应提供一个适宜的PH环境和盐离子浓度，其中的Formamide可以降低DNA双链的Tm值，使样品在30℃时进行杂交反应。
(2)1ml Blocking buffer(封闭液BSA)于结合速度下循环清洗5-6min；
Blocking buffer(封闭液BSA)：148μL HB，2μL of 100×heat-treated BSA，该缓冲液中的BSA可以封闭芯片上无探针部分，以降低芯片背景信号。
(3)杂交样品制备：200ng纯化后的多重PCR产物+等体积Hybridization buffer(杂交液HB，最终体积50ul)，95℃变性5min后迅速置于冰上3min，将制备的样本加入到Blocking buffer中，混匀后于于结合速度下循环运行16hrs进行杂交。
设定杂交时间为16h是为了使杂交反应时间足够长，达到反应平衡，实际操作中可以适当调整。
备注：样本杂交过程芯片台座温度为40℃。
D杂交后清洗
(1)1ml Hybridization buffer(杂交液HB)于清洗速度(100μl/min)下循环清洗20min(芯片台座温度32℃)；
(2)1ml Wash buffer(洗液WB)于清洗速度下，在40℃下循环清洗20min。Washbuffer(洗液WB)：500μL HB，500μL Nuclease-free water，20μL 10％SDS，注意，Washbuffer要现配现用。
E芯片扫描
根据GenePix 4000B的说明设定相关的光电倍增管(PMT＝300-400)、聚焦距离(focal position＝100-150)和扫描波长(532nM)等对芯片进行扫描。
7.2各个菌种荧光多重PCR产物杂交实验
将各个菌种荧光多重PCR产物纯化测定FOI值后，与芯片进行杂交反应。
各个菌种荧光多重PCR产物杂交结果见下图2-6。
8、方法现场验证
随机选择50份日常检测样本，以出入境行业标准检测方法(SN/T)和本发明的检测方法对上述5种病原菌作平行检测，并以SN/T检测方法的检测结果为标准来验证基因芯片检测的特异性与灵敏度。行业标准检测方法编号为：大肠杆菌O157(SN/T 1059.5-2006)，沙门氏菌(SN/T T0170-2010)，金黄色葡萄球菌(SN/T 0172-2010)，单核细胞增生李斯特菌(GB/T 4789.30-2010)。
结果，随机选择50份日常检测样本，以出入境行业标准检测方法(SN/T)和本发明的检测方法对上述5种病原菌平行检测结果一致，未见假阳性与假阴性结果。
一种检测鲜活农产品中致病菌的检测试剂盒，包括五重PCR反应体系和具有针对5种致病菌设计的DNA探针的原位合成芯片，所述五重PCR反应体系以总体积50μL计，其组成如下：
10×Ex Taq buffer 10μL，
浓度为2.5mmol/L的dATP 1.0μL，
浓度为2.5mmol/L的dTTP 1.0μL，
浓度为2.5mmol/L的dGTP 1.0μL，
浓度为2.5mmol/L的dCTP 0.75μL，
浓度为1nmol/μL的cy3-dCTP 2.0μL，
引物混合物 5.0μL，
DNA模板 20ng或10ng，
浓度为5U/μL的Ex Taq酶 0.5μL，
ddH2O 补足至50μL。
所述引物混合物的由以下引物混合而成：
浓度为20mmol/L的沙门氏菌正向引物19μL，浓度为20mmol/L的沙门氏菌反向引物19μL；浓度为20mmol/L的金黄色葡萄球菌正向引物20μL，浓度为20mmol/L的金黄色葡萄球菌反向引物20μL；浓度为20mmol/L的大肠杆菌O-157正向引物7.3μL，浓度为20mmol/L的大肠杆菌O-157反向引物7.3μL；浓度为20mmol/L的副溶血弧菌正向引物20μL，浓度为20mmol/L的副溶血弧菌反向引物20μL；浓度为20mmol/L的单核细胞增生李斯特菌正向引物20μL，浓度为20mmol/L的单核细胞增生李斯特菌反向引物20μL。针对5种致病菌设计的DNA探针如下：
检测沙门氏菌的探针20个，序列见SEQ ID No.132～151所示；
检测金黄色葡萄球菌的探针24个，序列见SEQ ID No.108～131所示；
