CN102961742A - 猪圆环病毒2型与猪细小病毒二联灭活疫苗及其制备方法 - Google Patents
猪圆环病毒2型与猪细小病毒二联灭活疫苗及其制备方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN102961742A CN102961742A CN2012100108093A CN201210010809A CN102961742A CN 102961742 A CN102961742 A CN 102961742A CN 2012100108093 A CN2012100108093 A CN 2012100108093A CN 201210010809 A CN201210010809 A CN 201210010809A CN 102961742 A CN102961742 A CN 102961742A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- ppv
- deactivation
- vaccine
- inactivated vaccine
- pcv2
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Images
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
本发明涉及预防和治疗猪传染病的多价疫苗,特别涉及治疗和预防猪圆环病毒2型和猪细小病毒的组合疫苗及其制备方法。本发明选用猪圆环病毒2型和猪细小病毒,制备方法如下:培养猪圆环病毒2型,并灭活、浓缩;培养猪细小病毒,并灭活、浓缩;将上述2种抗原成分按比例混合,辅以佐剂制备成疫苗。本发明制备获得的二联疫苗使用方便,更为安全,而且免疫效果优于单独两种单苗联用。
Description
技术领域
本发明涉及一种猪圆环病毒2型与猪细小病毒二联灭活疫苗及其制备方法,属于兽用疫苗领域。
背景技术
猪圆环病毒(Porcine circovirus,PCV)是迄今发现的一种最小的动物病毒。现已知PCV有两个血清型,即PCV1和PCV2。PCV1为非致病性的病毒,而PCV2为致病性的病毒,PCV2除导致仔猪多系统衰竭综合征(Postweaning Multisystemic Wasting Syndrome,PMWS)外,还能导致母猪的繁殖障碍,给养猪业造成严重的经济损失。
猪细小病毒(Porcine parvovirus,PPV)是引起猪繁殖障碍的主要病原之一。PPV感染主要引起胚胎和胎儿死亡、母猪流产、产死胎和木乃伊胎等,此外PPV还与猪非化脓性心肌炎、皮炎、肠炎及病毒血症等有关。近年来研究发现,PPV和PCV2混合感染时具有协同作用,导致仔猪出现明显的PMWS,使病情加重,损失更为严重。PPV在世界各地广泛存在,给养猪业造成巨大的经济损失。
对于PCV2和PPV引起病症的预防,主要依赖于疫苗免疫。目前,仅有PCV2和PPV的单价疫苗,需要单独分别注射,免疫工作量大,成本很高。此外,由于二种病毒引起的疾病常常同时发生,因此一直以来需要PCV2和PPV的二联疫苗,以同时预防和治疗PCV2和PPV引起的PMWS综合症。然而,目前仅有文献报道分二次使用注射仔猪,因此提示PCV2抗原与PPV抗原同时注射时可能会相互干扰。因此,PCV2和PPV的二联疫苗也一直没能研制成功。此外,国内养殖场中PPV也有一定程度的变异,变异的PPV与PCV2共同作用使得母猪繁殖障碍与仔猪的PWMS综合症更难以控制,因此,现实中还迫切需要一次注射可以同时预防和治疗母猪、特别是怀胎母猪的繁殖障碍及仔猪的PWMS综合症的猪圆环病毒2型与猪细小病毒二联疫苗。
发明内容
有鉴于此,本发明的主要目的在于提供一种猪圆环病毒2型与猪细小病毒二联疫苗,以实现同时预防和治疗母猪与仔猪由PCV2、PPV引起的繁殖障碍和PMWS综合症等疾病。
技术方案
一种治疗或预防PMWS综合症的PCV2、PPV的二联灭活疫苗,含有灭活的PCV2抗原、灭活的PPV抗原和疫苗佐剂。
优选地,本发明所述PCV2为PCV2SH株,保藏号为CGMCCNo.23890。
优选地,本发明所述PCV2含量至少为灭活前106.0TCID50/头份;更优选地,所述PCV2含量至少为灭活前106.5TCID50/头份。
