CN102605098A - 一种快速检测鹿产品的多重pcr试剂盒及制备方法 - Google Patents
一种快速检测鹿产品的多重pcr试剂盒及制备方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN102605098A CN102605098A CN2012101085629A CN201210108562A CN102605098A CN 102605098 A CN102605098 A CN 102605098A CN 2012101085629 A CN2012101085629 A CN 2012101085629A CN 201210108562 A CN201210108562 A CN 201210108562A CN 102605098 A CN102605098 A CN 102605098A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- deer
- primer
- downstream
- upper reaches
- special
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Images
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明公开一种快速检测鹿产品的多重PCR试剂盒,用于快速准确识别鹿产品,同时还公开了该试剂盒的制备方法,采用多重PCR技术扩增梅花鹿、马鹿、塔里木马鹿、赤鹿以及驯鹿和猪、牛、羊、鸡的各线粒体DNA的特异分子片段制成试剂盒,用于检测被检样品中是否含有上述各动物成分,能检测混合样品;具有操作简单、灵敏度高,速度快特点。
Description
技术领域:
本发明公开一种快速检测鹿产品的多重PCR试剂盒,用于快速准确识别鹿产品,同时还公开了该试剂盒的制备方法,属于生物检测试剂盒技术领域。
背景技术:
鹿产品是鹿的一些组织或者器官,主要包括有:鹿茸,鹿心,鹿肾,鹿胎,鹿筋,鹿鞭,鹿尾,鹿肉和鹿血等。由于鹿产品大多为名贵中药材,价格昂贵,所以市场上屡见用伪劣产品来冒充名贵的鹿产品。
目前,鹿产品的鉴定大多采用传统方法,主要包括性状鉴定、显微鉴定和理化鉴定。虽然传统鉴定方法简单、快捷、成本低,但影响传统鉴定方法的因素很多(如人为因素、环境因素、营养因素),因而不能准确地判断鹿产品的伪劣情况。比如在鹿产品的加工过程中,其性状、显微结构、理化性质等常常发生改变,利用传统鉴定方法来鉴定鹿产品可能会出现误判。然而,分子鉴定方法(基于DNA的方法)不受这些因素的影响,且具有准确性大、灵敏度高、稳定性好、通用性强等特点。
发明内容:
本发明提供一种快速检测鹿产品的多重PCR试剂盒,解决了梅花鹿、马鹿、塔里木马鹿、驯鹿及赤鹿以及猪、牛、羊、鸡等常见假冒混合产品的快速检测问题。
本发明还提供了上述快速检测鹿产品的多重PCR试剂盒的制备方法,通过两个多重PCR方法反应体系(鹿源性反应:梅花鹿,马鹿,塔里木马鹿,赤鹿和驯鹿;猪、牛、羊、鸡源性反应:猪、牛、羊、鸡),采用一步反应来鉴别鹿产品中的其他动物成分。
本发明提供的快速检测鹿产品的多重PCR试剂盒,其特征在于:
包括DNA提取液、鹿源性多重PCR反应液和猪、牛、羊、鸡源性多重PCR反应液和阴性标准品:
1、所述的DNA提取液:
(1)低盐缓冲液(pH 7.6-7.8):12-13份Tris碱(三羟甲基氨基甲烷),32-35份 Na2EDTA(乙二胺四乙酸二钠),7-8份MgCl2,4-5份NaCl,余份为水;
(2)细胞裂解液:4-6份 SDS十二烷基硫酸钠,4-6份Triton X-100(聚乙二醇对异辛基苯基醚),1000份低盐缓冲液;
(3)蛋白酶K:2份蛋白酶K,100份水;
2、所述的鹿源性多重PCR反应液:
ddH2O、10×PCR Buffer、dNTPs、引物DF、引物CCF、引物CYF、引物DR、引物RTF、引物RTR、Taq酶:
具体引物序列为:
1)梅花鹿、马鹿、塔里木马鹿、赤鹿和驯鹿特异mtD-loop:
DF(上游):5’-CAAAGCACGTGATATAACCTTATG-3’
DR(下游):5’-CATGGTAATTAAGCTCGTGATCTA-3’
2)马鹿特异mtD-loop:
CCF(上游):5’-CATGTATAACAGTACATGAGTTAGCG-3’
DR(下游):5’-CATGGTAATTAAGCTCGTGATCTA-3’
3)塔里木马鹿特异mtD-loop:
CYF(上游):5’-CTCAACATCCATTTTACATCTTACATTA-3’
DR(下游):5’-CATGGTAATTAAGCTCGTGATCTA-3’
4)驯鹿线粒体特异mt16S rDNA:
RTF(上游):5’-GGAGTAATCCAGGTCGGTTTCTATC-3’
RTR(下游):5’-TAGGGCGGGATATGTTTGTGTATC-3’ ;
3、猪、牛、羊、鸡源性多重PCR反应液:
ddH2O、10×PCR Buffer、dNTPs、引物SSF、引物SSR、引物OAF、引物OAR、引物GGF、引物GGR、引物BTF、引物BTR、Taq酶;
