CN103160558B - 一种制备乳清蛋白水解物的方法 - Google Patents

一种制备乳清蛋白水解物的方法 Download PDF

Info

Publication number
CN103160558B
CN103160558B CN201110414551.9A CN201110414551A CN103160558B CN 103160558 B CN103160558 B CN 103160558B CN 201110414551 A CN201110414551 A CN 201110414551A CN 103160558 B CN103160558 B CN 103160558B
Authority
CN
China
Prior art keywords
enzymolysis
centrifugal
product
enzymolysis product
protein
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Fee Related
Application number
CN201110414551.9A
Other languages
English (en)
Other versions
CN103160558A (zh
Inventor
木泰华
张苗
盛小波
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Institute of Food Science and Technology of CAAS
Original Assignee
Institute of Food Science and Technology of CAAS
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Institute of Food Science and Technology of CAAS filed Critical Institute of Food Science and Technology of CAAS
Priority to CN201110414551.9A priority Critical patent/CN103160558B/zh
Publication of CN103160558A publication Critical patent/CN103160558A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN103160558B publication Critical patent/CN103160558B/zh
Expired - Fee Related legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A40/00Adaptation technologies in agriculture, forestry, livestock or agroalimentary production
    • Y02A40/90Adaptation technologies in agriculture, forestry, livestock or agroalimentary production in food processing or handling, e.g. food conservation

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

本发明公开了一种制备乳清蛋白水解物的方法。本发明提供的方法,包括如下步骤:将乳清蛋白在超高压和蛋白酶的联合作用下进行酶解反应,收集酶解产物即得到乳清蛋白水解物。本发明的实验证明,利用本发明所生产的乳清蛋白抗氧化活性肽,能够有效清除自由基,因此具有提高食品稳定性、延长食品货架期、延缓机体衰老及减少氧化损伤等特点。本发明不仅能够增加乳清产品附加值,实现干酪加工副产物的综合利用,而且在食品、化妆品及医药等领域中具有广阔的应用前景。

