CN105255892A - 蚜虫基因的dsRNA及其在降低蚜虫存活率中的应用 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种蚜虫基因的dsRNA及其在降低蚜虫存活率中的应用。所述蚜虫基因的dsRNA具体为由SEQ?ID?No:1所示序列的核苷酸和其反向互补序列的核苷酸组成的双链RNA。所述应用为将所述dsRNA导入蚜虫,从而实现防治蚜虫、降低蚜虫存活率或抑制蚜虫<i>SaUP</i>基因表达。本发明采用体外饲喂dsRNA方法,利用RNAi技术沉默麦长管蚜<i>SaUP</i>基因,导致麦长管蚜产生致死效应。对饲喂后蚜虫<i>SaUP</i>基因实时荧光定量PCR研究表明,<i>SaUP</i>基因的表达明显受到抑制。表明蚜虫<i>SaUP</i>基因的序列可应用于通过植物介导的RNAi技术提高小麦抗蚜性的研究。
Description
技术领域
本发明属于生物工程技术领域,具体涉及一种蚜虫基因的dsRNA及其在降低蚜虫存活率中的应用。
背景技术
蚜虫是危害作物生产的主要害虫之一,近年来全球气候变暖、耕作制度变化等因素使蚜虫的繁殖能力和适应性显著增强,其危害日趋严重。据统计,2010~2011年间我国小麦、玉米、棉花、油菜、大豆等主要作物的蚜虫危害面积分别占当年种植面积的62.5%、14%、90%、32%和23%。以麦蚜为例,麦蚜以成若蚜聚集在小麦叶部、茎部、穗部等,吸食汁液造成叶片不规则皱缩、卷曲、失绿,严重时造成植株死亡。麦蚜分泌的蜜露附着在植株表面,降低植株的光合作用,并易诱发煤烟病等。同时,麦蚜还是黄矮病毒重要的传播载体,引起小麦黄矮病流行。据全国农作物病虫监测网预报,2013年我国麦蚜危害面积高达2.5亿亩,其中河南省麦蚜危害面积为5500万亩。目前,蚜虫防治以喷洒农药为主,但大量使用农药,不仅对人畜有害,而且造成了严重的环境污染。而培育抗虫作物品种是防止蚜虫为害的最有效途径之一,但由于农作物现有种质资源中缺乏有效的抗蚜基因,且抗性机制不明确,常规抗虫育种难以奏效。因此,利用转基因技术培育抗蚜新种质,对于保障我国粮食安全和环境安全具有重要意义。
植物介导的RNAi(RNA干扰)技术能特异抑制昆虫特定基因的表达,使昆虫的生长发育受阻或致死,进而有效控制害虫危害,已成为农作物抗虫基因工程研究的热点之一。RNAi现象是由dsRNA(double-strandedRNA)介导的一种序列特异性转录后基因沉默机制,dsRNA进入生物体后被宿主细胞中的Dicer酶切割成21~23nt的siRNA(smallinterferingRNA);siRNA在RNA解旋酶的作用下解链成正义链和反义链,反义siRNA与体内一些酶(包括内切酶、外切酶、解旋酶等)结合形成RNA诱导的沉默复合物(RNA-inducedsilencingcomplex,RISC),继之RISC以序列互补的方式与靶mRNA结合并使之降解,造成靶标基因表达量下降。利用dsRNA体外饲喂或注射来筛选RNA靶标基因,导致靶标基因表达和沉默,已经广泛应用于昆虫生长发育关键基因的鉴定和功能分析。孟山都公司通过植物介导的昆虫肠道特异基因RNAi技术成功获得了抗玉米根螟的转基因玉米,有效缓解了长期应用Bt转基因玉米诱发昆虫产生抗性等问题,目前已完成生产性试验。棉铃虫肠道中特异P450基因可提高棉铃虫幼虫对棉花次生代谢物质和棉酚的耐受性,试验表明,利用表达棉铃虫P450基因dsRNA的转基因烟草和棉花叶片饲喂棉铃虫幼虫,可导致幼虫体内P450基因的表达量下降,同时幼虫发育受阻,表现出抗棉铃虫性能。近年来,RNAi技术在蚜虫防治方面也展示出很好的应用前景。在烟草和拟南芥中表达蚜虫Mphb基因或丝氨酸蛋白酶MySP基因的dsRNA均可显著降低蚜虫的繁殖率,进而减轻蚜虫危害。