具体引物序列为:
①猪特异mt12S rRNA-tRNA-Val:
SSF(上游):5’-CTACATAAGAATATCCACCACA-3’
SSR(下游):5’-ACATTGTGGGATCTTCTAGGT-3’
②牛特异tRNA-Val-16S rRNA:
BTF(上游):5’-GTGCTTGGATAAATCAAGATATAGC-3’
BTR(下游):5’-CTTGGTTGTTTAGTCGAGAGGG-3’
③羊特异tRNA-Lys-ATP8:
OAF(上游) 5’- TTAAAGACTGAGAGCATGATA-3’
OAR(下游):5’- ATGAAAGAGGCAAATAGATTTTCG-3’
④鸡特异12S rRNA:
GGF(上游):5’- TGAGAACTACGAGCACAAAC-3’
GGR(下游):5’-GGGCTATTGAGCTCACTGTT-3’
4、阴性标准品:为无菌双蒸水。
本发明所述快速检测鹿产品的多重PCR试剂盒的制备方法,包括以下步骤:
1)鹿源性多重PCR反应液
(1)引物设计:
设计梅花鹿,赤鹿,马鹿,塔里木马鹿和驯鹿的特异性引物;其中包括一个共同的下游引物(DR),一个上游引物(DF)和两个物种特异性上游引物(赤鹿CCF,塔里木马鹿CYF);
①梅花鹿、马鹿、塔里木马鹿、赤鹿和驯鹿特异mtD-loop:
DF(上游):5’-CAAAGCACGTGATATAACCTTATG-3’
DR(下游):5’-CATGGTAATTAAGCTCGTGATCTA-3’
②马鹿特异mtD-loop:
CCF(上游):5’-CATGTATAACAGTACATGAGTTAGCG-3’
DR(下游):5’-CATGGTAATTAAGCTCGTGATCTA-3’
③塔里木马鹿特异mtD-loop。
CYF(上游):5’-CTCAACATCCATTTTACATCTTACATTA-3’
DR(下游):5’-CATGGTAATTAAGCTCGTGATCTA-3’
④驯鹿线粒体特异mt16S rDNA:
RTF(上游):5’-GGAGTAATCCAGGTCGGTTTCTATC-3’
RTR(下游):5’-TAGGGCGGGATATGTTTGTGTATC-3’
(2)鹿源性多重PCR反应液:
ddH2O 8.7ul,10 × PCR Buffer 1.5ul,dNTPs(100 uM) 2.0ul,引物DF(20 uM) 0.2ul,引物CCF(20 uM) 0.2ul,引物CYF(20 uM) 0.2ul,引物DR(20 uM) 0.4ul,引物RTF(20 uM) 0.3ul,引物RTR(20 uM) 0.3ul,Taq酶(5U/ul) 0.2ul。
(3)阴性标准品:为无菌双蒸水;
2)猪、牛、羊、鸡源性多重PCR反应液
(1)引物设计:
猪、羊、鸡的特异性引物:
①猪特异mt12S rRNA-tRNA-Val:
SSF(上游):5’-CTACATAAGAATATCCACCACA-3’
SSR(下游):5’-ACATTGTGGGATCTTCTAGGT-3’
②牛特异tRNA-Val-16S rRNA:
BTF(上游):5’-GTGCTTGGATAAATCAAGATATAGC-3’
BTR(下游):5’-CTTGGTTGTTTAGTCGAGAGGG-3’
③羊特异tRNA-Lys-ATP8:
OAF(上游) 5’- TTAAAGACTGAGAGCATGATA-3’
OAR(下游):5’- ATGAAAGAGGCAAATAGATTTTCG-3’
④鸡特异12S rRNA:
GGF(上游):5’- TGAGAACTACGAGCACAAAC-3’
GGR(下游):5’-GGGCTATTGAGCTCACTGTT-3’
(2) 猪牛羊鸡源性多重PCR反应液:
ddH2O 8.1ul,10 × Buffer 1.5ul,dNTPs(100 uM) 2.0ul,引物SSF(20 uM) 0.1ul,引物SSR(20 uM) 0.1 ul,引物OAF(50 uM) 0.5ul,引物OAR(50 uM) 0.5 ul,引物GGF(20 uM) 0.2ul,引物GGR(20 uM) 0.2 ul,引物BTF(20 uM) 0.3ul,引物BTR(20 uM) 0.3 ul, Taq酶 0.2ul。
(3)阴性标准品:为无菌双蒸水。
本发明的多重PCR检测的使用方法:
(1)从待检样品中提取基因组DNA;
(2)制备多重PCR反应体系:
①取步骤1中的DNA 1ul和阴性对照加入到鹿源性多重PCR反应液中,用PCR仪进行扩增;
②取步骤1中的DNA 1ul和阴性对照加入到猪牛羊鸡源性多重PCR反应液中,用PCR仪进行扩增;
(3)设定反应程序进行PCR扩增,鹿源性多重PCR和猪牛羊鸡源性多重PCR反应程序均如下:
94°C 5 min;94°C 30s,56°C 30s,67°C 1min;67°C 5min,扩增30个循环。
(4)将PCR扩增结果分别在1%琼脂糖凝胶电泳进行分析,紫外灯下观察结果,综合分析鹿源性多重PCR和猪牛羊鸡源性多重PCR结果,即得出待检样品中含有的动物成分。