Description

一种制备乳清蛋白水解物的方法
技术领域
本发明涉及生物技术领域,尤其涉及一种制备乳清蛋白水解物的方法。
背景技术
超高压技术作为新型非热加工技术之一,能在常温或者较低温度下实现杀菌、灭酶地目的,并保持食品或原材料中天然的营养成分及良好的感官特性,还可产生出传统热加工无法比拟的新的物化特性。此外,超高压技术还具有高效节能、保护环境等特点。作为一种半工业化方法,超高压技术作用于蛋白溶液时可以使蛋白链变得更加伸展,进而暴露更多的酶切位点而有利于水解反应的进行,还可能产生一些新的具有特殊生理活性的功能性肽。因此,超高压技术被公认为是一种最具潜力和发展前景的食品加工与保藏新技术,受到了广泛关注与研究。
酶解技术是一种用于改善食物中的蛋白质,以获得更有价值和用途的产品的重要手段之一。在酶解过程中,可释放出小分子的蛋白质及肽段,使得蛋白质的营养品质和安全性得到改善。近年来,酶解制备抗氧化活性肽的研究得到广泛的关注,已有从牛奶、鸡蛋、肉类、鱼类,以及大豆、小麦和玉米等多种动植物中分离抗氧化活性肽的报导。
乳清是乳品工业生产干酪及干酪素的副产物,全世界每年生产乳清约8000万吨,且正以每年2.0%的速度增长。乳清蛋白具有营养价值高、易消化吸收、含有多种活性成分、具有很高的代谢效率和生物学价值等特点,是公认的人体优质蛋白质补充剂之一,因而又被称为蛋白之王。近年来的研究发现,乳清蛋白及其水解产物具有一定的抗氧化活性,如脂质过氧化抑制作用、氧自由基吸收能力和自由基清除活性等。因此,开发利用乳清蛋白,不仅能提供营养丰富、生理功能卓越的各种保健食品、化妆品及抗氧化药物,而且能够缓解乳品企业的环境污染,提高乳清产品的附加值,实现经济、社会和生态效益的有机结合。
发明内容
本发明的目的是提供一种制备乳清蛋白水解物的方法。
本发明提供的方法,包括如下步骤:
将乳清蛋白在超高压和蛋白酶的联合作用下进行酶解反应,收集酶解产物即得到乳清蛋白水解物。
在上述方法中,所述蛋白酶为碱性蛋白酶、胰凝乳蛋白酶、风味蛋白酶、复合蛋白酶、中性蛋白酶、木瓜蛋白酶或酸性蛋白酶;所述蛋白酶具体为碱性蛋白酶、胰凝乳蛋白酶、中性蛋白酶或酸性蛋白酶。
在上述方法中,所述将乳清蛋白在超高压和蛋白酶的联合作用下进行酶解反应的方法为如下A或B:
A包括如下步骤:
1)将所述乳清蛋白溶于缓冲液中,得到乳清蛋白溶液;
2)将步骤1)得到的乳清蛋白溶液与所述蛋白酶混匀后在超高压条件下同时酶解,得到酶解产物;
B包括如下步骤:
a)将所述乳清蛋白溶于缓冲液中,得到乳清蛋白溶液;
b)将步骤a)得到的乳清蛋白溶液进行超高压处理,得到预处理产物;
c)将步骤b)得到的预处理产物与所述蛋白酶混匀后酶解,得到酶解产物。
在上述A和B中,所述超高压的压力为100MPa-600MPa;所述超高压的压力具体为400MPa;
在上述A和B中,所述蛋白酶和所述乳清蛋白的质量比为0.05∶1。
其中,上述酶解的温度为35℃-60℃;所述缓冲液为浓度为0.05M-0.1M、pH7.0-8.5的Tris-HCl缓冲溶液或浓度为0.05M-0.1M、pH2.2-3.0的柠檬酸缓冲液;
上述蛋白酶为碱性蛋白酶Alcalase、胰凝乳蛋白酶Chymotrypsin、中性蛋白酶AS1.398或酸性蛋白酶Pepsin;
在上述A和B中,
上述碱性蛋白酶Alcalase的酶解温度及对应的缓冲液分别50℃-60℃和浓度为0.05M-0.1M、pH7.5-8.5的Tris-HCl缓冲溶液;上述碱性蛋白酶Alcalase的酶解温度及对应的缓冲液分别具体为55℃和浓度为0.05M、pH8的Tris-HCl缓冲溶液;
上述胰凝乳蛋白酶Chymotrypsin的酶解温度及对应的缓冲液分别为40℃-50℃和浓度为0.05-0.1M、pH7.5-8.5的Tris-HCl缓冲溶液;上述胰凝乳蛋白酶Chymotrypsin的酶解温度及对应的缓冲液分别具体为40℃和浓度为0.05M、pH8.5的Tris-HCl缓冲溶液;
上述中性蛋白酶AS1.398的酶解温度及对应的缓冲液分别为40~55℃和浓度为0.05~0.1M、pH7.0~8.0的Tris-HCl缓冲溶液;上述中性蛋白酶AS1.398的酶解温度及对应的缓冲液分别具体为45℃和浓度为0.05M、pH7.0的Tris-HCl缓冲溶液;
上述酸性蛋白酶Pepsin的酶解温度及对应的缓冲液分别为35~40℃和浓度为0.05~0.1M、pH2.2~3.0的柠檬酸缓冲液;上述酸性蛋白酶Pepsin的酶解温度及对应的缓冲液分别具体为37℃和浓度为0.05M、pH2.2的柠檬酸缓冲液。
上述A和B中,所述酶解时间和所述超高压预处理的时间均为30min-120min。
在上述A所示的方法的步骤2)中和B所示的方法的步骤c)中,在所述酶解的步骤后还包括将所述酶解产物依次进行超滤离心和凝胶过滤层析得到乳清蛋白水解物的步骤;
其中超滤离心包括如下步骤:先将所述酶解产物进行截留分子量为10kDa的超滤离心收集透过液1,再将所述透过液1进行截留分子量为3kDa的超滤离心,收集透过液2;
其中凝胶过滤层析包括如下步骤:将所述透过液2经凝胶过滤色谱柱分离,收集保留时间为300min-410min的分离产物,得到乳清蛋白水解物。
在上述超滤离心中,所述离心的离心力均为3000g-4000g,所述离心的时间均为10min-30min;
在上述凝胶过滤层析中,所述凝胶过滤色谱柱为Sephadex G-25,所述洗脱液为经过0.22um膜过滤的去离子水;所述凝胶过滤的流速为0.3mL/min-0.8mL/min,所述凝胶过滤的检测波长为214nm或220nm。
在上述方法中,在所述酶解产物进行超滤离心的步骤前,还包括将所述酶解产物依次进行灭活酶、离心取上清液、冷冻干燥的步骤;
