CN103060352A - 一种粘红酵母苯丙氨酸脱氨酶基因序列获取方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开一种获取粘红酵母苯丙氨酸脱氨酶基因的方法,经过提取RNA,反转录,PCR扩增,构建克隆载体pUCm-T-pal,测序,获得全长的苯丙氨酸脱氨酶基因序列,属于基因克隆技术领域。本发明方法操作简单,具有较高的效率和成功率。
Description
技术领域:
本发明在已知部分序列的基础上,采用5′-RACE(快速获取5′端序列)技术获取粘红酵母苯丙氨酸脱氨酶的全长基因,属于基因克隆技术领域。
背景技术:
苯丙氨酸脱氨酶(PAL)在pH 8.0时催化L-苯丙氨酸(L-phe)脱氨生成反式肉桂酸和氨,pH 11.0时能催化逆向反应合成L-phe,工业上利用这一特性,生产人体必须氨基酸L-phe和甜味剂阿斯巴甜。PAL广泛存在于植物、微生物中,微生物主要有霉菌和酵母菌,尤其是红酵母属中。其中粘红酵母(Rhodotorula glutinis)可以在廉价的原料如玉米粉,糖浆,糖蜜,豆粕,味精废水等工业废料上生长,容易实现大规模的培养,已经成功应用于食品、制药等工业领域。但是由于该酶是诱导酶,在对数生长期酶活达到峰值后,酶活下降较快,稳定性差。为进一步提高酶活和稳定性,需要采用分子生物手段对酶进行分子改造,但到目前为止,仅仅获得部分的cDNA。为进一步提升该酶的工业应用价值,对粘红酵母PAL进行改造,首先需要获得全长的基因序列,本专利的方法是根据已经报道部分粘红酵母PAL的cDNA序列的基础上(GenBank:DQ013364.1),成功获得粘红酵母PAL全长的基因序列。
发明内容:
本发明的目的是提供一种获取粘红酵母PAL全长基因序列的方法。
本发明的具体步骤如下:
(1)提取粘红酵母总RNA。
(2)反转录获得cDNA。
(3)获得pal 5′端的序列
(4)构建克隆载体pUCm-T-pal,测序,获得全长的序列。
本发明的详细的步骤为
1提取粘红酵母总RNA
(1)从粘红酵母平板上挑取单菌落至5mL的种子培养基中于30℃培养24h后,取50μL的种子液至装有50mL培养基的250mL三角瓶中,30℃培养18-20h至OD600=1.0,1500g离心5min收集菌体,用冷水将菌体洗涤2次,弃上清。
(2)用400μL的TES(10mM Tris-HCl,10mM EDTA,0.5%SDS,pH7.5)缓冲液重悬细胞,加入400μL酸性酚,剧烈震荡10sec,65℃温育1h,不时用涡旋振荡器短暂震荡。
(3)冰育5min,于4℃,12000g离心5min。
(4)将水相移至另一1.5mL的离心管中,加入400μL酸性酚,剧烈震荡10sec,重复步骤(3)。
(5)将水相移至另一1.5mL的离心管中,加入氯仿,剧烈震荡10sec,于4℃,12000g离心5min。
(6)将水相移到新的1.5mL离心管中,加入40ul的3M NaAc及1ml冰冷的无水乙醇,于4℃,12000g离心5min。
(7)加入1mL,75%乙醇快速震荡洗涤RNA沉淀。
(8)沉淀于无菌操作台上风吹15min至酒精挥发完全,加入经DEPC处理的无菌水50μL重悬,-80℃保藏备用,采用琼脂糖凝胶电泳检测总RNA质量。
2反转录,获得cDNA
(1)于0.5mL的离心管中加入50ng总RNA,1μL 5’-CDS(5’-(T)25VN(N=A,C,G,T;V=A,G,C)-3’)和1μL SMARTer II A Oligonucleotide(5′-AAGCAGTGGTATCAACGCAGAGTACGGGGG-3′),加水至4.75μL混匀。
(2)72℃温育3min后于42℃温育2min,1500g离心10sec。
(3)加入2μL 5×buffer(250Mm Tris-HCl,375mM KCl,30mM MgCl2),1μL的DTT(20mM),1μL dNTP(10mM),0.25μL RNase抑制剂和1μL SMARTerTM反转录酶,42℃温育90min后于70℃变性10min,冷却至室温加入20μL无菌水,获得cDNA。
3获得pal 5′端的序列
(1)往0.25mL的离心管加入1μL cDNA,5μL Mix引物(5′-CTAATACGACTCACTATAGGGCAAGCAGTGGTATCAACGCAGAGT-3′;5′-CTAATACGACTCACTATAGGGC-3′),1μL GSP特异性引物(5′-GGTGATGCCG TGGTTG AGGAAGTT-3′),5μL 10×buffer,5μL dNTP(2mM),0.5μL pfu DNA聚合酶,3μL MgSO4(25mM),加去离子水至50μL。
(2)进行PCR扩增,PCR扩增条件:94℃预变性4min,94℃变性1min,58℃退火30sec,72℃延伸60sec,25个循环,琼脂糖凝胶电泳检测。
(3)往0.25mL的离心管中加入5μL PCR产物,1μL 10×Taq buffer,1μL dATP(2mM),1μL Taq酶(5U/μL)加水至10μL,70℃反应30min后酚仿抽提,乙醇沉淀,无菌操作台风吹15min至酒精挥发完全,用10μL无菌水重悬。
