CN103228673A - 在体内具有抗肿瘤活性的抗人trop-2 抗体 - Google Patents

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Abstract

本发明提供与hTROP-2特异性反应且在体内具有抗肿瘤活性的抗体、产生该抗体的杂交瘤、该抗体与药剂的复合物、肿瘤的诊断用或治疗用药物组合物、肿瘤的检测方法、肿瘤的检测用或诊断用试剂盒。

Description

在体内具有抗肿瘤活性的抗人TROP-2 抗体
技术领域
本发明涉及具有抗肿瘤活性的抗人TROP-2抗体、特别涉及在体内具有抗肿瘤活性的抗人TROP-2抗体。此外，本发明涉及产生该抗体的杂交瘤、及该抗体的用途。
背景技术
人TROP-2（Tacstd2，GA733-1，EGP-1）（以下也记作hTROP-2。）为已知在各种上皮细胞癌肿中过度表达的、由323氨基酸残基（参照序列号2）构成的1次跨膜型的1型细胞膜蛋白。以前即已明确，存在与人滋养层细胞（trophoblasts）和癌细胞所表现的免疫抵抗有关的细胞膜蛋白（非专利文献1），已经鉴定出一种被抗人绒毛膜癌细胞株BeWo的细胞膜蛋白的小鼠单克隆抗体（162-25.3、162-46.2）识别的抗原分子，为在人滋养层细胞（trophoblasts）中表达的分子之一，被命名为Trop-2（非专利文献2）。此后，相同分子被其它研究者发现，将被免疫胃癌细胞SW948而得的小鼠单克隆抗体GA733识别的称为肿瘤抗原GA733-1（非专利文献3）、将被非小细胞肺癌的细胞免疫而获得的小鼠单克隆抗体RS7-3G11识别的称为上皮糖蛋白（epithelial/carcinoma antigen，EGP-1）（非专利文献4），1995年克隆了Trop-2的基因，确认了它们为同一分子（非专利文献5）。此外，阐明了其在癌细胞中具有放大细胞内钙信号的作用（非专利文献6），也被称为肿瘤相关钙信号传导蛋白（tumor-associated calcium signal transducer）2，TACSTD2。
hTROP-2基因定位在染色体1p32上，与具有约50％同源性的GA733-2（还作为TACSTD1、上皮糖蛋白EGP-2、EpCAM及Trop-1而已知）一起构成TACSTD基因家族（非专利文献7）。hTROP-2蛋白（323氨基酸残基；序列号2）具有约36kD的分子量，包含亲水性的信号肽（第1～26位的氨基酸）、细胞外结构域（第27～274位的氨基酸）、细胞跨膜结构域（第275～297位的氨基酸）以及细胞内结构域（第298～323位的氨基酸）。细胞外结构域中存在4个非均质N结合糖基化位点，添加糖链后，表观分子量增加11～13KD（非专利文献5）。TACSTD基因家族中，细胞外结构域具有特征性的甲状腺球蛋白（TY）重复序列，通常认为其与癌细胞的增殖、浸润、转移有关。
截至目前，尚未鉴定出hTROP-2的生理学上的配体，分子功能尚未阐明，但已经公开了其在肿瘤细胞中传递钙信号（非专利文献6），此外，由于细胞内丝氨酸303号残基通过属于Ca2+依赖性蛋白激酶的蛋白激酶C而磷酸化（非专利文献4）以及细胞内结构域具有PIP2结合序列，表明其具有肿瘤细胞中的信号传递功能（非专利文献8）。
通过免疫组化（IHC）及流式细胞术研究等体外诊断研究，已经报道了hTROP-2在胃癌、肺癌、大肠癌、卵巢癌、乳腺癌、前列腺癌、胰癌、肝癌、食道癌等多种上皮源癌肿中过度表达。与此相对，显示出正常组织中的表达则仅限于上皮区域的细胞，表达水平也比癌肿中低，表明TROP-2与肿瘤形成有关（专利文献1～3和9）。
此外，在作为临床检体的生物学标志的hTROP-2表达水平解析中，显示其与大肠癌（非专利文献10及11）、胰脏癌（非专利文献12）、口腔癌（非专利文献13）的恶性度有关，在hTROP-2高表达时，癌的转移、复发频率显著高。此外，在使用cDNA微阵列技术的大规模基因表达分析中，已经鉴定出，其为与正常的卵巢上皮相比在卵巢的重度乳头状癌中最为高度过度表达的基因组之一（非专利文献14）。
进而，近年通过使用大肠癌细胞的模型证明了hTROP-2在肿瘤形成中的重要作用（非专利文献15）。hTROP-2的表达促进肿瘤细胞的锚着非依赖性细胞增殖，是移植到免疫缺陷小鼠皮下的癌细胞的肿瘤形成及增殖所必需的，表明其可能是功能性肿瘤抗原，可能成为新的治疗靶标。
截至目前，已经报告了几种抗hTROP-2抗体的抗肿瘤效果的研究结果。就RS7抗体（专利文献1)而言，使用经放射标记的抗体在体内模型中进行了试验，在裸小鼠异种移植模型中显示出抗肿瘤活性，但没有报告仅抗体（裸抗体）时的抗肿瘤效果。
此外，报告了与细胞毒素结合的抗hTROP-2单克隆抗体BR110（专利文献2）对于人癌细胞株H3619、H2987、MCF-7、H3396及H2981的体外实验中的细胞毒性，但体内数据方面，对于裸抗体或免疫复合BR110的体内数据则均未公开。
近年还报道了：由通过用人卵巢癌组织免疫小鼠而得的杂交瘤细胞株AR47A6.4.2或AR52A301.5产生的分离单克隆抗体与hTROP-2结合，初次以裸抗体形式显示体外的细胞毒性，并且在裸小鼠异种移植模型中显示抗肿瘤活性（专利文献3和4）。但是，这些文献中，在移植了胰脏癌细胞株BxPC-3及PL45、前列腺癌细胞PC-3、乳腺癌细胞MCF-7以及大肠癌细胞Colo205的小鼠异种移植模型中，虽然仅抗体时显示出抗肿瘤效果，但是除了在BxPC-3细胞移植中显示出治疗效果以外，均止步于通过抗体的预防性投与而部分地（约40～60%）抑制肿瘤形成及增殖，此外，所需抗体量也为20mg/kg左右，为非常高的用量。
由以上的现有技术，虽然已经明确抗hTROP-2抗体可能作为抗肿瘤抗体，但同时所有的抗hTROP-2抗体均并非是以裸抗体形式以抗体单独在体内显示出抗肿瘤效果，表明对hTROP-2的作用根据抗体的结合位点、亲和性、单克隆抗体谱而不同。
专利文献1：美国专利第6653104号
专利文献2：美国专利第5840854号
专利文献3：美国专利第7420040号
专利文献4：美国专利第7420041号
非专利文献1：Faulk WP，et al.，Proc.Natl.Acad.Sci.U SA，75（4），p.1947-1951（1978）
非专利文献2：Lipinski M，et al.，Proc.Natl.Acad.Sci.U SA，78（8），p.5147-5150（1981）
非专利文献3：Linnenbach AJ，et al.，Proc.Natl.Acad.Sci.U S A，86（1），p.27-31（1989）
非专利文献4：Basu A，et al.，Int.J.Cancer，62（4），p.472-479（1995）
非专利文献5：Fornaro M，et al.，Int.J.Cancer，62（5），p.610-618（1995）
非专利文献6：Ripani E，et al.，Int.J.Cancer，76（5），p.671-676（1998）
非专利文献7：Calabrese G，et al.，Cell Genet.，92（1-2），p.164-165（2001）
非专利文献8：El Sewedy Tet al.，Int.J.Cancer，75（2），p.324-330（1998）
非专利文献9：Cubas R，et al.，Biochim.Biophys.Acta.，1796（2），p.309-314（2009）
非专利文献10：Ohmachi Tet al.，Clin.Cancer Res.，12（10），p.3057-3063（2006）
非专利文献11：Fang YJ，et al.，Int.J.Colorectal Dis.，24（8），p.875-884（2009）
非专利文献12：Fong D，et al.，Br.J.Cancer，99（8），p.1290-1295（2008）
非专利文献13：Fong D，et al.，Mod.Pathol.，21（2），p.186-191（2008）
非专利文献14：Santin AD，et al.，Int.J.Cancer，112（1），p.14-25（2004）
非专利文献15：Wang J，et al.，Mol.Cancer Ther.，7（2），p.280-285（2008）
发明内容
在这样的状况下，期望开发在体内具有高抗肿瘤活性的抗人hTROP-2抗体（抗人hTROP-2单克隆抗体），特别是以裸抗体形式在仅抗体时即具有在体内的抗肿瘤效果且以低用量具有该效果的抗人hTROP-2抗体等。
本发明是考虑了上述状况而作出的，提供以下所示的抗人hTROP-2抗体（抗人hTROP-2单克隆抗体）、产生该抗体的杂交瘤、该抗体的片段、该抗体等与药剂的复合物（immunoconjugate）、肿瘤的诊断用或治疗用药物组合物、肿瘤的检测方法、肿瘤的检测用或诊断用试剂盒等。
（1）在体内具有抗肿瘤活性的抗人TROP-2的抗体。
作为上述（1）的抗体，可以列举出例如以5～20mg/kg体重的投与量显示50％以上的肿瘤生长抑制活性的抗体、用于显示前述肿瘤生长抑制活性的投与次数至多为每周1次的抗体、以10mg/kg体重的单次投与显示50％以上的肿瘤生长抑制活性的抗体、对2种以上人肿瘤细胞株具有抗肿瘤活性的抗体、解离常数（Kd值）为1.0×10-10M以下的抗体等。这里，作为肿瘤可以列举出例如选自人胰癌、人前列腺癌、人大肠癌及人乳腺癌组成的组中的至少1种，特别是人胰癌；此外，作为肿瘤，还可以列举出复发癌及转移癌。此外，作为肿瘤细胞株，可以列举出例如选自人胰癌细胞株PK-59、人胰癌细胞株BxPC-3、人胰癌细胞株KP-3L、人胰癌细胞株KP-2、人胰癌细胞株PK-1、人胰癌细胞株PK-45H、人胰癌细胞株PK-45P、人胰癌细胞株TCC-PAN2、人胰癌细胞株SUIT-2、人大肠癌细胞株CACO-2、人大肠癌细胞株SW480、人大肠癌细胞株DLD-1、人大肠癌细胞株HCT116、人乳腺癌细胞株JIMT-1、人乳腺癌细胞株HCC1143、人乳腺癌细胞株MCF-7、人前列腺癌细胞株DU145及人前列腺癌细胞株PC-3组成的组中的至少2种，特别是人胰癌细胞株PK-59及人胰癌细胞株BxPC-3。
作为上述（1)的抗体，可以列举出例如：抗体的H链V区域的CDR1～3的氨基酸序列分别依次为序列号36～38所示的氨基酸序列、和/或抗体的L链V区域的CDR1～3的氨基酸序列分别依次为序列号41～43所示的氨基酸序列的抗体；
抗体的H链V区域的CDR1～3的氨基酸序列分别依次为序列号46～48所示的氨基酸序列、和/或抗体的L链V区域的CDR1～3的氨基酸序列分别依次为序列号51～53所示的氨基酸序列的抗体；
抗体的H链V区域的CDR1～3的氨基酸序列分别依次为序列号56～58所示的氨基酸序列、和/或抗体的L链V区域的CDR1～3的氨基酸序列分别依次为序列号61～63所示的氨基酸序列的抗体；及
抗体的H链V区域的CDR1～3的氨基酸序列分别依次为序列号66～68所示的氨基酸序列、和/或抗体的L链V区域的CDR1～3的氨基酸序列分别依次为序列号71～73所示的氨基酸序列的抗体等。
作为上述（1）的抗体，可以列举出例如单克隆抗体。
作为上述（1）的抗体，可以列举出例如基因重组抗体，具体而言，可以列举出嵌合抗体、人源化抗体或人抗体（humanantibody）。
这里，作为上述嵌合抗体，可以列举出：例如H链V区域的氨基酸序列包含序列号35所示的氨基酸序列、和/或L链V区域的氨基酸序列包含序列号40所示的氨基酸序列的抗体；
H链V区域的氨基酸序列包含序列号45所示的氨基酸序列、和/或L链V区域的氨基酸序列包含序列号50所示的氨基酸序列的抗体；
H链V区域的氨基酸序列包含序列号55所示的氨基酸序列、和/或L链V区域的氨基酸序列包含序列号60所示的氨基酸序列的抗体；及
H链V区域的氨基酸序列包含序列号65所示的氨基酸序列、和/或L链V区域的氨基酸序列包含序列号70所示的氨基酸序列的抗体等。
（2）由保藏号为FERM BP-11251、FERM BP-11252、FERMBP-11253、FERM BP-11346或FERM BP-11254的杂交瘤产生的、抗人TROP-2的单克隆抗体。
作为上述（1）和（2）的抗体，可以列举出例如：与由保藏号为FERM BP-11251、FERM BP-11252、FERM BP-11253、FERM BP-11346或FERM BP-11254的杂交瘤产生的单克隆抗体所结合的位点结合的抗体，及与包含选自下列区域组成的组中的至少1种（例如任意1种）区域的部分结合的抗体，所述区域为：包含序列号2所示的人TROP-2的氨基酸序列中的第43位～第65位的氨基酸的区域、包含序列号2所示的人TROP-2的氨基酸序列中的第152位～第165位的氨基酸的区域、包含序列号2所示的人TROP-2的氨基酸序列中的第171位～第183位的氨基酸的区域、包含序列号2所示的人TROP-2的氨基酸序列中的第109位～第120位的氨基酸的区域、包含序列号2所示的人TROP-2的氨基酸序列中的第43位～第56位的氨基酸的区域、及包含序列号2所示的人TROP-2的氨基酸序列中的第193位～第206位的氨基酸的区域。
（3）来源于上述（1)或（2）的抗体的抗体片段。
作为上述（3）的抗体片段，可以列举出例如：包含序列号36～38所示的氨基酸序列、和/或序列号41～43所示的氨基酸序列的片段，例如包含序列号35所示的氨基酸序列、和/或序列号40所示的氨基酸序列的片段；
包含序列号46～48所示的氨基酸序列、和/或序列号51～53所示的氨基酸序列的片段，例如包含序列号45所示的氨基酸序列、和/或序列号50所示的氨基酸序列的片段；
包含序列号56～58所示的氨基酸序列、和/或序列号61～63所示的氨基酸序列的片段，例如包含序列号55所示的氨基酸序列、和/或序列号60所示的氨基酸序列的片段；及
包含序列号66～68所示的氨基酸序列、和/或序列号71～73所示的氨基酸序列的片段，例如包含序列号65所示的氨基酸序列、和/或序列号70所示的氨基酸序列的片段等。
（4）产生上述（1）或（2）的抗体的杂交瘤。
（5）保藏号为FERM BP-11251、FERM BP-11252、FERMBP-11253、FERM BP-11346或FERM BP-11254的产生抗人TROP-2的单克隆抗体的杂交瘤。
（6）一种抗体－药剂复合物，其包含上述（1）或（2）的抗体以及具有抗肿瘤活性和/或细胞杀伤活性的物质。
（7）一种抗体片段－药剂复合物，其包含上述（3）的抗体片段以及具有抗肿瘤活性和/或细胞杀伤活性的物质。
在上述（6）和（7）的复合物中，作为肿瘤，可以列举出例如选自人胰癌、人前列腺癌、人大肠癌及人乳腺癌组成的组中的至少1种，特别是人胰癌，此外，作为肿瘤，还可以列举出复发癌及转移癌。
（8）一种药物组合物，其含有选自上述（1）和（2）的抗体、上述（3）的抗体片段、以及上述（6）和（7）的复合物组成的组中的至少1种。
作为上述（8）的组合物，可以列举出例如用于肿瘤的治疗的组合物，特别是没有体重减少的副作用的组合物，此外，还可以列举出用于肿瘤的诊断的组合物。这里，作为肿瘤，可以列举出例如选自人胰癌、人前列腺癌、人大肠癌及人乳腺癌组成的组中的至少1种，特别是人胰癌，此外，作为肿瘤，还可以列举出复发癌及转移癌。
（9）一种肿瘤治疗剂，其包含选自上述（1）和（2）的抗体、上述（3）的抗体片段、以及上述（6）和（7）的复合物组成的组中的至少1种。
作为上述（9）的治疗剂，可以列举出例如没有体重减少的副作用的治疗剂。
（10）一种肿瘤诊断剂，其包含选自上述（1）和（2）的抗体、上述（3）的抗体片段、以及上述（6）和（7）的复合物组成的组中的至少1种。
在上述（9）的治疗剂及上述（10）的诊断剂中，作为肿瘤，可以列举出例如选自人胰癌、人前列腺癌、人大肠癌及人乳腺癌组成的组中的至少1种，特别是人胰癌，此外，作为肿瘤，还可以列举出复发癌及转移癌。
（11）一种肿瘤检测方法，其特征在于，使选自上述（1）和（2）的抗体、上述（3）的抗体片段、以及上述（6）和（7）的复合物组成的组中的至少1种与由生物体采集的试样反应，并检测发生反应的抗体和/或抗体片段的信号。
在上述（11）的方法中，作为肿瘤，可以列举出例如选自人胰癌、人前列腺癌、人大肠癌及人乳腺癌组成的组中的至少1种，特别是人胰癌，此外，作为肿瘤，还可以列举出复发癌及转移癌。
（12）一种肿瘤的治疗用、诊断用或检测用试剂盒，其包含选自上述（1）和（2）的抗体、上述（3）的抗体片段、以及上述（6）和（7）的复合物组成的组中的至少1种。
在上述（12）的试剂盒中，作为肿瘤，可以列举出例如选自人胰癌、人前列腺癌、人大肠癌及人乳腺癌组成的组中的至少1种，特别是人胰癌，此外，作为肿瘤，还可以列举出复发癌及转移癌。
附图说明
图1为表示抗hTROP-2单克隆抗体（K5-70）的抗原亲和性（Kd：解离常数）测定的图。Abt：抗体（总计），Agf：抗原（游离）
图2为表示产生抗hTROP-2单克隆抗体的杂交瘤培养上清的、与HuH-7细胞（TROP-2阴性）和HuH-7-hTROP-2细胞的反应性的图。涂成黑色的柱状图表示HuH-7细胞，黑色线的柱状图表示HuH-7-hTROP-2细胞。
图3是表示抗hTROP-2单克隆抗体的、与在细胞表面表达内源性hTROP-2的人胰脏癌细胞株（PK-59细胞）的反应性的图。涂成黑色的柱状图表示仅二抗（PE标记抗小鼠IgG），黑色线的柱状图表示与各抗hTROP-2单克隆抗体反应。
图4是表示抗hTROP-2单克隆抗体的、在细胞表面表达内源性hTROP-2的人胰脏癌细胞株（BxPC-3细胞）的反应性的图。涂成黑色的柱状图表示仅二抗（PE标记抗小鼠IgG）、黑色线的柱状图表示与各抗hTROP-2单克隆抗体反应。
图5是表示抗hTROP-2单克隆抗体（K5-70）与人胰脏癌细胞株的反应性的图。涂成黑色的柱状图表示仅二抗（PE标记抗小鼠IgG）、黑色线的柱状图表示与抗hTROP-2单克隆抗体反应。
图6是表示抗hTROP-2单克隆抗体（K5-70）与人大肠癌细胞株（Colo320，CACO2，SW480，DLD1，CW2，HCT116），人乳腺癌（JIMT-1，HCC1143），人前列腺癌细胞株（PC-3，DU145）的反应性的图。涂成黑色的柱表示仅二抗（PE标记抗小鼠IgG），黑色线的柱状图表示与抗hTROP-2单克隆抗体反应。
图7是调查抗hTROP-2单克隆抗体与小鼠TROP-2的交叉反应性的图。细胞使用的是在CHO-K1细胞中瞬时表达小鼠TROP-2基因的细胞，作为阳性对照抗体，使用的是与小鼠TROP-2显示交叉性的T2-102抗体（小鼠IgG1）。涂成黑色的柱表示仅二抗（PE标记抗小鼠IgG），黑色线的柱状图表示与各抗hTROP-2单克隆抗体反应。
图8是调查抗hTROP-2单克隆抗体与人EpCAM/TROP-1的交叉反应性的图。细胞使用的是在CHO-K1细胞中瞬时表达人EpCAM/TROP-1基因的细胞，作为阳性对照抗体，使用的是PE标记抗人EpCAM单克隆抗体（Becton，Dickinson andCompany）。涂成黑色的柱表示仅二抗（PE标记抗小鼠IgG），黑色线的柱状图表示与各抗hTROP-2单克隆抗体反应。
图9是表示抗hTROP-2抗体（T6-16，T5-86，K5-70，K5-107）的人胰脏癌细胞株（PK-59细胞）的细胞增殖抑制活性的图。mIgG表示对照抗体（小鼠IgG），YY01：市售的抗hTROP-2抗体（Santacruz。白色柱：0μg/mL，灰色柱：0.1μg/mL,黑色柱：1μg/mL。以相对于不添加抗体（0μg/mL）的值的比例来表示。误差棒表示标准偏差。*P<0.05，**P<0.01（利用学生t检验）
图10为表示抗hTROP-2抗体（T6-16，K5-70）的人胰脏癌细胞株（PK-59细胞）的划痕检测的图。
A.表示PK-59细胞的划痕区域的照片的代表例。0天：表示刚划痕后的代表例。mIgG（1天）：划痕后在培养基中添加对照抗体（小鼠IgG、1μg/mL）的1天后（24小时后）的照片。K5-70（1天）：表示划痕后在培养基中添加K5-70抗体（1μg/mL）的1天后（24小时后）的照片。T6-16（1天）：表示划痕后在培养基中添加T6-16抗体（1μg/mL）的1天后（24小时后）的照片。照片中所示箭头表示划痕区域的宽度。
B.通过图像解析软件（Scion Image）解析划痕区域的面积，以该值为基础并将对照mIgG添加组0天设为基准值1而算出其它样品各种值。
*P<0.05，**P<0.01（利用学生t检验）
图11为人胰脏癌细胞株PK-59细胞的干细胞标志的FACS的图。A：为表示PK-59细胞的EpCAM表达的FACS的图。涂成黑色的柱表示仅二抗（PE标记抗小鼠IgG），黑色线表示与抗人EpCAM抗体（Becton，Dickinson and Company）反应时的柱状图。B、C：表示PK-59细胞的P-glycoprotein/MCR1（B）或ABCG2（C）的表达的FACS的图。蓝色的柱状图表示仅二抗，红色的柱状图表示与抗人P-糖蛋白/MDR1抗体（BDBIOSCIENCES PHARMINGEN）（B）、抗人ABCG2抗体（BDBIOSCIENCES PHARMINGEN）（C）反应的情况。D：为使用作为胰脏癌干细胞标志的FITC标记抗人CD24抗体（BDPharmingen）和PE标记抗人CD44抗体（BD Pharmingen）对PK-59细胞进行二重染色的FACS图。D图中的数字表示各组分的细胞的存在比率。
