CN102762116A - 用过酸和2-羟基有机酸组合物消毒肉品 - Google Patents
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Abstract
提供了用于处理物品以控制微生物的方法和组合物。该方法通过将所述物品的表面与水溶液接触来处理产品,所述水溶液包含i)化学式为RC(O)OOH的有机过酸,其中R是甲基、乙基、正丙基或者仲丙基;ii)选自酒石酸、柠檬酸、苹果酸、扁桃酸和乳酸的2-羟基有机酸;iii)水;其中所述水溶液的pH为2.5至6.0。
Description
发明背景
从环境中去除微生物的安全并可靠的方法是日益严重的公共卫生和农业问题。用于去除或减少环境微生物的现有方法不能充分地控制微生物,所述微生物具有引起食物或者农业工业中的疾病或者腐坏的潜力。因此,对于能显著减少环境中存在的微生物的新方法与组合物具有巨大的需求。
本发明提供了符合这些需求的组合物与方法。
发明概述
本发明涉及发现包含过氧乙酸、乳酸和(可任选地)月桂基硫酸钠或者其他表面活性剂的水溶液在减少物品表面上的微生物污染时是惊人地有效。在去除物品上附着的微生物时,成分的结合使用比任意一个成分单独使用要有效得多。因此,本发明提供了用于接触表面卫生处理的组合物和方法。表面消毒或表面灭菌控制或者减少了不需要的微生物在任意污染物或者其它物品表面上的存在。在第一个方面,本发明通过将物品的表面与根据本发明的消毒或者灭菌组合物接触来提供表面消毒或灭菌的方法。
根据本发明的组合物具有2.5至6.0的pH且包含i)化学式为RC(O)OOH的有机过酸,其中R是甲基、乙基、正丙基或者仲丙基;ii)选自酒石酸、柠檬酸、苹果酸、扁桃酸和乳酸的2-羟基有机酸;iii)水;以及可任选地iv)阴离子表面活性剂。在优选的实施方式中,所述过酸是过氧乙酸(也称为过乙酸或者乙酰过氧化氢),所述有机酸是柠檬酸(也称为2-羟基丙酸),且如果存在,优选的阴离子表面活性剂是月桂基硫酸钠。因为过酸的水性组合物可以与过氧化氢及其相应酸的浓缩溶液平衡存在或者从过氧化氢及其相应酸的浓缩溶液中制备,且水、水性组合物还可以含有过氧化氢及其相应酸(例如,过氧乙酸情况下的乙酸)。可以以浓缩物或者即用水性制剂提供所述组合物。还可以以用于消毒物品的试剂盒的一部分提供所述组合物。
在一些实施方式中,表面被消毒或者灭菌的物品具有硬或者软的表面,所述硬或者软的表面有被微生物污染的风险。
在一些实施方式中,表面是食物加工环境中存在的物品(设备和工具,例如收获、砧板、切割刀和刀片以及产物)的表面。通过大量减少存在或者粘附于物品表面的微生物数量,所述微生物包含人病原体,接触可以消毒表面。接触还可以起防止由于物品表面上自身微生物污染导致的物品腐坏的作用。通过减少臭味、腐烂、和/或抑制表面上自身微生物的生长,接触还可以起保护物品质量的作用。
在另一个实施方式中,通过将植物与根据本发明的组合物接触,提供了灭菌或者保护切割植物(花或者切割树)的方法。在一些实施方式中,所述组合物是喷洒到切花上的溶液。在其他实施方式中,花的切茎或者树(例如,松木树、杉树、云杉树)的树木被放置在根据本发明的溶液中。在其他实施方式中,所述组合物用于处理活的植物的表面,所述活的植物包括水培安置的。
在一些实施方式中,考虑将种子、萌芽的种子(例如,防止萌芽的大肠杆菌爆发)、观赏植物(例如,兰花)的叶子以及苗圃植物(例如,防止霉菌)用根据本发明的消毒组合物处理或者与根据本发明的消毒组合物接触。在一些实施方式中,考虑通过将水果或者蔬菜的外皮与根据本发明的组合物接触,来消毒浆果、水果、蔬菜或者提取果汁(例如,橙汁、橘子汁、苹果汁、葡萄汁、番茄汁、蔬菜汁)之前的植物。这些处理可以起到保护被处理的物品的健康或者通过减少腐坏来增强其储存期限的作用。
本发明的另一个方面通过将源自植物的材料或其表面与根据本发明的组合物接触,提供了消毒所述源自植物的材料或其表面的方法。
在另一个实施方式中,通过将食物与根据本发明的组合物接触,本发明提供了消毒食物的方法,所述食物包括但不限于水果和蔬菜。在一些实施方式中,在家处理食物或者在烧煮或者消费前的任意最终食物制备前一小时内处理食物。
在另一个方面,本发明在包装或者适合用于根据本发明的方法的形式中提供了根据本发明的组合物。
附图简要说明
图1是五种处理对水槽-水悬浮的细胞激发试验的比较,以从左到右的顺序:a)氯化水:pH6.5时50-70ppm的活性氯;b)CS:市售的抗微生物产品清洁剂,其主要活性组分是柠檬酸和表面活性剂;c)过氧乙酸:70至80ppm的过氧乙酸+0.01%的表面活性剂;d)乳酸溶液:0.9至1.2%的乳酸+0.01%的表面活性剂;e)FE:70至80ppm的过氧乙酸+0.9至1.2%的乳酸+0.01%的表面活性剂)。所使用的表面活性剂是月桂基硫酸钠。
图2是图1中的五种处理方式在叶附着的细胞激发试验中的比较。
图3是氯化水与根据本发明的水溶液(FE:过氧乙酸、乳酸以及月桂基硫酸钠)减少处理过的产物腐烂的能力的比较。
图4是氯化水与根据本发明的水溶液(FE:过氧乙酸、乳酸以及月桂基硫酸钠)减少处理过的产物中臭味的能力的比较。
图5是氯化水与根据本发明的水溶液(FE:过氧乙酸、乳酸以及月桂基硫酸钠)减少具有低水分含量的新鲜色拉叶(Spring Mix)腐烂的能力的比较。
图6是用氯化水或者根据本发明的水溶液(FE:过氧乙酸、乳酸以及月桂基硫酸钠)处理以减少具有低水分含量的新鲜色拉叶中臭味的能力的比较。
图7是氯化水与根据本发明的水溶液(FE:过氧乙酸、乳酸以及月桂基硫酸钠)抑制具有低水分含量的新鲜色拉叶中自身微生物生长的能力的比较。
图8是氯化水与根据本发明的水溶液(FE:过氧乙酸、乳酸以及月桂基硫酸钠)抑制具有低水分含量的新鲜色拉叶腐坏的能力的比较。
图9是氯化水与根据本发明的水溶液(FE:过氧乙酸、乳酸以及月桂基硫酸钠)减少具有高水分含量的新鲜色拉叶腐烂的能力的比较。
图10是用氯化水或者根据本发明的水溶液(FE:过氧乙酸、乳酸以及月桂基硫酸钠)处理以减少具有高水分含量的新鲜色拉叶中臭味的能力的比较。
图11是氯化水与根据本发明的水溶液(FE:过氧乙酸、乳酸以及月桂基硫酸钠)抑制具有高水分含量的新鲜色拉叶中自身微生物生长的能力的比较。
图12是氯化水与根据本发明的水溶液(FE:过氧乙酸、乳酸以及月桂基硫酸钠)抑制具有高水分含量的新鲜色拉叶腐坏的能力的比较。
图13是氯化水与根据本发明的水溶液(FE:过氧乙酸、乳酸以及月桂基硫酸钠)减少菠菜腐烂的能力的比较。
图14是用氯化水或者根据本发明的水溶液(FE:过氧乙酸、乳酸以及月桂基硫酸钠)处理以减少菠菜中臭味的能力的比较。
图15是氯化水与根据本发明的水溶液(FE:过氧乙酸、乳酸以及月桂基硫酸钠)抑制具有高水分含量的菠菜中自身微生物生长的能力的比较。
图16是氯化水与根据本发明的水溶液(FE:过氧乙酸、乳酸以及月桂基硫酸钠)减少菠菜中微生物腐坏的能力的比较。
发明详述
本发明涉及发现包含过氧乙酸和乳酸的水性组合物在减少物品表面上的微生物污染时是惊人地有效。在去除物品上附着的微生物时,成分的结合使用比任意一个成分单独使用要有效得多。
过氧乙酸抗微生物活性依赖于它的强氧化性。氧化的机制是电子的转移,从而氧化剂越强,电子转移到微生物就越快,且微生物就被灭活或者杀死地越快。因此,基于下表,过氧乙酸具有比氯消毒剂高但是比臭氧低的氧化性。
选定消毒剂的氧化能力
因为过氧乙酸分子的扩散比其半衰期短,所以过氧乙酸在其附近与任意可氧化的化合物反应。其几乎可以破坏所有类型与微生物相关的大分子;例如,碳水化合物、核酸(突变)、脂质(脂质过氧化)以及氨基酸(例如,将Phe转化为m-Tyr和o-Tyr)并最终导致细胞裂解。通常,诸如乳酸的具有可氧化有机化合物的化学性质的2-羟基有机酸避免与强氧化剂同时使用,特别是与过酸同时使用。因此,特别惊人惊讶的是在本发明中将过氧乙酸与乳酸结合并表明两个化合物具有协同效应而不是一个抵消另一个。
定义
必须注意,除非上下文另外明确说明,否则在本说明书和所附权利要求中使用的单数形式的“一个”、“一种”和“所述”包括复数指代物。因此,例如一种“表面活性剂”包括两种或更多的表面活性剂。
除非另有限定,在此使用的所有技术和科学术语均与本发明所属领域技术人员的通常理解一致。所有范围都包括端值。
对于本发明的水溶液和方法,“过酸”和“有机过酸”指的是具有RC(O)OOH结构的化合物,其中R是具有1至3个碳原子的脂族基团。R可以是甲基、乙基、正丙基或者仲丙基。特别优选的过酸是过氧乙酸/过乙酸/PAA/(CH3C(O)OOH)。可以使用上述有机过酸的混合物。
在水溶液中,有机过酸与过氧化氢化学平衡地存在,因此可以在反应中从相应的有机酸和过氧化氢制备。
可以通过平衡方程式计算出每一个反应物的平衡浓度:
([RCOOOH][H2O])/([RCOOH][H2O2])=Kap (等式1)
其中:[RCOOOH]是过酸的浓度,单位为摩尔/L;[H2O]是水的浓度,单位为摩尔/L;[RCOOH]是有机酸的浓度,单位为摩尔/L;[H2O2]是过氧化氢的浓度,单位为摩尔/L;Kap是过酸平衡反应(等式I))的表观平衡常数。
表观平衡常数Kap根据选择的过酸和温度而变化。过酸形成的平衡常数可参见D.Swern编的《有机过酸》第1期,韦利科学公司(Wiley-Interscience),纽约,1970。温度40°C时,过氧乙酸的表观平衡常数约为2.21。根据此平衡反应,除了有机过酸,有机过酸溶液还包含过氧化物以及相应的有机酸。
当稀释时,在达到新的平衡前可能有一段较长的时间。例如,包含约5%的过氧乙酸的平衡溶液通常包含约22%的过氧化氢。包含约15%的过氧乙酸的平衡溶液通常包含约10%的过氧化氢。当这些平衡溶液稀释到包含约50ppm的过氧乙酸溶液时,通过稀释5%过氧乙酸溶液产生的溶液包含约220ppm的过氧化氢,通过稀释15%溶液产生的溶液包含约33ppm的过氧化氢。因此,在一些实施方式中,以浓缩物提供消毒组合物,所述浓缩物在即将使用前用水或者包含其他消毒溶液组分的水溶液稀释到所希望的过酸浓度。在一些实施方式中,以浓缩物提供消毒组合物,在即将使用前稀释所述浓缩物。
根据上述平衡,过酸很容易地从市场购得。过氧乙酸(CAS No.79-21-0)很容易地从市场购得,例如包含过氧乙酸(35%)、过氧化氢(6.5%)、乙酸64-19-7(40%)、硫酸(约1%)和水(约17%)的水溶液(所有单位为重量/重量)。
2-羟基有机酸选自酒石酸、柠檬酸、苹果酸、扁桃酸和乳酸。优选为主要生物学光学异构体。还可以以外消旋体以及任意2-羟基有机酸光学纯异构体来提供2-羟基有机酸。在一些实施方式中,优选为(+)对映体(例如,L-乳酸、L(+)-乳酸)。
本文中,术语“消毒”或者“灭菌”表示减少表面上除了细菌孢子以外的可见微生物。在一些实施方式中,在与根据本发明的消毒溶液接触之前与之后,所测得的减少至少为99.9%、99.99%、99.999%(例如,分别为3、4或5个对数单位)或者至少为3、4、5、6、7、8个对数单位。在一些实施方式中,消毒的表面具有根据任意适用的公共健康条例被认为是安全的或者低于认为构成感染或者致病风险的阈值的病原体微生物程度。因此,表面无需完全清除或者破坏所有形式的微生物生命来进行消毒。减少可以是通过物理去除,或者对微生物有毒导致了对微生物生长的破坏或抑制。
