CN104155449A - 一种检测TORCH IgM抗体的方法及试剂盒和该试剂盒的制备方法 - Google Patents

一种检测TORCH IgM抗体的方法及试剂盒和该试剂盒的制备方法 Download PDF

Info

Publication number
CN104155449A
CN104155449A CN201410363969.5A CN201410363969A CN104155449A CN 104155449 A CN104155449 A CN 104155449A CN 201410363969 A CN201410363969 A CN 201410363969A CN 104155449 A CN104155449 A CN 104155449A
Authority
CN
China
Prior art keywords
torch
lanthanide series
antigen
kit
igm antibody
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN201410363969.5A
Other languages
English (en)
Inventor
谭玉华
范主桥
李奕辉
卢德祥
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Guangzhou Fenghua Bioengineering Co Ltd
Original Assignee
Guangzhou Fenghua Bioengineering Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Guangzhou Fenghua Bioengineering Co Ltd filed Critical Guangzhou Fenghua Bioengineering Co Ltd
Priority to CN201410363969.5A priority Critical patent/CN104155449A/zh
Publication of CN104155449A publication Critical patent/CN104155449A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/68Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving proteins, peptides or amino acids
    • G01N33/6803General methods of protein analysis not limited to specific proteins or families of proteins
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/569Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
    • G01N33/56983Viruses
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/569Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
    • G01N33/56983Viruses
    • G01N33/56994Herpetoviridae, e.g. cytomegalovirus, Epstein-Barr virus
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/58Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving labelled substances
    • G01N33/582Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving labelled substances with fluorescent label
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/435Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans
    • G01N2333/44Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans from protozoa
    • G01N2333/45Toxoplasma

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Bioinformatics & Computational Biology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

本发明公开了一种检测TORCH IgM抗体的试剂盒,所述试剂盒包括:包被有与TORCH IgM抗体结合的抗体的固相载体,镧系元素标记的TORCH抗原,TORCH IgM抗体校准品,样本稀释液,实验缓冲液,浓缩洗液以及增强液。本发明所述试剂盒能够在相对同一检测条件下同时检测TORCH病原体中多种病原体IgM抗体,灵敏度高,特异性强,精密度好,准确度高,用血量少,快速方便,有利于TORCH病原体感染的早期诊断;本方法又具有检测线性范围宽的特点,可以减少高值样本的稀释次数或稀释倍数,可以提高检测结果的准确性。