上述灭活酶的温度为100℃,灭活酶的时间为10min;上述离心力为10000g,上述离心时间为30min。
由上述方法得到的乳清蛋白水解物也是本发明保护的范围。
上述的乳清蛋白水解物在制备具有抗氧化活性功能产品中的应用也是本发明保护的范围。
上述抗氧化活性具体体现提高超氧阴离子清除能力。
本发明的实验证明,以乳清蛋白为原料,将超高压技术与酶技术联用,在高压处理中和高压处理后,分别对乳清蛋白进行酶解处理,制备具有高抗氧化活性的乳清蛋白酶解产物。并进一步将上述乳清蛋白酶解产物采用超滤离心、凝胶过滤色谱、MALDI-TOF MS及nano-LC/MS/MS分离纯化后,得到具有高抗氧化活性的乳清蛋白单一活性肽段。利用本发明所生产的乳清蛋白抗氧化活性肽,能够有效清除自由基,因此具有提高食品稳定性、延长食品货架期、延缓机体衰老及减少氧化损伤等特点。本发明不仅能够增加乳清产品附加值,实现干酪加工副产物的综合利用,而且在食品、化妆品及医药等领域中具有广阔的应用前景。
附图说明
图1为不同高压处理下碱性蛋白酶Alcalase对WPI的水解作用。
图2为高压处理中与高压处理后WPI的Alcalase酶解产物的抗氧化活性。
(A)高压处理中WPI酶解产物;(B)高压处理后WPI酶解产物。
图3为WPI酶解产物不同超滤组分超氧阴离子自由基清除活性。
图4为WPI酶解产物超滤离心分离所得组分III的Sephadex G-25凝胶色谱图;
(A)经Sephadex G-25凝胶过滤色谱所得不同峰组分的超氧阴离子清除活性;(B)组分III的Sephadex G-25凝胶过滤色谱图。
具体实施方式
下述实施例中所使用的实验方法如无特殊说明,均为常规方法。
下述实施例中所用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从商业途径得到。
下述实施例中的乳清蛋白(WPI)选用美国Le Sueur Cheese公司的牛乳清分离蛋白(WPI),蛋白含量>95%(w/w),产品注册商标:
实施例1、超高压技术与酶技术联用制备乳清蛋白酶解产物
一、超高压技术与碱性蛋白酶联用得到酶解产物
方法一:高压处理中水解
1、WPI溶液的制备
5%(质量百分含量)的WPI溶液:将WPI溶于0.05M、pH8.0的Tris-HCl缓冲溶液(称取6.06g Tris,量取2.63mL浓盐酸,加水充分溶解并混匀后,定容至1L)中得到的混合液,使WPI在混合液中的浓度为5%(质量百分含量)。
2、WPI溶液的超高压处理中水解
将上述1得到的20mL 5%(质量百分含量)的WPI溶液(0.05M Tris-HCl缓冲溶液,pH8.0),装在聚氯乙烯塑料袋中,按照酶与底物浓度比E/S=5.0%(w/w)添加碱性蛋白酶Alcalase(丹麦诺维信公司;产品批号:PLN05355),密封,迅速混匀并置于超高压容器中进行水解反应。各样品的处理压力依次为100、200、300、400、500和600MPa,保压时间30min,反应温度为55℃。水解反应结束后均迅速置于沸水浴中灭酶10min,冷却后10000g离心30min,取上清液冷冻干燥,获得不同压力下的WPI酶解产物粉末。
将上述得到的不同压力下的WPI酶解产物粉末的酶解特性用水解度(DH)来表征,水解度(DH)的测定采用Nielsen和Petersen的方法(参考文献:Nielsen P M,PetersenD,Dambmann C,Improved method for determining food protein degree of hydrolysis.Journal of Food Science,2001,66(5):642-646.),其水解度的计算公式如下:
DH=h/htot×100% (公式1)
式中:htot指每个蛋白质中总的肽键数,主要取决于原料的类型,乳清蛋白为8.8mmol/g蛋白质;h指每g蛋白质中被水解的肽键数,mmol/g蛋白质。
上述得到的不同压力下的WPI酶解产物粉末的抗氧化活性的测定方法如下:
光化学发光法(PLC):(参考文献:Popov I,Lewin G,Baehr R,Photochemiluminescent detection of antiradical activity.I.Assay of superoxide dismutase.Biomed Biochim Acta,1987,46(11):775-779.);PCL法采用超快速抗氧化剂和自由基全自动分析仪PHTOCHEM,利用具有光化学激发作用的光敏剂(发光氨)激发反应分子,使之在紫外光的作用下以比正常条件下快1000倍的速度发生氧化反应,迅速生成自由基,同时用化学发光法检测自由基。
ACW标准试剂包(德国Analytik Jena AG;产品目录号:KIT ACW-s 400.801)用于测定样品中水溶性成分的抗氧化能力,其包括:
试剂1,稀释液(直接用);试剂2,缓冲液(直接用);试剂3,光敏剂;试剂4,抗坏血酸干粉作为标准试剂。
将一定量的样品溶于10mL超纯水中配置成5.0mg/mL的样品溶液,在10000g条件下离心10min,取上清用于测定。将10μL浓H2SO4与490μL试剂1的混合液添加至标准试剂瓶中,配置成10mmol/L的储备液,然后用试剂1将该储备液稀释成0.1mmol/L的标准溶液。根据表1的条件参数,将各试剂依次加入到检测试管中,迅速混匀后上样至抗氧化剂和自由基全自动分析仪(德国Analytik Jena AG公司;产品型号:)进行测定。测定参数如下:检测时间,250s;平滑因子,40;调零功能,开;校正及测量参数,时间滞差lag-lag0;清洗,1×每测量一次。以0.5~2.5nmol的抗坏血酸溶液绘制标准曲线,样品的水溶性抗氧化能力表示为每毫克样品的抗坏血酸当量,即μg抗坏血酸/mg。