鉴于蚜虫对农业生产造成的巨大损失,且农作物现有种质资源中缺乏有效的抗蚜虫基因,常规抗蚜虫育种难以奏效;挖掘和鉴定新型抗蚜基因或蚜虫dsRNA,利用转基因技术培育抗蚜新种质,对于保障我国粮食安全和环境安全具有重要的意义。
发明内容
针对上述问题,本发明提供一种蚜虫基因的dsRNA,可利用RNAi技术沉默蚜虫SaUP基因,导致蚜虫产生致死效应。
为解决以上问题,本发明通过以下技术方案实现:
设计一种蚜虫基因的dsRNA,具体为由SEQIDNo:1所示序列的核苷酸和其反向互补序列的核苷酸组成的双链RNA。对应的,对该序列经简单缺失、修饰等变换后,使其能达到基本相同抑制效果的核苷酸序列,也应当是与该序列实质上相同的发明。
编码所述dsRNA的DNA分子也属于本发明的保护范围,所述DNA分子的核苷酸序列如SEQIDNo:2所示。
含有所述DNA分子的表达盒、重组载体或重组菌也属于本发明的保护范围。
所述dsRNA、或所述DNA分子、或所述表达盒、重组载体或重组菌,在如下(1)~(3)任一项中的应用也属于本发明的保护范围:
(1)防治蚜虫或制备防治蚜虫的产品;
(2)降低蚜虫存活率或制备降低蚜虫存活率的产品;
(3)抑制蚜虫SaUP基因表达或制备抑制蚜虫SaUP基因表达的产品。
所述应用为将所述dsRNA导入蚜虫,从而实现防治蚜虫、降低蚜虫存活率或抑制蚜虫SaUP基因表达。
在本发明中,所述导入的方式具体为饲喂。
更加具体的,所述饲喂方法为:将所述dsRNA混合于液体饲料中,得到混合液,用所述混合液饲喂蚜虫;所述dsRNA在所述混合液中的终浓度优选为10ng/μL;所述饲喂持续的时间为2天以上,优选2~8天。
活性成分为如下A~C中任一种的产品也属于本发明的保护范围:
A、所述dsRNA;
B、所述DNA分子;
C、所述表达盒、重组载体或重组菌;
所述产品具有如下(1)~(3)功能中的至少一种:
(1)防治蚜虫;
(2)降低蚜虫存活率;
(3)抑制蚜虫SaUP基因表达。
在本发明中,所述蚜虫可为麦蚜,所述麦蚜为麦长管蚜,具体为3龄麦长管蚜。
在本发明中,所述蚜虫SaUP基因的核苷酸含有如SEQIDNo:2所示序列。
本发明具有的积极有益的技术效果:
1.实验证明,本发明得到了麦长管蚜SaUPcDNA序列的dsRNA,采用体外饲喂dsRNA方法,进行了利用RNAi技术沉默麦长管蚜SaUP基因,导致麦长管蚜产生致死效应,并且随着饲喂时间延长,麦长管蚜的死亡率均逐渐增加;显然该dsRNA及其对应的表达盒、重组载体或重组菌等产品在蚜虫防治领域有着重要的应用价值。
2.众所周知的是,RNAi是根据序列特异性进行基因沉默的,而大多数已知蚜虫品种的SaUP基因序列和麦长管蚜SaUP相似性较高(例如只需要有3个21bp的相同序列),即可引起相关基因的沉默。因不同类型蚜虫的同源基因序列相似性较大,所以本发明dsRNA也可广泛用于其它种类蚜虫的防治。
3.对饲喂后蚜虫SaUP基因实时荧光定量PCR研究表明,SaUP基因的表达明显受到抑制;这表明蚜虫SaUP基因的序列可应用于通过植物介导的RNAi技术提高小麦抗蚜性的应用研究,从而为蚜虫的防治和杀灭提供了全新的且安全有效的途径。
附图说明
图1蚜虫SaUP基因和GFP的PCR扩增结果;
图中M:100bpmarker;1:GFP;2:麦长管蚜。
具体实施方式
下述实施例中所使用的实验方法如无特殊说明,均为常规方法。下述实施例中所用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可市购。
下述实施例中所用蚜虫为麦长管蚜,由中国农业科学院植物保护研究所提供,饲养蚜虫的小麦品种为科农199,将蚜虫接种到小麦幼苗上,放入人工气候箱中(温度(20±2)℃,湿度60%~80%,光周期L∶D=16∶8)进行繁殖。
16318hGFP质粒:“倪志勇,徐兆师,刘丽,李连城,柴岩,陈明,马有志.小麦转录因子TaDREB6基因的克隆及鉴定.麦类作物学报,2008,28:357-363”,公众可从南阳师范学院生命科学与技术学院获得。