Description

一种检测TORCH IgM抗体的方法及试剂盒和该试剂盒的制备方法
技术领域
本发明涉及一种TORCH IgM抗体的方法及试剂盒,具体涉及一种基于多元标记时间分辨荧光免疫法检测TORCH IgM抗体的方法及试剂盒和该试剂盒的制备方法。 
背景技术
TORCH一词是美国学者Nahmias等于1971年将数种孕妇患病后将引起子宫内胚胎(胎儿)感染引发流产、甚至造成先天缺陷或发育异常的病原体英文名词的第一个字母组合而成。是指一组病原体:T即刚地弓形虫(Toxoplasma);O即others,比如乙型肝炎病毒、HIV病毒、梅毒螺旋体等;R即风疹病毒(Rubellavirus);C即巨细胞病毒(Cytomegalovirus);H即单纯疱疹病毒(herpes simplex virus)。 
上述四种病原体具有以下几个共同点:1.可以通过胎盘垂直传播,引起胎儿宫内感染。2.宫内感染后可能导致流产、早产、死胎和畸形。3.病原体感染对胎儿造成的危害,与孕妇感染的孕龄相关。 
TORCH综合征患者造成孕妇流产、死胎,出生后有严重的智力障碍,生活不能自理,造成极大的精神及经济负担。我国每年约有26000个TORCH患儿出生,平均每小时就有3人,对优生优育与人口素质构成极大的威胁,因此它的感染诊治工作引起普遍关注。 
TORCH感染是严重危害新生儿健康的重要因素之一。可导致多器官损害及一系列严重后遗症。因此,为减少病残儿的出生率及提高出生人口素质,临床工作者应进一步加强对孕妇的宣传教育,积极做好TORCH感染的血清学筛查以便及早发现不良妊娠并及时处理。对新生儿也应常规开展TORCH检测,了解新生儿TORCH感染情况,以便早干预、早治疗。TORCH感染的血清学筛查对优生优育具有重要现实意义。 
TORCH抗体检测试剂是指一类利用免疫学方法,如酶免疫技术、化学发光免疫分析技术等,对育龄妇女、孕妇血清或血浆样本中,TORCH特异性抗体进 行体外定性和/或半定量和/或定量检测的试剂。结合临床表现和其他实验室指标,可作为TORCH感染辅助诊断的指标之一,用于治疗方案的制定及免疫状态的评估。 
TORCH抗体检测试剂,主要检测的Ig为病原体特异性IgG和IgM。在病原体感染的初次体液免疫应答中(原发性感染),特异性IgM抗体首先出现,但其普遍反应短暂,一般几周后即不易再测到。病原体特异性IgM抗体阳性常提示早期感染,可用于感染急性期的辅助判断。特异性IgG抗体,在免疫接种后、原发性感染及再次感染时都可检出,且长时间存在。 
实时荧光定量PCR能早期、灵敏地检测到TORCH病原体DNA/RNA,并可对抗TORCH病原体治疗的效果监测,但是TORCH病原体DNA/RNA阳性只能反映TORCH病原体某一片段的存在,不能准确反映TORCH病原体活动状态,对亚临床型或潜伏型感染,实时荧光定量PCR结果可为阳性。 
目前用于检测TORCH IgM抗体常分别采用单一试剂盒,即一个试剂盒仅能检测TORCH病原体中的一种病原体的IgM抗体,此种方式存在以下缺点:1.检测步骤繁多,特别是手工法容易导致实验出现错误;2.加样时间长,检测时间长,费时费力;3.样本需要量大,导致采血量增加。 
目前常用免疫方法有放射免疫分析法(radioimmunoassay,RIA)、酶联免疫吸附测定法(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)、化学发光免疫分析法(chemiluminescent immunoassay,CLIA)、电化学发光免疫分析法(electro-chemiluminescence immunoassay,ECLI)等。RIA由于放射性污染,对环境和操作者影响较大,批内批间变异较大,难于自动化;ELISA采用大分子酶标记,且酶容易失活,这种依靠比色法或偏振光法的检测技术所受的干扰因素太多(即使是优秀的“管式ELISA”,其试管形状的变化也会影响试验的结果),其灵敏度、线性和稳定性未能高于RIA;CLIA的化学发光通常是瞬间完成,发光峰值很快衰减,温度和pH值对发光有很大影响,该类因素影响了该类方法的应用;ECLI仍为非开放系统,试剂依赖进口,试剂昂贵,维修及检测成本高,这也限制了其推广应用。由于时间分辨荧光免疫法(time-resolved fluoroisnmunoassay,TRFIA)独特的技术原理,有区别于传统的免疫标记技术的特点和优势,已被人们广泛接受,与现在广泛使用的RIA、ELISA、CLIA和ECLI相比,TRFIA克服了RIA放射性污染的不足、酶标记物的不稳定性和定量 范围窄的缺陷、化学发光仅能一次发光、一般荧光标记受环境干扰的难点和ECLI的非直接标记等缺点,Eu标记TRFIA的灵敏度可达10-19mol/L,应用范围广,致使其试剂盒的生产和检测仪器的更新换代进展甚速,目前已实现了分析技术的自动化,TRFIA已成为生物医学研究和临床超微量生化检验中一项最有发展前景的分析手段。 
发明内容
本发明的目的在于克服现有技术存在的不足之处而提供了一种基于多元标记时间分辨荧光免疫法检测TORCH IgM抗体的试剂盒,以及所述试剂盒的制备方法,本发明还提供了采用所述试剂盒检测TORCH IgM抗体的方法。本发明建立了定量测定TORCH病原体中多种病原体IgM抗体的时间分辨荧光免疫多元标记捕获法,同时提供了一种能够在相对同一检测条件下同时检测TORCH病原体中多种病原体IgM抗体的定量测定试剂盒,所述TORCH病原体包括弓形虫、风疹病毒、巨细胞病毒、单纯疱疹病毒,其中所述单纯疱疹病毒为单纯疱疹病毒I型和单纯疱疹病毒II型中的至少一种。 
为实现上述目的,所采取的技术方案:一种检测TORCH IgM抗体的试剂盒,所述试剂盒包括:包被有与TORCH IgM抗体结合的抗体的固相载体,镧系元素标记的TORCH抗原,TORCH IgM抗体校准品,样本稀释液,实验缓冲液,浓缩洗液以及增强液。 
优选地,所述包被有与TORCH IgM抗体结合的抗体的固相载体为包被有鼠抗人IgMμ链单克隆抗体的固相载体。 
优选地,所述包被有鼠抗人IgMμ链单克隆抗体的固相载体是采用以下步骤制备而得的: 
将鼠抗人IgMμ链单克隆抗体用包被缓冲液稀释至0.01~10μg/mL,在固相载体上进行包被,将固相载体洗涤1次,然后再用含1%BSA的50mmol/L、pH7.8的Tris-HCl缓冲液进行封闭,将固相载体甩干,晾干,真空包装,2~8℃保存备用。 
优选地,所述镧系元素标记的TORCH抗原为镧系元素1标记的弓形虫抗原、镧系元素2标记的风疹病毒抗原、镧系元素3标记的巨细胞病毒抗原和镧系元素4标记的单纯疱疹病毒抗原的组合,所述镧系元素1、镧系元素2、镧系元素3、镧系元素4分别选自铕、钐、镝和铽中的一种,且所述镧系元素1、镧系元 素2、镧系元素3、镧系元素4互不相同;所述镧系元素标记的TORCH抗原中TORCH抗原为TORCH天然抗原和TORCH重组抗原中的至少一种。 
优选地,所述镧系元素4标记的单纯疱疹病毒抗原中单纯疱疹病毒抗原为单纯疱疹病毒I型抗原和单纯疱疹病毒II型抗原中的至少一种。 
优选地,所述镧系元素4标记的单纯疱疹病毒抗原中单纯疱疹病毒抗原为单纯疱疹病毒I+II型重组抗原。所述单纯疱疹病毒I+II型重组抗原上同时含有单纯疱疹病毒I型抗原和单纯疱疹病毒II型抗原。 
优选地,所述镧系元素标记的TORCH抗原是参照相应的镧系元素标记试剂盒说明书制备而成的。 
本发明还提供了一种采用上述所述试剂盒检测TORCH IgM抗体的方法,所述方法包括以下步骤: 
(1)用实验缓冲液配制镧系元素标记的TORCH抗原,用纯化水将浓缩洗液稀释成工作洗涤液; 
(2)将待检样本用样本稀释液稀释,然后在包被有与TORCH IgM抗体结合的抗体的固相载体上预设的校准品孔、样本孔相应位置分别加入TORCH IgM抗体校准品、预先稀释好的待检样本; 
(3)将步骤(2)中得到的固相载体在室温条件下缓慢振荡孵育; 
(4)用步骤(1)中工作洗涤液洗涤步骤(3)中孵育后的固相载体; 
(5)分别向步骤(4)中获得的固相载体上校准品孔和样本孔中加入步骤(1)中配制好的镧系元素标记的TORCH抗原,在室温下孵育; 
(7)用步骤(1)中工作洗涤液洗涤步骤(5)中孵育后的抗原固相载体; 
