CN102559663A - 一种草鱼基因组dna快速提取方法 - Google Patents

一种草鱼基因组dna快速提取方法 Download PDF

Info

Publication number
CN102559663A
CN102559663A CN2012100317455A CN201210031745A CN102559663A CN 102559663 A CN102559663 A CN 102559663A CN 2012100317455 A CN2012100317455 A CN 2012100317455A CN 201210031745 A CN201210031745 A CN 201210031745A CN 102559663 A CN102559663 A CN 102559663A
Authority
CN
China
Prior art keywords
grass carp
adsorption column
genome dna
lysate
centrifugal
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
CN2012100317455A
Other languages
English (en)
Other versions
CN102559663B (zh
Inventor
李家乐
傅建军
沈玉帮
白志毅
陈勇
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Shanghai Maritime University
Shanghai Ocean University
Original Assignee
Shanghai Maritime University
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Shanghai Maritime University filed Critical Shanghai Maritime University
Priority to CN 201210031745 priority Critical patent/CN102559663B/zh
Publication of CN102559663A publication Critical patent/CN102559663A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN102559663B publication Critical patent/CN102559663B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明涉及一种草鱼基因组DNA提取方法,包括步骤:1)裂解:草鱼鳍条组织经无菌水清洗后,吸干水分,剪成小碎块,置于无菌离心管中,加入裂解液,颠倒混匀,45-65℃下,裂解1-2.5小时至澄清,裂解过程中将离心管来回颠倒数次;2)离心:将草鱼鳍条组织裂解液在离心机上离心;3)吸附:吸取草鱼鳍条组织裂解液离心后的上清液,加入用NaAc溶液滤洗过的吸附柱中,其下面附收集管,静置后将吸附柱离心,弃去收集管中的废液;4)漂洗:向吸附柱中加入洗涤液后将吸附柱离心,弃去收集管中的废液;5)溶解:将漂洗后的吸附柱放置在离心管中,静置,加入无菌水,再静置后离心,离心管中即为收集的DNA。