术语“物品”指的是某种材料且是有形的。“物品”包含表面。这些表面可以是硬表面(玻璃、陶瓷、金属、石头、木头以及聚合物的表面)、软表面(例如,弹性体或者塑料表面、织物表面)。因此,所述表面可能属于机织材料或者非机织材料。术语“物品”包括表面以及包含所述表面的制品。表面可以属于任意器械、装置、仪器、工具、拖车、家具、结构或者建筑。因此,所述表面包含存在活动的地板、墙、天花板或者结构固定装置的表面。
在一些实施方式中,所述表面用于家庭和商业的食物加工或者食物制备的活动和/或环境中。表面可以是未烧煮的食物原料物品(例如,肉品、鱼、家禽、农产品)的表面或者包装食物物品的表面。所述表面还包括,但不限于,工具、机器、设备、容器、包装、衣服(例如,手套、靴子)、结构、建筑的表面或者类似的在食物收获、传输、加工、制备或者储存活动中使用或者存在的表面。所述表面的例子包括但不限于,用于加工食物中使用的切块、罐装或者运输设备的表面;用于加工或者容纳食物中使用的器具、碟、洗洁具、容器的表面),以及存在于食物加工环境中的建筑表面(例如,地板、墙、天花板)或者建筑固定装置。
食物加工表面在食物工业和农业中还有很多应用。这些应用包括食物防腐系统。所述系统包括空气循环系统、冷却塔、饮品冷却器和加热器、食物冷藏和冷却剂的清洁剂和消毒剂、食物包装材料、切割板添加剂、洗洁具消毒、第三水槽消毒、肉品冷藏或烫洗水、无菌包装消毒、热烫机清洁和消毒、食物加工抗微生物衣物喷雾以及淋洗添加剂。
包含物品表面的物品存在于农业和牲畜环境与活动中。合适的物品或者表面包括,但不限于动物饲料、动物水站和围栏、动物住舱、动物牲畜诊所(例如,手术或者治疗区域)以及动物手术区域。因此,所述物品包括,但不限于食物及其表面。物品包含通常由碳水化合物、脂肪、蛋白质和水组成的任意物质,所述物品可以被动物,包括人类为了营养或者愉悦而食用或饮用。被认为是食物的物品可以从植物、动物、真菌以及发酵(例如,乙醇)中得到。食物可以经过进一步制备或无进一步制备之后是可食用的。所述食物包含农产品、加工的水果或蔬菜、肉产品、肉类(例如,红肉和猪肉)、海味、家禽、水果和蔬菜、蛋、活蛋(living eggs)、蛋产品、即食食物、小麦、谷物、种子、根、块茎、叶、茎干、球茎、花、萌芽、草本植物、调料或者它们的组合。所述食物还包括动物饲料。
在一些实施方式中,所述物品是植物材料。用语“植物材料”包括任意植物物质、源自植物的物质,包括生长的植物。所述植物材料包含种子、坚果、坚果肉、切花、植物或者在温室中生长或储存的农作物、室内植物。所述植物可以是可食用或者不可食用的。
在一些实施方式中,食物是加工的水果或蔬菜。“加工的水果或蔬菜”指的是被切割、剁碎、匀浆化、切块、剥离、研磨、碾碎、冷冻、烧煮(例如,漂白、巴氏杀菌)或者辐射过的水果或蔬菜。
在一些实施方式中,所述食物是农产品。术语“农产品”指的是源自植物的食物,其包括水果和蔬菜以及其他植物的可食用部分(例如,种子、坚果、草本植物),通常可以未加工或者未烧煮地食用所述水果和蔬菜以及其他植物的可食用部分。农产品包括但不限于,完整或者切割的有机或者无机蔬菜和水果,包括但不限于那些未烧煮食用的。在一些实施方式中,所述农产品是新鲜色拉叶、菠菜、生菜、鳄梨、山药、芦笋、宽叶莴苣、芝麻菜、菊苣(radicchio)、豌豆芽、莳萝、韭菜、结球生菜(head lettuce)、叶莴苣(例如,红莴苣和绿莴苣)、冰山莴苣、菊苣(endive)、欧芹、菠菜、萝卜、芹菜、胡萝卜、甜菜、洋葱、大黄、茄子、胡椒粉、南瓜、,夏南瓜、黄瓜、番茄、土豆、甜土豆、芜箐、芜菁甘蓝、夏南瓜、卷心菜(例如,红卷心菜和绿卷心菜)、羽衣甘蓝(绿羽衣甘蓝和紫羽衣甘蓝)、大头菜、羽衣甘蓝(collard greens)、花椰菜、东方蔬菜(例如,婴儿白菜(baby bakchoy)、四季豆、芥菜、中国椰菜、大白菜、细香葱、芫荽叶、油菜(yau-choy)、丝瓜)、球芽甘蓝、黄秋葵、蘑菇、荷兰豆、大豆、椰菜、金鱼草豌豆、玉米和蒲公英;诸如苹果、菠萝、瓜(例如,哈密瓜、西瓜、蜜瓜、香瓜、冬瓜)、柑橘水果(例如,橙子、柠檬、橘子,柚子)、高尔基果(golgi)、腰果、桃子、樱桃、杏、柿子、猕猴桃、温柏、李子、梅脯、葡萄以及梨的水果;和诸如草莓、山莓、醋栗、罗甘莓、波森莓、酸果蔓、葡萄干、接骨木果、黑莓以及蓝莓的浆果。在一些实施方式中,所述农产品是完整或者切割的香蕉、芒果、番木瓜果、草本植物、芫荽叶、柿子椒、洋葱和菠萝。在一些实施方式中,根据本发明的组合物用于香蕉中以防止腐坏(例如,冠腐)。
在一些实施方式中,所述物品是肉产品。术语“肉产品”指的是包含动物可食用部分的所有的动物部分,包括瘦肉、肥肉、器官和皮。来源动物可以是哺乳动物、鸟、鱼、爬行动物、两栖动物、蜗牛、蛤或者甲壳类。术语包括海味(例如,龙虾、螃蟹)。肉产品可以包含动物尸体的全部或者部分。所述肉产品包括腌肉、部分的或者成形的产品、切碎的产品、精剁的产品、研磨的肉品以及包含上述的产品。肉产品包括但不限于,家禽、牛肉、猪肉以及羊肉产品。
在一些实施方式中,通过将表面与本发明的组合物接触或者将表面用本发明的组合物处理来消毒牛、羊、鸡、鸭或者其他家禽或者猪尸体的外皮。
因此,在一些实施方式中,食物物品是家禽。“家禽”指的是所有形式的保存、收获或者驯养的为了肉品或者蛋的任意鸟类,包括但不限于,鸡、火鸡、鸵鸟、野味母鸡、雏鸟、珍珠鸟、野鸡、鹌鹑、鸭、鹅、鸸鹋等以及这些鸟类的蛋。家禽包括全部、部分、经过加工的、烧煮过的或者未加工的家禽,且包括所有形式的家禽肉、副产品和次要产品。所述家禽肉包括瘦肉、肥肉、器官、皮、骨、体液以及形成动物的类似组分。动物肉的形式包含,例如,动物肉的全部或者部分,单独或者与其他成分结合。典型的形式包括,例如,加工过的家禽肉,诸如腌家禽肉、部分和成形产品、切碎的产品、精剁的产品和完整的产品。
在一些实施方式中,所述物品是食物加工表面。“食物加工表面”指的是,工具(例如,刀、刀片)、机器、设备、容器、包装、衣服(例如,手套、靴子)、结构、建筑等的任意表面,或者类似的食物收获、传输、加工、制备或者储存活动中使用或者存在的表面。所述表面的例子包括但不限于,用于加工食物中使用的切块、罐装或者运输设备的表面;用于加工或者容纳食物中使用的器具、碟、洗洁具、容器的表面),以及存在于食物加工环境中的建筑表面(例如,地板、墙、天花板)或者建筑固定装置。要消毒的食物加工表面或者环境还可以是无菌包装、食物冷冻和冷却剂、洗洁具、食物抗腐坏空气循环系统、热烫机、食物包装材料、切割板添加剂、第三水槽、饮品冷却器和加热器、肉品冷却或烫洗水、冷却塔和非水性-低水性食物制备润滑剂、油以及淋洗添加剂。
在一些实施方式中,所述物品是清洗水或者食物加工水。术语“食物加工水”包含用于食物以及食物产品的运输、加工和/或清洗中的任意水介质。食物加工或者运输水包括生产运输水(例如,水槽中、管道传输、切割器、切块器、热烫机、蒸器系统、以及清洗器等)、用于食物运输线的带喷洒水、洗靴和洗手浸锅水、以及第三水槽清洗水等。
在一些实施方式中,要被处理的物品是再循环水。可以加入或者使用充分量的根据本发明的组合物,即使一定量的所述根据本发明的组合物被已经存在的有机符合或微生物消耗掉之后,也能提供有效的抗微生物作用。也可以在循环时被渗滤、过滤、稀释或者清洁所述再循环水。可以监测过氧乙酸和乳酸的水平以保证在再循环水中维持充分的浓度。因此,可以将根据本发明的组合物的浓缩物加入到再循环水中以维持本文中前述的根据本发明的组合物的过氧乙酸和2-羟基有机酸的浓度。
“农业”物品或者表面,包括但不限于,“牲畜”物品或表面,其包含物饲料、动物水站和围栏、动物住舱(例如,围圈、笼子和畜栏)、动物牲畜诊所(例如,手术或者治疗区域)、动物研究装置以及动物手术区域等。
术语“基本不含”指的是存在于溶液中的提及的化合物或者物质的水平小于约300重量ppm,优选小于约150重量ppm,更优选小于约50重量ppm,且最优选小于约10或者甚至1重量ppm。
本发明组合物
因此,在第一个方面,本发明的提供了水溶液或凝胶,所述水溶液或凝胶包含i)化学式为RC(O)OOH的有机过酸,其中R是甲基、乙基、正丙基或者仲丙基;ii)选自酒石酸、柠檬酸、苹果酸、扁桃酸和乳酸的2-羟基有机酸;iii)水;以及可任选地iv)阴离子表面活性剂,其中所述水溶液的pH为2.5至6.0。在一些实施方式中,pH为2.5至3.5、2.5至4.0、2.7至3.5、2.5至5.0、3.0至4.0、3.0至5.0、3.0至6.0或者3.5至4.5。根据本发明的组合物可任选地含有其他抗微生物成分或者基本不含或者基本上不含其他抗微生物成分。
用于本发明水溶液的合适的2-羟基有机酸是酒石酸、柠檬酸、苹果酸、扁桃酸和乳酸(例如,2-羟基丙酸)。示例性2-羟基有机酸是乳酸。可以使用任意上述2-羟基有机酸中的两仲或更多的组合(例如,乳酸+柠檬酸;乳酸+酒石酸;乳酸+苹果酸;乳酸+扁桃酸;)。
因此根据本发明的消毒组合物包含i)化学式为RC(O)OOH的有机过酸,其中R是甲基、乙基、正丙基或者仲丙基;ii)选自酒石酸、柠檬酸、苹果酸、扁桃酸和乳酸的2-羟基有机酸;iii)水;且pH为2.5至7.8(包括端值),其中过酸的浓度为40至250ppm(重量/重量)(包括端值),且2-羟基有机酸的浓度为0.1至1%(重量/重量)(包括端值)。在上述任意的其他实施方式中,组合物按重量的主要成分是水。在一些实施方式中,根据本发明的组合物至少50重量%、60重量%、70重量%、80重量%、90重量%、95重量%、98重量%或者99重量%是水。
在一些实施方式中,所述过酸是过氧乙酸,所述有机酸是乳酸、所述阴离子表面活性剂是月桂基硫酸钠。在其他实施方式中,组合物中过酸的浓度是3-100ppm(重量/重量),溶液中2-羟基有机酸的浓度是0.1%至2%(重量/重量);且pH在2.5和5.0之间。在另一个实施方式中,过酸的浓度是5-100ppm(重量/重量),2-羟基有机酸的浓度是0.1%至2%(重量/重量)。
在另一个实施方式中,对于本发明的水性组合物,组合物中过酸的浓度为约60至80ppm(重量/重量),溶液中2-羟基有机酸的浓度为约0.2%至1.25%(重量/重量);且pH在约2.8至4.2之间或者3.8至4.2之间,包括端值。
在一些实施方式中,组合物中过酸的浓度可以是3-100ppm(重量/重量),组合物中2-羟基有机酸的浓度可以是0.1%至2%(重量/重量);且pH在2.5和5.0之间。在另一个实施方式中,过酸的浓度是50-100ppm(重量/重量),2-羟基有机酸的浓度是0.1%至1%(重量/重量)。在另一个实施方式中,所述过酸是过氧乙酸,且所述2-羟基有机酸是乳酸(例如,L(+)-乳酸)。在其他实施方式中,过酸的浓度为60至90ppm或者70至80ppm。在所述的另一个实施方式中,乳酸的浓度为0.1-0.8%或者0.2-0.4%(重量/重量)。
在一个特别优选的实施方式中,本发明提供了组合物,所述组合物包含或者基本由过氧乙酸和乳酸(例如,L(+)-乳酸)水性组合物组成,pH为约2.5至6.0,更优选地pH在2.8至4.2或者3.8至4.2之间,包括端值,其中一定量的组合物还包含过氧化氢和乙酸且所述组合物基本上不含任意表面活性剂。
