CN103667305A - 重组红鳍东方鲀干扰素γ蛋白的制备方法 - Google Patents

重组红鳍东方鲀干扰素γ蛋白的制备方法 Download PDF

Info

Publication number
CN103667305A
CN103667305A CN201310640811.3A CN201310640811A CN103667305A CN 103667305 A CN103667305 A CN 103667305A CN 201310640811 A CN201310640811 A CN 201310640811A CN 103667305 A CN103667305 A CN 103667305A
Authority
CN
China
Prior art keywords
preparation
interferon
fugu rubripes
bacterial
fugu
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN201310640811.3A
Other languages
English (en)
Inventor
王秀利
马普
刘洋
姜志强
仇雪梅
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Dalian Ocean University
Original Assignee
Dalian Ocean University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Dalian Ocean University filed Critical Dalian Ocean University
Priority to CN201310640811.3A priority Critical patent/CN103667305A/zh
Publication of CN103667305A publication Critical patent/CN103667305A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Images

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

本发明公开一种操作简便、成本低廉、重组蛋白纯度好、得率高、适应于工业化生产的重组红鳍东方鲀干扰素γ蛋白的制备方法,按照如下步骤进行:提取新鲜红鳍东方鲀肾脏总RNA并反转录进行第一链的cDNA的合成;以上述第一链的cDNA为模版进行RT-PCR扩增,上游引物NcoⅠ:5’-CATGCCATGGGCTCCTACATCCCAGTAGAAATG-3’;下游引物XhoⅠ:5’-CCGCTCGAGATGACCTCGAATCGACATCT-3’;建立克隆载体、表达载体、转化入表达菌内,培养菌株得到菌种;将所收集的菌种进行扩大培养,经IPTG诱导后收集菌体;将菌体破碎、裂解、纯化,收集纯化液。

