CN103205444A - 一种人活性颗粒酶k重组蛋白的制备方法 - Google Patents

一种人活性颗粒酶k重组蛋白的制备方法 Download PDF

Info

Publication number
CN103205444A
CN103205444A CN2013100908568A CN201310090856A CN103205444A CN 103205444 A CN103205444 A CN 103205444A CN 2013100908568 A CN2013100908568 A CN 2013100908568A CN 201310090856 A CN201310090856 A CN 201310090856A CN 103205444 A CN103205444 A CN 103205444A
Authority
CN
China
Prior art keywords
hgzmk
rhgzmk
pet24a
urea
imidazoles
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN2013100908568A
Other languages
English (en)
Inventor
江文正
龙凤英
杜佳妮
陈冉
孔晓波
史亚茹
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
East China Normal University
Original Assignee
East China Normal University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by East China Normal University filed Critical East China Normal University
Priority to CN2013100908568A priority Critical patent/CN103205444A/zh
Publication of CN103205444A publication Critical patent/CN103205444A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Images

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

本发明涉及一种人活性颗粒酶K重组蛋白(rhGzmK)的制备方法,该重组蛋白去除了人颗粒酶K(hGzmK)N端的24个氨基酸,并在C端增加了6个组氨酸,以方便用镍离子柱进行纯化。其流程是:抽提人NK92细胞的总RNA,利用RT-PCR技术得到hGzmK基因,将之与原核表达载体pET24a(+)相连,构建重组表达质粒pET24a(+)-hGzmK,经转化大肠杆菌BL21后获得工程菌,该工程菌经IPTG诱导可表达rhGzmK。该重组蛋白以包涵体的形式表达,可利用镍亲和层析柱进行纯化,其纯度可达95%以上。该方法具有操作简单、产量高、重组蛋白易于纯化等特点,且纯化蛋白具有较高的生物学活性。