(4)取上一步反应液5μL,加入1μL连接buffer,1μL 50%PEG,1μL pUCm-T载体,1μL T4连接酶,加去离子水至10μL,于16℃过夜连接。
(5)取连接产物10μL,10μL 5×KCM(0.5M KCl,0.15M CaCl2,0.25M MgCl2),去离子水30μL,加至50μL的E.coli JM109感受态中,冰浴30min,42℃热击90sec,冰浴2min,加入100μL的新鲜LB培养基,37℃培养30-60min,取100μL涂布含有氨苄青霉素(50ug/mL)的LB平板,37℃培养10h,挑取单菌落,接入5mL含50ug/mL的氨苄青霉素LB培养基中37℃培养10h,取2mL菌液提质粒进行测序,获得5′端的序列。
4构建克隆载体pUCm-T-pal
(1)根据步骤3获得的5′端序列,设计一对特异性引物(primer F:5′-GGAATTCCATATGATGGCCCCCTCCGTCGACTCGATC-3′;primer R:5′-CGGAATTCCTAGTATGGTCTACGTCCAAAGG-3′),0.25mL的离心管加入1μL cDNA,primer F和R各1μL,5μL 10×buffer,5μL dNTP(2mM),0.5μL pfu DNA聚合酶,加去离子水至50μL。
(2)进行PCR扩增,PCR扩增条件:94℃预变性4min,94℃变性1min,58℃退火30sec,72℃延伸2min,25个循环,琼脂糖凝胶电泳检测。
(3)参照步骤3,将扩增到全长基因序列与pUCm-T连接,转入E.coli JM109,涂布含有氨苄青霉素的LB平板,挑单菌落至LB培养基中37℃培养10h,取2mL菌液提质粒进行测序,获得全长的序列,采用PCR验证构建的pUCm-T-pal,分析阅读框。
附图说明:
图1获取粘红酵母苯丙氨酸脱氨酶基因序列流程图
图2.提取的粘红酵母总RNA琼脂糖凝胶电泳图
图3.PCR扩增获得pal的5′端DNA的琼脂糖凝胶电泳图
图4.PCR扩增获得全长基因的琼脂糖凝胶电泳图
具体实施方式:
材料和检测方法
(1)粘红酵母(Rhodotorula glutinis JN-1)(CCTCC NO:M2011490),江南大学工业生物技术教育部重点实验室筛选。
(2)反转录试剂盒购自美国clontech公司。
(3)pfu酶,Taq酶,和pUCm-T,引物,均购自上海生物工程有限公司。
(4)测序由上海生物工程有限公司完成。
(5)采用Invitrogen软件拼接序列和分析阅读框。
实施例1
挑取粘红酵母单菌落至5mL的种子培养基中于30℃培养24h后,取50μL的种子液至装有50mL培养基的250mL三角瓶中,30℃培养至OD600=1.0,离心收集菌体,采用TES裂解细胞,酸性酚和氯仿提取总RNA,-80℃保藏备用,采用琼脂糖电泳检测总RNA质量。
实施例2
经琼脂糖凝胶电泳检测,提取高质量的RNA,加入反转录酶和反应缓冲液,42℃反应90min,70℃处理10min,加入20μL无菌水,获得cDNA。以5′-CTAATACGACTCACTATAGGGCAAGCAGTGGTATCAACGCAGAG T-3′;5′-CTA ATACGACTCACTA TAGGGC-3′;5′-GGTGATGCCG TGGTTG AGGAAGTT-3′为引物进行PCR扩增,琼脂糖凝胶电泳检测扩增结果,切胶回收目的条带,加入Taq酶,70℃反应30min后酚仿抽提,与pUCm-T连接,连接产物转入E.coli JM109,提质粒进行测序,获得5′端的序列。
实施例3
根据基因的5′端序列,以5′-GGAATTCCATATGATGGCCCCCTCCGTCGACTCGATC-3′和5′-CGGAATTCCTAGTATGGTCTACGTCCAAAGG-3′引物进行PCR扩增,琼脂糖凝胶电泳检测,切胶回收PCR产物。PCR产物中加入Taq酶,70℃反应30min后酚仿抽提,与pUCm-T连接,连接产物转入E.coli JM109,提质粒进行PCR验证,测序,构建pUCm-T-pal,利用Invitrogen软件拼接序列和分析阅读框。
Claims (9)
1.一种粘红酵母苯丙氨酸脱氨酶基因(pal)序列获取方法;
2.权利要求1所述的方法,其特征在于,苯丙氨酸脱氨酶基因(pal)来自粘红酵母(Rhodotorula glutinisJN-1)(保藏编号CCTCC NO:M2011490);
3.按权利要求2所述的方法,其特征在于,采用酸性酚法提取粘红酵母总RNA;
4.按权利要求1所述的方法,其特征在于,采用SMARTerIIA Oligonucleotide(5′-AAGCAGT GGTATCAACGCAGAGTACGGGGG-3′)和CDS引物5’-(T)25VN(N=A,C,G,T;V=A,G,C)-3’进行反转录;
5.如权利要求1所述的方法,其特征在于,采用Mix引物(long primer:5′-CTAATACGACTCACTATAGGGCAAGCAGTGGTATCAACGCAGAGT-3′;Short primer:5′-CTAATACGACTCACTATAG GGC-3′)