表1水溶性抗氧化能力的PCL测定法
注:表中所有数据单位均为μL,x和y分别表示添加的试剂4和样液的量
邻苯三酚自氧化法:(参考文献:Marklund S,Marklund G,Involvement of thesuperoxide anion radical in the autoxidation of pyrogallol and a convenient as say forsuperoxide dismutase.European Journal of Biochemistry,1974,47(3):469-474.),具体如下:
在试管中加入0.2mL 5.0mg/mL的样品溶液和3.6mL 0.1mol/L的Tris-HCl(pH8.2,含有2mmol/L EDTA),混匀后于25℃水浴10min,然后加入0.2mL 3mmol/L的邻苯三酚(预热至25℃),迅速摇匀、计时,每隔30s记录其在325nm波长下的吸光值A1,直至4min。计算样品溶液吸光度值随时间的变化率ΔA1,并以去离子水作为对照计算空白的自氧化速率ΔA0。超氧阴离子自由基的清除能力采用以下的公式进行计算:
清除率(%)=(1-ΔA1/ΔA0)×100% (公式2)
结果如图1与图2(A)所示:在300MPa下,水解度(DH)最高,为30.33%;比常压下水解时DH提高了15.90%。在400MPa时,所得WPI酶解产物的水溶性抗氧化能力和超氧阴离子清除能力最高,分别为1.90μg抗坏血酸/mg和53.68%;与常压下WPI酶解产物的水溶性抗氧化能力和超氧阴离子清除能力相比,则分别提高了1.17μg抗坏血酸/mg和30.49%。
方法二:高压处理后水解
1、WPI溶液的制备:与方法一相同;
2、WPI溶液的高压处理后水解
将上述1得到的20mL 5%(质量百分含量)的WPI溶液(0.05M Tris-HCl缓冲溶液,pH8.0),装在聚氯乙烯塑料袋中,密封,置于超高压容器中进行超高压预处理,处理压力分别为100、200、300、400、500和600MPa,保压时间为30min。处理后,按照酶与底物浓度比E/S=5.0%(w/w)添加碱性蛋白酶Alcalase,迅速混匀并置于常压水浴下,反应温度为55℃,时间为30min。水解反应结束后迅速置于沸水浴中灭酶10min,冷却后10000g离心30min,取上清液冷冻干燥,获得不同压力下的WPI酶解产物粉末。
将上述得到的不同压力下的WPI酶解产物粉末进行水解度、抗坏血酸含量和超氧阴离子自由基的清除能力的检测,方法与方法一相同,
结果如图1与图2(B)所示:在400MPa下,水解度(DH)最高,为21.17%;比常压下水解时DH提高了6.74%。在300MPa时,所得WPI酶解产物的水溶性抗氧化能力和超氧阴离子清除能力最高,分别为1.05μg抗坏血酸/mg和45.53%;与常压下WPI酶解产物的水溶性抗氧化能力和超氧阴离子清除能力相比,则分别提高了0.32μg抗坏血酸/mg和22.34%。
二、超高压技术与中性蛋白酶联用制备乳清蛋白酶解产物
按照与上述一同样的方式分别进行高压处理中水解和高压处理后水解,不同之处是所使用的蛋白酶为中性蛋白酶AS1.398(无锡市雪梅酶制剂科技有限公司;产品目录号:A.S1398中性蛋白酶),缓冲液体系为0.05M Tris-HCl缓冲液(pH7.0),反应温度为45℃,获得不同压力下的WPI酶解产物粉末。
不同压力下的WPI酶解产物粉末的水解度、抗坏血酸含量和超氧阴离子自由基的清除能力的检测方法与上述一的方法一相同,
高压处理中WPI酶解产物结果如下:在300MPa下,水解度(DH)最高,为26.55%;与常压下AS1.398水解WPI时相比,DH提高了15.86%。在300MPa时,所得WPI酶解产物的水溶性抗氧化能力和超氧阴离子清除能力最高,分别为1.69μg抗坏血酸/mg和48.29%;与常压下AS1.398水解WPI所得酶解产物的水溶性抗氧化能力和超氧阴离子清除能力相比,分别提高了0.98μg抗坏血酸/mg和27.76%。
高压处理后WPI酶解产物结果如下:在400MPa下,水解度(DH)最高,为22.04%;与常压下AS1.398水解WPI时相比,DH提高了12.50%。在500MPa时,所得WPI酶解产物的水溶性抗氧化能力和超氧阴离子清除能力最高,分别为1.02μg抗坏血酸/mg和41.88%;与常压下AS1.398水解WPI所得酶解产物的水溶性抗氧化能力和超氧阴离子清除能力相比,分别提高了0.31μg抗坏血酸/mg和21.35%。
三、超高压技术与胰凝乳蛋白酶联用制备乳清蛋白酶解产物
按照与上述一同样的方式进行,不同之处是所使用的蛋白酶为胰凝乳蛋白酶Chymotrypsin(美国Sigma公司;产品目录号C6423),缓冲液体系为0.05M Tris-HCl缓冲液(pH8.5),反应温度为40℃,获得不同压力下的WPI酶解产物粉末。
不同压力下的WPI酶解产物粉末的水解度、抗坏血酸含量和超氧阴离子自由基的清除能力的检测方法与上述一的方法一相同,
高压处理中WPI酶解产物结果如下:在200MPa下,水解度(DH)最高,为19.81%;与常压下Chymotrypsin水解WPI时相比,DH提高了6.56%。在300MPa时,所得WPI酶解产物的水溶性抗氧化能力和超氧阴离子清除能力最高,分别为1.13μg抗坏血酸/mg和42.22%;与常压下Chymotrypsin水解WPI所得酶解产物的水溶性抗氧化能力和超氧阴离子清除能力相比,分别提高了0.47μg抗坏血酸/mg和27.94%。