在一些实施方式中,水性溶液基本上不含任意除了L-(+)-乳酸之外的乳酸的同分异构体。在上述任意另一个实施方式中,所述组合物中过酸(例如,过氧乙酸)的浓度是30至300ppm(重量/重量);50至200ppm(重量/重量);60至160ppm(重量/重量);120至160ppm(重量/重量)或者140至160ppm(重量/重量);且所述溶液中2-羟基-有机酸(例如,乳酸)的浓度选自0.1%to 5%(重量/重量)、0.1%至2%、0.2%至1%、0.2%至0.6%、或者0.1%至0.5%、或者约2%、3%、或者4%;且pH在2.5和6.0、2.5至5.0、2.8和3.2、2.5和3.5或者2.6和3.2之间。在上述的其他实施方式中,溶液于要消毒的物品的接触10、20或者30秒至2分钟,或者约10、20、30或者40秒。在另一个实施方式中,过酸的浓度是30-100ppm(重量/重量),2-羟基有机酸的浓度是0.3%至2.0%(重量/重量)。在特别优选的实施方式中,过酸的浓度是70-80ppm(重量/重量),2-羟基有机酸的浓度是0.2%至0.4%(重量/重量)。在上述的任意的其他实施方式中,组合物的温度为35°F至45°F或者为环境温度。这些水性组合物可以不含或者基本上不含表面活性剂,所述表面活性剂包括非离子型表面活性剂、阳离子型表面活性剂或者阴离子型表面活性剂中的任意或者全部。通常,在组合物中可能存在1至20ppm、5至15ppm或者7至12ppm的低水平的过氧化氢。在一些实施方式中,从过氧化氢形成的或者存在于水性组合物中的2-羟基有机酸的任意过酸可以以小于1/10、1/5、1/20或者1/50的量存在,所述量对应于溶液中的2-羟基有机酸。在上述的优选的实施方式中,所述过酸是过氧乙酸且所述2-羟基有机酸选自酒石酸、柠檬酸、苹果酸、扁桃酸和乳酸中的一种或多种。在上述任意的特别优选的实施方式中,所述2-羟基有机酸是乳酸。
在根据本发明的组合物中,还可以任选地存在催化剂,加入所述催化剂以加快有机过酸达到平衡的速率。常规的催化剂是强酸,如硫酸、磺酸、磷酸和膦酸。当稀释过酸组合物以产生所希望的过酸水平时,也可以稀释催化剂。低水平硫酸的存在,例如浓度范围为约1ppm至约50ppm,不对消毒组合物的特性有负面作用。
可任选地,本发明的任意溶液还可以包含试剂以降低或者抑制在使用组合物或者组合物与物品接触时的起泡或者发泡。根据本发明的组合物还可以基本不含任意非离子型、阳离子型和/或阴离子型表面活性剂和/或任意增稠剂。
根据本发明的组合物还可以包含着色剂以有助于物品上溶液的检测。
如果本发明的水性组合物中加入了阴离子型表面活性剂,则它们优选选自现有技术中已知的食品安全的材料,C6-18烷基硫酸盐和/或磺酸盐(例如,月桂基硫酸钠或月桂基硫酸钾)及其混合物。为了高抗微生物效力和可口性,烷基硫酸盐是优选的,特别是钠盐和/或钾盐。十二烷基硫酸钠或者月桂基硫酸钠,是特别优选的阴离子型表面活性剂。
在一些实施方式中,组合物包含氧化胺,所述氧化胺与过氧羧酸的摩尔比大于或等于1。许多过氧羧酸组合物展现出刺鼻的、恼人的或者难以接受的气味。可以通过向过氧羧酸中加入氧化胺来降低该难以接受的气味。可以在氧化胺的存在下制备所述过氧羧酸,或者可以在形成过氧羧酸之后加入氧化胺。在一个实施方式中,所述氧化胺可以用于食品中,或者用于对食品加工设备或材料进行清洁或消毒。在一个实施方式中,所述氧化胺可用于健康护理环境中。在一个实施方式中,所述氧化胺是无毒性的。在一个实施方式中,可以根据诸如食品药物管理局的政府机关的指南来使用所述氧化胺,而不对设备贴负面标签,例如贴骷髅头的标签等。优选的氧化胺包括辛基氧化胺(例如,辛基二甲基氧化胺)、以及月桂基二甲基氧化胺等。或者,可以在对之前被本发明的组合物处理过的物品单独使用氧化胺。在这些实施方式中,所述氧化胺优选是水溶液的。
通常以有效降低过氧羧酸气味的量存在所述氧化胺。合适的氧化胺水平包括氧化胺与过氧羧酸的摩尔比大于或等于1。在一个实施方式中,所述摩尔比大于或等于2。在一个实施方式中,所述摩尔比大于或等于3。在一个实施方式中,所述摩尔比是2至5。在一个实施方式中,所述摩尔比是3至5。氧化辛基二甲基胺的分子量约为过氧羧酸的3倍(例如2.7倍),基于此(参见2009年11月24日授予的美国专利第7,622,606号,为了合适的氧化胺的目的其通过引用结合入本文)可以计算出可适用的重量比。
示例性的氧化胺是化学其中R1、R2和R3独立地选自具有1-18个碳原子和芳族基团等的饱和或不包含、直链或支链基团,且可任选地含有O、N或者P作为杂原子或者聚烷氧基基团。所述氧化胺的例子包括但不限于:烷基二甲基氧化胺、二烷基甲基氧化胺、烷基二烷氧基氧化胺、二烷基烷氧基氧化胺、二烷基乙醚氧化胺和二烷氧基乙醚氧化胺。在一个实施方式中,R1是具有4-18个碳原子的烷基基团而R2和R3是具有1-18个碳原子的烷基基团。在一个实施方式中,R1是具有6-10个碳原子的烷基基团而R2和R3是具有1-2个碳原子的烷基基团。在一个实施方式中,R1是具有8个碳原子的烷基基团(辛基基团)而R2和R3是具有1-2个碳原子的烷基基团。在一个实施方式中,R1是具有12个碳原子的烷基基团(月桂基基团)而R2和R3是具有具有1-2个碳原子的烷基基团。在一些实施方式中,所述氧化胺是辛基二甲基氧化胺、肉豆蔻基二甲基氧化胺、二癸基甲基氧化胺、氧化甲基吗啉、十四烷基二乙氧基氧化胺或者月桂基二甲基氧化胺。
因此,在一些实施方式中,所述过酸是过氧乙酸,所述有机酸是乳酸、所述阴离子表面活性剂是月桂基硫酸钠。在其他实施方式中,组合物中过酸的浓度是3-100ppm(重量/重量),组合物中2-羟基有机酸的浓度是0.1%至2%(重量/重量);且组合物中阴离子型表面活性剂的浓度是10至2500ppm,pH在2.5和5.0之间。在另一个实施方式中,过酸的浓度是5-100ppm(重量/重量),2-羟基有机酸的浓度是0.1%至2%(重量/重量),阴离子型表面活性剂的浓度是50至400ppm。
通常,水性组合物中过氧化氢的浓度比过酸的浓度低5倍至10倍,且其存在可以反映过酸与相应算和过氧化氢的平衡或互相转化。例如,取决于过酸的选择和浓度,过氧化氢的浓度可以小于5ppm、10ppm或者20ppm。因此,水性组合物中过氧化氢的浓度通常比过酸的浓度小得多。
因此,在一些实施方式中,本发明提供了包含i)化学式为RC(O)OOH的有机过酸,其中R是甲基、乙基、正丙基或者仲丙基;ii)选自酒石酸、柠檬酸、苹果酸、扁桃酸和乳酸的2-羟基有机酸;以及,可任选的iii)阴离子型表面活性剂的水性组合物;其中所述水性组合物的pH为2.5至6.0、4.0至6.0、3.5至4.5、3.0至5.0、3.6至4.2、2.5至5.0、2.5至4.5、2.5至3.5、2.7至3.5、3.6至4.6、2.8至3.2,包括端值,或者约为3.0(例如,3.0+/-0.2;3.0+/-0.3);且所述过酸的浓度为40至250ppm(重量/重量),包括端值,且2-羟基有机酸的浓度为0.1至1%(重量/重量),包括端值。在其他实施方式中,水性组合物具有过酸和2-羟基有机酸,所述过酸是过氧乙酸,所述2-羟基有机酸是L-(+)-乳酸。在另一个实施方式中,组合物中过氧乙酸的浓度是50至100ppm(重量/重量),溶液中乳酸的浓度是0.1%至0.6%(重量/重量)。优选的水性组合物具有浓度为60至80ppm(重量/重量)的过氧乙酸和浓度为0.1%至0.4%(重量/重量)的乳酸。在上述任意的其他实施方式中,pH落在2.5至4.5、2.8至3.2、2.5至5.0、和2.7至3.5的范围内。在上述任意的其他实施方式中,组合物的温度为35°F至45°F或者为环境温度。这些水性组合物可以基本上不含表面活性剂,所述表面活性剂包括非离子型表面活性剂、阳离子型表面活性剂或者阴离子型表面活性剂中的任意或者全部。通常,在组合物中可能存在1至20ppm、5至15ppm或者7至12ppm的低水平的过氧化氢。在一些实施方式中,从水性组合物形成的或者存在于水性组合物中的过氧2-羟基有机酸可以以小于1/10、1/5、1/20或者1/50的量存在,所述量对应于溶液中的2-羟基有机酸。
在一些实施方式中,通过向过酸的溶液中加入基本上不含过氧化氢的2-羟基有机酸或者向基本上不含过氧化氢的2-羟基有机酸的溶液中加入过酸溶液来形成水性组合物。所得的混合物可以是如上所述的浓缩物或者预混物,或者在浓缩适合与本文中所述的物品接触的消毒剂中。在其他实施方式中,基本上不含任意过氧化氢的有机酸和过酸分开加入到用于清洗或者消毒物品的水性流体中。在一些实施方式中,当使用组合物来接触物品时,通过监测pH和/或过酸浓度和/或2-羟基有机酸的浓度或者组合物的氧化还原点位中的一个或多个,来维持所使用的组合物中过酸的pH和/或浓度以及2-羟基有机酸的浓度,并加入浓缩或者预混的水性溶液来维持水溶液中的pH以及过酸和乳酸的浓度。
具体地,本发明的任意上述的组合物还可以包含试剂以降低或者抑制在使用组合物或者组合物与物品接触时溶液的起泡或者发泡。根据本发明的溶液还可以基本不含任意非离子型和/或阳离子型表面活性剂和/或任意增稠剂。
在另一个实施方式中,对于本发明的水性组合物,组合物中过酸的浓度为约60至80ppm(重量/重量),组合物中2-羟基有机酸的浓度为约0.2%至1.25%(重量/重量);且组合物中阴离子型表面活性剂的浓度约为150至200ppm(重量/重量),且pH在约3.8至4.2之间,包括端值或者3.8至4.2之间,包括端值。
根据本发明的水性组合物还可任选地包含螯合剂,所述螯合剂螯合了催化过氧化氢沉淀的金属。这些试剂包括,但不限于,能螯合二价金属阳离子的有机膦酸以及所述酸的水溶性盐。常用的螯合掩蔽剂是1-羟基亚乙基-1,1-二膦酸。在使用时,消毒剂组合物中存在的螯合掩蔽剂通常被稀释,从而最小化它们在使用时的效果。具体地,本发明的水性消毒剂组合物可任选地包含螯合镁或者钙的试剂。
不希望受理论的限制,可任选的阴离子型表面活性剂的存在可以起降低表面张力和水性组合物粘性的作用,并促进溶液在物品表面的铺展。通过促进在食物表面的铺展,特别地当所述表面是层、皱曲时,低粘性提升了处理的完全性。低粘性还提升了清洗特性以及任意残留物的干燥速度。
在一些实施方式中,根据实施例中所述的任意方法(例如,使用附着于莴苣叶上的大肠杆菌或者李斯特病原体的替代物),水性组合物可以减少至少2个对数单位,更优选至少3个对数单位,更优选至少4个对数单位的物品表面上的微生物污染。在其他实施方式中,根据实施例中所述的任意方法,所述方法抑制了食品的腐坏或者延长了食品10%、20%、30、40%、20至50%或1、2、3、4或者5天的储藏期限。
可以以用水稀释的预混物或者浓缩物来提供组合物以实现消毒溶液用于与本文中所述的物品进行接触。预期所述预混物或者浓缩物在使用前需要用4至200倍、10至100倍、10至50倍、10至25倍、4至10倍的水稀释(例如,约5、10、20、40、50、100倍稀释)。
术语“基本上不含”通常指的是不存在提及的物质或者以不会实质上改变提及的材料的特性的次要成分存在。对于过氧化氢而言,基本上不含过氧化氢的2-羟基有机酸溶液可以是没有过氧化氢的或者含有的过氧化氢的量小于0.1ppm(重量/重量)。对于过氧2-羟基有机酸,如果在消毒溶液中不存在2-羟基有机酸或者以小于1/10、1/20、1/40或者1/100的量存在相应的2-羟基有机酸或者仅以作为通过包含过氧化氢的溶液中的2-羟基有机酸与化学式为RC(O)OOH的有机过酸的反应首先形成的反应产物存在,则消毒溶液基本上不含2-羟基有机酸。因此,在一些实施方式中,消毒组合物或者用于制备消毒组合物的2-羟基有机酸溶液基本上不含2-羟基有机酸的过酸。