Description

一种人活性颗粒酶K重组蛋白的制备方法
技术领域
本发明涉及分子生物学和基因工程领域,具体地涉及了一种人活性颗粒酶K重组蛋白的表达、纯化及其活性鉴定的方法。
背景技术
颗粒酶是外源性的丝氨酸蛋白酶,来源于自然杀伤细胞(NK)和细胞毒淋巴细胞(CTLs)释放的细胞浆颗粒,在抗肿瘤和抗病毒感染过程中发挥重要作用。这些颗粒内含颗粒酶原及其它蛋白酶原如穿孔蛋白。目前已经发现的颗粒酶有11种,分别命名为颗粒酶A~M。在人类发现了5类颗粒酶,它们分别是颗粒酶A(GzmA)、颗粒酶B(GzmB)、颗粒酶H(GzmH)、颗粒酶K(GzmK)和颗粒酶M(GzmM)。
GzmK属于丝氨酸蛋白酶家族成员。研究表明,GzmK在能够诱导肿瘤细胞凋亡,其诱导细胞凋亡的方式与GzmA相似,都是通过caspase非依赖途径诱导细胞凋亡,该方式的特点是颗粒酶和穿孔素共同作用时可以直接导致胞内线粒体损伤,从而导致活性氧(ROS)水平上升、粗面内质网压力(RER stress)或形成单链DNA缺口等。除诱导细胞凋亡功能外,还有研究表明,GzmK在炎症反应中也具有重要作用。如GzmK能够诱导巨噬细胞释放IL-1β,并通过PAR受体(蛋白酶激活受体)胞外诱导人肺成纤维细胞释放IL-6、IL-8、MCP-1等。因此,获得具有活性的GzmK重组蛋白对于研究其生物学功能及临床应用具有重要的理论和实际意义。
原核表达具是目前掌握的最为成熟的表达系统,其所需的成本相对比较低廉,能够在较短时间内获得基因表达产物,并且具有操作简便的特点。加之可以表达产物尾部加上His标签,能够与Ni2+亲和层析柱特异性结合,并易于被高浓度咪唑溶液洗脱,因而可以利用镍柱亲和层析法对目的蛋白进行分离和纯化。亲和层析纯化蛋白具有简单,快速,产物纯度高等优点,是实际应用效果最好的方法之一。
Z-Lys-SBzl是一种丝氨酸蛋白酶硫酯底物,被丝氨酸蛋白酶GzmK切割后,SBzl能够与DTNB反应显黄色,在405nm处具有最大吸收值。吸光值越高,说明蛋白活性越好,从而准确检测GzmK的活性水平。
发明内容
本发明提出了一种人活性颗粒酶K重组蛋白(rhGzmK)的制备方法,其特征在于,依次包括以下步骤:
(1)获得hGzmK的cDNA;
(2)构建和鉴定重组表达载体pET24a(+)-hGzmK;
(3)重组质粒pET24a(+)-hGzmK转化大肠杆菌BL21;
(4)hGzmK重组蛋白的表达和鉴定;
(5)hGzmK重组蛋白的纯化;
(6)hGzmK重组蛋白的活性鉴定。
本发明rhGzmK的制备方法中,所述步骤(1)包括以下步骤:提取人NK92细胞中的总RNA,通过反转录获得cDNA,然后用特异PCR扩增获得约720 bp的hGzmK基因,引物序列如下:引物 1:5′- GGAATTCCATATGGAAATTATTGGAGGGAAAG -3′(划线部分为Nde Ⅰ酶切位点,76-97);引物 2:5′- CCGCTCGAGATTTGTATGAGGC -3′(划线部分为XhoⅠ酶切位点,780-792)。hGzmK基因PCR扩增产物约720 bp。
本发明rhGzmK的制备方法中,所述步骤(2)包括以下步骤:将得到的hGzmK PCR产物与原核表达载体pET24a(+)分别进行NdeⅠ和XhoⅠ双酶切,酶切产物回收后于16 ℃过夜连接,连接产物转化大肠菌DH5α后提取质粒并用NdeⅠ和XhoⅠ双酶切鉴定,获得表达载体pET24a(+)-hGzmK。
本发明rhGzmK的制备方法中,所述步骤步骤(3)中的转化是指:将所述重组质粒pET24a(+)-hGzmK加入到冰预冷的大肠杆菌BL21感受态中,然后置于冰上冷却后进行热击;加入无抗生素培养基后培养60min,涂布于kanLB平板,经37 ℃培养12-16h,得到hGzmK阳性转化子细菌。所述置于冰上时间是30min;热击的条件为:水温42℃,时间90s;无抗培养基加入体积比为1:3;恢复时间为60min。