Description

重组红鳍东方鲀干扰素γ蛋白的制备方法
技术领域
本发明属于生物基因工程技术领域,尤其涉及一种操作简便、成本低廉、重组蛋白纯度好、得率高、适应于工业化生产的重组红鳍东方鲀干扰素γ蛋白的制备方法。
背景技术
红鳍东方鲀(Fugu rubripes)在我国主要分布于黄海、渤海和东海,是近海底层肉食性鱼类,其肉味鲜美,具有很高的食用价值,在红鳍东方鲀的生殖腺和肝脏等内脏中产生河豚毒素,其高活性和高特异性的生物特征具有潜在的医药开发价值,在临床上具有广阔的前景。干扰素(interferon,IFN)是一类在机体受到病毒感染,或受核酸、细菌内毒素、促细胞分裂素等诱导时,由受体细胞分泌的、具有广谱抗病毒活性的蛋白质(主要是糖蛋白)。研究表明IFN通过细胞表面受体作用使细胞产生抗病毒蛋白,抑制病毒在宿主细胞中的复制。另外IFN还可增强自然杀伤细胞(NK细胞),巨噬细胞和T淋巴细胞的活力,从而起到免疫调节作用,增强抗病毒能力,对细胞生长和细胞分化也有很重要的调节活性。然而,从红鳍东方鲀中直接提取该蛋白的操作复杂、成本高、产量少,不能大规模产业化生产。
发明内容
本发明是为了解决现有技术所存在的上述技术问题,提供一种操作简便、成本低廉、重组蛋白纯度好、得率高、适应于工业化生产的重组红鳍东方鲀干扰素γ蛋白的制备方法。
本发明的技术解决方案是:一种重组红鳍东方鲀干扰素γ蛋白的制备方法,其特征在于按如下步骤进行:
a.  提取新鲜红鳍东方鲀肾脏总RNA并反转录进行第一链的cDNA的合成;
b.以上述第一链的cDNA为模版进行RT-PCR扩增,扩增所用引物如下:
上游引物NcoⅠ:5’- CATGCCATGGGCTCCTACATCCCAGTAGAAATG-3’
下游引物XhoⅠ:5’-CCGCTCGAGATGACCTCGAATCGACATCT-3’
c.电泳回收RT-PCR产物与克隆载体pMD19T连接并转化入大肠杆菌感受态细胞DH5α,在含氨苄青霉素的LB固体培养基上培养,通过蓝白斑筛选阳性克隆,选择501大小的条带进行回收;
d.用限制性内切酶NcoⅠ和XhoⅠ分别双酶切c步骤所回收产物的质粒和表达载体pET-32a(+),将得到的两种目的基因片断用DNA连接酶连接,转化入大肠杆菌感受态细胞DH5α进行培养并筛选提取重组表达质粒;
e.将所提取的重组表达质粒转化入大肠杆菌表达菌株BL21(DE3)内,培养菌株得到菌种;
f. 将所收集的菌种进行扩大培养,经IPTG诱导后收集菌体;
g. 将菌体破碎、裂解、纯化,收集纯化液。
所述RT-PCR反应条件为:94℃预变性5分钟后进行94℃变性30秒、58℃复性30秒、72℃延伸30秒的30个循环的扩增,72℃延伸7分钟后保存于4℃。
所述e步骤是将所提取的重组表达质粒转化入大肠杆菌表达菌株BL21(DE3)后,挑取单菌落接种于含有氨苄青霉素的5ml LB液体培养基过夜培养,而得到菌种。
所述f步骤是将所收集的菌种按1:100的比例接种于Amp LB液体培养基,37℃200转/分摇菌2.5小时,至OD600为0.4,所摇菌液加诱导剂IPTG至终浓度为0.5mM,37℃摇菌6小时,收集菌体。
所述g步骤是用磷酸盐缓冲液重悬f步骤所得菌体,用超声波破碎细菌并将细菌裂解液12000转,4℃离心20分钟,得上情并将上清上样于层析柱,用平衡液洗涤后加入300mM的咪唑洗脱,收集洗脱液。
本发明设计了针对干扰素γ蛋白编码序列的引物,以TRIzol Reagent提取新鲜红鳍东方鲀肾脏总RNA后进行RT-PCR扩增,RT-PCR产物与pMD19T载体连接得重组质粒,经双酶切后目的基因再与表达载体pET-32a (+)连接,获重组表达质粒并转化至大肠杆菌BL21(DE3)中;通过IPTG诱导实现了重组蛋白的可溶性表达。该表达质粒表达的融合蛋白带有组氨酸标签,将细胞破碎后取上清纯化,避免了样品的变性和复性,不但操作简单,降低了制作成本,更主要的是蛋白结构不受破坏;重组蛋白纯度好、得率高且不易降解,适应于工业化生产,为进一步研究红鳍东方鲀干扰素γ蛋白的功能奠定基础。
附图说明
图1 本发明实施例红鳍东方鲀肾脏总RNA的琼脂糖凝胶电泳分析图。
图2 本发明实施例红鳍东方鲀干扰素γ蛋白目的基因的琼脂糖凝胶电泳分析图。
图3 本发明实施例重组表达质粒的双酶切电泳鉴定图。 
图4 本发明实施例纯化柱洗脱组分的SDS-PAGE分析图。
图5本发明实施例重组表达质粒表达产物的SDS-PAGE分析图。
图6本发明实施例重组表达质粒诱导表达的蛋白印迹分析图。
具体实施方式
实施例:
a. 以TRIzol Reagent提取新鲜红鳍东方鲀肾脏总RNA并反转录进行第一链的cDNA的合成。红鳍东方鲀总RNA的琼脂糖凝胶电泳分析图如图1所示,图中1:Maker DL2000; 2、3:红鳍东方鲀总RNA电泳条带;
