CN103995126B - 一种检测鸡白痢沙门氏菌抗体的elisa试剂盒 - Google Patents

一种检测鸡白痢沙门氏菌抗体的elisa试剂盒 Download PDF

Info

Publication number
CN103995126B
CN103995126B CN201410158723.4A CN201410158723A CN103995126B CN 103995126 B CN103995126 B CN 103995126B CN 201410158723 A CN201410158723 A CN 201410158723A CN 103995126 B CN103995126 B CN 103995126B
Authority
CN
China
Prior art keywords
groel
pullonum
antibody
pet
elisa kit
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN201410158723.4A
Other languages
English (en)
Other versions
CN103995126A (zh
Inventor
郑世军
徐志超
李晓齐
王永强
曹红
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Wens Foodstuff Group Co Ltd
Original Assignee
China Agricultural University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by China Agricultural University filed Critical China Agricultural University
Priority to CN201410158723.4A priority Critical patent/CN103995126B/zh
Publication of CN103995126A publication Critical patent/CN103995126A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN103995126B publication Critical patent/CN103995126B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/569Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
    • G01N33/56911Bacteria
    • G01N33/56916Enterobacteria, e.g. shigella, salmonella, klebsiella, serratia
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/70Vectors or expression systems specially adapted for E. coli
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/195Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from bacteria
    • G01N2333/24Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from bacteria from Enterobacteriaceae (F), e.g. Citrobacter, Serratia, Proteus, Providencia, Morganella, Yersinia
    • G01N2333/255Salmonella (G)

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

本发明通过免疫沉淀技术筛选鸡白痢沙门氏菌优势抗原GroEL,利用原核表达载体表达GroEL重组蛋白,并利用该抗原蛋白建立了检测鸡白痢沙门氏菌抗体的ELISA试剂盒。本发明试剂盒在检测鸡白痢沙门氏菌抗体过程中能够减少鸡的应激,并提高检测特异性和敏感性。

