CN103103284A - 一种用于定量检测ikzf1基因突变的试剂盒 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种用于定量检测IKZF1基因突变的试剂盒。本发明所提供的用于定量检测IKZF1基因突变的试剂盒,由引物对和探针组成,引物对的一条引物序列如SEQ ID No:1所示,另一条引物序列如SEQ ID No:2所示,探针的序列如SEQ ID No:3所示。本发明提供的引物对和探针,可以用于定量检测IKZF1基因突变水平,且简便、灵敏,从而用于血液肿瘤患者(特别是ALL白血病患者、CML急淋变患者)的辅助诊断、MRD监测、预后的评估等等,将在医学检测领域发挥重要作用。
Description
技术领域
本发明涉及一种用于定量检测IKZF1基因突变的试剂盒。
背景技术
Ph阳性白血病包括慢性髓性白血病(chronic myelogenous leukemia,CML)和某些急性淋巴细胞白血病(acute lymphoblastic leukemia,ALL),其始作俑者是Ph染色体导致的BCR-ABL1融合基因。然而,以BCR-ABL1为靶点的治疗对某些Ph阳性白血病却并不见效。最新研究发现,在这类白血病的发生及进展过程中,包括IKZF1基因缺失在内的其他遗传学因素的作用也不可忽视。
IKZF1基因编码一种具有锌指结构的转录因子蛋白,在淋巴细胞的分化和发育过程中起着重要的调控作用。IKZF1基因的下游产物Ikaros是淋巴细胞特异性转录因子。IKZF1基因缺失可导致Ikaros表达的不足、显性失活或完全丧失。
IKZF1突变主要见于ALL,约20%的儿童B-ALL、15~30%的成人B-ALL和5%的T-ALL患者有IKZF1突变。BCR-ABL1阳性B-ALL患者常伴有IKZF1基因突变,MLL相关融合基因阳性的ALL患者也可伴有IKZF1突变,约20%染色体核型正常的ALL患者中可检测到IKZF1基因突变。IKZF1突变发生于基因组水平,是ALL发病的一个重要促进因素,也是ALL患者独立的预后不良因素。IKZF1突变很少发生于髓性白血病,但约86%的CML患者急淋变时可检测到发生IKZF1突变,是CML患者急变的重要促进因素。
目前,检测IKZF1突变的方法主要为测序的方法,不能定量分析IKZF1突变的水平。
发明内容
本发明的一个目的是提供一种用于定量检测IKZF1基因突变的试剂盒。
本发明所提供的用于定量检测IKZF1基因突变的试剂盒,由引物对和探针组成,引物对的一条引物序列如SEQ ID No:1所示,另一条引物序列如SEQ ID No:2所示,探针的序列如SEQ ID No:3所示。
SEQ ID No:1和SEQ ID No:2所示引物对和SEQ ID No:3所示探针在制备定量检测IKZF1基因突变的试剂盒中的应用也属于本发明的保护范围。
上述技术方案中,所述IKZF1基因突变可为单纯的缺失突变,还可为缺失突变和插入突变并存,还可为缺失突变和替换突变并存;
以野生型IKZF1基因的全基因组序列(NCBI Reference Sequence:NT_079592.2)为参照物来描述该突变应当满足的条件,该突变必须满足如下条件:
1)缺失突变、插入突变或替换突变均发生在参照物的自5ˊ末端起第25185——76017位核苷酸之间;(参照物的自5ˊ末端起第25185——76017位核苷酸实际上位于参照物的第2内含子-第6内含子这段区域内)
2)在参照物的自5ˊ末端起第25185——76017位核苷酸之间,发生所述突变后,所剩余的DNA片段大小能够被SEQ ID No:1和SEQ ID No:2所述引物对扩增得到PCR扩增曲线。
本发明提供的引物对和探针,可以用于定量检测IKZF1基因突变水平,且简便、灵敏,从而用于血液肿瘤患者(特别是ALL白血病患者、CML急淋变患者)的辅助诊断、MRD监测、预后的评估等等,将在医学检测领域发挥重要作用。
附图说明
图1为IKZF1基因突变测序结果。
图2为标准曲线。
图3为对病人样本的灵敏度检测结果图。
具体实施方式
下述实施例中所使用的实验方法如无特殊说明,均为常规方法。
下述实施例中所用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从商业途径得到。
实施例1、检测IKZF1基因突变
一、检测样本
成人初诊为ALL306例,非霍奇金淋巴瘤(non-hodgkin's lymphoma,NHL)10例,慢性淋巴细胞白血病(chronic lymphoblastic leukemia,CLL)21例,诊断标准依据世界卫生组织新的分型标准。提取DNA的样本为上述患者的外周血或骨髓,均经过患者的知情同意。