Description

一种草鱼基因组DNA快速提取方法
技术领域
本发明涉及一种动物组织DNA提取的方法,更具体的说涉及一种草鱼基因组DNA的提取方法。
背景技术
基因组DNA提取作为一项最基础的分子生物学技术,是开展诸多分子生物学研究的成功保证。对于水产动物育种研究,基础群体遗传多样性研究及早期选育工作,要求尽量保证在不处死并需要大量的研究个体。伴随高通量测序技术及各种基因芯片的发展应用,大规模基因组DNA的提取已成为现在科研工作的必要,而目前许多DNA提取方法已经不能很好的满足这种要求。
常规使用的酚/氯仿的基因组DNA提取方法,不仅操作复杂、耗时长,而且抽提过程中多次使用挥发性试剂,并产生大量的有毒废液,既不安全也不环保。而采用试剂盒进行大规模提取DNA,昂贵的价格不适于大规模作业。本发明提供一种简便快捷并健康安全的草鱼基因组DNA的提取方法。
发明内容DNA
本发明的目的是提供一种草鱼基因组DNA的快速提取方法,以克服现有DNA提取方法存在的缺陷,本发明的提取方法操作简单,快速、安全。
为实现本发明的目的,本发明的技术方案是:
一种草鱼基因组DNA提取方法,包括以下步骤:
1)裂解:草鱼鳍条组织经无菌水清洗后,吸干水分,剪成小碎块,置于无菌离心管中,加入裂解液,颠倒混匀,45-65℃下,裂解1-2.5小时至澄清得草鱼鳍条组织裂解液,裂解过程中将离心管来回颠倒数次;
2)离心:将草鱼鳍条组织裂解液在离心机上离心;
3)吸附:吸取草鱼鳍条组织裂解液离心后的上清液,加入用NaAc溶液滤洗过的吸附柱中,其下面附收集管,静置2-4min后将吸附柱离心,弃去收集管中的废液;
4)漂洗:向吸附柱中加入洗涤液后将吸附柱离心,弃去收集管中的废液;
5)溶解:将漂洗后的吸附柱放置在无菌离心管中,静置1-2min,加入无菌水,静置2-4min后离心,离心管中即为收集的DNA。
在本发明的一优选实施例中,所述步骤1)中裂解液由pH值为8.0,摩尔浓度为1M的Tris·HCl水溶液,pH值为8.0,摩尔浓度为0.5M的EDTANa2水溶液,质量含量为10%的SDS水溶液,无菌水,蛋白酶K按体积比5∶20∶10∶64∶1混合而成。
在本发明的一优选实施例中,所述步骤1)中裂解液的其用量为:1mg鳍条组织加入20μl裂解液。
在本发明的一优选实施例中,所述步骤3)中NaAc溶液为3M,冰醋酸调节pH值至5.2。
在本发明的一优选实施例中,所述步骤4)中洗涤液由pH值为7.4,摩尔浓度为1M的Tris·HCl水溶液,pH值为8.0,摩尔浓度为0.5M的EDTA水溶液,无水乙醇,无菌水按体积比4∶1∶350∶235混合而成。
在本发明的一优选实施例中,所述步骤4)中洗涤液的体积为步骤3)中加入到吸附柱中上清液体积的1-3倍。
在本发明的一优选实施例中,所述步骤5)中无菌水的体积为步骤3)中加入到吸附柱中上清液体积的0.5-1.2倍。
在本发明的一优选实施例中,所述步骤2)-5)中,离心温度为4-8℃下,离心转速为3000-5000rpm,离心时间为1-5min。
本发明的草鱼基因组DNA提取方法与传统的酚/氯仿的基因组DNA提取方法相比,不仅操作简便、耗时短,减低繁琐操作导致出错的概率,而且抽提过程中避免了使用大量的有毒试剂,更加健康环保;与试剂盒提取基因组DNA的方法相比,本发明的方法成本大大降低。
附图说明
图1是本发明的方法和传统酚/氯仿法提取的草鱼基因组DNA电泳结果,其中1-4为本发明的方法提取获得的DNA样,5-8为传统酚/氯仿法提取获得的DNA样,M为分子量标准D2000。
图2是本发明的方法和传统酚/氯仿法提取的草鱼基因组DNA的PCR扩增产物电泳结果,其中1-4为以本发明提取获得DNA为模板的PCR扩增产物,5-8为以传统酚/氯仿法提取获得DNA为模板的PCR扩增产物,M为分子量标准D2000。
图3本发明的方法和DNA提取试剂盒提取的草鱼基因组DNA电泳结果,其中1-4为本发明的方法提取获得的DNA样,5-8为DNA提取试剂盒提取获得的DNA样,M为分子量标准D2000。