本发明的灭菌或者消毒组合物可以是各种形式的,包括溶液、悬浮液、凝胶、泡沫、雾、喷雾和抹布(wipes)。其他类型的产品包括灭菌泡沫、霜、以及摩丝等,且组合物包含有机和无机装填材料,例如乳液、洗液、霜以及糊料等。还可以以灭菌雾或者灭菌薄雾来使用灭菌组合物。本组合物可以制备成即用组合物或者在可以在使用前稀释的浓缩物。根据产品的性质,各种组合物还可以包含香料。例如,对于厨房清洁抹布需要使用松木或者柠檬香料,因为对于许多消费者它们似乎与清洁度有关。此外,基于类似或者其他的原因,凝胶或者气溶胶也可以是有香料的。在一些实施方式中,以重量计,组合物的主要组分是水。在一些实施方式中,根据本发明的组合物至少50重量%、60重量%、70重量%、80重量%、90重量%、95重量%、98重量%或者99重量%是水。
在本发明的一个实施方式中,灭菌组合物用于制备灭菌抹布。本发明的灭菌抹布可以用于清洁各种硬的和其他表面,包括人类的手和皮肤、医疗器械、工作台面、水槽、地板、墙、窗户等。可以用各种织物来制备本发明的抹布。鉴于本发明的目的,所述织物可以是包括衣服、纸以及纺织和无纺材料。可以用诸如人造纤维、尼龙或者棉花、亚麻布及其组合物的适合材料来制备所述纺织或无纺物。无纺物的例子如美国专利第3,786,615号;4,395,454号;以及4,199,322号中所述,其通过引用结合入本文。可以用本领域已知的任意方法用灭菌溶液浸渍所述织物或者纸。抹布可以是被单独包装或者本领域已知的任意方式包装,包括单独泡罩包装或者缠绕或层叠多包装。
在另一个实施方式中,本发明的灭菌组合物形成凝胶或者凝胶状消毒组合物。除了灭菌组合物,本发明的凝胶消毒剂可以包含增稠剂或者胶凝剂,其中“增稠剂”和“胶凝剂”可互换使用。鉴于本发明的目的,尽管不是用来对这些范围进行限制,术语“凝胶”或者“凝胶状”消毒组合物指的是粘度为约1000厘泊至100000厘泊的灭菌液体物质、或者在另一个实施方式中为2000厘泊至50000厘泊的灭菌液体物质。手部凝胶比用于工业清洁或者灭菌目的的凝胶的粘度可能要小得多。凝胶或者增稠剂的例子包括但不限于,诸如瓜尔胶和瓜尔胶衍生物的天然胶、粘土、熔凝二氧化硅、合成聚合物、卡波姆、纤维素、纤维素衍生物、藻胶、藻胶衍生物、水溶性C8-C20醇、丙烯酸酯均聚物、丙烯酸酯共聚物、角叉菜胶、油、蜡、芦荟凝胶及其混合物等。凝胶剂可以以约0.1重量%至50重量%的量的凝胶状组合物存在于凝胶状消毒组合物中。在另一个实施方式中,凝胶剂以0.25重量%至10重量%的量的凝胶状组合物存在。所述凝胶剂的量可以取决于各种因素,包括所需的粘度和凝胶剂。发现凝胶状消毒剂具有多种应用。在一个具体的实施方式中,灭菌组合物可以与天然芦荟凝胶结合以形成灭菌芦荟制剂。在可能发生或将要发生皮肤接触处使用所述制剂。
在另一个实施方式中,可以以灭菌泡沫或者灭菌泡沫组合物来提供本发明的灭菌组合物。所述灭菌泡沫或者灭菌泡沫组合物包含根据本发明的灭菌或消毒组合物以及起泡剂。取决于所希望的应用和所得灭菌泡沫的特性,可以使用本领域已知的任意起泡剂。
在另一个实施方式中,本发明的灭菌或者消毒组合物可以是气溶胶或者雾的形式。起雾指的是使得灭菌剂雾化的方法。灭菌剂的气溶胶颗粒可以在空气中悬浮一段时间以对空气本身和表面进行灭菌,所述表面包括无法达到的表面或者结构的部分,例如通风口的内表面。灭菌剂的雾化颗粒的颗粒尺寸可以为约5微米至约200微米。在另一个实施方式中,所述雾化颗粒的颗粒尺寸可以为约20微米至约微米。
作为溶液,根据本发明的消毒组合物可以用作诸如仪器的物体的液体分散浴或者作为喷雾用于较小可移动物体。
容器和试剂盒
在一些实施方式中,本发明提供了包含根据本发明的水性消毒溶液的试剂盒及其用于污染物或者如上所述的其他物品的处理的使用说明书。在其他一些实施方式中,所述试剂盒包含过酸溶液的第一部分,所述过酸溶液是平衡或者接近平衡的。通常,提供的所述溶液是即用的或者包含约5重量%至约35重量%的过酸,例如过氧乙酸或者过酸混合物,并具有关于在使用前应该用多少水稀释的使用说明书。所述试剂盒可任选地包含保温碗和过滤器。可以以喷雾瓶来提供即用制剂。在其他实施方式中,试剂盒可以以一个容器中的浓缩物与可任选地包含一定量即用制剂的再填充瓶来提供水性消毒溶液。该试剂盒包含关于当用水提高浓度时所使用的合适的稀释倍数的指导。通常,浓度是即用制剂的4、5、6、8、10或者20倍。所述试剂盒特别适合消费者使用。
发明方法
在一个方面,本发明提高了消毒物品的方法,所述方法包括将物品与根据本发明的水性消毒溶液接触。可以用对于本领域技术人员已知的任意合适的方法来将溶液与物品接触或者将溶液施加于物品。例如,可以以保证要消毒的表面与消毒溶液之间良好接触的任意方法来施加所述溶液。所述方法包括浸浴、清洗、涂覆、刷、浸渍、浸没、擦拭、薄雾、喷雾和雾化。可以重复这些步骤以保证全面的接触。一旦施加,在足以保证所需的消毒作用的停留时间之后(例如,至少为2、3、4、5、6、7或者8对数倍数去除微生物污染),可以通过干燥、离心和/或沥干和/或用适用于食物的水(例如,饮用水)来漂洗或清洗物品以从物品表面物理去除溶液。可以以任意顺序来进行这些去除步骤的任意结合。当2-羟基有机酸和月桂基硫酸钠以GRAS的量存在是,所述漂洗不是必须的。特别地,优选使用挥发性过酸,因此其在干燥时在物品上产生很少残留物。
在一些实施方式中,对植物或者农产品进行处理以防止物品的腐烂或腐坏。因此,预期本文中所述的方法适用于防止或者抑制各种细菌对植物的感染。假单胞菌、根瘤菌、肠杆菌、棒状杆菌以及链霉菌都是可以被本发明控制的经济上重要的植物病原体。可以被本文周姑娘所述方法有效抑制的具体的植物病原体的非限制性例子包括:黄单胞菌种,例如,野油菜黄单胞菌野油菜致病变种(Xanthomonas campestris pv.oryzae);假单胞菌种,例如,丁香假单胞菌黄瓜致病变种(Pseudomonas syringae pv.lachrymans);以及欧文氏菌种,例如解淀粉欧文氏菌。还预期本文中所述的防止或者抑制细菌感染植物的方法还可以包括一起或者单独使用诸如溴硝丙二醇、双氯酚、氯定、福美镍、春雷霉素、辛噻酮、呋喃羧酸、土霉素、噻菌灵、链霉素、叶枯酞、硫酸铜、以及可以单独或者一起配制的其它铜制剂的抗微生物剂。
本文中所述的防止或者抑制细菌感染的方法可以用于治疗所有植物与植物的部分。这里所理解的植物是所有的植物和植物群体,例如希望和不希望的野生植物或者作物(包括天然存在的作物)。所述作物可以是可以通过传统育种和优化方法或者通过生物技术基因工程方法或者这些方法的结合得到的植物,包含转基因植物和受到或者不受到品种财产权保护的植物品种。植物的部分应理解为所有地上和地下部分和植物器官,例如芽、叶、花和根,可能提到的例子是叶、针状叶、茎干、树干、花、果体、水果和种子以及根、块茎和根状茎。植物的部分还包含已收割植物以及植物与生殖繁殖材料,例如,秧苗、块茎、根状茎、插条和种子。
根据常规处理方法,用根据本发明的活性组合物处理植物以及植物的部分是直接进行或者通过作用在它们周围、栖息地或者储存空间来进行的,例如通过浸渍、喷雾、蒸发、雾化、撒施、铺展。
在一些实施方式中,对物品进行处理以防止被微生物感染或腐坏。
根据过酸(例如过氧乙酸)、2-羟基有机酸(例如,L-(+)-乳酸)以及表面活性剂(如果有的话)的浓度改变停留时间。然而,通常预期物品的表面可以与水性消毒溶液接触约10秒至约10分钟的停留时间。更优选地,所述停留时间为约20秒至约1、2或者4分钟。可以根据温度以及过酸和2-羟基有机酸的浓度改变停留时间。较低的温度和浓度需要较长的接触时间,本领域的技术人员可以轻易地凭经验来确定。
水性消毒溶液/漂洗溶液施加的温度应该根据物品的耐热性。可以在适合液体水的温度下有效地施加所述消毒溶液。通常,温度可以是环境温度或者室温(例如,20°C至35°C)。然而,可以根据要处理的物品的耐热性使用其他的温度,需要使用低温以保留物品的新鲜度或者避免腐坏,或者根据加入了过酸和/或2-羟基有机酸的水源的不可调节或者可调节温度使用其他的温度。
在一些实施方式中,接触减少了至少3或4个对数单位,更优选至少5个对数单位,更优选至少6、7或8个对数单位的物品表面上的微生物污染物。污染物可以是人类病原体(例如,大肠杆菌、大肠杆菌菌株O157H7、单核细胞增生李斯特菌(Listeria monocytogenes)、沙门氏菌)或者常见于物品表面上的自身微生物。
根据本发明的水性消毒溶液可以用于家用和商业用途的物品上。
在一些实施方式中,要被处理减少的微生物污染物是人类病原体(例如,肠毒素菌),包括但不限于细菌(例如大肠杆菌O157H7、单核细胞增生李斯特菌(Listeria monocytogenes)、沙门氏菌)、病毒、真菌或者霉菌。
还令人惊讶地发现,水性消毒组合物中过酸(例如,过氧乙酸)与2-羟基有机酸(例如L-(+)-乳酸)的共同配制在使用时提供了特性有效且长效的消毒组合物。当连续使用处理多个物品时,需要对组合物进行更新或者用另外的过酸和2-羟基有机酸补充组合物以维持过酸的浓度在约60至80ppm的范围内,并维持乳酸的浓度为0.2至0.4%,或者约2.5%。
在一些实施方式中,以水性预混混合物(例如,约5-200倍浓度,5倍、10倍、20倍、40倍、50倍或者100倍的浓度)提供消毒组合物以加入到要与物品接触的水中。在一些实施方式中,通过基于实际测量测得的或者历史消费数据的清洗溶液中过酸和/或2-羟基有机酸的浓度,加入预混物或者浓缩物来调节过酸和/或2-羟基有机酸的浓度以维持它们在清洗溶液中的浓度。
在商业应用中,在一些实施方式中,物品被输送到消毒溶液,其中所述物品通过在溶液中浸没与消毒溶液接触。可以产生气泡以促进接触和/或预混物的混合。然后将物品从消毒溶液中移除,可任选地通过喷洒不含过酸与2-羟基有机酸的水和/或浸没在不含过酸与2-羟基有机酸的水中来清洗所述物品。还可以通过摇动、离心、空气干燥或者用毛巾擦拭所述物品来去除清洗的水。
可以使用本发明的减少气味的组合物来较少病原体微生物种群,例如人类、以及动物等的病原体。所述减少气味组合物可以展现出抗病原体的活性,例如真菌、霉菌、细菌、孢子以及病毒,如细小病毒、柯萨奇病毒、疱疹病毒、金黄色葡萄球菌、大肠杆菌、链球菌(Streplococci)、军团菌(Legionella)或者分枝杆菌(mycobacteria)等。所述病原体会引起各种疾病和症状,包括足癣、毛蹄疣病、乳腺炎或者其他哺乳动物乳汁疾病以及肺结核等。此外,本发明的组合物可以杀死通过水、空气或者培养基表面转移而传播的病原体微生物。包含所述组合物的过滤器可以减少空气和液体中微生物种群。
可以通过任意传统方法或设备来施加浓缩物或者根据本发明的减少气味的过氧羧酸组合物的浓缩物或者将所述浓缩物或者根据本发明的减少气味的过氧羧酸组合物的浓缩物与物品接触,以将抗微生物或者清洁组合物施加于目标。例如,所述目标可以用减少气味的组合物或者用由减少气味的组合物制得的组合物来擦拭、喷洒和/或浸没在减少气味的组合物或者用由减少气味的组合物制得的组合物中。可以人工或者通过机器来接触。
本方法需要组合物与物品的最小接触时间以产生显著的抗微生物作用。可以根据使用的组合物的浓度、使用的组合物的施加方法、使用的组合物的温度、物品上污染物的量、物品上微生物的数量、环境以及所希望的消毒程度来改变接触时间。优选地,接触时间至少为约5秒至约15秒。