结果判定:如果只扩增出307bp的特异性片段,说明含有梅花鹿成分;如果同时扩增出307 bp和246 bp两个特异性片段,说明含有马鹿成分;如果扩增出272bp的特异性片段,说明含有塔里木马鹿成分;如果扩增出141bp的特异性片段,说明含有驯鹿的成分;如果扩增出290bp的特异性片段,说明含有猪的成分;如果扩增出225bp的特异性片段,说明含有羊的成分;如果扩增出183bp的特异性片段,说明含有鸡的成分;如果扩增出124bp的特异性片段,说明含有牛的成分。
本发明的积极效果在于:采用多重PCR技术,扩增梅花鹿、马鹿、塔里木马鹿、赤鹿以及驯鹿和猪、牛、羊、鸡的各线粒体DNA的特异分子片段,制成试剂盒,用于检测被检样品中是否含有上述各动物成分,能检测混合样品;具有操作简单、灵敏度高,速度快特点。
附图说明
图1为鹿源性多重PCR反应的种间特异性;
图2为鹿源性多重PCR反应的种内通用性;
图3为猪牛羊鸡源性多重PCR反应的种间特异性。
具体实施方式
下面结合具体实施实例,进一步阐述本发明:
实施例1:试剂盒的组成与配制
1)DNA提取液的配制
(1)低盐缓冲液(pH 7.6):800ml蒸馏水溶解1.21gTris碱(三羟甲基氨基甲烷)、3.38g Na2EDTA(乙二胺四乙酸二钠)、0.76g MgCl2、0.47gNaCl。加浓盐酸调pH至所需值,加蒸馏水定容至1L。
(2)细胞裂解液:200ml低盐缓冲液中加入1g SDS(十二烷基硫酸钠),1ml Triton X-100(聚乙二醇对异辛基苯基醚)。
(3)蛋白酶K: 将100 mg蛋白酶K溶于5 ml无菌去离子水中,-20℃保存。
提取方法:200ul抗凝血和400ul低盐缓冲液加入到1.5ml离心管中,充分混匀后1000RPM离心10min,弃上清;加入500ul低盐缓冲液,混匀后于室温下1000RPM离心5min,重复一次;小心吸出上清,加入300ul细胞裂解液,混匀后于65℃水浴10min,加入75ul饱和NaCl,充分混匀后12000RPM离心5min,将上清转移到新的1.5ml离心管中,加入2倍体积无水乙醇,充分混匀后于10000RPM离心2min,弃上清,加入500ul冰浴70%乙醇,颠倒混匀数次后于10000RPM离心1min,弃上清;65℃烘箱中干燥5min,加入100ul ddH2O后于65℃水浴溶解15min。
2)鹿源性多重PCR反应液
(1)引物设计:
根据GenBank数据库中已公布的线粒体D-loop区序列采用Bioedit 7.0.9.0软件进行序列比对。然后在梅花鹿(AB378372)的D-loop区上,利用Oligo 6.0软件设计梅花鹿,赤鹿,马鹿,塔里木马鹿和驯鹿的特异性引物。其中包括一个共同的下游引物(DR),一个上游引物(DF)和两个物种特异性上游引物(赤鹿CCF,塔里木马鹿CYF);
①梅花鹿、马鹿、塔里木马鹿、赤鹿和驯鹿特异mtD-loop:
DF(上游):5’-CAAAGCACGTGATATAACCTTATG-3’
DR(下游):5’-CATGGTAATTAAGCTCGTGATCTA-3’
②马鹿特异mtD-loop:
CCF(上游):5’-CATGTATAACAGTACATGAGTTAGCG-3’
DR(下游):5’-CATGGTAATTAAGCTCGTGATCTA-3’
③塔里木马鹿特异mtD-loop。
CYF(上游):5’-CTCAACATCCATTTTACATCTTACATTA-3’
DR(下游):5’-CATGGTAATTAAGCTCGTGATCTA-3’
④驯鹿线粒体特异mt16S rDNA:
RTF(上游):5’-GGAGTAATCCAGGTCGGTTTCTATC-3’
RTR(下游):5’-TAGGGCGGGATATGTTTGTGTATC-3’
(2) 鹿源性多重PCR反应液:
ddH2O 8.7ul,10 × Buffer 1.5ul,dNTPs(100 uM) 2.0ul,引物DF(20 uM) 0.2ul,引物CCF(20 uM) 0.2ul,引物CYF(20 uM) 0.2ul,引物DR(20 uM) 0.4ul,引物RTF(20 uM) 0.3ul,引物RTR(20 uM) 0.3ul,Taq酶(5U/ul) 0.2ul,
(3)阴性标准品:为无菌双蒸水;
3)猪、牛、羊、鸡源性多重PCR反应液
(1)引物设计:
猪、羊、鸡的特异性引物:
①猪特异mt12S rRNA-tRNA-Val:
SSF(上游):5’-CTACATAAGAATATCCACCACA-3’
SSR(下游):5’-ACATTGTGGGATCTTCTAGGT-3’
②牛特异tRNA-Val-16S rRNA:
BTF(上游):5’-GTGCTTGGATAAATCAAGATATAGC-3’
BTR(下游):5’-CTTGGTTGTTTAGTCGAGAGGG-3’
③羊特异tRNA-Lys-ATP8:
OAF(上游) 5’- TTAAAGACTGAGAGCATGATA-3’
OAR(下游):5’- ATGAAAGAGGCAAATAGATTTTCG-3’
④鸡特异12S rRNA:
GGF(上游):5’- TGAGAACTACGAGCACAAAC-3’
GGR(下游):5’-GGGCTATTGAGCTCACTGTT-3’
(2) 猪牛羊鸡源性多重PCR反应液:
ddH2O 8.1ul,10 × Buffer 1.5ul,dNTPs(100 uM) 2.0ul,引物SSF(20 uM) 0.1ul,引物SSR(20 uM) 0.1 ul,引物OAF(50 uM) 0.5ul,引物OAR(50 uM) 0.5 ul,引物GGF(20 uM) 0.2ul,引物GGR(20 uM) 0.2 ul,引物BTF(20 uM) 0.3ul,引物BTR(20 uM) 0.3 ul, Taq酶 0.2ul;
(3)阴性标准品:为无菌双蒸水。
实施例2:试剂盒的特异性试验
1、鹿源性多重PCR反应中各引物对的种间特异性和种内通用性。
(1)证明鹿源性多重PCR反应中各引物对具有种间特异性。
①按照实施例1的方法分别从血液中提取了梅花鹿、马鹿、塔里木马鹿、赤鹿、驯鹿、水鹿、坡鹿、白唇鹿、麋鹿、黇鹿、猪、牛、羊、鸡的基因组DNA。提取的DNA分别用于制备下列反应体系,无菌水为阴性对照。
②制备反应体系:步骤①提取的DNA 1.0ul加入到实施例1中鹿源性多重PCR反应液中。
③按照程序:94°C 5 min;94°C 30s,56°C 30s,67°C 1min;67°C 5min,扩增30个循环。进行PCR扩增。
④结果(如图1):1:梅花鹿;2:马鹿;3:塔里木马鹿;4:赤鹿;5:驯鹿;6:水鹿;7:坡鹿;8:白唇鹿;9:麋鹿;10:黇鹿;11:猪;12:牛;13:羊;14:鸡;15:阴性对照;M:Marker I(600,500,400,300,200,100 bp);梅花鹿基因组DNA样品扩增出307 bp的特异性片段,与单一PCR一致;马鹿基因组DNA样品扩增出307 bp和246 bp两个特异性片段,这是因为引物对DF/DR和CCF/DR都能够扩增出马鹿特异性片段,也与单一PCR一致;塔里木马鹿和驯鹿基因组DNA样品分别只扩增出272 bp的特异性片段和141 bp的特异性片段,这是因为在多重PCR时,对同一模板来说,反应强的引物能够抑制反应弱的引物对其进行扩增,DF/DR对塔里木马鹿和驯鹿的PCR扩增较弱,反应强的引物对CYF/DR和RTF/RTR能够抑制DF/DR对各自目的模板的PCR扩增;赤鹿基因组DNA样品扩增出230 bp的特异性片段;其他基因组DNA和对照组均为阴性。
(2)证明鹿源性多重PCR反应中各引物对具有种内通用性。
①按实施例1方法提取了9个梅花鹿(3个左家梅花鹿、3个东丰梅花鹿、3个兴凯湖梅花鹿)血液DNA、3个塔里木马鹿血液DNA、3个赤鹿血液DNA、3个驯鹿血液DNA、15个马鹿(3个东北马鹿、3个青海马鹿、3个甘肃马鹿、3个阿尔泰马鹿、3个天山马鹿)血液DNA,分别制备下列反应体系,无菌双蒸水为阴性对照。
②制备反应体系:步骤①提取的DNA 1.0ul加入到实施例1中鹿源性多重PCR反应液中。
③按照程序:94°C 5 min;94°C 30s,56°C 30s,67°C 1min;67°C 5min,扩增30个循环。进行PCR扩增。
④结果(如图2):A:梅花鹿(N1-3:左家梅花鹿;N4-6:东丰梅花鹿;N7-9:兴凯湖梅花鹿);B:塔里木马鹿(Y1-3),赤鹿(E1-3),驯鹿(R1-3);C:马鹿(C1-3:东北马鹿;C4-6:青海马鹿;C7-9:甘肃马鹿;C10-12:阿尔泰马鹿;C13-15:天山马鹿);0:阴性对照;M:Marker I(600,500,400,300,200,100 bp);9个梅花鹿基因组DNA均扩增出307bp的特异性片段;15个马鹿基因组DNA样品扩增出307 bp和246 bp两个特异性片段;3个塔里木马鹿基因组DNA均扩增出272 bp的特异性片段;3个驯鹿基因组DNA均扩增出141 bp的特异性片段;3个赤鹿基因组DNA均扩增出230 bp的特异性片段。均与目的条带大小相符。
2、证明猪牛羊鸡源性多重PCR反应中各引物对具有种间特异性。
①为证明猪牛羊鸡源性多重PCR反应中的各引物对具有种间特异性,按照实施例1的方法分别提取了猪、牛、羊、鸡的血液DNA ,无菌双蒸水为阴性对照,制备下列反应体系。
②制备反应体系:步骤①提取的DNA 1.0ul加入到实施例1中猪牛羊鸡源性多重PCR反应液中。
③按照程序:94°C 5 min;94°C 30s,56°C 30s,67°C 1min, 67°C 5min,扩增30个循环。进行PCR扩增。
④结果(如图3):1:猪;2:羊;3:鸡;4:牛;5:阴性对照;M:Marker I(600,500,400,300,200,100 bp);猪、羊、鸡、牛基因组DNA样品分别扩增出了290 bp、225bp、183bp、124bp的特异性片段,均与单一PCR时的特异性片段一致。
实施例3:多重PCR的灵敏性。
1、评估鹿源性多重PCR反应的灵敏性。
(1)按照实施例1的提取方法分别提取了梅花鹿、马鹿、塔里木马鹿、赤鹿和驯鹿的血液基因组DNA。分别进行梯度稀释,稀释情况如下:10、5、1、0.5、0.2、0.1、0.05、0.02 ng。
(2)分别制备反应体系: 步骤(1)提取的DNA 1.0ul加入到实施例1中鹿源性多重PCR反应液中。
(3)按照程序:94°C 5 min;94°C 30s,56°C 30s,67°C 1min,67°C 5min,扩增30个循环。进行PCR扩增。