(8)分别向步骤(7)中获得的固相载体上校准品孔和样本孔中加入增强液的共解离剂部分,继续孵育,再加入增强液的共增强剂; 
(9)孵育结束后,采用相应的镧系元素窗口程序进行检测并分析。 
优选地,所述步骤(2)中包被有与TORCH IgM抗体结合的抗体的固相载体为包被有鼠抗人IgMμ链单克隆抗体的固相载体;所述步骤(1)中镧系元素标记的TORCH抗原为镧系元素1标记的弓形虫抗原、镧系元素2标记的风疹病毒抗原、镧系元素3标记的巨细胞病毒抗原和镧系元素4标记的单纯疱疹病毒抗原的组合,所述镧系元素1、镧系元素2、镧系元素3、镧系元素4分别选自铕、钐、镝和铽中的一种,且所述镧系元素1、镧系元素2、镧系元素3、镧系 元素4互不相同;所述步骤(1)中镧系元素标记的TORCH抗原中TORCH抗原为TORCH天然抗原和TORCH重组抗原中的至少一种。 
本发明还提供了一种上述所述试剂盒的制备方法,所述制备方法包括以下步骤: 
(1)制备包被有与TORCH IgM抗体结合的抗体的固相载体,镧系元素标记的TORCH抗原,TORCH IgM抗体校准品,样本稀释液,实验缓冲液,浓缩洗液以及增强液; 
(2)贴标签; 
(3)组装为试剂盒。 
本发明的有益效果在于:在TORCH病原体感染的初次体液免疫应答中(原发性感染),特异性IgM抗体首先出现,但其普遍反应短暂,一般几周后即不易再测到。病原体特异性IgM抗体阳性常提示早期感染,检测TORCH病原体特异性IgM抗体可用于TORCH病原体感染急性期的辅助判断。 
本发明采用鼠抗人IgMμ链单克隆包被固相载体,避免了以往的IgM抗体试剂采用间接法检测IgM抗体时因同型抗体间对抗原位点的竞争而导致敏感性差的问题,也避免如类风湿因子(rheumatoid factor,RF)等引起的非特异性反应。 
本发明采用时间分辨荧光免疫法多元标记技术,研制了一种能够在相对同一检测条件下同时检测TORCH病原体中多种病原体IgM抗体的定量测定试剂盒,降低了由于人为原因造成的检测误差,减少了操作人员的工作量,也减少了样本用量。妊娠期发生初次感染或复发感染,体内产生IgG或IgM是一个急剧变化的过程,只有通过定量分析浓度变化才能检测到。定量分析有助于发现假阳性或假阴性结果。对于那些孕前未做过基础免疫状况评估的孕妇,选择两个时间点(T1,T2)检测IgG或IgM浓度(C1,C2),计算单位时间内浓度变化梯度,能有效的发现机体受到病毒攻击而发生的特异性免疫反应,但目前还没有参考值,较为常用的是C2/C1>4倍。所有这些必须以定量检测为前提。 
本发明所述试剂盒能够在相对同一检测条件下同时检测TORCH病原体中多种病原体IgM抗体,灵敏度高,特异性强,精密度好,准确度高,用血量少,快速方便,有利于TORCH病原体感染的早期诊断;本方法又具有检测线性范围宽的特点,可以减少高值样本的稀释次数或稀释倍数,可以提高检测结果的准 确性。 
附图说明
图1为采用本发明所述试剂盒检测TORCH病原体IgM抗体时同一检测微孔内反应体系的一种实施例的原理示意图; 
图中1为鼠抗人IgMμ链单克隆抗体,2为为弓形虫病毒IgM抗体,3为风疹病毒IgM抗体,4为巨细胞病毒IgM抗体,5为单纯疱疹病毒IgM抗体,6为铕(Eu3+)标记的弓形虫重组抗原,7为钐(Sm3+)标记的风疹病毒重组抗原,8为镝(Dy3+)标记的巨细胞病毒重组抗原,9为铽(Te3+)标记的单纯疱疹病毒I+II型重组抗原。 
具体实施方式
为更好的说明本发明的目的、技术方案和优点,下面将结合具体实施例对本发明作进一步说明。实施例中的鼠抗人IgMμ链单克隆抗体、弓形虫重组抗原、弓形虫天然抗原、风疹病毒重组抗原、风疹病毒天然抗原、巨细胞病毒天然抗原、巨细胞病毒重组抗原、单纯疱疹病毒I型天然抗原、单纯疱疹病毒I型重组抗原、单纯疱疹病毒II型天然抗原、单纯疱疹病毒II型重组抗原、单纯疱疹病毒I+II型重组抗原购于深圳市菲鹏生物股份有限公司;固相载体为96孔微孔空白板(8×12孔)购于深圳市金灿华实业有限公司;铕(Eu3+)标记试剂盒、钐(Sm3+)标记试剂盒、镝(Dy3+)标记试剂盒和铽(Te3+)标记试剂盒购于芬兰Wallac公司;琼脂糖凝胶Sepharose CL-6B购于瑞典Pharmacia公司;人类优生优育病毒(TORCH)系列检测试剂盒(酶联免疫法)由德国维润赛润研发有限公司提供;共荧光增强液、浓缩洗液、实验缓冲液、FWZ-Ⅰ型微量振荡仪、DEM-Ⅲ型全自动酶标洗板均由广州市丰华生物工程有限公司提供。VictorTM2D1420型TRFIA仪购于美国Perkin Elmer公司。其他试剂为国产分析纯。所述单纯疱疹病毒I+II型重组抗原上同时含有单纯疱疹病毒I型抗原和单纯疱疹病毒II型抗原。 
实施例1 
本发明所述检测TORCH IgM抗体的试剂盒的一种实施例,所述试剂盒包括:包被有鼠抗人IgMμ链单克隆抗体的固相载体,铕(Eu3+)标记的弓形虫重组抗原,钐(Sm3+)标记的风疹病毒重组抗原,镝(Dy3+)标记的巨细胞病毒重组抗原,铽(Te3+)标记的单纯疱疹病毒I型重组抗原,TORCH IgM抗体校准品,样本稀 释液,实验缓冲液,浓缩洗液以及增强液;所述增强液为共荧光增强液。 
本发明所述检测TORCH IgM抗体的试剂盒的制备方法,包括以下步骤: 
(1)包被有鼠抗人IgMμ链单克隆抗体的固相载体:将鼠抗人IgMμ链单克隆抗体用包被缓冲液稀释至0.01~10μg/mL,在固相载体上进行包被,将固相载体洗涤1次,然后再用含1%BSA的50mmol/L pH 7.8的Tris-HCl缓冲液进行封闭,将固相甩干,晾干,真空包装,2~8℃保存备用。所述包被缓冲液为50mmol/L pH 9.6的碳酸缓冲液,20mmol/L pH 4.5的磷酸盐缓冲液,50mmol/LpH 7.8的Tris-HCl缓冲液和50mmol/L pH 4.5的柠檬酸盐缓冲液中的一种。 
TORCH IgM抗体校准品为TORCH病原体IgM抗体混合校准品,采用厂商选定测量程序校准,将TORCH病原体IgM抗体原料用含有10g/L BSA的50mmol/L pH 7.8的Tris-HCl缓冲液稀释成A、B、C、D、E和F 6个校准品。由于目前尚无弓形虫IgM抗体正式的国际标准品和定量的国家标准品,弓形虫IgM抗体校准品采用德国维润赛润研发有限公司的弓形虫IgM抗体定量检测试剂盒(酶联免疫法)及酶标仪组成的测量程序标化,所述弓形虫IgM抗体在A、B、C、D、E和F 6个校准品中的浓度分别为0,2,8,32,128,256U/mL。由于目前尚无风疹病毒IgM抗体正式的国际标准品和定量的国家标准品,风疹病毒IgM抗体校准品采用德国维润赛润研发有限公司的风疹病毒IgM抗体定量检测试剂盒(酶联免疫法)及酶标仪组成的测量程序标化,所述风疹病毒IgM抗体在A、B、C、D、E和F 6个校准品中的浓度分别为0,2,8,32,128,256U/mL。由于目前尚无巨细胞病毒(CMV)IgM抗体国际标准品和定量的国家标准品,巨细胞病毒IgM抗体校准品采用德国维润赛润研发有限公司的巨细胞病毒IgM抗体定量检测试剂盒(酶联免疫法)及酶标仪组成的测量程序标化,所述巨细胞病毒IgM抗体在A、B、C、D、E和F 6个校准品中的浓度分别为0,2,8,32,128,256 U/mL。由于目前尚无单纯疱疹病毒(HSV)IgM国际标准品和定量的国家标准品,单纯疱疹病毒I型IgM抗体校准品以德国维润赛润研发有限公司的单纯疱疹病毒I型IgM抗体定量检测试剂盒(酶联免疫法)及酶标仪组成的测量程序标化,所述单纯疱疹病毒I型IgM抗体在A、B、C、D、E和F6个校准品中的浓度分别为0,2,8,32,128,256U/mL。 
铕(Eu3+)标记的弓形虫重组抗原:按照铕(Eu3+)标记试剂盒说明书操作。将1.0mg的弓形虫抗原加入Millipore公司的截留分子量为10000的超滤离心管 中,8000r/min离心5~6min,再用标记缓冲液重复离心洗涤3~5次,将处理得到的200μL弓形虫抗原加入到1.0mg的预先用标记缓冲液溶解的铕(Eu3+)标记试剂DTTA-EuNa充分混匀,2~8℃振荡孵育24~72h。反应液经分别用50mmol/L pH 7.80Tris-HCl缓冲液平衡的Sepharose CL-6B柱(1cm×40cm)层析,在A280下监测收集第一洗脱峰。然后采用棋盘方阵滴配法确定最适工作浓度,然后用含有0.2%BSA、30ppm Procline-300的pH7.8的50mmol/L Tris-HCl缓冲液稀释成最适工作浓度的1/20倍即为所述铕(Eu3+)标记的弓形虫重组抗原。 