Description

一种检测鸡白痢沙门氏菌抗体的ELISA试剂盒
技术领域
本发明涉及抗原制备及ELISA试剂盒,具体地说,涉及一种检测鸡白痢沙门氏菌抗体的ELISA试剂盒。
背景技术
鸡白痢是由鸡白痢沙门氏菌引起的败血性传染性疾病,其排泄物是重要的传播媒介,同时也可通过鸡蛋垂直传播,是危害养鸡业最严重的疾病之一。
鸡白痢沙门氏菌多侵害20日龄以内幼雏,引起白色下痢,病死率极高,成年鸡则可带菌而无临床症状。该病既可垂直传播,又有严重的水平传播,所以造成的危害和经济损失巨大。目前西方国家已完全消灭了鸡白痢,但我国仍然爆发严重。常规的鸡白痢检测方法为平板凝集,通过针刺鸡采血,在平板上与鸡白痢、鸡伤寒多价染色平板凝集试验抗原混合,通过出现凝集现象来判断是否感染鸡白痢沙门氏菌。由于通过针刺采血对鸡应激大,容易造成鸡的生产性能下降,甚至肝脾破裂死亡,蛋鸡尤为明显,同时大型鸡场存栏量大,工作量繁重,而一般阴性血清在足够时间下也会产生凝集,易造成假阳性。
发明内容
为了解决现有技术中存在的问题,本发明的目的是建立一种检测鸡白痢沙门氏菌抗体的ELISA方法,在检测鸡白痢过程中减少鸡的应激,提高特异性和敏感性。
为了实现本发明目的,本发明首先提供一种检测鸡白痢沙门氏菌抗体的ELISA试剂盒,所述试剂盒内含有鸡白痢沙门氏菌抗原GroEL蛋白。
进一步地,所述试剂盒内设有:包被鸡白痢沙门氏菌抗原的抗体检测板,酶标抗体,阳性对照为鸡白痢阳性血清,阴性对照为鸡白痢阴性血清。
作为优选,所述酶标抗体为辣根过氧化物酶标记的兔抗鸡IgG抗体。
进一步地,所述鸡白痢沙门氏菌抗原GroEL蛋白为纯化的鸡白痢沙门氏菌重组蛋白GroEL。
更进一步地,所述鸡白痢沙门氏菌重组蛋白GroEL是由原核表达载体pET-28a-GroEL表达的,原核表达载体pET-28a-GroEL是由以下方法构建而成的:
1)设计一对含有酶切位点的特异性引物:
GroEL-F:CGCggatccATGGCAGCTAAAGACGTA BamHⅠ;
GroEL-R:CCGctcgagCATCATGCCGCCCATACC XhoⅠ;
2)利用上述特异性引物,以鸡白痢沙门氏菌基因组为模板,扩增GroEL基因片段,再利用各自引物上的限制性内切酶,分别对PCR扩增产物和pET-28a原核表达载体进行酶切,用T4DNA连接酶将扩增片段的酶切产物连接到pET-28a酶切产物上,构建pET-28a-GroEL载体,转化大肠杆菌DH5α感受态中,经酶切鉴定和测序鉴定,表明重组原核表达载体pET-28a-GroEL构建成功。
进一步地,所述试剂盒内设有:封闭液、样品稀释液、洗涤液、显色液和终止液。
封闭液为PBST配制5%脱脂奶粉;样品稀释液为1×PBS;洗涤液为PBST;显色液为100mmol柠檬酸钠溶液24.3mL,200mmol磷酸氢二钠25.7ml,加入50mg TMB,临用前加入50微升30%H2O2配制;终止液为2M浓硫酸。
本发明还提供了所述试剂盒的使用方法:
将待检血清或者蛋黄液按1:100比例经PBS稀释后加入抗体检测板中,每孔100μL,并同时设立好阴、阳性对照,37℃作用1小时;接着PBST洗三遍;用PBS将辣根过氧化物酶标记兔抗鸡IgG抗体按1:5000稀释,每孔100μL加入反应板中,37℃作用30分钟;接着PBST洗三遍;按每孔加入100μL显色液,37℃作用约15分钟后加入2M硫酸终止液终止反应,最后通过酶标仪检测,阴性平均值+2.58SD为临界值,大于临界值判为阳性,反之为阴性。
本发明还提供了一种表达鸡白痢沙门氏菌重组蛋白GroEL的载体。
进一步地,所述载体为原核表达载体,是由以下方法构建而成的:
1)设计一对含有酶切位点的特异性引物:
GroEL-F:CGCggatccATGGCAGCTAAAGACGTA BamHⅠ;
GroEL-R:CCGctcgagCATCATGCCGCCCATACC XhoⅠ;
2)利用上述特异性引物,以鸡白痢沙门氏菌基因组为模板,扩增GroEL基因片段,再利用各自引物上的限制性内切酶,分别对PCR扩增产物和pET-28a原核表达载体进行酶切,用T4DNA连接酶将扩增片段的酶切产物连接到pET-28a酶切产物上,构建pET-28a-GroEL载体,转化大肠杆菌DH5α感受态中,经酶切鉴定和测序鉴定,表明重组原核表达载体pET-28a-GroEL构建成功。
本发明的有益效果在于:
本发明通过免疫沉淀技术筛选出鸡白痢沙门氏菌优势抗原GroEL,该抗原具有良好的特异性和敏感性,可用于鸡蛋和血清中鸡白痢沙门氏菌抗体检测,可以大大减少鸡的应激,提高经济效益,提高工作效率。
附图说明
图1为本发明实施例1中鸡白痢阴、阳性血清纯化IgG;
其中,A为鸡白痢阳性血清纯化IgG,M:蛋白分子量标准;1:纯化前;2:纯化后;B为鸡白痢阴性血清纯化IgG,M:蛋白分子量标准;1:纯化后;2:纯化前。
图2为本发明实施例1中免疫沉淀技术筛选鸡白痢沙门氏菌优势抗原;A为SDS-PAGE电泳图;B为肽指纹图谱分析图;
其中,M:蛋白分子量标准;1:鸡阴性血清(纯化后IgG);2:鸡白痢沙门氏菌阳性血清(纯化后IgG);3:鸡白痢沙门氏菌抗原复合物;4:beads+兔抗鸡IgG二抗+鸡白痢沙门氏菌抗原复合物;5:beads+兔抗鸡IgG二抗+鸡阴性血清(纯化后IgG)+鸡白痢沙门氏菌抗原复合物;6:beads+兔抗鸡IgG二抗+鸡白痢沙门氏菌阳性鸡血清(纯化后IgG)+鸡白痢沙门氏菌抗原复合物。
图3为本发明实施例2中鸡白痢沙门氏菌基因组电泳鉴定图;
