CN103014101A - 一种干扰素的纯化方法 - Google Patents
一种干扰素的纯化方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN103014101A CN103014101A CN2012105698256A CN201210569825A CN103014101A CN 103014101 A CN103014101 A CN 103014101A CN 2012105698256 A CN2012105698256 A CN 2012105698256A CN 201210569825 A CN201210569825 A CN 201210569825A CN 103014101 A CN103014101 A CN 103014101A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- column chromatography
- balance
- damping fluid
- column
- product
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
本发明涉及一种干扰素的纯化方法,该方法包括以下步骤:a、选用工程菌做菌株进行发酵培养;b、对发酵培养所得菌体进行包涵体的分离和洗涤,得到精制包涵体;c、对精制包涵体进行复性,获得复性产物;d、对复性产物进行阴离子柱层析处理,得到阴离子柱层析产物;e、对阴离子柱层析产物进行阳离子柱层析,得到阳离子柱层析产物;f、采用反相填料柱层析处理上步的阳离子柱层析产物,再经过脱盐处理,得到干扰素。
Description
技术领域:
本发明涉及生物技术领域,特别涉及一种干扰素的纯化方法。本发明在纯化工艺中采用了反相填料的精细分离纯化步骤。同现有技术相比较,可以大幅度的提高干扰素的纯度、比活、稳定性。
背景技术:
干扰素(IFN)是一种广谱抗病毒剂,主要是通过细胞表面受体作用使细胞产生抗病毒蛋白,从而抑制乙肝病毒的复制;同时还可增强自然杀伤细胞(NK细胞)、巨噬细胞和T淋巴细胞的活力,从而起到免疫调节作用,并增强抗病毒能力。干扰素是一组具有多种功能的活性蛋白质(主要是糖蛋白),是一种由单核细胞和淋巴细胞产生的细胞因子。它们在同种细胞上具有广谱的抗病毒、影响细胞生长,以及分化、调节免疫功能等多种生物活性。
干扰素根据抗原特异性和分钟结构的不同,分为α、β、γ等型别,而在一特定的干扰素型别内,再根据氨基酸序列或组成方面的差异,划分出不同的亚型,比如:HuIFN(人干扰素)α1、α2等。而在一特定的干扰素亚型内,根据个别氨基酸的变异,以a、b、c在亚型后面进行标记,比如:HuIFNα-1a, α-2a, α-2b等。
HuIFNα已经可以通过基因重组生物工程技术进行量产。但其纯化工艺经过多年研究始终难以解决其纯度问题,比活下降明显,如现有技术“重组人干扰素_2b的提取和纯化” 微生物学免疫学进展 2004 年第32 卷第 1 期采用离子交换层析柱DEAE sepharose(FF)A柱,柱形XK30/50,以及sephacryl100/50XK层析柱,S-100填料,经过两次层析得到,经过测定,其比活1.2×108IU/mg,蛋白纯度为95%。重组人a2b型干扰素的纯化与鉴定《生物工程学报》1994年 第1期 5 页 61-65页采用单克隆抗体亲和层析一步纯化法对大肠杆菌表达的重组人a2b型干扰素进行了纯化,然后利用凝胶过滤高压液相层析、SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳和N端25个氨基酸的序列测定等方法对纯化产品进行了鉴定。表明一步纯化的重组人a2b达到95%,其比活性为2.54×108IU/mg。
本发明经过对不同纯化工艺的研究,筛选出一种纯化方法,本发明采用的技术方案是在纯化工艺中采用了阴离子柱层析,阳离子柱层析,反相填料柱层析三步分离纯化步骤。包括步骤:a、选用工程菌做菌株进行发酵培养;b、对发酵培养所得菌体进行包涵体的分离和洗涤,得到精制包涵体;c、对精制包涵体进行复性,获得复性产物;d、对复性产物进行阴离子柱层析处理,得到阴离子柱层析产物;e、对阴离子柱层析产物进行阳离子柱层析,得到阳离子柱层析产物;f、对阳离子柱层析产物进行精细分离,采用反相填料柱层析处理,得到重组人干扰素。