质粒提取试剂盒购自Biomega公司,内切酶BamHⅠ、EcoRⅤ及HiscribeT7体外转录试剂盒购自NEB公司,大肠杆菌菌株DH5α、反转录试剂盒购自北京全式金公司,rTaqDNA聚合酶购自TaKaRa公司,MinElutePCRCleaningKit、MinEluteGelExtractionKit、RNACleaningKit购自Qiagen公司,各种氨基酸及其它试剂均购自北京拜尔迪公司。
实施例1蚜虫基因的dsRNA的获得
(1)麦长管蚜总RNA的提取和cDNA的合成
分别取约20头麦长管蚜,按照北京全式金公司的Trizol试剂盒说明书提取总RNA,用RNACleaningKit进行纯化,反转录合成cDNA第一链,操作步骤均参考试剂盒说明书。
(2)引物设计与基因克隆
利用PrimerPrimer5.0软件设计引物P1-F和P1-R,由北京华大基因公司合成。绿色荧光蛋白基因(GFP)片段从南阳师范学院生命科学与技术学院实验室保存的16318hGFP质粒上扩增,利用PrimerPrimer5.0软件设计引物P2-F和P2-R。
P1-F:5’-TAATACGACTCACTATAGGGCAACAGTCAGCGGAAGTAC-3’(下划线后的序列为SEQIDNo:2的第1~19位);
P1-R:5’-TAATACGACTCACTATAGGGGTCAACATAACGCCCAAC-3’(下划线后的序列为SEQIDNo:2的第225~242位的反向互补序列)。
P2-F:5’-TAATACGACTCACTATAGGGTGAAGTCAAGTTTGAAGGTG-3’(下划线后的序列为SEQIDNo:4的第1~20位);
P2-R:5’-TAATACGACTCACTATAGGGTTTTGTTGATAATGGTCTGC-3’(下划线后的序列为SEQIDNo:4的第206~225位的反向互补序列)。
各引物序列中下划线处为T7RNA聚合酶启动子序列。
PCR反应体系为:5×PCRBuffer10μL、dNTP(2.5mmol·L-1)4μL、Pfu0.5μL,正向引物(10μmol·L-1)1μL、反向引物(10μmol·L-1)1μL、cDNA/GFP质粒1μL,用ddH2O补足至50μL。
PCR的反应程序为:94℃3min;94℃30s,52℃或55℃30s,72℃30s,35个循环;72℃10min;4℃保存。(P1-F/P1-R的退火温度为52℃;P2-F/P2-R的退火温度为55℃)
以麦长管蚜的cDNA为模板,用P1-F/P1-R作为引物进行扩增,得到282bpPCR产物(含40bp的T7启动子序列),经过测序,该282bpPCR产物除去两端T7RNA聚合酶启动子序列外的序列为SEQIDNo:2(可人工合成)。
以16318hGFP质粒为模板,用P2-F/P2-R作为引物进行扩增,得到265bpPCR产物(含40bp的T7启动子序列),经过测序,该265bpPCR产物除去两端T7RNA聚合酶启动子序列外的序列为SEQIDNo:4(可人工合成)。
将上述PCR产物进行电泳,结果如图1所示,M:100bpmarker;1:GFP,可以看出得到目的片段;2:麦长管蚜Sitobionavenae。
将上述282bpPCR产物核苷酸序列去掉T7启动子序列提交到NCBI数据库(http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/)进行BLAST比对分析,BLAST结果表明,与蚜虫未知功能基因具有95%同源性。
(3)蚜虫SaUP基因和GFP的dsRNA的制备
分别回收由上述2得到的2种PCR产物,测定浓度,作为体外转录dsRNA的模板。dsRNA的体外转录体系为10×TranscriptionBuffer4μL、20×RibonucleotideSolutionMix2μL、模板(1μg)XμL、20×HMWMix2μL、T7RNAPolymerase(500units·μL-1)2μL,RNase-FreeddH2O补足至40μL。42℃过夜孵育。