本发明rhGzmK的制备方法中,所述步骤(4)中的表达是指:将阳性转化子细菌pET24a(+)-hGzmK/BL21接种于LB培养基中,摇菌过夜;再接菌于新的LB培养基中,摇菌至OD600=0.6~0.8之间;然后在加入1mM IPTG诱导表达6h,12000rpm离心2min,去上清后,用PBS重悬菌体,沸水中煮样5min,收集上清得到所述rhGzmK。
本发明rhGzmK的制备方法中,所述步骤(4)中的鉴定是指:将重组蛋白加样进行SDS-PAGE电泳并转膜后,以小鼠抗His多克隆抗体为一抗,以HRP标记的羊抗小鼠IgG为二抗,通过Western Blot鉴定所述rhGzmK的表达。
本发明rhGzmK的制备方法中,所述步骤(5)中的包括以下步骤:将IPTG诱导表达所获得的pET24a(+)-hGzmK/BL21菌体离心后,用PBS重悬,然后置于超声波破碎仪中进行超声破碎;破碎后,于4℃, 12000rpm,离心15min,弃去上清,收集的沉淀用binding buffer(0.5M NaCl、20mM Tis-HCl、5mM咪唑、10%甘油、8M尿素),使包涵体中的蛋白溶解在尿素溶液中,再次离心,收集获得的上清,0.45μm滤膜过滤。将过滤后的溶液通过预处理好的Ni2+柱进行亲和层析纯化,然后用binding buffer和washing buffer(0.5M NaCl、20mM Tis-HCl、60mM咪唑、10%甘油、8M尿素)重悬洗去未结合的杂质,最后用含高浓度咪唑的elute buffer(0.5M NaCl、20mM Tis-HCl、500mM咪唑、10%甘油、8M尿素)使亲和力减弱,从而将rhGzmK洗脱下来。洗脱下来的buffer中含有高浓度尿素和咪唑,将其放入处理好的透析袋中进行透析,尿素和咪唑析出,袋中的蛋白即为高纯度的rhGzmK。
本发明rhGzmK的制备方法中,所述步骤(6)中的活性鉴定是指:在缓冲液(50 mM Tris-HCl, 0.15 M NaCl, 0.01% Triton X-100;pH 7.6)中加入终浓度为0.3mM底物溶液Z-Lys-SBzl,混匀后加入96孔板中。在含底物溶液的96孔板中加入待测重组蛋白后,加入终浓度为0.3mM底物显色液5,5-二硫代双(2-硝基苯甲酸)(DTNB),作用10分钟后于酶标仪上读取405nm处OD值。
本发明利用基因工程的方法构建了能够稳定表达人活性颗粒酶K重组蛋白的大肠杆菌工程菌,表达产物可以用镍层析柱进行纯化,且获得的纯化蛋白具有较好的生物学活性。本发明提供了一种制备人活性颗粒酶K重组蛋白的方法及纯化工艺,为获得具有生物学活性的人活性颗粒酶K重组蛋白提供了一种简单、高效的实验方法,有利于对人颗粒酶K进行结构和生物学功能的研究。
附图说明
图1为本发明方法中重组表达质粒pET24a(+)-hGzmK构建流程图;
图2为hGzmK基因PCR扩增图谱,第一泳道为DL 2000分子量标准(自上向下依次为:2000 bp, 1000bp, 750 bp, 500 bp, 250 bp, 100 bp),第二泳道为PCR产物;
图3为重组质粒pET24a(+)-hGzmK酶切鉴定图谱;第一泳道为为DL 2000分子量标准(自上向下依次为:2000 bp, 1000bp, 750 bp, 500 bp, 250 bp, 100 bp), 第二泳道为未酶切的质粒pET24a(+)-hGzmK,第三泳道为NdeⅠ和XhoⅠ双酶切后的pET24a(+)-hGzmK;