二、测序方法检测IKZF1基因突变
以提取的DNA为模板,以上游引物:5-ccacagggcaagtcatccacattttg-3’,下游引物:5-cagaccatagagtccctcctaggggaaaaa-3’进行PCR扩增。PCR反应体系为50μl:2×PCR扩增预混试剂(天根生物有限公司)25μl,上、下游引物各400nM,300ng DNA。PCR反应条件为:先95℃5分钟;然后95℃40秒,58℃40秒,72℃1分钟,共30个循环,最后72℃10分钟。扩增产物纯化后,使用测序引物5-ttcttagaagtctggagtctgtgaaggtca-3’由北京天一辉远生物技术有限公司在ABI3700DNA分析仪上完成测序工作。其中发现的部分突变被克隆进入pMD18-T质粒载体,经过细菌转化、筛选、进一步测序验证。
结果,306例ALL中,有58例的IKZF1基因存在突变,其余均不存在IKZF1基因突变。其中一例的测序结果如图1。
以野生型IKZF1基因(NCBI Reference Sequence:NT_079592.2)的全基因组序列为参照物描述58个突变。58个突变中,有的仅为缺失突变(即仅丢失大片段),有的为缺失突变和插入突变并存(即在缺失大片段的同时有少数几个碱基的插入);但是无论哪种突变,突变均发生在参照物的自5ˊ末端起第25185——76017位核苷酸之间;无论哪种突变,与参照物相比丢失的碱基数目在50730bp-50786bp之间(表1)。
表1、丢失的碱基总数(bp)
样本号 | 长度 | 样本号 | 长度 | 样本号 | 长度 | 样本号 | 长度 | 样本号 | 长度 |
1 | 50764 | 2 | 50758 | 3 | 50766 | 4 | 50779 | 5 | 50740 |
6 | 50743 | 7 | 50740 | 8 | 50745 | 9 | 50740 | 10 | 50734 |
11 | 50740 | 12 | 50742 | 13 | 50751 | 14 | 50740 | 15 | 50744 |
16 | 50762 | 17 | 50739 | 18 | 50741 | 19 | 50750 | 20 | 50741 |
21 | 50741 | 22 | 50736 | 23 | 50746 | 24 | 50737 | 25 | 50751 |
26 | 50743 | 27 | 50730 | 28 | 50747 | 29 | 50755 | 30 | 50735 |
31 | 50739 | 32 | 50738 | 33 | 50741 | 34 | 50739 | 35 | 50738 |
36 | 50743 | 37 | 50763 | 38 | 50741 | 39 | 50741 | 40 | 50740 |
41 | 50762 | 42 | 50740 | 43 | 50731 | 44 | 50740 | 45 | 50735 |
46 | 50786 | 47 | 50754 | 48 | 50741 | 49 | 50763 | 50 | 50741 |
51 | 50762 | 52 | 50734 | 53 | 50740 | 54 | 50758 | 55 | 50740 |
56 | 50739 | 57 | 50740 | 58 | 50740 |
三、本发明方法检测IKZF1基因突变
(一)方法
1、实时荧光定量PCR
引物对:CTTAGAAGTCTGGAGTCTGTGAAGGTC(SEQ ID No:1),
ATTCAGGAATAAAATGCAAATCACC(SEQ ID No:2)。
TaqMan-MGB探针:FAM-CTTCTCCCAGCCCATAGG-MGB(SEQ ID No:3);5’端标记报告荧光基团FAM(蓝色荧光),3’端标记不发光的淬灭基团,并连接二氢环化吲哚卟啉-三肽(dehydrocyclopyrroindole tripetide,DPI3)。
内参基因白蛋白(albumin,ALB)扩增,其特异引物及TaqMan探针如下:
ALB-FP:5’-GCC CAT TGT CCT GTT CTG ACT T-3’
ALB-RP:5’-TTC CAC TGC TGA GCC ATC AC-3’
ALB-Probe:5’-FAM-TAT GAT GCG GTA CAC AGA GCC ATC CAA G-TAMARA-3’