钐(Sm3+)标记的风疹病毒重组抗原:按照钐(Sm3+)标记试剂盒说明书操作。将1.0mg的风疹病毒重组抗原加入Millipore公司的截留分子量为10000的超滤离心管中,8000r/min离心5~6min,再用标记缓冲液重复离心洗涤3~5次,将处理得到的200μL风疹病毒重组抗原加入到1.0mg的预先用标记缓冲液溶解的钐(Sm3+)标记试剂DTTA-SmNa充分混匀,2~8℃振荡孵育24~72h。反应液经分别用50mmol/L pH 7.80Tris-HCl缓冲液平衡的Sepharose CL-6B柱(1cm×40cm)层析,在A280下监测收集第一洗脱峰。然后采用棋盘方阵滴配法确定最适工作浓度,然后用含有0.2%BSA、30ppm Procline-300的pH7.8的50mmol/L Tris-HCl缓冲液稀释成最适工作浓度的1/20倍即为所述钐(Sm3+)标记的风疹病毒重组抗原。 
镝(Dy3+)标记的巨细胞病毒重组抗原:按照镝(Dy3+)标记试剂盒说明书操作。将1.0mg的巨细胞病毒重组抗原加入Millipore公司的截留分子量为10000的超滤离心管中,8000r/min离心5~6min,再用标记缓冲液重复离心洗涤3~5次,将处理得到的200μL巨细胞病毒抗原加入到1.0mg的预先用标记缓冲液溶解的镝(Dy3+)标记试剂DTTA-DyNa充分混匀,2~8℃振荡孵育24~72h。反应液经分别用50mmol/L pH 7.80Tris-HCl缓冲液平衡的Sepharose CL-6B柱(1cm×40cm)层析,在A280下监测收集第一洗脱峰。然后采用棋盘方阵滴配法确定最适工作浓度,然后用含有0.2%BSA、30ppm Procline-300的pH7.8的50mmol/L Tris-HCl缓冲液稀释成最适工作浓度的1/20倍即为所述镝(Dy3+)标记的巨细胞病毒重组抗原。 
铽(Te3+)标记的单纯疱疹病毒I型重组抗原:按照铽(Te3+)标记试剂盒说明书操作。将1.0mg的单纯疱疹病毒重组抗原加入Millipore公司的截留分子量为10000的超滤离心管中,8000r/min离心5~6min,再用标记缓冲液重 复离心洗涤3~5次,将处理得到的200μL单纯疱疹病毒抗原加入到1.0mg的预先用标记缓冲液溶解的Te3+标记试剂DTTA-TeNa充分混匀,2~8℃振荡孵育(24~72)h。反应液经分别用50mmol/L pH 7.80Tris-HCl缓冲液平衡的Sepharose CL-6B柱(1cm×40cm)层析,在A280下监测收集第一洗脱峰。然后采用棋盘方阵滴配法确定最适工作浓度,然后用含有0.2%BSA、30ppmProcline-300的pH7.8的50mmol/L Tris-HCl缓冲液稀释成最适工作浓度的1/20倍即为所述铽(Te3+)标记的单纯疱疹病毒I型重组抗原。 
样本稀释液:在洁净容器中准确加入6.06g三羟甲基氨基甲烷(Tris),8.50g氯化钠,加入适量的纯化水搅拌溶解后,加入3mL浓盐酸混匀,再向其中加入20mg硫柳汞,1mL Procline-300,50g牛血清白蛋白(BSA),搅拌溶解后,加纯化水至1000mL。 
实验缓冲液:在洁净容器中准确加入6.06g三羟甲基氨基甲烷(Tris),8.50g氯化钠,加入适量的纯化水搅拌溶解后,加入3mL浓盐酸混匀,再向其中加入0.05g曙红、5g聚乙二醇2000、0.01mg EDTA、20mg硫柳汞、1mLProcline-300、100mL小牛血清、6mL Tween20,搅拌溶解后,加纯化水至1000mL;分装成30mL/瓶。 
浓缩洗液:在洁净容器中准确加入6.06g三羟甲基氨基甲烷(Tris),8.50g氯化钠,加入适量的纯化水搅拌溶解后,加入3mL浓盐酸混匀,再向其中加入20mg亮蓝、4mL Tween20、1mL Procline-300,搅拌溶解后,加纯化水至1000mL;分装成40mL/瓶。 
共荧光增强液:共荧光增强液含有共解离剂和共增强剂,共解离剂为在洁净容器中准确加入120μmol精对苯二甲酸(PTA)、10μmol氧化钇用300mL的乙醇溶解,加入适量的纯化水混匀,然后加入0.5mL曲拉通-100、0.8mL冰乙酸、0.5g乙酸钠后充分溶解,用纯化水定容至1000mL。共增强剂为在洁净容器中准确加入0.5mmol邻菲罗啉、0.2mol三羟甲基氨基甲烷(Tris),加入适量的纯化水搅拌溶解后,再用纯化水定容至1000mL;分装成40mL/瓶。 
(2)贴标签。 
(3)成品组装。 
实施例2 
本发明所述检测TORCH IgM抗体的试剂盒的一种实施例,所述试剂盒包括: 包被有鼠抗人IgMμ链单克隆抗体的固相载体,铽(Te3+)标记的弓形虫重组抗原,镝(Dy3+)标记的风疹病毒重组抗原,钐(Sm3+)标记的巨细胞病毒重组抗原,铕(Eu3+)标记的单纯疱疹病毒II型重组抗原,TORCH IgM抗体校准品,样本稀释液,实验缓冲液,浓缩洗液以及增强液;所述增强液为共荧光增强液。 
本发明所述检测TORCH IgM抗体的试剂盒的制备方法中除了铽(Te3+)标记的弓形虫重组抗原、镝(Dy3+)标记的风疹病毒重组抗原、钐(Sm3+)标记的巨细胞病毒重组抗原和铕(Eu3+)标记的单纯疱疹病毒II型重组抗原分别参照相应的镧系元素标记试剂盒说明书而制备,TORCH IgM抗体校准品中由于目前尚无单纯疱疹病毒(HSV)IgM国际标准品和定量的国家标准品,单纯疱疹病毒II型IgM抗体校准品以德国维润赛润研发有限公司的单纯疱疹病毒II型IgM抗体定量检测试剂盒(酶联免疫法)及酶标仪组成的测量程序标化,所述单纯疱疹病毒II型IgM抗体在A、B、C、D、E和F 6个校准品中的浓度分别为0,2,8,32,128,256U/mL外,其他同实施例1的制备方法。 
实施例3 
本发明所述检测TORCH IgM抗体的试剂盒的一种实施例,所述试剂盒包括:包被有鼠抗人IgMμ链单克隆抗体的固相载体,镝(Dy3+)标记的弓形虫重组抗原,铽(Te3+)标记的风疹病毒重组抗原,铕(Eu3+)标记的巨细胞病毒重组抗原,钐(Sm3+)标记的单纯疱疹病毒I+II型重组抗原,TORCH IgM抗体校准品,样本稀释液,实验缓冲液,浓缩洗液以及增强液;所述增强液为共荧光增强液。 
本发明所述检测TORCH IgM抗体的试剂盒的制备方法中除了镝(Dy3+)标记的弓形虫重组抗原、铽(Te3+)标记的风疹病毒重组抗原、铕(Eu3+)标记的巨细胞病毒重组抗原和钐(Sm3+)标记的单纯疱疹病毒I+II型重组抗原分别参照相应的镧系元素标记试剂盒说明书而制备,TORCH IgM抗体校准品中由于目前尚无单纯疱疹病毒(HSV)IgM国际标准品和定量的国家标准品,单纯疱疹病毒I+II型IgM抗体校准品以德国维润赛润研发有限公司的单纯疱疹病毒I+II型IgM抗体定量检测试剂盒(酶联免疫法)及酶标仪组成的测量程序标化,所述单纯疱疹病毒I+II型IgM抗体在A、B、C、D、E和F 6个校准品中的浓度分别为0,2,8,32,128,256U/mL外,其他同实施例1的制备方法。 
实施例4 
本发明所述检测TORCH IgM抗体的试剂盒的一种实施例,所述试剂盒包括: 包被有鼠抗人IgMμ链单克隆抗体的固相载体,钐(Sm3+)标记的弓形虫天然抗原,铽(Te3+)标记的风疹病毒天然抗原,铕(Eu3+)标记的巨细胞病毒天然抗原,镝(Dy3+)标记的单纯疱疹病毒I+II型重组抗原,TORCH IgM抗体校准品,样本稀释液,实验缓冲液,浓缩洗液以及增强液;所述增强液为共荧光增强液。 