图4为GzmK重组蛋白表达的SDS-PAGE鉴定结果;第一泳道为蛋白分子量标准(自上向下依次为:116 KDa, 66.2KDa, 45.0KDa, 35.0 KDa, 25.0 KDa, 18.4 KDa, 14.4 KDa),第二泳道为pET24a(+)-hGzmK/BL21 无IPTG诱导的电泳结果,第三泳道为pET24a(+)-hGzmK/BL21 IPTG诱导的电泳结果,第四泳道为pET24a(+)/BL21的IPTG诱导分析结果;
图5为GzmK重组蛋白表达的western blot鉴定结果;第一泳道为蛋白分子量标准(自上向下依次为:170 KDa, 130KDa, 95KDa, 70 KDa, 55 KDa, 43 KDa, 34 KDa, 26 KDa),第二泳道为pET24a(+)-hGzmK/BL21 无IPTG诱导的电泳结果,第三泳道为pET24a(+)-hGzmK/BL21 IPTG诱导的电泳结果,第四泳道为pET24a(+)/BL21的IPTG诱导分析结果;
图6为GzmK蛋白亲和层析的SDS-PAGE检测结果;第一泳道为蛋白分子量标准(自上向下依次为:116 KDa, 66.2KDa, 45.0KDa, 35.0 KDa, 25.0 KDa, 18.4 KDa, 14.4 KDa),第二泳道为pET24a(+)-hGzmK/BL21 无IPTG诱导的电泳结果,第三泳道为pET24a(+)-hGzmK/BL21 IPTG诱导的电泳结果,第四泳道为亲和层析纯化后的电泳结果;
图7为GzmK重组蛋白活性鉴定结果;以透析液为对照。
具体实施方式
下面结合附图和实施例,对本发明的具体实施方式作进一步描述,以下实施例仅用于更加清楚地说明本发明的技术方案,而不以此来限制本发明的保护范围。
实施例1
本实施例是本发明方法中重组质粒pET24a(+)-hGzmK的构建及鉴定,其流程图见图1,具体过程如下:
1. 获得hGzmK的cDNA
    提取人NK92细胞中的总RNA,以OligdT为引物扩增获得hGzmK的cDNA。
2.重组表达载体pET24a(+)-hGzmK的构建
(1)hGzmK基因的PCR扩增
根据GenBank中人颗粒酶K基因序列(NM_002104)设计引物如下:
引物 1:5′- GGAATTCCATATGGAAATTATTGGAGGGAAAG -3′(划线部分为Nde Ⅰ酶切位点,76-97)
引物 2:5′- CCGCTCGAGATTTGTATGAGGC -3′(划线部分为XhoⅠ酶切位点,780-792)
以人cDNA为模板,引物1和引物2为上下游引物,PCR扩增获得约720 bp 的hGzmK基因(图2)。
(2)将PCR产物与pET24a(+)同时进行NdeⅠ和XhoⅠ双酶切并回收,然后进行16 ℃过夜连接。
(3) 连接产物转化大肠杆菌DH5α感受态后,获得转化菌,提取质粒并经酶切鉴定,hGzmK基因正确插入pET24a(+)相应酶切位点中,获得重组质粒pET24a(+)-hGzmK,其酶切鉴定图谱如图3所示,在约720bp处有一特异性DNA条带(第三泳道),表明质粒构建正确。测序结果显示该基因序列与GenBank公布的序列一致。
实施例2
本实施例为将实施例1中的重组质粒pET24a(+)-hGzmK转化大肠杆菌BL21中,并进行诱导表达及表达产物的鉴定,具体过程如下:
1.重组质粒pET24a(+)-hGzmK转化大肠杆菌BL21
(1) 将鉴定正确的重组质粒pET24a(+)-hGzmK约4μL加入冰预冷的200μL BL21感受态中,冰上放置30min,42℃水浴热击90s,然后冰上放置2~3min,加入600μL 不含抗生素的LB培养基,置于37℃,220rpm摇菌60min,然后涂布于kan+ LB平板,37 ℃培养至单菌落长出。   
(2)挑单菌落接种到kan+ LB培养基中培养过夜,然后提取质粒并进行双酶切鉴定,即获得了阳性转化子细菌pET24a(+)-hGzmK/BL21。