在一个实施方式中,使用压力喷涂来施加根据本发明的组合物。当在物品上应用喷涂组合物时,可以用机械动作来去除物品的表面,优选为搅动、擦、刷等。所述搅动可以是通过物品的物理清洗、通过压力下喷涂组合物的动作、通过超声或者其他的方法。搅动增加了杀死微生物的喷涂组合物的功效,或许是由于使组合物更好地与含有微生物的裂缝或者小菌落接触导致的。在应用前,对于不耐热物品可以将喷涂组合物冷却到2至5°C、2至10°C,或者对于耐热物品将喷涂组合物加热到约15至20°C,优选为约20至60°C的温度以增加功效。
可以自动(如生产线的情况下)或者人工进行喷涂组合物。可以使用多喷头或者其他喷涂方法以保证完全接触。所述喷头可以具有任意可用的喷头图案。可以使用喷涂室以基本上将喷涂的组合物限制在室内。例如,可以将生产线物品通过入口进入到室中,其中所述物品的所有外表面都发生了接触。在数次表面排水之后,然后可以将物品以完全处理过的形式离开室。喷涂室可以使用蒸汽喷嘴施加抗根据本发明的微生物或者消毒组合物。这些蒸汽喷嘴可以与冷却水结合使用以保证处理以所希望的温度达到物品,且所述物品没有被喷涂的温度发生不希望的改变(例如,烧煮)。
在一些实施方式中,将所述物品浸没到含有一定量根据本发明的组合物的罐中。优选搅拌所述组合物以增加组合物的功效和组合物降低伴随家禽产品的微生物的速度。可以通过传统方法,包括超声、用经过组合物的空气泡进行通气,通过机械方法,例如用过滤器、桨叶、刷子、泵驱动液体喷嘴搅动,或者这些方法的结合来进行搅拌。在一些实施方式中,可以加热消毒组合物以增加溶液杀死微生物的功效。
在本发明的另一个实施方式中,物品可以用发泡形式的根据本发明的组合物来处理。可以事先或者在使用时通过将发泡表面活性剂与其他成分混合制得根据本发明的组合物来制备泡沫。所述发泡表面活性剂本质上可以是非离子型的、阴离子型的或者阳离子型的。可用的表面活性剂的例子包括但不限于:氧化胺、碱金属硫酸盐、烷基醚硫酸盐、磺酸盐、季铵化合物、烷基肌氨酸、醇乙氧基化物、醇乙氧基化羧酸盐、甜菜碱以及烷基酰胺。通常在与消毒溶液使用时混合所述发泡表面活性剂。使用的发泡剂的溶液水平为约50ppm至约2.0重量%。在使用时,可以将压缩空气注入到混合物中,然后将所述混合物通过诸如罐发泡器或者安装吸气墙的发泡器的泡沫应用装置施加到物品上。
在本发明的另一个实施方式中,物品可以用增稠或者凝胶形式的组合物来处理,所述组合物可以附着到表面。组合物可以用现有技术增稠或者凝胶,例如:黄原胶、聚合增稠剂、或者纤维素增稠剂等。还可以使用诸如氧化胺和阴离子抗衡离子的棒状胶束形成系统。在使用时,增稠剂或者凝胶形成剂可以用于浓缩产品或者与消毒溶液混合使用。所述增稠剂或者凝胶形成剂的通常使用水平范围为约100ppm至约0.1重量%或者约0.1重量%至1重量%或者1重量%至10重量%。在增稠或者凝胶状态的消毒溶液或者凝胶仍与物品长时间接触时,从而增加了抗微生物功效。
以下实施例是为了说明而非限制本发明。
实施例
实施例1.本实施例说明了根据本发明的水性消毒溶液的使用。如图1至16所示,根据本发明的溶液优选地从各种物品的表面去除微生物,抑制被处理物品上自身微生物的生长,并且可以从物品的表面去除典型病原体。还显示本发明的方法和组合物显著提升了可腐坏物品的储藏期限并显著延缓了可腐坏物品的腐烂。所述发现扩展至诸如细菌、酵母和霉菌的各种微生物。
A.用于储藏期限研究的标准操作过程
该方法可以用于测定被消毒溶液,通常且特别地,是被根据本发明的消毒溶液处理过的产物的储藏期限。
制备
将有75%的八个20加仑的容器冷却到~45°F
在加工前,将十二个用锡箔很好包裹住的5加仑的管高温灭菌至少1天。
1.根据产物的类型,使用相应的OTR管;切割、标记并密封形成袋。将所述袋放置在生物安全柜中的紫外光下达2小时以最小化污染物。
加工
1.在即将使用前配制化学消毒剂。所有的计算基于重量/重量。
2.仅将容器装填至3/4满,以防止在加工时的溢流。
3.将粗产物轻轻地防止在具有盖子的不锈钢篮子中,并装填至3/4满。
4.当篮子浸没在化学消毒剂中开始计时。
5.轻轻地将装填的篮子循环上下30秒。
6.将装有产物的处理过的篮子从装有化学溶液的容器中取出并将其立即转
移到另一个装填有3/4水的容器中清洗。
7.在水中循环上下10次以去除处理过的产物表面上大部分的残留化学品
8.将装有处理过的产物的篮子倒放并轻轻地将内容物倒空到干燥的箱衬垫中。
9.重复步骤‘3’至‘8’直到充满了干燥的箱衬垫为止。闭合干燥衬垫并离心20分钟。
10.将干燥产物从箱衬垫倒空到无菌管中并将干燥的处理过的产物再静置
10-15分钟使得水分与环境平衡以实现与相应的生产装置相同的水分含量。
11.清洁所有的工具、设备和容器
12.对于其他消毒剂处理重复步骤‘1’至‘11’装袋和密封
1.每次用天平称量袋的自重。
2.将目标质量的产物装入袋中
3.用合适的密封机器密封袋子
4.放入45F的盒子中并进行评价:微生物分析、开袋评价(OBE)、感兴趣的合适天数的目测检查。
评价
1.使用用于OBE的合适的形式。
2.目测检查产物并对来自各种化学品的样品的区别进行拍照
a.OBE水分测定-称重叶片的初始质量,将叶片铺展到折叠的纸巾上并通过用手压来吸干干燥以去除外在水分并称重最终重量。
计算:
用作母液的浓缩溶液的体积:
水分差:
差=(M之前)-(M之后)
水分百分比:
3.对于目测检查保证对袋子在第一次分析前贴上标签以在整个储藏期限中采用相同的袋子
4.计数使用系列稀释和铺展镀涂处理的产物的微生物种群数。
5.可以在例如,第1、5、7、9、12和15天时取回用于微生物以及OBE分析的样品。
B.用于抗悬浮细胞测试的标准操作过程
此过程用于测定对于悬浮在液体中微生物的消毒剂的抗微生物活性。
工艺参数和处理
1.温度:45F
2.停留时间:30+/-10秒
pH:3+/-0.3
3.病原体替代物:大肠杆菌K12、英诺克李斯特菌(Listeria innocua)
4.腐坏微生物替代物:荧光假单胞菌(Pseudomonas flourescens)、酿酒
酵母
进行测试
1.将1.00mL的108cfu/g储备培养物转移到含9.00gm测试溶液的测试试管中
2.将混合物涡流15秒
3.停止反应,将1mL处理过的样品转移到9mL巴特菲尔德型(Butterfield)磷酸盐缓冲液中
4.计数通过系列稀释和铺展镀涂的可见残留细胞
5.保证操作温度保持在45+1°F(如果全部测试在室温下进行,仅当化学动力学显著变化时,将一个测试管从冰箱中取出)
C.用于附着细胞激发试验的标准操作过程
可以使用此方法测定对于附着到叶片表面的微生物的消毒剂的抗微生物活性
工艺参数和处理
1.温度:45°F
2.停留时间:45秒
3.pH:3+/-0.3
4.处理:水、氯化水、CS、乳酸、过氧乙酸、16种水平的FE消毒剂(例如,此处为包含过氧乙酸和乳酸的水溶液)
5.测试的产品:长叶莴苣、菠菜、新鲜色拉叶
6.病原体替代物:大肠杆菌K12、英诺克李斯特菌(Listeria innocua)
7.微生物测试:产品叶片上的自身微生物(总有氧平板计数[APC]、酵母和霉菌[YM])
样品制备
1.取3-4片测试产品的叶片并将它们放在6”x 6”x 5”的无菌聚丙烯(PP)篮子中。如果测试产品是长叶莴苣,将长叶莴苣切成2”x 4”的矩形
2.用1-mL人工移液器(pipette-man)取出1.00mL 108cfu/g的储备培养物,并通过点滴小液滴慢慢将接种物点滴到叶子表面。小心不要摇晃PP篮并引起液滴在干燥前落到叶片外面
3.将装着点有菌液叶子(spiked leaves)的篮子静置在运行有风扇(~0.5W.C.)的生物安全柜中1.75小时。
4.将装有点有菌液叶子的篮子从柜中取出并转移到40-45°F的冷却室/冰箱中0.25小时。
点有菌液叶子的处理
1.将装有点有菌液叶子的PP篮放置到含3L 45F水的无菌容器中涡旋45秒
2.通过将处理过的篮子浸渍在45F的自来水中立即清洗10秒
3.将处理过的叶片用无菌钳的方式从篮子中取出并将它们放置到胃托袋(stomacher bag)中
4.对所述胃托袋贴上相应叶片处理的标签
5.对于其他测试的处理重复步骤1至4
处理过的叶片的计数
1.将磷酸盐缓冲液加入到装有处理过的叶片的胃托袋中直至得到10倍的稀释
2.将装有磷酸盐缓冲液和处理过的叶片的袋子消化(stomach)30秒
3.将叶片振荡回磷酸盐缓冲溶液中并重复再次消化30秒
4.从消化样品中去除缓冲液并通过系列稀释和铺展镀涂计数残留细胞
5.对于其他所有处理重复步骤1至4
D.用于制备微生物储备培养物的标准操作过程
此过程用于制备用于悬浮和附着细胞的激发试验的108-109cfu/mL的储备培养物。在测试溶液前计数所述储备培养物的细胞浓度。
1.储备培养物的活化
a.在无菌环境下完成所有过程(例如,在生物安全柜中)
b.通过无菌环的方法从纯储备培养物中取出细胞环。在无菌条件下用10-mL无菌生长介质(肉汤)将所述细胞环转移到测试试管中。
c.重复步骤“b”3次
d.在微生物活化的最佳生长温度下将步骤“b”和“c”的接种试管培育2天
e.步骤“b”至“d”称作第一次转移(1stT)
f.从1stT的测试试管中取回0.1-mL的生长介质,并将其无菌地转移到另一个具有10-mL无菌生长介质的测试试管中
g.通过将50至100-uL的生长介质的样品铺展镀涂到琼脂平板上证实1stT中的试管具有纯培养物
h.将步骤“g”重复2次
i.在选定的最优温度下将板和转移试管2培育两天
j.步骤“f”至“i”称作2ndT
k.用100mL生长介质重复步骤“f”至“i”作为3rd T
l.将从3rd T中得到的锥形培养瓶在冰箱中储存过夜
m.取出步骤“I”中的3rd T瓶并将其等量地转移到4个离心管中
n.将装有纯储备培养物的试管在10000RPM下离心10分钟
o.立即将生长介质倾析出来。在离心管的底部形成细胞团
p.向细胞团加入相同量的无菌去离子水
q.涡流松弛并重悬细胞团
r.重复步骤“n”和“o”两次或更多次
s.为了得到最终的108-109菌落形成单位数/克(cfu/gm)的悬浮细胞培养物,向步骤“r”的细胞团加入1/10初始体积的无菌去离子水
t.将所有重悬细胞培养物固结到一个离心试管中形成最终的悬浮储备培养物
根据本发明的消毒溶液的效果取决于产品表面的微生物的去除。
结果
下表显示了具有与不具有表面活性剂的抗悬浮细胞测试的结果:
下表显示了抗附着细胞测试的结果:
由于使用了根据本发明的水溶液导致了惊人有效的以及显著增加的微生物的去除和对应的产品储藏期限增加的上述结果。
实施例2.下一个实施例证明了2-羟基有机酸(例如,乳酸)的存在显著减少了在处理产品时过氧乙酸的消耗并说明了根据本发明的水性消毒溶液的使用。如下所示,在从各种产物的表面去除微生物时,根据本发明的溶液有效地保留了过氧乙酸。还显示本发明的方法和组合物显著提升了产品的储藏期限并显著延缓了腐烂。所述节约应扩展至诸如细菌、酵母和霉菌的各种微生物。
无表面活性剂20秒停留时间下的抗悬浮细胞测试中与功效有关的协同作用。
实验处理组是自来水、氯化水、FE消毒剂清洗水(FE、FE消毒剂、过氧乙酸和乳酸的溶液,在给定实验的中进一步说明)。实验参数是40至45°F;停留时间是20秒;pH:
水(~7)
氯化水(6.5至7.1)
乳酸(3.8至4.0)
过氧乙酸(6.5至6.8)
FE消毒剂清洗水(2.7至3.2)
微生物替代物是英诺克李斯特菌或者具有链霉素抗性基因的大肠杆菌K-12。
实验方案如下:
1.将1.00mL的~108菌落形成单位数/克(cfu/g)植物乳杆菌(Lactobacillus plantarum)(ATCC 14917)储备培养物转移到含9.00mL的处理测试溶液的测试试管中