图4是本发明的方法和DNA提取试剂盒提取的草鱼基因组DNA的PCR扩增产物电泳结果,其中1-4为以本发明提取获得DNA为模板的PCR扩增产物,5-8为以DNA提取试剂盒提取获得DNA为模板的PCR扩增产物,M为分子量标准D2000。
具体实施方式
下面通过实施例和对比例进一步说明本发明。在以下实施例和对比例中,
所用1M Tris·HCl(pH7.4和pH8.0)溶液通过如下方法制备:121.1g Tris碱于800ml水中溶解,加入浓HCl调节pH值至所需值(pH7.4,HCl 70ml;pH8.0,HCl 42ml),冷却至室温后调节pH值,加水定溶至1L,分装后高压灭菌;
所用0.5M EDTANa2(pH8.0)溶液通过如下方法制备:在800ml水中加入186.1g二水乙二胺四乙酸二钠(EDTA-Na2·H2O),在磁力搅拌器上剧烈搅拌,用NaOH调节pH至8.0(约需20gNaOH颗粒)然后定容至1L,分装后高压灭菌备用;
所用10%SDS(pH7.2)溶液通过如下方法制备:称取100g电泳级SDS在900ml水中溶解,加热至68℃助溶,加入几滴浓盐酸,调节溶液的PH至7.2,加水定容至1L,分装后备用;
所用0.5M EDTA(pH8.0)溶液通过如下方法制备:在800ml水中加入146.1g乙二胺四乙酸,剧烈搅拌,用NaOH调节pH至8.0(约需20gNaOH颗粒)然后定容至1L,分装后高压灭菌备用;
所用裂解液(500μl)体系由25μl 1M Tris·HCl(pH 8.0),100μl 0.5MEDTANa2(pH8.0),50μl 10%SDS,320μl无菌水,5μl蛋白酶K组成;
所用洗涤液(500μl)体系由4μl 1M Tris·HCl(pH 7.4),1μl 0.5MEDTA(pH8.0),350μl无水乙醇,235μl无菌水组成;
所用3M NaAc(pH 5.2)溶液可通过如下方法制备:称取40.8gNaAc·3H2O,加水定溶至100ml,用冰醋酸调节pH至5.2;
所用NaAc溶液滤洗吸附柱的过程为:向吸附柱加入300μl 3MNaAc(pH 5.2)溶液,下面附收集管,静置2min,4000rpm(4℃)离心1min,弃去收集管中废液;
所用蛋白酶K,硅胶膜离子吸附柱及收集管子等试剂耗材购置于天根生化科技(北京)有限公司。
所用2×Taq PCR MasterMix 12.5μl由天根生化科技有限公司生产。
所采用微卫星引物序列信息为(Xia J.H.et al.A consensus linkagemap of the grass carp(Ctenopharyngodon idella)based on microsatellitesand SNPs.BMC Genomics 2010,11:135.):
CID1528F:GCTGGTTTAAACAGGCACACCTTC;
CID1528R:TTGGGACGGAAAGCTGCTCTG。
实施例1
用本发明的方法提取草鱼基因组DNA
1)剪取约25mg鳍条组织,无菌水清洗,用滤纸吸干水分,剪成小碎块,置于1.5ml无菌离心管中,加入500μl裂解液,颠倒混匀,55℃水浴锅或摇床,裂解1.5-2小时至澄清,裂解过程将离心管来回颠倒数次;
2)取出以上步骤1)的裂解液,在离心机上4000rpm(4℃)离心1min;
3)吸取150μl裂解液的上清液,加入到用NaAc溶液滤洗过的吸附柱中,下面附收集管,室温静置3min,4000rpm(4℃)将吸附柱离心2min,弃去收集管中的废液;
4)向每个吸附柱中加入300μl洗涤液,4000rpm(4℃)将吸附柱离心3min,弃去收集管中的废液;
5)将漂洗后的吸附柱转移至无菌的1.5ml离心管中,静置1min,加入120-150μl无菌水,静置3min,4000rpm(4℃)离心3min,弃去吸附柱,离心管中即为收集的DNA,4℃保存备用。