(4)结果:梅花鹿、马鹿、塔里木马鹿、赤鹿和驯鹿基因组DNA样品的最小检测限度分别为0.05、0.05、0.1、0.5和0.02 ng。
2、评估猪牛羊鸡源性多重PCR反应的灵敏性。
(1)按照实施例1的提取方法分别提取猪、牛、羊、鸡的血液基因组DNA,分别进行梯度稀释,稀释情况如下: 10、5、1、0.5、0.2 ng。
(2)分别制备反应体系:步骤(1)提取的DNA 1.0ul加入到实施例1中猪牛羊鸡源性多重PCR反应液中。
(3)按照程序:94°C 5 min;94°C 30s,56°C 30s,67°C 1min,67°C 5min,扩增30个循环。进行PCR扩增。
(4)结果:猪、牛、羊和鸡基因组DNA样品的最小检测限度分别为1、0.5、1和5 ng。
以下实验表明本发明的有效性和可行性
实验例1 鹿产品DNA的提取。
为了了解市场上鹿产品的欺诈情况,从市场上随机购买了71个鹿产品:24个鹿茸产品、12个鹿胎产品、8个鹿鞭产品、7个鹿筋产品、7个鹿尾产品、7个鹿血粉产品、6个其他鹿产品(鹿肾、鹿心、鹿心丸、鹿肉干)。
1、DNA提取
将各种鹿产品取少量在液氮中研磨,越细越好。取50mg处理好的产品装于1.5ml离心管中,加入500ml细胞裂解液,再加入蛋白酶K 10ul,充分混匀,55℃水浴消化过夜;加入等体积酚:仿(1:1),充分混匀,室温12000RPM离心5min,抽提2次,加入2倍体积无水乙醇,混匀直至出现絮状沉淀,室温12000RPM离心2min,弃上清;加入500ul冰浴70%乙醇,颠倒混匀数次,10000RPM离心1min,弃上清,65℃烘箱干燥5min,加入100ul ddH2O,65℃水浴15min溶解。
实验例2 鹿产品的检测。
1、多重PCR反应体系的制备。
①鹿源性多重PCR反应体系:实验例1中提取的鹿产品DNA 1.0ul加入到实施例1中鹿源性多重PCR反应液中。
②猪、牛、羊、鸡源性多重PCR反应体系:实验例1中提取的鹿产品DNA 1.0ul加入到实施例1中猪牛羊鸡源性多重PCR反应液中。
2、均设定反应程序:94°C 5 min;94°C 30s,56°C 30s,67°C 1min,67°C 5min,扩增30个循环。扩增结果在1%琼脂糖凝胶电泳,紫外灯下综合鹿源性多重PCR反应体系和猪牛羊鸡源性多重PCR反应体系结果进行分析。结果如表1,2,3,4,5,6,7。
3、结果:表1中可知,市场中大部分的鹿茸产品为驯鹿茸,绝大多数深加工的鹿茸产品如鹿茸丸、鹿茸(软)胶囊、鹿茸粉为伪品,5个产品中还包含猪或/和羊源性成分,伪品检出率达到79%。表2可知,鹿胎产品的伪品检出率达到83%,其中梅花鹿胎粉经检测没有梅花鹿源性成分却含有马鹿源性成分,新西兰赤鹿胎经检测为梅花鹿胎,鹿胎软胶囊经检测只含有牛源性成分。表3可知,鹿鞭产品的伪品检出率达到100%,其中新西兰赤鹿鞭经检测为梅花鹿鞭,新西兰赤鹿鞭片经检测含有马鹿源性成分,还有的产品含有牛和/或鸡源性成分。表4可知,鹿筋产品的伪品检出率为57%,其中一个经检测为牛筋制成。表5可知,鹿尾产品的伪品检出率较小,为28.5%,其中新西兰鹿尾经检测为马鹿尾。表6可知,鹿血产品的伪品检出率也较高,达到57%,7个样品中有3个含有牛源性成分。表7可知,其中3个鹿肾经检测只有1个是梅花鹿肾,鹿心产品经检测为猪心,鹿肉干也不是由梅花鹿肉制成,而是由马鹿肉和赤鹿肉制成。
表1 鹿茸产品的检测结果
表2 鹿胎产品的检测结果
表3 鹿鞭产品的检测结果
表4 鹿筋产品的检测结果
表5 鹿尾产品的检测结果
表6 鹿血产品的检测结果
表7 其他鹿产品的检测结果
Claims (3)
1. 一种快速检测鹿产品的多重PCR试剂盒,其特征在于包括以下引物:
1)梅花鹿、马鹿、塔里木马鹿、赤鹿和驯鹿特异mtD-loop:
DF(上游):5’-CAAAGCACGTGATATAACCTTATG-3’
DR(下游):5’-CATGGTAATTAAGCTCGTGATCTA-3’
2)马鹿特异mtD-loop:
CCF(上游):5’-CATGTATAACAGTACATGAGTTAGCG-3’
DR(下游):5’-CATGGTAATTAAGCTCGTGATCTA-3’
3)塔里木马鹿特异mtD-loop:
CYF(上游):5’-CTCAACATCCATTTTACATCTTACATTA-3’
DR(下游):5’-CATGGTAATTAAGCTCGTGATCTA-3’
4)驯鹿线粒体特异mt16S rDNA:
RTF(上游):5’-GGAGTAATCCAGGTCGGTTTCTATC-3’
RTR(下游):5’-TAGGGCGGGATATGTTTGTGTATC-3’。
2. 权利要求1所述的快速检测鹿产品的多重PCR试剂盒,其特征在于包括DNA提取液、鹿源性多重PCR反应液和猪、牛、羊、鸡源性多重PCR反应液和阴性标准品:
所述的DNA提取液:
(1)低盐缓冲液(pH 7.6-7.8):12-13份Tris碱(三羟甲基氨基甲烷),32-35份 Na2EDTA(乙二胺四乙酸二钠),7-8份MgCl2,4-5份NaCl,余份为水;
(2)细胞裂解液:4-6份 SDS十二烷基硫酸钠,4-6份Triton X-100(聚乙二醇对异辛基苯基醚),1000份低盐缓冲液;
(3)蛋白酶K:2份蛋白酶K,100份水;