扩增体系:通用PCR扩增预混试剂(购自美国应用生物系统公司),上、下游引物各400nmol/L,荧光标记的TaqMan-MGB探针200nmol/L,150ng DNA。
PCR反应条件为:先50℃2min;然后95℃10min;最后95℃15s,60℃1min,共40个循环。
2、标准曲线的制备
根据上述测序检测结果,从58例含IKZF1基因突变的样本中,选取一例样本。以该样本的DNA为模板,按照测序中的方法,先进行PCR扩增,再进行克隆测序。将测序正确的质粒作为质粒标准品。
通过测定吸光度值计算出拷贝数,分别制备十倍梯度稀释(2x107,2x106,2x105,2x104,2x103,2x102个拷贝)样品,用于制作IKZF1型突变的标准曲线。每批定量检测的扩增曲线阈值均固定为0.08,均进行阳性对照(另一例IKZF1型突变阳性病人标本)、无模板空白对照、无相关模板阴性对照(IKZF1突变阴性病人标本)及用于制作标准曲线的质粒标准品的扩增。
荧光标准曲线见图2(阈值为0.082),函数为log10IKZF1=(Ct-40.60)/-3.56,相关系数均达到0.99以上,检测IKZF1基因片段的灵敏度可达1个拷贝。
3、本发明方法的检测结果计算
利用DNA标本分别扩增ALB及IKZF1突变的Ct值,根据ALB、IKZF1突变标准曲线分别计算出各份标本的ALB及IKZF1突变的拷贝数。以每100拷贝ALB量中IKZF1突变拷贝数作为IKZF1突变基因含量。如ALB拷贝数≥3×104,认为该标本可用于定量检测。
4、结果判断
在内参基因ALB扩增拷贝数≥3×104的前提下,若用SEQ ID No:1、SEQ ID No:2和SEQ ID No:3成功得到PCR扩增曲线,则证明待测样本中含有IKZF1基因突变,检测结果为阳性;进一步根据IKZF1突变标准曲线计算出各份标本的IKZF1突变的拷贝数,以每100拷贝ALB量中IKZF1突变拷贝数作为IKZF1突变基因含量;若得不到PCR扩增曲线,则证明待测样本中不含有IKZF1基因突变,检测结果为阴性。
(二)结果
结果如表2,在306例ALL病人中有58例成功实现定量检测,其余检测结果为阴性。在10例NHL及21例CLL中检测结果均为阴性。
该58例的患者与上述测序检测出来的58例患者一一对应,完全一致,表明本发明方法正确可行。
IKZF1基因突变样本中突变基因的定量结果如表3。以IKZF1基因的拷贝数与ALB基因的拷贝数的比值表示IKZF1基因的相对表达水平(%)。IKZF1突变阳性的58例标本的IKZF1突变拷贝数/ALB拷贝数平均值为234.36%(范围2.25%-469.49%)。
表2、IKZF1基因突变在306例初诊ALL患者中的检出率
分型 | 例数 | 突变型 | 野生型 | 突变检出率(%) |
ALL | 307 | 58 | 249 | 19.0 |
NHL | 10 | 0 | 10 | 0 |
CLL | 21 | 0 | 21 | 0 |
ALL:急性淋巴细胞白血病(acute lymphoblastic leukemia);NHL:非霍奇金淋巴瘤(non-hodgkin'slymphoma);CLL:慢性淋巴细胞白血病(chronic lymphoblastic leukemia)。
表3
实施例2、本发明方法的灵敏度
1、对质粒标准品的检测灵敏度:
将质粒标准品分别十倍梯度稀释(107,106,105,104,103,102,101,100个拷贝),然后进行实时荧光定量PCR。每梯度重复3次。
结果显示,其相关系数为0.99以上,检测灵敏度可达1个拷贝。ALB及IKZF1突变的扩增效率相近(标准曲线斜率分别为-3.45、-3.56)。
2、对IKZF1突变阳性病人的检测灵敏度:
对8例IKZF1突变阳性病人DNA标本进行10倍梯度稀释(DNA的初始浓度为150ng/ul),然后进行实时荧光定量PCR。
结果,灵敏度为10-4或10-5,相关系数均在0.99以上。其中5例的结果如图3所示。
Claims (2)
1.一种用于定量检测IKZF1基因突变的试剂盒,由引物对和探针组成,引物对的一条引物序列如SEQ ID No:1所示,另一条引物序列如SEQ ID No:2所示,探针的序列如SEQ ID No:3所示。
2.SEQ ID No:1和SEQ ID No:2所示引物对和SEQ ID No:3所示探针在制备定量检测IKZF1基因突变的试剂盒中的应用。
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