CN104178432A - 一种胶红酵母及其应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种胶红酵母,它是由中国典型培养物保藏中心保藏的保藏号:CCTCCNO:M2014255的胶红酵母WD-B5(Rhodotorula mucilaginosaWD-B5)。本发明还公开了利用前述胶红酵母将苯乙酮转化为(S)-苯乙醇的方法。本发明保藏号为CCTCC M2014255的胶红酵母WD-B5(Rhodotorula mucilaginosaWD-B5)可以高效地将苯乙酮转化为(S)-苯乙醇,克服了现有技术的缺陷,具有良好的市场应用前景。
Description
技术领域
本发明涉及一株胶红酵母及其应用,属于发酵领域。
背景技术
(S)-苯乙醇及其衍生物是合成多种手性药物如(S)-氟西汀、(S)-异丙肾上腺素等的重要中间体。为获得光学活性纯苯乙醇,应用最广的是化学催化不对称合成法,但是其存在反应条件剧烈,环境不友好的缺陷。近年来,生物催化法因反应条件温和、产物立体选择性高、对环境友好等优点成为获得光学活性产物的另一种有效途径。目前,生物催化法制备手性芳香酮的相关报道较多,但仍然无法实现工业化生产,主要原因是生产菌株催化活性不稳定、产物积累量不高及立体选择性较差。
朱冬眉等,“胶红酵母催化苯乙酮的不对称还原吸附树脂的促进作用”,《四川大学学报(自然科学版)》2009年06期中,报道了采用胶红酵母可以将苯乙酮转化为(S)-苯乙醇,产物纯度达99.0%,但是,转化率低,最高仅能达到75.5%。
发明内容
本发明提供了一种新的胶红酵母及其在将苯乙酮转化为(S)-苯乙醇中的应用。
本发明胶红酵母,它是由中国典型培养物保藏中心保藏的保藏号:CCTCCNO:M 2014255的胶红酵母WD-B5(Rhodotorula mucilaginosaWD-B5)。
本发明胶红酵母WD-B5(Rhodotorula mucilaginosaWD-B5),于2014年6月13日保藏在中国典型培养物保藏中心(CCTCC),其地址为:中国·武汉·武汉大学,保藏号为CCTCC M 2014255。
本发明将苯乙酮转化为(S)-苯乙醇的方法,包括如下步骤:
(1)取CCTCCNO:M 2014255的胶红酵母WD-B5(RhodotorulamucilaginosaWD-B5),加水至菌体细胞的浓度达到0.2~0.3g/ml,调pH为6.8~7.2,加葡萄糖至浓度为1~3%(w/v);
(2)加入底物苯乙酮至浓度为40~60mmol/L,在温度25~35℃的条件下反应至少24h,即可。
步骤(1)中,所述菌体细胞的浓度为0.25g/ml。
步骤(1)中,调节pH为7.0。
步骤(1)中,所述葡萄糖的浓度为2%(w/v)。
步骤(2)中,所述底物苯乙醇的浓度为50mmol/L。优选地,所述底物苯乙醇分两次添加,第一次添加的时间为反应0h时,添加的量为每1L溶液25mmol,第二次添加的时间为反应后第12h,添加的量为每1L溶液25mmol。
步骤(2)中,所述反应温度为30℃。
步骤(2)中,所述反应的时间为36h。
步骤(2)中,在添加底物苯乙酮时,同时添加助溶剂乙醇至浓度为1~3%(v/v)。优选地,所述乙醇浓度为2%(v/v)。
采用本发明胶红酵母在本发明转化条件下,能够高效地将苯乙酮转化成(S)-苯乙醇,转化率高达99%,转化获得的产物纯度(产物e.e.值)大于99%,工业应用前景良好。
显然,根据本发明的上述内容,按照本领域的普通技术知识和惯用手段,在不脱离本发明上述基本技术思想前提下,还可以做出其它多种形式的修改、替换或变更。
以下通过实施例形式的具体实施方式,对本发明的上述内容再作进一步的详细说明。但不应将此理解为本发明上述主题的范围仅限于以下的实例。凡基于本发明上述内容所实现的技术均属于本发明的范围。
附图说明
图1基于26S rDNA D1/D2区域序列构建的系统发育树
具体实施方式
实施例1 本发明胶红酵母WD-B5(Rhodotorula mucilaginosaWD-B5)的鉴定特征
1、鉴定方法
将5份微生物土壤及污水样品中分离得到的本发明菌株WD-B5,进行如下生理生化和分子生物鉴定。
(1)生理生化特征
利用显微镜及肉眼观察细胞及固体平板上的菌落形态,并根据《酵母菌的特征与鉴定手册》所列的酵母菌种鉴定方法进行生化特征分析。
(2)分子生物学鉴定
利用PCR技术,获得了酵母WD-B5的26SrDNA D1/D2区域基因的部分片断,利用BLAST软件将该序列与GenBank中收录的DNA序列进行比对,并与相关菌种构建进化树,初步鉴定菌株WD-B5的种属。
2、鉴定结果
(1)菌落特征和生理生化特征