本发明所述检测TORCH IgM抗体的试剂盒的制备方法中除了钐(Sm3+)标记的弓形虫天然抗原,铽(Te3+)标记的风疹病毒天然抗原,铕(Eu3+)标记的巨细胞病毒天然抗原,镝(Dy3+)标记的单纯疱疹病毒I+II型重组抗原分别参照相应的镧系元素标记试剂盒说明书而制备,TORCH IgM抗体校准品中由于目前尚无单纯疱疹病毒(HSV)IgM国际标准品和定量的国家标准品,单纯疱疹病毒I+II型IgM抗体校准品以德国维润赛润研发有限公司的单纯疱疹病毒I+II型IgM抗体定量检测试剂盒(酶联免疫法)及酶标仪组成的测量程序标化,所述单纯疱疹病毒I+II型IgM抗体在A、B、C、D、E和F 6个校准品中的浓度分别为0,2,8,32,128,256U/mL外,其他同实施例1的制备方法。 
实施例5 
本发明所述检测TORCH IgM抗体的试剂盒的一种实施例,所述试剂盒包括:包被有鼠抗人IgMμ链单克隆抗体的固相载体,铕(Eu3+)标记的弓形虫天然抗原,钐(Sm3+)标记的风疹病毒天然抗原,镝(Dy3+)标记的巨细胞病毒天然抗原,铽(Te3+)标记的单纯疱疹病毒I型天然抗原,TORCH IgM抗体校准品,样本稀释液,实验缓冲液,浓缩洗液以及增强液;所述增强液为共荧光增强液。 
本发明所述检测TORCH IgM抗体的试剂盒的制备方法中除了铕(Eu3+)标记的弓形虫天然抗原、钐(Sm3+)标记的风疹病毒天然抗原、镝(Dy3+)标记的巨细胞病毒天然抗原和铽(Te3+)标记的单纯疱疹病毒I型天然抗原分别参照相应的镧系元素标记试剂盒说明书而制备外,其他同实施例1的制备方法。 
实施例6 
本发明所述检测TORCH IgM抗体的试剂盒的一种实施例,所述试剂盒包括:包被有鼠抗人IgMμ链单克隆抗体的固相载体,铕(Eu3+)标记的弓形虫天然抗原,钐(Sm3+)标记的风疹病毒天然抗原,镝(Dy3+)标记的巨细胞病毒天然抗原,铽(Te3+)标记的单纯疱疹病毒II型天然抗原,TORCH IgM抗体校准品,样本稀释液,实验缓冲液,浓缩洗液以及增强液;所述增强液为共荧光增强液。 
本发明所述检测TORCH IgM抗体的试剂盒的制备方法中除了铕(Eu3+)标记 的弓形虫天然抗原、钐(Sm3+)标记的风疹病毒天然抗原、镝(Dy3+)标记的巨细胞病毒天然抗原和铽(Te3+)标记的单纯疱疹病毒II型天然抗原分别参照相应的镧系元素标记试剂盒说明书而制备,TORCH IgM抗体校准品中由于目前尚无单纯疱疹病毒(HSV)IgM国际标准品和定量的国家标准品,单纯疱疹病毒II型IgM抗体校准品以德国维润赛润研发有限公司的单纯疱疹病毒II型IgM抗体定量检测试剂盒(酶联免疫法)及酶标仪组成的测量程序标化,所述单纯疱疹病毒II型IgM抗体在A、B、C、D、E和F 6个校准品中的浓度分别为0,2,8,32,128,256U/mL外,其他同实施例1的制备方法。 
实施例7 
本发明所述检测TORCH IgM抗体的试剂盒的一种实施例,所述试剂盒包括:包被有鼠抗人IgMμ链单克隆抗体的固相载体,铕(Eu3+)标记的弓形虫天然抗原,钐(Sm3+)标记的风疹病毒天然抗原,镝(Dy3+)标记的巨细胞病毒天然抗原,铽(Te3+)标记的单纯疱疹病毒I型重组抗原,TORCH IgM抗体校准品,样本稀释液,实验缓冲液,浓缩洗液以及增强液;所述增强液为共荧光增强液。 
本发明所述检测TORCH IgM抗体的试剂盒的制备方法中除了铕(Eu3+)标记的弓形虫天然抗原、钐(Sm3+)标记的风疹病毒天然抗原、镝(Dy3+)标记的巨细胞病毒天然抗原和铽(Te3+)标记的单纯疱疹病毒I型重组抗原分别参照相应的镧系元素标记试剂盒说明书而制备外,其他同实施例1的制备方法。 
实施例8 
本发明所述检测戊型肝炎病毒抗体的试剂盒的使用方法,具体操作如下: 
1)试剂准备 
固相载体:将试剂及所需数量的鼠抗人IgMμ链单克隆抗体固相载体平衡至室温(20~25℃)。余下的固相载体及时置入自封袋密闭并于2~8℃保存。 
洗涤工作液:将40mL浓缩洗液和960mL纯化水在干净的容器中混合,作为工作洗涤液备用。纯化水敬请用户自备。 
镧系元素标记物混合工作液:使用前30min内配制,铕标记物、钐标记物、镝标记物和铽标记物四种镧系元素标记物与实验缓冲液按体积比1:1:1:1:20加进洁净的同一个一次性容器中并混匀;当次实验用完。在实施例3所述试剂盒的使用方法中,镝标记物为镝(Dy3+)标记的弓形虫重组抗原,铽标记物为铽(Te3+)标记的风疹病毒重组抗原,铕标记物为铕(Eu3+)标记的巨细胞病毒重组抗原,钐 标记物为钐(Sm3+)标记的单纯疱疹病毒I+II型重组抗原,其他实施例所述试剂盒的使用方法中铕标记物、钐标记物、镝标记物和铽标记物分别为相应镧系元素标记的病原体抗原。 
2)试验操作 
①将待检样本用样本稀释液按1:100稀释,然后在包被有鼠抗人IgMμ链单克隆抗体的固相载体上预设的校准品孔、样本孔相应位置分别加入100μLTORCH IgM抗体校准品和100μL预先稀释好的待检样本; 
②将步骤①中得到的固相载体在室温条件下缓慢振荡孵育45min; 
③第一步孵育结束后,小心将封片揭下并弃掉,用洗板机洗涤4次,拍干; 
④分别向步骤③中获得的固相载体上校准品孔和样本孔中加入100μl配制好的镧系元素标记物混合工作液,在室温下缓慢振荡孵育45min; 
⑤第二步孵育结束后,小心将封片揭下并弃掉,用洗板机洗涤6次,拍干; 
⑥分别向步骤⑤中获得的固相载体上校准品孔和样本孔中加入100μl加入增强液的共解离剂部分,继续孵育5min,再加入100μl增强液的共增强剂; 
⑦步骤⑥中获得的固相载体于室温下缓慢振荡5min后,在相应的镧系元素检测窗口检测,铕标记物、钐标记物、镝标记物、铽标记物分别在铕窗口、钐窗口、镝窗口、铽窗口检测,在30min内完成检测并进行分析。 
实施例9 
本发明所述试剂盒的性能分析 
(1)弓形虫IgM抗体定量测定的分析性能: 
①最低检出量(稀释度):用6份企业灵敏度参考品进行检定,S1~S3检测结果S/CO或COI≥1.0,S4、S5检测结果S/CO或COI<1.0或≥1.0,S6检测结果S/CO或COI<1.0; 
②重复性:用1份企业精密度参考品检定,试剂盒批内变异系数CV≤15.0%(n=10); 
③阴性参考品符合率:用10份企业阴性参考品检定,结果均为阴性; 
④阳性参考品符合率:用10份企业阳性参考品检定,结果均为阳性; 
⑤稳定性试验:取有效期内试剂盒于37℃放置至少6天(有效期为1年)检测,其性能无明显改变。 
⑥交叉反应:检测以下样本均无交叉反应,弓形虫IgG抗体高浓度样本10 例,风疹病毒IgM抗体阳性样本5例,巨细胞病毒IgM抗体阳性样本5例,单纯疱疹病毒I型IgM抗体阳性样本5例,单纯疱疹病毒II型IgM抗体阳性样本5例,抗核抗体阳性样本5例,类风湿因子阳性样本5例,异嗜细胞抗体阳性样本5份,胆红素样本5份,甘油三酯样本5份,溶血样本15份,EB病毒IgM抗体阳性样本5例,乙型肝炎病毒表面抗体阳性(≥100mIU/mL)样本20例;乙型肝炎病毒e抗体阳性(≥4NCU/mL)20例;乙型肝炎病毒核心抗体IgM阳性(≥200PEI U/L)20例;甲型肝炎病毒IgM抗体阳性样本5例,水痘带状疱疹病毒IgM抗体阳性样本5例,肺炎支原体IgM抗体阳性样本10例,大肠杆菌BL21抗体(2.50mg/mL)1份(仅代表本实验室研究结果)。 
⑦干扰物质:胆红素浓度818μmol/L,血红蛋白浓度180g/L,甘油三酯浓度21.54mmol/L,EDTA-K2-2H2O浓度2.2mg/mL,草酸钾浓度2mg/mL,肝素浓度15U/mL,枸橼酸钠浓度21.8mmol/L,氟化钠浓度1mg/mL对检测结果无干扰性。 
⑧IgM破坏性试验:10份含有特异性弓形虫(TOX)IgM抗体的样本,采用0.2 mol/L的2-巯基乙醇37℃灭活IgM抗体2h后对比检测处理前和处理后的样本,处理样本后,IgM抗体检测结果均为阴性。 
2)风疹病毒IgM抗体定量测定的分析性能: 
①最低检测限:用国家参考品或标化的企业参考品检定,3份最低检测限参考品(L1~L3),L1和L2检测结果均为阳性,L3检测结果为阴性或阳性; 
②重复性:用国家参考品或标化的企业参考品检定,试剂盒批内变异系数(CV)不大于15.0%(n=10); 
③阴性参考品符合率:用10份国家参考品或标化的企业参考品检定,结果均为阴性; 
④阳性参考品符合率:用5份国家参考品或标化的企业参考品检定,结果均为阳性; 
⑤稳定性试验:试剂盒自成品生产之日起于37℃放置6天(有效期为12个月);成品剩余效期内,则按37℃放置6天有效期为12个月推算37℃放置的时间进行检测,其性能无明显改变。 