和特异性引物GSP(10μM):5′-GGTGATGCCGTGGTTGAG GAAGTT-3′,进行PCR扩增,获取pal的5′端的一段基因序列;
6.如权利要求5所述的方法,其特征在于,PCR扩增条件是:94℃预变性4min,94℃变性1min,58℃退火30sec,72℃延伸2min,25个循环;
7.如权利要求5所述的方法,其特征在于,构建pUCm-T-pal克隆载体,转入E.coliJM109,含有氨苄青霉素(50ug/mL)的LB平板上挑取单菌落培养,提取质粒,测序,获取全长的pal序列;
8.如权利要求2所述的方法,培养粘红酵母的种子培养基为:1%酵母提取物,1%蛋白胨,0.5%氯化钠(pH6.0);诱导产苯丙氨酸脱氨酶培养基为在种子培养中加入0.1%的L-phe;
9.权利要求7所述的方法,用于培养E.coliJM109的LB培养基为:1%胰蛋白胨,0.5%酵母抽提物,1%氯化钠(pH7.0)。
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Cited By (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104131017A (zh) * | 2014-07-28 | 2014-11-05 | 江南大学 | 一种粘红酵母苯丙氨酸脱氨酶基因及其应用 |
CN104152523A (zh) * | 2014-07-28 | 2014-11-19 | 江南大学 | 一种生产高光学纯度d-苯丙氨酸的方法 |
WO2015119251A1 (ja) * | 2014-02-06 | 2015-08-13 | 国立大学法人筑波大学 | 酵素を用いた4-アミノ桂皮酸の製造方法 |
US9920343B2 (en) | 2014-03-20 | 2018-03-20 | Japan Science And Technology Agency | Method for producing aniline derivative by fermentation from carbon source |
WO2019061196A1 (zh) * | 2017-09-28 | 2019-04-04 | 深圳华大生命科学研究院 | 一种用于检测的pcr引物及其应用 |
CN111164210A (zh) * | 2017-09-28 | 2020-05-15 | 深圳华大生命科学研究院 | 一种扩增tcr全长序列的pcr引物及其应用 |
-
2012
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Cited By (10)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2015119251A1 (ja) * | 2014-02-06 | 2015-08-13 | 国立大学法人筑波大学 | 酵素を用いた4-アミノ桂皮酸の製造方法 |
JPWO2015119251A1 (ja) * | 2014-02-06 | 2017-03-30 | 国立研究開発法人科学技術振興機構 | 酵素を用いた4−アミノ桂皮酸の製造方法 |
US10053716B2 (en) | 2014-02-06 | 2018-08-21 | Japan Science And Technology Agency | 4-amino cinnamic acid production method using enzyme |
US9920343B2 (en) | 2014-03-20 | 2018-03-20 | Japan Science And Technology Agency | Method for producing aniline derivative by fermentation from carbon source |
CN104131017A (zh) * | 2014-07-28 | 2014-11-05 | 江南大学 | 一种粘红酵母苯丙氨酸脱氨酶基因及其应用 |
CN104152523A (zh) * | 2014-07-28 | 2014-11-19 | 江南大学 | 一种生产高光学纯度d-苯丙氨酸的方法 |
CN104152523B (zh) * | 2014-07-28 | 2016-09-28 | 江南大学 | 一种生产高光学纯度d-苯丙氨酸的方法 |
WO2019061196A1 (zh) * | 2017-09-28 | 2019-04-04 | 深圳华大生命科学研究院 | 一种用于检测的pcr引物及其应用 |
CN111148836A (zh) * | 2017-09-28 | 2020-05-12 | 深圳华大生命科学研究院 | 一种用于检测的pcr引物及其应用 |
CN111164210A (zh) * | 2017-09-28 | 2020-05-15 | 深圳华大生命科学研究院 | 一种扩增tcr全长序列的pcr引物及其应用 |
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