菌落特征:粉红色、圆形、有光泽、边缘整齐、不透明、质地均匀、表面光滑、湿润。借助高倍荧光显微镜观察菌株WD-B5的革兰氏染色为阳性,未见菌丝体,细胞呈卵圆形。
生理生化特性见表1:
表1 菌株WD-B5的生理生化特性
(2)26SrDNA D1/D2区域序列分析
菌株WD-B5的26SrDNA D1/D2区域序列,见表2。由图1可知,菌株WD-B5与Rhodotorula mucilaginosa ATCC 32763(AF335986.1)的亲缘关系最近。
表2 菌株WD-B5的26SrDNA D1/D2区域序列
结合菌落特征、生理生化特征以及分子生物学鉴定结果,将本发明分离菌株WD-B5鉴定为胶红酵母(Rhodotorula mucilaginosa),命名为胶红酵母WD-B5(Rhodotorula mucilaginosaWD-B5),并于2014年6月13日保藏在中国典型培养物保藏中心(CCTCC),保藏号为CCTCC M 2014255。
实施例2 采用本发明胶红酵母WD-B5(Rhodotorula mucilaginosaWD-B5)将苯乙酮转化为(S)-苯乙醇的方法
1、实验材料
1、斜面培养基:
去皮马铃薯200g,葡萄糖20g,琼脂20g,ddH2O1000mL,pH自然。
2、种子培养基:
蛋白胨10g,酵母膏5g,葡萄糖20g,ddH2O1000mL,pH7.0。
3、发酵培养基:
蛋白胨10g,酵母膏5g,葡萄糖20g,(NH4)2SO45g,KH2PO42g,ddH2O1000mL,pH7.0。
4、实验菌株:本发明保藏号为CCTCC M 2014255的胶红酵母WD-B5(Rhodotorula mucilaginosaWD-B5)。
2、实验方法
(1)、菌体细胞的培养
种子培养:用无菌牙签从PDA斜面上挑取少量菌苔接种于20mL种子培养基中,30℃,170r/min,摇床培养24h。
发酵培养:按5%的接种量将种子液接入50mL发酵培养基中,30℃,170r/min,摇床培养48h。
收集菌体细胞:收集发酵液,于6000r/min,4℃,离心10min,将菌体沉淀用pH6.8的磷酸盐缓冲溶液洗1~2次后用于转化。
(2)、转化
a、取步骤(1)制得的胶红酵,加水至菌体细胞浓度为0.2g/ml,调pH为6.8,加葡萄糖至浓度为1%(v/v);
b、往步骤a的溶液中加入底物苯乙酮在25℃的条件下反应24h,底物苯乙酮的添加方式:反应0h时,每1L溶液中加入20mmol苯乙酮,同时添加乙醇至浓度为1%(v/v);反应12h时,每1L溶液中再加入20mmol苯乙酮。
实施例3 采用本发明胶红酵母WD-B5(Rhodotorula mucilaginosaWD-B5)将苯乙酮转化为(S)-苯乙醇的方法
1、实验材料
1、斜面培养基:
去皮马铃薯200g,葡萄糖20g,琼脂20g,ddH2O1000mL,pH自然。
2、种子培养基:
蛋白胨10g,酵母膏5g,葡萄糖20g,ddH2O1000mL,pH7.0。
3、发酵培养基:
蛋白胨10g,酵母膏5g,葡萄糖20g,(NH4)2SO45g,KH2PO42g,ddH2O1000mL,pH7.0。
4、实验菌株:本发明保藏号为CCTCC M 2014255的胶红酵母WD-B5(Rhodotorula mucilaginosaWD-B5)。
2、实验方法
(1)、菌体细胞的培养
种子培养:用无菌牙签从PDA斜面上挑取少量菌苔接种于20mL种子培养基中,30℃,170r/min,摇床培养24h。
发酵培养:按5%的接种量将种子液接入50mL发酵培养基中,30℃,170r/min,摇床培养48h。
收集菌体细胞:收集发酵液,于6000r/min,4℃,离心10min,将菌体沉淀用pH6.8的磷酸盐缓冲溶液洗1~2次后用于转化。
(2)、转化
a、取步骤(1)制得的胶红酵,加水至菌体细胞浓度为0.3g/ml,调pH为72,加葡萄糖至浓度为3%(v/v);
b、往步骤a的溶液中加入底物苯乙酮在35℃的条件下反应48h,底物苯乙酮的添加方式:反应0h时,每1L溶液中加入30mmol苯乙酮,同时添加乙醇至浓度为3%(v/v);反应12h时,每1L溶液中再加入30mmol苯乙酮。
实施例4 采用本发明胶红酵母WD-B5(Rhodotorula mucilaginosaWD-B5)将苯乙酮转化为(S)-苯乙醇的方法
1、实验材料
1、斜面培养基:
去皮马铃薯200g,葡萄糖20g,琼脂20g,ddH2O1000mL,pH自然。
2、种子培养基:
蛋白胨10g,酵母膏5g,葡萄糖20g,ddH2O1000mL,pH7.0。
3、发酵培养基:
蛋白胨10g,酵母膏5g,葡萄糖20g,(NH4)2SO45g,KH2PO42g,ddH2O1000mL,pH7.0。