高压处理后WPI酶解产物结果如下:在400MPa下,水解度(DH)最高,为16.76%;与常压下Chymotrypsin水解WPI时相比,DH提高了3.51%。在400MPa时,所得WPI酶解产物的水溶性抗氧化能力和超氧阴离子清除能力最高,分别为0.81μg抗坏血酸/mg和31.11%;与常压下Chymotrypsin水解WPI所得酶解产物的水溶性抗氧化能力和超氧阴离子清除能力相比,分别提高了0.15μg抗坏血酸/mg和16.83%。
四、超高压技术与酶技术联用制备乳清蛋白酶解产物
按照与上述一同样的方式进行,不同之处是所使用的蛋白酶为酸性蛋白酶Pepsin(美国Sigma公司;产品目录号:P7000),缓冲液体系为0.05M、pH2.2柠檬酸缓冲液(称取10.5g柠檬酸和4.2g氢氧化钠,量取8mL浓盐酸,加水充分溶解并混匀后,定容至1L),反应温度为37℃,获得不同压力下的WPI酶解产物粉末。
不同压力下的WPI酶解产物粉末的水解度、抗坏血酸含量和超氧阴离子自由基的清除能力的检测方法与上述一的方法一相同,
高压处理中WPI酶解产物结果如下:在500MPa下,水解度(DH)最高,为16.33%;与常压下pepsin水解WPI时相比,DH提高了12.96%。在600MPa时,所得WPI酶解产物的水溶性抗氧化能力和超氧阴离子清除能力最高,分别为1.07μg抗坏血酸/mg和36.79%;与常压下Pepsin水解WPI所得酶解产物的水溶性抗氧化能力和超氧阴离子清除能力相比,分别提高了0.59μg抗坏血酸/mg和23.53%。
高压处理后WPI酶解产物结果如下在500MPa下,水解度(DH)最高,为16.12%;与常压下pepsin水解WPI时相比,DH提高了12.76%;在400MPa时,所得WPI酶解产物的水溶性抗氧化能力和超氧阴离子清除能力最高,分别为0.92μg抗坏血酸/mg和32.03%;与常压下Pepsin水解WPI所得酶解产物的水溶性抗氧化能力和超氧阴离子清除能力相比,分别提高了0.44μg抗坏血酸/mg和18.77%。
实施例2、乳清蛋白水解物的制备
一、乳清蛋白酶解产物的制备
1、WPI溶液的制备:将WPI溶于0.05M、pH8.0的Tris-HCl缓冲溶液(称取6.06gTris,量取2.63mL浓盐酸,加水充分溶解并混匀后,定容至1L)中得到的混合液,使WPI在混合液中的浓度为5%(质量百分含量)。
2、WPI溶液的超高压处理中水解
将上述1得到的20mL 5%(质量百分含量)的WPI溶液(0.05M Tris-HCl缓冲溶液,pH8.0),装在聚氯乙烯塑料袋中,按照酶与底物浓度比E/S=5.0%(w/w)添加碱性蛋白酶Alcalase,密封,迅速混匀并置于超高压容器中进行水解反应,处理压力为400MPa,保压时间30min,反应温度为55℃。水解反应结束后均迅速置于沸水(100℃)浴中灭酶10min,冷却后10000g离心30min,取上清液冷冻干燥,获得WPI酶解产物。
二、乳清蛋白酶解产物的分离纯化
1、超滤离心:取上述步骤一中得到的冻干的WPI酶解产物溶解在去离子水(经过0.22μm滤膜过滤的)中,采用截留分子量(MWCO)为10kDa的超滤离心管(美国Milipore公司;产品目录号:UFC901096)于4000g离心20min,装样量均为20mL/管。分别收集截留液(Mw>10kDa,组分I)和透过液;然后在同样的条件下采用MWCO为3kDa的超滤离心管(美国Milipore公司;产品目录号:UFC900324)对该透过液做进一步的分级分离,分别收集截留液(3kDa<Mw<10kDa,组分II)和透过液(Mw<3kDa,组分III)。
将上述得到的3种不同分级组分:组分I(Mw>10kDa)、组分II(3kDa<Mw<10kDa)和组分III(Mw<3kDa)进行超氧阴离子自由基的清除能力的检测,方法与实施例1中一的方法一相同。
结果如图3所示,组分I(Mw>10kDa)、组分II(3kDa<Mw<10kDa)和组分III(Mw<3kDa)的超氧阴离子自由基清除能力分别为22.27%、46.33%和75.92%。
2、凝胶过滤层析
将上述1得到的组分III用凝胶过滤色谱Sephadex G-25进行进一步分离纯化,色谱柱规格为Φ1.6cm×50cm,采用过膜(0.22μm)去离子水进行平衡与洗脱,流速为0.3mL/min,检测波长为220nm。
结果如图4B所示,得到3个吸收峰:III-1,III-2和III-3,分别收集上述3个吸收峰对应的物质III-1(保留时间为260min),III-2(保留时间为350min)和III-3(保留时间为460min)。
分别检测各物质的超氧阴离子自由基清除能力(方法与实施例1中一的方法一相同),结果如图4A,物质III-1、III-2和III-3的超氧阴离子自由基清除能力分别为28.15%、45.23%和21.41%。
将已知分子量的牛血清白蛋白(美国Amresco公司;产品目录号:0332)、维生素B12(美国Sigma公司;产品目录号:V2876)和氧化型谷胱甘肽(比利时Acros Organics公司;产品目录号:320225000)用去离子水分别配置成5.0、5.0和10mg/mL,并采用0.22μm的滤膜进行过滤后,依次按照25、25和100μL的进样量上样至SephadexG-25柱中,采用去离子水进行洗脱,得到标准品的凝胶洗脱色谱图。标准品牛血清白蛋白、维生素B12和氧化型谷胱甘肽的保留时间分别为:170、310和400min。然后根据各标准品的保留时间与分子量对数绘制标准曲线(分子量对数=-0.004×保留时间+4.3702)。依据所得标准曲线检测上述3个吸收峰对应的III-1物质,III-2物质和III-3物质的分子量,分子量分布范围分别是1622~3091、589~1349和309~537Da。