所述的鹿源性多重PCR反应液:
ddH2O、10×PCR Buffer、dNTPs、引物DF、引物CCF、引物CYF、引物DR、引物RTF、引物RTR、Taq酶;
具体引物序列为:
1)梅花鹿、马鹿、塔里木马鹿、赤鹿和驯鹿特异mtD-loop:
DF(上游):5’-CAAAGCACGTGATATAACCTTATG-3’
DR(下游):5’-CATGGTAATTAAGCTCGTGATCTA-3’
2)马鹿特异mtD-loop:
CCF(上游):5’-CATGTATAACAGTACATGAGTTAGCG-3’
DR(下游):5’-CATGGTAATTAAGCTCGTGATCTA-3’
3)塔里木马鹿特异mtD-loop:
CYF(上游):5’-CTCAACATCCATTTTACATCTTACATTA-3’
DR(下游):5’-CATGGTAATTAAGCTCGTGATCTA-3’
4)驯鹿线粒体特异mt16S rDNA:
RTF(上游):5’-GGAGTAATCCAGGTCGGTTTCTATC-3’
RTR(下游):5’-TAGGGCGGGATATGTTTGTGTATC-3’ ;
猪、牛、羊、鸡源性多重PCR反应液:
ddH2O、10×PCR Buffer、dNTPs、引物SSF、引物SSR、引物OAF、引物OAR、引物GGF、引物GGR、引物BTF、引物BTR、Taq酶;
具体引物序列为:
1)猪特异mt12S rRNA-tRNA-Val:
SSF(上游):5’-CTACATAAGAATATCCACCACA-3’
SSR(下游):5’-ACATTGTGGGATCTTCTAGGT-3’
2)牛特异tRNA-Val-16S rRNA:
BTF(上游):5’-GTGCTTGGATAAATCAAGATATAGC-3’
BTR(下游):5’-CTTGGTTGTTTAGTCGAGAGGG-3’
3)羊特异tRNA-Lys-ATP8:
OAF(上游) 5’- TTAAAGACTGAGAGCATGATA-3’
OAR(下游):5’- ATGAAAGAGGCAAATAGATTTTCG-3’
4)鸡特异12S rRNA:
GGF(上游):5’- TGAGAACTACGAGCACAAAC-3’
GGR(下游):5’-GGGCTATTGAGCTCACTGTT-3’
阴性标准品:为无菌双蒸水。
3. 权利要求2所述快速检测鹿产品的多重PCR试剂盒的制备方法,包括以下步骤:
1)鹿源性多重PCR反应液
(1)引物设计:
设计梅花鹿,赤鹿,马鹿,塔里木马鹿和驯鹿的特异性引物;其中包括一个共同的下游引物(DR),一个上游引物(DF)和两个物种特异性上游引物(赤鹿CCF,塔里木马鹿CYF);
①梅花鹿、马鹿、塔里木马鹿、赤鹿和驯鹿特异mtD-loop:
DF(上游):5’-CAAAGCACGTGATATAACCTTATG-3’
DR(下游):5’-CATGGTAATTAAGCTCGTGATCTA-3’
②马鹿特异mtD-loop:
CCF(上游):5’-CATGTATAACAGTACATGAGTTAGCG-3’
DR(下游):5’-CATGGTAATTAAGCTCGTGATCTA-3’
③塔里木马鹿特异mtD-loop:
CYF(上游):5’-CTCAACATCCATTTTACATCTTACATTA-3’
DR(下游):5’-CATGGTAATTAAGCTCGTGATCTA-3’
④驯鹿线粒体特异mt16S rDNA:
RTF(上游):5’-GGAGTAATCCAGGTCGGTTTCTATC-3’
RTR(下游):5’-TAGGGCGGGATATGTTTGTGTATC-3’
(2)所述的鹿源性多重PCR反应液:
ddH2O、10×PCR Buffer、dNTPs、引物DF、引物CCF、引物CYF、引物DR、引物RTF、引物RTR、Taq酶:
2)所述的DNA提取液:
(1)低盐缓冲液(pH 7.6-7.8):12-13份Tris碱(三羟甲基氨基甲烷),32-35份 Na2EDTA(乙二胺四乙酸二钠),7-8份MgCl2,4-5份NaCl,余份为水;
(2)细胞裂解液:4-6份 SDS十二烷基硫酸钠,4-6份Triton X-100(聚乙二醇对异辛基苯基醚),1000份低盐缓冲液;
(3)蛋白酶K:2份蛋白酶K,100份水;
3)猪、牛、羊、鸡源性多重PCR反应液
(1)引物设计:
猪、羊、鸡的特异性引物:
①猪特异mt12S rRNA-tRNA-Val:
SSF(上游):5’-CTACATAAGAATATCCACCACA-3’
SSR(下游):5’-ACATTGTGGGATCTTCTAGGT-3’
②牛特异tRNA-Val-16S rRNA:
BTF(上游):5’-GTGCTTGGATAAATCAAGATATAGC-3’
BTR(下游):5’-CTTGGTTGTTTAGTCGAGAGGG-3’
③羊特异tRNA-Lys-ATP8:
OAF(上游) 5’- TTAAAGACTGAGAGCATGATA-3’
OAR(下游):5’- ATGAAAGAGGCAAATAGATTTTCG-3’
④鸡特异12S rRNA:
GGF(上游):5’- TGAGAACTACGAGCACAAAC-3’