⑥交叉反应:检测以下样本均无交叉反应,风疹病毒IgG抗体高浓度样本10例,弓形虫IgM抗体阳性样本5例,巨细胞病毒IgM抗体阳性样本5例,单 纯疱疹病毒I型IgM抗体阳性样本5例,单纯疱疹病毒II型IgM抗体阳性样本5例,抗核抗体阳性样本5例,类风湿因子阳性样本5例,异嗜细胞抗体阳性样本5份,胆红素样本5份,甘油三酯样本5份,溶血样本15份,EB病毒IgM抗体阳性样本5例,乙型肝炎病毒表面抗体阳性(≥100mIU/mL)样本20例;乙型肝炎病毒e抗体阳性(≥4NCU/mL)20例;乙型肝炎病毒核心抗体IgM阳性(≥200PEI U/L)20例;甲型肝炎病毒IgM抗体阳性样本5例,水痘带状疱疹病毒IgM抗体阳性样本5例,肺炎支原体IgM抗体阳性样本10例,大肠杆菌BL21抗体(2.50mg/mL)1份(仅代表本实验室研究结果)。 
⑦干扰物质:胆红素浓度818μmol/L,血红蛋白浓度180g/L,甘油三酯浓度21.54mmol/L,EDTA-K2-2H2O浓度2.2mg/mL,草酸钾浓度2mg/mL,肝素浓度15U/mL,枸橼酸钠浓度21.8mmol/L,氟化钠浓度1mg/mL对检测结果无干扰性。 
⑧IgM破坏性试验:10份含有特异性风疹病毒(RV)IgM抗体的样本,采用0.2mol/L的2-巯基乙醇37℃灭活IgM抗体2h后对比检测处理前和处理后的样本,处理样本后,IgM抗体检测结果均为阴性。 
(3)巨细胞病毒IgM抗体定量测定的分析性能: 
①最低检测限:用国家参考品或标化的企业参考品检定,S1~S3检测为阳性,S4、S5检测为阴性或阳性,S6检测为阴性; 
②重复性:用国家参考品或标化的企业参考品检定,试剂盒批内变异系数CV≤15.0%(n=10); 
③阴性参考品符合率:用9份国家参考品或标化的企业阴性参考品检定,结果均为阴性; 
④阳性参考品符合率:用5份国家参考品或标化的企业阳性参考品检定,结果均为阳性; 
⑤稳定性试验:试剂盒自成品生产之日起于37℃放置6天(有效期为12个月);成品剩余效期内,则按37℃放置6天有效期为12个月推算37℃放置的时间进行检测,其性能无明显改变。 
⑥交叉反应:检测以下样本均无交叉反应,巨细胞病毒IgG抗体高浓度样本10例,风疹病毒IgM抗体阳性样本5例,弓形虫IgM抗体阳性样本5例,单纯疱疹病毒I型IgM抗体阳性样本5例,单纯疱疹病毒II型IgM抗体阳性样 本5例,抗核抗体阳性样本5例,类风湿因子阳性样本5例,异嗜细胞抗体阳性样本5份,胆红素样本5份,甘油三酯样本5份,溶血样本15份,EB病毒IgM抗体阳性样本5例,乙型肝炎病毒表面抗体阳性(≥100mIU/mL)样本20例;乙型肝炎病毒e抗体阳性(≥4NCU/mL)20例;乙型肝炎病毒核心抗体IgM阳性(≥200PEI U/L)20例;甲型肝炎病毒IgM抗体阳性样本5例,水痘带状疱疹病毒IgM抗体阳性样本5例,肺炎支原体IgM抗体阳性样本10例,大肠杆菌BL21抗体(2.50mg/mL)1份(仅代表本实验室研究结果)。 
⑦干扰物质:胆红素浓度818μmol/L,血红蛋白浓度180g/L,甘油三酯浓度21.54mmol/L,EDTA-K2-2H2O浓度2.2mg/mL,草酸钾浓度2mg/mL,肝素浓度15U/mL,枸橼酸钠浓度21.8mmol/L,氟化钠浓度1mg/mL对检测结果无干扰性。 
⑧IgM破坏性试验:10份含有特异性巨细胞病毒(CMV)IgM抗体的样本,采用0.2mol/L的2-巯基乙醇37℃灭活IgM抗体2h后对比检测处理前和处理后的样本,处理样本后,IgM抗体检测结果均为阴性。 
(4)单纯疱疹病毒I+II型IgM抗体定量测定的分析性能: 
①最低检测限:用企业参考品检测,S1~S3均为阳性,S4、S5为阴性或阳性,S6为阴性; 
②重复性:用企业参考品检测,试剂盒批内变异系数CV≤15%(n=10); 
③阴性参考品符合率:用20份企业阴性参考品检测,检测结果应为阴性; 
④阳性参考品符合率:用10份企业阳性参考品进行检测,检测结果为阳性; 
⑤稳定性试验:试剂盒自成品生产之日起于37℃放置6天(有效期为12个月);成品剩余效期内,则按37℃放置6天有效期为12个月推算37℃放置的时间进行检测,其性能无明显改变。 
⑥交叉反应:检测以下样本均无交叉反应,单纯疱疹病毒I型IgG抗体高浓度样本10例,单纯疱疹病毒II型IgG抗体高浓度样本10例,风疹病毒IgM抗体阳性样本5例,弓形虫IgM抗体阳性样本5例,巨细胞病毒IgM抗体阳性样本5例,抗核抗体阳性样本5例,类风湿因子阳性样本5例,异嗜细胞抗体阳性样本5份,胆红素样本5份,甘油三酯样本5份,溶血样本15份,EB病毒IgM抗体阳性样本5例,乙型肝炎病毒表面抗体阳性(≥100mIU/mL)样本 20例;乙型肝炎病毒e抗体阳性(≥4NCU/mL)20例;乙型肝炎病毒核心抗体IgM阳性(≥200PEI U/L)20例;甲型肝炎病毒IgM抗体阳性样本5例,水痘带状疱疹病毒IgM抗体阳性样本5例,肺炎支原体IgM抗体阳性样本10例, 
大肠杆菌BL21抗体(2.50mg/mL)1份。 
⑦干扰物质:胆红素浓度818μmol/L,血红蛋白浓度180g/L,甘油三酯浓度21.54mmol/L,EDTA-K2-2H2O浓度2.2mg/mL,草酸钾浓度2mg/mL,肝素浓度15U/mL,枸橼酸钠浓度21.8mmol/L,氟化钠浓度1mg/mL对检测结果无干扰性。 
⑧IgM破坏性试验:10份含有特异性单纯疱疹病毒I+II型IgM抗体的样本,采用0.2mol/L的2-巯基乙醇37℃灭活IgM抗体2h后对比检测处理前和处理后的样本,处理样本后,IgM抗体检测结果均为阴性。 
实施例10 
本发明所述试剂盒与德国维润赛润研发有限公司的产品比较,比较结果如下: 
表1弓形虫IgM抗体检测结果 
表1中不符合样本均在2周后重新采血与第一次的采血同时进行弓形虫IgG抗体检测,在维润赛润试剂检测弓形虫IgM抗体中为阳性而本发明试剂盒检测为阴性的3例样本中有1例弓形虫IgG抗体出现4倍增高;在维润赛润试剂检测弓形虫IgM抗体中为阴性而本发明试剂检测为阳性的2例样本中也有1例弓形虫IgG抗体出现4倍增高。 
表2风疹病毒IgM抗体检测结果 
表2中不符合样本均在2周后重新采血与第一次的采血同时进行风疹病毒IgG抗体检测,在维润赛润试剂检测风疹病毒IgM抗体中为阳性而本发明试剂盒检测为阴性的3例样本中有0例风疹病毒IgG抗体出现4倍增高;在维润赛润试剂检测风疹病毒IgM抗体中为阴性而本发明试剂检测为阳性的4例样本中有2例风疹病毒IgG抗体出现4倍增高。 
表3巨细胞病毒IgM抗体检测结果 
表3中不符合样本均在2周后重新采血与第一次的采血同时进行巨细胞病毒IgG抗体检测,在维润赛润试剂检测巨细胞病毒IgM抗体中为阳性而本发明试剂检测为阴性的4例样本中有2例巨细胞病毒IgG抗体出现4倍增高;在维润赛润试剂检测巨细胞病毒IgM抗体中为阴性而本发明试剂检测为阳性的4例样本中有1例巨细胞病毒IgG抗体出现4倍增高。 
表4单纯疱疹病毒I+II型IgM抗体检测结果 
这里的单纯疱疹病毒I+II型IgM抗体为单纯疱疹病毒I型IgM抗体,单纯疱疹病毒II型IgM抗体或单纯疱疹病毒I型IgM抗体和单纯疱疹病毒II型IgM抗体的混合,表4中不符合样本均在2周后重新采血与第一次的采血同时进行单纯疱疹病毒I+II型IgG抗体检测,在维润赛润试剂检测单纯疱疹病毒I+II型IgM抗体中为阳性而本发明试剂检测为阴性的3例样本中有1例单纯疱疹病毒I+II型IgG抗体出现4倍增高;在维润赛润试剂检测单纯疱疹病毒I+II型IgM 抗体中为阴性而本发明试剂检测为阳性的4例样本中有0例单纯疱疹病毒I+II型IgG抗体出现4倍增高。 
从比较结果来看,本发明所述试剂盒与德国维润赛润研发有限公司的产品相比,在检测弓形虫IgM抗体、风疹病毒IgM抗体、巨细胞病毒IgM抗体、单纯疱疹病毒I+II型IgM抗体时,其检测准确性相当。 
最后所应当说明的是,以上实施例仅用以说明本发明的技术方案而非对本发明保护范围的限制,尽管参照较佳实施例对本发明作了详细说明,本领域的普通技术人员应当理解,可以对本发明的技术方案进行修改或者等同替换,而不脱离本发明技术方案的实质和范围。 