同现有技术相比较,采用本专利的反相填料精细分离,rhIFN电泳纯度由90%提高到98%,HPLC纯度由90%提高到98%,其比活由0.9×107IU/mg提高到3.5×108IU/mg。-30℃条件下稳定性由原有的3个月提高到12个月。可见,采用本发明的重组人干扰素的纯化工艺,可以大幅度的提高rhIFN的纯度、比活、稳定性。
发明内容:
本发明提供一种干扰素的纯化方法,该方法包括以下步骤:
a、选用工程菌做菌株进行发酵培养;
b、对发酵培养所得菌体进行包涵体的分离和洗涤,得到精制包涵体;
c、对精制包涵体进行复性,获得复性产物;
d、对复性产物进行阴离子柱层析处理,得到阴离子柱层析产物;
e、对阴离子柱层析产物进行阳离子柱层析,得到阳离子柱层析产物;
f、采用反相填料柱层析处理上步的阳离子柱层析产物,再经过脱盐处理,得到干扰素。
其中,所述干扰素选自:干扰素α-1a, 干扰素α-2a, 干扰素α-2b,优选的是干扰素α-2b。
其中步骤a-c属于现有技术,可以根据现有技术中的方法获得。
本发明所述的步骤d-f属于纯化步骤,属于本发明的技术方案,其中,优选的技术方案如下:
阴离子柱层析(XK50/30层析柱,Q sepharose FF填料)
使用平衡液(20mmol/L PH8.2 Tris-HCl缓冲液),调节泵流速为30.0-49.9ml/min。平衡8-10倍柱床体积。
样品预处理:将复性产物用2mol/L pH8.2 Tris-HCl调其PH值为8.2,然后用注射用水将其体积稀释四倍,即为上样液。
上样:上样时泵流速为8.0-49.9ml/min。上样结束后用平衡液平衡2-4个柱床体积。
洗脱:使用预洗液(20mmol/L pH7.8 NaH2PO4-Na2HPO4缓冲液)进行预洗,调节泵流速为30.0-49.9ml/min,洗脱2-4个柱床体积。然后将进液管换至洗脱液(20mmol/L pH7.8 NaH2PO4-Na2HPO4缓冲液、0.1MNaCL)中,开始目标峰洗脱,收集OD280大于0.3洗脱峰。
阳离子柱层析(XK50/30层析柱,CM Sepharose FF填料)
平衡:使用平衡液(20mmol/L PH4.5 HAc-NaAc缓冲液),调节泵流速为30.0-49.9ml/min,平衡8-10倍柱床体积。
上样:上样液为上步得到的A280大于0.3的洗脱液,调节泵流速为30.0-49.9ml/min,开始上样。上样结束后,换至平衡液中,平衡2-4个柱床体积,至记录笔回至基线。用预脱液(20mmol/L PH4.5HAc-NaAc缓冲液、0.15 MNaCL缓冲液)进行预洗,调节泵流速为30.0-49.9ml/min,至杂质峰洗下为止。换至洗脱液(50mmol/L PH4.5HAc-NaAc缓冲液、0.2 MNaCL缓冲液)进行洗脱目的峰,收集A280大于0.3的洗脱峰。
反相填料层析
采用C18高效液相色谱柱(WTARES PREPLC4000,WTARES C18柱,25mm*100mm*3),流动相A为6%乙腈,0.1%TFA(三氟乙酸),流动相B为30%乙腈,0.1%TFA(三氟乙酸),进行线性梯度洗脱,收集目标峰,采用旋转蒸发或冷冻干燥的方法去除乙腈和TFA,即为纯化的rhIFN,取样检测。
经取样检测,经反相填料层析分离纯化的样品其电泳纯度与HPLC纯度均大于98%,经测定其比活可达到3.5×108IU/mg 。该样品在-30℃条件下放置12个月,该样品电泳纯度和活性均无显著性变化。稳定性可以保证12个月。其他质量控制项目均符合药典要求。采用本发明的的生产工艺,可以大幅度的提高rhIFN的纯度、比活、稳定性。
本发明的工艺方法是经过筛选获得的,筛选过程如下:
层析方式的选择:针对现有技术设计了5种层析方式,用这5种方式对复性溶液进行纯化,然后进行测定,实验结果如下:
经过检测发现,方式5效果最好。
具体实施方式:
以下对本发明予以进一步详尽说明。
实施例1
阴离子柱层析(XK50/30层析柱,Q sepharose FF填料)
使用平衡液(20mmol/L PH8.2 Tris-HCl缓冲液),调节泵流速为30.0-49.9ml/min。平衡8-10倍柱床体积。
