CN104293931B - 一种定量RNaseH活性测定方法 - Google Patents

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    • C12Q1/44Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving hydrolase involving esterase

Abstract

本发明公开了一种定量RNaseH活性测定方法,所述方法包括如下步骤:以一段RNA模板为底物,在DNA引物存在下,利用逆转录酶合成cDNA,形成DNA‑RNA杂合链;以该DNA‑RNA杂合链为底物,加入RNaseH酶,进行降解反应;降解反应后测定DNA单链或DNA‑RNA杂合链的相对量,由该测定结果推导出RNaseH酶的活性程度。该方法与现有技术方法相比,无放射性污染,操作简单便利,逆转录方法得到的DNA‑RNA杂合链可直接用于RNaseH的测活,不需要再经过酚氯仿抽题、乙醇沉淀等步骤,并且可以RNaseH活性进行定量的检测分析。

Description

一种定量RNaseH活性测定方法
技术领域
本发明属于生化技术领域,具体来说涉及一种定量RNaseH活性测定方法。
背景技术
RNaseH,即核糖核酸酶H,是一种核糖核酸内切酶,可以特异性地水解DNA-RNA杂合链中的RNA。RNase H是基因工程技术中一种重要的工具酶,其应用包括cDNA第二条链合成前去除mRNA;通过互补的DNA序列实现对RNA的定点剪切;除去杂交到poly(dT)上的mRNA中的poly(A);体外多腺苷酸化反应(polyadenylation reaction)产物研究。此外,RNaseH在逆转录病毒中起着非常重要的作用,并且也是目前非转录病毒的重要药物靶标。因此,精确、快速、简便测定RNase H活性,可以保证RNase H作为工具酶的质量稳定性,且有助于促进抗病毒药物的开发,具有极大的理论和现实意义。
标准的RNaseH测活方法采用放射性同位素法。将RNaseH进行2倍连续梯度稀释,加入到含3H-poly(rA)、poly (dT) DNA和1× RnaseH缓冲液的50μL反应体系中,37℃条件下孵育,产物用TCA沉淀并加在whatman滤纸上,就可以实现掺入产物和标记物的分离。再经过洗涤、干燥、洗脱,最后测定酸可溶性物质中放射性同位素的量,就可以计算出RNase H的活性。这种方法存在易产生放射性污染、步骤多、周期长的缺陷,难以实现高通量、自动化。
发明内容
本发明的目的在于建立一种简便、快速、非放射性且定量的RNaseH测活方法,其原理如图1所示。
具体来说,本发明采用了如下技术方案:
一种定量RNaseH活性测定方法,其特征在于,所述方法包括如下步骤:以一段RNA模板为底物,在DNA引物存在下,利用逆转录酶合成cDNA,形成DNA-RNA杂合链;以该DNA-RNA杂合链为底物,加入RNaseH酶,进行降解反应;降解反应后测定DNA单链或DNA-RNA杂合链的相对量,由该测定结果推导出RNaseH酶的活性程度。
优选地,DNA单链或DNA-RNA杂合链的相对量是利用荧光染料,通过荧光法测得的,并且该相对量是以荧光强度表示的。更优选,所用的荧光染料是双链特异性荧光染料。在一个实施方案中,所用的双链特异性荧光染料是商购的picogreen染料。
RNA模板可以采用任何适合长度的RNA单链,只要能方便地测定RNaseH酶活即可。在一个实施方案中,所用RNA模板为一段polyA RNA单链,所用的DNA引物为Oligo dT。
本发明的优点:
1. 无放射性污染;
2. 操作步骤简单,重复性好,稳定性强,反应迅速;
3. 逆转录方法得到的DNA-RNA杂合链可直接用于RNaseH的测活,不需要再经过酚氯仿抽题、乙醇沉淀等步骤;
4. 可以对RNaseH活性进行定量的检测分析,便于操作。
附图说明
图1为本发明测定方法的原理图。
图2为通过本发明方法测得的RNaseH活性-荧光强度曲线图。
图3为不同来源RNaseH的酶活-荧光强度曲线图。
具体实施方式
本发明建立了一种简便、快速、非放射性且定量的RNaseH测活方法,其原理如图1所示。
如图1所示,本发明选择polyA作为RNA单链,以Oligo dT为引物,先用逆转录酶进行相匹配的cDNA链的合成,生成的DNA-RNA杂合链作为本测活方法中的底物。若加入RNaseH,则该酶会降解DNA-RNA杂合链中的RNA链,产生一条DNA单链,该单链不能被双链特异性的picogreen染料结合,不产生荧光;若不加入RNaseH,体系中仍是DNA-RNA杂合链的结构,则可以被双链特异性的picogreen染料结合,发出荧光。
由此可见,RNaseH的活性在一定范围内同DNA-RNA杂合链的量成反比,而DNA-RNA杂合链的量在一定情况下,同荧光强度成正比。因此,RNaseH的活性就可以用picogreen荧光强度来进行测定。
