CN102154308A - 一种海带孢子体dna的制备方法 - Google Patents
一种海带孢子体dna的制备方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN102154308A CN102154308A CN 201010588696 CN201010588696A CN102154308A CN 102154308 A CN102154308 A CN 102154308A CN 201010588696 CN201010588696 CN 201010588696 CN 201010588696 A CN201010588696 A CN 201010588696A CN 102154308 A CN102154308 A CN 102154308A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- dna
- preparation
- add
- spore body
- kelp spore
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Images
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
本发明提供了一种海带孢子体DNA的制备方法,可以解决现有技术存在的褐藻多糖去除不够彻底、过程繁琐、既费时费用又高的问题。技术方案步骤如下,1)取海带孢子体在清水中反复清洗后置于液氮中,迅速研成粉末;2)将藻粉转入SDS提取缓冲液中,65℃保温60min;3)加入KAc溶液,混合均匀,第一次去多糖;4)离心,取上清,加入异丙醇沉淀DNA;5)离心,弃上清,加入CTAB溶液第二次去多糖;6)离心,水相用KAc溶液第三次去多糖;7)加入氯仿∶异戊醇抽提;8)重复4)步,9)离心,70%冷乙醇洗DNA沉淀,稍干后溶于TE中,加入RNase,得产品。本发明的优点:速度快,效果好,提取效率高,无污染,操作费用较低。
Description
技术领域
本发明涉及海带孢子体DNA的制备,具体地说是一种有效去除褐藻多糖的海带孢子体DNA的制备方法。
背景技术
海带是我国重要的经济海藻之一,它含有丰富的碘、蛋白质及各种人体必需的矿物元素。除了食用和药用价值外,海带所产生的褐藻酸和甘露醇是经济价值很高的工业原料。近年来,随着分子生物学的迅猛发展,分子生物学技术已应用到海带的遗传与变异、种质鉴定及系统发育等方面的研究中,而进行分子生物学研究的前提条件是制备高纯度的海带孢子体总DNA。
众所周知,褐藻多糖如半乳糖及其衍生物和褐藻酸等一直是制约褐藻DNA制备的一个主要因素。与高等植物褐藻多糖相比,褐藻孢子体内的褐藻多糖含量高,粘性大且是水溶性的。由于褐藻多糖能够吸附DNA并与DNA共沉淀,导致所制备的DNA产量低,纯度差,进而导致后续常规的分子生物学操作无法进行,如限制性内切酶反应,PCR反应等。因此,制备高纯度,得率高的海带孢子体DNA是进行分子生物学研究的基础。
目前,关于褐藻DNA制备方法的已有一些报道。一是利用超速离心来去除褐藻多糖以纯化DNA,但这种方法需要大量的海带孢子体材料。二是利用Sepharose spin柱的方法来去除海带孢子体中的褐藻多糖。三是运用CTAB方法,在Sargassum polycystum和S.siliquosum的DNA制备中有效地去除褐藻多糖,以此DNA为模板,成功地进行了PCR反应。四是将褐藻酸裂解酶和CTAB结合来去除褐藻多糖。首先是用褐藻酸裂解酶裂解海带孢子体组织细胞,去除海带孢子体组织表面及细胞壁外褐藻多糖,再利用CTAB方法去除细胞内剩余的褐藻多糖。上述制备海带孢子体DNA的方法,过程繁琐,既费时费用又很高,而且褐藻多糖去除的不是很彻底。
发明内容
本发明提供了一种海带孢子体DNA的制备方法,可以解决现有技术存在的褐藻多糖去除不够彻底、过程繁琐、既费时费用又高的问题。
本发明的目的在于提供一个简单易行的、适用于实验室常规制备海带孢子体DNA的方法。
为解决上述技术问题,本发明采用以下技术方案予以实现:
一种海带孢子体DNA的制备方法,包括如下步骤:
1)取海带孢子体在清水中反复清洗,以去除海带孢子体表面的杂质,并在液氮中迅速将海带孢子体研成藻粉粉末,研磨1-6次;液氮研磨使海带孢子体组织细胞破碎,释放细胞内DNA;
2)将上述藻粉粉末转65℃预热的SDS提取缓冲液中,63-65℃水浴保温60min;
3)加入占上述溶液1/3体积的KAc溶液,混合均匀,第一次去除褐藻多糖;KAc溶液浓度为5mol L-1,pH 7.5;
4)离心,取上清,加入异丙醇;离心条件:室温10000rpm(10621×g)离心30min,取上清,加入等体积异丙醇沉淀DNA;