b. 以上述第一链cDNA进行PCR扩增,用PCR技术获得目的基因。
引物对的核苷酸序列为:
上游引物:5’-CATGCCATGGGCTCCTACATCCCAGTAGAAATG-3’
下游引物:5’-CCGCTCGAGATGACCTCGAATCGACATCT-3’
RT-PCR反应条件为:94℃预变性5分钟后进行94℃变性30秒,58℃复性30秒、72℃延伸30秒的30个循环的扩增,72℃延伸7分钟后保存于4℃,引物对由上海生物工程有限公司合成,划线部分分别为NcoⅠ酶切位点和XhoI 酶切位点。目的基因的琼脂糖凝胶电泳分析图如图2所示,图中1:Maker DL2000;2-4:红鳍东方鲀干扰素γ基因的RT-PCR产物;
c. PCR电泳回收产物与克隆载体pMD19T连接并转化入大肠杆菌感受态细胞DH5α,在含氨苄青霉素的LB固体培养基上培养通过蓝白斑法筛选阳性克隆,选择501bp大小的条带进行回收;
d. 用限制性内切酶NcoⅠ和XhoⅠ分别双酶切c步骤所提取的质粒和表达载体pET-32a(+),37℃作用2小时后,酶切产物用DNA胶回收试剂盒回收,pMD19T-IFNγ质粒酶切产物和载体酶切产物按1:10的摩尔比混合,T4 DNA连接酶(Takara公司)16℃过夜连接,转化大肠杆菌感受态细胞DH5α于37℃过夜培养。提取重组表达质粒pET32a- IFNγ;用NcoⅠ和XhoⅠ对重组表达质粒双酶切鉴定,鉴定结果如图3所示:图中1:Maker DL2000;2:pET32a-IFNγ质粒;2:pET32a-IFNγ质粒经NcoⅠ和 XhoⅠ双酶切产物。测序结果表明,所测序列与GeneBank中红鳍东方鲀干扰素γ编码序列一致,故初步确认所提取的重组表达质粒为红鳍东方鲀干扰素γ的编码序列;
e. 将所提取的重组表达质粒转化入大肠杆菌表达菌株BL21(DE3)内,培养菌株得菌液,挑取单菌落接种5ml Amp LB液体培养基过夜培养,即得到菌种;
f. 将所收集的菌种按1:100的比例接种于Amp LB液体培养基,37℃200转/分摇菌2.5小时,至OD600为0.4,所摇菌液加诱导剂IPTG至终浓度为0.5mM,37℃摇菌6小时,收集菌体;
g.用ProteinIsoTM Ni-NTA Resin纯化融合蛋白,具体操作步骤是用PBS重悬f步骤所得菌体,用超声波破碎细菌并将细菌裂解液12000转,4℃离心20分钟。将上清上样于层析柱,用平衡液洗涤后加入300mM的咪唑洗脱,收集洗脱液。
SDS-PAGE分析各收集液,其结果如图4所示:图中1:蛋白Marker;2-5:纯化蛋白部分。
实施例中未注明具体条件的实验方法,通常按照常规条件,例如Sambrook等分子克隆:实验室手册(New York:Cold Spring Harbor Laboratory Press,1989)中所述的条件,或按照制造厂商所建议的条件。
重组红鳍东方鲀干扰素γ(IFNγ)的鉴定:
1. SDS-PAGE电泳
配制12%的分离胶和5%的浓缩胶。将诱导前的样品和诱导后的样品各取20ml分别加入20ml 2×SDS loading buffer混匀,沸水煮10分钟,12000转/分离心10分钟,留取上清做SDS-PAGE。160 V恒压电泳1 h、考马斯亮蓝R250染色2小时、脱色液脱色。
观察,在37.835kDa处有明显条带出现,如图5所示,图中1-4 :pET32a-IFNγ诱导后表达蛋白;5:pET32a诱导后表达产物;6:蛋白Marker。
2. Western Blot鉴定
当SDS-PAGE电泳即将结束时,从SDS-PAGE胶上切下需要转膜的部分,切6张滤纸和1张硝酸纤维素膜(NC)。把硝酸纤维素膜浸没于去离子水的水面中,滤纸浸没于转移缓冲液中,平衡5分钟。按纸、膜、胶、纸的顺序从阳极到阴极摆放正确,连接电源,注意正负极。100mA接通电流,电转移1.5h。转移结束后,切断电源,从上至下拆卸装置,逐一拆去各层。在NC膜上标记正反面。将NC膜用PBS漂洗3次,每次5分钟,换封闭液漂洗30分钟。PBS漂洗2次后用TBST Buffer漂洗15分钟。然后加Anti-His Antibody(Anti-His Antibody为1:1000稀释),孵育1小时。用PBS漂洗2次,每次10分钟。用1:2000稀释的HRP标记的羊抗鼠酶标二抗孵育30分钟。取出NC膜,用PBS漂洗3次,每次15分钟。将NC膜放在显色液中避光显色(一般1-5min)。观察结果如图6所示,图中1:蛋白Marker;2:诱导后的pET32a-IFNγ,和预期大小一致; 3:对照组(未诱导的pET32a-IFNγ)。
序列表
 