对比例1
传统酚/氯仿法提取草鱼基因组DNA
组织裂解方法依照实施例1中步骤1),DNA提取过程,经过多次酚/氯仿抽提后收集DNA,4℃保存备用。
对比例2
试剂盒提取草鱼基因组DNA
a.20-50mg组织剪成小碎块,转入装有180μl组织裂解液的1.5ml离心管中,用大口径枪头吹打混匀;
b.加入20μl的蛋白酶K溶液(20mg/ml),立刻涡旋震荡充分混匀;
c.将裂解物放置在55℃水浴1-3小时,期间轻柔震荡几次;
d.加入200μl结合液,立刻涡旋震荡充分混匀,70℃放置10min;
e.冷却后加100μl异丙醇,立刻涡旋震荡充分混匀;
f.用1ml的枪头吸取混合物,将混合物加入一个吸附柱中,吸附柱放入收集管,13000rpm离心60s,倒掉收集管中废液;
g.加入500μl抑制物去除液,12000rpm离心30s,弃去废液;
h.加入700μl漂洗液,12000rpm离心30s,弃去废液;
i.将吸附柱放回空收集管中,13000rpm离心2min,尽量除去漂洗液;
j.取出吸附柱,放入干净的离心管中,在吸附膜的中间部位加100μl洗脱缓冲液EB,室温放置3-5分钟,12000rpm离心1分钟。离心管中DNA放置4℃备用。
发明人对实施例1和对比例1提取的草鱼基因组DNA及其相应的SSR扩增产物进行了比较。
分别吸取实施例1和对比例1提取获得的草鱼基因组DNA 3μl同时进行1.0%琼脂糖胶电泳检测,结果如图1所示,其中1-4为本发明提取获得DNA样,5-8为传统酚/氯仿法提取获得DNA样,M为分子量标准D2000。从图中可以看出:相比传统酚/氯仿法在获得量上较少,但存在拖带更少的优点,说明本发明方法能有效获得高质量的草鱼基因组DNA。
对以上DNA样品采用分光光度计检测浓度,再稀释至终浓度10ng/μl,用于SSR扩增,引物为CID1528,25℃ PCR反应体系,2×Taq PCR MasterMix 12.5μl,CID1528F(10μM)1μl,CID1528R(10μM)1μl,DNA(10ng/μl)2μl,ddH2O 8.5μl;程序设置为预变性94℃ 3min,30个循环(94℃ 30S,55℃ 30S,72℃ 30S),72℃ 5min;吸取PCR产物3μl采用检测1.2%琼脂糖胶电泳检测,结果如图2所示,其中1-4为以本发明提取获得DNA为模板的PCR扩增产物,5-8为以传统酚/氯仿法提取获得DNA为模板的PCR扩增产物,M为分子量标准D2000。从图中可以看出:传统酚/氯仿法与本发明方法获得的草鱼基因组DNA均能较好地用于SSR的PCR扩增。
发明人对实施例1和对比例2提取的草鱼基因组DNA及其相应的SSR扩增产物进行了比较。
分别吸取实施例1和对比例2提取获得的草鱼基因组DNA 3μl同时进行1.0%琼脂糖胶电泳检测,结果如图3所示,其中1-4为本发明提取获得DNA样,5-8为DNA提取试剂盒提取获得DNA样,M为分子量标准D2000。从图中可以看出:本发明方法相比试剂盒提取方法在获得量方面稍差,均能有效获得高质量的草鱼基因组DNA。
对以上DNA样品采用分光光度计检测浓度,再稀释至终浓度10ng/μl,用于SSR扩增,引物为CID1528,25℃ PCR反应体系,2×Taq PCR MasterMix 12.5μl,CID1528F(10μM)1μl,CID1528R(10μM)1μl,DNA(10ng/μl)2μl,ddH2O 8.5μl;程序设置为预变性94℃ 3min,30个循环(94℃ 30S,55℃ 30S,72℃ 30S),72℃ 5min;吸取PCR产物3μl采用检测1.2%琼脂糖胶电泳检测,结果如图2所示,其中1-4为以本发明提取获得DNA为模板的PCR扩增产物,5-8为以DNA提取试剂盒提取获得DNA为模板的PCR扩增产物,M为分子量标准D2000。从图中可以看出:本发明方法与试剂盒提取方法获得的草鱼基因组DNA均能较好地用于SSR的PCR扩增。