优选地,本发明所述PPV为猪细小病毒病毒(Porcine parvovirus)PPV HN-2011株,保藏号为CCTCC No.V201118于2011年6月9日保藏在中国武汉市武汉大学的中国典型培养物保藏中心(简称CCTCC)。
优选地,本发明所述PPV含量至少为灭活前107.0TCID50/头份。
优选地,本发明所述疫苗佐剂为ISA206、氢氧化铝胶、矿物油、卡波姆、Gel 01、蜂胶、ISA760VG的一种或几种组合物;更优选地,为ISA206。
优选地,本发明二联灭活疫苗为含有灭活的PCV2 SH株,含量为灭活前106.0TCID50/头份,灭活的PPV HN-2011株,含量为灭活前107.0TCID50/头份,以及50%V/V ISA206佐剂。
更优选地,本发明二联灭活疫苗为含有灭活的PCV2SH株,含量为灭活前106.5TCID50/头份,灭活的PPV HN-2011株,含量为灭活前107.0TCID50/头份,以及50%V/V ISA206佐剂。
本发明的另一目的在于提供上述二联灭活疫苗的制备方法,包括以下步骤:分别培养PCV2和PPV,获得PCV2的病毒液和PPV的病毒液,灭活上述二种病毒液获得的二种抗原(灭活的病毒液),辅以佐剂制备成二联灭活疫苗。
优选地,本发明所述制备方法中,灭活方法为甲醛灭活法;更优地,本发明的甲醛溶液(以40%体积的含量计),浓度为0.1%~0.3%(V/V),灭活时间为24~48h。
优选地,本发明的二联疫苗的制备方法,所述浓缩方法为超滤法,更优选地,为浓缩2倍。
优选地,本发明所述制备方法中,两种抗原的混合比例为等量体积混合。
即通过上述浓缩比例和混合比例,可以使制备的二联灭活疫苗中应至少含有灭活前的PCV2106.0TCID50/头份和灭活前的PPV107.0TCID50/头份。更优选地,每头份疫苗中应至少含有灭活前的PCV2106.5TCID50/头份和灭活前的PPV为107.0TCID50/头份。
技术效果
本发明预防猪圆环病毒2型与猪细小病毒二联灭活疫苗,制备方法简单,疫苗的效价含量高,免疫方便快捷,与现有技术中的分次免疫,至少需要打2针才能防治以上二种疾病的疫苗及其免疫方法相比,降低了免疫成本,节约了免疫程序,更加经济可靠。
其次,申请人通过二联疫苗与单价疫苗免疫仔猪的效力比较发现,两种抗原成分在同一针二联疫苗中不仅相互没有干扰,而且二联疫苗单次注射仔猪的免疫效果高于两种单苗先后注射的免疫效果。此外,本发明的二联疫苗安全性更佳,避免了多次接种免疫出现的不良反应。
最后,申请人通过二联疫苗与单价疫苗免疫母猪的效果比较发现,本发明的二联疫苗对于治疗或预防母猪繁殖障碍效果更好,经济效益明显增加。
即本发明的PCV2、PPV的二联灭活疫苗,具有以下有益效果:1)二联灭活疫苗免疫仔猪后,副反应降低,安全性更佳,避免了多次接种免疫出现的不良反应;2)二联灭活疫苗免疫母猪后,明显的降低了母猪的繁殖障碍;3)二联灭活疫苗免疫母猪后,通过母源抗体,仔猪获得被动免疫,明显降低了仔猪的死亡率,提高了存活率,增加了经济效益;4)二联灭活疫苗免疫仔猪和母猪,与现有技术中的分次免疫,至少需要打2针才能防治以上二种疾病的疫苗及其免疫方法相比,降低了免疫成本,节约了免疫程序,更加经济可靠。
附图说明
图1为PCV2、PPV的二联灭活疫苗制备工艺流程图。
毒株来源
PPVHN-2011株:
分类命名:猪细小病毒病毒(Porcine parvovirus)
保藏日期:2011年6月9日,
保藏地址:中国武汉,武汉大学,中国典型培养物保藏中心,
保藏单位:中国典型培养物保藏中心(简称CCTCC),
保藏编号:CCTCC NO:V201118。
具体实施方式
本发明实施例中所用的PCV2病毒为PCV2SH株,公开于中国专利文献CN101240264A,保藏号为CGMCC No.23890。
本发明实施例中所用的PPV为PPVHN-2011株,保藏编号为CCTCC NO:V201118。PPV HN-2011株为采集母猪死胎的肝、肠系膜淋巴结、肾、脑等组织,为一种特异性强、免疫性好的病毒株,主要特征如下:
理化特性检测:将病毒液经56℃30min灭活,乙醚、盐酸、氢氧化钠以及常用消毒剂处理后,接种单层ST细胞,观察CPE。结果表明,病毒对热抵抗力强,对脂溶剂、酸、碱以及常用消毒剂不敏感。
病毒的电镜观察:病毒经ST细胞培养72h后,将病变细胞上清经蔗糖梯度超速离心(40,000rpm),纯化病毒颗粒经2%磷钨酸负染后,进行电镜观察。结果显示,病毒外观呈六角形或圆形,无囊膜,直径约为20nm。
间接免疫荧光法检测:取分离的毒株接种ST细胞,在5%CO2、37℃条件下培养48h,经丙酮固定后,进行间接免疫荧光检测。结果显示,病毒液感染的ST细胞出现了特异性荧光,阴性对照无特异性荧光出现。
特异性血清中和试验:将病毒液和PPV特异性血清(南京农业大学提供)中和后,接种ST细胞,在5%CO2、37℃条件下培养72h,收获细胞培养液,经2次反复冻融,收集培养液。连续传代3次,观察CPE。结果显示,病毒液通过PPV特异性血清中和后,无细胞病变。
病毒的PCR基因扩增和序列测定:参考行业标准“PPV聚合酶链反应操作规程”(编号SN/T 1874-2007)进行基因序列分析,方法包括设计引物、PCR、电泳、连接、转化、单克隆鉴定、测序、序列比对。结果显示,PCR扩增出了特异性条带,大小为445bp,与预期一致;进一步的序列测定和分析证实,该毒株与目前我国PPV流行毒株的序列同源性在98%以上,为目前猪群流行PPV毒株。
病毒血凝活性检测:取96孔微量反应板(U型),用pH 7.2的PBS将病毒培养液做2倍连续稀释,加入反应板,并设PBS阴性对照和PPV抗原阳性对照,再加入0.6%豚鼠红细胞悬液,置室温1h。结果显示,病毒培养液能凝集豚鼠红细胞,具有较高的血凝活性,而且随着传代培养次数的增加,病毒对细胞的适应性增强,病毒血凝价可达到210以上。
病毒的毒力鉴定:将病毒稀释至106.0TCID50/ml,滴鼻接种怀孕45天左右的初产母猪5头,每头4ml,跟踪观察母猪的产仔情况。结果显示,病毒接种怀孕母猪,可发生繁殖障碍,出现死胎、产弱仔等情况。
通过本发明实施例所证明,上述PCV2病毒株与PPV HN-2011株,可以相互配合,在灭活二联疫苗中并无相互干扰现象;此外,申请人还发现制备获得灭活二联疫苗可以有效预防或治疗母猪的繁殖障碍,扩展了二联疫苗的应用。
下面结合具体实施例来进一步描述本发明,本发明的优点和特点将会随着描述更为清楚。但这些实施例仅是范例性的,并不对本发明的范围构成任何限制。本领域技术人员应该理解的是,在不偏离本发明的精神和范围下可以对本发明技术方案的细节和形式进行修改或替换,但这些修改和替换均落入本发明的保护范围内。
实施例1PCV2、PPV的二联灭活疫苗的制备和检验
1.1生产用毒种的制备
PCV2SH株的制备:将毒种用病毒稀释液(无血清的MEM培养基)作适当稀释,按感染复数(M.O.I.)为0.01接种于PK-15细胞(CCTCC,编号GDC0060)培养,37℃吸附30min,加入含4%(v/v)犊牛血清和2mmol/L的D-氨基葡萄糖盐酸的MEM细胞维持液,37℃培养4日,冻融2~3次,收获病毒,病毒效价≥106.5TCID50/ml。
PPV HN-2011株的制备:将毒种用病毒稀释液(无血清的α-MEM培养基)作适当稀释,按感染复数(M.O.I.)为0.01接种于ST细胞(CCTCC,编号GDC0007)培养,37℃吸附30min,加入含1%(v/v)犊牛血清和2mmol/L的D-氨基葡萄糖盐酸的MEM细胞维持液,37℃培养4日,冻融2~3次,收获病毒,病毒效价≥107.0TCID50/ml。
1.2病毒液的培养制备
PCV2SH株病毒液的制备:用转瓶细胞培养法。将长满单层的PK-15细胞,倒去细胞培养液,将毒种液按M.O.I.=0.01的接种量接种于PK-15细胞上,轻轻旋转细胞瓶2周,37℃吸附30min,加入细胞维持液,置37℃旋转(10~12转/小时)培养。每日观察1~2次,细胞生长良好,37℃培养4日收获细胞和细胞液,冻融3次,置-20℃以下保存,应不超过2个月。
PPV HN-2011株病毒液的制备:用转瓶细胞培养法。将长满单层的ST细胞,倒去细胞培养液,将毒种液按M.O.I.=0.01的接种量接种于ST细胞上,轻轻旋转细胞瓶2周,37℃吸附30min,加入细胞维持液,置37℃旋转(10~12转/小时)培养。每日观察1~2次,细胞生长良好,37℃培养4日收获细胞和细胞液,冻融3次,置-20℃以下保存,应不超过2个月。
1.3病毒液的处理
PCV2SH株病毒液的处理:将病毒液用中空纤维滤柱(孔径10μm与0.45μm)过滤,除去细胞碎片。
PPV HN-2011株病毒液的处理:将病毒液用中空纤维滤柱(孔径10μm与0.45μm)过滤,除去细胞碎片。
1.4病毒液的灭活
PCV2SH株病毒液的灭活:将检验合格的步骤3处理的病毒液加入甲醛溶液灭活,使甲醛溶液的终浓度为0.2%(V/V),随即充分摇匀升温,当温度升至37℃时开始计时,保持18小时灭活完毕,置2~8℃保存,应不超过1个月。
PPV HN-2011株病毒液的灭活:将检验合格的步骤3处理的病毒液加入甲醛溶液灭活,使甲醛溶液的终浓度为0.1%(V/V),随即充分摇匀升温,当温度升至37℃时开始计时,保持24小时灭活完毕,置2~8℃保存,应不超过1个月。
1.5含量测定
1.5.1PCV2SH株病毒含量测定
将病毒液用MEM维持液做10倍系列稀释,取10-5、10-6、10-73个稀释度,每个稀释度分别接种96孔培养板PK-15细胞单层4孔,每孔0.1ml,同时设正常细胞对照,在37℃、5%CO2的温箱中继续培养24小时,换含2mmol/L的D-氨基葡萄糖盐酸的MEM维持液,继续培养24小时;用冷丙酮固定细胞,用间接免疫荧光试验(IFA)测定每个稀释度含有PCV2阳性细胞(呈绿色)的孔数,根据Karber氏法计算病毒TCID50。每ml病毒含量≥106.5TCID50。
1.5.2PPV HN-2011株病毒含量测定
将收获的病毒液做10倍系列稀释,取10-5、10-6、10-7、10-8、10-95个稀释度,分别接种ST细胞单层的96孔细胞培养板上,每个稀释度做4孔,每孔100μl。同时设正常细胞对照,置37℃、5%CO2培养箱中培养5日,观察细胞病变(CPE),根据Karber氏法计算病毒TCID50。病毒含量≥107.0TCID50/ml。
1.5.3抗原含量测定结果
按上述的方法生产了3批(批号为试Z001、试Z002、试Z003)PCV2SH株和PPV HN-2011株病毒抗原,抗原的含量见表1,PCV2SH病毒株灭活前的病毒液含量均在106.5TCID50/ml以上,PPV HN-2011株灭活前的病毒液含量均在107.0TCID50/ml以上。
表1抗原含量测定(滴度)
1.6灭活效果测定
1.6.1PCV2SH株病毒液的灭活检验
取少量灭活病毒液接种已长成单层的PK-15细胞,37℃吸附1小时后弃病毒液,加入新的细胞维持液,37℃培养2日,应无CPE,连续盲传3次,长成细胞单层后换成细胞维持液,37℃培养2日,用IFA法检测,应无绿色PCV2阳性细胞产生。
1.6.2PPV HN-2011株病毒液的灭活检验
取少量灭活病毒液接种已长成单层的ST细胞,37℃吸附1小时后弃病毒液,加入新的细胞维持液,37℃培养2日,连续盲传3次,应无CPE。
1.6.3灭活结果
3批(批号为试Z001、试Z002、试Z003))PCV2SH株和PPVHN-2011株病毒抗原的灭活检验结果见表2,表明病毒完全灭活。
表23批抗原的灭活检验效果
1.7浓缩
将PCV2SH株和PPV HN-2011株病毒液分别用密理博(Millipore公司)膜包(分子截留量为300Kda道尔顿)作2倍浓缩。
1.8配苗
将浓缩后的2种抗原液按1∶1(V/V)混合,然后混合液与ISA206佐剂(法国赛比克SEPPIC公司生产)按1∶1(V/V)混合,以300转/分钟搅拌30min即可。
本发明实施例1中上述制备二联疫苗的方法可参照图1。
1.9性状检验
疫苗应灰白色混悬液,长时间静置底部有少量沉淀,振荡后呈均匀混悬液。性状检验结果见表4。将上述制备的3批(批号为试Z001、试Z002、试Z003)PCV2SH株和PPV HN-2011株病毒抗原经浓缩、配苗后制备成PCV2、PPV二联灭活疫苗,批号仍编码为试Z001、试Z002和试Z003。性状检验结果符合要求。
1.10无菌检验
按《中华人民共和国兽药典》(2005年版)附录169~171页进行,疫苗应无菌生长。无菌检验结果见表3,结果表明3批疫苗(批号为试Z001、试Z002、试Z003)无菌生长,疫苗成品合格。
表33批二联灭活疫苗的性状及无菌检验结果
1.11安全检验
用28~35日龄PCV2抗体及PPV抗体均为阴性仔猪5头,各颈部肌肉注射二联灭活疫苗4ml,观察14日,注苗局部无严重反应,且全部健活为合格。结果见表4,结果表明3批疫苗均合格,注射部位、全身、脏器均未见异常。
表43批二联灭活疫苗的安全检验
1.12效力检验
1.12.1PCV2效力检验
用14~21日龄健康易感仔猪15头,分成3组,每组5头,第1组每头颈部肌肉注射疫苗2ml,两周后按相同途径和剂量进行第2次接种,第2组作非免疫攻毒对照,第3组作空白对照(非免疫、非攻毒),均隔离饲养观察。首免后5周对所有猪称重,第1、2组各用PCV2SH株(含106.5TCID50/ml)滴鼻1ml、肌肉注射2ml,隔离饲养。攻毒第4、7日,分别在每头猪的两侧腋下及两侧臀部共4个点对所有猪接种用弗氏不完全佐剂乳化的钥匙孔血蓝蛋白(KLH/ICFA,0.5mg/ml),每个点接种1ml(4ml/头),同时腹腔接种巯基乙酸培养基,10ml/头;攻毒后第11、19日再次腹腔接种巯基乙酸培养基,10ml/头。攻毒后连续观察25日,于第25日称重后扑杀,剖检。根据体温、相对日增重和病毒抗原检测结果进行判定。攻毒对照组应至少4头发病,免疫组应至少4头保护。
1.12.2PPV效力检验
用10~20kg猪细小病毒HI抗体均为阴性(HI抗体效价均≤1∶8)仔猪5头,各深部肌肉注射2ml(1头份)。28日后,连同对照猪3头,采血,测定抗体,对照猪应为阴性,免疫猪应至少4头出现抗体反应,HI抗体效价应≥1∶64。
1.12.3效力检验结果
3批疫苗,批号为试Z001、试Z002、试Z003,分别经过效力检验,结果3批二联灭活疫苗均对PCV2SH株免疫攻毒保护,免疫仔猪后PPV的HI抗体均大于1∶64,表明3批二联灭活疫苗均表现良好的免疫效果,结果见表5。
表53批二联灭活疫苗的效力检验结果
实施例2PCV2、PPV二联灭活疫苗与单独使用两种疫苗(PPV灭活疫苗和PCV2灭活疫苗)免疫仔猪的免疫效果比较
1.材料
PCV2、PPV二联灭活疫苗,选用实施例1中的实验室制品(批号为试Z001);PCV2灭活疫苗(SH株),普莱柯生物工程股份有限公司生产(批号为100903),病毒含量至少为灭活前106.5TCID50/ml;PPV病灭活疫苗,武汉中博生物股份有限公司(批号为101001),病毒含量至少为灭活前107.5TCID50/ml。
2.动物试验设计
选21~28日龄断奶仔猪80头,分为4组,每组20头;第1组每头猪分别颈部肌肉注射PCV2、PPV二联灭活疫苗(批号001)2ml,免疫后14d再次接种2ml;第2组每头猪分别左侧颈部肌肉注射PPV病灭活疫苗2ml,右侧颈部肌肉注射PCV2灭活疫苗(SH株)2ml,免疫后14d再次接种各2ml;第3、4组不接种。在首次免疫后28,采集各组仔猪血清,测定猪细小病毒的HI抗体效价。在首次免疫后35d,第1、2、3组各用PCV2SH株(含106.5TCID50/ml)滴鼻1ml、肌肉注射2ml,第4组不攻毒,攻毒后第4、7日,分别在第1、2、3组每头猪的两侧腋下及两侧臀部共4个点对所有猪接种用弗氏不完全佐剂乳化的钥匙孔血蓝蛋白(KLH/ICFA,0.5mg/ml),每个点接种1ml(4ml/头),同时腹腔接种巯基乙酸培养基,10ml/头;攻毒后第11、19日再次腹腔接种巯基乙酸培养基,10ml/头。攻毒后连续观察25日,于攻毒后第25日称重后扑杀,剖检。根据体温、相对日增重和病毒抗原检测结果进行判定。
3.试验结果
试验结果如表6,二联苗和猪圆环病毒灭活单苗对PCV2SH株的攻毒保护均为20/20(100%),二联苗和PPV病单苗的猪细小病毒HI抗体效力检测结果表明,二联苗免疫的仔猪HI抗体(166.4比153.6)、血清阳转数(20/20比18/20)均高于目前市售的PPV病单苗(PPV抗体效价大于1∶64可以提供对于PPV足够的保护,因此,PPV血清阳性数是指抗体效价大于1∶64,可以提供足够保护的疫苗)。因此,二联苗与单苗的免疫效果基本相当(猪圆环病毒灭活疫苗)或高于现售灭活疫苗(PPV病灭活疫苗);从接种剂量比较而言,二联苗打2针,共4ml,两种单苗联用需打4针,共8ml,显而易见的效果是二联苗使用更为方便,省时省力;从安全角度来讲,二联苗的安全性相对安全,单苗联用有3/20的试验猪有不良反应,因为注射的剂量相对比二联苗要增加1倍;综合述之,二联苗不仅使用方便,更为安全,而且免疫效果与单独两种单苗联用效果相当或略高。
表6二联灭活疫苗与单价疫苗的对照试验
注:不良反应表现为注射局部红肿,体温升高,厌食,精神不振。
实施例3PCV2、PPV二联灭活疫苗免疫母猪后的繁殖性能及仔猪生长情况
1.材料
PCV2、PPV二联灭活疫苗,选用实施例1中的实验室制品(批号为试Z001)。PCV2灭活疫苗(SH株),普莱柯生物工程股份有限公司生产(批号为100903);PPV病灭活疫苗,武汉中博生物股份有限公司(批号为101001)。
2.动物试验设计
选6~7月龄后备母猪60头,分为3组,每组20头。第1组每头后备母猪在配种前1月免疫二联灭活疫苗,14天后加强免疫1次,在母猪产前1个月第三次免疫,每次均免疫2ml/头。第2组每头后备母猪在配种前1月同时免疫PCV2和PPV病灭活单苗,14天后同时加强免疫1次,在母猪产前1个月同时第三次免疫,每次各单苗均免疫2ml/头。第3组为对照组。在这3组中,其它的疫苗免疫均按正常免疫程序进行。在试验过程中,观察母猪的流产、产死胎、产木乃伊胎等情况。仔猪出生后,称量仔猪的出生重,并观察仔猪的生长情况,直至断奶。
3.试验结果如表7。
表7母猪繁殖性能及仔猪生长情况
由表7结果可知,二联灭活疫苗免疫的后备母猪,未出现流产、产死胎、产木乃伊胎等繁殖障碍;猪圆环病毒单苗和PPV病单苗同时免疫的试验组,有2头母猪出现了产死胎(2/20);而对照有1头母猪出现流产(1/20),3头母猪出现产死胎(3/20)。二联灭活疫苗组免疫的母猪所产的仔猪,健康状况良好,出生时平均体重高于对照组、猪圆环病毒单苗和PPV病单苗同时免疫试验组。在仔猪的哺乳期间,相比对照组、猪圆环病毒单苗和PPV病单苗同时免疫试验组,二联灭活疫苗组免疫的母猪所产的仔猪,死亡率明显下降,仔猪出现消瘦等不健康的情况大幅降低。综上所述,二联灭活疫苗免疫母猪,能明显降低仔猪死亡率、提高仔猪出生体重、改善仔猪健康状况,增加经济效率。
以上所述仅为本发明的较佳实施例而已,并不用以限制本发明,凡在本发明的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。
Claims (10)
1.一种治疗或预防PMWS综合症的猪圆环病毒2型与猪细小病毒二联灭活疫苗,其特征在于,含有灭活的PCV2抗原、灭活的PPV抗原和疫苗佐剂。
2.根据权利要求1所述的猪圆环病毒2型与猪细小病毒二联灭活疫苗,其特征在于,所述PCV2为PCV2SH株,保藏号为CGMCCNo.23890。
3.根据权利要求1所述的猪圆环病毒2型与猪细小病毒二联灭活疫苗,其特征在于,所述PCV2含量至少为灭活前106.0TCID50/头份。
4.根据权利要求1所述的二联灭活疫苗,其特征在于,所述PCV2含量至少为灭活前106.5TCID50/头份。
5.根据权利要求1所述的猪圆环病毒2型与猪细小病毒二联灭活疫苗,其特征在于,所述PPV为PPV HN-2011株,保藏号为CCTCCNo.V201118。
6.根据权利要求1所述的猪圆环病毒2型与猪细小病毒二联灭活疫苗,其特征在于,所述PPV含量至少为灭活前107.0TCID50/头份。
7.根据权利要求1所述的猪圆环病毒2型与猪细小病毒二联灭活疫苗,其特征在于,所述疫苗佐剂为ISA206、氢氧化铝胶、矿物油、卡波姆、Gel 01、蜂胶、ISA760VG的一种或几种组合物。
8.一种如权利要求1~7任意一项所述的猪圆环病毒2型与猪细小病毒二联灭活疫苗的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:分别培养PCV2和PPV,获得PCV2的病毒液和PPV的病毒液,灭活、并浓缩上述二种病毒液,辅以佐剂制备成二联灭活疫苗。
9.根据权利要求8所述的猪圆环病毒2型与猪细小病毒二联灭活疫苗的制备方法,其特征在于,每头份疫苗中应至少含有灭活前的PCV2106.0TCID50/头份和灭活前的PPV107.0TCID50/头份。
10.根据权利要求8所述的猪圆环病毒2型与猪细小病毒二联灭活疫苗的制备方法,其特征在于,每头份疫苗中应至少含有灭活前的PCV2106.5TCID50/头份和灭活前的PPV107.0TCID50/头份。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN2012100108093A CN102961742A (zh) | 2012-01-13 | 2012-01-13 | 猪圆环病毒2型与猪细小病毒二联灭活疫苗及其制备方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN2012100108093A CN102961742A (zh) | 2012-01-13 | 2012-01-13 | 猪圆环病毒2型与猪细小病毒二联灭活疫苗及其制备方法 |
Related Child Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201610083194.5A Division CN105749273A (zh) | 2012-01-13 | 2012-01-13 | 猪圆环病毒2型与猪细小病毒二联灭活疫苗及其制备方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN102961742A true CN102961742A (zh) | 2013-03-13 |
Family
ID=47792361
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN2012100108093A Pending CN102961742A (zh) | 2012-01-13 | 2012-01-13 | 猪圆环病毒2型与猪细小病毒二联灭活疫苗及其制备方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN102961742A (zh) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103740652A (zh) * | 2013-08-27 | 2014-04-23 | 新疆天康畜牧生物技术股份有限公司 | 一种猪圆环病毒ⅱ型的制备新方法 |
CN103893749A (zh) * | 2012-12-29 | 2014-07-02 | 普莱柯生物工程股份有限公司 | 一种疫苗组合物及其制备方法和应用 |
CN109010817A (zh) * | 2017-06-09 | 2018-12-18 | 普莱柯生物工程股份有限公司 | 一种预防和/或治疗猪圆环病毒3型感染的疫苗组合物及其制备方法和应用 |
CN109022368A (zh) * | 2017-06-09 | 2018-12-18 | 普莱柯生物工程股份有限公司 | 一种猪圆环病毒2型毒株、疫苗组合物及其制备方法和应用 |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1311690A (zh) * | 1998-07-06 | 2001-09-05 | 梅瑞尔公司 | 猪环状病毒和细小病毒疫苗 |
CN101240264A (zh) * | 2008-03-21 | 2008-08-13 | 南京农业大学 | 猪圆环病毒2型灭活疫苗 |
CN101289657A (zh) * | 2008-03-28 | 2008-10-22 | 江苏省农业科学院 | 表达外源基因的重组猪细小病毒vp2病毒样粒子 |
CN101380470A (zh) * | 2008-10-15 | 2009-03-11 | 北京海淀中海动物保健科技公司 | 一种猪细小病毒活疫苗 |
-
2012
- 2012-01-13 CN CN2012100108093A patent/CN102961742A/zh active Pending
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1311690A (zh) * | 1998-07-06 | 2001-09-05 | 梅瑞尔公司 | 猪环状病毒和细小病毒疫苗 |
CN101240264A (zh) * | 2008-03-21 | 2008-08-13 | 南京农业大学 | 猪圆环病毒2型灭活疫苗 |
CN101289657A (zh) * | 2008-03-28 | 2008-10-22 | 江苏省农业科学院 | 表达外源基因的重组猪细小病毒vp2病毒样粒子 |
CN101380470A (zh) * | 2008-10-15 | 2009-03-11 | 北京海淀中海动物保健科技公司 | 一种猪细小病毒活疫苗 |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
徐志文等: "联合表达PCV2 ORF2和PPV VP2基因病毒样颗粒获得及免疫原性", 《中国兽医学报》 * |
Cited By (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103893749A (zh) * | 2012-12-29 | 2014-07-02 | 普莱柯生物工程股份有限公司 | 一种疫苗组合物及其制备方法和应用 |
CN103740652A (zh) * | 2013-08-27 | 2014-04-23 | 新疆天康畜牧生物技术股份有限公司 | 一种猪圆环病毒ⅱ型的制备新方法 |
CN109010817A (zh) * | 2017-06-09 | 2018-12-18 | 普莱柯生物工程股份有限公司 | 一种预防和/或治疗猪圆环病毒3型感染的疫苗组合物及其制备方法和应用 |
CN109022368A (zh) * | 2017-06-09 | 2018-12-18 | 普莱柯生物工程股份有限公司 | 一种猪圆环病毒2型毒株、疫苗组合物及其制备方法和应用 |
CN109010817B (zh) * | 2017-06-09 | 2021-12-03 | 普莱柯生物工程股份有限公司 | 一种预防和/或治疗猪圆环病毒3型感染的疫苗组合物及其制备方法和应用 |
CN109022368B (zh) * | 2017-06-09 | 2022-05-24 | 普莱柯生物工程股份有限公司 | 一种猪圆环病毒2型毒株、疫苗组合物及其制备方法和应用 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN105412921B (zh) | 一种ⅰ群4型禽腺病毒疫苗 | |
CN103305474B (zh) | 猪伪狂犬病毒毒株及其灭活疫苗和应用 | |
CN103479995B (zh) | 鸡毒支原体、鸡滑液囊支原体二联灭活疫苗的制备方法 | |
CN101240264A (zh) | 猪圆环病毒2型灭活疫苗 | |
CN102220287B (zh) | 鸡传染性支气管炎冷适应致弱疫苗株及其应用 | |
CN102258777B (zh) | 用鸡胚源细胞系繁殖传染性法氏囊病毒制备灭活疫苗和联苗的方法 | |
CN102260649B (zh) | 传染性法氏囊病毒及用鸡胚细胞系和生物反应器繁殖法氏囊病毒制备灭活疫苗和联苗的方法 | |
CN102086447A (zh) | 鸭病毒性肝炎毒株及灭活疫苗 | |
CN105664150B (zh) | 一种鸡新城疫病毒、禽流感病毒和禽腺病毒三联灭活疫苗 | |
CN105462936A (zh) | 一种流猪行性腹泻病毒my01株及其应用 | |
CN102961742A (zh) | 猪圆环病毒2型与猪细小病毒二联灭活疫苗及其制备方法 | |
CN104043117A (zh) | 一种疫苗组合物及其制备方法和应用 | |
CN105535958B (zh) | 一种鸡新城疫病毒、传染性支气管炎、禽腺病毒三联灭活疫苗 | |
CN104928260A (zh) | 一种牛传染性鼻气管炎病毒ibrv-jn03分离株及其应用 | |
CN101851609B (zh) | 猪细小病毒l株及在制备猪细小病毒病灭活疫苗中的用途 | |
CN104056265B (zh) | 猪圆环病毒2型、猪繁殖与呼吸综合征二联疫苗及其制备方法 | |
CN104087559B (zh) | 一种传染性法氏囊病毒、灭活疫苗及其制备方法 | |
CN108421037A (zh) | 一种猪伪狂犬病/猪细小病毒病二联灭活疫苗及其悬浮培养制备方法 | |
CN104758928A (zh) | 一种山羊痘、羊口疮二联细胞弱毒疫苗及其制备方法和用途 | |
CN104288760A (zh) | 一种疫苗组合物及其制备方法和应用 | |
CN104069489B (zh) | 鸡新城疫和传染性法氏囊二联灭活疫苗及其制备方法 | |
CN105749273A (zh) | 猪圆环病毒2型与猪细小病毒二联灭活疫苗及其制备方法 | |
CN103127497A (zh) | 猪圆环病毒2型、肺炎支原体二联灭活疫苗及其制备方法 | |
CN101905019B (zh) | 一种猪血凝性脑脊髓炎细胞培养灭活疫苗及其制备方法 | |
CN101380470B (zh) | 一种猪细小病毒活疫苗 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C12 | Rejection of a patent application after its publication | ||
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |
Application publication date: 20130313 |