样品预处理:将复性产物用2mol/L pH8.2 Tris-HCl调其PH值为8.2,然后用注射用水将其体积稀释四倍,即为上样液。
上样:上样时泵流速为8.0-49.9ml/min。上样结束后用平衡液平衡2-4个柱床体积。
洗脱:使用预洗液(20mmol/L pH7.8 NaH2PO4-Na2HPO4缓冲液)进行预洗,调节泵流速为30.0-49.9ml/min,洗脱2-4个柱床体积。然后将进液管换至洗脱液(20mmol/L pH7.8 NaH2PO4-Na2HPO4缓冲液、0.1MNaCL)中,开始目标峰洗脱,收集OD280大于0.3洗脱峰。
疏水柱层析(INdEX层析柱,Phenyl Sepharose FF填料)
平衡:使用平衡液(20mmol/L PH4.5HAc-NaAc缓冲液、0.8mol/L硫酸铵),调节泵流速为30.0-49.9ml/min。平衡2-4倍柱床体积,至流出液PH值为4.5-5.0结束。
样品预处理:在上步洗脱液中加入硫酸铵,调节硫酸铵终浓度为0.8mol/L,静置半小时以上,即为样品液。
上样:以30.0-49.9ml/min流速上样。上样结束后,用平衡缓冲液平衡1-2倍柱床体积。
洗脱:使用洗脱液(80mmol/L PH4.5HAc-NaAc缓冲液、0.05M NaCl),调节泵流速为30.0-49.9ml/min,开始洗脱,收集A280大于0.3洗脱峰。取样检测。
实施例2
阳离子柱层析(XK50/30层析柱,CM Sepharose FF填料)
平衡:使用平衡液(20mmol/L PH4.5 HAc-NaAc缓冲液),调节泵流速为30.0-49.9ml/min,平衡8-10倍柱床体积。
样品预处理:将复性产物用冰醋酸调其PH值为4.5,然后用注射用水将其体积稀释四倍,即为上样液。
上样:调节泵流速为30.0-49.9ml/min,开始上样。上样结束后,换至平衡液中,平衡2-4个柱床体积,至记录笔回至基线。用预脱液(20mmol/L PH4.5HAc-NaAc缓冲液、0.15 MNaCL缓冲液)进行预洗,调节泵流速为30.0-49.9ml/min,至杂质峰洗下为止。换至洗脱液(50mmol/L PH4.5HAc-NaAc缓冲液、0.2 MNaCL缓冲液)进行洗脱目的峰,收集A280大于0.3的洗脱峰。
疏水柱层析(INdEX层析柱,Phenyl Sepharose FF填料)
平衡:使用平衡液(20mmol/L PH4.5HAc-NaAc缓冲液、0.8mol/L硫酸铵),调节泵流速为30.0-49.9ml/min。平衡2-4倍柱床体积,至流出液PH值为4.5-5.0结束。
样品预处理:在上步洗脱液中加入硫酸铵,调节硫酸铵终浓度为0.8mol/L,静置半小时以上,即为样品液。
上样:以30.0-49.9ml/min流速上样。上样结束后,用平衡缓冲液平衡1-2倍柱床体积。
洗脱:使用洗脱液(80mmol/L PH4.5HAc-NaAc缓冲液、0.05M NaCl),调节泵流速为30.0-49.9ml/min,开始洗脱,收集A280大于0.3洗脱峰。取样检测。
实施例3
阴离子柱层析(XK50/30层析柱,Q sepharose FF填料)
使用平衡液(20mmol/L PH8.2 Tris-HCl缓冲液),调节泵流速为30.0-49.9ml/min。平衡8-10倍柱床体积。
样品预处理:将复性产物用2mol/L pH8.2 Tris-HCl调其PH值为8.2,然后用注射用水将其体积稀释四倍,即为上样液。
上样:上样时泵流速为8.0-49.9ml/min。上样结束后用平衡液平衡2-4个柱床体积。
洗脱:使用预洗液(20mmol/L pH7.8 NaH2PO4-Na2HPO4缓冲液)进行预洗,调节泵流速为30.0-49.9ml/min,洗脱2-4个柱床体积。然后将进液管换至洗脱液(20mmol/L pH7.8 NaH2PO4-Na2HPO4缓冲液、0.1MNaCL)中,开始目标峰洗脱,收集OD280大于0.3洗脱峰。
阳离子柱层析(XK50/30层析柱,CM Sepharose FF填料)
平衡:使用平衡液(20mmol/L PH4.5 HAc-NaAc缓冲液),调节泵流速为30.0-49.9ml/min,平衡8-10倍柱床体积。