其中,M:基因组分子量标准λDNAHind III;1:鸡白痢沙门氏菌基因组DNA。
图4为本发明实施例2中鸡白痢沙门氏菌GroEL基因扩增片段的电泳鉴定图;
其中,M:DNA分子量标准;1:鸡白痢沙门氏菌GroEL基因扩增片段。
图5为本发明实施例2中pMD19-T-GroEL连接产物的双酶切电泳鉴定图;
其中,A:GroEL基因PCR鉴定;M:DNA分子量标准;1:GroEL基因;B:pMD19-T-GroEL双酶切鉴定;M:DNA分子量标准;1:空载质粒双酶切前;2:pMD19-T-GroEL质粒双酶切后。
图6为本发明实施例2中pET-28a-GroEL连接产物的双酶切电泳鉴定图;
其中,A:GroEL基因PCR鉴定;M:DNA分子量标准;1:GroEL基因;B:pET-28a-GroEL双酶切鉴定;M:DNA分子量标准;1:空载质粒双酶切前;2:pET-28a-GroEL质粒双酶切后。
图7为本发明实施例3中原核表达载体的转化与诱导表达SDS-PAGE电泳图;
其中,M:蛋白分子量标准;1:诱导前空载体;2:诱导后空载体;3:含pET-28a-GroEL质粒的BL21基因工程菌诱导前表达细菌总蛋白;4:含pET-28a-GroEL质粒的BL21基因工程菌诱导后表达细菌总蛋白。
图8为本发明实施例3中GroEL重组蛋白的蛋白印迹鉴定;
其中,A:His单克隆抗体检测;1:GroEL-His重组蛋白;2:空载体诱导对照;B:鸡白痢阴性血清(鸡场采集)检测;3:GroEL-His重组蛋白;4:空载体诱导对照;C:鸡白痢阳性血清(鸡场采集)检测;5:空载体诱导对照;6:GroEL-His重组蛋白。
图9为本发明实施例3中GroEL重组蛋白的纯化中SDS-PAGE考马斯亮蓝染色分析;
其中,M:蛋白分子量标准;1:含pET-28a-GroEL质粒的BL21基因工程菌诱导表达细菌总蛋白;2:穿透液蛋白;3:洗脱液蛋白;4:纯化的GroEL-His蛋白。
具体实施方式
以下实施例用于说明本发明,但不用来限制本发明的范围。
实施例1免疫沉淀(pulldown)技术筛选鸡白痢沙门氏菌优势抗原
1平板凝集实验
取10μL鸡白痢、鸡伤寒多价染色平板凝集试验抗原滴于一块干净的玻片上,接着取10μL鸡场采集的血清滴于该玻片上,上下颠倒进行充分混合,2min内出现凝集颗粒,液体清亮判为阳性,不出现凝集颗粒则判为阴性,以SPF鸡为阴性对照。分别鉴定出鸡白痢阴、阳血清用于免疫沉淀。
2鸡白痢阴、阳性血清纯化IgG
2.1透析袋处理:取200ml溶液Ⅰ(用蒸馏水配制,含2%(W/V)碳酸氢钠、1mmolEDTA,氢氧化钠调pH为8.0构成)于烧杯中,将烧杯置于水浴锅内煮沸,接着将一定长度的透析袋放入溶液Ⅰ中缓慢搅动,10min后取出烧杯自然冷却,接着用蒸馏水彻底冲洗透析袋7-8次;下一步取200ml溶液Ⅱ(蒸馏水配制1mmolEDTA,氢氧化钠调pH为8.0)于烧杯中,操作同上。
2.2分别取经过平板凝集实验鉴定的鸡白痢阴、阳性血清300μL加入2ml EP管,接着加入等体积300μL灭菌生理盐水充分混匀。逐滴加入饱和硫酸铵溶液600μL使其饱和度达到50%,室温放置30min,4℃、12000rpm,离心10min弃上清。加入1ml灭菌生理盐水溶解沉淀,再次逐滴加入饱和硫酸铵溶液538μL使其饱和度达到35%,室温放置30min,4℃、12000rpm,离心10min弃上清。加入1ml灭菌生理盐水溶解沉淀,重复上述操作。最后离心20min,尽量弃掉上清。加入300μL灭菌生理盐水溶解沉淀,装入透析袋中,4℃透析24h,当中换液数次、用1%氯化钡溶液检测透析效果。鸡白痢阴、阳性血清纯化IgG前后的蛋白质分子量见图1。
透析完毕测定IgG浓度,测定结果为25μg/μL。之后取少量抗体,加入6×SDS上样缓冲液煮沸10min进行SDS-PAGE,检测纯化IgG纯度。
检测纯化IgG纯度是因为免疫沉淀要求用到的抗体具备良好的纯度,鸡场采集的血清含有很多非IgG成分,容易影响免疫沉淀的结果,通过SDS-PAGE可以清楚看到除了IgG重轻链外,较少其他杂蛋白,达到免疫沉淀的要求。
3鸡白痢沙门氏菌抗原复合物的制备
取10μL鸡白痢沙门氏菌标准株533甘油菌加入到5ml LB液体培养基活化过夜,接着全部转入200ml LB液体培养基37℃振摇培养过夜,4℃、5000g/min离心5min收集菌体,用20ml灭菌PBS清洗菌体、离心弃上清。用10ml灭菌PBS重悬菌体,对收集的菌体进行超声裂解,裂解条件为:4℃冰浴,槽温40℃,间断超声,工作2s、间歇3s,共1800s,功率为35%。接着12000g/min,离心20min,弃沉淀、收集上清,测定蛋白浓度,测定结果为20μg/μL,将鸡白痢沙门氏菌抗原复合物保存于-80℃用于免疫沉淀。
4免疫沉淀探寻鸡白痢沙门氏菌蛋白抗原
4.1protein A/G beads处理
取500μL25%protein A/G beads4℃、3000rpm离心3min弃上清;加入2M盐酸胍至1ml4℃颠倒孵育30min-1h;4℃、3000rpm离心3min弃上清;加入灭菌水500μL重悬beads,4℃、3000rpm离心3min弃上清,重复该步骤3次。接着加入Lysis Buffer500μL重悬beads,4℃颠倒孵育1h;4℃、3000rpm离心3min弃上清;加入Lysis Buffer500μL重悬beads,4℃、3000rpm离心3min弃上清,重复该步骤2次;最后加入Lysis Buffer500μL重悬beads,保存于4℃。