5)离心,弃上清,加入CTAB提取缓冲液使DNA进一步溶解,65℃保温15min,第二次去除褐藻多糖;离心条件:室温12000rpm离心10min;
6)离心(离心条件:室温12000rpm离心10min),水相加入两倍体积的KAc溶液,离心(室温10000rpm离心20min),第三次去除褐藻多糖;
7)加入上述溶液等体积的氯仿与异戊醇混合液,去除蛋白质等杂质;
8)离心,(离心条件:室温12000rpm离心10min),水相用冷的异丙醇于-18至-20℃沉淀;
9)离心,用70%冷乙醇(重量百分比浓度)洗沉淀,稍干后溶于TE中,加入RNase,终浓度为0.1μg μL-1,以消化RNA,得终产品海带孢子体DNA;离心条件:室温12000rpm离心15min。
本发明通过三次去除褐藻多糖,并且CTAB提取缓冲液和KAc溶液配合使用,使得褐藻多糖去除的更彻底,并且操作简单,省时省力。
进一步地,所述步骤1)中于液氮中研磨时,液氮中加入10%海带孢子体重量的聚乙烯吡咯烷酮(PVP)。
进一步地,所述SDS提取缓冲液的组成为:2.0%sodium dodecylsulfate(SDS),50mmol L-1 ethylenediaminetetra-acetic acid(EDTA),100mmol L-1 Tris.HCl,pH 8.0,500mmol L-1 NaCl,2%β-巯基乙醇。
进一步地,所述氯仿与异戊醇混合液中,氯仿与异戊醇的体积比为24∶1。
进一步地,所述CTAB提取缓冲液的组成为:200mmol L-1Tris-HCl,pH 8.0,50mmol L-1 ethylenediaminetetra-acetic acid,2mol L-1 NaCl,2%cetyltrimethyl ammonium bromide。
DNA浓度及纯度测定:
在获得产品海带孢子体DNA后,将制备的DNA溶解在TE缓冲液中,1)应用普通琼脂糖电泳进行DNA分子量大小的检测,2)使用BioPhotometer进行DNA浓度及纯度测定。
与现有技术相比,本发明的优点和积极效果是:
1、速度快。本发明DNA提取步骤简化,整个制备DNA过程在5-6h内完成。
2、效果好。本发明有效地去除了褐藻多糖;得到了纯度较高(OD260/OD280为1.7-1.9)的海带孢子体DNA。
3、提取效率高。本发明在液氮中研磨,可使胞外或胞内核酸酶失活,减少了DNA的降解;产量为30μg g-1(湿重),能够满足常规分子生物学实验要求。
4、无污染。本发明避免了使用有毒化学药品。
5、操作费用较低。本发明在制备DNA的过程中没有使用蛋白酶K等试剂。
附图说明
图1为海带孢子体DNA普通琼脂糖电泳图谱;
图2以本发明制备的DNA为模板扩增出ITS基因的部分片段的电泳图谱;
图3为以本发明制备的DNA为底物进行限制性酶切反应的电泳图谱。
具体实施方式
下面结合附图和具体实施方式对本发明作进一步详细的说明。
实施例1
海带孢子体DNA的制备
将用清水反复冲洗的0.2-0.3g新鲜的海带孢子体置于液氮中,加入0.02g聚乙烯吡咯烷酮(PVP),迅速研成粉末(1-6次);将藻粉转入65℃预热的SDS提取缓冲液[2.0%sodium dodecyl sulfate(SDS),50mmol L-1 ethylenediaminetetra-acetic acid(EDTA),50mmol L-1 Tris-HCl,pH 8.0,500mmol L-1 NaCl,2%β-巯基乙醇]的离心管中,边加热边混合均匀,65℃水浴保温60min;加入1/3的体积的5mol L-1 KAc,混合均匀,冰上放置30min;10000rpm(10621×g)离心10min;取上清,加入等体积异丙醇,室温12000rpm离心10min;弃上清,水相加入CTAB缓冲液[200mmol L-1Tris-HCl(pH 8.0),50mmol L-1 ethylenediaminetetra-acetic acid(EDTA),2mol L-1 NaCl,2%cetyltrimethyl ammonium bromide(CTAB)],65℃保温15min,第二次去除褐藻多糖;10000rpm离心20min;水相用两倍体积的KAc溶液,离心(室温10000rpm离心20min),第三次去除褐藻多糖;加入等体积的氯仿∶异戊醇(24∶1)抽提10min,室温12000rpm离心10min;取上清,水相加入1倍体积的冷异丙醇沉淀,-20℃沉淀30min;12000rpm室温离心15min;用冷70%乙醇洗DNA沉淀,稍干后溶于TE中,加入RNase,终浓度为0.1μg μL-1。使用BioPhotometer进行DNA浓度及纯度测定;普通琼脂糖凝胶电泳染色后显示所提取的海带DNA大小在23.0Kb以上。
具体应用1:
以本发明实施例1制备的DNA为模板,扩增出ITS基因的部分片段(图3)。PCR扩增所用正向引物为:LB1:5’CGCGAGTCATCAGCTCGCATT3’,反向引物为:LB2:5’AGCTTCACTCGCCGTACTGG3’。PCR反应组成:反应总体积为25μL。1×PCR buffer(50mM KCl,0.01%gelatin,10mM Tris.HCl,pH 9.0),2.5mM MgCl2,0.2mM dNTP,0.2μM引物,40-50ng DNA,,2.0U Taq酶。反应参数为:94℃预变性2min,94℃60s,55℃90s,72℃150s,35个循环,72℃延伸10min。
进行测序,正向测序结果如下:
GGGAATCCTGTCCTTTGTACACACCGCCCGTCGCACCTACCGATTGAATGTTTCGGTGAAGATTCCGGACTGTGGCTCGCGTGCTTCACGGCGCTCTTGCCGTGGGAAGTTATCTAAACCTCAACATTTAGAGGAAGGTGAAGTCGTAACAAGGTTTCCGTAGGTGAACCTGCGGAAGGATCATTACCGAAAGCGGGTTCGTTCAATCCCCCCCGCTCTATAAATTGTCTGTGAGGCCGCTTCGTGCGGCCTCTTTACCCCGAGAAAGAATTCGTTATGCGAAGTTGGGCGAGGGGCGCCTCGCCGAGAGCCTGTGAAAAGGCCCTCGAATCAAAGCGCACCCCACATTTCAACCCATTAAACTCTGAATCTGAACTCAAAGGGGCGCTGCGCTAGCCGCGGCTCCCCCAACCTTTAACGTTGTAAAACTTTCAGCGACGGATGTCTTGGCTCCCACAACGATGAAGAACGCAGCGAAATGCGATACGTCTTGCGACTTGCAGAATCCAGTGAATCATCAAAACTTTGAACGCATCTTGCGCTTCCGGGATACTCCTGGGAGCATGCTTGTCGGAGTGTCTGTTGACACCACTCGCCCCTCTTCTCTCCTGTCTCACGACGGGGGAGTCGCGGCGGCGGACTTTGAGTGTTCCGGAGTTCCCATGCTCCGAGTGCACCTAATCTCGTGAACGAAGCCTCTCGCGCCCTGCCGCACAGAGTTGTTGACGGCGCTCGCTTCGGCGGCGACTCTCGACTCACCAAACGTGCGCAGGATGCCTGCCTCATTCCGGCGCTCCGACGCCGACCCTTCTGGGTCAGCGTTGGAAACCGTACCACTTTCGTTCGGACCTCCGATCAAGCAAGAGGACCCGCTGAATTTAAGCATATAACTAAGCGGGAGGAAAAGAAACTAACCAGGATT
反向测序结果如下:
CGGGGGGCTTGCTTCTTTTCTCCGCTTAGTTATATGCTTAAATTCAGCGGGTCCTCTTGCTTGATCGGAGGTCCGAACGAAAGTGGTACGGTTTCCAACGCTGACCCAGAAGGGTCGGCGTCGGAGCGCCGGAATGAGGCAGGCATCCTGCGCACGTTTGGTGAGTCGAGAGTCGCCGCCGAAGCGAGCGCCGTCAACAACTCTGTGCGGCAGGGCGCGAGAGGCTTCGTTCACGAGATTAGGTGCACTCGGAGCATGGGAACTCCGGAACACTCAAAGTCCGCCGCCGCGACTCCCCCGTCGTGAGACAGGAGAGAAGAGGGGCGAGTGGTGTCAACAGACACTCCGACAAGCATGCTCCCAGGAGTATCCCGGAAGCGCAAGATGCGTTCAAAGTTTTGATGATTCACTGGATTCTGCAAGTCGCAAGACGTATCGCATTTCGCTGCGTTCTTCATCGTTGTGGGAGCCAAGACATCCGTCGCTGAAAGTTTTACAACGTTAAAGGTTGGGGGAGCCGCGGCTAGCGCAGCGCCCCTTTGAGTTCAGATTCAGAGTTTAATGGGTTGAAATGTGGGGTGCGCTTTGATTCGAGGGCCTTTTCACAGGCTCTCGGCGAGGCGCCCCTCGCCCAACTTCGCATAACGAATTCTTTCTCGGGGTAAAGAGGCCGCACGAAGCGGCCTCACAGACAATTTATAGAGCGGGGGGGATTGAACGAACCCGCTTTCGGTAATGATCCTTCCGCAGGTTCACCTACGGAAACCTTGTTACGACTTCACCTTCCTCTAAATGTTGAGGTTTAGATAACTTCCCACGGCAAGAGCGCCGTGAAGCACGCGAGCCACAGTCCGGAATCTTCACCGAAACATTCAATCGGTAGGTGCGACGGGCGGTGTGTACAAAGGGCAGGGACGTAATCAATGC