上样:上样液为上步得到的A280大于0.3的洗脱液,调节泵流速为30.0-49.9ml/min,开始上样。上样结束后,换至平衡液中,平衡2-4个柱床体积,至记录笔回至基线。用预脱液(20mmol/L PH4.5HAc-NaAc缓冲液、0.15 MNaCL缓冲液)进行预洗,调节泵流速为30.0-49.9ml/min,至杂质峰洗下为止。换至洗脱液(50mmol/L PH4.5HAc-NaAc缓冲液、0.2 MNaCL缓冲液)进行洗脱目的峰,收集A280大于0.3的洗脱峰。
疏水柱层析(INdEX层析柱,Phenyl Sepharose FF填料)
平衡:使用平衡液(20mmol/L PH4.5HAc-NaAc缓冲液、0.8mol/L硫酸铵),调节泵流速为30.0-49.9ml/min。平衡2-4倍柱床体积,至流出液PH值为4.5-5.0结束。
样品预处理:在上步洗脱液中加入硫酸铵,调节硫酸铵终浓度为0.8mol/L,静置半小时以上,即为样品液。
上样:以30.0-49.9ml/min流速上样。上样结束后,用平衡缓冲液平衡1-2倍柱床体积。
洗脱:使用洗脱液(80mmol/L PH4.5HAc-NaAc缓冲液、0.05M NaCl),调节泵流速为30.0-49.9ml/min,开始洗脱,收集A280大于0.3洗脱峰。取样检测。
实施例4
阴离子柱层析(XK50/30层析柱,Q sepharose FF填料)
使用平衡液(20mmol/L PH8.2 Tris-HCl缓冲液),调节泵流速为30.0-49.9ml/min。平衡8-10倍柱床体积。
样品预处理:将复性产物用2mol/L pH8.2 Tris-HCl调其PH值为8.2,然后用注射用水将其体积稀释四倍,即为上样液。
上样:上样时泵流速为8.0-49.9ml/min。上样结束后用平衡液平衡2-4个柱床体积。
洗脱:使用预洗液(20mmol/L pH7.8 NaH2PO4-Na2HPO4缓冲液)进行预洗,调节泵流速为30.0-49.9ml/min,洗脱2-4个柱床体积。然后将进液管换至洗脱液(20mmol/L pH7.8 NaH2PO4-Na2HPO4缓冲液、0.1MNaCL)中,开始目标峰洗脱,收集OD280大于0.3洗脱峰。
反相填料层析
采用半制备型MKF-RP--M-255020250x5020102-13柱。配制洗脱液A为含50mmolNaCl和20mmol Tris-HCl 缓冲液(pH 8),洗脱液B为含50mmolNaCl溶液20mmol Tris-HCl 60%乙腈(pH 8)。先用洗脱液A洗脱,再用梯度洗脱15%-90%洗脱液B洗脱,10-55分钟收集样品峰。被收集的样品经低温蒸发,除去有机物质,然后透析浓缩,取样检测。
实施例5
阴离子柱层析(XK50/30层析柱,Q sepharose FF填料)
使用平衡液(20mmol/L PH8.2 Tris-HCl缓冲液),调节泵流速为30.0-49.9ml/min。平衡8-10倍柱床体积。
样品预处理:将复性产物用2mol/L pH8.2 Tris-HCl调其PH值为8.2,然后用注射用水将其体积稀释四倍,即为上样液。
上样:上样时泵流速为8.0-49.9ml/min。上样结束后用平衡液平衡2-4个柱床体积。
洗脱:使用预洗液(20mmol/L pH7.8 NaH2PO4-Na2HPO4缓冲液)进行预洗,调节泵流速为30.0-49.9ml/min,洗脱2-4个柱床体积。然后将进液管换至洗脱液(20mmol/L pH7.8 NaH2PO4-Na2HPO4缓冲液、0.1MNaCL)中,开始目标峰洗脱,收集OD280大于0.3洗脱峰。
阳离子柱层析(XK50/30层析柱,CM Sepharose FF填料)
平衡:使用平衡液(20mmol/L PH4.5 HAc-NaAc缓冲液),调节泵流速为30.0-49.9ml/min,平衡8-10倍柱床体积。
上样:上样液为上步得到的A280大于0.3的洗脱液,调节泵流速为30.0-49.9ml/min,开始上样。上样结束后,换至平衡液中,平衡2-4个柱床体积,至记录笔回至基线。用预脱液(20mmol/L PH4.5HAc-NaAc缓冲液、0.15 MNaCL缓冲液)进行预洗,调节泵流速为30.0-49.9ml/min,至杂质峰洗下为止。换至洗脱液(50mmol/L PH4.5HAc-NaAc缓冲液、0.2 MNaCL缓冲液)进行洗脱目的峰,收集A280大于0.3的洗脱峰。