4.2beads、兔抗鸡IgG、鸡白痢阴阳性血清(纯化后IgG)偶联物制备
取50μLbeads、60μL兔抗鸡IgG、200μL鸡白痢阳性血清(纯化后IgG)加入1.5ml EP管,之后加入690μL Lysis Buffer混匀,4℃颠倒孵育8h;按相同操作取50μL beads、60μL兔抗鸡IgG、200μL鸡白痢阴性血清(纯化后IgG)进行偶联;同时取50μLbeads、60μL兔抗鸡IgG,4℃颠倒孵育4h偶联作为对照。
4.3免疫沉淀(pulldown)实验
取鸡白痢沙门氏菌抗原复合物解冻,将990μL上清转移到1.5mlEP管中,分为3管,其中每管加入10μL beads4℃颠倒孵育4h,4℃、3000rpm离心3min,将900μL上清转移到新的1.5ml EP管中;分别将偶联好的beads、兔抗鸡IgG、鸡白痢阳性血清(纯化后IgG)复合物,beads、兔抗鸡IgG、鸡白痢阴性血清(纯化后IgG)复合物,beads、兔抗鸡IgG复合物加入到该EP管内,并加入15μL蛋白酶抑制剂,4℃颠倒孵育8h。4℃、3000rpm离心3min,小心弃上清;向其中加入1mlLysis Buffer轻轻重悬复合物,4℃、3000rpm离心3min弃上清,如此重复洗涤4-6次。最后离心完全弃掉上清,加入40μL1×SDS上样缓冲液煮沸10min,之后12000rpm离心5min。同时取20μL鸡白痢沙门氏菌抗原复合物、按1:20稀释的鸡白痢鸡白痢阴、阳性血清(纯化后IgG)分别加入6×SDS上样缓冲液煮沸10min。
4.4SDS-PAGE电泳、染色、脱色
所有配方参考《分子克隆三》配制12%蛋白胶,电泳时将4.3煮过的样品都分别加到一个孔内,然后再加一个蛋白分子量标准,开始以80V电压进行电泳,当样品进入分离胶后调为160V电压,直到10kDa蛋白带在胶最下缘时停止。值得注意的是pull down实验后所有蛋白胶、染色、脱色溶液均应使用超纯水配制,在取胶、染色、脱色时均应戴上一次性塑料手套和口罩,所有器皿用浓硫酸泡过,防止蛋白污染。
4.5目的蛋白切割及保存
Pull down实验后通过SDS-PAGE染色、脱色发现有目的蛋白(见图2A),首先利用凝胶成像系统拍下照片,接着戴好手套、口罩,将蛋白胶用超纯水洗涤两遍,用新的手术刀片切下目的条带,放到干净的进口1.5mlEP管内。每条特异条带放入一个EP管内,之后装到自封袋内,做好标记暂时冻存于-20℃。将目的蛋白条带送到中国科学院生物物理所进行肽指纹图谱分析(见图2B),将分析得到的数据放到数据库进行比对,确定得到目的蛋白为GroEL蛋白。
实施例2鸡白痢沙门氏菌GroEL原核表达载体的构建
1鸡白痢沙门氏菌全基因组的提取
取鸡白痢沙门氏菌标准株533甘油菌10μL接种5mlLB液体培养基,37℃振摇过夜。
按照细菌基因组DNA快速提取试剂盒说明操作:取2ml培养菌液,10000rpm,离心30s,尽可能的吸弃上清,收集菌体。加入200μL缓冲液RB重悬,10000rpm离心30s,弃上清。将细胞振荡重悬于180μL缓冲液RB。加入20μL蛋白酶K(20mg/ml),充分混匀,再加入200μL结合液CB,立刻涡旋振荡充分混匀,在70℃放置10min。冷却后加入100μL异丙醇,立刻涡旋振荡充分混匀,此时可能会出现絮状沉淀。将上一步混合物加入一个吸附柱AC中,(吸附柱放入收集管中)13000rpm离心30-60s,倒掉收集管中的废液。加入500μL抑制物去除液IR,12000rpm离心30s,弃废液。加入700μL漂洗液WB(加入无水乙醇),12000rpm离心30s,弃掉废液。加入500μL漂洗液WB,12000rpm离心30s,弃掉废液。将吸附柱AC放回空收集管中,13000rpm离心2min,尽量除去漂洗液,以免漂洗液中残留乙醇抑制下游反应。取出吸附柱AC,放入一个干净的离心管中,在吸附膜的中间部位加60μL洗脱缓冲液EB(洗脱缓冲液事先在65-70℃水浴中预热),室温放置3-5min,12000rpm离心1min。将得到的溶液重新加入离心吸附柱中,室温放置2min,12000rpm离心1min。
制备1%的琼脂糖凝胶,取5μL DNA溶液与6×DNA上样缓冲液混合后上样电泳,20min后观察并记录实验结果(见图3)。剩余DNA溶液存放-20℃。
2鸡白痢沙门氏菌基因GroEL的克隆
根据GenBank上登陆的GroEL系列,用Primer5.0设计特异性引物扩增GroEL基因片段。
上游引物GroEL-F:5'-CGCggatcc ATGGCAGCTAAAGACGTA-3',含BamHⅠ酶切位点;
下游引物GroEL-R:5'-CCGctcgagCATCATGCCGCCCATACC-3',含XhoⅠ酶切位点。
以鸡白痢沙门氏菌基因组为模板,建立50μL PCR反应体系:
扩增程序:94℃预变性2min,94℃变性30s,55℃退火30s,72℃延伸60s,共40个循环,最后72℃延伸5min,16℃保存。制备1%的琼脂糖胶电泳检测PCR结果(见图4)。
按照胶回收试剂盒说明操作回收DNA片段:电泳分离待回收的DNA片段,从琼脂糖凝胶上切下所需DNA片段,放在1.5mL Eppendorf管中。估计凝胶体积,按100μL胶块加300μL ADB溶胶液的比例加入溶胶液,55℃-65℃溶胶约10min,期间轻摇EP管数次,使胶完全溶化。胶块完全溶解后将溶胶液转移至吸附柱中,室温12000rpm离心60s,去掉废液。向吸附柱内加入200μL漂洗液,12000rpm离心30s,去掉废液。重复洗涤一次,去掉废液后空管12000rpm离心2min以除去漂洗液。将吸附柱转移至一个干净的1.5mL Eppendorf管中,向吸附柱中央加适量体积的事先预热的洗脱缓冲液(30-50μL),室温放置2min,12000rpm离心2min,洗脱得到DNA,保存于-20℃。