图12为在使用PK-59细胞的异种移植治疗模型中对新的抗hTROP-2单克隆抗体克隆K5-70（小鼠IgG2a）的抗肿瘤活性进行评价的图。
A：表示对照组（小鼠IgG）和K5-70投与组的肿瘤经时生长（平均值±标准偏差）。箭头表示抗体投与期间。*P<0.05，**P<0.01（利用学生t检验）
B：是在A的试验中对第21天（21天）（实验最后一天）时各小鼠的肿瘤重量作图而得的图。各曲线上所示的数值为平均值±标准偏差。**P<0.01（利用学生t检验）
图13是在使用了PK-59细胞的异种移植治疗模型中对A.克隆K5-107，B.克隆T6-16，C.克隆K5-116-2-1的抗肿瘤活性进行评价的图。●表示对照组（小鼠IgG），○表示抗hTROP-2抗体投与组。图中的箭头表示抗体投与期间，各曲线上所示的数值为平均值±标准偏差。*P<0.05（利用学生t检验）
图14为在使用PK-59细胞的异种移植预防模型中对A.克隆K5-70、B.克隆T6-16及C.克隆K5-116-2-1的抗肿瘤活性进行评价的图。●表示对照组（小鼠IgG），○表示抗hTROP-2抗体投与组。图中的箭头表示抗体投与期间，各曲线上所示的数值为平均值±标准偏差。**P<0.01（利用学生t检验）
图15为在使用BxPC-3细胞的异种移植预防及治疗模型中对克隆K5-70的抗肿瘤活性进行评价的图。A：表示在预防模型中对照组（小鼠IgG）和K5-70投与组的肿瘤经时生长（平均值±标准偏差）。箭头表示抗体投与期间。**P<0.01（利用学生t检验）B：表示在治疗模型中对照组（小鼠IgG）和K5-70投与组的肿瘤经时生长（平均值±标准偏差）。箭头表示抗体投与期间。*P<0.05（利用学生t检验）
图16为表示在使用PK-59细胞的异种移植预防模型中克隆K5-70的用量依赖性的抗肿瘤活性的图。肿瘤体积以平均值±标准偏差来表示。
A：表示对照组（小鼠IgG）和各用量时的K5-70投与组的肿瘤经时生长（平均值±标准偏差）。箭头表示抗体投与期间。*P<0.05（利用学生t检验），**P<0.01（利用学生t检验）
B：为在A的试验中对第17天（17天）（实验最后一天）时各小鼠的肿瘤重量作图而得的图。各曲线上所示的数值为平均值±标准偏差。**P<0.01（利用学生t检验）
图17为实验中使用的人/小鼠嵌合TROP-2蛋白的示意图。SP：信号序列，TY结构域：1型甲状腺球蛋白区域（thyroglobulintype 1 region），TM：跨膜区域，C：细胞内区域。涂满黑色的的区域为来自于hTROP-2的多肽。以白色空心表示的区域为来自于小鼠TROP-2的多肽。嵌合蛋白的示意图的上段所示的数字表示小鼠TROP-2蛋白的氨基酸号，下段表示hTROP-2蛋白的氨基酸号。
图18为使用人/小鼠嵌合TROP-2的抗hTROP-2单克隆抗体结合区域的鉴定结果图。使用恒定表达人/小鼠嵌合TROP2-C（hmTROP2-C）及小鼠/人嵌合TROP2-D（mhTROP2-D）蛋白的HEK293细胞，研究与图中所示的抗hTROP-2单克隆抗体的反应性。阴性对照使用的是小鼠IgG2b。
图19是表示抗hTROP-2单克隆抗体的抗体结合区域的鉴定结果的图。
使用将hTROP-2基因及各人/小鼠嵌合TROP-2基因导入HEK293细胞并使其瞬时表达的细胞进行FACS解析。对于（A）K5-70、K5-107、T5-86、K5-116-2-1抗体，研究与hTROP-2（上段）、hmTROP-2-A（中段）及hmTROP-2-B（下段）的反应性。使用小鼠IgG2b作为阴性对照。对于（B）T6-4、T6-16抗体，研究与hTROP-2（上段）、mhTROP-2-E（中段）及mhTROP-2-F（下段）的反应性。使用小鼠IgG2b作为阴性对照。
图20是表示人正常组织中的hTROP-2的表达的图。使用抗hTROP-2单克隆抗体克隆K5-63-17进行人正常组织阵列的免疫染色。（A）皮肤、（B）食道、（C）肾脏（皮质）、（D）肾脏（髓质）、（E）胰脏、（F）前列腺、（G）膀胱、（H）扁桃腺、（I）心脏、（J）肝脏（倍率：×200）
图21是表示癌组织中的hTROP-2的表达的图。使用抗hTROP-2单克隆抗体克隆K5-63-17进行人癌组织阵列的免疫染色。（A）乳腺癌、（B）肺癌、（C）食道癌、（D）胃癌、（E）胰脏癌、（F）大肠癌、（G）膀胱癌、（H）前列腺癌、（I）卵巢癌（倍率：×100）
图22为表示在使用PK-59细胞的异种移植预防模型中单次投与克隆K5-70的抗肿瘤活性的图。
A.表示对照组（小鼠IgG●）和K5-70投与组（○）的肿瘤经时形成（平均值±标准偏差）。箭头表示投与抗体。*P<0.05（利用学生t检验），**P<0.01（利用学生t检验）。
B.为在A的试验中对第28天（28天）（实验最后一天）时的各小鼠的肿瘤重量作图而得的图。**P<0.01（利用学生t检验）。
C.表示对照组（小鼠IgG●）和K5-70投与组（○）的各个体的肿瘤经时形成。箭头表示投与抗体。
图23为表示克隆K5-70在使用人大肠癌细胞SW480细胞的异种移植治疗模型中的抗肿瘤活性的图。
A：表示对照组（●小鼠IgG）和K5-70投与组（○）的肿瘤经时形成（平均值±标准偏差）。箭头表示抗体投与期间。**P<0.01（利用学生t检验）
B：为在A的试验中对第44天（44天）（实验最后一天）时的各小鼠中的肿瘤重量作图而得的图。**P<0.01（利用学生t检验）
图24是表示克隆K5-116-2-1在使用SW480细胞的异种移植治疗模型中的抗肿瘤活性的图。
A：表示对照组（●小鼠IgG）和T6-16投与组（○）的肿瘤经时形成（平均值±标准偏差）。箭头表示抗体投与期间。**P<0.01（利用学生t检验）
B：为在A的试验中对第42天（42天）（实验最后一天）时的各小鼠中的肿瘤重量作图而得的图。**P<0.01（利用学生t检验）
图25为表示克隆T6-16在使用SW480细胞的异种移植治疗模型中的抗肿瘤活性的图。
A：表示对照组（●小鼠IgG）和T6-16投与组（○）的肿瘤经时形成（平均值±标准偏差）。箭头表示抗体投与期间。*P<0.05（利用学生t检验）
B：为在A的试验中对第42天（42天）（实验最后一天）时的各小鼠中的肿瘤重量作图而得的图。*P<0.05（利用学生t检验）
图26为表示克隆K5-70在使用SW480细胞的异种移植治疗模型中的用量依赖性的抗肿瘤活性的图。
A：表示对照组（●小鼠IgG）和K5-70投与组（○：1mg/kg，△：5mg/kg，□：10mg/kg）的肿瘤经时形成（平均值±标准偏差）。箭头表示抗体投与期间。*P<0.05（利用学生t检验）
B：为在A的试验中对第42天（42天）（实验最后一天）时的各小鼠的肿瘤重量作图而得的图。*P<0.05（利用学生t检验）
图27为表示克隆K5-70在使用SW480细胞的异种移植治疗模型中的抗肿瘤活性的图。
A：为表示每周1次的投与间隔时的K5-70抗体的抗肿瘤活性的图。表示对照组（●小鼠IgG）和K5-70投与组（○：10mg/kg）的肿瘤经时形成（平均值±标准偏差）。箭头（10，17，24，31，38天）表示K5-70抗体的投与。*P<0.05利用学生t检验。
B：为表示以每10天1次（■：q10d）、或每2周1次（●：q14d）的投与间隔投与K5-70抗体时的肿瘤经时形成的图。菱形（◇）表示对照组（小鼠IgG、10mg/kg）（平均值±标准偏差）。涂成黑色的箭头（9，19，29天）和空心的箭头（
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9，23，37天）表示投与K5-70抗体。*P<0.05，**P<0.01利用学生t检验。
图28为表示克隆T6-16在使用SW480细胞的异种移植治疗模型中的用量依赖性的抗肿瘤活性的图。
A：表示对照组（●小鼠IgG）和T6-16投与组（○：1mg/kg，△：5mg/kg，□：10mg/kg）的肿瘤经时形成（平均值±标准偏差）。箭头表示抗体投与期间。**P<0.01（利用学生t检验）
B：为在A的试验中对第43天（43天）（实验最后一天）时的各小鼠中的肿瘤重量作图而得的图。**P<0.01（利用学生t检验）
图29为表示克隆T6-16在使用SW480细胞的异种移植治疗模型中的抗肿瘤活性的图。表示对照组（●：小鼠IgG10mg/kg）、T6-16（10mg/kg）投与组（○：q7d,△：q10d）的肿瘤经时形成（平均值±标准偏差）。箭头（10，17，24，31，38天）、及箭头（10，20，30，40天）表示投与T6-16抗体。对照组每3天进行1次投与。*P<0.05，**P<0.01利用学生t检验。
图30为表示克隆K5-70在使用人前列腺癌细胞DU-145细胞的异种移植预防模型中的抗肿瘤活性的图。
A：表示对照组（●小鼠IgG）和K5-70投与组（○）的肿瘤经时形成（平均值±标准偏差）。箭头表示抗体投与期间。*P<0.05（利用学生t检验）
B：为在A的试验中对第40天（40天）（实验最后一天）时的各小鼠的肿瘤重量作图而得的图。*P<0.05（利用学生t检验）
图31为表示克隆K5-70在使用PK-59细胞的肝转移模型的转移抑制活性的图。
A：表示细胞移植6周后对照组（小鼠IgG）摘出的肝脏图，B：表示细胞移植6周后K5-70投与组摘出的肝脏图。箭头表示肝转移灶。
图32为表示K5-70在使用SW480细胞的异种移植模型中、在盐酸伊立替康投与后癌复发模型中的抗肿瘤活性的图。为表示无处置组（◆）、和盐酸伊立替康（40mg/kg）投与后K5-70（○：10mg/kg）、小鼠IgG投与组（●：10mg/kg）的肿瘤经时形成的图（平均值±标准偏差）。箭头（11，14，17天）表示投与盐酸伊立替康。K5-70抗体或小鼠IgG从20天开始每3天进行1次投与。箭头表示抗体投与期间。*P<0.05，**P<0.01利用学生t检验。
图33为表示克隆K5-70H链可变区域（VH）的cDNA碱基序列（序列号34）和推定氨基酸序列（序列号35）的图。信号肽用斜体表示。画有双下划线的谷氨酰胺（Q）表示成熟肽的N末端氨基酸残基。CDR序列（下划线；IYWIN，NIYPSDSYTNYNQKFKD，TSMADY）按照Kabat等（Sequencesof Proteins of Immunological Interests，Fifth edition，NIHPublication No.91-3242，U.S.Department of Health and HumanServices，1991）的定义来确定。克隆K5-70VH的CDR1～3的氨基酸序列依次如序列号36～38所示。
图34为表示克隆K5-70L链可变区域（VL）的cDNA碱基序列（序列号39）和推定氨基酸序列（序列号40）的图。信号肽用斜体表示。画有双下划线的天冬氨酸（D）表示成熟肽的N末端氨基酸残基。CDR序列（下划线；RASQSIGTSIH，YASESIS，QQSNSWPFT）按照Kabat等（Sequences of Proteins ofImmunological Interests，Fifth edition，NIH Publication No.91-3242，U.S.Department of Health and Human Services，1991）的定义来确定。克隆K5-70VL的CDR1～3的氨基酸序列分别如序列号41～43所示。
图35为表示克隆K5-107H链可变区域（VH）的cDNA碱基序列（序列号44）和推定氨基酸序列（序列号45）的图。信号肽用斜体表示。画有双下划线的谷氨酰胺（Q）表示成熟肽的N末端氨基酸残基。CDR序列（下划线；SYWMH，NIYPGGGYTNYDEKFKS，SSVFDY）按照Kabat等（Sequencesof Proteins of Immunological Interests，Fifth edition，NIHPublication No.91-3242，U.S.Department of Health and HumanServices，1991)的定义来确定。克隆K5-107VH的CDR1～3的氨基酸序列分别如序列号46～48所示。
图36为表示克隆K5-107L链可变区域（VL）的cDNA碱基序列（序列号49）和推定氨基酸序列（序列号50）的图。信号肽用斜体表示。画有双下划线的天冬氨酸（D）表示成熟肽的N末端氨基酸残基。CDR序列（下划线；RASQNIGTSIH，YASESIS，QQSNSWPFT）按照Kabat等（Sequences of Proteins ofImmunological Interests，Fifth edition，NIH Publication No.91-3242，U.S.Department of Health and Human Services，1991）的定义来确定。克隆K5-107VL的CDR1～3的氨基酸序列分别如序列号510～53所示。
图37为表示克隆K5-116-2-1H链可变区域（VH）的cDNA碱基序列（序列号54）和推定氨基酸序列（序列号55）的图。信号肽用斜体表示。画有双下划线的谷氨酰胺（Q）表示成熟肽的N末端氨基酸残基。CDR序列（下划线；SYWIT，NIYPSDSYTNYNQKFRD，LFDY）按照Kabat等（Sequences ofProteins of Immunological Interests，Fifth edition，NIHPublication No.91-3242，U.S.Department of Health and HumanServices，1991)的定义来确定。克隆K5-116-2-1VH的CDR1～3的氨基酸序列分别如序列号56～58所示。
图38为表示克隆K5-116-2-1L链可变区域（VL）的cDNA碱基序列（序列号59）和推定氨基酸序列（序列号60）的图。信号肽用斜体表示。画有双下划线的天冬氨酸（D）表示成熟肽的N末端氨基酸残基。CDR序列（下划线；RASQSIGTSIH，YASESIS，QQSNSWPFT）按照Kabat等（Sequences of Proteinsof Immunological Interests，Fifth edition，NIH Publication No.91-3242，U.S.Department of Health and Human Services，1991）的定义来确定。克隆K5-116-2-1VL的CDR1～3的氨基酸序列分别如序列号61～63所示。
图39为表示克隆T6-16H链可变区域（VH）的cDNA碱基序列（序列号64）和推定氨基酸序列（序列号65）的图。信号肽用斜体表示。画有双下划线的谷氨酰胺酸（E）表示成熟肽的N末端氨基酸残基。CDR序列（下划线；DYNMH，YIYPYNGGTGYNQRFKS，EDYGSSPSYAMDY）按照Kabat等（Sequences of Proteins of Immunological Interests，Fifthedition，NIH Publication No.91-3242，U.S.Department of Healthand Human Services，1991）的定义来确定。克隆T6-16VH的CDR1～3的氨基酸序列分别如序列号66～68所示。
图40为表示克隆T6-16L链可变区域（VL）的cDNA碱基序列（序列号69）和推定氨基酸序列（序列号70）的图。信号肽用斜体表示。画有双下划线的天冬氨酸（D）表示成熟肽的N末端氨基酸残基。CDR序列（下划线；RSSQSLVHGNGNTYLH，KVSNRFS，SQTTHVPT）按照Kabat等（Sequences of Proteins ofImmunological Interests，Fifth edition，NIH Publication No.91-3242，U.S.Department of Health and Human Services，1991）的定义来确定。克隆T6-16VL的CDR1～3的氨基酸序列分别如序列号71～73所示。
具体实施方式
以下详细说明本发明。本发明的范围不受这些说明限制，除了以下例示以外，也可以在不损害本发明主旨的范围内适当变更实施。
予以说明，本说明书包括作为本申请优先权基础的日本特愿2010-113302号说明书（2010年5月17日提出申请）的全体。此外，本说明书所引用的全部的出版物如现有技术文献及公开公报、专利公报以及其他专利文献均作为参照而引入本说明书中。
1．本发明的概要
如前所述，人TROP-2（hTROP-2）是由全长323氨基酸残基构成的1次跨膜型的1型膜蛋白。并且已知hTROP-2基因及其基因产物在各种癌细胞中表达。
如前所述，希望开发出在体内具有高抗肿瘤活性的抗人hTROP-2抗体（抗人hTROP-2单克隆抗体）等的状况下，本发明人从极其众多的克隆中进行筛选，从而成功地获得了在体内具有高抗肿瘤活性的克隆。具体而言，本发明提供在体内特异性识别hTROP-2的细胞外区域的单克隆抗体，特别是提供显示皮摩尔级别（pM）的高亲和性的单克隆抗体。与现有的抗hTROP-2抗体相比，本发明的抗体为：以仅裸抗体投与时，在更少的用量（例如1/20投与量）下具有显著的肿瘤生长抑制活性，且在使用多种人癌细胞的荷瘤小鼠治疗模型中显示显著的肿瘤生长抑制活性的抗hTROP-2单克隆抗体，从这方面来看是极其有用的。
2．抗hTROP-2抗体的制作
（1）抗原的制备
hTROP-2的氨基酸序列（序列号2）信息在例如NCBI（GenBank）网站（http：//www.ncbi.nlm.nih.gov/）中以“登录号：NP_002344”公布。予以说明，编码hTROP-2的氨基酸序列的碱基序列（序列号1）的信息在该网站中以“登录号：NM002353”公布。
作为抗原，可以使用包含hTROP-2的氨基酸序列的至少一部分（全部或一部分）的多肽或肽（也简称为肽），可以优选使用包含hTROP-2的细胞外区域的氨基酸序列的至少一部分（全部或一部分）的肽。hTROP-2的细胞外区域（包括信号肽）是指包含序列号2所示的氨基酸序列中的第1位～第274位的氨基酸的区域（信号肽：第1位～第26位的氨基酸）。这里，对用作抗原的肽而言，上述“氨基酸序列的至少一部分”的长度没有特别限定，优选例如包含序列号2所示的氨基酸序列中的第1位～第145位的氨基酸的区域、包含该氨基酸序列中的第146位～第274位的氨基酸的区域等。
作为抗原的肽的制作方法可以是化学合成，也可以通过采用大肠杆菌等的基因工程法合成，可以使用本领域技术人员公知的方法。
进行肽的化学合成时，可以通过肽合成的公知方法进行合成。此外，其合成也可以使用固相合成法和液相合成法中的任意一种。还可以使用市售的肽合成装置（例如，岛津制作所制：PSSM-8等）。
在用基因工程学方式合成肽时，首先设计并合成编码该肽的DNA。该设计和合成例如可以使用以包含全长hTROP-2基因的载体等作为模板，使用设计为可以合成所希望的DNA区域的引物，通过PCR法进行。然后，通过将上述DNA连接到适当的载体上而获得蛋白质表达用重组载体，将该重组载体导入宿主中并使得目的基因可以表达，由此获得转化子（Sambrook J.etal.，Molecular Cloning，A Laboratory Manual，3rd edition，ColdSpring Harbor Laboratory Press，2001)。
使用可以在宿主微生物中自我增殖的噬菌体或质粒作为载体。而且还可以使用动物病毒、昆虫病毒载体。重组载体的制作可如下进行，即用适当的限制性酶切断纯化的DNA，插入适当的载体DNA的限制性酶位点等中而与载体连接。作为转化时使用的宿主，只要是可以表达目的基因的宿主即可，没有特别的限定。例如，可以列举细菌（大肠杆菌、枯草杆菌等）、酵母、动物细胞（COS细胞、CHO细胞等）、昆虫细胞或昆虫。还可以使用山羊等哺乳动物作为宿主。向宿主导入重组载体的方法是公知的。
然后，培养前述转化子，从其培养物中收集作为抗原使用的肽。“培养物”是指（a）培养上清、（b）培养细胞或者培养菌体或其破碎物中的任意一种。
培养后，目的肽在菌体内或细胞内产生时，通过破碎菌体或细胞来提取肽。而且，目的肽在菌体外或细胞外产生时，直接使用培养液或通过离心分离等除去菌体或细胞。然后，可以通过单独使用可以在肽的分离纯化中使用的一般的生物化学方法，例如硫酸铵沉淀、凝胶过滤、离子交换层析、亲和层析等或将这些方法组合使用，来分离纯化目的肽。
本发明中，还可以使用无细胞蛋白质合成系统，通过体外翻译获得作为抗原的肽。此时，可以使用以RNA作为模板的方法和以DNA作为模板的方法（转录/翻译）这2种方法。作为无细胞蛋白质合成系统，可以使用市售的系统，例如ExpresswayTM系统（Invitrogen公司）、PURESYSTEM（注册商标；post genome研究所）、TNT系统（注册商标；Promega公司）等。