反相填料层析
采用C18高效液相色谱柱(WTARES PREPLC4000,WTARES C18柱,25mm*100mm*3),流动相A为6%乙腈,0.1%TFA(三氟乙酸),流动相B为30%乙腈,0.1%TFA(三氟乙酸),进行线性梯度洗脱,收集目标峰,采用旋转蒸发或冷冻干燥的方法去除乙腈和TFA,即为纯化的rhIFN,取样检测。
经取样检测,其电泳纯度与HPLC纯度均大于98%以上,经测定其比活可达到3.0×108IU/mg 。该样品在-30℃条件下放置12个月,该样品电泳纯度和比活均无显著性变化,其稳定性可以保证12个月。其他质量控制项目均符合药典要求。
Claims (6)
1.一种干扰素的纯化方法,该方法包括以下步骤:
a、选用工程菌做菌株进行发酵培养;
b、对发酵培养所得菌体进行包涵体的分离和洗涤,得到精制包涵体;
c、对精制包涵体进行复性,获得复性产物;
d、对复性产物进行阴离子柱层析处理,得到阴离子柱层析产物;
e、对阴离子柱层析产物进行阳离子柱层析,得到阳离子柱层析产物;
f、采用反相填料柱层析处理上步的阳离子柱层析产物,再经过脱盐处理,得到干扰素。
2.根据权利要求1的纯化方法,其中,所述干扰素选自:干扰素α-1a,干扰素α-2a, 干扰素α-2b。
3.根据权利要求1的纯化方法,其中,所述干扰素是干扰素α-2b。
4.根据权利要求1的纯化方法,其中,所述对复性产物进行阴离子柱层析处理方法如下:
阴离子柱层析(XK50/30层析柱,Q sepharose FF填料)
使用平衡液(20mmol/L PH8.2 Tris-HCl缓冲液),调节泵流速为30.0-49.9ml/min,平衡8-10倍柱床体积,
样品预处理:将复性产物用2mol/L pH8.2 Tris-HCl调其PH值为8.2,然后用注射用水将其体积稀释四倍,即为上样液,
上样:上样时泵流速为8.0-49.9ml/min,上样结束后用平衡液平衡2-4个柱床体积,
洗脱:使用预洗液(20mmol/L pH7.8 NaH2PO4-Na2HPO4缓冲液)进行预洗,调节泵流速为30.0-49.9ml/min,洗脱2-4个柱床体积,然后将进液管换至洗脱液(20mmol/L pH7.8 NaH2PO4-Na2HPO4缓冲液、0.1MNaCL)中,开始目标峰洗脱,收集OD280大于0.3洗脱峰。
5.根据权利要求1的纯化方法,其中,所述对阴离子柱层析产物进行阳离子柱层析,方法如下:
阳离子柱层析(XK50/30层析柱,CM Sepharose FF填料)
平衡:使用平衡液(20mmol/L PH4.5 HAc-NaAc缓冲液),调节泵流速为30.0-49.9ml/min,平衡8-10倍柱床体积,
上样:上样液为上步得到的A280大于0.3的洗脱液,调节泵流速为30.0-49.9ml/min,开始上样,上样结束后,换至平衡液中,平衡2-4个柱床体积,至记录笔回至基线,用预脱液(20mmol/L PH4.5HAc-NaAc缓冲液、0.15 MNaCL缓冲液)进行预洗,调节泵流速为30.0-49.9ml/min,至杂质峰洗下为止,换至洗脱液(50mmol/L PH4.5HAc-NaAc缓冲液、0.2 MNaCL缓冲液)进行洗脱目的峰,收集A280大于0.3的洗脱峰。
6.根据权利要求1的纯化方法,其中,所述采用反相填料柱层析处理上步的阳离子柱层析产物,方法如下:
反相填料层析
采用C18高效液相色谱柱(WTARES PREPLC4000,WTARESC18柱,25mm*100mm*3),流动相A为6%乙腈,0.1%TFA(三氟乙酸),流动相B为30%乙腈,0.1%TFA(三氟乙酸),进行线性梯度洗脱,收集目标峰,采用旋转蒸发或冷冻干燥的方法去除乙腈和TFA,即为纯化的rhIFN。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201210569825.6A CN103014101B (zh) | 2012-12-25 | 2012-12-25 | 一种干扰素的纯化方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201210569825.6A CN103014101B (zh) | 2012-12-25 | 2012-12-25 | 一种干扰素的纯化方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN103014101A true CN103014101A (zh) | 2013-04-03 |