感受态细胞制备:挑取LB平板上新活化的DH5α的单菌落接种于3.5ml LB液体培养基中,37℃振摇培养12h左右,直至对数期生长后期,将该菌落悬液按1:100-1:50比例接种于100mlLB液体培养基中,37℃振摇培养2-3h至OD600=0.4左右。将菌液转入离心管中,冰上放置10min,然后于4℃3000rpm离心7min,弃上清。用预冷的0.06mol/L的CaCl2溶液15ml轻轻悬浮细胞,冰上放置5min,4℃3000rpm离心10min,弃上清。用预冷的0.06mol/L的Cacl2溶液20ml轻轻悬浮细胞,冰上放置30min,4℃3000rpm离心10min,弃上清。加入2ml预冷含15%甘油的0.06mol/L的Cacl2溶液轻轻悬浮细胞,冰上放置30min,即成感受态细胞悬液。冰上将感受态细胞分装成每管50μL,贮存于-80℃,可保存半年。
将回收的PCR产物与pMD19-T载体连接。连接体系为:GroELgene4μL、1μL pMD19-T vector、5μL SolutionⅠ,16℃连接3h。
连接产物的转化:取感受态细胞DH5α于冰上解冻,将10μL连接产物与感受态细胞混匀,冰浴30min.42℃水浴热激90s,立即冰浴3min.之后将全部液体涂布于LBA平板上,37℃培养12h,观察菌落生长情况。从LBA平板上随机挑取若干个菌落亚克隆到另一块新的LBA平板上,做好标记,37℃培养过夜。
GroEL pMD19-T连接产物PCR鉴定:
扩增程序:94℃预变性2min,94℃变性30s,55℃退火30s,72℃延伸60s,共30个循环,最后72℃延伸5min,16℃保存。制备1%的琼脂糖胶电泳检测PCR结果是否阳性。
GroEL pMD19-T连接产物双酶切鉴定:
将PCR鉴定为阳性的菌落接种到5ml LBA液体培养基37℃培养过夜提取质粒双酶切鉴定。
按照高纯度质粒小量快速提取试剂盒说明操作:取1.5ml过夜培养的菌液,12000rpm离心30s,尽可能的倒干上清,收集菌体。用250μL溶液P1重悬菌体沉淀,涡旋振荡至彻底悬浮。加250μL的溶液P2,温和上下翻转4-7次使菌体充分裂解,室温放置4min。加350μL溶液P3,立即温和地上下翻转4-7次,充分混匀时会出现白色絮状沉淀。12000rpm离心10min,小心取上清。将上清加入吸附柱AC中(吸附柱放入收集管中),12000rpm离心30-60s,倒掉收集管中的废液。加入700μL漂洗液WB(已加入无水乙醇),12000rpm离心30s,弃掉废液。加入500μL漂洗液WB,12000rpm离心30s,弃掉废液。将吸附柱AC放回空收集管中,13000rpm离心2min,尽量除去漂洗液,以免漂洗液中残留乙醇抑制下游反应。取出吸附柱AC,放入一个干净的离心管中,在吸附膜的中间部位加50μL事先在65-70℃水浴加热的洗脱缓冲液,室温放置2min,12000rpm离心1min。质粒保存于-20℃。
双酶切鉴定体系:
置于37℃温箱5h,制备1%的琼脂糖胶电泳鉴定酶切产物是否为阳性(见图5)。最后将PCR鉴定、双酶切鉴定均阳性的菌液送去测序。
将测序结果与NCBI上发表的GroEL系列进行比对,同源性为100%。
3鸡白痢沙门氏菌GroEL原核表达载体的构建
回收DNA产物和表达载体pET-28a的酶切体系:
置于37℃温箱5h,制备1%的琼脂糖胶电泳酶切产物。按照胶回收试剂盒说明操作回收酶切后GroEL基因和表达载体(操作同前)。
目的基因片段与表达载体的连接:
混匀,16℃连接过夜。第二天转化感受态细胞DH5α(操作同前)。
对重组表达载体进行PCR、双酶切鉴定(操作同前),电泳结果见图6。
实施例3重组蛋白的表达和纯化
1重组原核表达载体的转化与诱导表达
将构建好的重组表达质粒pET-28a-GroEL原核表达载体分别转化Ecoli.BL21感受态细胞,涂布于LBK平板,37℃培养过夜,利用卡那霉素抗性筛选重组转化体。分别随机挑取3个单菌落及pET-28aEcoli.BL21空载体至5mlLBK液体培养基,37℃振摇培养约4h至OD600=0.6-0.8,分别取样1ml,之后加入终浓度为1mmol/L IPTG,37℃振摇约6h,分别取样1ml。对诱导前、诱导后的样品,5000rpm离心10min收集菌体。分别加入一定量蒸馏水和6×SDS上样缓冲液煮沸10min,之后进行SDS-PAGE电泳,分析蛋白表达情况。
SDS-PAGE电泳:参照分子克隆实验指南的方法配制12%的分离胶,按Bio-RAD产品说明书装好制胶板,加入分离胶(是梳子到胶面的距离约1cm),胶面上加一层水室温放置,胶充分聚合后吸去上层水用新的去离子水洗一次,再次将水吸干,加入配好的浓缩胶,插入梳子,胶充分聚合后拔出梳子即可上样进行电泳。恒压100V电泳至样品进入分离胶后,电压改为200V,电泳完毕后用适量染色液浸泡凝胶染色45min。脱色液脱色,其间更换新的脱色液数次,直至条带清晰,观察SDS-PAGE电泳后目的蛋白的表达情况(见图7)。
2重组筛选蛋白的Western-Blotting鉴定
(1)同“重组原核表达载体的转化与诱导表达”将表达样品进行SDS-PAGE电泳;