<110> 大连海洋大学
 
<120> 重组红鳍东方鲀干扰素γ蛋白的制备方法
 
<160> 2
 
<210> 1
<211> 33
<212> DNA
<213>人工序列
 
<220>
<223>引物
 
<400>1
CATGCCATGGGCTCCTACATCCCAGTAGAAATG                 33
 
<210> 2
<211> 29
<212> DNA
<213>人工序列
 
<220>
<223>引物
 
<400>2
CCGCTCGAGATGACCTCGAATCGACATCT                       29

Claims (5)

1.一种重组红鳍东方鲀干扰素γ蛋白的制备方法,其特征在于按如下步骤进行:
a. 提取新鲜红鳍东方鲀肾脏总RNA并反转录进行第一链的cDNA的合成;
b.以上述第一链的cDNA为模版进行RT-PCR扩增,扩增所用引物如下:
上游引物NcoⅠ:5’- CATGCCATGGGCTCCTACATCCCAGTAGAAATG-3’
下游引物XhoⅠ:5’-CCGCTCGAGATGACCTCGAATCGACATCT-3’
c.电泳回收RT-PCR产物与克隆载体pMD19T连接并转化入大肠杆菌感受态细胞DH5α,在含氨苄青霉素的LB固体培养基上培养,通过蓝白斑筛选阳性克隆,选择501大小的条带进行回收;
d.用限制性内切酶NcoⅠ和XhoⅠ分别双酶切c步骤所回收产物的质粒和表达载体pET-32a(+),将得到的两种目的基因片断用DNA连接酶连接,转化入大肠杆菌感受态细胞DH5α进行培养并筛选提取重组表达质粒;
e.将所提取的重组表达质粒转化入大肠杆菌表达菌株BL21(DE3)内,培养菌株得到菌种;
f. 将所收集的菌种进行扩大培养,经IPTG诱导后收集菌体;
g. 将菌体破碎、裂解、纯化,收集纯化液。
2.根据权利要求1所述重组红鳍东方鲀干扰素γ蛋白的制备方法,其特征在于:所述RT-PCR反应条件为:94℃预变性5分钟后进行94℃变性30秒、58℃复性30秒、72℃延伸30秒的30个循环的扩增,72℃延伸7分钟后保存于4℃。
3. 根据权利要求2所述的重组红鳍东方鲀干扰素γ蛋白的制备方法,其特征在于:所述e步骤是将所提取的重组表达质粒转化入大肠杆菌表达菌株BL21(DE3)后,挑取单菌落接种于含有氨苄青霉素的5ml LB液体培养基过夜培养,而得到菌种。
4.根据权利要求3所述的重组红鳍东方鲀干扰素γ蛋白的制备方法,其特征在于:所述f步骤是将所收集的菌种按1:100的比例接种于Amp LB液体培养基,37℃200转/分摇菌2.5小时,至OD600为0.4,所摇菌液加诱导剂IPTG至终浓度为0.5mM,37℃摇菌6小时,收集菌体。
5.根据权利要求4所述的重组红鳍东方鲀干扰素γ蛋白的制备方法,其特征在于:所述g步骤是用磷酸盐缓冲液重悬f步骤所得菌体,用超声波破碎细菌并将细菌裂解液12000转,4℃离心20分钟,得上情并将上清上样于层析柱,用平衡液洗涤后加入300mM的咪唑洗脱,收集洗脱液。
CN201310640811.3A 2013-12-04 2013-12-04 重组红鳍东方鲀干扰素γ蛋白的制备方法 Pending CN103667305A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201310640811.3A CN103667305A (zh) 2013-12-04 2013-12-04 重组红鳍东方鲀干扰素γ蛋白的制备方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201310640811.3A CN103667305A (zh) 2013-12-04 2013-12-04 重组红鳍东方鲀干扰素γ蛋白的制备方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN103667305A true CN103667305A (zh) 2014-03-26

Family

ID=50306077

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201310640811.3A Pending CN103667305A (zh) 2013-12-04 2013-12-04 重组红鳍东方鲀干扰素γ蛋白的制备方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN103667305A (zh)

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104628842A (zh) * 2014-11-28 2015-05-20 大连海洋大学 重组红鳍东方鲀干扰素调节因子2蛋白及制备方法
CN106434685A (zh) * 2016-11-28 2017-02-22 大连海洋大学 制备重组红鳍东方鲀白介素2蛋白的基因及方法
CN106701775A (zh) * 2016-12-28 2017-05-24 大连海洋大学 制备重组红鳍东方鲀IFN‑γ蛋白的基因及方法
CN106892976A (zh) * 2017-02-14 2017-06-27 华南农业大学 一种重组鸡干扰素λ(rChIFN‑λ)基因的克隆表达及其制备方法和应用
CN110551729A (zh) * 2019-07-26 2019-12-10 中山大学 一种红鳍东方鲀白介素15受体基因IL-15Rα及其应用