CN103014101B CN103014101B (zh) | 2014-05-07 |
Family
ID=47963216
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201210569825.6A Active CN103014101B (zh) | 2012-12-25 | 2012-12-25 | 一种干扰素的纯化方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN103014101B (zh) |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102925519A (zh) * | 2012-11-14 | 2013-02-13 | 广东药学院 | 一种重组肝靶向干扰素的制备工艺 |
CN103965346A (zh) * | 2013-10-29 | 2014-08-06 | 王明丽 | 一种rPoIFNα1的分离纯化方法 |
CN112625115A (zh) * | 2020-12-25 | 2021-04-09 | 山东晶辉生物技术有限公司 | 一种纯化重组人干扰素-κ的方法和试剂盒 |
CN114573679A (zh) * | 2022-03-29 | 2022-06-03 | 深圳科兴药业有限公司 | 分离重组人干扰素α1b异构体的纯化方法 |
CN116120424A (zh) * | 2022-06-06 | 2023-05-16 | 江苏靶标生物医药研究所有限公司 | 一种干扰素α2b可溶性重组表达和分离纯化方法及其应用 |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101659690A (zh) * | 2008-08-27 | 2010-03-03 | 哈药集团生物工程有限公司 | 一种纯化干扰素蛋白的方法 |
-
2012
- 2012-12-25 CN CN201210569825.6A patent/CN103014101B/zh active Active
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101659690A (zh) * | 2008-08-27 | 2010-03-03 | 哈药集团生物工程有限公司 | 一种纯化干扰素蛋白的方法 |
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
《中国优秀硕士学位论文全文数据库 基础科学辑》 20091012 王秀 干扰素alpha-2b的突变体分子获得及性能分析 正文第21页第2段至第24页第3段 1-6 , * |
《中国生物制品学杂志》 20050731 尹红志等 不同层析方法纯化重组人干扰素alpha2a的效果比较 全文 1-6 第18卷, 第4期 * |
尹红志等: "不同层析方法纯化重组人干扰素α2a的效果比较", 《中国生物制品学杂志》, vol. 18, no. 4, 31 July 2005 (2005-07-31) * |
王秀: "干扰素α-2b的突变体分子获得及性能分析", 《中国优秀硕士学位论文全文数据库 基础科学辑》, 12 October 2009 (2009-10-12) * |
Cited By (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102925519A (zh) * | 2012-11-14 | 2013-02-13 | 广东药学院 | 一种重组肝靶向干扰素的制备工艺 |
CN102925519B (zh) * | 2012-11-14 | 2014-04-16 | 广东药学院 | 一种重组肝靶向干扰素的制备工艺 |