(2)转印装置的准备:电泳结束后将蛋白胶取下,按需要的蛋白胶部分大小裁剪PVDF膜,并置于无水甲醇活化30s,之后连同蛋白胶、滤纸6张置于转印液中浸泡10min。转印电极装置从负极到正极依次放置海绵垫、3层滤纸、凝胶、PVDF膜、3层滤纸和海绵垫,放置时用玻棒轻轻滚动排除所有气泡并且注意应使PVDF膜贴近凝胶;
(3)电转移:固定好转印电极后,将电极插入电转槽,注满转印缓冲液,恒压100V转印1h;
(4)封闭:取出PVDF膜标记好蛋白面,转移至5%脱脂奶封闭液中4℃过夜;
(5)一抗孵育:倾去封闭液,加入适当5%脱脂奶稀释的一抗溶液(抗His-tag单克隆抗体按1:10000稀释,鸡白痢沙门氏菌阴、阳性血清按1:500稀释)中,室温反应1h;
(6)洗涤:倾去抗体,PBST洗涤30min,其间换液数次;
(7)酶标二抗孵育:加入适当5%脱脂奶稀释的二抗溶液(山羊抗小鼠IgG-HRP按1:20000稀释,兔抗鸡IgG-HRP按1:5000稀释)中,室温反应30min;
(8)洗涤:倾去抗体,PBST洗涤1h,其间换液数次;
(9)显影:根据Western blot发光检测试剂盒提供的步骤进行,根据膜的大小,取等量的BufferA和BufferB混匀,配制成发光检测液;用镊子将免疫反应后的膜取出,膜的下缘轻轻接触吸水纸,以去除膜上多余的液体,膜的蛋白面朝上,置于洁净的保鲜膜上。用移液枪将配制好的发光检测液转移到蛋白面上,使其均匀覆盖,室温孵育3min;用镊子夹持蛋白膜,膜的下缘轻轻接触吸水纸,以去除膜上多余的液体。膜的蛋白面朝上,包裹于洁净的保鲜膜内,轻轻赶出其间气泡,固定在X片暗盒中;在暗室中取出一张X片置于包裹的膜上,合上暗盒,曝光时间依蛋白表达水平而定,将达到曝光时间的X片从暗盒中取出,放入X片洗片机中,洗片显影(见图8)。
3重组蛋白的纯化
大量表达:
1)过夜摇菌:取10μL甘油菌加入5ml LBK培养液,37℃过夜培养;
2)大量培养:将过夜培养的5ml菌液转入200ml对应的LBK中,放入摇床220-240rpm,37℃培养,当测得OD=0.6-0.8时,加入200μL1MIPTG诱导表达4-6h后,5000g,10min,4℃收集菌体,尽量弃上清;
3)清洗菌体:用30-50ml高压后的PBS(pH7.4)重悬菌体沉淀,然后重新5000g,10min,4℃收集菌体,尽量弃上清;
4)超声裂解菌体:用10ml高压后的PBS(pH7.4)重悬菌体沉淀,将菌液转入干净的50ml烧杯中,用10ml的PBS冲洗离心管,将残余的菌液也转入烧杯中。冰浴状态下放入超声裂解操作台,将探头固定于菌液中部,不能碰到杯体;
参数设置:输出功率35%
间隙开2s,停3s,共1800s
槽温度40℃;
5)分离上清和沉淀:将裂解产物放入高压灭菌过的80ml离心管中,配平后12000g,20min,4℃离心,分离上清沉淀;
6)可溶性分析:取裂解产物上清50μL,加入10μL6×SDS loadingbuffer,取小量沉淀溶于50μL高压后的PBS,加入10μL6×SDS loadingbuffer;分别混匀后沸水中煮10min,之后SDS-PAGE、考马斯亮蓝染色、脱色液脱色分析蛋白是可溶性表达、还是包涵体表达。
可溶性蛋白纯化(His-tag):
1)除杂:用已高压灭菌的0.45μm的滤器将超声裂解后的上清除杂;
2)柱子处理:用NPI250(洗液)充分清洗柱子(5-10倍柱床体积),用NPI10(平衡液)充分平衡柱子(控制流速在1ml/min,5-10倍柱床体积);
3)上样:将已过滤器的菌液加入经处理过的柱床内(控制流速在1ml/min),尽量重复上样两次(上样前取出100μL的原液),收集穿透液;
4)除杂蛋白:用NPI20(除杂液)除去非特异性结合在柱内的杂蛋白(控制流速在1ml/min,5-10倍柱床体积),收集除杂液;
5)用NPI250(洗液)控制流速在1ml/min,分管收集蛋白(用高压过的1.5mlEP管);
6)分光光度计测蛋白浓度;
7)SDS-PAGE考马斯亮蓝染色分析(原液、穿透液、除杂液、纯化蛋白液),见图9。
实施例4检测鸡白痢沙门氏菌抗体的ELISA试剂盒
检测鸡白痢沙门氏菌抗体的ELISA试剂盒具体包括以下成分:
抗体检测板:包被有纯化的GroEL蛋白;
封闭液:PBST配制5%脱脂奶粉;
样品稀释液:1×PBS;
洗涤液:PBST;
显色液:100mmol柠檬酸钠溶液24.3mL,200mmol磷酸氢二钠25.7ml,加入50mg TMB,临用前加入50微升30%H2O2配制;
终止液:2M浓硫酸;
酶标抗体:辣根过氧化物酶标记的兔抗鸡IgG抗体;
阳性对照为鸡白痢阳性血清;
阴性对照为鸡白痢阴性血清。
实施例5鸡白痢沙门氏菌抗体的ELISA检测法
通过将筛选到的鸡白痢沙门氏菌优势抗原原核表达纯化包被并用5%脱脂奶粉封闭好的ELISA抗体检测板,将待检血清或者蛋黄液按1:100(PBS稀释)加入抗体检测板中,每孔100μL,并同时设立好阴阳性对照,37℃作用1小时;接着PBST洗三遍;用PBS将兔抗鸡IgG-HRP按1:5000稀释,每孔100μL加入抗体检测板中,37℃作用30分钟;接着PBST洗三遍;按每孔加入100μL显色液,37℃作用约15分钟后加入2M硫酸终止液终止反应,最后通过酶标仪检测,将阴性值平均值+2.58SD为临界值,大于临界值判为阳性,反之为阴性。
虽然,上文中已经用一般性说明及具体实施方案对本发明作了详尽的描述,但在本发明基础上,可以对之作一些修改或改进,这对本领域技术人员而言是显而易见的。因此,在不偏离本发明精神的基础上所做的这些修改或改进,均属于本发明要求保护的范围。