Claims (8)

1.一种制备乳清蛋白水解物的方法,包括如下步骤:
(1)将乳清蛋白在超高压和蛋白酶的联合作用下进行酶解反应,收集酶解产物;
(2)将上述酶解产物进行超滤离心,收集透过液得到乳清蛋白水解物;
所述将乳清蛋白在超高压和蛋白酶的联合作用下进行酶解反应的方法为如下A或B:
A包括如下步骤:
1)将所述乳清蛋白溶于缓冲液中,得到乳清蛋白溶液;
2)将步骤1)得到的乳清蛋白溶液与所述蛋白酶混匀后在超高压条件下同时酶解,得到酶解产物;
B包括如下步骤:
a)将所述乳清蛋白溶于缓冲液中,得到乳清蛋白溶液;
b)将步骤a)得到的乳清蛋白溶液进行超高压处理,得到预处理产物;
c)将步骤b)得到的预处理产物与所述蛋白酶混匀后酶解,得到酶解产物;
A所示的方法的步骤2)中和B所示的方法的步骤c)中,在所述酶解的步骤后还包括将所述酶解产物进行超滤离心得到乳清蛋白水解物的步骤;
所述超滤离心包括如下步骤:先将所述酶解产物进行截留分子量为10kDa的超滤离心收集透过液1,再将所述透过液1进行截留分子量为3kDa的超滤离心,收集透过液2得到乳清蛋白水解物;
所述蛋白酶为碱性蛋白酶;
A和B中,所述超高压的压力为100MPa-600MPa;
所述蛋白酶和所述乳清蛋白的质量比为0.05:1;
所述酶解的温度为35℃-60℃;
所述酶解时间和所述超高压处理的时间均为30min-120min;
所述缓冲液浓度为0.05M、pH8.0的Tris-HCl缓冲溶液。
2.根据权利要求1所述的方法,其特征在于:所述超高压的压力为400MPa。
3.根据权利要求1所述的方法,其特征在于:
所述方法中,还包括将所述透过液2进行凝胶过滤层析得到乳清蛋白水解物的步骤;
所述凝胶过滤层析包括如下步骤:将所述透过液2经凝胶过滤色谱柱分离,收集保留时间为300min-410min的分离产物,得到乳清蛋白水解物。
4.根据权利要求1所述的方法,其特征在于:
所述超滤离心中,所述离心的离心力均为3000g-4000g,所述离心的时间均为10min-30min。
5.根据权利要求3所述的方法,其特征在于:
所述凝胶过滤层析中,所述凝胶过滤色谱柱为Sephadex G-25,所述洗脱液为经过0.22μm膜过滤的去离子水;
所述凝胶过滤的流速为0.3mL/min-0.8mL/min,所述凝胶过滤的检测波长为214nm或220nm。
6.根据权利要求1所述的方法,其特征在于:
在所述酶解产物进行超滤离心的步骤前,还包括将所述酶解产物依次进行灭活酶、离心取上清液、冷冻干燥的步骤。
7.权利要求1-6任一所述方法得到的乳清蛋白水解物。
8.权利要求7所述的乳清蛋白水解物在制备具有抗氧化活性功能产品中的应用。
CN201110414551.9A 2011-12-13 2011-12-13 一种制备乳清蛋白水解物的方法 Expired - Fee Related CN103160558B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201110414551.9A CN103160558B (zh) 2011-12-13 2011-12-13 一种制备乳清蛋白水解物的方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201110414551.9A CN103160558B (zh) 2011-12-13 2011-12-13 一种制备乳清蛋白水解物的方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN103160558A CN103160558A (zh) 2013-06-19
CN103160558B true CN103160558B (zh) 2014-10-08