4、实验菌株:本发明保藏号为CCTCC M 2014255的胶红酵母WD-B5(Rhodotorula mucilaginosaWD-B5)。
2、实验方法
(1)、菌体细胞的培养
种子培养:用无菌牙签从PDA斜面上挑取少量菌苔接种于20mL种子培养基中,30℃,170r/min,摇床培养24h。
发酵培养:按5%的接种量将种子液接入50mL发酵培养基中,30℃,170r/min,摇床培养48h。
收集菌体细胞:收集发酵液,于6000r/min,4℃,离心10min,将菌体沉淀用pH6.8的磷酸盐缓冲溶液洗1~2次后用于转化。
(2)、转化
a、取步骤(1)制得的胶红酵,加水至菌体细胞浓度为0.25g/ml,调pH为7.0,加葡萄糖至浓度为2%(v/v);
b、往步骤a的溶液中加入底物苯乙酮在30℃的条件下反应36h,底物苯乙酮的添加方式:反应0h时,每1L溶液中加入25mmol苯乙酮,同时添加乙醇至浓度为2%(v/v);反应12h时,每1L溶液中再加入25mmol苯乙酮。
(3)、转化率和纯度检测
按照体积比1:1的量向转化体系中加入乙酸乙酯,充分震荡后,静止2~3min,于6000r/min,4℃,离心10min,取上清液进行GC检测。
GC检测:使用GC-960气相色谱仪,HP Chiral 10%3-Cyclodextrin手性色谱柱(30m×0.32mm×0.25μm);检测条件:载气为氮气,进样器、色谱柱和FID检测器温度分别为220℃、110℃和200℃;分流比为1:100;进样量为0.1mL。分别以底物的转化率(Conversion)和产物的对映体过量值(e.e.value)表示反应的转化程度和立体选择性,其表达式如下:
Conversion(%)=C苯乙醇/C0×100 (1)
e.e.(%)=|(CR-Cs)|/(Cs+CR)×100 (2)
其中,C0为底物的初始浓度,C苯乙醇为反应终止时的产物浓度,CR和Cs分别为R-型和S-型产物的浓度。
3、实验结果
检测发现,采用本发明方法转化苯乙酮,最终获得的产物中,(S)-苯乙醇的e.e.值﹥99%,底物转化率为99%。
采用现有胶红酵母(Rhodotorula mucilaginosa)转化苯乙酮,产物纯度达99.0%,但是,转化率低,最高仅能达到75.5%。
而采用本发明胶红酵母WD-B5(Rhodotorula mucilaginosaWD-B5),在本发明转化条件下转化苯乙酮,产物纯度大于99%,转化率也高达99%,因此,在保证产物纯度的同时,有效提高了转化率。
综上,本发明胶红酵母WD-B5(Rhodotorula mucilaginosaWD-B5)可以高效转化苯乙酮,在制备得到纯度高的(S)-苯乙醇的同时,转化率也非常高,具有优良的应用前景。
Claims (10)
1.一种胶红酵母,其特征在于:它是由中国典型培养物保藏中心保藏的保藏号:CCTCCNO:M2014255的胶红酵母WD-B5(RhodotorulamucilaginosaWD-B5)。
2.一种将苯乙酮转化为(S)-苯乙醇的方法,其特征在于:包括如下步骤:
(1)取CCTCC NO:M2014255的胶红酵母WD-B5(RhodotorulamucilaginosaWD-B5),加水至菌体细胞的浓度达到0.2~0.3g/ml,调pH为6.8~7.2,加葡萄糖至浓度为1~3%(w/v);
(2)在步骤(1)的溶液中加入底物苯乙酮至浓度为40~60mmol/L,在温度25~35℃的条件下反应至少24h,即可。
3.根据权利要求2所述的方法,其特征在于:步骤(1)中,所述菌体细胞的浓度为0.25g/ml。
4.根据权利要求2所述的方法,其特征在于:步骤(1)中,调节pH为7.0。
5.根据权利要求2所述的方法,其特征在于:步骤(1)中,所述葡萄糖的浓度为2%(w/v)。
6.根据权利要求2所述的方法,其特征在于:步骤(2)中,所述底物苯乙醇的浓度为50mmol/L。
7.根据权利要求6所述的方法,其特征在于:步骤(2)中,所述底物苯乙醇分两次添加,第一次添加的时间为反应0h时,添加的量为每1L溶液25mmol,第二次添加的时间为反应后第12h,添加的量为每1L溶液25mmol。
8.根据权利要求2所述的方法,其特征在于:
步骤(2)中,所述反应的温度为30℃;
步骤(2)中,所述反应的时间为36h。
9.根据权利要求2所述的方法,其特征在于:步骤(2)中,在添加底物苯乙酮时,同时添加乙醇至浓度为1~3%(v/v)。
10.根据权利要求9所述的方法,其特征在于:所述乙醇浓度为2%(v/v)。
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