Claims (7)

1.一种检测鸡白痢沙门氏菌抗体的ELISA试剂盒,其特征在于,所述试剂盒内含有鸡白痢沙门氏菌抗原GroEL蛋白。
2.根据权利要求1所述的ELISA试剂盒,其特征在于,所述试剂盒内设有:包被鸡白痢沙门氏菌抗原的抗体检测板,酶标抗体,阳性对照为鸡白痢阳性血清,阴性对照为鸡白痢阴性血清。
3.根据权利要求2所述的ELISA试剂盒,其特征在于,所述酶标抗体为辣根过氧化物酶标记的兔抗鸡IgG抗体。
4.根据权利要求1所述的ELISA试剂盒,其特征在于,所述鸡白痢沙门氏菌抗原GroEL蛋白为纯化的鸡白痢沙门氏菌重组蛋白GroEL。
5.根据权利要求4所述的ELISA试剂盒,其特征在于,所述鸡白痢沙门氏菌重组蛋白GroEL是由原核表达载体pET-28a-GroEL表达的,原核表达载体pET-28a-GroEL是由以下方法构建而成的:
1)设计一对含有酶切位点的特异性引物:
GroEL-F:CGCggatccATGGCAGCTAAAGACGTA BamH Ⅰ;
GroEL-R:CCGctcgagCATCATGCCGCCCATACC XhoⅠ;
2)利用上述特异性引物,以鸡白痢沙门氏菌基因组为模板,扩增GroEL基因片段,再利用各自引物上的限制性内切酶,分别对PCR扩增产物和pET-28a原核表达载体进行酶切,用T4DNA连接酶将扩增片段的酶切产物连接到pET-28a酶切产物上,构建pET-28a-GroEL载体,转化大肠杆菌DH5α感受态中,经酶切鉴定和测序鉴定,表明重组原核表达载体pET-28a-GroEL构建成功。
6.根据权利要求1所述的ELISA试剂盒,其特征在于,所述试剂盒内设有:封闭液、样品稀释液、洗涤液、显色液和终止液。
7.根据权利要求1-6任一项所述的ELISA试剂盒,其特征在于,所述试剂盒的使用方法为:
将待检血清或者蛋黄液按1:100比例经PBS稀释后加入抗体检测板中,每孔100μL,并同时设立好阴、阳性对照,37℃作用1小时;接着PBST洗三遍;用PBS将辣根过氧化物酶标记兔抗鸡IgG抗体按1:5000稀释,每孔100μL加入反应板中,37℃作用30分钟;接着PBST洗三遍;按每孔加入100μL显色液,37℃作用约15分钟后加入2M硫酸终止液终止反应,最后通过酶标仪检测,阴性平均值+2.58SD为临界值,大于临界值判为阳性,反之为阴性。
CN201410158723.4A 2014-04-18 2014-04-18 一种检测鸡白痢沙门氏菌抗体的elisa试剂盒 Active CN103995126B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201410158723.4A CN103995126B (zh) 2014-04-18 2014-04-18 一种检测鸡白痢沙门氏菌抗体的elisa试剂盒