Claims (10)

1.一种检测TORCH IgM抗体的试剂盒,其特征在于,所述试剂盒包括:包被有与TORCH IgM抗体结合的抗体的固相载体,镧系元素标记的TORCH抗原,TORCH IgM抗体校准品,样本稀释液,实验缓冲液,浓缩洗液以及增强液。
2.根据权利要求1所述的检测TORCH IgM抗体的试剂盒,其特征在于,所述包被有与TORCH IgM抗体结合的抗体的固相载体为包被有鼠抗人IgMμ链单克隆抗体的固相载体。
3.根据权利要求2所述的检测TORCH IgM抗体的试剂盒,其特征在于,所述包被有鼠抗人IgMμ链单克隆抗体的固相载体是采用以下步骤制备而得的:
将鼠抗人IgMμ链单克隆抗体用包被缓冲液稀释至0.01~10μg/mL,在固相载体上进行包被,将固相载体洗涤1次,然后再用含1%BSA的50mmol/L、pH 7.8的Tris-HCl缓冲液进行封闭,将固相载体甩干,晾干,真空包装,2~8℃保存备用。
4.根据权利要求1所述的检测TORCH IgM抗体的试剂盒,其特征在于,所述镧系元素标记的TORCH抗原为镧系元素1标记的弓形虫抗原、镧系元素2标记的风疹病毒抗原、镧系元素3标记的巨细胞病毒抗原和镧系元素4标记的单纯疱疹病毒抗原的组合,所述镧系元素1、镧系元素2、镧系元素3、镧系元素4分别选自铕、钐、镝和铽中的一种,且所述镧系元素1、镧系元素2、镧系元素3、镧系元素4互不相同;所述镧系元素标记的TORCH抗原中TORCH抗原为TORCH天然抗原和TORCH重组抗原中的至少一种。
5.根据权利要求4所述的检测TORCH IgM抗体的试剂盒,其特征在于,所述镧系元素4标记的单纯疱疹病毒抗原中单纯疱疹病毒抗原为单纯疱疹病毒I型抗原和单纯疱疹病毒II型抗原中的至少一种。
6.根据权利要求5所述的检测TORCH IgM抗体的试剂盒,其特征在于,所述镧系元素4标记的单纯疱疹病毒抗原中单纯疱疹病毒抗原为单纯疱疹病毒I+II型重组抗原。
7.根据权利要求4所述的检测TORCH IgM抗体的试剂盒,其特征在于,所述镧系元素标记的TORCH抗原是参照相应的镧系元素标记试剂盒说明书制备而成的。
8.一种采用如权利要求1所述试剂盒检测TORCH IgM抗体的方法,其特征在于,所述方法包括以下步骤:
(1)用实验缓冲液配制镧系元素标记的TORCH抗原,用纯化水将浓缩洗液稀释成工作洗涤液;
(2)将待检样本用样本稀释液稀释,然后在包被有与TORCH IgM抗体结合的抗体的固相载体上预设的校准品孔、样本孔相应位置分别加入TORCH IgM抗体校准品、预先稀释好的待检样本;
(3)将步骤(2)中得到的固相载体在室温条件下缓慢振荡孵育;
(4)用步骤(1)中工作洗涤液洗涤步骤(3)中孵育后的固相载体;
(5)分别向步骤(4)中获得的固相载体上校准品孔和样本孔中加入步骤(1)中配制好的镧系元素标记的TORCH抗原,在室温下孵育;
(7)用步骤(1)中工作洗涤液洗涤步骤(5)中孵育后的抗原固相载体;
(8)分别向步骤(7)中获得的固相载体上校准品孔和样本孔中加入增强液的共解离剂部分,继续孵育,再加入增强液的共增强剂;
(9)孵育结束后,采用相应的镧系元素窗口程序进行检测并分析。
9.根据权利要求8所述的采用试剂盒检测TORCH IgM抗体的方法,其特征在于,所述步骤(2)中包被有与TORCH IgM抗体结合的抗体的固相载体为包被有鼠抗人IgMμ链单克隆抗体的固相载体;所述步骤(1)中镧系元素标记的TORCH抗原为镧系元素1标记的弓形虫抗原、镧系元素2标记的风疹病毒抗原、镧系元素3标记的巨细胞病毒抗原和镧系元素4标记的单纯疱疹病毒抗原的组合,所述镧系元素1、镧系元素2、镧系元素3、镧系元素4分别选自铕、钐、镝和铽中的一种,且所述镧系元素1、镧系元素2、镧系元素3、镧系元素4互不相同;所述步骤(1)中镧系元素标记的TORCH抗原中TORCH抗原为TORCH天然抗原和TORCH重组抗原中的至少一种。
10.一种如权利要求1所述检测TORCH IgM抗体的试剂盒的制备方法,其特征在于,所述制备方法包括以下步骤:
(1)制备包被有与TORCH IgM抗体结合的抗体的固相载体,镧系元素标记的TORCH抗原,TORCH IgM抗体校准品,样本稀释液,实验缓冲液,浓缩洗液以及增强液;
(2)贴标签;
(3)组装为试剂盒。
CN201410363969.5A 2014-07-28 2014-07-28 一种检测TORCH IgM抗体的方法及试剂盒和该试剂盒的制备方法 Pending CN104155449A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201410363969.5A CN104155449A (zh) 2014-07-28 2014-07-28 一种检测TORCH IgM抗体的方法及试剂盒和该试剂盒的制备方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201410363969.5A CN104155449A (zh) 2014-07-28 2014-07-28 一种检测TORCH IgM抗体的方法及试剂盒和该试剂盒的制备方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN104155449A true CN104155449A (zh) 2014-11-19