GGR(下游):5’-GGGCTATTGAGCTCACTGTT-3’
(2)PCR反应液:
Taq酶 5U/μl,10×PCR buffer,dNTPs 100 μM,引物OAF、OAR 50 μM,引物SSF、SSR、GGF、GGR、BTF、BTR均为20 μM;
4)阴性标准品:为无菌双蒸水。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN2012101085629A CN102605098A (zh) | 2012-04-15 | 2012-04-15 | 一种快速检测鹿产品的多重pcr试剂盒及制备方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN2012101085629A CN102605098A (zh) | 2012-04-15 | 2012-04-15 | 一种快速检测鹿产品的多重pcr试剂盒及制备方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN102605098A true CN102605098A (zh) | 2012-07-25 |
Family
ID=46522862
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN2012101085629A Pending CN102605098A (zh) | 2012-04-15 | 2012-04-15 | 一种快速检测鹿产品的多重pcr试剂盒及制备方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN102605098A (zh) |
Cited By (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103525935A (zh) * | 2013-10-22 | 2014-01-22 | 张敏 | 新西兰赤鹿鹿鞭和梅花鹿鹿鞭的鉴别引物及其pcr鉴别方法 |
CN104946730A (zh) * | 2014-03-28 | 2015-09-30 | 中国中医科学院中药研究所 | 鉴定鹿茸的pcr特异引物及其检测方法 |
CN104962650A (zh) * | 2015-07-25 | 2015-10-07 | 中国计量学院 | 一种同步鉴别动物源性成分的pcr方法及试剂盒 |
CN106868188A (zh) * | 2017-04-11 | 2017-06-20 | 山东省农业科学院生物技术研究中心 | 一种鹿角胶中鹿、牛源性多重荧光pcr检测引物、探针、试剂盒及检测方法与应用 |
CN107164468A (zh) * | 2017-05-16 | 2017-09-15 | 中国农业科学院特产研究所 | 用于鹿的多态性微卫星dna分子标记及其用途 |
CN107805664A (zh) * | 2016-09-07 | 2018-03-16 | 中国检验检疫科学研究院 | GeXP多重PCR鉴别鹿种的组合物、试剂盒和方法 |
CN111733263A (zh) * | 2020-08-17 | 2020-10-02 | 云南农业大学 | 一种与猪脂类代谢能力相关的基因标志物及检测试剂盒 |
-
2012
- 2012-04-15 CN CN2012101085629A patent/CN102605098A/zh active Pending
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
查代明: "《基于线粒体DNA序列的鹿产品分子检测》", 《中国优秀硕士学位论文全文数据库医药卫生科技辑(月刊)》 * |
Cited By (12)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103525935A (zh) * | 2013-10-22 | 2014-01-22 | 张敏 | 新西兰赤鹿鹿鞭和梅花鹿鹿鞭的鉴别引物及其pcr鉴别方法 |
CN104946730A (zh) * | 2014-03-28 | 2015-09-30 | 中国中医科学院中药研究所 | 鉴定鹿茸的pcr特异引物及其检测方法 |
CN104946730B (zh) * | 2014-03-28 | 2020-06-19 | 中国中医科学院中药研究所 | 鉴定鹿茸的pcr特异引物及其检测方法 |
CN104962650A (zh) * | 2015-07-25 | 2015-10-07 | 中国计量学院 | 一种同步鉴别动物源性成分的pcr方法及试剂盒 |
CN104962650B (zh) * | 2015-07-25 | 2017-12-19 | 中国计量学院 | 一种同步鉴别动物源性成分的pcr方法及试剂盒 |
CN107805664A (zh) * | 2016-09-07 | 2018-03-16 | 中国检验检疫科学研究院 | GeXP多重PCR鉴别鹿种的组合物、试剂盒和方法 |
CN107805664B (zh) * | 2016-09-07 | 2022-05-24 | 中国检验检疫科学研究院 | GeXP多重PCR鉴别鹿种的组合物、试剂盒和方法 |