反应结束后,取0.5μL反应产物琼脂糖凝胶电泳检测,加入DNaseI和RNaseA消化残留的模板DNA和单链RNA,用MinElutePCRCleaningKit纯化反应产物,操作过程参考试剂盒说明书,用无RNase水溶解dsRNA,分光光度计(波长260nm)定量,置于-20℃冰箱中保存,分别得到麦长管蚜SaUP和GFPdsRNA。
将蚜虫SaUPdsRNA和GFPdsRNA分别测序,结果如下:
蚜虫SaUPdsRNA为双链RNA,由正义链和反义链组成,其正义链的核苷酸序列为SEQIDNo:1,其反义链的核苷酸序列为SEQIDNo:1的反向互补序列。SaUP基因的核苷酸序列含有SEQIDNo:2所示序列;
GFPdsRNA为双链RNA,由正义链和反义链组成,其正义链的核苷酸序列为SEQIDNo:3,其反义链的核苷酸序列为SEQIDNo:3的反向互补序列。GFPdsRNA编码基因的核苷酸序列为SEQIDNo:4。
当然,也可以直接人工合成SEQIDNo:1所示的麦长管蚜SaUPdsRNA和SEQIDNo:3所示的GFP基因dsRNA用于下述实施例。
实施例2SaUPdsRNA在抑制蚜虫生长中的应用
(1)蚜虫人工饲料的配制和饲育器的准备
人工饲料配制和饲育器的准备过程参考文献(李彩霞,高丽锋,高玲玲,李润植.全纯人工营养液饲养蚜虫的研究.山西农业大学学报,1997,17(3):225-228.)进行,用0.2μm的细菌过滤器过滤人工饲料,分装到2.0mL灭菌的离心管保存于-20℃的冰箱中,避免反复冻融。
(2)dsRNA(SaUPdsRNA)在抑制蚜虫生长中的应用
蚜虫饲喂方法参照如下文献中记载:纠敏,刘树生.利用人工饲料饲养蚜虫的技术.华东昆虫学报,2004,13(2):102-109.。
麦长管蚜SaUPdsRNA喂养组:每个蚜虫饲育器中分别放入20头3龄麦长管蚜若蚜,按照每100μL人工饲料中依次分别加入0和1000ng的麦长管蚜SaUPdsRNA饲喂蚜虫;
麦长管蚜dsGFP组:每个蚜虫饲育器中分别放入20头3龄麦长管蚜若蚜,按照每100μL人工饲料中依次分别加入0和1000ng的GFPdsRNA饲喂蚜虫;
上述各组设置3个重复,每两天统计各饲育器中蚜虫的存活数,并更换新的饲料和对应的dsRNA,置于人工气候箱(温度(20±2)℃,湿度60%~80%,光周期L∶D=16∶8)。使用Excel2007软件对蚜虫死亡率进行统计学分析,计算每种处理的平均值与方差,并进行显著性差异的分析(t-test,n=3,P<0.01或0.05)。
统计各组每个饲育器中存活蚜虫的数目,计算死亡率,结果如表1所示。
表1为麦长管蚜SaUPdsRNA喂养组和麦长管蚜dsGFP组死亡率
。
从表1可以看出,麦长管蚜的死亡率均随着饲喂SaUPdsRNA的时间增加,麦长管蚜的平均死亡率随之增加,10ng·μL-1 SaUPdsRNA饲喂2天、4天、6天和8天后,麦长管蚜的平均死亡率为35%、46.67%、65%和71.67%,其中饲喂4天、6天和8天后的处理与对照组(0ng/μL)相比均存在显著性差异(P<0.01),饲喂GFPdsRNA的试验组死亡率与对照组(0ng/μL)相比则没有显著性的差异。
(3)dsRNA(SaUPdsRNA)抑制蚜虫SaUP基因的表达
利用PrimerPrimer5.0软件设计扩增SaUP基因的引物P3-F和P3-R,扩增片段大小为242bp,合成内参基因(ACTIN)引物P4-F和P4-R。
P3-F:5’-CAACAGTCAGCGGAAGTAC-3’(SEQIDNo:2的第1~19位);
P3-R:5’-GTCAACATAACGCCCAAC-3’(SEQIDNo:2的第225~242位的反向互补序列)。