如上所述获得的肽还可以结合到适当的载体蛋白质，例如牛血清白蛋白（BSA）、钥孔血蓝蛋白（Keyhole limpethemocyanin，KLH）、人甲状腺球蛋白、鸡γ-球蛋白等。
另外，抗原可以是在hTROP-2的氨基酸序列（序列号2）或前述的其部分序列中缺失、置换或添加了1个或多个氨基酸的氨基酸序列而构成的肽。例如，还可以使用hTROP-2的氨基酸序列或其部分序列中缺失1个或多个（优选1个或多个（例如1个～10个，更优选1个～5个））氨基酸、1或多个（优选1个或多个（例如1个～10个，更优选1个～5个））氨基酸被其它氨基酸置换、或添加了1个或多个（优选1个或多个（例如1个～10个，更优选1个～5个））其它氨基酸的氨基酸序列所构成的肽。
本发明中，作为用于导入于细胞等的基因，可以列举编码hTROP-2蛋白质或其部分片段的基因、或编码其突变型的蛋白质或片段的基因。作为这种基因，例如可以使用具有序列号1所示的碱基序列或其部分序列的基因。
另外，作为用于导入于细胞等的基因，还可以使用与序列号1所示的碱基序列互补的序列在严紧条件下杂交，且编码具有hTROP-2活性的蛋白质的碱基序列或其部分序列。
“严紧条件”是指杂交后洗涤时的条件，缓冲液的盐（钠）浓度为10～500mM，温度为42℃～72℃，优选上述盐浓度为50～300mM，温度为55～68℃的条件。
为了在基因中导入突变，可以通过Kunkel法或带缺口的双链体（Gapped duplex）法等公知方法进行，例如使用利用定点突变法的突变导入用试剂盒如GeneTailorTMSite-DirectedMutagenesis System（Invitrogen公司制）、TaKaRa Site-DirectedMutagenesis System（Mutan-K、Mutan-Super Express Km等：TAKARA BIO公司制）来进行。
（2）多克隆抗体的制作
将制备的抗原投与到用于免疫的哺乳动物。哺乳动物没有特别限定，例如可以列举大鼠、小鼠和兔等，其中优选小鼠。
每一只动物的抗原投与量，可以根据佐剂的有无适当设定。作为佐剂，可以列举弗氏完全佐剂（FCA）、弗氏不完全佐剂（FIA）、氢氧化铝佐剂等。免疫主要可以通过注入到静脉内、脚掌、皮下、腹腔内等来进行。而且，免疫的间隔没有特别限定，以数天至数周的间隔优选以1周的间隔进行1～10次、优选进行2～3次免疫。然后，在最后的免疫日起3～7天后，通过酶免疫测定法（ELISA或EIA）或放射性免疫测定法（RIA）等测定抗体效价，可以在出现所希望的抗体效价之日采血，获得抗血清。在上述抗体的提取方法中，在需要纯化抗体时，可以通过适当选择或组合硫酸铵盐析法、离子交换层析、凝胶过滤层析、亲和层析等公知方法来进行纯化。然后，通过ELISA法等测定抗血清中的多克隆抗体的反应性。
（3）单克隆抗体的制作
（3-1）抗体产生细胞的提取
本发明的抗hTROP-2抗体并没有限制，但优选为单克隆抗体。
将制备的抗原投与用于免疫的哺乳动物，例如大鼠、小鼠和兔等。每只动物的抗原投与量可以根据有无佐剂适当设定。佐剂与上述同样。免疫方法也与前述同样。而且，在最后的免疫日起1～60天后，优选为1～14天后，提取抗体产生细胞。作为抗体产生细胞，可以列举脾细胞、淋巴结细胞和末梢血细胞等，其中优选淋巴结细胞和脾脏细胞。
（3-2）细胞融合
为了获得杂交瘤（抗体产生细胞株），进行抗体产生细胞和骨髓瘤细胞的细胞融合。作为与抗体产生细胞融合的骨髓瘤细胞，可以使用小鼠等动物的一般可以获得的已建立的细胞株。作为使用的细胞株，优选具有药剂选择性，具有未融合的状态下在HAT选择培养基（含有次黄嘌呤、氨基喋呤和胸腺嘧啶脱氧核苷）中无法生存而只有在与抗体产生细胞融合的状态下可以生存的性质的细胞株。
作为骨髓瘤细胞，例如可以列举P3-X63-Ag8.653、P3-X63-Ag8（X63）、P3-X63-Ag8.U1（P3U1）、P3/NSI/1-Ag4-1（NS1）和Sp2/0-Ag14（Sp2/0）等小鼠骨髓瘤细胞株。骨髓瘤细胞的选择，可以适当考虑与抗体产生细胞的适合性而进行。
然后，使骨髓瘤细胞与抗体产生细胞进行细胞融合。细胞融合时，在不含血清的DMEM和RPMI-1640培养基等动物细胞用培养基中，混合1×106～1×107个/mL的抗体产生细胞和2×105～2×106个/mL的骨髓瘤细胞。抗体产生细胞与骨髓瘤细胞的细胞比（抗体产生细胞：骨髓瘤细胞）没有限制，但通常优选为1：1～10：1，更优选为3：1。然后，在细胞融合促进剂的存在下进行融合反应。作为细胞融合促进剂，例如可以使用平均分子量为1000～6000道尔顿（D）的聚乙二醇等。而且，还可以使用利用电刺激（例如电穿孔）的市售的细胞融合装置，使抗体产生细胞与骨髓瘤细胞融合。
（3-3）杂交瘤的挑选和克隆
从细胞融合处理后的细胞中挑选出目的杂交瘤。作为该方法，将细胞悬浮液用例如含有胎牛血清的RPMI-1640培养基等适当稀释后，接种于微孔培养板上，在各孔中加入选择培养基，以后适当更换选择培养基进行培养。其结果是，在选择培养基中开始培养后，可以将14天前后开始生长的细胞作为杂交瘤。
然后，在逐步增殖的杂交瘤的培养上清中，筛选是否存在与hTROP-2反应的抗体。杂交瘤的筛选可以按照通常的方法，没有特别限制。例如，可以采集已长出杂交瘤的孔中所含的培养上清的一部分，通过ELISA、EIA和RIA等进行筛选。
融合细胞的克隆可以通过有限稀释法等进行。通过流式细胞术等判断与hTROP-2显示出强反应性的抗体，选择产生该抗体的杂交瘤，建立克隆。
（3-4）单克隆抗体的提取
作为培养已建立的杂交瘤并从获得的培养物中提取单克隆抗体的方法，可以采取通常的细胞培养法或腹水形成法等。“培养”是指在培养皿或培养瓶中使杂交瘤生长，或如下使杂交瘤在动物的腹腔内增殖。
细胞培养法中，可以在含有10%胎牛血清的RPMI-1640培养基、MEM培养基或无血清培养基等动物细胞培养的培养基中，在通常的培养条件（例如37℃，5%CO2浓度）下培养杂交瘤7～14天，从其培养上清中获得抗体。
腹水形成法的情况下，在与骨髓瘤细胞来源的哺乳动物同种系动物的腹腔内投与约1×107个杂交瘤，使杂交瘤大量增殖。并且，优选在2～3周后提取腹水。
在上述抗体的提取方法中，在需要纯化抗体时，可以通过适当选择或组合硫酸铵盐析法、离子交换层析、凝胶过滤、亲和层析等公知方法来进行纯化。
（3-5）具有抗肿瘤活性的克隆的挑选
本发明的抗hTROP-2抗体是在体内具有抗肿瘤活性的抗体。
这里，“抗肿瘤活性”是指使肿瘤细胞（癌细胞）死亡的活性或抑制肿瘤生长的活性。作为抗肿瘤活性，例如可优选列举癌细胞增殖抑制活性、肿瘤血管生成抑制活性。此外，作为本发明的抗体可以发挥抗肿瘤活性的人肿瘤（肿瘤细胞）的种类，可以列举已确认hTROP-2的表达的公知的各种人肿瘤，没有特别限定，可以优选列举出例如人胰癌、人前列腺癌、人大肠癌及人乳腺癌中的1种或2种以上，更优选人胰癌。进而，作为上述肿瘤的种类，还可以是复发癌、转移癌，本发明的抗体对于这些肿瘤也可以发挥优异的抗肿瘤活性。
在体内的抗肿瘤活性的确认，例如可以使用在小鼠的皮下移植了所希望的肿瘤细胞的荷瘤小鼠（荷瘤动物治疗模型），通过对该小鼠投与前述获得的抗体来进行。此时，抗体的投与可以在肿瘤细胞的移植后立即进行（预防模型），也可以在确认移植肿瘤达到预定体积之后进行（治疗模型）。投与方法并没有限制，例如可以以每3天1次、1周1次、10天1次或2周1次或单次（仅一次），以5~20mg/kg体重进行腹腔内投与等。预防模型的情况下，可以通过肿瘤形成频率和肿瘤体积评价抗肿瘤活性的有无和水平。治疗模型的情况下，可以根据肿瘤体积评价抗肿瘤活性的有无和水平。
本发明中，作为在体内具有抗肿瘤活性的抗hTROP-2抗体，可以优选列举出例如H链V区域的CDR1～3的氨基酸序列分别依次为序列号36～38所示的氨基酸序列，和/或L链V区域的CDR1～3的氨基酸序列分别依次为序列号41～43所示的氨基酸序列的抗体。作为该H链V区域，优选例如包含序列号35所示的氨基酸序列的区域，作为该L链V区域，优选例如包含序列号40所示的氨基酸序列的区域。
此外，作为本发明的抗hTROP-2抗体的其它形态，可以优选列举例如H链V区域的CDR1～3的氨基酸序列分别依次为序列号46～48所示的氨基酸序列，和/或L链V区域的CDR1～3的氨基酸序列分别依次为序列号51～53所示的氨基酸序列的抗体。作为该H链V区域，优选例如包含序列号45所示的氨基酸序列的区域，作为该L链V区域，优选例如包含序列号50所示的氨基酸序列的区域。
同样地，作为本发明的抗hTROP-2抗体的其它形态，可以优选列举例如H链V区域的CDR1～3的氨基酸序列分别依次为序列号56～58所示的氨基酸序列，和/或L链V区域的CDR1～3的氨基酸序列分别依次为序列号61～63所示的氨基酸序列的抗体。作为该H链V区域，优选例如包含序列号55所示的氨基酸序列的区域，作为该L链V区域，优选例如包含序列号60所示的氨基酸序列的区域。
同样地，作为本发明的抗hTROP-2抗体的其它形态，可以优选列举例如H链V区域的CDR1～3的氨基酸序列分别依次为序列号66～68所示的氨基酸序列，和/或L链V区域的CDR1～3的氨基酸序列分别依次为序列号71～73所示的氨基酸序列的抗体。作为该H链V区域，可以列举出例如包含序列号65所示的氨基酸序列的区域，作为该L链V区域，可以列举出例如包含序列号70所示的氨基酸序列的区域。
在本发明中，作为在体内具有抗肿瘤活性的抗hTROP-2抗体，更具体而言，可以优选列举出例如由保藏号为FERMBP-11251的杂交瘤产生的抗hTROP-2单克隆抗体（克隆名：K5-70）、由保藏号为FERM BP-11252的杂交瘤产生的抗hTROP-2单克隆抗体（克隆名：K5-107）、由保藏号为FERMBP-11253的杂交瘤产生的抗hTROP-2单克隆抗体（克隆名：K5-116-2-1）、由保藏号为FERM BP-11346的杂交瘤产生的抗hTROP-2单克隆抗体（克隆名：T6-16）及由保藏号为FERMBP-11254的杂交瘤产生的抗hTROP-2单克隆抗体（克隆名：T5-86）等。
这里，保藏号为FERM BP-11251的杂交瘤命名为“小鼠-小鼠杂交瘤（Mouse-Mouse Hybridoma）K5-70”，于2010年5月12日保藏，保藏号为FERM BP-11252的杂交瘤命名为“小鼠-小鼠杂交瘤（Mouse-Mouse Hybridoma）K5-107”，于2010年5月12日保藏，保藏号为FERM BP-11253的杂交瘤命名为“小鼠-小鼠杂交瘤（Mouse-Mouse Hybridoma）K5-116-2-1”，于2010年5月12日保藏，保藏号为FERM BP-11346的杂交瘤命名为“小鼠-小鼠杂交瘤（Mouse-Mouse Hybridoma）T6-16”，于2011年3月1日保藏，保藏号为FERM BP-11254的杂交瘤命名为“小鼠-小鼠杂交瘤（Mouse-MouseHybridoma）T5-86”，于2010年5月12日保藏，均保藏于独立行政法人产业技术综合研究所专利生物保藏中心（〒305-8566茨城县筑波市东1-1-1中央第6）。
进而，作为本发明的抗hTROP-2抗体，还可以优选列举出例如与由保藏号为FERM BP-11251、FERM BP-11252、FERMBP-11253、FERM BP-11346或FERM BP-11254的杂交瘤产生的单克隆抗体所结合（识别）的位点（例如表位）结合的抗hTROP-2抗体。作为表位，可以优选列举出下述（3-6）项中例示的表位。
（3-6）抗hTROP-2抗体的表位
本发明的抗hTROP-2抗体的表位（抗原决定簇）只要是抗原hTROP-2的至少一部分即可，没有特别限制，例如优选为序列号2所示的hTROP-2的氨基酸序列中的、除由第252位～第260位的氨基酸构成的区域外的区域的至少一部分，更优选为包含第1位～第69位的氨基酸的区域的至少一部分或包含第100位～第274位的氨基酸的区域（由第252位～第260位的氨基酸构成的区域除外）的至少一部分，进一步优选为包含第27位～第69位的氨基酸的区域的至少一部分或包含第109位～第206位的氨基酸的区域的至少一部分。作为上述表位，特别优选包含序列号2所示的hTROP-2的氨基酸序列中的第43位～第65位的氨基酸的区域、包含序列号2所示的hTROP-2的氨基酸序列中的第152位～第165位的氨基酸的区域、包含序列号2所示的hTROP-2的氨基酸序列中的第171位～第183位的氨基酸的区域、包含序列号2所示的hTROP-2的氨基酸序列中的第109位～第120位的氨基酸的区域、包含序列号2所示的hTROP-2的氨基酸序列中的第193位～第206位的氨基酸的区域、及包含序列号2所示的hTROP-2的氨基酸序列中的第43位～第56位的氨基酸的区域、以及包含上述区域的部分，其中最优选的是包含序列号2所示的hTROP-2的氨基酸序列中的第43位～第65位的氨基酸的区域、包含序列号2所示的hTROP-2的氨基酸序列中的第152位～第165位的氨基酸的区域、包含序列号2所示的hTROP-2的氨基酸序列中的第171位～第183位的氨基酸的区域、及包含序列号2所示的hTROP-2的氨基酸序列中的第109位～第120位的氨基酸的区域、以及包含上述区域的部分。识别该区域的（与该区域或包含该区域的部分结合的）抗hTROP-2抗体例如对肿瘤细胞内的内化活性高，在后述的免疫交联物等用途中极为有用。
（3-7）抗hTROP-2抗体的特性
如前所述，本发明的抗hTROP-2抗体为以低用量在体内具有高抗肿瘤活性的抗体。具体而言，优选对于荷瘤动物模型以20mg/kg体重以下（优选10mg/kg体重以下，更优选5mg/kg体重以下，进而，优选1mg/kg体重以下）的投与量（裸抗体）显示50％以上（优选80％以上，更优选90％以上，进而，优选95％以上、特别优选几乎100％（例如98％以上或99％以上））的肿瘤生长抑制活性。
这里，肿瘤生长抑制活性（％）例如可以通过下式算出。
肿瘤生长抑制活性（％）＝100－〔（抗体投与组的肿瘤体积或肿瘤重量）÷（对照组的肿瘤体积或肿瘤重量）〕×100
此外，本发明的抗hTROP-2抗体优选对2种以上人肿瘤细胞株具有抗肿瘤活性。作为人肿瘤细胞株，没有限定，可以列举出例如选自各种人胰癌细胞株、人前列腺癌细胞株、人大肠癌细胞株及人乳腺癌细胞株组成的组中的至少2种，具体而言，可以优选列举出选自人胰癌细胞株PK-59、人胰癌细胞株BxPC-3、人胰癌细胞株KP-3L、人胰癌细胞株KP-2、人胰癌细胞株PK-1、人胰癌细胞株PK-45H、人胰癌细胞株PK-45P、人胰癌细胞株TCC-PAN2、人胰癌细胞株SUIT-2、人大肠癌细胞株CACO-2、人大肠癌细胞株SW480、人大肠癌细胞株DLD-1、人大肠癌细胞株HCT116、人乳腺癌细胞株JIMT-1、人乳腺癌细胞株HCC1143、人乳腺癌细胞株MCF-7、人前列腺癌细胞株DU145及人前列腺癌细胞株PC-3组成的组中的至少2种。其中，作为前述2种以上人肿瘤细胞株，可以更优选列举人胰癌细胞株PK-59及人胰癌细胞株BxPC-3。
进而，本发明的抗hTROP-2抗体优选解离常数（Kd值）为1.0×10-10M以下，更优选1.0×10-11M以下，进而，优选1.0×10-12M以下。这里，抗体的结合能力（亲和性）例如可以通过斯卡查德分析（Scatchard analysis）、称为Biacore的表面等离子体共振传感器来测定解离常数（Kd值）、解离速率常数（Kdiss[1/秒]）、结合速率常数（Kass[1/M.秒]）。作为Biacore装置，可以列举出例如Biacore3000、Biacore2000、Biacore X、Biacore J、Biacore Q（均为Biacore公司）等。就抗体而言，解离常数（Kd值）值越小则结合能力（亲和性）越强则越优选。Kd值可以由Kdiss及Kass两个参数确定，例如可以用式：Kd[M]＝Kdiss/Kass表示。予以说明，Kd值的计算方法还可以优选采用后述实施例（具体为实施例10）中所述方法。
（4）基因重组抗体和抗体片段
（4-1）基因重组抗体
作为本发明的抗hTROP-2抗体的优选方式之一，可以列举基因重组抗体。作为基因重组抗体，没有限制，但例如可以列举嵌合抗体、人源化抗体和人抗体等。
嵌合抗体（即人源化嵌合抗体）是小鼠源抗体的可变区连接（接合）到人来源的恒定区的抗体（参照Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.81，6851-6855,（1984）等），在制作嵌合体时，可以通过基因重组技术容易地构建，从而获得这样连接的抗体。
在制作人源化抗体时，通过从小鼠抗体的可变区将互补性决定区（CDR）移植到人可变区，框架区（FR）为人来源，CDR由小鼠来源的CDR构成，制备重构的可变区（即CDR移植（CDRgrafting））。然后，将这些人源化的重构的人可变区与人恒定区连接。这种人源化抗体的制作方法在本领域中是众所周知的（参照Nature，321，522-525（1986）；J.Mol.Biol.，196，901-917（1987）；Queen C et al.，Proc.Natl.Acad.Sci.USA，86：10029-10033（1989）；日本特表平4-502408号公报（日本特许第2828340号公报；Queen等）等）。
人抗体（完全人抗体），一般是V区域的抗原结合位点即高变区（Hyper Variable region），V区域的其它部分和恒定区的结构具有与人的抗体相同的结构。但是，高变位点也可以来源于其它动物。制作人抗体的技术也是公知的，已建立了通过基因工程学的手法来制作人共通的基因序列的方法。人抗体例如可以通过使用含有具有人抗体的H链和L链基因的人染色体片段的人抗体产生小鼠的方法（参照Tomizuka，K.et al.，NatureGenetics，（1977）16，133-143；Kuroiwa，Y.et.al.，Nuc.AcidsRes.，（1998）26，3447-3448；Yoshida，H.et.al.，Animal CellTechnology：Basic and Applied Aspects,（1999）10，69-73（Kitagawa，Y.,Matuda，T.and Iijima，S.eds.），Kluwer AcademicPublishers；Tomizuka，K.et.al.，Proc.Natl.Acad.Sci.USA，（2000）97，722-727等）和获得从人抗体文库挑选的噬菌体展示来源的人抗体的方法（参照Wormstone，I.M.et.al，Investigative Ophthalmology & Visual Science.，（2002）43（7），2301-8；Carmen，S.et.al.，Briefings in Functional Genomics andProteomics,（2002）1（2），189-203；Siriwardena，D.et.al.，Opthalmology，（2002）109（3），427-431等）而获得。
上述嵌合抗体、人源化抗体和人抗体，优选为抗体Fc区域中的N-糖苷键复合型糖链为该糖链的还原末端的N-乙酰葡糖胺不与岩藻糖结合的糖链，具体而言可以列举在抗体分子的Fc区域中具有该岩藻糖的1位不与N-糖苷键复合型糖链还原末端的N-乙酰氨基葡萄糖的6位发生α结合的糖链的基因重组抗体分子所构成的抗体。如果是这种抗体，则可以使ADCC活性极大提高。而且，前述的多克隆抗体和单克隆抗体同样优选这一点（抗体Fc区域中N-糖苷键复合型糖链的特征）。
（4-2）抗体片段
本发明的抗hTROP-2抗体的片段（部分片段）也包含在本发明的抗体中。其中，本发明的抗体片段与本发明的抗hTROP-2抗体一样，具有与hTROP-2结合的活性（即可以结合到hTROP-2上），在体内具有抗肿瘤活性。
作为该抗体的片段，是指抗hTROP-2多克隆抗体或抗hTROP-2单克隆抗体的一部分的区域（即，来源于本发明的抗hTROP-2抗体的抗体片段），例如，可以列举Fab、Fab’、F（ab’）2、Fv（抗体可变区）、单链抗体（H链、L链、H链V区域和L链V区域等）、scFv、双抗体（diabody）（scFv二聚物）、dsFv（二硫化物稳定化V区域）和至少一部分含有互补性决定区（complementarity determining region：CDR）的肽等。
Fab是用蛋白质分解酶中的木瓜蛋白酶处理抗体分子而获得的片段中，H链的N末端侧约一半和L链全体通过二硫键结合的、分子量约为5万的具有抗原结合活性的抗体片段。而且，还可以通过将编码抗体的Fab的DNA插入于原核生物用表达载体或真核生物用表达载体中，通过将该载体导入到原核生物或真核生物而使之表达，制造Fab。
F（ab’）2是用蛋白质分解酶中的胃蛋白酶处理抗体分子而获得的片段中，Fab通过铰链区的二硫键结合的稍大的、分子量约为10万的具有抗原结合活性的抗体片段。而且，还可以通过后述的使Fab形成硫醚键或二硫键进行制作。