2.hGzmK重组蛋白的表达和鉴定。
(1)pET24a(+)-hGzmK/BL21阳性克隆的诱导表达
将筛选得到的阳性转化子细菌pET24a(+)-hGzmK/BL21按2%接种于LB培养液中,37 ℃,220 rpm摇菌过夜,再按2%接菌于新的LB培养液中,37 ℃,220 rpm摇菌至对数期,即OD600=0.6~1.0,然后加入1mM的IPTG诱导剂,37 ℃,220 rpm诱导表达6h,收集菌体。
(2)hGzmK重组蛋白的鉴定
  将收集到的菌体用PBS重悬,取200μL,加入50μL 5×SDS上样缓冲液并煮样5min,收集上清得到细菌总蛋白,其中包含其所表达的hGzmK重组蛋白。SDS-PAGE电泳结果如图4所示,在25-35KDa处有一特异性蛋白条带(第三泳道),与预期的人活性颗粒酶K蛋白分子量相符。由于该重组蛋白为人活性颗粒酶K和6个His连接的融合蛋白,将凝胶转膜后,以小鼠抗His单克隆抗体为一抗,以HRP标记的山羊抗小鼠IgG为二抗,利用Western Blot对该重组蛋白进行鉴定,其结果如图5所示,在26-34KDa处有一特异性显色条带(第三泳道),表明该重组蛋白能特异性地与抗His单克隆抗体结合。 
实施例3
将实施例2中的重组蛋白利用亲和层析柱进行纯化,并对纯化蛋白进行活性鉴定,具体过程如下:
1. hGzmK 重组蛋白的纯化
(1)重组蛋白包涵体的制备与处理
表达菌体用PBS重悬后,置于超声破碎仪中进行超声破碎;破碎后,于4℃, 12000rpm,离心20min,检测到hGzmK重组蛋白主要以包涵体的形式存在于沉淀中,弃去上清。
收集的沉淀用PBS尿素溶液重悬,使包涵体中的蛋白溶解在尿素溶液中,于4℃  12000rpm 离心20min,收集获得的上清,0.45μm滤膜过滤。
(2)His柱亲和层析纯化
用5个体积的50mM Ni2+通过His亲和层析柱以后,Ni2+与凝胶通过亲和力结合在一起,再分别用5个体积的双蒸水和5个体积的binding buffer(0.5M NaCl、20mM Tis-HCl、5mM咪唑、10%甘油、8M尿素)洗去未结合的Ni2+,当带His标签的hGzmK重组蛋白滤液通过时,hGzmK重组蛋白与Ni2+亲和吸附,然后用10个体积的binding buffer和6个体积的washing buffer(0.5M NaCl、20mM Tis-HCl、60mM咪唑、10%甘油、8M尿素)将不能结合的杂质洗掉,最后用3个体积的elute buffer(0.5M NaCl、20mM Tis-HCl、500mM咪唑、10%甘油、8M尿素)将hGzmK重组蛋白体脱下来,每管2mL依次收集洗脱液。
洗脱下来的hGzmK蛋白溶液中含有8M尿素和500mM咪唑,将其放入处理好的透析袋中,透析袋浸透在不含尿素和咪唑的缓冲液(0.5M NaCl、20mM Tis-HCl、10%甘油)中,尿素和咪唑析出,袋中的蛋白即为高纯度的hGzmK重组蛋白。该纯化蛋白的SDS-PAGE电泳图谱见图6,其纯度可达95%以上。
2. hGzmK 重组蛋白的活性检测
活性鉴定是在常温的缓冲液(50 mM Tris-HCl, 0.15 M NaCl, 0.01% Triton X-100,pH 7.6)中进行。向该缓冲液中加入终浓度为0.3mM底物溶液Z-Lys-SBzl,混匀后加入96孔板中,每孔150μL。在每孔底物溶液中加入终浓度为0.4μM hGzmK重组蛋白或相同体积的透析溶液(Mock),然后加入终浓度为0.3mM底物显色液5,5-二硫代双(2-硝基苯甲酸)(DTNB),混匀后静置10分钟,于酶标仪上读取405nm处OD值,其检测如见图7所示,表明获得的人活性颗粒酶A重组蛋白具有较好的生物学活性。
<110> 华东师范大学
<120>一种人活性颗粒酶K重组蛋白的制备方法
 