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102180961A (zh) * 2011-03-17 2011-09-14 中山大学 黑青斑河鲀干扰素IFNγ2及其制备方法和应用
CN102180962A (zh) * 2011-03-17 2011-09-14 中山大学 黑青斑河鲀干扰素IFNγ1及其制备方法和应用

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102180961A (zh) * 2011-03-17 2011-09-14 中山大学 黑青斑河鲀干扰素IFNγ2及其制备方法和应用
CN102180962A (zh) * 2011-03-17 2011-09-14 中山大学 黑青斑河鲀干扰素IFNγ1及其制备方法和应用

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
JUN ZOU等: "Identification of an interferon gamma homologue in Fugu, Takifugu rubripes", 《FISH & SHELLFISH IMMUNOLOGY》, 31 December 2004 (2004-12-31), pages 403 - 409 *

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104628842A (zh) * 2014-11-28 2015-05-20 大连海洋大学 重组红鳍东方鲀干扰素调节因子2蛋白及制备方法
CN106434685A (zh) * 2016-11-28 2017-02-22 大连海洋大学 制备重组红鳍东方鲀白介素2蛋白的基因及方法
CN106701775A (zh) * 2016-12-28 2017-05-24 大连海洋大学 制备重组红鳍东方鲀IFN‑γ蛋白的基因及方法
CN106892976A (zh) * 2017-02-14 2017-06-27 华南农业大学 一种重组鸡干扰素λ(rChIFN‑λ)基因的克隆表达及其制备方法和应用
CN110551729A (zh) * 2019-07-26 2019-12-10 中山大学 一种红鳍东方鲀白介素15受体基因IL-15Rα及其应用

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN103667305A (zh) 重组红鳍东方鲀干扰素γ蛋白的制备方法
CN105358694A (zh) 来自巴斯德毕赤酵母的酵母启动子
Wang et al. Codon preference optimization increases prokaryotic cystatin C expression
CN105358706A (zh) 用于蛋白质表达的酵母启动子
CN102757976B (zh) 消除甲醇诱导型启动子单一甲醇碳源依赖性的方法
CN101200718B (zh) 类人胶原蛋白基因、其不同重复数的同向串联基因、含有串联基因的重组质粒及制备方法
JPWO2007026617A1 (ja) 発現ベクター、それを導入した形質転換体、および異種タンパク質の製造方法
Wang et al. Enhancement of recombinant BmK AngM1 production in Pichia pastoris by regulating gene dosage, co-expressing with chaperones and fermenting in fed-batch mode
CN110093338A (zh) 海带γ型碳酸酐酶基因Sjγ-CA2及其编码蛋白和应用
CN113136349A (zh) 一种高效表达不同来源肌红蛋白/血红蛋白毕赤酵母重组菌株的构建
CN102180961A (zh) 黑青斑河鲀干扰素IFNγ2及其制备方法和应用
CN102899339A (zh) 一种碱性木聚糖酶xynHBs核苷酸优化序列及其高效表达方法
CN110407920A (zh) 一种鲤疱疹病毒ⅱ型衣壳蛋白orf66的原核表达、蛋白纯化方法
CN104628842A (zh) 重组红鳍东方鲀干扰素调节因子2蛋白及制备方法
CN114196688A (zh) 在酵母中表达原核碱性磷酸酶
CN101698675A (zh) 重组副溶血弧菌鞭毛蛋白及制备方法
CN101864424B (zh) 重组4A β 15在毕赤氏酵母中的高效分泌表达及纯化方法
EP3841210A2 (en) Tetrahymena thermophila artificial chromosome 1 (ttac1) and its use for the production of recombinant proteins
CN101698674A (zh) 重组副溶血弧菌外膜蛋白及制备方法
CN106755000A (zh) 一种优化的谷氨酰胺转氨酶基因和前导序列及其分泌表达
CN115925873B (zh) 一种长江鲟促食欲因子胃动素成熟肽及其应用
CN103965304B (zh) 一种产油酵母脂滴蛋白及其编码基因与应用
CN114774421B (zh) 运动发酵单胞菌内源性启动子突变体
CN106754980A (zh) Pcv2型衣壳蛋白基因、表达菌株及可溶性表达方法
CN107418955B (zh) 一种斜带石斑鱼ccr12的基因克隆和原核表达、纯化方法

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
C02 Deemed withdrawal of patent application after publication (patent law 2001)
WD01 Invention patent application deemed withdrawn after publication

Application publication date: 20140326