Fab’是切断上述F（ab’）2的铰链区的二硫键的、分子量约为5万的具有抗原结合活性的抗体片段。而且，还可以通过将编码抗体的Fab’片段的DNA插入于原核生物用表达载体或真核生物用表达载体中，通过将该载体导入于原核生物或真核生物而使之表达，制造Fab’。
scFv是将1条H链V区域（VH）和1条L链V区域（VL）用适当的肽连接子（P）连接的VH-P-VL或VL-P-VH多肽，其是具有抗原结合活性的抗体片段。scFv可以如下制备，即，获得编码抗体的VH和VL的cDNA，构建编码scFv的DNA，将该DNA插入于原核生物用表达载体或真核生物用表达载体中，再将该表达载体导入于原核生物或真核生物中使之表达而进行制造。
双抗体是scFv二聚化形成的抗体片段，其为具有二价的抗原结合活性的抗体片段。二价的抗原结合活性可以是相同的，也可以是其中一方为不同的抗原结合活性。双抗体可以如下制备，即，通过获得编码抗体的VH和VL的cDNA，构建编码scFv的DNA并使P的氨基酸序列的长度达到8个残基以下，将该DNA插入于原核生物用表达载体或真核生物用表达载体，再将该表达载体导入于原核生物或真核生物使之表达而进行制造。
dsFv是指使VH和VL中的各1个氨基酸残基被换成半胱氨酸残基的多肽通过该半胱氨酸残基间的二硫键结合形成的抗体。被换成半胱氨酸残基的氨基酸残基可以按照Reiter等人公开的方法（Protein Engineering，7，697-704，1994），基于抗体的立体结构预测进行选择。dsFv可以如下制备：通过获得编码抗体的VH和VL的cDNA，构建编码dsFv的DNA，将该DNA插入到原核生物用表达载体或真核生物用表达载体中，再将该表达载体导入于原核生物或真核生物中使之表达而进行制造。
含有CDR的肽包含VH的CDR（CDR1～3）及VL的CDR（CDR1～3）中的至少1个以上区域而构成，更优选包含VH的全部CDR的肽、及包含VL的全部CDR的肽，特别优选包含VH及VL的全部CDR（共6个区域）的肽。作为CDR的氨基酸序列，可以优选列举例如前述序列号36～38、41～43、46～48、51～53、56～58、61～63、66～68及71～73所示的氨基酸序列。包含多个CDR的肽可以直接或介由适当的肽连接子结合。含有CDR的肽可以通过构建编码抗体的VH和VL的CDR的DNA，将该DNA插入原核生物用表达载体或真核生物用表达载体中，再将该表达载体导入原核生物或真核生物中使之表达而进行制造。此外，含有CDR的肽还可以通过Fmoc法（芴甲氧羰基法）和tBoc法（叔丁氧羰基法）等化学合成法来制造。
作为本发明的抗体片段，可以是以原有的形状含有N-糖苷键复合型糖链为该糖链的还原末端的N-乙酰葡糖胺不与岩藻糖结合的糖链的抗体Fc区域的一部分或全部的抗体片段，而且，也可以是上述抗体片段与N-糖苷键复合型糖链为该糖链的还原末端的N-乙酰氨基葡萄糖不与岩藻糖结合的糖链的抗体Fc区域的一部分或全部的融合蛋白质。这种抗体片段可以极大地提高ADCC活性，因而优选。
以下本说明书中的说明中，上述抗体片段也包含于本发明的抗hTROP-2抗体中。
3.抗体-药剂复合物的制作
作为使用上述本发明的抗hTROP-2抗体的免疫交联物等，可以提供含有该抗体以及具有抗肿瘤活性和/或细胞杀伤活性的物质（化合物等）的抗体-药剂复合物。予以说明，在预先分别制备该抗体分子以及具有抗肿瘤活性和/或细胞杀伤活性的物质之后，将它们复合化而获得的物质一般被称为免疫交联物。而且，通过使用基因重组技术，将具有抗肿瘤活性和/或细胞杀伤活性的物质中的蛋白质毒素在基因上与抗体基因连接，作为1个蛋白质（融合蛋白质）表达而获得的物质一般被称为免疫毒素。
作为具有抗肿瘤活性的物质，例如，可以列举阿霉素（doxorubicin）、卡奇霉素（calicheamicin）、丝裂霉素（mitomycin）C、Auristatin E、放射性同位素（RI）等。作为具有细胞杀伤活性的物质，例如，可以列举皂草素、篦麻毒素、绿脓杆菌外毒素、白喉毒素、放射性同位素（RI）等，其中优选使用皂草素和绿脓杆菌外毒素。予以说明，作为具有抗肿瘤活性和/或细胞杀伤活性的RI，没有限定，可以列举出例如90Y、111In、125I、3H、35S、14C、186Re、188Re、189Re、177Lu、67Cu、212Bi、213Bi、211At、198Au、224Ac、126I、133I、77Br、113mIn、95Ru、97Ru、103Ru、105Ru、107Hg、203Hg、94mTc、121mTe、122mTe、125mTe、165Tm、167Tm、168Tm、111Ag、197Pt、109Pd、32P、33P、47Sc、153Sm、177Lu、105Rh、142Pr、143Pr、161Tb、166Ho、199Au、57Co、58Co、51Cr、59Fe、18F、75Se、201Tl、225Ac、76Br、86Y、169Yb、166Dy、212Pb及223Ra等。
作为抗体-药剂复合物的制作方法并没有限制，例如，可以列举通过二硫键或腙键将抗体与药剂偶联的方法等。
上述本发明的抗hTROP-2抗体在对表达hTROP-2的目标肿瘤细胞内的内化活性方面优异。因此，通过预先使具有抗肿瘤活性和/或细胞杀伤活性的物质复合化，可以使这些物质直接且高选择地作用于肿瘤细胞。本发明的抗体-药剂复合物在向目标肿瘤细胞传送药剂的能力上极为优异。
予以说明，对细胞内的内化活性可以如下评价，即，通过用罗丹明等对抗体进行萤光标记，用萤光显微镜等观察向细胞内的进入举动和抗体的定位性。
另外，本发明中还可以提供在抗体-药剂复合物中使用前述抗体片段代替抗体的抗体片段-药剂复合物。抗体片段-药剂复合物的详细内容可以适当应用上述抗体-药剂复合物的说明。
以下，本说明书的说明中，抗体片段-药剂复合物也包含于本发明的抗体-药剂复合物中。
4.药物组合物
本发明的抗hTROP-2抗体和抗体-药剂复合物作为包含于药物组合物中的有效成分是有用的。
该药物组合物作为肿瘤的治疗用和/或诊断用的药物组合物是有用的。尤其是，由于本发明的抗hTROP-2抗体和含有该抗体的抗体-药剂复合物具有作为抗肿瘤活性的优异的肿瘤生长抑制活性，因此优选在肿瘤的治疗用中使用。即，本发明的抗hTROP-2抗体和抗体-药剂复合物作为包含于肿瘤治疗剂和肿瘤诊断剂中的有效成分是有用的。予以说明，本发明中，上述肿瘤的治疗还包括抑制肿瘤生长和阻遏肿瘤生长的意思，具体而言，例如若为肿瘤治疗剂，则还包括肿瘤生长抑制剂（tumor growth inhibitor）和肿瘤生长阻遏剂（tumor growthsuppressor）的形态。此外，本发明的药物组合物还可以与公知的抗肿瘤剂并用。通过并用，可以获得更好的抗肿瘤效果。
本发明的药物组合物含有本发明的抗hTROP-2抗体和/或抗体-药剂复合物作为有效成分，而且优选以包括药学上允许的载体的药物组合物的形态提供。
作为本发明的药物组合物的适用对象疾病（肿瘤），可以列举确认了表达hTROP-2的前述公知的各种人肿瘤。其中，特别优选列举人胰癌、人前列腺癌、人大肠癌、和人乳腺癌中的1种或2种以上。这些疾病可以是单独的，也可以是2种以上并发。此外，作为对象的肿瘤还可以是复发癌、转移癌，本发明的药物组合物（进而，本发明的抗hTROP-2抗体和/或抗体－药剂复合物）可以有效用作复发癌、转移癌的治疗剂和诊断剂。
所谓“药学上允许的载体”，可以列举赋形剂、稀释剂、增量剂、崩解剂、稳定剂、防腐剂、缓冲剂、乳化剂、芳香剂、着色剂、甜味剂、粘稠剂、矫味剂、增溶剂或其它添加剂等。通过使用1种以上这种载体，可以制备注射剂、液剂、胶囊剂、悬浮剂、乳剂或糖浆剂等形态的药物组合物。这些药物组合物可以经口或非经口投与。作为用于非经口投与的其它形态，包括含有1种以上的活性物质的通过常规方法制备的注射剂等。注射剂的情况中，可以通过溶解或悬浮于生理盐水或市售的注射用蒸馏水等药学上允许的载体中来制造。
尤其是，对生物体内投与本发明的抗hTROP-2抗体来源的抗体片段（其中尤其是低分子的物质）时，在其基础上还可以使用胶体分散系。胶体分散系可期待具有提高化合物（抗体片段）在生物体内稳定性的效果和将化合物高效输送到特定的内脏器官、组织或细胞的效果。胶体分散系只要为通常使用的即可，没有限制，可以列举聚乙二醇、高分子复合物、高分子凝集体、纳米胶囊、微球体、珠子和水包油系的乳化剂、胶束、混合胶束和以包含脂质体在内的脂质为基础的分散系，优选为具有将化合物高效输送到特定脏器、组织或细胞的效果的多个脂质体、人工膜的小囊泡（Mannino et al.，Biotechniques，1988，6，682；Blume and Cevc，Biochem.et Biophys.Acta，1990，1029，91；Lappalainen et al.，Antiviral Res.，1994，23，119；Chonnand Cullis，Current Op.Biotech.，1995，6，698）。
本发明的药物组合物的投与量根据患者的年龄、性别、体重和症状、治疗效果、投与方法、处理时间或药物组合物所含的本发明的抗hTROP-2抗体和抗体-药剂复合物的种类等而不同。通常，成人每人每次可以在600μg到6000mg的范围内投与，但并不限于此范围。
例如通过注射剂投与时，对人患者1次的投与中，可以每1kg体重平均1天以1次～数次投与100μg～100mg的量，还可以优选采用每3天、1周、10天或2周投与1次或单次（总计投与次数为1次）投与的方式。作为投与的形态，可以列举静脉内注射、皮下注射、皮内注射、肌肉内注射或腹腔内注射等，优选为静脉内注射。而且，注射剂根据情况还可以调制成非水性的稀释剂（例如聚乙二醇、橄榄油等植物油、乙醇等醇类等）、悬浮剂或乳浊剂。这种注射剂的无菌化可以通过过滤器进行过滤杀菌、配合杀菌剂等来进行。注射剂可以制备成使用时调制的形态。即，可以通过冷冻干燥法等制成无菌的固体组合物，在使用前溶解于无菌的注射用蒸馏水或其它溶剂中使用。
另外，本发明还提供用于制造治疗和/或诊断肿瘤的药物（药剂）的前述本发明的抗hTROP-2抗体和/或抗体-药剂复合物的应用。而且，本发明还提供治疗和/或诊断肿瘤用的前述本发明的抗hTROP-2抗体和/或抗体-药剂复合物。
此外，本发明还提供肿瘤的治疗和/或诊断方法，其特征在于，其使用前述本发明的抗hTROP-2抗体和/或抗体-药剂复合物（即投与患者），而且，还提供前述本发明的抗hTROP-2抗体和/或抗体-药剂复合物在用于治疗和/或诊断肿瘤中的应用。
5.肿瘤的检测方法
本发明的肿瘤检测方法的特征在于，使前述本发明的抗hTROP-2抗体与从生物体采集的试样（以下称生物体试样）反应，检测发生反应的抗体的信号的方法。
如前所述，由于确认了hTROP-2在各种肿瘤细胞中特异性表达，hTROP-2，尤其是游离hTROP-2（hTROP-2的细胞外区域部分）可以作为各种肿瘤标志来使用。其中，优选作为人胰癌、人前列腺癌、人大肠癌、和人乳腺癌的靶标来使用。
因此，可以通过使本发明的抗hTROP-2抗体与生物体试样反应，检测发生反应的抗体的信号来检测肿瘤。获得的抗体的信号成为生物体试样中的抗原量（即hTROP-2量或游离hTROP-2量）的指标。使用本发明的抗体的肿瘤的检测，首先，使作为试样的从被验者中提取的生物体试样，例如作为检查对象的组织片或血液等与本发明的抗体通过抗原抗体反应结合。然后，基于结合的抗体量的测定结果，测定生物体试样中的目的抗原量，从而进行。该测定可以按照公知的免疫学测定法进行，例如，可以使用免疫沉淀法、免疫凝集法、标记免疫测定法、免疫比浊法、western blot法、流式细胞术法等。标记免疫测定法中，抗体的信号除了以用标记抗体直接检测的标记量表示之外，还可以以已知浓度或已知抗体效价的抗体作为标准液相对地表示。即，可以通过测定计测定标准液和试样，以标准液的值作为基准，相对地表示生物体试样中的抗体信号。作为标记免疫测定法，例如可以列举ELISA法、EI法、RIA法、萤光免疫测定（FIA）法、化学发光免疫测定法（Luminescenceimmunoassay）等。其中ELISA法由于简便和高灵敏度而尤其优选。
本发明中，可以将通过上述检测方法获得的检测结果作为指标来评价或诊断肿瘤的状态。例如，检测结果超过预定的基准值时判断为肿瘤阳性，在预定的基准值以下时判断为肿瘤阴性，为阳性时，判断为有发生任意一种肿瘤的可能性，可以评价肿瘤的状态。这里，所谓肿瘤的状态是指是否患有肿瘤或其进行程度，可以列举肿瘤发病的有无、进行度、恶性程度、转移的有无和复发的有无等。
在上述评价时，作为肿瘤的状态，可以选择1个，也可以组合选择多个。肿瘤的有无的评价，可以基于所获得的检测结果，通过以预定的基准值作为界限，判断是否患有肿瘤来进行。肿瘤的恶性程度是表示癌进行到何种程度的指标，也可以基于检测结果，对病期（Stage）分类再进行评价，或分类为早期癌或晚期癌再进行评价。例如，还可以将检测结果作为指标，评价为早期癌或晚期癌。肿瘤的转移，可以通过以检测结果作为指标，根据在从原发瘤的位置离开的位点是否出现新生物来评价。复发，可以根据在间歇期或缓解后检测结果是否再次超过预定的基准值来评价。
6.肿瘤的检测用或诊断用试剂盒
本发明的抗hTROP-2抗体可以以肿瘤的检测用或诊断用试剂盒的形态提供。本发明的试剂盒含有抗体，此外还可以含有标记物质、或用于固定抗体或该标记物的固定化试剂等。所谓抗体的标记物质是指用酶、放射性同位素、萤光化合物和化学发光化合物等标记的物质。本发明的试剂盒除了上述构成要素之外，还可以含有用于实施本发明的检测的其它试剂，例如标记物为酶标记物时，可以含有酶底物（显色性底物等）、酶底物溶解液、酶反应停止液、或试样用稀释液等。而且，还可以含有各种缓冲液、无菌水、各种细胞培养容器、各种反应容器（Eppendorf管等）、封闭剂（牛血清白蛋白（BSA）、脱脂乳、山羊血清等血清成分）、洗涤剂、表面活性剂、各种板、叠氮化钠等防腐剂和实验操作手册（说明书）等。
本发明的试剂盒可有效用于进行上述本发明的检测方法，其有用性极高。
以下，通过列举实施例对本发明进行更具体的说明，但本发明并不限于此。
〔实施例1〕
[hTROP-2基因的克隆]
hTROP-2全长基因的分离是通过RT-PCR法由人胎儿肝脏（10周大的胚胎）进行的。首先，基于hTROP-2基因（Genbank登录号No.NM002353）的序列设计了以下所示的PCR引物。
正向侧引物：5’-ttcctccgccccaccatggc-3’（序列号3）
反向侧引物：5’-ctcgagcaagctcggttcctttctc-3’（序列号4）
此时，反向侧引物中除去了终止密码子并添加了Xho I的限制酶消化序列。以由这些引物和人胎儿肝脏（10周大的胚胎）制备的总RNA（TAKARA）合成的cDNA为模板进行PCR反应。然后，利用琼脂糖凝胶电泳进行展开、进行目标条带的提取，克隆到pCRII载体（Invitrogen）中（pCRII-hTROP2）。通过测序，对所克隆的hTROP-2的cDNA进行了确认。
表达载体的构建：由pCRII-hTROP2切出含有hTROP-2基因的Eco RI/Xho I片段，插入到pcDNA4/
Figure BDA00002412077800441
A载体（Invitrogen）的EcoRI/Xho I位点，从而进行构建（pcDNA4-hTROP2-myc/His）。此外，由pcDNA4-hTROP2-myc/His切出含有hTROP-2基因的HindIII/Pme I片段，（Hind III切断位点进行了平滑末端化）、插入到pcDNA3.1（+）载体（Invitrogen）的Pme I位点，从而构建了具有新霉素耐性基因的表达载体（pcDNA3.1-hTROP2-myc/His）。
〔实施例2〕
[hTROP-2基因稳定细胞株的构建]
使用lipofectamine2000试剂（Invitrogen），将按照上述方法制作的编码hTROP-2的全长cDNA的表达载体（pcDNA3.1-hTROP2-myc/His）导入HEK293细胞（RIKEN）、HuH-7细胞（HSRRB）、7E2-C细胞（WO2005/052156中所记载的）、CHO-K1细胞（HSRRB）中，利用抗生素G418（遗传霉素，GIBCO BRL）进行选择后，建立了稳定表达hTROP-2的细胞株，从而获得。
〔实施例3〕
[hTROP-2细胞外区域的重组蛋白制作]
通过PCR法对编码hTROP-2细胞外区域的一部分（具体而言，包含序列号2所示的氨基酸序列中的第1位～第263位的氨基酸的区域）的基因片段进行了扩增。扩增中使用的引物如下所示。
正向侧引物：5’-ttcctccgccccaccatggc-3’（序列号3）
反向侧引物：5’-ctcgagctcgtccaggtaatagatgagcg-3’（序列号5）
此时，反向侧引物中添加了Xho I限制酶消化位点。利用琼脂糖凝胶电泳对PCR法扩增获得的DNA片段进行展开，使用QIAquick（注册商标）Gel Extraction Kit（QIAGEN）进行纯化。纯化而得的DNA片段亚克隆至pCR Blunt载体（Invitrogen）中（pCRB-hTROP-2EC），确认基因序列。然后，由pCRB-hTROP-2EC切出含有编码hTROP-2的细胞外区域的基因片段的Eco RI/Xho I片段，插入到pcDNA4/
Figure BDA00002412077800451
A载体（Invitrogen）的Eco RI/Xho I位点（pcDNA4mH-hTROP-2EC）。进而，为了在pcDNA4mH-hTROP-2EC的Bam HI/Eco RI位点制作Nru I限制酶切断位点，连接、插入以下所示的寡核苷酸。
寡核苷酸1：5’-gatccactagtcgcgagtggtgg-3’（序列号6）
寡核苷酸2：5’-aattccaccactcgcgactagtg-3’（序列号7）
同样地在pcDNA4mH-hTROP-2EC的Pme I位点插入pBglII连接子（TAKARA）（pcDNA4mH-NB-hTROP-2EC）。为了使用杆状病毒（baculovirus）制作重组蛋白，由pcDNA4mH-NB-hTROP-2EC切出含有编码hTROP-2的细胞外区域的基因片段的Nru I/Bgl II片段，插入到pPSC8载体（日本农产工业）的Nru I/Bgl II位点（pPSC8-hTROP2EC）。委托日本农产工业来进行使用杆状病毒制作hTROP-2细胞外区域的重组蛋白。
hTROP-2细胞外区域的重组蛋白的纯化如下进行。在含有重组蛋白的培养上清中加入Ni Sepharose6Fast Flow（GEHealthcare），在4℃下进行2小时结合。然后，使用Econo柱（BIORAD），用含有20mM咪唑的磷酸缓冲液洗涤，用含有300mM咪唑的磷酸缓冲液进行洗脱，从而进行纯化。
〔实施例4〕
[人EpCAM cDNA的分离和表达载体的构建]
人EpCAM全长基因的分离是通过RT-PCR法由人胎儿肝脏（10周大的胚胎）进行的。首先，基于人EpCAM基因（Genbank登录号No.NM002354）的序列设计了以下所示的PCR引物。
正向侧引物：5’-tcctcgtgtcccactcccgg-3’（序列号8）
反向侧引物：5’-ctcgagtgcattgagttccctatgc-3’（序列号9）
此时，反向侧引物中除去了终止密码子并添加了Xho I的限制酶消化序列。以由这些引物和人胎儿肝脏（10周大的胚胎）源的总RNA（TAKARA）合成的cDNA为模板进行PCR反应。然后，利用琼脂糖凝胶电泳进行展开、进行目标条带的提取，克隆到pCRII载体（Invitrogen）中（pCRII-hEpCAM）。通过测序，对克隆的人EpCAM的cDNA进行了确认。
表达载体的构建：由pCRII-hEpCAM切出含有人EpCAM基因的Eco RI/Xho I片段，插入到pcDNA4/
Figure BDA00002412077800461
A载体（Invitrogen）的EcoRI/Xho I位点，从而进行构建（pcDNA4-hEpCAM-myc/His）。此外，由pcDNA4-hEpCAM-myc/His切出含有人EpCAM基因的HindIII/Pme I片段，（Hind III切断位点进行了平滑末端化）、插入到pcDNA3.1（+）载体（Invitrogen）的Pme I位点，从而构建了具有新霉素耐性基因的表达载体（pcDNA3.1-hEpCAM-myc/His）。
〔实施例5〕
[抗hTROP-2单克隆抗体的制作]
作为免疫原，使用了hTROP-2稳定表达细胞株（HEK293-hTROP-2细胞、CHO-K1-hTROP-2细胞、7E2-C-hTROP-2细胞）、在细胞表面内源性表达hTROP-2蛋白的人胰脏癌细胞株（PK-59，RCB1901；由RIKEN cell bank购入）、或通过上述方法制作的hTROP-2的细胞外区域的重组蛋白。