<160> 4
<170> PatentIn version 3.3
 
<210> 1
<211> 32
<212> DNA
<213> 人工序列
 
<220>
<223> 根据GenBank提供的人颗粒酶K基因序列设计和人工合成而得,用作引物。
 
<400> 1
ggaattccatatggaaattattggagggaaag 32
 
<210> 2
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列
 
<220>
<223> 根据GenBank提供的人颗粒酶K基因序列设计和人工合成而得,用作引物。
 
<400> 2
ccgctcgagatttgtatgaggc 22
 
<210> 3
<211> 720
<212> DNA
<213> 人工序列
 
<220> 
<223> 人活性颗粒酶K基因序列。
 
<400> 3
atggaaattattggagggaaagaagtgtcacctcattccaggccatttatggcctccatccagtatggcggacatcacgtttgtggaggtgttctgattgatccacagtgggtgctgacagcagcccactgccaatatcggtttaccaaaggccagtctcccactgtggttttaggcgcacactctctctcaaagaatgaggcctccaaacaaacactggagatcaaaaaatttataccattctcaagagttacatcagatcctcaatcaaatgatatcatgctggttaagcttcaaacagccgcaaaactcaataaacatgtcaagatgctccacataagatccaaaacctctcttagatctggaaccaaatgcaaggttactggctggggagccaccgatccagattcattaagaccttctgacaccctgcgagaagtcactgttactgtcctaagtcgaaaactttgcaacagccaaagttactacaacggcgacccttttatcaccaaagacatggtctgtgcaggagatgccaaaggccagaaggattcctgtaagggtgactcagggggccccttgatctgtaaaggtgtcttccacgctatagtctctggaggtcatgaatgtggtgttgccacaaagcctggaatctacaccctgttaaccaagaaataccagacttggatcaaaagcaaccttgtcccgcctcatacaaat 720
 
<210> 4
<211> 240
<212> 蛋白质
<213> 人工序列
 
<220> 
<223> 人活性颗粒酶K氨基酸序列。
 
<400> 4
MEIIGGKEVSPHSRPFMASIQYGGHHVCGGVLIDPQWVLTAAHCQYRFTKGQSPTVVLGAHSLSKNEASKQTLEIKKFIPFSRVTSDPQSNDIMLVKLQTAAKLNKHVKMLHIRSKTSLRSGTKCKVTGWGATDPDSLRPSDTLREVTVTVLSRKLCNSQSYYNGDPFITKDMVCAGDAKGQKDSCKGDSGGPLICKGVFHAIVSGGHECGVATKPGIYTLLTKKYQTWIKSNLVPPHTN 240
 

Claims (7)