Family

ID=48584092

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201110414551.9A Expired - Fee Related CN103160558B (zh) 2011-12-13 2011-12-13 一种制备乳清蛋白水解物的方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN103160558B (zh)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN107183181A (zh) * 2017-05-10 2017-09-22 广西壮族自治区水牛研究所 一种水牛乳清蛋白肽乳酸菌饮料的制备方法

Families Citing this family (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103880942B (zh) * 2014-03-06 2015-12-02 福州大学 一种利用酶解蛋白制备金属螯合肽的方法
CN104404116A (zh) * 2014-11-28 2015-03-11 扬州大学 高抗氧化活性寡肽复配物及其制备方法
CN104757252B (zh) * 2015-04-22 2018-03-09 福建农林大学 一种具有抗氧化活性的灰树花蛋白酶解物的制备方法
CN105010720B (zh) * 2015-07-24 2018-06-08 中南林业科技大学 一种利用超高压处理米渣蛋白制备高抗氧化活性肽的方法
CN105238834A (zh) * 2015-09-25 2016-01-13 苏州蔻美新材料有限公司 一种生物活性肽的酶法提取工艺
CN105504003A (zh) * 2015-12-30 2016-04-20 南京师范大学 一种利用Caco-2细胞分析肠道可吸收乳清肽序列的方法
CN107960526A (zh) * 2017-11-27 2018-04-27 余雪平 胶原蛋白粉及其生产工艺
CN109619570A (zh) * 2018-12-06 2019-04-16 中恩(天津)医药科技有限公司 一种抗蛋白过敏的婴儿配方粉及其制备方法
CN110195048B (zh) * 2019-04-18 2022-11-11 河南科技学院 动/静高压联合处理提升胃蛋白酶酶解乳清蛋白产物性能的方法
CN114457137B (zh) * 2022-01-12 2024-05-24 广州舜康生物科技有限公司 一种连续循环水解并精准筛选肽分子量的深度水解乳清蛋白的制备方法
CN115819809B (zh) * 2022-12-22 2023-09-05 浙江工业大学 一种纳米乳液热稳定性的提高方法