在hTROP-2稳定表达细胞株时将1×107细胞、在重组hTROP-2蛋白时将20μg蛋白分别与免疫辅助剂TiterMax Gold（Funakoshi株式会社）以1：1混合，制备乳浊液，注射到小鼠（C57/BL6，Balb/c）的两脚掌、或腹腔内（初次免疫）。在对两脚掌短期免疫时，从初次免疫起3天后及10天后进行加强免疫，在最后一次免疫的次日，取出两膝窝的淋巴结，制备淋巴细胞。在向腹腔内长期免疫时，从初次免疫起以每周1次的比例进行加强免疫（在1～2个月内实施），按照常规方法由脾脏分离B细胞。加强免疫时，在细胞免疫的情况下使用5×106细胞的用PBS悬浮的细胞悬浮液，在蛋白质抗原的情况下，使用5μg的PBS溶液。
将制备的淋巴细胞和小鼠骨髓瘤细胞株（P3-X63-Ag8.653）以3：1的比例混合，用聚乙二醇法进行细胞融合，用含有HAT（氨基蝶呤、次黄嘌呤、胸腺嘧啶脱氧核苷）的甲基纤维素培养基（商品名：ClonaCell-HY Cloning Medium D；Stem Cell）培养7～28天，将增殖出来的杂交瘤的单一集落一个一个地挑到96孔平底培养板中，使用含有HAT的液体选择培养基在5%CO2培养箱中培养。对来自于增殖出来的单一集落的杂交瘤的培养上清，利用Cell ELISA（后述）进行一次筛选、通过使用HuH-7-hTROP-2细胞，PK-59的FACS解析进行2次筛选，从而建立了300种产生识别在活细胞的细胞表面表达的hTROP-2蛋白的抗hTROP-2单克隆抗体的杂交瘤。
〔实施例6〕
[使用Cell ELISA进行的一次筛选]
在96孔培养板（BD Falcon）中，以3×104细胞/孔交替接种CHO-K1细胞（hTROP-2阴性对照：由Japan Health SciencesFoundation购入）、和CHO-K1-hTROP-2细胞（或HuH-7细胞（hTROP-2阴性对照：由Japan Health Sciences Foundation购入）和HuH-7-hTROP-2细胞），在5%CO2、37℃下培养1～2天。通过倾析除去细胞培养液，接下来用冰冷PBS洗涤后，用4%多聚甲醛-PBS处理5分钟，从而将细胞固定，用冰冷PBS洗涤后，作为ELISA板。之后，按照常规方法进行ELISA法。具体如下所示。
首先，在室温下用2%脱脂乳-PBS溶液进行30分钟～1小时封闭。接下来，加入杂交瘤培养上清，在室温下反应1小时后，用0.1%Tween20-PBS溶液洗涤3次。加入作为二抗的用封闭溶液稀释1000倍的辣根过氧化物酶（HRP）标记抗小鼠IgG（GEHealthcare Biosciences），在室温下反应1小时后，用0.1%Tween20-PBS溶液洗涤3次。添加TMB（3,3',5,5'-四甲基联苯胺：SIGMA）底物溶液进行显色反应，加入1M硫酸使反应停止。使用酶标仪Model550（BIO RAD）测定吸光度（405nm）。将相对于阴性对照显示高吸光度值的杂交瘤培养上清的相应杂交瘤在24孔平底培养板中进行扩大培养，转移到使用FACS解析进行的二次筛选（后述）。
〔实施例7〕
[使用FACS解析进行的二次筛选]
对上述用Cell ELISA进行的一次筛选中为阳性的杂交瘤，使用FACS解析进行二次筛选。就细胞而言，以不表达hTROP-2的人肝癌细胞株HuH-7细胞为阴性对照，以相对于表达hTROP-2的稳定细胞株HuH-7-hTROP-2细胞的反应性为指标进行评价，接下来以与在细胞表面内源性表达hTROP-2蛋白的人胰脏癌细胞株PK-59细胞（RCB1901；由RIKEN cell bank购入）的反应性进行评价。
通过胰蛋白酶处理将细胞从培养皿剥离，制备细胞悬浮液（细胞密度2×106cells/mL）。使在使用Cell ELISA进行的一次筛选中显示阳性反应的杂交瘤上清和细胞悬浮液100μL于4℃反应20分钟。用PBS洗涤后，使之与PE标记抗小鼠IgG（BDPharmingen）（0.1μg）反应（4℃，30分钟）后，用FACS Calibur（Becton，Dickinson and Company）解析。
最终，建立了约300种产生识别在活细胞的细胞表面表达的hTROP-2蛋白的抗hTROP-2单克隆抗体的杂交瘤。
〔实施例8〕
[同种型的鉴定]
使用小鼠单克隆抗体同种型测定试剂盒（Serotec公司）并按照试剂盒所附方法进行制作的抗hTROP-2单克隆抗体的同种型的鉴定。
〔实施例9〕
[TROP-2抗体的腹水化及抗体纯化]
在预先（7天前）投与2,6,10,14-四甲基十五烷（pristane）的BALB/c裸小鼠的腹腔内投与3×106个按照上述方法制作的杂交瘤的克隆，采集2周后的腹水。进而，进行辛酸沉淀、使用蛋白G柱（HiTrap protein G；GE Healthcare Biosciences）或蛋白A柱（HiTrap protein A；GE Healthcare Biosciences）进行亲和纯化，从而由该腹水获得各杂交瘤克隆所产生的抗hTROP-2单克隆抗体。
〔实施例10〕
[抗原亲和性的测定（Kd值的测定）]
通过使用了ELISA的方法计算所制作的抗hTROP-2单克隆抗体的抗原亲和性（Kd值）（Djavadi-Ohaniance L.et al（1996），In Antibody Engineering，Chapter4，pp77-97.IRLPress，Oxford）。
具体而言，在96孔培养板（Corning）中添加纯化的重组hTROP-2蛋白（0.1μg/mL），将抗原固定化（室温、1小时，或4℃、一晚）。然后，用PBS洗涤3次，加入2%脱脂乳（PBS溶液）进行封闭（室温，1小时）。用PBS洗涤2次后，在上述ELISA板中添加预先混合抗原溶液（纯化hTROP-2蛋白；50，25，12.5，6.25，3.125nM）和抗hTROP-2单克隆抗体的各克隆（0.5nM）并用其平衡化的抗原-抗体复合物，并使之反应（室温，1小时）。用PBS洗涤3次后，使之与用封闭液稀释的HRP标记抗小鼠IgG（最终浓度1μg/mL）（GE Healthcare Biosciences）反应（室温，1小时）。接下来用0.1%Tween20-PBS溶液洗涤3次后，添加TMB（3,3',5,5'-四甲基联苯胺：SIGMA）底物溶液，进行显色反应，加入1M硫酸使反应停止。使用酶标仪Model550（BIO RAD）测定吸光度。
解离常数（Kd）的计算式如下所示。
基于质量作用定律，抗原抗体反应如下表示。
Figure BDA00002412077800511
Kd＝k2/k1＝Agf×Abf/Ag-Ab＝Agf×Abf/×····(2)
式（2）中，Agf表示游离抗原的浓度，Abf表示游离抗体的浓度，Ag-Ab表示抗原-抗体复合物的浓度，当设Ag-Ab=x时，游离抗体浓度为
Abf＝Abt-×·······(3)
式（2）变为：
Kd＝Agf×(Abt-x)/×·······(4)
对式（4）的两边乘以x/Kd×Abt时，
x/Abt＝Agf×(1-x/Abt)×1/Kd
x/Abt×1/Agf＝(1-x/Abt)×1/Kd·······(5)
在式（5）中，当设X＝x/Abt，Y＝x/Abt×Agf时，
Y＝(1-X)×1/Kd·······(6)
由式（6）算出Kd值。
按照上述方法测定了所制作的300克隆的抗hTROP-2单克隆抗体的Kd值，结果Kd值显示为1×10-10（M）以下的克隆为133克隆，Kd值显示为1×10-11（M）以下的克隆为59克隆，Kd值显示为1×10-12（M）以下的克隆为2克隆。
在体内显示肿瘤生长抑制活性的抗hTROP-2单克隆抗体中，K5-70（小鼠IgG2a）、T6-16（小鼠IgG2a）、K5-107（小鼠IgG1）、K5-116-2-1（小鼠IgG1）、及T5-86（小鼠IgG1）的Kd值分别依次为6.8×10-12（M）、4.3×10-12（M）、4.7×10-12（M）、2.69×10-11（M）、及8.49×10-11（M）（图1、表1）。
表1
抗hTROP-2单克隆抗体的Kd值
Figure BDA00002412077800521
〔实施例11〕
[抗hTROP-2单克隆抗体与人癌细胞株的反应性]
人癌细胞株（人肿瘤细胞株）使用了由日本卫生科学基金会（Japan Health Sciences Foundation，HSRRB）、RIKEN细胞库（RIKEN），美国模式培养物保藏所（American Type CultureCollection，ATCC）、欧洲细胞培养物收藏中心（EuropeanCollection of Cell Cultures，ECACC）、德国典型菌种保藏中心（German Collection of Microorganisms and Cell Cultures，DSMZ）获得的细胞株。具体列举如下。
huH-1（HSRRB），HUH-6（HSRRB），HuH-7（HSRRB），JHH-5（HSRRB），JHH-6（HSRRB），JHH-7（HSRRB），HLE（HSRRB），HLF（HSRRB），HepG2（HSRRB），Alexander（HSRRB），KP-1N（HSRRB），KP-1NL（HSRRB），KP-2（HSRRB），KP-3（HSRRB），KP-3L（HSRRB），PK-1（RIKEN），PANC-1（RIKEN），MIAPaCa-2（HSRRB），PK-59（RIKEN），PK-45H（RIKEN），PK-45P（RIKEN），BxPC-3（ATCC），SUIT-2（HSRRB），TCC-PAN2（HSRRB），SW480（ATCC），DLD-1（HSRRB），LoVo（HSRRB），COLO-320（RIKEN），CACO-2（RIKEN），CW-2（RIKEN），HCT116（ATCC），HCC-56（HSRRB），MCF-7（HSRRB），JIMT-1（DSMZ），HCC1143（ATCC），A549（HSRRB），DU145（RIKEN），PC-3（HSRRB）
对于癌细胞，通过胰蛋白酶处理而由培养皿剥离，并制备细胞悬浮液（细胞密度为2×106cells/mL）。在细胞悬浮液100μL中加入抗hTROP-2单克隆抗体（0.1μg），4℃下反应20分钟。用PBS洗涤后，与PE标记抗小鼠IgG（BD BiosciencesPharmingen)(0.1μg）反应（4℃、30分钟），然后通过FACSCalibur（Becton，Dickinson and Company）解析。
所制作的抗hTROP-2抗体均不与不内源性表达hTROP-2的人肝癌细胞株HuH-7结合，另一方面，显示出与表达hTROP-2基因的稳定细胞株HuH-7-hTROP-2细胞结合（图2）。接下来，通过FACS解析对所制作的hTROP-2单克隆抗体与人癌细胞株（在细胞表面内源性表达的hTROP-2蛋白）的反应性进行研究，结果显示所制作的300种抗hTROP-2单克隆抗体均与人胰脏癌细胞株（PK-59、BxPC-3）结合，特别是，和仅PE标记抗小鼠IgG（BD BIOSCIENCES PHARMINGEN）反应时相比，在体内显示肿瘤生长抑制活性的K5-70，T6-16，K5-107，K5-116-2-1，T5-86抗体在PK-59细胞的情况下，平均荧光强度为K5-70（44倍）、T6-16（59倍）、K5-107（89倍）、K5-116-2-1（122倍）、T5-86（15倍）（图3），在BxPC-3细胞的情况下，为K5-70（45倍）、T6-16（25倍）、K5-107（90倍）、K5-116-2-1（121倍）、T5-86（10倍），各抗体均显示为强结合性（图4）。
在PK-59和BxPC-3以外的人癌细胞株中，在胰脏癌细胞株12种之中，与KP-2，KP-3L，PK-1，PK-45H、SUIT-2、TCC-PAN2结合，不与KP-1N，KP-1NL，KP-3，PANC-1，MIA-PaCa2结合（图5）。在人大肠癌细胞株的情况下，与CACO-2，SW480，DLD-1，HCT116结合，不与COLO-320，CW-2结合（图6）。此外，与JIMT-1、HCC1143（均为人乳腺癌细胞株），PC-3、DU145（均为人前列腺癌细胞株）结合，识别在多种人癌细胞株的细胞表面内源性表达的hTROP-2蛋白（图6）。
〔实施例12〕
[与小鼠TROP-2蛋白、人TROP-1/EpCAM蛋白的交叉反应性]
为了调查所制作的hTROP-2单克隆抗体的特异性，通过FACS解析研究了与和hTROP-2蛋白在氨基酸序列方面显示80％同源性的小鼠TROP-2蛋白、与hTROP-2蛋白在氨基酸序列方面显示50％同源性的人TROP-1/EpCAM的反应性。
具体而言，将包含小鼠TROP-2基因（GenBank登录号No.NM_020047、Y08830）的全长cDNA的表达载体（小鼠TROP-2-pcDNA3.1（+），东京大学分子细胞生物学研究所惠赠）、以及包含人TROP-1/EpCAM基因（GenBank登录号No.NM002354）的全长cDNA的表达载体（pcDNA3.1-hEpCAM-myc/His），分别使用Lipofectamine2000试剂（Invitrogen）对CHO-K1细胞进行瞬时基因导入，24～48小时后通过胰蛋白酶处理由培养皿剥离细胞，制备细胞悬浮液，依次与所制作的hTROP-2单克隆抗体（0.1μg）、PE标记抗小鼠IgG反应后，通过FACSCalibur进行解析。
在瞬时表达小鼠TROP-2基因的CHO-K1细胞中，用作阳性对照的与小鼠TROP-2显示交叉反应的T2-102抗体（小鼠IgG1）显示出强烈结合，另一方面，K5-70，T6-16，K5-107，K5-116-2-1，T5-86抗体与小鼠TROP-2不显示交叉反应（图7）。
同样地，在瞬时表达人EpCAM/TROP-1基因的CHO-K1细胞中，用作阳性对照的抗人EpCAM单克隆抗体（BDBIOSCIENCES PHARMINGEN）显示出强烈结合，另一方面，K5-70，T6-16，K5-107，K5-116-2-1，T5-86抗体与人EpCAM/TROP-1不显示交叉反应（图8）。
以上结果表明，所制作的hTROP-2单克隆抗体、特别是在体内显示抗肿瘤活性的K5-70，T6-16，K5-107，K5-116-2-1，T5-86抗体特异性与hTROP-2结合。
〔实施例13〕
[细胞增殖抑制活性的测定]
作为调查抗hTROP-2单克隆抗体的hTROP-2的功能抑制的方法之一，基于使用TetraColor ONE（生化学工业）的活细胞数的测定，评价了对在细胞表面内源性表达hTROP-2的人癌细胞的细胞增殖的影响。具体而言，按照使PK-59细胞在含有0.5%的胎牛血清（BioWest公司制）的RPMI1640培养基中达到2×105细胞/mL的细胞浓度的方式制备细胞悬浮液，在96孔培养板中各接种100μL。接下来，添加小鼠IgG（阴性对照）、抗hTROP-2单克隆抗体（最终浓度0.1μg/mL、1μg/mL），在37℃、5%CO2培养箱中培养72小时。作为比较对照，使用市售的抗hTROP-2单克隆抗体（克隆YY01，Santa Cruz）。在细胞中添加TetraColorONE（生化学工业），在5%CO2培养箱中反应1～2小时。使用酶标仪对反应后的96孔培养板直接测定波长490nm（对照波长：655nm）的吸光度。各组在3孔中实施，通过学生t检验（Student’s t检验）进行差异显著性检验，将P<0.05判定为统计学上显著。
目前，通过上述方法对本公司制作的抗hTROP-2单克隆抗体中的约160克隆调查了对PK-59细胞的细胞增殖的效果，结果可以确认，与小鼠IgG（阴性对照）相比，在体内显示肿瘤生长抑制活性的T6-16、T5-86、K5-70、K5-107具有20%～40%的细胞增殖抑制活性，明确了这些抗hTROP-2抗体与在人癌细胞表面表达的hTROP-2蛋白结合并中和hTROP-2蛋白的功能，具有抑制癌细胞增殖的活性（图9）。
〔实施例14〕
[划痕试验（Scratch assay）]
通过划痕试验对抗hTROP-2单克隆抗体的人癌细胞的迁移能力进行评价。按照使PK-59细胞在含有10%胎牛血清的RPMI1640培养基中达到3×105cell/mL的细胞浓度的方式制备细胞悬浮液，在96孔培养板中各接种100μL。在细胞达到铺满的阶段，采用用枪头（tip）的尖端沿着纵向划线的方式剥离单层培养的细胞的一部分。按照使抗hTROP-2单克隆抗体、以及作为阴性对照的小鼠IgG的最终浓度达到0.1以及1μg/mL的方式在培养基中进行添加，培养24小时，拍摄抗体添加前（0天）和培养24小时后（1天）的剥离的区域的照片，测定细胞间距离。此外，通过Scion Image软件将剥离区域的面积定量。各组在8孔中实施，通过学生t检验进行差异显著性检验，将P<0.05判定为统计学上显著。
调查了hTROP-2抗体对浸润至划痕区域的细胞的运动能力的效果。与细胞增殖抑制检测同样地对具有药效的抗体进行评价。评价方法：拍摄0天（抗体添加时）以及1天（经过24小时后）的细胞，对迁移距离（μm）以及划痕区域的面积进行图像解析。结果如图10所示，细胞的运动能力可见到明显差异。与对照相比，本试验中使用的T6-16以及K5-70均可观察到显著的增殖抑制，再现性试验中也能够确认同样的倾向。特别是，T6-16的情况下P<0.01（利用学生t检验），可确认与体内试验的相关性。
〔实施例15〕
[利用荷瘤小鼠进行的、抗hTROP-2单克隆抗体的药效评价]
预防模型
通过胰蛋白酶处理来剥离表达hTROP-2的胰癌细胞株（PK-59、BxPC-3），用PBS制备出1×108个细胞/mL的细胞悬浮液，在冰上与等量的Matrigel（BD Biosciences Pharmingen）混合。在6周龄的雌性裸小鼠（Balb/c、nu/nu）的右胁腹的皮下用26G的注射器注射100μL（5×106个细胞）。在癌细胞移植当天（1天），将小鼠分组，开始投与抗体（1、5、或10mg/kg体重，腹腔内投与）。之后，按3天1次的间隔进行同样的投与。根据肿瘤形成频率和肿瘤体积评价抗肿瘤活性。肿瘤体积的测量采用以下计算式。
肿瘤体积（mm3）=（短径）2×（长径）×π/6
治疗模型
通过胰蛋白酶处理来剥离表达hTROP-2的胰癌细胞株（PK-59、BxPC-3），用PBS制备出1×108个细胞/mL的细胞悬浮液，在冰上与等量的Matrigel（BD Biosciences Pharmingen）混合。在6周龄的雌性裸小鼠（Balb/c、nu/nu）的右胁腹的皮下用26G的注射器注射100μL（5×106个细胞）。癌细胞移植5～6天后，将肿瘤体积生长到50～150mm3（平均值约为100mm3）的小鼠分组，将分组的当天作为第1天（1天），开始投与抗体。抗体按3天1次的间隔进行腹腔内投与（10mg/kg体重）。通过测量肿瘤体积评价抗肿瘤活性。差异显著性检验用学生t检验（Student’s t检验）进行，将P<0.05判定为统计学上显著。
〔实施例16〕
[人胰癌细胞异种移植模型中的、抗hTROP-2单克隆抗体的体内抗肿瘤活性的研究]
以hTROP-2为靶标的癌治疗用抗体在异种移植治疗模型中必须显示出使表达hTROP-2的肿瘤组织特异性死亡或抑制肿瘤生长的活性。
通过胰癌细胞株PK-59细胞的异种移植治疗模型对本发明中新制作的抗hTROP-2单克隆抗体（约160克隆）进行评价。PK-59细胞表达作为胰脏癌干细胞标志的EpCAM（图11A）（Chenwei Li，et al.Cancer Res2007；67：（3）.1030-1037），在细胞表面表达与耐药性相关的作为ABC转运蛋白的P-糖肽/MDR1（图11B），ABCG2/CDw338（图11C）（Chen,C.J.et al.Cell47（3），381-389（1986），Allikmets,R.，et al.Hum.Mol.Genet.5（10），1649-1655（1996）。此外，包含胰脏癌干细胞特征性的CD24和CD44共阳性的细胞组分（8.93%）（图11D），推测其为恶性度高的人胰脏癌细胞株（Chenwei Li，etal.Cancer Res2007；67：（3）.1030-1037、Jane E.Visvaderand Geoffrey J.Lindeman.Nat Rev Cancer.Vol.8（10）：755-68，2008）。
新制作的约160克隆中，大部分克隆在PK-59细胞异种移植治疗模型中不显示药效，其中也获得了显示显著的肿瘤生长抑制活性的以下克隆，即克隆K5-70、T6-16、K5-107、T5-86及K5-116-2-1。
克隆K5-70（小鼠IgG2a）投与组中，肿瘤生长速度在统计学上显著受到抑制，投与开始后第21天（21天），对照组（N=14）的肿瘤体积为1200.8±377.3mm3，与此相对，克隆K5-70投与组则为748.7±162.9mm3（P<0.01，利用学生t检验）（图12A）。设抗体投与开始时点的肿瘤体积为1.0，第21天（21天）的肿瘤体积方面，对照组为12.5，与此相对，克隆K5-70投与组为7.8（图12A）。摘出的肿瘤重量方面，对照组为0.73±0.26g，与此相对，克隆K5-70投与组则为0.43±0.14g（P<0.01，利用学生t检验），显示约60％的抑制（图12B）。