本发明人进一步证明了上述假设,从而建立了非放射性、简便、快速且可以定量的RNaseH测活方法。
下面将结合具体实施例来进一步说明本发明。
实施例1. 荧光法测定RNaseH活性方法的建立
1. 构建DNA+RNA杂合链体系:
逆转录酶为PrimeScript逆转录酶(TaKaRa 2680A)
组分 体积
DEPC水 至50μl
5x RT缓冲液 10
PolyA(1mg/mL) 5μl
Oligo dT 18(10μM) 10μl
dTTP(10mM) 2μl
逆转录酶(TaKaRa) 1 U
温度 时间
37℃ 30分钟
4℃ 保持
2. 降解DNA+RNA杂合链中RNA链的反应:
RNaseH为NEB M0297
组分 体积
上述制备的DNA+RNA杂合链 15μl
RNaseH 0-1024 U
温度 时间
37℃ 30分钟
4℃ 保持
3. picogreen荧光检测:
向反应产物中加入0.5 μl picogreen染料(invitrogen P11495);用荧光酶标仪检测,激发波长为480 nm,发射波长为520 nm。检测结果如下表:
RNaseH酶量 (U) 荧光数值
1024 252.
512 255.
256 253.
128 286.
64 363.
32 527.
16 668.
8 953.
4 932.
2 1027.
1 1068.
0 1097.
这一结果表明:RNaseH可降解DNA+RNA杂合链中RNA链,且降解程度呈现剂量依赖性。
通过本实施例,我们可以实现对RNaseH的快速、简便的表征,为后续RNaseH活性的精确测定奠定了基础。
实施例2.RNaseH活性-荧光强度曲线的绘制及EC50计算
以1#-11#的RNaseH活性单位(U)的log值为横坐标,荧光强度为纵坐标,用GraphPad Prism5做非线性回归曲线。我们发现,这些数据点可以很好地拟合出一条倒S型曲线,如图2所示。
通过多次重复实验并计算曲线的半最大效应浓度 (EC50),我们发现,EC50值在多次实验间保持稳定:
实验 EC50 (mU)
1 19.55
2 20.08
3 19.74
4 19.39
5 20.21
平均值 (mU) 19.79
标准差SD (U) 0.35
变异系数 CV (%) 1.75
实施例3. 荧光法测定不同来源的RNaseH活性,并进行单位标定
我们又选择了两种商品化RNaseH并自行表达纯化RNaseH。自制RNaseH克隆自T4噬菌体RNaseH基因,克隆至pET28a表达载体并转化大肠杆菌BL21进行表达。表达产物采用常规层析方法纯化至约95%的纯度。所有RNaseH均采用放射性同位素方式进行活性测定。国际单位(IU)定义为:37℃20分钟内,能够催化1nmol杂合双链中的RNA形成酸可溶性核糖核苷酸形式所需的酶量定义为1个活性单位。按照实施例1的方法,绘制活性-荧光强度标准曲线并计算EC50。结果如图3所示绘制成曲线并提供如下:
厂家 货号 EC50 (mU)
NEB M0297 18.29±1.97
Takara 2150A 18.41±0.73
Enzymatics Y9220L 16.73±1.02
自制 -- 16.16±0.86
平均 17.40±1.15
上述结果表明,不同来源的RNaseH的活性(用EC50表示)是一个恒定的值。因此,这一EC50值可作为本方法的RNaseH活性定义。即在实施例1的反应体系中,使荧光强度达到最大值一半的RNaseH酶量定义为1个荧光法单位(Fluoresence Unit, FU);1 FU=17.40 mU(放射性法)。
上面结合附图和具体实施例对本发明的实施方式作了详细的说明,但是本发明不限于上述实施方式,在所属技术领域普通技术人员所具备的知识范围内,还可以在不脱离本发明宗旨的前提下做出各种变化。

Claims (3)

1.一种定量RNaseH活性测定方法,其特征在于,所述方法包括如下步骤:以一段RNA模板为底物,在DNA引物存在下,利用逆转录酶合成cDNA,形成DNA-RNA杂合链;以该DNA-RNA杂合链为底物,加入RNaseH酶,进行降解反应;降解反应后利用双链特异性荧光染料,通过荧光法测定DNA单链或DNA-RNA杂合链的相对量,由该测定结果推导出RNaseH酶的活性程度,其中所用的双链特异性荧光染料是picogreen染料。
2.如权利要求1所述的定量RNaseH活性测定方法,其特征在于,通过荧光法测得的相对量是以荧光强度表示的。
3.如权利要求1所述的定量RNaseH活性测定方法,其特征在于,所用RNA模板为一段polyA RNA单链,所用的DNA引物为Oligo dT。
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