DNA正反向测序结果与GenBank上已登录的海带ITS序列进行比对,同源性达99%以上,可判断为海带的ITS序列。
具体应用2:
以本发明实施例1制备提取的DNA为底物,进行限制性酶切反应,酶切反应图谱如图3所示。酶切底物为1-2μg海带孢子体DNA,限制性内切酶分别是EcoRI,Sau3Al和HindIII。酶切反应时间为6-7h。
以上所述,仅是本发明的较佳实施例而已,并非是对本发明作其它形式的限制,任何熟悉本专业的技术人员可能利用上述揭示的技术内容加以变更或改型为等同变化的等效实施例。但是凡是未脱离本发明技术方案内容,依据本发明的技术实质对以上实施例所作的任何简单修改、等同变化与改型,仍属于本发明技术方案的保护范围。
Claims (5)
1.一种海带孢子体DNA的制备方法,其特征在于包括如下步骤:
1)取海带孢子体在清水中反复清洗,以去除海带孢子体表面的杂质,并在液氮中迅速将海带孢子体研成藻粉粉末;
2)将上述藻粉粉末转入SDS提取缓冲液中,63-65℃保温60min;
3)加入KAc溶液,混合均匀,第一次去除褐藻多糖;
4)离心,取上清,加入异丙醇;
5)离心,弃上清,加入CTAB提取缓冲液,第二次去除褐藻多糖;
6)离心,在水相加入KAc溶液,第三次去除褐藻多糖;
7)加入氯仿与异戊醇混合液抽提;
8)离心,水相用异丙醇于-18至-20℃沉淀;
9)离心,用70%冷乙醇洗沉淀,稍干后溶于TE中,加入RNase,得终产品海带孢子体DNA。
2.根据权利要求1所述海带孢子体DNA的制备方法,其特征在于:所述步骤1)中于液氮中研磨时,液氮中加入10%海带孢子体重量的聚乙烯吡咯烷酮。
3.根据权利要求1所述海带孢子体DNA的制备方法,其特征在于:所述SDS提取缓冲液的组成为:2.0%sodium dodecyl sulfate,50mmol L-1 ethylenediaminetetra-acetic acid,100mmol L-1Tris-HCl,pH 8.0,500mmol L-1 NaCl,2%β-巯基乙醇。
4.根据权利要求1所述海带孢子体DN A的制备方法,其特征在于:所述氯仿与异戊醇混合液中,氯仿与异戊醇的体积比为24∶1。
5.根据权利要求1所述海带孢子体DNA的制备方法,其特征在于:所述CTAB提取缓冲液的组成为:200mmol L-1 Tris-HCl,pH 8.0,50mmol L-1 ethylenediaminetetra-acetic acid,2mol L-1 NaCl,2%cetyltrimethyl ammonium bromide。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN 201010588696 CN102154308A (zh) | 2010-12-03 | 2010-12-03 | 一种海带孢子体dna的制备方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN 201010588696 CN102154308A (zh) | 2010-12-03 | 2010-12-03 | 一种海带孢子体dna的制备方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN102154308A true CN102154308A (zh) | 2011-08-17 |
Family
ID=44435980
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN 201010588696 Pending CN102154308A (zh) | 2010-12-03 | 2010-12-03 | 一种海带孢子体dna的制备方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN102154308A (zh) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102807978A (zh) * | 2012-04-17 | 2012-12-05 | 浙江省海洋开发研究院 | 一种藻类rna提取剂及使用方法 |
CN103074326A (zh) * | 2012-04-18 | 2013-05-01 | 吉林师范大学 | 一种长白山牛皮杜鹃基因组dna提取的方法 |