同样地，克隆K5-107（小鼠IgG1）投与组（N=8）、克隆T6-16（小鼠IgG2a）投与组（N=8）、克隆T5-86（小鼠IgG1）及克隆K5-116-2-1（小鼠IgG2a）投与组（N=8）中，肿瘤生长速度在统计学上也显著受到抑制。投与开始后第17天（17天），对照组（N=8）的肿瘤体积为1039.3±271.6mm3，与此相对，克隆K5-107投与组（N=8）以及克隆T6-16投与组（N=8）分别为698.2±175.9mm3（P<0.05，利用学生t检验）、707.2±254.5mm3（P<0.05，利用学生t检验）。同样地，投与开始后第16天（16天），对照组（N=8）的肿瘤体积为797.0±172.9mm3，与此相对，克隆K5-116-2-1投与组（N=8）为508.5±225.2mm3（P<0.05，利用学生t检验）（图13）。
另一方面，关于克隆T5-86，投与开始后第15天（15天），对照组（N=8）的肿瘤体积为1033.2±319.4mm3，与此相对，克隆T5-86投与组（N=8）则为744.1±289.1mm3，虽然肿瘤体积的比较并无显著差异，但同天的肿瘤重量比较中，对照组为0.62±0.14g，与此相对，克隆T5-86投与组则为0.44±0.13g（P<0.05，利用学生t检验），显示出显著的抑制。
此外，下述表2中分别示出各克隆抗体投与组的实验最后一天的肿瘤体积以及肿瘤重量与对照组的比率（T/C）。如表2所示，各克隆抗体投与组分别获得T/C=62～72%的显著的抑制。
表2
Figure BDA00002412077800601
＊P＜0.05，＊＊P＜0.01(利用学生t检验)
此外，分别研究了克隆K5-70、克隆T6-16、克隆K5-116-2-1在胰癌细胞株PK-59细胞的异种移植预防模型中的抗肿瘤活性。就各个克隆而言，抗体投与后所有个体中（N=8）肿瘤生长均受到抑制，投与开始后第18天（18天），对照组（N=8）的肿瘤体积为880.8±206.4mm3，与此相对，克隆K5-70投与组（10mg/kg体重）为62.4±80.4mm3（P<0.01，利用学生t检验），显示92.9%的肿瘤生长抑制活性；投与开始后第28天（28天），对照组（N=8）的肿瘤体积为992.3±250.8mm3，与此相对，克隆T6-16投与组（10mg/kg体重）为152.4±122.3mm3（P<0.01，利用学生t检验），显示84.6%的肿瘤生长抑制活性；克隆K5-116-2-1投与组（10mg/kg体重）中，投与开始后第20天（20天），对照组（N=8）的肿瘤体积为1159.4±413.3mm3，与此相对，克隆K5-116-2-1投与组（10mg/kg体重）为207.7±319.2mm3（P<0.01，利用学生t检验），显示82.1%的肿瘤生长抑制活性（图14，表3）。此外，所有的实验中，在对照组和抗hTROP-2抗体投与组之间，整个试验期间平均体重的变化方面无显著差异。
下述表3分别示出各克隆抗体投与组的、实验最后一天的肿瘤体积以及肿瘤重量与对照组的比率（T/C）。如表3所示，各克隆抗体投与组可观察到显著的肿瘤生长抑制，特别是克隆K5-70投与组，确认到T/C=10%以下的显著效果。
表3
＊＊P＜0.01(利用学生t检验)
公知的抗TROP-2抗体AR47A6.4.2（美国专利第7420041号）虽然在使用各种人癌细胞株时以20mg/kg的投与量在异种移植预防模型中显示出肿瘤生长抑制效果，且在人胰脏癌细胞株PL45细胞时几乎100%抑制肿瘤生长，但在胰脏癌细胞株BxPC-3中为约50%、在前列腺癌细胞株PC-3中为约40%、在乳腺癌细胞株MCF-7中为约60%、在大肠癌细胞株Colo205中为约40%的肿瘤生长抑制效果，与此相对，本申请发明的抗hTROP-2抗体以一半投与量（10mg/kg）发挥了更强的肿瘤生长抑制效果。
〔实施例17〕
[人胰癌细胞株BxPC-3细胞的异种移植模型（预防模型以及治疗模型）中的抗肿瘤活性的研究]
与上述使用人胰癌细胞株PK-59细胞的异种移植治疗模型时同样地，研究克隆K5-70在人胰癌细胞株BxPC-3细胞的异种移植预防模型及异种移植治疗模型中的抗肿瘤活性。
克隆K5-70投与组（N=8）中，与对照组（N=8）相比，肿瘤生长显著受到抑制，第52天（52天），对照组（N=8）的肿瘤体积为616.3±266.8mm3，与此相对，克隆K5-70投与组（N=8）则为236.0±136.4mm3，显示61.7%的肿瘤生长抑制效果（P<0.01，利用学生t检验）（图15）。
由以上结果可以明确，抗hTROP-2单克隆抗体对至少2种以上的多种癌细胞种类在体内显示显著的肿瘤生长抑制活性。
〔实施例18〕
[抗hTROP2抗体（克隆K5-70）在表达hTROP2的胰癌细胞株（PK-59细胞）异种移植预防模型中的用量依赖性的抗肿瘤活性]
为了更详细地研究抗hTROP-2抗体在体内的肿瘤生长抑制活性，进行了用量依赖性试验。如图16所示，可以明确的是，PK-59细胞的肿瘤生长通过投与K5-70而用量依赖性地受到抑制，抗体投与后第21天（21天），对照组（N=7）的肿瘤体积为937.8±295.3mm3，与此相对，K5-70（1mg/kg）投与组（N=8）为493.5±305.1mm3，显示50%的抑制率，K5-70（5mg/kg）投与组（N=8）为124.7±89.0mm3，显示出90%的抑制效果，与公知的抗TROP-2抗体AR47A6.4.2（美国专利第7420041号）相比，以20分之1的投与量显示出几乎同等的在体内的肿瘤生长抑制效果，以4分之1的投与量显示出更高的90%的抑制效果。
〔实施例19〕
[表位分析]
人/小鼠嵌合TROP-2蛋白的制作
使用PCR法制作了人/小鼠嵌合TROP-2基因。基于人TROP-2基因序列以及小鼠TROP-2基因序列（Genbank登录号No.NM_020047），设计了以下所示的PCR引物。
人/小鼠TROP-2-C引物
Y606（正向侧）：5’-cctgagcctacgctgcgacgaagtggtgcg-3’（序列号10）
Y607（反向侧）：5’-cgcaccacttcgtcgcagcgtaggctcagg-3’（序列号11）
人/小鼠TROP-2-A引物
Y612（正向侧）：5’-gactgctccacgctgacttccaagtgcctg-3’（序列号12）
Y613（反向侧）：5’-caggcacttggaagtcagcgtggagcagtc-3’（序列号13）
人/小鼠TROP-2-B引物
Y614（正向侧）：5’-ctcgtggacaacgatggcctctacgacccg-3’（序列号14）
Y615（反向侧）：5’-cgggtcgtagaggccatcgttgtccacgag-3’（序列号15）
小鼠/人TROP-2-D引物
Y608（正向侧）：5’-ccaaagcctgcgctgcgatgagctggtgcgc-3’（序列号16）
Y609（反向侧）：5’-gcgcaccagctcatcgcagcgcaggctttgg-3’（序列号17）
小鼠/人TROP-2-E引物
Y616（正向侧）：5’-agcttcctatccgcggtgcactacgagcag-3’（序列号18）
Y617（反向侧）：5’-ctgctcgtagtgcaccgcggataggaagct-3’（序列号19）
小鼠/人TROP-2-F引物
Y618（正向侧）：5’-gacattaaaggcgagtctctattccagggc-3’（序列号20）
Y619（反向侧）：5’-gccctggaatagagactcgcctttaatgtc-3’（序列号21）
小鼠TROP-2引物
正向侧：5-ctactccaccccaccctggcg-3’（序列号22）
反向侧：5’-ctcgagcaagctaggttcgcttctc-3’（序列号23）
在小鼠TROP-2反向侧引物中去掉终止密码子，添加Xho I的限制酶消化序列。所制作的人/小鼠嵌合TROP-2蛋白的示意图如图17所示。
hmTROP-2-A嵌合蛋白是从hTROP-2蛋白的N末端起至第69位的多肽和从小鼠TROP-2蛋白的第64位起至C末端的多肽所构成的嵌合蛋白。hmTROP2-B嵌合蛋白是从hTROP-2蛋白的N末端起至第101位的多肽和从小鼠TROP-2蛋白的第96位起至C末端的多肽所构成的嵌合蛋白。hmTROP2-C嵌合蛋白为从hTROP-2蛋白的N末端起至第145位的多肽和从小鼠TROP-2蛋白的第140位起至C末端的多肽所构成的嵌合蛋白。mhTROP-2-D嵌合蛋白是从小鼠TROP-2蛋白的N末端起至第139位的多肽和从hTROP-2蛋白的第146位起至C末端的多肽所构成的嵌合蛋白。mhTROP-2-E嵌合蛋白是从小鼠TROP-2蛋白的N末端起至第187位的多肽和从hTROP-2蛋白的第194位起至C末端的多肽所构成的嵌合蛋白。mhTROP-2-F嵌合蛋白是从小鼠TROP-2蛋白的N末端起至第227位的多肽和从hTROP-2蛋白的234位起至C末端的多肽所构成的嵌合蛋白。
用于制作上述嵌合蛋白的表达载体具体通过以下方法构建。为了制作hmTROP-2-A嵌合基因，以hTROP-2基因为模板，使用hTROP-2正向侧引物及人/小鼠TROP-2-A引物Y613进行PCR。同样地，以小鼠TROP-2基因为模板，使用人/小鼠TROP-2-A引物Y612及小鼠TROP-2反向侧引物进行PCR。将PCR所扩增的DNA片段用聚丙烯酰胺凝胶展开，通过目标条带的提取而回收。接下来，将所提取的2种DNA片段混合作为模板，使用hTROP-2正向侧引物及小鼠TROP-2反向侧引物进行PCR。将PCR产物用琼脂糖凝胶电泳展开，提取目标DNA片段。将所提取的DNA片段克隆至pCR（注册商标）-Blunt载体（Invitrogen）（pCRB-hmTROP-2-A）来确认基因序列。动物细胞用表达载体如下制作：通过Eco RI/Xho I消化，由pcDNA3.1-hTROP-2-myc/His除去hTROP-2基因，插入由pCRB-hmTROP-2-A制备的含有hmTROP-2-A嵌合基因的Eco RI/Xho I片段（pcDNA3.1-hmTROP-2-A-myc/His）。此外，hmTROP-2-B（使用人TROP-2正向侧引物、人/小鼠TROP-2-B引物Y615、人/小鼠TROP-2-B引物Y614及小鼠TROP-2反向侧引物）、hmTROP-2-C（使用人TROP-2正向侧引物、人/小鼠TROP-2-C引物Y607及人/小鼠TROP-2-C引物Y606、小鼠TROP-2反向侧引物）、mhTROP-2-D（使用小鼠TROP-2正向侧引物、小鼠/人TROP-2-D引物Y609及小鼠/人TROP-2-D引物Y608、人TROP-2反向侧引物）、mhTROP-2-E（使用小鼠TROP-2正向侧引物、小鼠/人TROP-2-E引物Y617及小鼠/人TROP-2-E引物Y616、人TROP-2反向侧引物）、mhTROP-2-F（使用小鼠TROP-2正向侧引物、小鼠/人TROP-2-F引物Y619及小鼠/人TROP-2-F引物Y618、人TROP-2反向侧引物）也通过同样的方法制作嵌合基因、构建表达载体（pcDNA3.1-hmTROP-2-B-myc/His、pcDNA3.1-hmTROP-2-C-myc/His、pcDNA3.1-hmTROP-2-D-myc/His、pcDNA3.1-hmTROP-2-E-myc/His、pcDNA3.1-hmTROP-2-F-myc/His）。
恒定表达hTROP-2、人/小鼠嵌合TROP-2-C、及小鼠/人嵌 合TROP-2-D蛋白的HEK293细胞株的建立
在HEK293细胞株中分别导入上述表达载体pcDNA3.1-hTROP-2-myc/His、pcDNA3.1-hmTROP-2-C-myc/His及pcDNA3.1-mhTROP-2-D-myc/His。利用抗生素G418（Calbiochem）进行选择，建立恒定表达hTROP-2蛋白、hmTROP-2-C嵌合蛋白以及mhTROP-2-D嵌合蛋白的HEK293细胞株。
对在使用胰脏癌细胞株PK-59的异种移植治疗模型中显示药效的抗hTROP-2单克隆抗体K5-70、T5-86、K5-107、T6-4、T6-16、K5-116-2-1进行了结合区域的鉴定。首先，使用恒定表达hmTROP-2-C、mhTROP-2-D的各嵌合蛋白的HEK293细胞，通过FACS解析研究显示药效的抗hTROP-2单克隆抗体的反应性（图18）。其结果是，K5-70、K5-107、T5-86、K5-116-2-1与hmTROP-2-C反应，但与mhTROP-2-D不反应。另一方面，T6-4、T6-16与mhTROP-2-D反应，但与hmTROP-2-C不反应。由此，K5-70、K5-107、T5-84、K5-116-2-1的结合区域被限定在hTROP-2的从N末端起至第145位的氨基酸区域，T6-4、T6-16的结合区域被限定在hTROP-2的从第146位的氨基酸起至第274位的氨基酸区域（图18）。
进而，为了详细进行结合区域的解析，制作hmTROP-2-A、hmTROP-2-B、mhTROP-2-E及mhTROP-2-F嵌合蛋白表达用载体，研究了与显示药效的抗hTROP-2单克隆抗体的反应性（图19）。使用将新制作的嵌合蛋白表达用载体导入到HEK293细胞中并使其瞬时表达的细胞进行FACS解析。K5-70、K5-107、T5-86、K5-116-2-1与hmTROP-2-A反应，但与mhTROP-2-B不反应。显示调查的6种单克隆抗体与所有的hTROP-2均反应。由此可以明确，K5-70、K5-107、T5-86、K5-116-2-1的结合区域存在于hTROP-2的从N末端起至第69位的氨基酸区域。此外，T6-4、T6-16与mhTROP-2-E、mhTROP-2-F均不反应，因此暗示识别的是hTROP-2的从第146位起至第193位的氨基酸区域。
〔实施例20〕
[免疫组化]
＜材料·方法＞
免疫组化染色中使用的正常组织以及癌组织阵列如下所示。
人正常组织阵列：
Human，Normal organs in duplicates（Catalog No.：AB1，Super Bio Chips）
Normal tissues more than single spots（Catalog No.：A103（VI），ISU ABXIS）
肺癌组织阵列：
Human Lung cancer-metastasis-normal（Catalog No.：CCA3，Super Bio Chips）
Human lung carcinoma tissue with margin tissue，2locationcores（Catalog No.：OD-CT-RsLug03-002，Shanghai OutdoBiotech）
胰脏癌组织阵列：
Human Pancreas carcinoma tissue with mono-pathologicaltype from60cases，2location cores（Catalog No.：OD-CT-DgPan03-001，Shanghai Outdo Biotech）
肝癌组织阵列：
Hepatocellular carcinoma，grade I～III with normal tissuecontrols，63cases tissue arrays（Catalog No.：CS03-01-002U，Cybrdi）
Human liver carcinoma tissue with mono-pathological typefrom30cases，2location cores（Catalog No.：OD-CT-DgLiv02-002，Shanghai Outdo Biotech）
大肠癌组织阵列：
Human，Colorectal cancer（Catalog No.：CD3，Super BioChip s）
Human colon carcinoma with margin tissue，2location cores（Catalog No.：OD-CT-DgCol03-002，Shanghai Outdo Biotech）
大肠癌淋巴结转移、肝转移组织阵列：
Colorectal（colon and rectum）cancer with matched lymphnode metastasis tissue array，44cases/99cores，trial slide（Catalog No.：CO991t，Biomax us）
Colorectal（colon and rectum）cancer with matched lymphnode metastasis and normal adjacent tissue array，43cases/99cores（Catalog No.：CO992，Biomax us）
Colon cancer tissues_liver metastasis（Catalog No.：A203（IV），ISU ABXIS）
乳腺癌组织阵列：
Human，Breast cancer-metastasis-normal（Catalog No.：CBA3，Super Bio Chips）
Human breast carcinoma with margin tissue，2location cores（Catalog No.：OD-CT-RpBre03-002，Shanghai Outdo Biotech）
胃癌组织阵列：
Human，Stomach cancer（Catalog No.：CQ1，Super BioChips）
Human gastric carcinoma with margin tissue，2locationcores（Catalog No.：OD-CT-DgStm03-002，Shanghai OutdoBiotech）
食道癌组织阵列：
Human，Esophagus cancer（Catalog No.：CR1，Super BioChips）
Human esophagus carcinoma with margin tissue，2locationcores（Catalog No.：OD-CT-DgEso03-002，Shanghai OutdoBiotech）
卵巢癌组织阵列：
Human，Ovary cancer（Catalog No.：CJ1，Super Bio Chips前列腺癌组织阵列：
Human，Prostate cancer-normal（Catalog No.：CA3，SuperBio Chips）
膀胱癌组织阵列：
Bladder carcinoma/transitional cell carcinoma，grade I～IIIwith normal tissue arrays（Catalog No.：CC12-01-001U，Cybrdi）
上述组织阵列的患者信息以及临床信息由其所附的数据表以及各公司的主页获得。
免疫组化染色法
人正常组织以及癌组织的组织阵列石蜡切片经脱石蜡处理后，在37℃下利用胃蛋白酶进行5分钟蛋白酶处理，用于使用抗hTROP-2单克隆抗体的免疫染色中。以DAB（3,3'-二氨基联苯胺）为底物进行显色反应后，通过苏木精进行核染色作为对比染色。
这些操作具体如下进行。石蜡包埋的切片经脱石蜡处理后，在37℃下利用胃蛋白酶（DAKO）进行5分钟蛋白酶处理。活化抗原后，用在甲醇中按终浓度为0.3%加入了双氧水的溶液，在室温下处理20分钟，除去内源性的过氧化物酶活性。用PBS在室温下进行2次各5分钟的洗涤，然后用含有1.5%的正常马血清（DAKO）的PBS溶液在室温下进行30分钟封闭，对组织中的非特异性结合部位进行封闭操作。然后，与用含有1.5%的正常马血清的PBS溶液稀释的抗hTROP-2单克隆抗体克隆K5-63-17（终浓度10μg/ml）在室温下反应1小时，然后用PBS在室温下进行3次各5分钟的洗涤，然后，与用含有1.5%的正常马血清的PBS溶液稀释200倍的生物素化抗小鼠IgG抗体（Vector）在室温下反应30分钟。室温下用PBS进行3次各5分钟的洗涤后，按说明书所述混合Vectastain ABC试剂盒（Vector）的试剂，制作ABC复合物，使其在室温下反应30分钟。用PBS在室温下进行3次各5分钟的洗涤后，利用Histofine Peroxidase Substrate Simple Stain DAB solution（Nichirei Biosciences）进行显色。确认显色后，用去离子水洗涤5分钟，用迈耶斯苏木精（Meyer’s hematoxylin）溶液（和光纯药）对核进行染色，然后用醇脱水，用二甲苯透明，用Entellan New（Merck Japan）封片。
＜结果＞
人正常组织中的hTROP-2的表达