P4-F:5’-CCGAAAAGCTGTCATAATGAAGACC-3’;
P4-R:5’-GGTGAAACCTTGTCTACTGTTACATCTTG-3’。
收集上述步骤2中各组10ng/μldsRNAs饲喂后存活的麦长管蚜(2、4、6和8d),提取蚜虫的RNA,反转录成cDNA稀释100、101、102、103、104、105倍,作为荧光定量PCR的模板,以P3-F/P3-R作为引物进行相对定量RT-PCR分析。内参引物为P4-F/P4-R。
实时荧光定量PCR体系为:正向引物(10μmol·L-1)0.5μL、反向引物(10μmol·L-1)0.5μL、2×TransStart TMGreenqPCRSuperMix12.5μL、PassiveReferenceDye0.5μL、模板cDNA1μL,用ddH2O至25μL。
PCR循环程序为95℃30s,95℃5s,52℃或57℃15s,72℃10s,40个循环,每个样本3个重复。(P3-F/P3-R的退火温度为52℃;P4-F/P4-R的退火温度为57℃)
最终结果的计算采用2-△△Ct法(Ct表示循环数)进行计算,即△△Ct=(Ct(SaUP)-Ct(actin))试验组-(Ct(SaUP)-Ct(actin))对照组,使用Excel2007软件进行统计学分析,计算每种处理的平均值与方差,并进行显著性差异的分析(t-test,n=3,P<0.01或0.05)。
统计在饲喂麦长管蚜SaUPdsRNA2、4、6和8d后,各组蚜虫体内SaUP表达量,结果如表2所示。
表2为饲喂SaUPdsRNA和GFPdsRNA后麦长管蚜SaUP基因相对表达量
。
可以看出,麦长管蚜SaUP在4、6和8d的表达量,与对照(0天的表达量)相比,依次降低了27%、61%和72%,在统计学上表现为差异显著(P<0.05或P<0.01)。饲喂GFPdsRNA的蚜虫体内SaUP表达水平则没有显著性的变化,进一步说明通过饲喂SaUPdsRNA能够在麦长管蚜体内引起SaUP基因的RNAi效应,致使蚜虫SaUP基因表达量明显降低甚至沉默,直至导致蚜虫死亡。
SEQUENCELISTING
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Claims (8)
1.一种蚜虫基因的dsRNA,为由SEQIDNo:1所示序列的核苷酸和其反向互补序列的核苷酸组成的双链RNA。
2.编码权利要求1所述dsRNA的DNA分子,其核苷酸序列如SEQIDNo:2所示。
3.含有权利要求2所述DNA分子的表达盒、重组载体或重组菌。
4.权利要求1所述dsRNA、或权利要求2所述DNA分子、或权利要求3所述表达盒、重组载体或重组菌,在如下(1)~(3)任一项中的应用:
(1)防治蚜虫或制备防治蚜虫的产品;
(2)降低蚜虫存活率或制备降低蚜虫存活率的产品;
(3)抑制蚜虫SaUP基因表达或制备抑制蚜虫SaUP基因表达的产品。
5.权利要求4所述应用为将权利要求1所述dsRNA导入蚜虫,从而实现防治蚜虫、降低蚜虫存活率或抑制蚜虫SaUP基因表达。
6.根据权利要求5所述的应用,其特征在于:所述导入的方式为饲喂。
7.根据权利要求6所述的应用,其特征在于:所述饲喂为:将所述dsRNA混合于液体饲料中,得到混合液,用所述混合液饲喂蚜虫;所述dsRNA在所述混合液中的终浓度为10ng/μL;所述饲喂持续的时间为2~8天。
8.活性成分为如下A~C中任一种的产品:
A、权利要求1所述dsRNA;
B、权利要求2所述DNA分子;
C、权利要求3所述表达盒、重组载体或重组菌;
所述产品具有如下(1)~(3)功能中的至少一种:
(1)防治蚜虫;
(2)降低蚜虫存活率;
(3)抑制蚜虫SaUP基因表达。
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