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101591587A (zh) * 2009-04-28 2009-12-02 江苏大学 一种超高压调控蒜氨酸酶反应提取洋葱精油的方法
CN102132935A (zh) * 2011-03-10 2011-07-27 中国农业大学 一种超高压联合生物酶催化快速澄清果蔬汁的方法

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101519426B (zh) * 2009-03-19 2012-05-23 东北农业大学 具有抗氧化活性的乳清蛋白多肽及其制备方法

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101591587A (zh) * 2009-04-28 2009-12-02 江苏大学 一种超高压调控蒜氨酸酶反应提取洋葱精油的方法
CN102132935A (zh) * 2011-03-10 2011-07-27 中国农业大学 一种超高压联合生物酶催化快速澄清果蔬汁的方法

Non-Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
奚海燕等.超高压辅助酶法提取大米蛋白的研究.《粮食与饲料工业》.2007,(第10期),
王章存等.超高压处理对大豆蛋白酶解物的影响.《中国酿造》.2009,(第02期),
超高压处理对大豆蛋白酶解物的影响;王章存等;《中国酿造》;20090215(第02期);全文 *
超高压对牛乳清蛋白酶解及其产物影响的研究;陈井旺;《中国优秀硕士学位论文全文数据库》;20091030;正文第20页2.1.4.3,正文第20页2.1.4.1和第22-23页,正文第11页1.3.2.3,第4、5章 *
超高压辅助酶法提取大米蛋白的研究;奚海燕等;《粮食与饲料工业》;20071015(第10期);全文 *
陈井旺.超高压对牛乳清蛋白酶解及其产物影响的研究.《中国优秀硕士学位论文全文数据库》.2009,

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN107183181A (zh) * 2017-05-10 2017-09-22 广西壮族自治区水牛研究所 一种水牛乳清蛋白肽乳酸菌饮料的制备方法

Also Published As

Publication number Publication date
CN103160558A (zh) 2013-06-19

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN103160558B (zh) 一种制备乳清蛋白水解物的方法
de Freitas et al. Structural features of procyanidin interactions with salivary proteins
CN103255186B (zh) 鲍鱼多糖、脂质和蛋白肽的联产制备方法
Aluko Determination of nutritional and bioactive properties of peptides in enzymatic pea, chickpea, and mung bean protein hydrolysates
CN104356200B (zh) 一种抗氧化肽及其制备方法
CN104356201B (zh) 一种海参抗氧化多肽
Tavares et al. Manufacture of bioactive peptide-rich concentrates from Whey: Characterization of pilot process
CN103992385A (zh) 一种大黄鱼鱼鳔抗氧化胶原肽及其制备方法和用途
CN105237622A (zh) 玉米抗氧化活性肽及其制备方法
CN104961823B (zh) 一种适用于大规模制备食品级卵白蛋白的提纯方法
CN101906135A (zh) 一种新型螺旋藻源降血压肽及其制备方法
CN101768209B (zh) 具有高体内活性的降血压肽及其制备和纯化方法
CN104610430B (zh) 利用灵芝蛋白制备的抗氧化多肽及其制备方法
CN102917723A (zh) 含有大豆蛋白水解物的抗氧化剂及其用途
Foong et al. Iron-binding capacity of defatted rice bran hydrolysate and bioavailability of iron in Caco-2 cells
CN103343154A (zh) 一种大豆抗疲劳生物活性肽的制备
Soto-Sierra et al. Process development of enzymatically-generated algal protein hydrolysates for specialty food applications
CN109136315A (zh) 一种亚铁血红素寡肽微胶囊粉及其制备方法
FR2608050A1 (fr) Procede de preparation d'un melange peptidique riche en di- et tri-peptides, utilisable notamment en nutrition artificielle et en dietetique, melange ainsi obtenu, et utilisation de ce melange en nutrition artificielle et en dietetique
CN108251487B (zh) 抗氧化活性新疆黑蜂蜂王浆谷蛋白酶解产物的制备方法
Jaiswal et al. Iron (II)-chelating activity of buffalo α S-casein hydrolysed by corolase PP, alcalase and flavourzyme
Park et al. Effects of ethanol addition on the efficiency of subcritical water extraction of proteins and amino acids from porcine placenta
CN108251486B (zh) 抗氧化活性新疆黑蜂蜂王浆球蛋白酶解产物的制备方法
Das et al. Effects of operating parameters and nature of fouling behavior in ultrafiltration of sesame protein hydrolysate
CN110100944A (zh) 富含活性亚铁离子畜禽血寡肽的制备方法

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
C14 Grant of patent or utility model
GR01 Patent grant
CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee
CF01 Termination of patent right due to non-payment of annual fee

Granted publication date: 20141008

Termination date: 20181213