使用抗hTROP-2单克隆抗体克隆K5-63-17，对人正常组织中的hTROP-2的表达谱进行解析。对人正常组织组织阵列（Catalog No.：AB1，Super Bio Chips）进行脱石蜡、亲水化处理后，利用作为蛋白水解酶的胃蛋白酶进行抗原活化，通过抗hTROP-2单克隆抗体克隆K5-63-17进行免疫染色（图20）。其结果是，在皮肤、食道、肾脏（皮质及髓质）、胰脏、前列腺、膀胱、扁桃腺中可观察到染色。几乎所有的染色像均显示为定位于细胞膜（图20的A、B、C、D、F、G、H），部分细胞质中也观察到表达（图20的E、H）。另一方面，心脏、肝脏、胃、小肠、大肠、骨骼肌、肺、脾脏、胸腺等没有被染色（图20的I、J）。
hTROP-2在人癌组织中的表达
为了调查人癌组织中的hTROP-2的表达（hTROP-2的阳性率），使用抗hTROP-2单克隆抗体克隆K5-63-17进行了人各癌种的癌组织阵列的免疫染色。将癌细胞的10%以上被染色的组织切片作为hTROP-2阳性。该染色结果示于表4。
表4
Figure BDA00002412077800711
此外，代表染色像示于图21。在研究hTROP-2的表达的癌种中，前列腺癌中阳性率最高（92.1%），肺癌（65.4%）、食道癌（76.7%）、膀胱癌（71.2%）等中为高阳性率。阳性率最低的是肝癌，为7.61%。与正常细胞同样地，癌细胞中也观察到hTROP-2强烈定位于细胞膜的染色像（图21的A～F、H、I）。此外，一部分也在细胞质中表达（图21的A、B、E、G）。
胰脏癌中的hTROP-2的阳性率为41.9%。对此时的hTROP-2阳性率和胰脏癌的等级（分化度）的关系进行了研究。其结果是，在等级高即低分化的胰脏癌中高频表达（表5）。
表5
胰脏癌hTROP2阳性斑点26/62(41.94％)
Figure BDA00002412077800721
〔实施例21〕
[K5-70抗体的单次投与在人胰脏癌细胞株PK-59异种移植预防模型中的抗肿瘤效果]
在使用人胰癌细胞株PK-59的异种移植预防模型中，以10mg/kg体重的投与量投与1次时，克隆K5-70（小鼠IgG2a）的体内强抗肿瘤活性也表现出来。对照组（小鼠IgG10mg/kg体重，N=3）中，所有个体中均观察到肿瘤形成，细胞移植后第28天（28天）的肿瘤体积为781.7±74.5mm3，与此相对，癌细胞移植当天（1天）投与1次K5-70的组（10mg/kg体重，N=3）28天的肿瘤体积为144.4±176.9mm3（P<0.05，利用学生t检验），显示出81.5%的肿瘤生长抑制活性（图22A）。肿瘤重量方面，28天时，对照组为0.59±0.06g，与此相对，克隆K-70投与组则为0.07±0.10g（P<0.01，利用学生t检验）），显示出88%的抑制活性（图22B）。肿瘤体积、肿瘤重量方面，在K5-70投与组中，3个体中的2个体在1次投与10mg/kg体重时肿瘤形成完全受到抑制（图22C）。
〔实施例22〕
[抗TROP-2单克隆抗体在人大肠癌细胞株SW480细胞异种移植治疗模型中的抗肿瘤活性]
通过使用人大肠癌细胞株SW480的异种移植治疗模型，研究了抗TROP-2单克隆抗体（克隆K5-70，K5-116-2-1，T6-16）的抗肿瘤活性。将5×106cells的SW480细胞移植（1天）到6周龄雌性NOD-scid小鼠的右胁腹皮下，在平均肿瘤体积达到100mm3的阶段进行分组（7天或10天），从7天或10天起以每3天1次的投与间隔开始抗体的腹腔内投与。克隆K5-70的抗肿瘤活性评价、克隆K5-116-2-1以及克隆T6-16的抗肿瘤活性评价通过各自独立的试验来进行。K5-70的抗肿瘤活性评价试验中，癌细胞移植起第44天（44天），对照组（小鼠IgG（10mg/kg体重），N=8）的肿瘤体积为365.4±214.6mm3，与此相对，K5-70（10mg/kg体重）投与组则为27.4±29.4mm3（P<0.01，利用学生t检验），肿瘤形成显著受到抑制（抑制率92.5%）（图23A）。肿瘤重量方面，对照组为0.11±0.07g，与此相对，K5-70投与组则为0.005±0.007（g）（P<0.01，利用学生t检验），为95.5%的抑制率（图23B）。特别是，K5-70投与组中，8个体中的2个体中肿瘤形成完全受到抑制，未确认到肿瘤。
另外进行的K5-116-2-1和T6-16的抗肿瘤活性评价试验中，42天时，对照组的肿瘤体积为713.8±354.5mm3（N=8），与此相对，K5-116-2-1投与组（10mg/kg体重）为188.9±97.4mm3（N=8，P<0.01，利用学生t检验）（图24A），T6-16投与组（10mg/kg体重）为292.8±199.7mm3（N=8，P<0.01，利用学生t检验）（图25A），分别为73.5%、59.0%的抑制率。肿瘤重量方面也同样，对照组为0.39±0.19g，与此相对，K5-116-2-1投与组、T6-16投与组则为0.10±0.07g（P<0.01，利用学生t检验）、0.17±0.14g（P<0.05，利用学生t检验），分别显示出72.2%、56.4%的抑制率（图24B、图25B）。
〔实施例23〕
[克隆K5-70在人大肠癌细胞株SW480细胞异种移植治疗模型中的用量依赖性的抗肿瘤活性]
接下来，在使用人大肠癌细胞株SW480的异种移植治疗模型中对克隆K5-70（小鼠IgG2a）的用量依赖性的抗肿瘤活性进行了研究。将5×106cells的SW480细胞移植到6周龄雌性NOD-scid小鼠的右胁腹皮下，在移植起10天后（10天）肿瘤平均体积达到100mm3的阶段，进行分组，分为对照组（小鼠IgG10mg/kg体重投与组、N=8，104.4±17.6mm3），K5-70（1mg/kg体重）投与组（N=8，104.3±16.1mm3），K5-70（5mg/kg体重）投与组（N=8，104.6±15.9mm3），K5-70（10mg/kg体重）投与组（N=8，104.8±14.9mm3），3天进行1次腹腔内投与。42天时，对照组的肿瘤体积为713.8±354.5mm3，与此相对，K5-70投与组中观察到用量依赖性的肿瘤形成抑制活性，1mg/kg体重投与组为485.0±207.3mm3（抑制率32.1%），5mg/kg体重投与组为339.5±253.2mm3（抑制率52.4%），10mg/kg体重投与组为355.4±202.8mm3（抑制率50.2%，P<0.05，利用学生t检验）（图26A）。同样地，42天时肿瘤重量方面，对照组为0.39±0.19g，与此相对，K5-70（1mg/kg体重）投与组则为0.24±0.11g（抑制率37.8%），5mg/kg体重投与组为0.17±0.14g（抑制率55.8%，P<0.05，利用学生t检验），10mg/kg体重投与组为0.20±0.13g（抑制率47.1%），观察到用量依赖性的抗肿瘤活性（图26B）。
〔实施例24〕
[克隆K5-70在人大肠癌细胞株SW480细胞异种移植治疗模型中的投与间隔的研究]
进而，为了研究克隆K5-70（小鼠IgG2a）的最佳投与间隔，在使用了人大肠癌细胞株SW480的异种移植治疗模型中，对每周1次（每7天1次）投与时的抗肿瘤活性进行了研究。将5×106cells的SW480细胞移植到6周龄雌性NOD-scid小鼠的右胁腹皮下，在移植起10天后（10天）肿瘤平均体积达到100mm3的阶段进行分组，分为对照组（小鼠IgG10mg/kg体重投与组、N=8，104.4±17.6mm3），K5-70（10mg/kg体重、周1次）投与组（N=8，104.3±16.1mm3），7天进行1次腹腔内投与。42天时，对照组的肿瘤体积为713.8±354.5mm3，与此相对，K5-70每周1次投与组为323.3±239.9mm3（抑制率55%，P<0.05，利用学生t检验）（图27A），进而投与间隔延长为10天1次、2周1次时，39天时，对照组的肿瘤体积为956.9±367.8mm3，与此相对，K5-70投与组（每10天投与1次）则为525.4±180.6mm3（抑制率45.1%，P<0.01，利用学生t检验），K5-70投与组（每14天投与1次）则为459.4±217.6mm3（抑制率52.0%，P<0.01，利用学生t检验）（图27B），现有技术（US7420040、US7420041）在使用胰脏癌细胞株（BxPC-3）的异种移植治疗模型中、以20mg/kg体重的投与量每周投与3次（投与间隔为2天）显示50~60%抑制率的抗肿瘤活性，与此相对，K5-70抗体以1次投与量为一半的投与量（10mg/kg体重）、2周1次的投与（投与间隔为12天）显示出可以与现有技术媲美的抗肿瘤活性，若考虑到1次的投与量和投与间隔，可以明确以至少现有技术的12分之1的总投与量显示出显著的抗肿瘤活性。
〔实施例25〕
[克隆T6-16在人大肠癌细胞株SW480细胞异种移植治疗模型中的用量依赖性的抗肿瘤活性]
接下来，在使用人大肠癌细胞株SW480的异种移植治疗模型中，对克隆T6-16（小鼠IgG2a）的用量依赖性的抗肿瘤活性进行了研究。将5×106cells的SW480细胞移植到6周龄雌性NOD-scid小鼠的右胁腹皮下，在移植起10天后（10天）肿瘤平均体积达到100mm3的阶段进行分组，分为对照组（小鼠IgG10mg/kg体重投与组、N=8，105.8±9.9mm3），T6-16（1mg/kg体重）投与组（N=8，104.4±13.3mm3），T6-16（5mg/kg体重）投与组（N=8，104.7±13.0mm3），T6-16（10mg/kg体重）投与组（N=8，104.8±12.4mm3），3天进行1次腹腔内投与。43天时，对照组的肿瘤体积为473.5±137.0mm3，与此相对，T6-16投与组中观察到用量依赖性的肿瘤形成抑制活性，1mg/kg体重投与组为397.9±97.5mm3（抑制率16.0%），5mg/kg体重投与组为195.9±89.7mm3（抑制率58.7%，P<0.01，利用学生t检验），10mg/kg体重投与组为190.2±56.5mm3（抑制率59.8%，P<0.01，利用学生t检验）（图28A）。同样地，43天时，肿瘤重量方面，对照组为0.19±0.07g，与此相对，T6-16（1mg/kg体重）投与组则为0.20±0.08g，5mg/kg体重投与组为0.08±0.04g（抑制率57.9%，P<0.01，利用学生t检验），10mg/kg体重投与组为0.09±0.04g（抑制率52.6%，P<0.01，利用学生t检验），确认到用量依赖性的抗肿瘤活性（图28B）。
〔实施例26〕
[克隆T6-16在人大肠癌细胞株SW480细胞异种移植治疗模型中的投与间隔的研究]
进而，为了研究克隆T6-16（小鼠IgG2a）的最佳投与间隔，在使用了人大肠癌细胞株SW480的异种移植治疗模型中，对每周1次（每7天1次）以及每10天1次的投与间隔时的抗肿瘤活性进行了研究。将5×106cells的SW480细胞移植到6周龄雌性NOD-scid小鼠的右胁腹皮下，在移植起10天后（10天）肿瘤平均体积达到100mm3的阶段进行分组，分为对照组（小鼠IgG10mg/kg体重投与组、N=8，105.8±9.9mm3）,T6-16（10mg/kg体重、周1次）投与组（N=8，105.0±11.6mm3），T6-16（10mg/kg体重、10天に1次）投与组（（N=5，130.8±2.4mm3），开始投与。43天时，对照组的肿瘤体积为473.5±137.0mm3，与此相对，T6-16（每周1次）投与组为243.7±65.3mm3（抑制率48.5%，P<0.01，利用学生t检验），T6-16（每10天1次）投与组为297.8±54.4mm3（抑制率37.1%，P<0.05，利用学生t检验）（图29），现有技术（US7420040，US7420041）在使用胰脏癌细胞株（BxPC-3）的异种移植治疗模型中以20mg/kg体重的投与量每周投与3次（投与间隔为2天）显示50-60%抑制率的抗肿瘤活性，与此相对，T6-16抗体以1次投与量为现有技术的一半用量、每10天1次的投与（投与间隔为8天）显示显著的抗肿瘤活性，若考虑到1次的投与量和投与间隔，可以明确以至少现有技术的8分之1的总投与量显示出显著的抗肿瘤活性。
〔实施例27〕
[在人前列腺癌细胞株DU-145异种移植预防模型中的抗肿瘤活性的研究]
通过使用DU-145细胞（RIKEN Cell Bank，RCB2143）的异种移植预防模型，对克隆K5-70的对人前列腺癌的抗肿瘤活性进行评价。将5×106细胞的DU-145细胞移植到6周龄的雌性裸小鼠（Balb/c，nu/nu）的皮下，以移植当天作为1天，进行分组，分为对照组（N=8）和K5-70投与组（N=8），从1天起以3天1次的频度以10mg/kg体重的投与量进行腹腔内投与。40天时，对照组的肿瘤体积为368.2±307.8mm3，与此相对，K5-70投与组则为30.6±29.6mm3（P<0.05，利用学生t检验），显示出约90%的肿瘤形成抑制活性（图30A）。肿瘤重量方面，确认到更显著的抗肿瘤活性，40天时，对照组的肿瘤重量为0.18±0.18g，与此相对，K5-70投与组中，8个个体的肿瘤全部消失，肿瘤形成完全受到抑制（图30B）。由以上结果可以明确，抗人TROP-2单克隆抗体克隆K5-70对人前列腺癌显示出强抗肿瘤活性。
〔实施例28〕
[克隆K5-70在使用了人胰癌细胞株PK-59细胞的肝转移模型中的转移抑制活性]
消化器官癌的治疗中，癌转移是左右着临床上的予后的重要因子，控制转移在治疗上具有重要意义。若通过投与以TROP-2为靶标的癌治疗用抗体，不仅抑制肿瘤形成，还抑制癌细胞向其它脏器的转移，则可以期待临床上的较高有用性，因此是作为癌治疗抗体所期待的特性。
TROP-2已经确认在多种癌肿中表达，特别是，显示出在转移灶中高表达（Br.J.Cancer（2008）；99：1290-1295，Clin.Cancer Res.（2006）；12：3057-3063，Mod.Pathol.（2008）；21：186-191)。进而，已经报道了在对裸小鼠经脾或经胰移植导入了Trop-2基因的癌细胞时，肝转移的发病率增加（WO2010/089782，Molecular Cancer（2010）；9：253），显示出TROP-2在癌转移过程中的重要性。但是，迄今为止，尚不存在具体表明使用以TROP-2为靶标的抗体在体内具有转移抑制作用的报告。
本发明发现的抗hTROP-2小鼠单克隆抗体K5-70在皮下移植胰脏癌细胞的异种移植模型中显示出较好治疗效果，不仅具有癌细胞的增殖抑制效果，而且体外划痕试验显示，还抑制胰癌细胞PK-59的迁移活性（migration ability），可以认为可能还抑制体内癌的转移。因此，使用由裸小鼠的脾脏注入胰癌细胞PK-59而引发肝转移的模型，检验抗hTROP-2小鼠单克隆抗体的转移抑制效果。
通过胰蛋白酶处理，剥离内源性表达hTROP-2的胰癌细胞株（PK-59），用PBS制备2×107cells/mL的细胞悬浮液。细胞悬浮液在至移植时为止均在冰上保管。将6～7周龄的雌性裸小鼠（Balb/c，nu/nu）通过腹腔内投与戊巴比妥而麻醉，在麻醉下将左侧腹部切开10～15mm，将脾脏牵出到腹腔外，使用26G的注射器，将50μL的细胞悬浮液（1x106cell）注入脾脏内。在注入细胞4分钟后，以5-0丝线将脾门部结扎，摘出脾脏。用5-0丝线缝合所切开的腹膜，使用闭合夹（Wound Clips）（AUTOCLIP9mm，Becton，Dickinson and Company）闭合腹部。在癌细胞移植前一天，将小鼠分组，按照10mg/kg体重腹腔内投与抗hTROP-2单克隆抗体（K5-70）或对照抗体（纯化小鼠IgG）。此外，癌细胞移植7天后同样地进行抗体的投与。癌细胞移植起4～6周后，通过颈椎脱臼使小鼠安乐死，摘出肝脏，确认有无转移灶。
用作对照的投与小鼠IgG的组中，移植PK-59细胞的6只小鼠中，4只在移植后4～6周后在肝叶边缘部确认到明显的转移灶（2～7个）（图31A，转移发生率67%，表6）。与此相对，K5-70投与组中，移植了PK-59细胞的4只小鼠的全部个体均未确认到肝脏转移灶，转移发生率为0％（图31B，表6）。
表6
克隆K5-70在对裸小鼠经脾移植PK-59细胞的肝转移模型中的转移抑制效果
这些结果表明，抗hTROP-2抗体K5-70对胰癌细胞PK-59的肝转移具有极强的抑制作用。
〔实施例29〕
[K5-70抗体在大肠癌细胞株SW480异种移植模型中的、盐酸伊立替康投与后的癌复发模型中的抗肿瘤活性]
作为癌治疗剂，近年开发出多种抑制癌细胞增殖的化疗剂，一定程度上改善了治疗效果，但存在伴有对癌细胞以外的正常细胞也有增殖抑制作用的副作用以及治疗结束后癌复发的较大问题。因此，若能够通过投与以TROP-2为靶标的癌治疗用抗体来抑制化疗剂治疗后的肿瘤复发，则可以期待更高的临床上的有用性，这是作为癌治疗抗体所期望的特性。
作为大肠癌的治疗剂，近年临床上应用5-FU、铂制剂以及具有拓扑异构酶抑制效果的盐酸伊立替康（Topotecin，第一三共株式会社），据报道，在动物模型中，在移植了以大肠癌为首的各种人肿瘤细胞的小鼠模型中具有抗肿瘤效果（CancerChemother Pharmacol.（1991）；28（3）：192-8）。因此，在使用了人大肠癌细胞株SW480的异种移植模型中，研究了抗hTROP-2抗体克隆K5-70（小鼠IgG2a）对于投与盐酸伊立替康后的肿瘤复发的复发予防效果。将5×106cells的SW480细胞移植到8周龄雌性NOD-scid小鼠的右胁腹皮下，在移植起11天后（11天）肿瘤平均体积达到100mm3以上的阶段进行分组，分为无处置组（生理盐水投与组、N=8，130.7±16.2mm3），盐酸伊立替康（CPT-11，Topotecin、第一三共株式会社）投与组（N=16，123.0±21.4mm3），以40mg/kg体重每3天腹腔内投与1次盐酸伊立替康，合计3次（11，14，17天）。在盐酸伊立替康的最后一次投与起第3天（20天），无处置组的肿瘤体积达到232.1±21.1mm3，与此相对，盐酸伊立替康投与组为126.6±26.6mm3（P<0.01，利用学生t检验），确认到明显的肿瘤抑制效果。在该阶段，基于肿瘤大小而将盐酸伊立替康投与组分为2组，一组为K5-70（10mg/kg体重）投与组（N=8，20天的肿瘤体积126.0±28.0mm3），另一组组为小鼠IgG（10mg/kg体重）投与组（N=8，20天的肿瘤大小为127.2±27.0mm3），分别进行每3天1次的腹腔内投与和肿瘤体积的测定，对肿瘤的复发进行评价（图32）。小鼠IgG投与组中，从盐酸伊立替康的最后一次投与起第18天（35天）开始，确认存在多个具有肿瘤体积超过300mm3的明显复发肿瘤的个体，在盐酸伊立替康的最后一次投与起第30天（47天）时，8例中的5例中确认到超过300mm3的肿瘤（肿瘤平均体积401.7±172.7mm3）。与此相对，K5-70投与组中，肿瘤复发显著受到抑制，肿瘤平均体积为180.5±142.1mm3,（P<0.05，利用学生t检验）（图32）。特别是，K5-70投与组中，确认到8例中有4例个体47天的肿瘤体积与分组时（126.0±28.0mm3）相比萎缩，小于100mm3。这些结果表明，抗hTROP-2抗体K5-70对盐酸伊立替康投与后的肿瘤复发具有极强抑制作用。
〔实施例30〕
[使用了CLIP S技术的表位作图]
＜材料和方法＞
肽合成
通过利用Fmoc（9-芴甲氧羰基）法的固相合成获得了本实验中使用的直链型15-mer及30-mer的来自TROP-2细胞外区域的肽。此外，为了进行不连续表位解析，合成了在两端添加了半胱氨酸残基的来自TROP-2细胞外区域的17-mer的肽，通过CLIPS技术（Chemically Linked Peptides on Scaffoldstechnology），再构建了具有1个或2个环结构的立体结构。添加的半胱氨酸残基附近存在其它半胱氨酸残基时，将其置换为丙氨酸。
表位筛选ELISA
使5034种合成肽共价结合到肽扫描片（PEPSCANcard）（445肽/片），通过ELISA法检验合成肽和抗体的结合。对于肽扫描片而言，与用封闭缓冲液（含有4%马血清、5%卵白白蛋白、1%Tween的磷酸缓冲液）稀释至1μg/mL的抗人TROP-2单克隆抗体（K5-70、K5-107、K5-116-2-1、T5-86、T6-16）反应。洗涤后，与1000倍稀释的过氧化物酶－二抗复合物在25℃下反应1小时。洗涤后，加入底物溶液（含有2,2’-azino-di-3-ethylbenzthiazoline sulfonate（ABTS）和2μL的3%双氧水的溶液），进行1小时显色反应。通过CCD相机拍摄并进行图像解析而对抗体结合活性进行定量。
＜结果＞
对于显示药效的抗人TROP-2单克隆抗体K5-70、K5-107、K5-116-2-1、T5-86、T6-16，利用CLIPS（Chemically LinkedPeptides on Scaffolds）技术进行表位解析。予以说明，下面，本实施例中“氨基酸号”是指序列号2所示的氨基酸序列（hTROP-2蛋白（323氨基酸残基））中的氨基酸号。