Claims (8)

1.一种草鱼基因组DNA提取方法,其特征在于,包括以下步骤:
1)裂解:草鱼鳍条组织经无菌水清洗后,吸干水分,剪成小碎块,置于无菌离心管中,加入裂解液,颠倒混匀,45-65℃下,裂解1-2.5小时至澄清得草鱼鳍条组织裂解液,裂解过程中将离心管来回颠倒数次;
2)离心:将草鱼鳍条组织裂解液在离心机上离心;
3)吸附:吸取草鱼鳍条组织裂解液离心后的上清液,加入用NaAc溶液滤洗过的吸附柱中,其下面附收集管,静置2-4min后将吸附柱离心,弃去收集管中的废液;
4)漂洗:向吸附柱中加入洗涤液后将吸附柱离心,弃去收集管中的废液;
5)溶解:将漂洗后的吸附柱放置在无菌离心管中,静置0.5-2min,加入无菌水,静置2-4min后离心,离心管中即为收集的DNA。
2.根据权利要求1所述的草鱼基因组DNA提取方法,其特征在于,所述步骤1)中裂解液由pH值为8.0,摩尔浓度为1M的Tris·HCl水溶液,pH值为8.0,摩尔浓度为0.5M的EDTANa2水溶液,质量含量为10%的SDS水溶液,无菌水,蛋白酶K按体积比5∶20∶10∶64∶1混合而成。
3.根据权利要求1所述的草鱼基因组DNA提取方法,其特征在于,所述步骤1)中裂解液的其用量为:1mg鳍条组织加入20μl裂解液。
4.根据权利要求1所述的草鱼基因组DNA提取方法,其特征在于,所述步骤)中NaAc溶液为3M,冰醋酸调节pH值至5.2。
5.根据权利要求1所述的草鱼基因组DNA提取方法,其特征在于,所述步骤4)中洗涤液由pH值为7.4,摩尔浓度为1M的Tris·HCl水溶液,pH值为8.0,摩尔浓度为0.5M的EDTA水溶液,无水乙醇,无菌水按体积比4∶1∶350∶235混合而成。
6.根据权利要求1所述的草鱼基因组DNA提取方法,其特征在于,所述步骤4)中洗涤液的体积为步骤3)中加入到吸附柱中上清液体积的1-3倍。
7.根据权利要求1所述的草鱼基因组DNA提取方法,其特征在于,所述步骤5)中无菌水的体积为步骤3)中加入到吸附柱中上清液体积的0.5-1.2倍。
8.根据权利要求1所述的草鱼基因组DNA提取方法,其特征在于,所述步骤2)-5)中,离心温度为4-8℃下,离心转速为3000-5000rpm,离心时间为1-5min。
CN 201210031745 2012-02-13 2012-02-13 一种草鱼基因组dna快速提取方法 Active CN102559663B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN 201210031745 CN102559663B (zh) 2012-02-13 2012-02-13 一种草鱼基因组dna快速提取方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN 201210031745 CN102559663B (zh) 2012-02-13 2012-02-13 一种草鱼基因组dna快速提取方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN102559663A true CN102559663A (zh) 2012-07-11
CN102559663B CN102559663B (zh) 2013-04-24

Family

ID=46406270

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN 201210031745 Active CN102559663B (zh) 2012-02-13 2012-02-13 一种草鱼基因组dna快速提取方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN102559663B (zh)

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN105154434A (zh) * 2015-10-16 2015-12-16 天津农学院 一种鱼鳍微量基因组dna提取方法
CN105586333A (zh) * 2016-01-07 2016-05-18 中国人民解放军第二军医大学 一种用于核酸扩增的酵母样真菌总dna快速提取方法
CN107129985A (zh) * 2017-06-08 2017-09-05 中国中医科学院中药研究所 用于蛤蚧干品肌肉组织dna高效提取的试剂盒、提取方法及应用
CN109055358A (zh) * 2018-08-27 2018-12-21 杭州市农业科学研究院 一种可用于pcr的简易鱼鳍基因组dna提取方法
CN110506676A (zh) * 2019-08-23 2019-11-29 上海海洋大学 Elovl1基因及其应用

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR20040026519A (ko) * 2002-09-25 2004-03-31 대한민국 (부경대학교총장) 형질전환 어류의 피씨알 분석을 위한 신속한 디앤에이추출 방법
CN102161988A (zh) * 2011-01-21 2011-08-24 中国科学院海洋研究所 一种提取单个鱼卵仔鱼微量总dna的简便快速方法