1.一种人活性颗粒酶K重组蛋白的制备方法,其特征在于该方法包括以下步骤:
a)获得hGzmK的cDNA
提取人NK92细胞中的总RNA,用RT-PCR的方法获得cDNA,然后用特异PCR扩增获得hGzmK基因;
b)构建和鉴定重组表达载体pET24a(+)-hGzmK
将得到的hGzmK PCR产物与原核表达载体pET24a(+)分别进行NdeⅠ和XhoⅠ双酶切,酶切产物回收后于16 ℃过夜连接,连接产物转化大肠菌DH5α后提取质粒并用NdeⅠ和XhoⅠ双酶切鉴定,得到约720 bp条带,证明pET24a(+)-hGzmK重组质粒构建成功;
c)重组质粒pET24a(+)-hGzmK转化大肠杆菌BL21
转化是指:将所述重组质粒pET24a(+)-hGzmK加入到冰预冷的大肠杆菌BL21感受态中,然后置于冰上冷却后进行热击;加入无抗生素培养基后培养60min,涂布于kanLB平板,经37℃培养12-16h,得到hGzmK阳性转化子细菌;
d)hGzmK重组蛋白的表达和鉴定
将所述阳性转化子细菌pET24a(+)-hGzmK/BL21接种于LB培养基中,摇菌过夜;再接菌于新的LB培养基中,摇菌至OD600=0.6~0.8之间;然后再加入IPTG诱导表达6h,12000rpm离心2min,去上清后,用PBS重悬菌体,沸水中煮样5min,收集上清得到rhGzmK;以小鼠抗His多克隆抗体为一抗,以HRP标记的羊抗小鼠IgG为二抗,通过Western Blot鉴定所述rhGzmK的表达;其中:诱导表达的诱导剂IPTG终浓度为1mM;
e)hGzmK重组蛋白的纯化
将IPTG诱导表达所获得的pET24a(+)-hGzmK/BL21菌体离心后,用PBS重悬,然后置于超声波破碎仪中进行超声破碎;破碎后,于4℃、12000rpm,离心15min,检测到rhGzmK主要以包涵体的形式存在于沉淀中;弃去上清后,收集的沉淀用binding buffer尿素溶液重悬,使包涵体中的蛋白溶解在尿素溶液中,再次离心,收集获得的上清,0.45μm滤膜过滤;将过滤后的溶液通过预处理好的Ni2+柱进行亲和层析纯化;
f)hGzmK重组蛋白的活性鉴定
在缓冲液中加入底物溶液Z-Lys-SBzl,混匀后加入96孔板中;在含底物溶液的96孔板中加入待测重组蛋白后,加入底物显色液5,5-二硫代双(2-硝基苯甲酸)(DTNB),作用10分钟后于酶标仪上读取405nm处OD值。
2.如权利要求1所述的方法,其特征在于,步骤a)的hGzmK基因PCR的引物序列如下:引物 1:5′- GGAATTCCATATGGAAATTATTGGAGGGAAAG -3′ 其中:划线部分为NdeⅠ酶切位点,76-97;引物 2:5′- CCGCTCGAGATTTGTATGAGGC -3′其中:划线部分为XhoⅠ酶切位点,780-792;hGzmK基因PCR扩增产物约720 bp。
3.如权利要求1所述的方法,其特征在于,步骤c)所述的置于冰上的时间是30min;热击的条件为:水温42℃,时间90s;无抗培养基加入体积比为1:3;恢复时间为60min。
4.如权利要求1所述的方法,其特征在于,步骤e)所述Ni2+柱进行亲和层析纯化是:将Ni2+通过亲和层析凝胶柱以后,Ni2+与凝胶亲和吸附,当带His标记的rhGzmK滤液通过时rhGzmK与Ni2+亲和吸附,然后用binding buffer和washing buffer洗去未结合的杂质,最后用含高浓度咪唑的elute buffer使亲和力减弱,将rhGzmK洗脱下来;洗脱下来的缓冲液中含有高浓度尿素和咪唑,将其放入处理好的透析袋,透析袋浸透在不含尿素和咪唑的缓冲液中,尿素和咪唑析出,袋中的蛋白即为高纯度的rhGzmK。
5.如权利要求4所述的方法,其特征在于,所述binding buffer的成分包括0.5M NaCl、20mM Tis-HCl、5mM咪唑、10%甘油、8M尿素;所述washing buffer的成分包括0.5M NaCl、20mM Tis-HCl、60mM咪唑、10%甘油、8M尿素;所述elute buffer的成分包括0.5M NaCl、20mM Tis-HCl、500mM咪唑、10%甘油、8M尿素。
6.如权利要求4所述的方法,其特征在于,所述不含尿素和咪唑的缓冲液成分为0.5M NaCl、20mM Tis-HCl、10%甘油。
7.如权利要求1所述的方法,其特征在于,步骤f)的缓冲液为50 mM Tris-HCl,0.15 M NaCl,0.01% Triton X-100,pH 7.6;底物溶液Z-Lys-SBzl终浓度为0.3mM;底物显色液5,5-二硫代双(2-硝基苯甲酸)(DTNB)终浓度为0.3mM。
CN2013100908568A 2013-03-21 2013-03-21 一种人活性颗粒酶k重组蛋白的制备方法 Pending CN103205444A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN2013100908568A CN103205444A (zh) 2013-03-21 2013-03-21 一种人活性颗粒酶k重组蛋白的制备方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN2013100908568A CN103205444A (zh) 2013-03-21 2013-03-21 一种人活性颗粒酶k重组蛋白的制备方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN103205444A true CN103205444A (zh) 2013-07-17

Family

ID=48752849

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN2013100908568A Pending CN103205444A (zh) 2013-03-21 2013-03-21 一种人活性颗粒酶k重组蛋白的制备方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN103205444A (zh)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103555742A (zh) * 2013-09-09 2014-02-05 华东师范大学 一种人活性颗粒酶a重组蛋白的制备方法
CN105044047A (zh) * 2015-06-09 2015-11-11 天津市南开医院 检测重组蛋白表达情况的试剂盒及其使用方法
CN105031717A (zh) * 2015-08-27 2015-11-11 中国人民解放军国防科学技术大学 生物粘合剂及其制备方法和应用
CN116240197A (zh) * 2023-02-13 2023-06-09 中国科学院青岛生物能源与过程研究所 一种催化小分子含氮杂环化合物氮乙酰化的方法