2.将混合物涡流15秒
3.停止反应,将1mL处理过的样品转移到9mL巴特菲尔德型(Butterfield)磷酸盐缓冲液中
4.计数通过系列稀释和用1-mL转移铺展镀涂的可见残留细胞
5.保证操作温度保持在40至45°F(如果全部测试在室温下进行,仅当化学动力学显著变化时,将一个测试管从冰箱中取出)
6.将步骤1至5重复两次或更多次
7.用水槽水重复步骤1至6
8.用氯化水重复步骤1至6
9.用各个水平的FE重复步骤1至8
10.用各个水平的乳酸重复步骤1至8
11.用各个水平的过氧乙酸重复步骤1至8
12.用英诺克李斯特菌(ATCC33090)重复步骤1至11
对数减少的估计
1.对数活性是对在灭菌过程中失活微生物的百分数的测量,且定义为对数失活性=Log10(No/NT),其中No是可见微生物的初始流入浓度;NT是存活微生物的浓度。M cfu/g=储备培养基的微生物种群W cfu/g=是“水处理”溶液中的微生物种群而X cfu/g=是“X处理”溶液中的微生物种群,由“X处理”引起的对数减少=Log(w/x)
结果和结论
表2.1.经过氯化清洗水、乳酸清洗水、过氧乙酸清洗水和FE消毒清洗水的悬浮英诺克李斯特菌的对数减少的比较
表2.2.经过氯化清洗水、乳酸(LA)清洗水、过氧乙酸(PA)清洗水和FE消毒清洗水的悬浮植物乳杆菌的对数减少的比较。
对于英诺克李斯特菌和植物乳杆菌,测试FE消毒剂(此处,如上所述是乳酸与过氧乙酸的结合)的对数减少比PA清洗水和LA清洗水要好得多。这清楚地表明了LA与PA结合的协同作用。对于英诺克李斯特菌,具有70ppm PA和2000ppm LA的FE消毒清洗水在20秒的停留时间下提供了~3-log10的减少。通过乳酸与过氧乙酸结合提供的对数减少比不添加乳酸的过氧乙酸要显著地好约2-4倍。
实施例3.下一个实施例比较了对于液体中悬浮的植物病原体的消毒剂效果。
工艺参数和处理
处理:自来水、氯化水、FE消毒清洗水;温度:40至45°F;停留时间:30秒
pH:
水(~7)
氯化水(6.5至7.1)
FE消毒剂清洗水(2.7至3.2)
病原体:
大肠杆菌O157:H7(F4546,F4637,SEA 13B88,TW14359,960218)的5-菌株混合物
单核细胞增生李斯特菌(ATCC 19115,ATCC51414,ATCC15313,FRRB2472(SCOTTA),1838)的5-菌株混合物
沙门氏菌(S.新港(S.Newport)、S.田纳西(S.Tennessee)、S.慕尼黑(S.muenchen)、S古巴(S cubana)、S.圣保罗(S.St.Paul))的5-菌株混合物
储备培养物的活化
1.在生物安全柜中将储备培养物通过一系列无菌转移到最佳生长介质得到培养物的活化
2.从储存的储备培养物中取出小环((~100u L)的纯培养物并将其转移到含10mL分别对于每一种微生物是分别最佳生长介质肉汤的测试试管中,所述最佳生长介质肉汤如美国典型培养物保藏中心(ATCC)或者公开发表的文章所推荐
3.在由ATCC或者公开发表的文章所推荐的最佳生长温度下培育所述培养物直至其到达对数生长相的末端
4.通过划线镀涂或者铺展镀涂来检验转移的培养物的纯度
5.取回1.5-mL步骤3中的培养物肉汤并将其转移到250-mL含150-mL分别对于每一种微生物是最佳生长介质肉汤的锥形瓶中,所述最佳生长介质肉汤如美国典型培养物保藏中心(ATCC)或者公开发表的文章所推荐
6.在由ATCC或者公开发表的文章所推荐的最佳生长温度下培育所述培养物直至其到达对数生长相的末端
7.通过划线镀涂检验转移的培养物的纯度
8.通过1-mL转移的铺展镀涂和系列稀释来计数步骤6的培养物肉汤的浓度
9.在接种之前,将150-MI锥形瓶储备培养物在冷藏温度下冷却1至4小时
接种体的制备和计数
1.将第二(2nd)转移锥形瓶中的150-mL冷却的储备培养物等体积分离到三个50-mL的离心管中(每个50mL)
2.将试管在4°C下以10000转/分钟(RPM)离心15分钟
3.将液体肉汤从每一个离心管中倾析出来,留下细胞团
4.将步骤3中的离心管装入5-mL无菌的0.1%蛋白胨水并涡流以松弛和混合细胞团
5.将所有重悬浮储备培养物倒入到一个离心管中以形成~108菌落形成单位数/克(cfu/gm)的接种体
通过经1-mL转移系列稀释的铺展镀涂,计数并确认步骤‘5’中得到的微生物种群
方法
6.将1.00mL的~108cfu/g大肠杆菌O157:H75-菌株混合物的储备培养物转移到含9.00mL的测试溶液的测试试管中
7.将混合物涡流15秒
8.停止反应,将1mL处理过的样品转移到9mL巴特菲尔德型(Butterfield)磷酸盐缓冲液中
9.计数通过系列稀释和用1-mL转移铺展镀涂的可见残留细胞
10.保证操作温度保持在40至45°F (如果全部测试在室温下进行,仅当化学动力学显著变化时,将一个测试管从冰箱中取出)
11.将步骤1至5重复两次或更多次
12.用水槽水重复步骤1至6
13.用氯化水重复步骤1至6(10ppm活性氯,pH 6.5至7)
14.用另一水平的FE重复步骤1至8
15.用另一单核细胞增生李斯特菌的5-菌株混合物重复步骤1至8
16.用另一沙门氏菌的5-菌株混合物重复步骤1至8
结果和结论
表3.1.比较通过氯化清洗水和测试FE消毒清洗水的悬浮大肠杆菌O157:H7细胞的对数减少。
表3.2.比较通过氯化清洗水和测试FE消毒清洗水的沙门氏菌细胞的对数减少。
表3.3.比较通过氯化清洗水和测试FE消毒清洗水的单核细胞增生李斯特菌细胞的对数减少。
与自来水对照相比,10ppm的氯化水减少的每一种病原体种群为~1-log10。两种浓度的FE消毒剂清洗水的平板计数没有残留菌落,且结果记录为<1.0log10cfu/mL。因此对自来水对照相比,FE消毒剂清洗水对于大肠杆菌O157:H7和沙门氏菌给予了超过7-log10的减少,对于单核细胞增生李斯特菌给予了超过5.2-log10的减少。单核细胞增生李斯特菌的减少较低并不表示FE消毒剂对于该病原体的效果较低,因为报道的结果受到了储备接种体中初始种群的限制。
实施例4.这些实验的目的是测定消毒剂对于附着于叶片表面上的植物病原体的抗微生物活性
工艺参数和处理
处理:自来水、氯化水、测试FE消毒清洗水;温度:40至45°F;停留时间:30秒;
pH:
水(~7)
氯化水(6.5至7.1)
FE消毒剂清洗水(2.7至3.2)
测试的产品:切块长叶莴苣叶片和成熟菠菜叶片
病原体:
大肠杆菌O157:H7(F4546,F4637,SEA 13B88,TW14359,960218)的5-菌株混合物
单核细胞增生李斯特菌(ATCC 19115,ATCC51414,ATCC15313,FRRB2472(SCOTTA),1838)的5-菌株混合物
沙门氏菌(S.新港(S.Newport)、S.田纳西(S.Tennessee)、S.慕尼黑(S.muenchen)、S 古巴(S cubana)、S.圣保罗(S.St.Paul))的5-菌株混合物储备培养物的活化
1.在生物安全柜中将储备培养物通过一系列无菌转移到最佳生长介质得到培养物的活化。
2.从储存的储备培养物中取出小环((~100uL)的纯培养物并将其转移到含10mL分别对于每一种微生物是分别最佳生长介质肉汤的测试试管中,所述最佳生长介质肉汤如美国典型培养物保藏中心(ATCC)或者公开发表的文章所推荐。
3.在由ATCC或者公开发表的文章所推荐的最佳生长温度下培育所述培养物直至其到达对数生长相的末端。
4.通过划线镀涂或者铺展镀涂来检验转移的培养物的纯度。
5.取回1.5-mL步骤3中的培养物肉汤并将其转移到250-mL含150-mL分别对于每一种微生物是最佳生长介质肉汤的锥形瓶中,所述最佳生长介质肉汤如美国典型培养物保藏中心(ATCC)或者公开发表的文章所推荐
6.在由ATCC或者公开发表的文章所推荐的最佳生长温度下培育所述培养物直至其到达对数生长相的末端。
7.通过划线镀涂检验转移的培养物的纯度。
8.通过1-mL转移的铺展镀涂和系列稀释来计数步骤6的培养物肉汤的浓度。
9.在接种之前,将150-MI锥形瓶储备培养物在冷藏温度下冷却1至4小时。
接种体的制备和计数
1.将第二次转移锥形瓶(the 2nd transfer Erlenmeyerflask)中的150-mL冷却的储备培养物等体积分离到三个50-mL的离心管中(每个50mL)。
2.将试管在4°C下以10000RPM离心15分钟。
3.将液体肉汤从每一个离心管中倾析出来,留下细胞团
4.将步骤3中的离心管装入5-mL无菌的5%马血清并涡流以松弛和混合细胞团。
5.将所有重悬浮储备培养物倒入到一个离心管中以形成~108cfu/gm的接种体。
6.通过经1-mL转移系列稀释的铺展镀涂,计数并确认步骤‘5’中得到的微生物群
样品制备
1.取4片测试产品的叶片并将它们放在6”x 6”x 5”的无菌聚丙烯(PP)篮子中。如果测试产品是长叶莴苣,将长叶莴苣切成1.5”x 2.5”的矩形
2.对于步骤1中的四片叶片,两片应该是上表皮朝上,两片应该是下表皮朝上
3.用100uL移液器取出50uL~108cfu/g的储备培养物,并通过将小尺寸的接种体液滴滴到叶片平坦表面对叶片表面缓慢掺料且中脉朝上。在对叶片掺料前,保证去除了移液器尖部侧面上的过量储备。小心不要摇晃PP篮并引起液滴在干燥前落到叶片外面。
4.如照片1所示,将装有点有菌液叶子的篮子排列在70-80F以及38-48%相对湿度具有气体净化器Drierite的生物安全柜中1-1.5小时。保证在整个干燥过程中柜温度是稳定的(<±2F)。
5.保证叶片在干燥时期的最后不是枯萎的状态。
点有菌液叶子的处理
将PP酸瓶中的3L测试溶液转移到5-L无菌PP盆中
1.将所需体积的最终成分加入到3L溶液中,如果需要的话用无菌钳完全混合
2.将两片点有菌液叶子(1个掺料在上表皮上,其他掺料在下表皮上)转移到空的无菌PP篮中
3.将装有点有菌液叶子的PP篮放在含有3L测试溶液的完成制剂的无菌容器中
4.将测试溶液的温度维持在40-45°F
5.使用钳将叶片轻轻地推入到测试溶液中以保证叶片在所有的时间都完全浸没并防止叶片的折叠和重叠
6.一旦所述叶片完全浸没用秒表开始计时30秒
7.将处理过的叶片用无菌钳的方式从篮子中取出并将它们放置到胃托袋(stomacher bag)中
8.对所述胃托袋贴上相应叶片处理的标签
9.通过消毒橡胶瓜锤的方法将叶片打碎成片
10.对于其他测试的处理重复步骤1至7
11.按照步骤13的顺序每一次处理必须完成三次
12.每一次复制必须分开进行以避免在干燥过程中细菌死亡的错误。测试的顺序如下所示:
a.第一次重复:不点有菌液对照,点有菌液对照,用水洗去所点菌液,用氯化水洗去所点菌液,用FE1洗去所点菌液,用FE2洗去所点菌液各一份样品。
b.第二次重复:不点有菌液对照,点有菌液对照,用水洗去所点菌液,用氯化水洗去所点菌液,用FE1洗去所点菌液,用FE2洗去所点菌液各一份样品。
c.第三次重复:不点有菌液对照,点有菌液对照,用水洗去所点菌液,用氯化水洗去所点菌液,用FE1洗去所点菌液,用FE2洗去所点菌液各一份样品。
13.样品的计数必须在每次重复后立即进行
处理过的叶片的计数
1.将100mL磷酸盐缓冲液加入到装有处理过的捣碎的叶片的胃托袋中直至得到100倍的稀释
2.将装有磷酸盐缓冲液和处理过的叶片的袋子消化(stomach)30秒