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR20040026519A (ko) * 2002-09-25 2004-03-31 대한민국 (부경대학교총장) 형질전환 어류의 피씨알 분석을 위한 신속한 디앤에이추출 방법
CN102161988A (zh) * 2011-01-21 2011-08-24 中国科学院海洋研究所 一种提取单个鱼卵仔鱼微量总dna的简便快速方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
范武江: "鳙鱼不同组织基因组DNA提取方法的探讨", 《南方水产》 *

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN105154434A (zh) * 2015-10-16 2015-12-16 天津农学院 一种鱼鳍微量基因组dna提取方法
CN105586333A (zh) * 2016-01-07 2016-05-18 中国人民解放军第二军医大学 一种用于核酸扩增的酵母样真菌总dna快速提取方法
CN107129985A (zh) * 2017-06-08 2017-09-05 中国中医科学院中药研究所 用于蛤蚧干品肌肉组织dna高效提取的试剂盒、提取方法及应用
CN107129985B (zh) * 2017-06-08 2020-06-09 中国中医科学院中药研究所 用于蛤蚧干品肌肉组织dna高效提取的试剂盒、提取方法及应用
CN109055358A (zh) * 2018-08-27 2018-12-21 杭州市农业科学研究院 一种可用于pcr的简易鱼鳍基因组dna提取方法
CN110506676A (zh) * 2019-08-23 2019-11-29 上海海洋大学 Elovl1基因及其应用

Also Published As

Publication number Publication date
CN102559663B (zh) 2013-04-24

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN102559663B (zh) 一种草鱼基因组dna快速提取方法
CN105779628B (zh) 用于鉴别霍山石斛的snp标记及其分子检测方法
CN106834467A (zh) 一种地龙的dna条形码分子鉴定方法
CN110241230B (zh) 鉴定奥利亚罗非鱼、尼罗罗非鱼及其杂交子代的方法、试剂盒及应用
CN107022604B (zh) 猪ntf3启动子区snp作为公猪繁殖性状分子标记与应用
CN105861671A (zh) 检测奶牛β-酪蛋白基因SNP的引物组合物及其用途
CN108048449B (zh) 一种提取基因组dna的试剂盒
CN101270389A (zh) 半滑舌鳎雌性特异分子标记及其应用
CN104178480B (zh) 利用dna吸附柱快速提取植物dna的试剂盒及方法
CN102296062B (zh) 一种公牛冻精基因组dna的提取方法
CN104498599A (zh) 一组微孢子虫分子通用检测引物及其试剂盒
CN101831494B (zh) 一种含贝母的中成药中川贝母的分子生物学鉴定方法
CN113637787B (zh) 一种与油茶单果质量相关的dna片段及其应用
CN110724735B (zh) 一种快速鉴定暗纹东方鲀个体性别的snp位点和引物及其方法
JP6466725B2 (ja) ウナギの種の同定補助方法
CN111534631B (zh) 与油茶种仁含油率相关的2个snp分子标记及其应用
CN105200146A (zh) 与猪脂肪沉积性状相关的snp遗传标记及应用
CN104988240B (zh) 利用SNP标记rs16287910鉴别蜂群王浆高产性状的方法
CN103966204A (zh) 一种提取高质量鱼翅制品dna的方法
Hänni et al. Molecular typing of Neolithic human bones
CN111534630A (zh) 与油茶种仁含油率相关的snp分子标记及其应用
CN103849618B (zh) 与猪胴体和肉质性状相关的snp分子标记及应用
CN102433322A (zh) 蜂蜜基因的提取方法
CN104975001A (zh) 一种无损伤提取脉红螺基因组dna的方法
CN113584203B (zh) 与油茶单果质量相关的dna片段、其紧密连锁的snp分子标记及其应用

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
C14 Grant of patent or utility model
GR01 Patent grant