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20020192754A1 (en) * 1999-09-09 2002-12-19 Max-Planck-Gesellschaft E.V. Method for producing active serine proteases and inactive variants

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20020192754A1 (en) * 1999-09-09 2002-12-19 Max-Planck-Gesellschaft E.V. Method for producing active serine proteases and inactive variants

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
JIANG,W ET AL: "Homo sapiens granzymeK(granzyme 3;tryptase II)(GZMK),mRNA(NM_002104.2)", 《NCBI》, 5 January 2013 (2013-01-05) *
杜佳妮等: "人颗粒酶A 全长基因的克隆及原核表达", 《中国生物制品学杂志》, vol. 25, no. 2, 28 February 2012 (2012-02-28), pages 168 - 175 *

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103555742A (zh) * 2013-09-09 2014-02-05 华东师范大学 一种人活性颗粒酶a重组蛋白的制备方法
CN105044047A (zh) * 2015-06-09 2015-11-11 天津市南开医院 检测重组蛋白表达情况的试剂盒及其使用方法
CN105031717A (zh) * 2015-08-27 2015-11-11 中国人民解放军国防科学技术大学 生物粘合剂及其制备方法和应用
CN116240197A (zh) * 2023-02-13 2023-06-09 中国科学院青岛生物能源与过程研究所 一种催化小分子含氮杂环化合物氮乙酰化的方法

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN103205444A (zh) 一种人活性颗粒酶k重组蛋白的制备方法
CN104402975B (zh) 抗衰老短肽及其制备方法
CN104046646A (zh) 一种利用SUMO系统表达HMGB1 A-box蛋白的方法
CN104328131A (zh) 人核糖核酸酶4蛋白的重组表达和分离纯化方法
CN102021173B (zh) 可溶性截短的人trail活性蛋白的制备方法
CN103710367A (zh) 一种重组人激肽释放酶1及其编码基因和制备方法
CN103570817B (zh) 间日疟原虫PvMSP1重组抗原蛋白、其制备方法和用途
CN112625141A (zh) 一种番茄斑萎属病毒的蛋白标准物质及其应用
CN102071184B (zh) 牛虻抗血栓酶tablysin及其基因和应用
CN103739696B (zh) 一种半滑舌鳎雌性特异csw3蛋白及其基因与应用
CN102392042A (zh) 毕赤酵母制备刀额新对虾精氨酸激酶的方法
CN104894085A (zh) 一种淡水珍珠蚌噬菌体型溶菌酶重组蛋白的制备方法
CN113121672B (zh) 猫干扰素γ的可溶性原核表达和纯化方法及应用
CN104195124B (zh) 一种发形霞水母虾红素样金属蛋白酶calp1及其编码基因与表达方法
CN107746432A (zh) 一种Aβ42修饰蛋白及其表达与纯化方法
CN106434685A (zh) 制备重组红鳍东方鲀白介素2蛋白的基因及方法
CN102604906B (zh) 家蚕谷胱甘肽-S-转移酶BmGSTD4及其基因
CN103555742A (zh) 一种人活性颗粒酶a重组蛋白的制备方法
CN102140444A (zh) 一种低温碱性磷酸酶及其制备方法
CN106755016B (zh) 一种雅致放射毛霉羧肽酶y基因及其应用
CN109679940A (zh) 酸性蛋白酶Candidapepsin及其异源表达及纯化方法
CN104561021A (zh) 鸡白介素2表达基因改造方法、利用该方法改造得到的基因
CN102372772B (zh) 菲律宾蛤仔肿瘤坏死因子(RpTNF)重组蛋白及其制备和应用
CN105367663A (zh) 一种长效白细胞介素-1受体拮抗剂重组融合蛋白及其制备方法和用途
CN103255116A (zh) 拟穴青蟹双链特异性脱氧核糖核酸酶及其制备方法与应用

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
C05 Deemed withdrawal (patent law before 1993)
WD01 Invention patent application deemed withdrawn after publication

Application publication date: 20130717