3.将叶片振荡回磷酸盐缓冲溶液中并重复再次消化30秒
4.从消化样品中去除缓冲液并通过1-mL转移的系列稀释和铺展镀涂计数残留细胞
5.对于其他所有处理重复步骤1至4
对数降低的估计
M cfu/g=无任何处理的叶片上的微生物种群
R cfu/g=用于“水处理”的水溶液中的微生物种群
W cfu/g=“水处理”中的叶片上的微生物种群
X cfu/g=“X处理”中的叶片上的微生物种群
因此,“X处理”所引起的对数减少=Log(w/x)
由于机械清洗所导致的微生物去除=R
干燥过程中微生物的死亡=M-W-R
结果
表4.1.40至45°F下通过自来水的附着在菠菜和直立莴苣上的病原体的对数减少(3次重复的平均值)。
自来水清洗从叶片上去除了0.3至1.5log10的接种细胞,表示没有实现细胞在叶片上的完全附着。这可能是由于叶片在环境的低相对湿度下(20至23%,而不是方案中所列出的38至48%)的脱水和枯萎所导致的。
表4.2.与自来水清洗相比,通过氯化水清洗具有额外的附着于菠菜和直立莴苣上的病原体的对数减少(3次复制的平均值)
10ppm的氯化水提供了0.1-log10至1.4-log10的额外的病原体减少。与替代物附着细胞的结果相比较,菠菜情况下的2.3-log10的结果出乎意料地高,可能是由于如自来水清洗结果所示的细胞不完全附着在叶片上所引起的。
表4.3.40至45°F下通过FE消毒清洗水的附着在菠菜和直立莴苣上的病原体的额外的对数减少(3次重复的平均值)。
当与自来水清洗相比较,测试FE消毒清洗水(69ppm过氧乙酸和4800ppm乳酸)提供了额外的2.1-log10至3.4-log10的病原体减少。
当与氯化水相比较,FE消毒剂提供了额外的2-log10的附着在叶片上的病原体的减少。此外,将铺展盘储藏在40F下显示受伤的细胞在冷冻温度下无法在一个星期内生长。如果细菌细胞不能在富含养分的琼脂盘上生长,那么它们很可能不能在处理过的新鲜产品上生长。
实施例5.这些实验评价了当用于清洗产品时过氧乙酸的消耗或者损耗。因此目的是比较损耗600加仑氯化清洗水、600加仑过氧乙酸清洗水以及600加仑FE消毒剂清洗水所需的精剁直立莴苣的量。
工艺参数和处理
处理:氯化水、过氧乙酸清洗水以及FE消毒剂清洗水
温度:38-40°F
停留时间:20秒
pH:
氯化水(6.5至7.1)
过氧乙酸(6.5至6.8)
FE消毒剂清洗水(2.7至3.2)
产品:1.5”x 2”切块直立莴苣
A.测定能损耗600加仑过氧乙酸清洗水的直立莴苣的量。
1.在试生产的系统上进行完全消毒。
2.用自来水填充第二水槽罐、第二蓄水池以及第二过滤罐。
3.在系统中循环水直至系统中的水冷却到40°F。
4.校准突出系统并使用突出系统监测清洗水中的PAA浓度。
5.将PAA加入到第二过滤罐中直到达到目标加工限。
6.用转移切片机(translicer)切块直立莴苣。
7.在搬运箱中收集2”x2”的切块长叶莴苣。
8.在将搬运箱转移到第二水槽前记录每一个搬运箱的重量。
9.从每一个箱中收集三袋未处理的长叶莴苣(1个在顶部、1个在中间、1个在底部)。
10.在F2的末端收集三袋处理的长叶莴苣(1个在箱的开始、1个在箱的中间、1个在箱的末端)。
11.将白色搬运箱放置在位置的底部,水溢出。按需将溢出的水回到水槽罐中。
12.将白色搬运箱放置在离心机的底部出口以收集从叶片旋转出的液体。按需将收集到的水回到水槽罐中。
13.对于余下的箱重复步骤‘e’至‘k’直至FE浓度下降到低于最低加工限。
14.计数收集到的样品上的微生物种群(APC和酵母以及霉菌)。
B.测定能损耗600加仑FE清洗水的直立莴苣的量
1.在试生产的系统上进行完全消毒。
2.用自来水填充第一水槽罐、第二水槽罐、第一蓄水池、第二蓄水池、第一过滤罐以及第二过滤罐。
3.在系统中循环水直至系统中的水冷却到40°F。
4.对第一和第二水槽罐系统开启绕路,从而水不会经过过滤系统而仅从所述水槽罐向其附属储器连续再循环。
5.将化学成分加入到两个滤罐中直到达到目标加工限。
6.通过第一水槽罐(F1)、第一储器(R1)、第二水槽罐(F2)以及第二储器(R2)处的突出监测系统的探针来检测FE的浓度。
7.收集F1和F2的水样。
8.在垃圾箱(dumpster)旁边组装直立莴苣箱。
9.将全部直立莴苣叶片从箱中转移到传送机。
10.保证F1上的盖子是闭合的。将转移切片机的“开启/关闭”开关打开到“开启”。
11.将用于将叶片转移到转移切片机的传送机打开到“开启”。
12.保证精剁长叶莴苣均匀地传输进入到水槽罐中而没有聚集和团集。
13.从每一个箱中收集三袋未处理的长叶莴苣(1个在顶部、1个在中间、1个在底部)。
14.在F2的末端收集三袋处理的长叶莴苣(1个在箱的开始、1个在箱的中间、1个在箱的末端)。
15.在加工箱之前和之后检测第一水槽罐(F1)、第一储器(R1)、第二水槽罐(F2)以及第二储器(R2)的pH、温度以及FE的浓度。
16.将白色搬运箱放置在位置的底部,水溢出。按需将溢出的水回到水槽罐中。
17.将白色搬运箱放置在离心机的底部出口以收集从叶片旋转出的液体。按需将收集到的水回到水槽罐中。
18.对于余下的箱重复步骤‘e’至‘o’直至FE浓度下降到低于最低加工限。
19.计数收集到的样品上的微生物种群(APC和酵母以及霉菌)。
c.测定最佳值下能损耗600加仑氯化水的直立莴苣的量
1.在试生产的系统上进行完全消毒。
2.用自来水填充第一水槽罐、第二水槽罐、第一蓄水池、第二蓄水池、第一过滤罐以及第二过滤罐。
3.在系统中循环水直至系统中的水冷却到40°F。
4.对第一和第二水槽罐系统开启绕路,从而水不会经过过滤系统而仅从所述水槽罐向其附属储器连续再循环。
5.将化学成分加入到两个滤罐中直到达到目标加工限。
6.通过第一水槽罐(F1)、第二储器(R1)、第二水槽罐(F2)以及第二储器(R2)处的突出监测系统的探针来检测氯化水的浓度。
7.收集F1和F2的水样。
8.在垃圾箱(dumpster)旁边组装直立莴苣箱。
9.将直立莴苣叶片从箱中转移到传送机。
10.保证F1上的盖子是闭合的。将转移切片机的“开启/关闭”开关打开到“开启”。
11.将用于将叶片转移到转移切片机的传送机打开到“开启”。
12.保证精剁长叶莴苣均匀地传输进入到水槽罐中而没有聚集和团集。
13.从每一个箱中收集三袋未处理的长叶莴苣(1个在顶部、1个在中间、1个在底部)。
14.在F2的末端收集三袋处理的长叶莴苣(1个在箱的开始、1个在箱的中间、1个在箱的末端)。
15.在加工箱之前和之后检测第一水槽罐(F1)、第一储器(R1)、第二水槽罐(F2)以及第二储器(R2)的pH、温度以及氯化水的浓度。
16.将白色搬运箱放置在位置的底部,水溢出。按需将溢出的水回到水槽罐中。
17.将白色搬运箱放置在离心机的底部出口以收集从叶片旋转出的液体。按需将收集到的水回到水槽罐中。
18.计数收集到的样品上的微生物种群(APC和酵母以及霉菌)。
结果和结论
表5.1.基于商业规模测试的在有机物质的存在下,无乳酸/LA的过氧乙酸/PA的损耗。
消耗的PA量 11.7ppm
消耗的PA磅数 0.012078Ib
处理的长叶莴苣的磅数 949.90Ib
PA的损耗 每lb长叶莴苣为0.000013lb PA
表5.2.基于商业规模测试的,通过无乳酸的过氧乙酸清洗水的自身微生物的减少。
有氧平板计数 | |
Log cfu/g | |
未处理 | 3.4 |
PA清洗水 | 2.7 |
对数减少 | 0.7 |
表5.3基于商业规模测试的在有机物质的存在下,FE消毒剂清洗水(过氧乙酸/PA/PAA和乳酸/LA)的损耗。
消耗的PAA量 10.7ppm
消耗的PAA磅数 0.011lb
处理的长叶莴苣的磅数 4011Ib
PAA的损耗 每lb长叶莴苣为0.0000028lb PAA
表5.4.基于商业规模测试的,通过FE消毒剂清洗水(过氧乙酸和乳酸)的自身微生物的减少。
有氧平板计数 | |
Log cfu/g | |
未处理 | 5.1 |
FE清洗水 | 2.5 |
对数减少 | 2.6 |
表5.5.基于商业规模测试的在有机物质的存在下,10ppm氯化清洗水的损耗。
消耗的游离氯的量 6.4ppm
消耗的游离氯的磅数 0.006594Ib
处理的长叶莴苣的磅数 287Ib
游离氯的损耗 每lb长叶莴苣为0.000023lb游离氯
表5.6.基于商业规模测试,通过氯化清洗水的自身微生物的减少。
有氧平板计数 | |
Log cfu/g | |
未处理 | 5.1 |
氯化水 | 3.9 |
对数减少 | 1.2 |
FE消毒剂中过氧乙酸的损耗比无乳酸添加的过氧乙酸溶液中过氧乙酸的损耗小5倍(500%)。这显示在相同体积和浓度的过氧乙酸下,测试的FE消毒剂可以比无乳酸添加的过氧乙酸消毒剂多灭菌5倍的产品。此外,处理一磅长叶莴苣的所需游离氯的磅数比处理一磅长叶莴苣的所需测试FE消毒剂的磅数多8.5倍(850%),从而表面每磅测试FE消毒剂可以比每磅氯化水多灭菌8.5倍的产品。
73-84ppm过氧乙酸清洗水、FE消毒剂清洗水(59至69ppm PA和2389至2724ppm LA)以及1.2至7.6ppm游离氯清洗水的长叶莴苣叶片的自身微生物的log10减少分别为0.7/2.6和1.2-log10。尽管研究中的FE消毒剂低于最佳下限,但是其附着于长叶莴苣叶片上的自身微生物的log10减少仍然分别比氯化水和过氧乙酸清洗水高2.2和3.7倍。
实施例6.本实施例着重于在各种表面上消毒剂的使用。
接种物制备:绿脓假单胞菌(ATCC 9027)冻干培养物在10mL的无菌营养肉汤(NB)中再水化,并均匀地混合。将0.1mL母液转移到10mL NB中并在37C下培育24小时。对富集划线确定纯度。将10mL富集储备转移到1000mL NB中并在37C下培育24小时,产生~108cfu/mL静止相培养物储备。将所述储备在4C下冷却1小时。通过用9-mL巴特菲尔德型(Butterfield)磷酸盐缓冲液试管系列稀释并铺展镀涂在预浇营养琼脂(TSA)的琼脂盘上的方法来计数静止相培养物储备的微生物种群。
非食物表面接种:通过摇动和涡旋锥形瓶将1000mL~108cfu/mL的培养物母液均匀地混合。将1000mL培养物分成20个离心管中(每个50mL)并在4C下以10000rpm离心15分钟。将所述储备培养物团用50mL N B重悬浮。将20个离心管中的所有重悬浮培养物结合形成1,000mL~108cfu/mL的接种储备培养物。将15mL的绿脓假单胞菌培养物储备与非食物表面试样一起放入无菌50mL离心管中,并在37C下培育24小时。24小时之后,将所述试样转移到无菌培养皿中,并在35C的烤箱中干燥1小时。所述试样切割自不锈钢板、木材、载玻片以及塑料板。
接种非食物表面的处理:将1mL测试溶液分散到每一个接种试样的2.5cmx 2.5cm标记区域上60秒。将预润湿无菌棉签浸渍在10mL巴特菲尔德型磷酸盐缓冲液和硫代硫酸钠中,并在60s接触之后擦拭试样上的标记区域。然后将擦拭的标记区域立即放入到10mL巴特菲尔德型磷酸盐缓冲液和硫代硫酸钠中并混合。从前述试管中将1mL转移到9mL巴特菲尔德型磷酸盐缓冲液中。包括接触时间、擦拭时间和转移时间的总处理时间为90秒。重复进行每一种溶液的处理。将每一种溶液处理的减少与城市水处理的减少作比较。