K5-70抗体的解析结果如下述表7所示。该结果表明33个肽与K5-70抗体强烈结合。上述33个肽中，含有VCSPDGPGGRCQCRALGSGMAVD（氨基酸号43-65）的序列（表7中的肽No.1-7，9）、含有HHILIDLRHRPTAG（氨基酸号152-165）的序列（表7中的肽No.14，22-25，28，29，31,33）、含有VHYEQPTIQIELRQ（氨基酸号193-206）的序列（表7中的肽No.8，10，12，13，15，18，20，21，23，26，28，30，32）、含有DAELRRLFRER（氨基酸号171-183）的序列（表7中的肽No.11，12，14，16，18，19，21，22，25，29，31）反复出现。K5-70抗体尤其与含有VCSPDGPGGRCQCRALGSGMAVD的序列强烈结合。这些结果暗示，hTROP-2蛋白中的上述4种肽序列区域可能为K5-70抗体的表位。
表7
K5-70抗体对来自于人TROP-2细胞外区域的CLIPS肽的结合
K5-107的解析结果如下述表8所示。其结果是，含有VCSPDGPGGRCQCRALGSGMAVD（氨基酸号43-65）的序列包含在20个肽中的10个肽（表8中的肽No.1-6，8，13,14，17）中（表8）。
因此表明，hTROP-2蛋白中的上述VCSPDGPGGRCQCRALGSGMAVD的肽序列区域为K5-107抗体的表位。
表8
K5-107抗体对来自于人TROP-2细胞外区域的CL I PS肽的结合
Figure BDA00002412077800851
K5-116-2-1抗体的解析结果如下述表9所示。该解析中，含有VCSPDGPGGRCQCRALGSGMAVD（氨基酸号43-65）的序列（表9中的肽No.1-7，15，25）、含有HHILIDLRHRPTAG（氨基酸号152-165）的序列（表9中的肽No.8-11，16，17，19，20，22-24，27-29）、含有DLDAELRRLFRER（氨基酸号171-183）的序列（表9中的肽No.11-14，17，19，21，23，29）这3种肽序列多次出现（表9）。因此表明，hTROP-2蛋白中的这3种肽序列区域为K5-116-2-1抗体的表位。
表9
K5-116-2-1抗体对来自于人TROP-2细胞外区域的CLIPS肽的结合
Figure BDA00002412077800861
T5-86及T6-16抗体的解析结果如下述表10及表11所示。该解析中，与含有DPEGRFKARQCN（氨基酸号109-120）的序列的肽强烈结合。与T5-86抗体结合的26个肽中的22个肽（表10中的肽No.1-3，5-8，10-13，15-19，21-26）中包含上述肽序列，与T6-16抗体结合的26个肽中的4个肽（表11中的肽No.1，2，9，13）包含上述肽序列（表10及表11）。此外，T5-86抗体的解析中，除了包含DPEGRFKARQCN（氨基酸号109-120）的序列以外，含有VCSPDGPGGRCQCR（氨基酸号43-56）的序列（表10中的肽No.4，14，20）多次出现。进而，T6-16抗体的解析中，多次确认到另一序列、即含有HHILIDLRHRPTAG（氨基酸号152-165）的序列（表11中的肽No.4-8，10-12，19，21，23，25，26）。因此表明，T5-86抗体的表位为hTROP-2蛋白中的DPEGRFKARQCN（氨基酸号109-120）、VCSPDGPGGRCQCR（氨基酸号43-56）的2种肽序列区域，T6-16抗体的表位为hTROP-2蛋白中的DPEGRFKARQCN（氨基酸号109-120）、HHILIDLRHRPTAG（氨基酸号152-165）的2种肽序列区域。
表10
T5-86抗体对来自于人TROP-2细胞外区域的CLIPS肽的结合
Figure BDA00002412077800871
表11
T6-16抗体对来自于人TROP-2细胞外区域的CLIPS肽的结合
〔实施例31〕
[小鼠抗人TROP-2抗体（克隆K5-70，K5-107，K5-116-2-1，T6-16）的抗体基因的可变区域的序列确定]
使用TRIzol试剂（Invitrogen），由3×106个小鼠抗TROP-2单克隆抗体产生杂交瘤提取总RNA。对克隆K5-70，克隆K5-107，克隆K5-116-2-1，使用SMARTerTM RACE cDNAAmplification kit（Clontech），按照试剂盒所附方法，使用小鼠IgG的H链特异性引物（5’-TCCAKAGTT-3’（序列号24））和L链特异性引物（5’-GCTGTCCTGATC-3’（序列号25））合成cDNA。对于克隆T6-16，使用GeneRacer Kit（Invitrogen），按照试剂盒所附方法，使用dT引物合成cDNA。编码克隆K5-70（小鼠IgG2a），克隆K5-107（小鼠IgG1）、以及克隆K5-116-2-1（小鼠IgG2a）的H链及L链的可变区域（VH，VL）的基因则以上述合成后的cDNA为模板使用PCR法进行克隆。此时，5’-引物使用的是SMARTerTM RACE cDNA Amplification kit附带的10×Universal Primer A Mix（UPM）。另一方面，就3’-引物而言，作为VH扩增用3’-引物，使用具有小鼠IgG H链特异性序列的引物，作为VL扩增用3’-引物，使用具有小鼠IgGL链特异性的序列的引物。
5’-引物（10×Universal Primer A Mix（UPM））：
Long（0.4μM）
5'-CTAATACGACTCACTATAGGGCAAGCAGTGGTATCAACGCAGAGT-3'（序列号26）
Short（2μM）
5’-CTAATACGACTCACTATAGGGC-3’（序列号27）
3’-引物（R引物）：
VH：5'-GGGAARTARCCCTTGACCAGGCA-3'（序列号28）
5’-GGGAARTAGCCTTTGACAAGGCA-3’（序列号29）
VL：5'-CACTGCCATCAATVTTCCACTTGACA-3'（序列号30）
使用了上述各引物的PCR按照以下反应液组成及反应条件进行。此外，VH的cDNA扩增的R引物使用的是等摩尔混合上述2序列的混合物。
＜反应液组成＞
Figure BDA00002412077800901
＜反应条件＞
94℃（10秒）反应后，以“热变性·解离：98℃（10秒）→退火：60℃（5秒）→合成·伸长：72℃（60秒）”作为一个循环，进行共30个循环的反应后，最后在72℃（3min）反应。
将合成的VH及VL的cDNA亚克隆到pMD20-T载体（宝生物），确定碱基序列。解读多个VH克隆及VL克隆的碱基序列，鉴定了小鼠H链及L链的可变区域中典型的碱基序列。图33及图34中示意出K5-70的VH及VL的共通（consensus）cDNA碱基序列、以及推定氨基酸序列。图35及图36中示意出K5-107的VH及VL的共通（consensus）cDNA碱基序列、以及推定氨基酸序列。图37及图38中示意出K5-116-2-1的VH及VL的共通（consensus）cDNA碱基序列、以及推定氨基酸序列。
编码克隆T6-16的H链及L链的可变区域（VH，VL）的基因则以上述合成后的cDNA为模板使用PCR法进行克隆。此时，5’-引物使用了GeneRacer Kit附带的引物。另一方面，就3’-引物而言，作为VH扩增用3’-引物，使用具有小鼠IgG H链特异性序列的引物，作为VL扩增用3’-引物，使用具有小鼠IgGL链特异性序列的引物。
5’-引物（F引物）：
5'-CGACTGGAGCACGAGGACACTGA-3'（序列号31）
3’-引物（R引物）：
VH：5'-GCCAGTGGATAGACAGATGG-3'（序列号32）
VL：5'-GATGGATACAGTTGGTGCAGC-3'（序列号33）
使用了上述各引物的PCR按照以下的反应液组成及反应条件进行。
＜反应液组成＞
Figure BDA00002412077800911
＜反应条件＞
以“热变性·解离：98℃（10秒）→退火：57℃（10秒）→合成·伸长：72℃（60秒）”为1个循环，进行共35个循环。
将合成的VH及VL的cDNA亚克隆到pCR4Blunt-TOPOvector（Invitrogen），确定碱基序列。解读多个VH克隆及VL克隆的碱基序列，鉴定了小鼠H链及L链的可变区域中典型的碱基序列。图39及图40中示意出T6-16的VH及VL的共通（consensus）cDNA碱基序列、以及推定氨基酸序列。
产业上的可利用性
根据本发明，可以提供与hTROP-2特异性反应、在体内具有高抗肿瘤活性的抗体，特别是能够提供以低用量在体内具有高抗肿瘤活性的单克隆抗体。进而，本发明能够提供产生该抗体的杂交瘤、该抗体的片段、该抗体等与各种药剂的复合物、肿瘤的诊断用或治疗用药物组合物、肿瘤的检测方法、肿瘤的检测用或诊断用试剂盒。
序列表自由文本
序列号3：合成DNA
序列号4：合成DNA
序列号5：合成DNA
序列号6：合成DNA
序列号7：合成DNA
序列号8：合成DNA
序列号9：合成DNA
序列号10：合成DNA
序列号11：合成DNA
序列号12：合成DNA
序列号13：合成DNA
序列号14：合成DNA
序列号15：合成DNA
序列号16：合成DNA
序列号17：合成DNA
序列号18：合成DNA
序列号19：合成DNA
序列号20：合成DNA
序列号21：合成DNA
序列号22：合成DNA
序列号23：合成DNA
序列号24：合成DNA
序列号25：合成DNA
序列号26：合成DNA
序列号27：合成DNA
序列号28：合成DNA
序列号29：合成DNA
序列号30：合成DNA
序列号31：合成DNA
序列号32：合成DNA
序列号33：合成DNA
Figure IDA00002412078600011
Figure IDA00002412078600031
Figure IDA00002412078600041
Figure IDA00002412078600051
Figure IDA00002412078600071
Figure IDA00002412078600081
Figure IDA00002412078600091
Figure IDA00002412078600101
Figure IDA00002412078600121
Figure IDA00002412078600131
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Claims (68)

1.一种在体内具有抗肿瘤活性的抗人TROP-2的抗体。
2.根据权利要求1所述的抗体，其以5～20mg/kg体重的投与量显示50％以上的肿瘤生长抑制活性。
3.根据权利要求2所述的抗体，用于显示所述肿瘤生长抑制活性的投与次数最多为每周1次。
4.根据权利要求1所述的抗体，其以10mg/kg体重的单次投与显示50％以上的肿瘤生长抑制活性。
5.根据权利要求1～4中任意一项所述的抗体，其对2种以上的人肿瘤细胞株具有抗肿瘤活性。
6.根据权利要求1～5中任意一项所述的抗体，其解离常数（Kd值）为1.0×10-10M以下。
7.根据权利要求1～6中任意一项所述的抗体，抗体为单克隆抗体。
8.根据权利要求1～7中任意一项所述的抗体，肿瘤为选自人胰癌、人前列腺癌、人大肠癌及人乳腺癌组成的组中的至少1种。
9.根据权利要求1～7中任意一项所述的抗体，肿瘤为人胰癌。
10.根据权利要求1～9中任意一项所述的抗体，肿瘤为复发癌或转移癌。
11.根据权利要求5～10中任意一项所述的抗体，肿瘤细胞株为选自人胰癌细胞株PK-59、人胰癌细胞株BxPC-3、人胰癌细胞株KP-3L、人胰癌细胞株KP-2、人胰癌细胞株PK-1、人胰癌细胞株PK-45H、人胰癌细胞株PK-45P、人胰癌细胞株TCC-PAN2、人胰癌细胞株SUIT-2、人大肠癌细胞株CACO-2、人大肠癌细胞株SW480、人大肠癌细胞株DLD-1、人大肠癌细胞株HCT116、人乳腺癌细胞株JIMT-1、人乳腺癌细胞株HCC1143、人乳腺癌细胞株MCF-7、人前列腺癌细胞株DU145及人前列腺癌细胞株PC-3组成的组中的至少2种。
12.根据权利要求5～10中任意一项所述的抗体，肿瘤细胞株为人胰癌细胞株PK-59及人胰癌细胞株BxPC-3。
13.根据权利要求1～12中任意一项所述的抗体，抗体的H链V区域的CDR1～3的氨基酸序列分别依次为序列号36～38所示的氨基酸序列、和/或抗体的L链V区域的CDR1～3的氨基酸序列分别依次为序列号41～43所示的氨基酸序列。
14.根据权利要求1～12中任意一项所述的抗体，抗体的H链V区域的CDR1～3的氨基酸序列分别依次为序列号46～48所示的氨基酸序列、和/或抗体的L链V区域的CDR1～3的氨基酸序列分别依次为序列号51～53所示的氨基酸序列。
15.根据权利要求1～12中任意一项所述的抗体，抗体的H链V区域的CDR1～3的氨基酸序列分别依次为序列号56～58所示的氨基酸序列、和/或抗体的L链V区域的CDR1～3的氨基酸序列分别依次为序列号61～63所示的氨基酸序列。
16.根据权利要求1～12中任意一项所述的抗体，抗体的H链V区域的CDR1～3的氨基酸序列分别依次为序列号66～68所示的氨基酸序列、和/或抗体的L链V区域的CDR1～3的氨基酸序列分别依次为序列号71～73所示的氨基酸序列。
17.根据权利要求1～16中任意一项所述的抗体，抗体为基因重组抗体。
18.根据权利要求17所述的抗体，基因重组抗体为嵌合抗体、人源化抗体或人抗体。
19.根据权利要求18所述的抗体，嵌合抗体为如下抗体：H链V区域的氨基酸序列包含序列号35所示的氨基酸序列、和/或L链V区域的氨基酸序列包含序列号40所示的氨基酸序列。
20.根据权利要求18所述的抗体，嵌合抗体为如下抗体：H链V区域的氨基酸序列包含序列号45所示的氨基酸序列、和/或L链V区域的氨基酸序列包含序列号50所示的氨基酸序列。
21.根据权利要求18所述的抗体，嵌合抗体为如下抗体：H链V区域的氨基酸序列包含序列号55所示的氨基酸序列、和/或L链V区域的氨基酸序列包含序列号60所示的氨基酸序列。
22.根据权利要求18所述的抗体，嵌合抗体为如下抗体：H链V区域的氨基酸序列包含序列号65所示的氨基酸序列、和/或L链V区域的氨基酸序列包含序列号70所示的氨基酸序列。
23.由保藏号为FERM BP-11251的杂交瘤产生的抗人TROP-2的单克隆抗体。
24.由保藏号为FERM BP-11252的杂交瘤产生的抗人TROP-2的单克隆抗体。
25.由保藏号为FERM BP-11253的杂交瘤产生的抗人TROP-2的单克隆抗体。
26.由保藏号为FERM BP-11346的杂交瘤产生的抗人TROP-2的单克隆抗体。
27.由保藏号为FERM BP-11254的杂交瘤产生的抗人TROP-2的单克隆抗体。
28.根据权利要求1～22中任意一项所述的抗体，其与由保藏号为FERM BP-11251、FERM BP-11252、FERM BP-11253、FERM BP-11346或FERM BP-11254的杂交瘤产生的单克隆抗体所结合的位点结合。
29.根据权利要求1～22中任意一项所述的抗体，其与包含选自下列区域组成的组中的至少1种区域的部分结合，所述区域为：包含序列号2所示的人TROP-2的氨基酸序列中的第43位～第65位的氨基酸的区域、包含序列号2所示的人TROP-2的氨基酸序列中的第152位～第165位的氨基酸的区域、包含序列号2所示的人TROP-2的氨基酸序列中的第171位～第183位的氨基酸的区域、包含序列号2所示的人TROP-2的氨基酸序列中的第109位～第120位的氨基酸的区域、包含序列号2所示的人TROP-2的氨基酸序列中的第43位～第56位的氨基酸的区域、及包含序列号2所示的人TROP-2的氨基酸序列中的第193位～第206位的氨基酸的区域。
30.根据权利要求1～22中任意一项所述的抗体，其与含有包含序列号2所示的人TROP-2的氨基酸序列中的第43位～第65位的氨基酸的区域的部分结合。
31.根据权利要求1～22中任意一项所述的抗体，其与含有包含序列号2所示的人TROP-2的氨基酸序列中的第152位～第165位的氨基酸的区域的部分结合。
32.根据权利要求1～22中任意一项所述的抗体，其与含有包含序列号2所示的人TROP-2的氨基酸序列中的第171位～第183位的氨基酸的区域的部分结合。
33.根据权利要求1～22中任意一项所述的抗体，其与含有包含序列号2所示的人TROP-2的氨基酸序列中的第109位～第120位的氨基酸的区域的部分结合。
34.一种来自于权利要求1～33中任意一项所述的抗体的抗体片段。
35.根据权利要求34所述的抗体片段，其为包含序列号36～38所示的氨基酸序列、和/或序列号41～43所示的氨基酸序列的片段。
36.根据权利要求35所述的抗体片段，其为包含序列号35所示的氨基酸序列、和/或序列号40所示的氨基酸序列的片段。
37.根据权利要求34所述的抗体片段，其为包含序列号46～48所示的氨基酸序列、和/或序列号51～53所示的氨基酸序列的片段。
38.根据权利要求37所述的抗体片段，其为包含序列号45所示的氨基酸序列、和/或序列号50所示的氨基酸序列的片段。
39.根据权利要求34所述的抗体片段，其为包含序列号56～58所示的氨基酸序列、和/或序列号61～63所示的氨基酸序列的片段。
40.根据权利要求38所述的抗体片段，其为包含序列号55所示的氨基酸序列、和/或序列号60所示的氨基酸序列的片段。
41.根据权利要求34所述的抗体片段，其为包含序列号66～68所示的氨基酸序列、和/或序列号71～73所示的氨基酸序列的片段。
42.根据权利要求41所述的抗体片段，其为包含序列号65所示的氨基酸序列、和/或序列号70所示的氨基酸序列的片段。
43.一种产生权利要求1～22及28～33中任意一项所述的抗体的杂交瘤。
44.一种保藏号为FERM BP-11251的产生抗人TROP-2的单克隆抗体的杂交瘤。
45.一种保藏号为FERM BP-11252的产生抗人TROP-2的单克隆抗体的杂交瘤。
46.一种保藏号为FERM BP-11253的产生抗人TROP-2的单克隆抗体的杂交瘤。
47.一种保藏号为FERM BP-11346的产生抗人TROP-2的单克隆抗体的杂交瘤。
48.一种保藏号为FERM BP-11254的产生抗人TROP-2的单克隆抗体的杂交瘤。
49.一种抗体－药剂复合物，其含有权利要求1～33中任意一项所述的抗体以及具有抗肿瘤活性和/或细胞杀伤活性的物质。
50.一种抗体片段－药剂复合物，其含有权利要求34～42中任意一项所述的抗体片段以及具有抗肿瘤活性和/或细胞杀伤活性的物质。
51.根据权利要求49或50所述的复合物，肿瘤为选自人胰癌、人前列腺癌、人大肠癌及人乳腺癌组成的组中的至少1种。
52.根据权利要求49或50所述的复合物，肿瘤为人胰癌。
53.根据权利要求49～52中任意一项所述的复合物，肿瘤为复发癌或转移癌。
54.一种药物组合物，其含有选自权利要求1～33中任意一项所述的抗体、权利要求34～42中任意一项所述的抗体片段、及权利要求49～53中任意一项所述的复合物组成的组中的至少1种。
55.根据权利要求54所述的组合物，其用于肿瘤的治疗。
56.根据权利要求55所述的组合物，其没有体重减少的副作用。
57.根据权利要求54所述的组合物，其用于肿瘤的诊断。
58.根据权利要求54～57中任意一项所述的组合物，肿瘤为选自人胰癌、人前列腺癌、人大肠癌及人乳腺癌组成的组中的至少1种。
59.根据权利要求55～58中任意一项所述的组合物，肿瘤为复发癌或转移癌。
60.一种肿瘤治疗剂，其含有选自权利要求1～33中任意一项所述的抗体、权利要求34～42中任意一项所述的抗体片段、及权利要求49～53中任意一项所述的复合物组成的组中的至少1种。
61.根据权利要求60所述的治疗剂，其没有体重减少的副作用。
62.根据权利要求60或61所述的治疗剂，肿瘤为选自人胰癌、人前列腺癌、人大肠癌及人乳腺癌组成的组中的至少1种。
63.一种肿瘤诊断剂，其含有权利要求1～33中任意一项所述的抗体、权利要求34～42中任意一项所述的抗体片段、及权利要求49～53中任意一项所述的复合物组成的组中的至少1种。
64.根据权利要求63所述的诊断剂，肿瘤为选自人胰癌、人前列腺癌、人大肠癌及人乳腺癌组成的组中的至少1种。
65.一种肿瘤检测方法，其特征在于，使选自权利要求1～33中任意一项所述的抗体、权利要求34～42中任意一项所述的抗体片段、及权利要求49～53中任意一项所述的复合物组成的组中的至少1种与由生物体采集的试样反应，检测发生反应的抗体和/或抗体片段的信号。
66.根据权利要求65所述的方法，肿瘤为选自人胰癌、人前列腺癌、人大肠癌及人乳腺癌组成的组中的至少1种。
67.一种肿瘤的治疗用、诊断用或检测用试剂盒，其含有选自权利要求1～33中任意一项所述的抗体、权利要求34～42中任意一项所述的抗体片段、及权利要求49～53中任意一项所述的复合物组成的组中的至少1种。
68.根据权利要求67所述的试剂盒，肿瘤为选自人胰癌、人前列腺癌、人大肠癌及人乳腺癌组成的组中的至少1种。
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