检测大肠杆菌O-157的探针25个，序列见SEQ ID No.11～35所示；
检测副溶血弧菌的探针46个，序列见SEQ ID No.62～107所示；
检测单核细胞增生李斯特菌的探针26个，序列见SEQ ID No.36～61所示。
以上所述的实施例只是本发明的一种较佳的方案，并非对本发明作任何形式上的限制，在不超出权利要求所记载的技术方案的前提下还有其它的变体及改型。
Claims (5)
1.一种检测鲜活农产品中致病菌的五重PCR引物，包括5对引物对，其特征在于，5对引物对分别为：
沙门氏菌正向引物，序列信息见SEQ ID No.1所示，沙门氏菌反向引物序列信息见SEQID No.2所示；
金黄色葡萄球菌正向引物，序列信息见SEQ ID No.3所示，金黄色葡萄球菌反向引物序列信息见SEQ ID No.4所示；
大肠杆菌O-157正向引物，序列信息见SEQ ID No.5所示，大肠杆菌O-157反向引物序列信息见SEQ ID No.6所示；
副溶血弧菌正向引物，序列信息见SEQ ID No.7所示，副溶血弧菌反向引物序列信息见SEQ ID No.8所示；
单核细胞增生李斯特菌正向引物，序列信息见SEQ ID No.9所示，单核细胞增生李斯特菌反向引物序列信息见SEQ ID No.10所示。
2.一种用于检测权利要求1所述五重PCR引物扩增的PCR产物的探针，包括5组探针，其特征在于，5组探针分别为：
检测沙门氏菌的探针20个，序列见SEQ ID No.132～151所示；
检测金黄色葡萄球菌的探针24个，序列见SEQ ID No.108～131所示；
检测大肠杆菌O-157的探针25个，序列见SEQ ID No.11～35所示；
检测副溶血弧菌的探针46个，序列见SEQ ID No.62～107所示；
检测单核细胞增生李斯特菌的探针26个，序列见SEQ ID No.36～61所示。
3.一种采用权利要求1所述五重PCR引物制备的检测鲜活农产品中致病菌的检测试剂盒，包括五重PCR反应体系和具有针对5种致病菌设计的DNA探针的原位合成芯片，其特征在于：所述五重PCR反应体系以总体积50μL计，其组成如下：
10×Ex Taq buffer 10μL，
浓度为2.5mmol/L的dATP 1.0μL，
浓度为2.5mmol/L的dTTP 1.0μL，
浓度为2.5mmol/L的dGTP 1.0μL，
浓度为2.5mmol/L的dCTP 0.75μL，
浓度为1nmol/μL的cy3-dCTP 2.0μL，
引物混合物5.0μL，
DNA模板20ng或10ng，
浓度为5U/μL的Ex Taq酶0.5μL，
ddH2O补足至50μL。
4.根据权利要求3所述的检测试剂盒，其特征在于：所述引物混合物由以下引物混合而成：
浓度为20mmol/L的沙门氏菌正向引物19μL，浓度为20mmol/L的沙门氏菌反向引物19μL；
浓度为20mmol/L的金黄色葡萄球菌正向引物20μL，浓度为20mmol/L的金黄色葡萄球菌反向引物20μL；
浓度为20mmol/L的大肠杆菌O-157正向引物7.3μL，浓度为20mmol/L的大肠杆菌O-157反向引物7.3μL；
浓度为20mmol/L的副溶血弧菌正向引物20μL，浓度为20mmol/L的副溶血弧菌反向引物20μL；
浓度为20mmol/L的单核细胞增生李斯特菌正向引物20μL，浓度为20mmol/L的单核细胞增生李斯特菌反向引物20μL。
5.根据权利要求3所述的检测试剂盒，其特征在于：针对5种致病菌设计的DNA探针如下：
检测沙门氏菌的探针20个，序列见SEQ ID No.132～151所示；
检测金黄色葡萄球菌的探针24个，序列见SEQ ID No.108～131所示；
检测大肠杆菌O-157的探针25个，序列见SEQ ID No.11～35所示；
检测副溶血弧菌的探针46个，序列见SEQ ID No.62～107所示；
检测单核细胞增生李斯特菌的探针26个，序列见SEQ ID No.36～61所示。
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