表6.1通过PA溶液(100和140ppm)、LA溶液(2500和7500ppm)以及FR溶液(2500ppm LA+100ppm PA、2500ppm LA+140ppm PA、7500ppm LA+100ppm PA以及7500ppm LA+140ppm PA)的附着于木材试样上的绿脓假单胞菌(ATCC 9027)的对数减少:
表6.2通过PA溶液(60和100ppm)、LA溶液(1250和2500ppm)以及FR溶液(1250ppm LA+60ppm PA、1250ppm LA+100ppm PA、2500ppmLA+60ppm PA以及2500ppm LA+100ppm PA)的附着于不锈钢试样上的绿脓假单胞菌(ATCC 9027)的对数减少:
表6.3通过PA溶液(60和80ppm)、LA溶液(2500和5000ppm)以及FR溶液(2500ppm LA+60ppm PA、2500ppm LA+80ppm PA、5000ppmLA+60ppm PA以及5000ppm LA+80ppm PA)的附着于塑料试样上的绿脓假单胞菌(ATCC 9027)的对数减少:
表6.4通过PA溶液(60和80ppm)、LA溶液(1250和2500ppm)以及FR溶液(1250ppm LA+60ppm PA、1250ppm LA+80ppm PA、2500ppmLA+60ppm PA以及2500ppm LA+80ppm PA)的附着于玻璃试样上的绿脓假单胞菌(ATCC 9027)的对数减少:
实施例7.蔬菜和水果表面的结果
接种物制备:ATCC冻干培养物在10mL的无菌胰蛋白酶大豆肉汤中再水化,并均匀地混合。将0.1mL母液转移到10mL TSB中并在37C下培育24小时。对富集划线确定纯度。将2mL富集储备转移到200mL TSB中,并对于大肠杆菌K-12(ATCC 25253)(EC)以及英诺克李斯特菌(ATCC 33090)(LI)分别在37C下培育24小时和36h,产生~108cfu/mL静止相培养物储备。将所述储备在4C下冷却1小时。通过用9-mL巴特菲尔德型(Butterfield)磷酸盐缓冲液试管系列稀释并对于EC铺展镀涂在预浇胰蛋白酶大豆琼脂(TSA)的琼脂盘上或者对于LI铺展镀涂在预浇改性牛津琼脂(MOX)的琼脂盘上的方法来计数静止相培养物储备的微生物种群。
蔬菜和水果表面接种:通过摇动和涡旋锥形瓶将200mL~108cfu/mL的培养物母液均匀地混合。将200mL培养物分成4个离心管中(每个50mL)并在4C下以10000rpm离心15分钟。将所述储备培养物团用5mL 5%的马血清重悬浮。将四个离心管中的所有重悬浮培养物结合形成20mL~109cfu/mL的接种储备培养物。将测试蔬菜和水果的外皮或者表面切割成5cm x 2.5cm的片或者在番茄的情况下切成10cm的立方体用于接种。将50u L接种物以2uL液滴的形式掺料到草莓上,而对于切块的番茄表面,将100uL接种物以2uL液滴的形式接种到土豆皮上。将掺料表面或者皮放入18至24C的生物安全柜中干燥60分钟。
接种蔬菜和水果表面的处理:将每一个接种蔬菜和水果表面的样品放入2.5L含500mL测试溶液的胃托袋中,并剧烈摇动45秒。所述测试溶液包括城市水、乳酸溶液(LA)、过氧乙酸溶液(PA)和新鲜清洗溶液(FR)。在45s处理的末端,将处理过的蔬菜或水果表面立即转移到含100mL巴特菲尔德型磷酸盐缓冲液和1硫代硫酸钠的胃托袋中。重复进行每一种溶液的处理。将每一种溶液处理的减少与城市水处理的减少作比较。
表7.1通过PA溶液(60和80ppm)、LA溶液(1500和3000ppm)以及FR溶液(1500ppm LA+60ppm PA、1500ppm LA+80ppm PA、3000ppmLA+60ppm PA以及3000ppm LA+80ppm PA)的附着于土豆皮上的大肠杆菌K-12(ATCC 25253)的对数减少:
表7.2通过PA溶液(60和80ppm)、LA溶液(1500和3000ppm)以及FR溶液(1500ppm LA+60ppm PA、1500ppm LA+80ppm PA、3000ppmLA+60ppm PA以及3000ppm LA+80ppm PA)的附着于切块番茄上的大肠杆菌K-12(ATCC 25253)的对数减少:
表7.3通过PA溶液(50ppm)、LA溶液(1500和3000ppm)以及FR溶液(1500ppm LA+50ppm PA以及3000ppm LA+50ppm PA)的附着于全部草莓表面的英诺利斯特菌(ATCC 33090)的对数减少:
实施例8.肉品的结果
接种物制备:ATCC冻干培养物在10mL的无菌TSB中再水化,并均匀地混合。将0.1mL母液转移到10mL TSB中并在37C下培育24小时。对富集划线确定纯度。将2mL富集储备转移到200mL TSB中,并对于大肠杆菌K-12(ATCC 25253)(EC)在37C下培育24h,产生~108cfu/mL静止相培养物储备。将所述储备在4C下冷却1小时。通过用9-mL巴特菲尔德型磷酸盐缓冲液试管对EC系列稀释并铺展镀涂在预浇胰蛋白酶大豆琼脂(TSA)的琼脂盘上的方法来计数静止相培养物储备的微生物种群。
鸡翅表面接种:通过摇动和涡旋锥形瓶将200mL~108cfu/mL的培养物母液均匀地混合。将200mL培养物分成4个离心管中(每个50mL)并在4C下以10000rpm离心15分钟。将所述储备培养物团用5mL 5%的马血清重悬浮。将四个离心管中的所有重悬浮培养物结合形成20mL~109cfu/mL的接种储备培养物。将鸡中翅用纸巾部分干燥。在鸡翅的平坦表面的中间用永久标记物做2.5cm x 2.5cm正方形的标记用于接种。将50uL接种物以2uL液滴的形式掺料到鸡翅表皮的标记正方形上。将接种的鸡翅放入无菌聚丙烯篮中。所述聚丙烯篮中的掺料鸡翅在18至24C的生物安全柜中干燥120分钟。
接种鸡翅的处理:将每一个接种鸡翅的样品放入2.5L含500mL测试溶液的胃托袋中10分钟,在0、4和9分钟间歇地摇动30s。所述测试溶液包括城市水、乳酸溶液(LA)、过氧乙酸溶液(PA)和新鲜清洗溶液(FR)。在10分钟后将处理的鸡翅立即从处理溶液中取出并以标记面朝上放入无菌培养皿中。将预润湿无菌药签浸渍在10mL巴特菲尔德型磷酸盐缓冲液和硫代硫酸钠中,用于擦拭标记区域。擦拭之后,将棉绒签立即放回到10mL巴特菲尔德型磷酸盐缓冲液和硫代硫酸钠中并混合。从前述试管中将1mL转移到9mL巴特菲尔德型磷酸盐缓冲液中。包括接触时间、擦拭时间和转移时间的总处理时间为10.5分钟。重复进行每一个溶液的处理。将每一种溶液处理的减少与城市水处理的减少作比较。
表8.1通过PA溶液(40、60和80ppm)、LA溶液(5000和10000ppm)以及FR溶液(5000ppm LA+40ppm PA、5000ppm LA+60ppm PA、5000ppmLA+80ppm PA、10000ppm LA+40ppm PA、10000ppm PA+60ppm PA以及10000ppm LA+80ppm PA)的附着于鸡翅上的大肠杆菌K-12(ATCC 25253)的对数减少:
将本文之前和之后引用的所有发表物、专利和专利申请以其全文形式纳入本文作为参考,就好像将各篇单独的发表物、专利或专利申请具体地和单独地通过引用纳入本文一样。
Claims (26)
1.用于处理肉类物品的水性组合物,该组合物包含:
i)化学式为RC(O)OOH的有机过酸,其中R是甲基、乙基、正丙基或者仲丙基;
ii)选自酒石酸、柠檬酸、苹果酸、扁桃酸和乳酸的2-羟基有机酸;
其中所述水性溶液的pH为2.5至6.0,包括端值,且过酸的浓度为40至250ppm(重量/重量),包括端值,且2-羟基有机酸的浓度为0.1至1%(重量/重量),包括端值。
2.如权利要求1所述的组合物,其特征在于,该组合物还包含阴离子型表面活性剂。
3.如权利要求1所述的组合物,其特征在于,所述过酸是过氧乙酸且所述2-羟基有机酸是L-(+)-乳酸。
4.如权利要求3所述的组合物,其特征在于,所述溶液中过氧乙酸的浓度是50至100ppm(重量/重量),溶液中乳酸的浓度是0.1%至0.6%(重量/重量)。
5.如权利要求3所述的组合物,其特征在于,所述溶液中过氧乙酸的浓度是60至80ppm(重量/重量),溶液中乳酸的浓度是0.1%至0.4%(重量/重量)。
6.如权利要求3所述的组合物,其特征在于,所述pH为2.5至4.5之间。
7.如权利要求1所述的组合物,其特征在于,所述pH为2.8至3.2。
8.如权利要求1所述的组合物,其特征在于,所述pH约为3.0。
9.如权利要求1所述的组合物,其特征在于,所述溶液的温度为35°F至45°F。
10.如权利要求1所述的组合物,其特征在于,所述溶液基本上不含非离子型表面活性剂、阳离子型表面活性剂或者阴离子型表面活性剂。
11.如权利要求1所述的组合物,其特征在于,该组合物是溶液、凝胶、泡沫或者悬浮液。
12.通过将物品表面与水溶液接触来消毒肉品的方法,所述水溶液包含权利要求1至11所述的任一种组合物。
13.如权利要求12所述的方法,其特征在于,所述接触时间至少为10秒。
14.如权利要求12所述的方法,其特征在于,所述接触时间为10秒至1分钟。
15.如权利要求12所述的方法,其特征在于,所述过酸是过氧乙酸且所述2-羟基有机酸是L-(+)-乳酸。
16.如权利要求15所述的方法,其特征在于,所述溶液中过氧乙酸的浓度是50至100ppm(重量/重量),溶液中乳酸的浓度是0.1%至0.6%(重量/重量)。
17.如权利要求15所述的方法,其特征在于,所述溶液中过氧乙酸的浓度是60至80ppm(重量/重量),溶液中乳酸的浓度是0.1%至0.4%(重量/重量)。
18.如权利要求15所述的方法,其特征在于,所述过氧乙酸的浓度是70-80ppm(重量/重量),2-羟基有机酸的浓度是0.2%至0.4%(重量/重量)。
19.如权利要求15所述的方法,其特征在于,所述溶液的温度选自室温、环境温度或者35°F至85°F。
20.如权利要求15所述的方法,其特征在于,所述溶液的温度选自室温、环境温度或者35°F至45°F。
21.如权利要求12所述的方法,其特征在于,所述溶液基本上不含非离子型表面活性剂、阳离子型表面活性剂或者阴离子型表面活性剂。
22.如权利要求12所述的方法,其特征在于,以对应pH、过酸浓度、氧化还原点位或者2羟基有机酸浓度中的任意一个或多个将所述另外量的过酸或者2-羟基有机酸加入到水溶液中,从而在使用水溶液接触物品时维持pH、水溶液中过酸或者2-羟基有机酸的浓度。
23.如权利要求12所述的方法,其特征在于,通过向过酸的溶液中加入基本上不含过氧化氢的2-羟基有机酸或者向基本上不含过氧化氢的2-羟基有机酸的溶液中加入过酸溶液来形成所述水溶液。
24.如权利要求12所述的方法,其特征在于,所述基本上不含任意过氧化氢的2-羟基有机酸和过酸分开加入到用于清洗或者消毒物品的水性流体中。
25.如权利要求12所述的方法,其特征在于,所述处理通过杀死或抑制物品上或者附着于物品的微生物的生长来消毒所述物品。
26.用来消毒肉类物品的成套用具,该成套用具包括:
i)容纳至权利要求11中任一项所述组合物的容器或者容纳浓缩水性组合物的容器,所述浓缩水性组合物可以被稀释以得到权利要求1至11所述的水性消毒剂组合物。
ii)以及用于将水性消毒剂组合物应用与物品的说明书。
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