CN106868188A (zh) * | 2017-04-11 | 2017-06-20 | 山东省农业科学院生物技术研究中心 | 一种鹿角胶中鹿、牛源性多重荧光pcr检测引物、探针、试剂盒及检测方法与应用 |
CN106868188B (zh) * | 2017-04-11 | 2020-07-31 | 山东省农业科学院生物技术研究中心 | 一种鹿角胶中鹿、牛源性多重荧光pcr检测引物、探针、试剂盒及检测方法与应用 |
CN107164468A (zh) * | 2017-05-16 | 2017-09-15 | 中国农业科学院特产研究所 | 用于鹿的多态性微卫星dna分子标记及其用途 |
CN107164468B (zh) * | 2017-05-16 | 2021-04-13 | 中国农业科学院特产研究所 | 用于鹿的多态性微卫星dna分子标记及其用途 |
CN111733263A (zh) * | 2020-08-17 | 2020-10-02 | 云南农业大学 | 一种与猪脂类代谢能力相关的基因标志物及检测试剂盒 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN102605098A (zh) | 一种快速检测鹿产品的多重pcr试剂盒及制备方法 | |
CN105483291B (zh) | 猪德尔塔冠状病毒、猪流行性腹泻病毒、猪传染性胃肠炎病毒多重rt-pcr检测引物 | |
CN105755149A (zh) | 基于线粒体coⅰ基因的畜禽肉中猪牛羊源性成分鉴别pcr专用引物对及pcr鉴定方法和试剂盒 | |
CN104498599B (zh) | 一组微孢子虫分子通用检测引物及其试剂盒 | |
CN105441537A (zh) | 一种秦岭非法贸易动物物种分子鉴定的方法及其引物 | |
CN101845508B (zh) | 虎源性、豹源性dna的pcr检测引物、试剂盒及检测方法 | |
CN104232742A (zh) | 一种荧光实时pcr法检测食品中鸭源性成分的方法 | |
CN101974635B (zh) | 用于阿胶真伪鉴别的组合物、试剂盒、方法及应用 | |
CN105087798A (zh) | 红木中降香黄檀的分子鉴定方法及其引物和探针 | |
Zangooie et al. | Molecular detection of Trypanosoma evansi based on ITS1 rDNA gene in Camelus dromedarius in Sistan Region, Iran. | |
CN105400910A (zh) | 猪德尔塔冠状病毒和猪传染性胃肠炎病毒多重rt-pcr检测引物及检测方法 | |
CN102618653A (zh) | 快速检测鹿源性鹿产品真伪的pcr试剂盒及制备方法 | |
CN104531868A (zh) | 一种用于鉴定西洋参的引物对及其应用 | |
CN101629217A (zh) | 猪流感病毒rt-lamp检测试剂盒及其检测方法 | |
CN102605095A (zh) | 一种快速检测驯鹿源性鹿产品的pcr试剂盒及制备方法 | |
CN101845515B (zh) | 焦磷酸测序技术检测猪肉制品中猪甲型h1n1流感病毒的方法 | |
CN102605097A (zh) | 一种快速检测马鹿源性鹿产品的pcr试剂盒 | |
CN103343170A (zh) | 牛病毒性腹泻病毒rt-pcr检测试剂盒 | |
CN105112410A (zh) | 用于马来沉香鉴定的基因检测引物、探针和方法 | |
CN105132541A (zh) | 红木中交趾黄檀dna鉴定的方法及专用引物和探针 | |
CN102605096A (zh) | 一种快速检测水鹿源性鹿产品的pcr试剂盒及制备方法 | |
CN109371009A (zh) | 一种高通量玉米叶片dna提取的方法 | |
CN104611454B (zh) | 一种同时检测蓝狐、貉和犬物种成分的引物组及其应用 | |
Saderi et al. | Identification of bovine, ovine and caprine pure and binary mixtures of raw and heat processed meats using species specific size markers targeting mitochondrial genome | |
CN102618652A (zh) | 快速检测塔里木马鹿源性鹿产品pcr试剂盒及制备方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C12 | Rejection of a patent application after its publication | ||
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |
Application publication date: 20120725 |