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201410158723.4A CN103995126B (zh) 2014-04-18 2014-04-18 一种检测鸡白痢沙门氏菌抗体的elisa试剂盒

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN103995126A CN103995126A (zh) 2014-08-20
CN103995126B true CN103995126B (zh) 2015-10-14

Family

ID=51309347

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201410158723.4A Active CN103995126B (zh) 2014-04-18 2014-04-18 一种检测鸡白痢沙门氏菌抗体的elisa试剂盒

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN103995126B (zh)

Families Citing this family (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104458719B (zh) * 2014-11-25 2017-04-05 成都威尔诺生物科技有限公司 一种单组份tmb显色液的制备方法
CN106706904B (zh) * 2016-11-25 2018-06-29 湖北省农业科学院畜牧兽医研究所 鸡白痢抗体乳胶凝集负筛选检测试剂盒及制备方法和应用
CN108287244B (zh) * 2018-03-28 2020-03-24 深圳市伯劳特生物制品有限公司 热休克蛋白groEL在制备幽门螺杆菌检测的试剂中的应用
CN108709995B (zh) * 2018-06-06 2020-05-22 中国农业大学 一种同时检测禽白血病病毒抗体和鸡白痢沙门氏菌抗体的试剂盒
CN108776221B (zh) * 2018-06-06 2020-07-31 中国农业大学 一种禽白血病病毒抗体和鸡白痢沙门氏菌抗体同时检测的试剂盒
CN111537732B (zh) * 2020-04-28 2021-09-03 华中农业大学 鸡沙门菌SifA蛋白在制备用于检测鸡沙门菌抗体的ELISA抗体检测试剂盒中的应用
CN112649606A (zh) * 2020-12-16 2021-04-13 江苏立华牧业股份有限公司 一种基于鸡白痢沙门氏菌x蛋白包被的抗体elisa检测方法

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE19842609C2 (de) * 1998-09-17 2000-09-21 Diagnostik Gmbh Leipzig Lab Salmonellenantigengemisch und Kit zur Bestimmung von Antikörpern gegen Salmonellen
DE602006015491D1 (de) * 2005-10-04 2010-08-26 Defence Res & Dev Organisation Ein impfstoff
CN102198269A (zh) * 2011-04-13 2011-09-28 中国人民解放军疾病预防控制所 布鲁氏菌GroEL蛋白的应用以及重组表达布鲁氏菌GroEL蛋白的方法
CN103513036B (zh) * 2013-07-29 2016-01-20 徐静 沙门氏菌的cleia检测试剂盒及检测方法
CN103558388B (zh) * 2013-10-24 2015-06-10 江南大学 一种基于单克隆抗体的检测食品中鼠伤寒沙门氏菌的双抗体夹心法

Also Published As

Publication number Publication date
CN103995126A (zh) 2014-08-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN103995126B (zh) 一种检测鸡白痢沙门氏菌抗体的elisa试剂盒
CN105606826B (zh) 一种酶联免疫检测禽鹦鹉热衣原体的试剂盒
CN103756973B (zh) 一种草鱼呼肠孤病毒的间接elisa检测试剂盒
CN110041411B (zh) 稳定的非典型猪瘟病毒亚单位蛋白及其疫苗和制备方法和应用
CN101900731A (zh) 一种区别检测猪瘟疫苗免疫与野毒感染抗体的elisa试剂盒及其制备方法
CN103033626B (zh) 猪tgev抗体与猪pedv抗体胶体金试纸条
CN104262484A (zh) 一种抗非洲猪瘟病毒的特异性IgY抗体及制备方法和用途
CN102004150A (zh) 基于重组ul51蛋白的鸭瘟病毒抗体的检测方法
CN107936123B (zh) 一种猪传染性胃肠炎病毒融合蛋白及其制备方法和应用
CN110272910A (zh) 一种包括jev抗原基因的重组载体、重组菌株和递呈jev抗原的外膜囊泡及其应用
CN104152480A (zh) 布鲁氏菌L7/L12、Omp31、Rsα、sodC免疫蛋白共表达载体构建和表达方法
CN103614387B (zh) 优化的猪圆环病毒2型Cap蛋白基因及其重组质粒和应用
CN105541977A (zh) 鸭疫里默氏杆菌OmpH截段重组蛋白及制备方法与应用
CN101691582A (zh) 一种单增李斯特菌溶血素o的原核表达及纯化方法
CN111569056A (zh) 一种猪轮状病毒疫苗、制备该疫苗的抗原及其编码序列
CN103882051B (zh) 一种检测猪瘟病毒抗体的elisa方法及检测试剂盒
CN103983780B (zh) 检测鸽ⅰ型副粘病毒的胶体金免疫层析试纸条及制备方法
CN102662058B (zh) 一种用于羊泰勒虫病检测的间接elisa方法
CN104928302A (zh) 一株通过基因修饰以优化表达后的狂犬病病毒糖蛋白及其单克隆抗体和应用
CN103614329A (zh) 一种j亚群禽白血病dna疫苗的构建及应用
CN105950629A (zh) 一种原核表达载体的培养及其抗血清的制备方法
CN106397546A (zh) 一种o型口蹄疫病毒人工重组抗原及其制备与应用
CN102887949B (zh) 一种重组人朊蛋白hPrP及其制备方法和应用
CN104292310B (zh) 鸭瘟病毒UL15基因exonI重组蛋白及其制备方法和应用
CN103235128B (zh) 禽网状内皮组织增生病病毒和j亚群禽白血病病毒快速联检试纸条

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
C14 Grant of patent or utility model
GR01 Patent grant
TR01 Transfer of patent right
TR01 Transfer of patent right

Effective date of registration: 20220627

Address after: 510000 No. 9, Dongdi North Road, Xincheng Town, Xinxing County, Yunfu City, Guangdong Province

Patentee after: WENS FOODSTUFF GROUP Co.,Ltd.

Address before: 100193 No. 2 Old Summer Palace West Road, Beijing, Haidian District

Patentee before: CHINA AGRICULTURAL University