CN103965346A (zh) * | 2013-10-29 | 2014-08-06 | 王明丽 | 一种rPoIFNα1的分离纯化方法 |
CN112625115A (zh) * | 2020-12-25 | 2021-04-09 | 山东晶辉生物技术有限公司 | 一种纯化重组人干扰素-κ的方法和试剂盒 |
CN112625115B (zh) * | 2020-12-25 | 2022-09-06 | 山东睿鹰制药集团有限公司 | 一种纯化重组人干扰素-κ的方法和试剂盒 |
CN114573679A (zh) * | 2022-03-29 | 2022-06-03 | 深圳科兴药业有限公司 | 分离重组人干扰素α1b异构体的纯化方法 |
CN116120424A (zh) * | 2022-06-06 | 2023-05-16 | 江苏靶标生物医药研究所有限公司 | 一种干扰素α2b可溶性重组表达和分离纯化方法及其应用 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN103014101B (zh) | 2014-05-07 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN103014101B (zh) | 一种干扰素的纯化方法 | |
KR830002616B1 (ko) | 단백질의 정제방법 | |
CN102839165A (zh) | 基因突变型重组蛋白酶k及其工业化生产方法 | |
US10316052B2 (en) | Fidaxomicin purification method | |
CN109879930B (zh) | 一种重组蛋白的纯化方法 | |
CN101514229B (zh) | 人干扰素α衍生物及其聚乙二醇化修饰物 | |
CN101885767B (zh) | 一种取代单克隆抗体亲和层析的分离纯化重组人干扰素α1b的方法 | |
CN1304422C (zh) | 非酰胺化ω-芋螺毒素M ⅦA 及其制备方法和应用 | |
CN107188952A (zh) | 一种重组人粒细胞集落刺激因子的纯化方法 | |
CN1746306B (zh) | 一种重组人干扰素α4编码cDNA序列及其制备方法和应用 | |
CN105254746A (zh) | 一种胸腺肽α1脱盐的方法 | |
CN100489098C (zh) | 鹅B淋巴细胞刺激因子cDNA及其克隆方法和重组应用 | |
CN111057138A (zh) | 一种从基因工程水稻种子中分离纯化重组人生长激素的方法 | |
CN104447977A (zh) | 一种重组人骨形态发生蛋白-2的纯化生产方法 | |
CN101830977B (zh) | 一种重组人粒细胞刺激因子的纯化方法 | |
CN101139388A (zh) | 抗肿瘤药物TAT(m)-Survivin(T34A)的纯化复性方法 | |
Köck et al. | Purification of human interleukin 1 by high-performance liquid chromatography | |
CN1902224A (zh) | 纯化β-干扰素的方法 | |
CN101974084B (zh) | 一种重组人干扰素α2b的发酵后处理工艺 | |
CN104311656B (zh) | cFGF‑21蛋白及其在治疗类风湿关节炎中的应用 | |
EP0315950A2 (en) | Method of incubating cells expressing a recombinant protein | |
CN102140128B (zh) | 一种重组人干扰素β1a的分离纯化方法 | |
CN100343278C (zh) | 胸腺五肽纯化工艺方法 | |
CN103173478B (zh) | 一种携带ptd的抗人cd3单链抗体的制备方法 | |
CN1259336C (zh) | 一种复合干扰素的纯化方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant |