CN102839138A - 一株海洋细菌Pseudoalteromonas issachenkonii HZ及其产生的多糖 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一株海洋细菌Pseudoalteromonas issachenkonii HZ,该菌株已于2011年12月09日保藏于中国典型培养物保藏中心,保藏编号为CCTCC NO:M 2011456。本发明还公开了一种多糖,是由培养海洋细菌Pseudoalteromonas issachenkonii HZ所得到的。经实验证明,该多糖对重金属离子(尤其是Pb2+)具有较高的清除率,对自由基也有较好的清楚效率,抗氧化性能优良。该多糖对浑浊污水也有较好的絮凝能力。可见,在污水处理方面,本发明的菌株、多糖有着得天独厚的优势,比如制成添加剂等,相信在不久的将来,本发明的菌株、多糖在污水处理领域将占据一席之地。
Description
技术领域
本发明涉及一株海洋细菌Pseudoalteromonas issachenkonii HZ及其产生的多糖,以及其应用。
背景技术
随着工农业生产的发展和人们生活水平的提高,污水的排放量迅速增加,处理污水成为当前社会的难题之一。利用细菌处理污水是目前的热门研究,但尚无一种较为理想的菌种。
发明内容
针对上述现有技术,本发明提供了一株可以用于污水处理的海洋细菌Pseudoalteromonas issachenkonii HZ及其产生的多糖,以及其应用。
本发明是通过以下技术方案实现的:
一株海洋细菌Pseudoalteromonas issachenkonii HZ,该菌株已于2011年12月09日保藏于中国典型培养物保藏中心,保藏编号为CCTCC NO:M 2011456。
该菌株的特征为:Pseudoalteromonas issachenkonii HZ为革兰氏阴性菌,短杆状,在Zobell 2216E固体培养基菌落大(直径3mm),乳黄色,圆形,隆起,边缘较圆整,不透明,无迁移性。
本发明的菌株是通过以下方式筛选得到的:样品采集自山东荣成海域,取样时间为鲍鱼苗期幼体从附着基剥离时(5月中旬)。样品为刮取的板上10cm2面积上的附着物,存放在2ml灭菌冻存管中,密闭保存在冰盒中,24小时内送回实验室。进行异养菌的分离和DNA的提取。将采集的样品用无菌海水稀释为10-3、10-4、10-5、10-6四个浓度,用灭菌的涂布器均匀涂布于2216E固体培养基平板上,25℃恒温培养48h,挑取形态差别显著的的菌落。用划线法进行纯化。通过苯酚-硫酸法对所得菌株是否产多糖进行检测,初筛多糖产量超过0.5g/L,得到该产多糖菌株,通过DNA序列分析确定了其种属关系,属于Pseudoalteromonas。
一种多糖,是由培养海洋细菌Pseudoalteromonas issachenkonii HZ所得到的,具体如下:
(1)培养:海洋细菌Pseudoalteromonas issachenkonii HZ菌株经斜面培养、种子培养后得到种子培养液,接种到发酵培养基中,接种量2%~5%(体积百分数),温度20~35℃,150~250r/min摇床培养30~40h,得发酵液;
(2)提取:发酵液5000rpm/min离心20min,过滤去除菌体,向上清液中加入3倍体积的95%乙醇(体积百分数),静置8~12h,离心得到沉淀,即为蛋白质和多糖的混合物;
(3)除杂蛋白:将上述得到的蛋白质和多糖的混合物溶于水中,加入总体积1/4体积的Sevag溶剂(氯仿:正丁醇=4:1,体积比),充分震荡10min,离心去除有机相;重复进行8次,得到粗多糖溶液;
(4)分离纯化:采用DEAE-52对粗多糖进行分级,用0-2M NaCl Tris-HCl(0.01M)进行梯度洗脱,收集主峰;将收集到的主峰浓缩脱盐、冷冻干燥后,溶于0.1M NaCl溶液,用Sephadex G100层析,用0.1M NaCl洗脱,收集第一个洗脱峰,冷冻干燥后即得到多糖,命名为EPS-1。
所述斜面培养、种子培养对所属领域技术人员而言是常规的技术操作,在此不再赘述。
所述培养所用的斜面培养基为:Zobell 2216E培养基:蛋白胨5.0g,酵母膏1.0g,磷酸铁0.01g,琼脂20.0g,陈海水1000ml,调ph至7.6~7.8。
所述培养所用种子培养基为:Zobell 2216E培养基:蛋白胨5.0g,酵母膏1.0g,磷酸铁0.01g,陈海水1000ml,调ph至7.6~7.8。
所述发酵培养基为:牛肉膏0.25%,蔗糖3%,海盐(硝酸铵0.00016%,硼酸0.0022%,氯化钙0.18%,磷酸氢二钠0.0008%,柠檬酸铁0.01%,氯化镁0.88%,溴化钾0.008%,氯化钾0.055%,碳酸氢钠0.016%,氯化钠1.945%,硅酸钠0.0004%,硫酸钠0.0324%,氯化锶0.0034%,氟化钠0.00024%),余量为水,pH7.6~7.8。所述百分数均为质量百分数。
所述培养条件为:温度30℃,200r/min摇床培养36h,此条件下,多糖产量可达到2.76g/L。
经实验证明,该多糖对重金属离子(尤其是Pb2+)具有较高的清除率,对自由基也有较好的清楚效率,抗氧化性能优良。该多糖对浑浊污水也有较好的絮凝能力。可见,在污水处理方面,本发明的菌株、多糖有着得天独厚的优势,比如制成添加剂等,相信在不久的将来,本发明的菌株、多糖在污水处理领域将占据一席之地。
附图说明
一株海洋细菌Pseudoalteromonas issachenkonii HZ,该菌株已于2011年12月09日保藏于中国典型培养物保藏中心,保藏编号为CCTCC NO:M 2011456,保藏地址:湖北省武汉市武汉大学,邮编:430072。
图1:菌体生长曲线和多糖发酵曲线。
图2:紫外扫描数据示意图。
图3:梯度洗脱收集得到的主峰示意图。
图4:洗脱得到的洗脱峰示意图。
图5-1:多糖分子量线性回归方程,横坐标:洗脱体积,纵坐标,摩尔质量,图由机器得 出。
图5-2:多糖分子量及分子量分布示意图,横坐标:洗脱体积;纵坐标:检测器响应,此为扫描图片。
图6:EPS-1的红外谱图。
图7:EPS-11H核磁共振谱图(30℃)。
图8:EPS-113C核磁共振谱图(30℃)。
图9:胞外多糖EPS1对污水絮凝的作用示意图。
图10:胞外多糖和Vc对·OH的清除率示意图。
图11:胞外多糖EPS1和Vc对O2-·的清除率示意图。
图12:EPS1红外光谱图。
图13:EPS1吸收Pb2+红外光谱图。
图14:铅元素的线性标准曲线。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明作进一步的说明。
实施例1菌株的获得
样品采集自山东荣成海域,取样时间为苗期幼体(鲍鱼)从附着基剥离时(5月中旬)。样品为刮取的板上10cm2面积上的附着物,存放在2ml灭菌冻存管中,密闭保存在冰盒中,24小时内送回实验室。进行异养菌的分离和DNA的提取。将采集的样品用无菌海水稀释为10-3、10-4、10-5、10-6四个浓度,用灭菌的涂布器均匀涂布于2216E固体培养基平板上,25℃恒温培养48h,挑取形态差别显著的的菌落。用划线法进行纯化。通过苯酚-硫酸法对所得菌株是否产多糖进行检测,筛选到一株多糖产量超过0.5g/L的菌株,通过DNA序列分析确定了其种属关系,属于交替假单胞菌Pseudoalteromonas,对其进行了保藏,保藏编号为CCTCCNO:M 2011456,保藏日期为2011年12月09日。
实施例2提取多糖
是培养海洋细菌Pseudoalteromonas issachenkonii HZ所得到的,具体如下:
(1)培养:海洋细菌Pseudoalteromonas issachenkonii HZ菌株经斜面培养、种子培养后得到种子培养液,接种到发酵培养基中,接种量5%(体积百分数),温度30℃,200r/min摇床培养36h,得发酵液;菌体生长曲线和多糖发酵曲线如图1所示,多糖产量达到2.76g/L。
(2)提取:发酵液5000rpm/min离心20min,过滤去除菌体,向上清液中加入3倍体积的95%乙醇(体积百分数),静置10h,离心得到沉淀,即为蛋白质和多糖的混合物;
(3)除杂蛋白:将上述得到的蛋白质和多糖的混合物溶于水中,加入总体积1/4体积的Sevag溶剂(氯仿:正丁醇=4:1,体积比),充分震荡10min,离心去除有机相;重复进行8次,得到粗多糖溶液;采用紫外扫描检测杂蛋白是否除干净(检测260nm和280nm波长处若没有出现吸收峰,即表明无核酸和蛋白质残存),紫外扫描数据如图2所示。
(4)分离纯化:采用DEAE-52对粗多糖进行分级,用0-2M NaCl Tris-HCl(0.01M)进行梯度洗脱,收集主峰(如图3所示);将收集到的主峰浓缩脱盐、冷冻干燥后,溶于0.1M NaCl溶液,用Sephadex G100层析,用0.1M NaCl洗脱,收集第一个洗脱峰,冷冻干燥后即得到多糖,命名为EPS-1,如图4所示。
所述培养所用的斜面培养基为:Zobell 2216E培养基:蛋白胨5.0g,酵母膏1.0g,磷酸铁0.01g,琼脂20.0g,陈海水1000ml,调ph至7.6~7.8。
所述培养所用种子培养基为:Zobell 2216E培养基:蛋白胨5.0g,酵母膏1.0g,磷酸铁0.01g,陈海水1000ml,调ph至7.6~7.8。
所述发酵培养基为:牛肉膏0.25%,蔗糖3%,海盐(硝酸铵0.00016%,硼酸0.0022%,氯化钙0.18%,磷酸氢二钠0.0008%,柠檬酸铁0.01%,氯化镁0.88%,溴化钾0.008%,氯化钾0.055%,碳酸氢钠0.016%,氯化钠1.945%,硅酸钠0.0004%,硫酸钠0.0324%,氯化锶0.0034%,氟化钠0.00024%),余量为水,pH7.6~7.8。所述百分数均为质量百分数。
多糖纯度和分子量确定:
使用高效凝胶渗透色谱法(HPGPC)测定多糖EPS-1的分子量,色谱柱:SHODEXSB-806HQ(8.0m×300mm);流动相:0.2M NaCl(取氯化钠17.85g,叠氮化钠0.15g,加纯水使药品溶解并稀释至1500mL)溶液;对照样品:0.1mg/mL聚苯乙烯硫酸酯钠盐系列对照品;流速0.5mL/min,柱温35℃,取对照品各100μL分别注入液相色谱仪,记录色谱图,由GPC软件进行普适校正计算线性回归方程,如图5-1所示,对照品K值为0.0006,α值为0.75,取供试样品溶液100μL,同法测定,用GPC软件计算出样品的分子量及分子量分布,如图5-2所示。
根据标准品和标准曲线积分得出分子量信息如表1所示。
表1
常用的平均分子量有以数量为统计权重的数均分子量(Mn)和以重量为统计权重的重均分子量(Mw)。该多糖的分散系数为1.24,说明该细菌多糖分子量分散程度较小。
EPS-1的单糖组成分析:
EPS-1水解液的质谱解析结果见表2。经标准质谱库检索分析,检出5种单糖,其中包括两种戊糖(阿拉伯糖和木糖),3种己糖(甘露糖、葡萄糖和岩藻糖)。从表2中的峰面积百分比可以看出,EPS-1的主要组份为木糖,并含有少量的阿拉伯糖、葡萄糖和岩藻糖。
表2EPS-1单糖组成分析表
EPS-1的红外光谱分析:
从EPS-1的红外谱图(如图6所示)可见,EPS-1具有多糖类物质的特有吸收峰,其中,3398.5cm-1有强且宽的-OH伸缩振动峰,系多糖上的羟基形成的分子间或分子内氢键;2933.7cm-1、2889.3cm-1为-CH2、-CH3的C-H伸缩振动;1319.3cm-1、-1454.33cm-1是C-H的变角振动吸收峰;1633.7cm-1为C=O的伸缩振动峰;1140cm-1左右为C-O的吸收很强的伸缩振动峰,有可能是吡喃糖环特征吸收峰;925.8cm-1为吡喃环非对称伸缩振动峰,860.2cm-1有可能为β-吡喃环的C-H变角振动,但由于仪器、操作技术、样品处理等原因有可能造成的偏差,还需要进一步验证。
EPS-1的核磁共振波谱分析:
为进一步确定EPS-1的结构,对其进行1H-NMR(图7)和13C-NMR(图8)分析,在1H-NMR谱中,异头碳C-1上质子的δ值在4.7ppm附近,未超过5ppm,表明这些葡萄糖残基均为β构型,这与红外光谱分析一致。在13C-NMR谱中,在160-180ppm处未出现羰基碳信号,说明多糖不含糖醛酸和糖蛋白,95-105ppm区间只有一组信号峰,峰值103.26,根据文献可确定EPS-1为无分支的糖链结构,以β-1,4糖苷键连接,图谱中79.3ppm处有信号出现,即C-4位置发生取代,δ<20ppm处未出现碳信号,表明EPS-1不含甲基糖。
实施例3多糖的用途
一、EPS-1对污水的絮凝作用
(1)获取生活污水
取自山东轻工业学院生活污水处理厂,经检测其A值为1.626。
(2)微生物絮凝剂胞外多糖的制备
将海洋细菌HZ菌株接种到1L经灭菌的无氮培养液中,28℃培养2d至瓶底产生絮凝物 质,采用沉淀法经离心后冷冻干燥获得海洋细菌Pseudoalteromonus isachenkonii HZ的胞外多糖,经过sevage法除蛋白,并用DEAE-52和Sephadex G100进一步分离纯化,得到多糖EPS-1(即采用实施例2的方式提取得到多糖EPS-1)。
(3)对生活污水的处理
在250mL三角瓶中加入l00mL的待处理废水,加入0.2g制备好的海洋细菌Pseudoalteromonus isachenkonii HZ的胞外多糖EPS-1,混合均匀,静置lh,采用如下指标检测胞外多糖对废水的处理效果。
(4)絮凝率的测量
用753分光光度计以550nm波长测定,原废水的上相液Dγ值记为A1;经处理后废水的上相液吸光度值(Dγ值)记为B1。絮凝效果以絮凝率来表示:
絮凝率(%)=(A1-B1)/A1×100%
污水絮凝实验结果分析如图9所示。静置1h后,测得絮凝率为84.19%,从对生活废水的处理结果来看,由海洋细菌Pseudoalteromonus isachenkonii HZ菌株所制备得到的胞外多糖EPS-1已达到对生活污水进行处理的要求,效果完全达到预期,可以当做絮凝剂进行应用。
二、EPS1对清除自由基的应用研究
(1)对羟自由基的清除
1.采用H2O2/Fe2+体系,通过Fenton反应生成·OH,在体系内加入水杨酸捕捉·OH并产生有色物质,该物质在510nm下有最大吸收。反应体系中含9.8mmol/LH2O2 lmL,9mmol/LFeSO4 lmL,9mmol/L水杨酸-乙醇lmL,不同浓度的海洋细菌Pseudoalteromonus isachenkonii HZ EPS1多糖溶液lmL,其中H2O2是最后加入并启动整个反应。37℃反应30min,5000r/min离心10min,以蒸馏水为参比,在510nm下测量各浓度的吸光度。
考虑待测溶液本身的吸光值不同,以9mmol/LFeSO4 lmL,9mmol/L水杨酸-乙醇lmL,不同浓度的多糖溶液lmL和蒸馏水lmL作为待测溶液的本底吸收值。清除率计算公式为:
清除率=[A0-(Ax-Ax0)]/A0×100%
式中:A0为空白对照液的吸光度,Ax为加入多糖溶液后的吸光度,Ax0为多糖溶液的本底吸收值。
2.采用2/Fe2+体系,通过Fenton反应生成·OH,在体系内加入水杨酸捕捉·OH并产生有色物质,该物质在510nm下有最大吸收。反应体系中含9.8mmol/LH2O2 lmL,9mmol/LFeSO4lmL,9mmol/L水杨酸-乙醇lmL,不同浓度的Vc溶液lmL,其中H2O2是最后加入并启动整个反应。37℃反应30min,5000r/min离心10min,以蒸馏水为参比,在510nm下测量各 浓度的吸光度。
考虑待测溶液本身的吸光值不同,以9mmol/LFeSO4 lmL,9mmol/L水杨酸-乙醇lmL,不同浓度的Vc溶液lmL和蒸馏水lmL作为待测溶液的本底吸收值。清除率计算公式为:
清除率=[A0-(Ax-Ax0)]/A0×100%
式中:A0为空白对照液的吸光度,Ax为加入Vc溶液后的吸光度,Ax0为Vc溶液的本底吸收值。
清除羟自由基(·OH)实验结果分析如图10所示。EPS1胞外多糖对羟自由基的清除效果较明显,并呈现明显的量效关系。但是胞外多糖EPS1对·OH的清除与相同浓度的Vc相比清除效果略差,说明胞外多糖EPS1对·OH的清除有一定的作用。
(2)对超氧自由基的清除
1.连苯三酚在碱性条件下会发生自动氧化反应,自氧化过程中产生O2-·,O2-加速邻苯三酚自氧化速率,同时生成有色物质。连苯三酚在自氧化过程中,形成一系列在400~420nm处有光吸收的中间产物,由于自氧化速率依赖于O2-·的浓度,清除O2-·则抑制自氧化反应,阻止中间产物的积累,从而评价受试物清除O2-·的能力。
2.采用邻苯三酚自氧化法测定,取4.5mLpH8.2浓度为50mmol/Ltris-HCl缓冲液,15μL蒸馏水,混匀后在25℃水浴中保温20min,取出后立即加入在25℃预热过的3mmol/L邻苯三酚151μL(以10mmol/LHCl配制,空白管用10mmol/LHCl代替邻苯三酚的HCl溶液),迅速摇匀后倒入比色皿中,325nm下每隔30s测定吸光度,计算线性范围内每分钟吸光度的增加。在加入邻苯三酚前,先加入1mL的EPS 1多糖溶液,蒸馏水减少,然后按上述方法计算清除率。
清除率=(ΔA0—ΔA)/(ΔA0)×100%
其中:△A0邻苯三酚的自氧化速率,△A为加入多糖溶液后邻苯三酚的自氧化速率。
3.采用邻苯三酚自氧化法测定,取4.5mLpH8.2浓度为50mmol/Ltris-HCl缓冲液,15μL蒸馏水,混匀后在25℃水浴中保温20min,取出后立即加入在25℃预热过的3mmol/L邻苯三酚151μL(以10mmol/LHCl配制,空白管用10mmol/LHCl代替邻苯三酚的HCl溶液),迅速摇匀后倒入比色皿中,325nm下每隔30s测定吸光度,计算线性范围内每分钟吸光度的增加。在加入邻苯三酚前,先加入1mL的Vc多糖溶液,蒸馏水减少,然后按上述方法计算清除率。
清除率=(ΔA0-ΔA)/(ΔA0)×100%
其中:△A0邻苯三酚的自氧化速率,△A为加入Vc溶液后邻苯三酚的自氧化速率。
清除超氧自由基(O2-·)实验结果分析如图11所示。
胞外多糖对超氧自由基的清除作用较明显,随着多糖浓度的增加,清除效果逐渐加强。在一定浓度范围内,呈量效关系,且胞外多糖的清除率略略低于Vc的清除率。
三、EPS-1对Pb2+的清除作用
1.①配制浓度为50μg/mL的醋酸铅溶液25mL,加入0.2g海洋细菌胞外多糖Pseudoalteromonus isachenkonii HZ EPS1粉末,在恒温振荡器上震荡2小时,加入95%乙醇醇沉至乙醇浓度达80%,静置,在离心机中高速离心15分钟,将上清液移入蒸馏烧瓶中,减压浓缩回收乙醇,剩余液定容25mL,待测。
消化瓶中加入待测溶液10mL,加入硝酸—高氯酸(4:l)约10mL,通风橱中加热至棕色,冷却加约5mL浓硫酸继续加热至淡黄色或无色,定容25mL,测定。
②样品测定:用原子吸收分光光度法测定。
2.以去离子水配置的浓度50μg/mL的醋酸铅25mL,加入海洋细菌Pseudoalteromonus isachenkonii HZ胞外多糖EPS1粉末,在恒温振荡器上震荡2小时加入95%乙醇醇沉至乙醇浓度达80%,静置,在离心机中高速离心15分钟,所得沉淀冻干,研细,进行红外光谱检测。将干燥的样品与KBr压制成片,使用Necolet一Nexus470傅立叶变换红外光谱仪,扫描600一4000cm-1波长范围的光谱吸收值。
清除重金属离子结果分析如图12、13、14所示。
对海洋细菌Pseudoalteromonus isachenkonii HZ EPS1(图12)和海洋细菌Pseudoalteromonus isachenkonii HZ EPS1-Pb(图13)的红外光谱在3500-1651cm-1基本相同,而在500-1651cm-1和3650-3200cm-1范围内,海洋细菌Pseudoalteromonus isachenkonii HZ EPS1(图12)和海洋细菌Pseudoalteromonus isachenkonii HZ EPS1-Pb(图13)的红外光谱有较大差异。海洋细菌Pseudoalteromonus isachenkonii HZ EPS1中的O-H振动3545.16cm-1、3489.23cm-1、3404.36cm-1处吸收Pb2+后分别在3535.52cm-1、3429.43cm-1、3400.5cm-1、3375.43cm-1处;C=O伸缩振动在1651.07cm-1,羧基的对称吸收峰在1425.40cm-1,海洋细菌Pseudoalteromonus isachenkonii HZ EPS1-Pb中的C=O伸缩振动在1631.78cm-1,羧基的对称吸收峰在1433.11cm-1。由此可见,海洋细菌Pseudoalteromonus isachenkonii HZ EPS1的化学结构出现了变化,发生了化学变化,既海洋细菌Pseudoalteromonus isachenkonii HZ EPS1可以结合Pb2+。通过图14的铅的标准曲线我们计算得到海洋细菌Pseudoalteromonus isachenkoniiHZ EPS1对Pb2+的清除率为98.37%,可见海洋细菌Pseudoalteromonus isachenkonii HZ EPS1对Pb2+的清除率非常高,完全能够满足我们的需要。
综合上述所做实验所得的结果,我们可以发现海洋细菌Pseudoalteromonus isachenkonii HZEPS1在很多领域都可以得到广泛的应用,尤其在污水处理领域更是得天独厚。很多产胞外多糖细菌是从含有高水平的有毒的元素(硫或重金属)的极端海洋环境中分离出来的。所以,它们产生的一些胞外多糖对重金属有较强的吸引力,这可以广泛应用于废水中的重金属处理。虽然在前面的实验中我仅探讨了Pseudoalteromonus isachenkonii HZ EPS1对Pb2+的清除能力,但是从其对Pb2+拥有较高的清除率上看,Pseudoalteromonus isachenkonii HZ EPS1对其他重金属离子也应该有较好的表现。更加需要注意的是从Pseudoalteromonus isachenkonii HZ EPS1对自由基具有较好的清除效率来看,Pseudoalteromonus isachenkonii HZ EPS1的抗氧化性能也比较优良,虽然其对自由基的清除率略低于Vc,但考虑到Vc是一种比较活跃的还原性物质,Pseudoalteromonus isachenkonii HZ EPS1在清除自由基方面仍能与Vc在一个数量级上,可见其清除自由基的高效性。再加上海洋细菌胞外多糖对浑浊污水有较好的絮凝能,Pseudoalteromonus isachenkonii HZ EPS1在用作污水处理添加剂方面拥有得天独厚的优势,相信在不久的将来,在污水处理领域将占据一席之地。
Claims (10)
1.一株海洋细菌Pseudoalteromonas issachenkonii HZ,其特征在于:该菌株已于2011年12月09日保藏于中国典型培养物保藏中心,保藏编号为CCTCC NO:M 2011456。
2.一种多糖,其特征在于:是由培养海洋细菌Pseudoalteromonas issachenkonii HZ所得到的。
3.根据权利要求2所述的一种多糖,其特征在于:是通过以下方法得到的:
(1)培养:海洋细菌Pseudoalteromonas issachenkonii HZ菌株经斜面培养、种子培养后得到种子培养液,接种到发酵培养基中,接种量2%~5%,温度20~35℃,150~250r/min摇床培养30~40h,得发酵液;
(2)提取:发酵液5000rpm/min离心20min,过滤去除菌体,向上清液中加入3倍体积的95%乙醇,静置8~12h,离心得到沉淀,即为蛋白质和多糖的混合物;
(3)除杂蛋白:将上述得到的蛋白质和多糖的混合物溶于水中,加入总体积1/4体积的Sevag溶剂,充分震荡10min,离心去除有机相;重复进行8次,得到粗多糖溶液;
(4)分离纯化:采用DEAE-52对粗多糖进行分级,用0-2M NaCl Tris-HCl进行梯度洗脱,收集主峰;将收集到的主峰浓缩脱盐、冷冻干燥后,溶于0.1MNaCl溶液,用Sephadex G100层析,用0.1M NaCl洗脱,收集第一个洗脱峰,冷冻干燥后即得到多糖。
4.根据权利要求3所述的一种多糖,其特征在于:所述斜面培养所用的斜面培养基为:Zobell2216E培养基:蛋白胨5.0g,酵母膏1.0g,磷酸铁0.01g,琼脂20.0g,陈海水1000ml,调ph至7.6~7.8。
5.根据权利要求3所述的一种多糖,其特征在于:所述种子培养所用种子培养基为:Zobell2216E培养基:蛋白胨5.0g,酵母膏1.0g,磷酸铁0.01g,陈海水1000ml,调ph至7.6~7.8。
6.根据权利要求3所述的一种多糖,其特征在于:所述发酵培养基为:牛肉膏0.25%,蔗糖3%,硝酸铵0.00016%,硼酸0.0022%,氯化钙0.18%,磷酸氢二钠0.0008%,柠檬酸铁0.01%,氯化镁0.88%,溴化钾0.008%,氯化钾0.055%,碳酸氢钠0.016%,氯化钠1.945%,硅酸钠0.0004%,硫酸钠0.0324%,氯化锶0.0034%,氟化钠0.00024%,余量为水,pH7.6~7.8;所述百分数均为质量百分数。
7.根据权利要求3所述的一种多糖,其特征在于:所述培养条件为:温度30℃,200r/min摇床培养36h。
8.权利要求1所述的海洋细菌Pseudoalteromonas issachenkonii HZ在污水处理中的应用。
9.根据权利要求3所述的一种多糖在污水处理中的应用。
10.根据权利要求9所述的应用,其特征在于:所述多糖作为金属离子清除剂、自由基清除剂以及絮凝剂的应用。
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