Family

ID=51881002

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201410363969.5A Pending CN104155449A (zh) 2014-07-28 2014-07-28 一种检测TORCH IgM抗体的方法及试剂盒和该试剂盒的制备方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN104155449A (zh)

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN105445451A (zh) * 2016-01-08 2016-03-30 广州市丰华生物工程有限公司 适用于时间分辨荧光免疫法的加样方法
CN106771266A (zh) * 2017-01-12 2017-05-31 广州市丰华生物工程有限公司 抑制素a定量检测试剂盒及其制备方法
CN109001468A (zh) * 2018-08-06 2018-12-14 滴准生物科技(常州)有限公司 一种巨细胞病毒抗体IgM的检测试剂盒
CN109254146A (zh) * 2018-10-18 2019-01-22 郑州安图生物工程股份有限公司 TORCH-IgM抗体混合质控品
CN109270279A (zh) * 2018-10-18 2019-01-25 郑州安图生物工程股份有限公司 TORCH-IgG抗体混合质控品
CN113063940A (zh) * 2021-03-18 2021-07-02 北京万泰生物药业股份有限公司 一种同时检测多种抗原抗体的方法及其载体制备
WO2021134304A1 (zh) * 2019-12-30 2021-07-08 深圳迈瑞生物医疗电子股份有限公司 用于筛查torch感染的试剂盒、方法及免疫分析仪

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1340712A (zh) * 2000-09-01 2002-03-20 许宏艳 风疹、巨细胞、单疱病毒及弓形虫抗体酶免联检试剂盒
CN103105384A (zh) * 2012-09-20 2013-05-15 河南生生医疗器械有限公司 一种时间分辨荧光法综合检测乳腺癌试剂盒及其应用
CN103869073A (zh) * 2014-04-01 2014-06-18 广州市丰华生物工程有限公司 HIV抗体及HIV-1p24抗原双标记时间分辨荧光免疫分析方法及试剂盒

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1340712A (zh) * 2000-09-01 2002-03-20 许宏艳 风疹、巨细胞、单疱病毒及弓形虫抗体酶免联检试剂盒
CN103105384A (zh) * 2012-09-20 2013-05-15 河南生生医疗器械有限公司 一种时间分辨荧光法综合检测乳腺癌试剂盒及其应用
CN103869073A (zh) * 2014-04-01 2014-06-18 广州市丰华生物工程有限公司 HIV抗体及HIV-1p24抗原双标记时间分辨荧光免疫分析方法及试剂盒

Cited By (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN105445451A (zh) * 2016-01-08 2016-03-30 广州市丰华生物工程有限公司 适用于时间分辨荧光免疫法的加样方法
CN105445451B (zh) * 2016-01-08 2017-04-12 广州市丰华生物工程有限公司 适用于时间分辨荧光免疫法的加样方法
CN106771266A (zh) * 2017-01-12 2017-05-31 广州市丰华生物工程有限公司 抑制素a定量检测试剂盒及其制备方法
CN109001468A (zh) * 2018-08-06 2018-12-14 滴准生物科技(常州)有限公司 一种巨细胞病毒抗体IgM的检测试剂盒
CN109254146A (zh) * 2018-10-18 2019-01-22 郑州安图生物工程股份有限公司 TORCH-IgM抗体混合质控品
CN109270279A (zh) * 2018-10-18 2019-01-25 郑州安图生物工程股份有限公司 TORCH-IgG抗体混合质控品
WO2021134304A1 (zh) * 2019-12-30 2021-07-08 深圳迈瑞生物医疗电子股份有限公司 用于筛查torch感染的试剂盒、方法及免疫分析仪
CN113063940A (zh) * 2021-03-18 2021-07-02 北京万泰生物药业股份有限公司 一种同时检测多种抗原抗体的方法及其载体制备

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN104155449A (zh) 一种检测TORCH IgM抗体的方法及试剂盒和该试剂盒的制备方法
CN110862881B (zh) 一种全自动化学发光测定仪专用的清洗液或其稀释液及其制备方法
CN102998467B (zh) β人绒毛膜促性腺激素磁微粒化学发光免疫定量检测试剂盒及其制备方法
CN104090105A (zh) 一种检测hev抗体的方法及试剂盒和该试剂盒的制备方法
CN104730247A (zh) 一种适于利用双标记时间分辨荧光免疫法快速检测amh和inhb的试剂盒及其使用方法
CN101735319B (zh) 一种抗gp73蛋白的单克隆抗体、其制备方法和应用
CN101819206A (zh) 产前筛查afp测定试剂盒(时间分辨荧光免疫法)及其制备方法
CN103869073A (zh) HIV抗体及HIV-1p24抗原双标记时间分辨荧光免疫分析方法及试剂盒
CN101539576A (zh) 乙型肝炎病毒前s1抗原化学发光免疫分析测定试剂盒及其制备方法
EP4113121A1 (en) Antigen for 2019 novel coronavirus and detection use thereof
CN101363861A (zh) 乙型肝炎病毒表面抗原化学发光免疫分析测定试剂盒及其制备方法
CN105929157A (zh) 一种联合检测hiv抗原抗体的诊断试剂盒及其制备方法
CN109425732A (zh) 一种检测抗原的化学发光检测试剂盒和免疫分析方法
CN101178404B (zh) 人类免疫缺陷病毒抗体化学发光免疫分析诊断试剂盒及其制备方法
CN111474340A (zh) 一种用于新型冠状病毒检测的酶标记的抗原、制备方法及试剂盒与应用
CN101819210B (zh) 产前筛查β-人绒毛膜促性腺激素测定试剂盒(时间分辨荧光免疫法)及其制备方法
CN106501528A (zh) 基于滤纸干血斑检测ToRCH10项抗体的方法
CN102147412A (zh) 一种测定抗蛋白酶3抗体IgG的方法及试剂装置
CN111007248A (zh) 一种检测风疹病毒IgM抗体的化学发光免疫分析试剂盒
CN104297494B (zh) 一种抗乙型肝炎病毒x蛋白抗体酶联免疫测定试剂盒及其制备方法
CN101368964A (zh) 一种检测巨细胞病毒IgG抗体的化学发光法免疫分析诊断试剂盒
CN105403706A (zh) 热休克蛋白90(hsp90)化学发光检测试剂盒
CN101368960A (zh) 风疹病毒IgM抗体化学发光免疫分析测定试剂盒及其制备方法
Riester et al. Performance of an automated anti-SARS-CoV-2 immunoassay in prepandemic cohorts
CN101368959A (zh) 风疹病毒IgG抗体化学发光免疫分析测定试剂盒及其制备方法

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
RJ01 Rejection of invention patent application after publication

Application publication date: 20141119

RJ01 Rejection of invention patent application after publication