CN107475274A (zh) * | 2017-09-11 | 2017-12-15 | 中国海洋大学 | 海带中编码磷酸葡萄糖变位酶的基因、及其蛋白和用途 |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1401782A (zh) * | 2002-04-11 | 2003-03-12 | 上海水产大学 | 海带全基因组dna提取方法 |
CN1769885A (zh) * | 2005-10-28 | 2006-05-10 | 中国海洋大学 | 基于pcr技术的海带种质纯度检测方法 |
CN1800386A (zh) * | 2004-12-30 | 2006-07-12 | 中国科学院海洋研究所 | 一种制备海带孢子体大分子量dna的方法 |
-
2010
- 2010-12-03 CN CN 201010588696 patent/CN102154308A/zh active Pending
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1401782A (zh) * | 2002-04-11 | 2003-03-12 | 上海水产大学 | 海带全基因组dna提取方法 |
CN1800386A (zh) * | 2004-12-30 | 2006-07-12 | 中国科学院海洋研究所 | 一种制备海带孢子体大分子量dna的方法 |
CN1769885A (zh) * | 2005-10-28 | 2006-05-10 | 中国海洋大学 | 基于pcr技术的海带种质纯度检测方法 |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
《中国海洋大学学报》 20080331 石媛嫄 等 海带和长海带配子体无性繁殖系微卫星DNA多态性比较分析 第38卷, 第2期 * |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102807978A (zh) * | 2012-04-17 | 2012-12-05 | 浙江省海洋开发研究院 | 一种藻类rna提取剂及使用方法 |
CN102807978B (zh) * | 2012-04-17 | 2014-02-26 | 浙江省海洋开发研究院 | 一种藻类rna提取剂及使用方法 |
CN103074326A (zh) * | 2012-04-18 | 2013-05-01 | 吉林师范大学 | 一种长白山牛皮杜鹃基因组dna提取的方法 |
CN107475274A (zh) * | 2017-09-11 | 2017-12-15 | 中国海洋大学 | 海带中编码磷酸葡萄糖变位酶的基因、及其蛋白和用途 |
CN107475274B (zh) * | 2017-09-11 | 2020-06-02 | 中国海洋大学 | 海带中编码磷酸葡萄糖变位酶的基因、及其蛋白和用途 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Roh et al. | Comparative study of methods for extraction and purification of environmental DNA from soil and sludge samples | |
CN104178480B (zh) | 利用dna吸附柱快速提取植物dna的试剂盒及方法 | |
US20120152743A1 (en) | Method for electroeluting genetic material from dried samples | |
CN102286460B (zh) | 一种改进ctab法提取杏鲍菇中的dna | |
CN103361339A (zh) | 一种提取丝状真菌基因组dna的方法及试剂盒和遗传转化子的快速筛选方法 | |
CN102605092B (zh) | 柑橘黄龙病的lamp快速检测方法 | |
CN104151424A (zh) | 一种藻蓝蛋白的提取方法 | |
CN102154308A (zh) | 一种海带孢子体dna的制备方法 | |
CN105018463A (zh) | 一种用于次生代谢物含量高的植物组织的dna提取方法 | |
CN100441686C (zh) | 一种土壤总dna小量快速提取方法 | |
CN105602941A (zh) | 一种真菌菌丝总dna提取液及提取真菌菌丝总dna的方法 | |
CN102031252B (zh) | 一种快速提取土壤总dna的方法 | |
CN102268426B (zh) | 一种从环境样品中提取高分子量基因组dna的方法 | |
CN102994493A (zh) | 一种海参体壁总dna提取方法 | |
CN102732508B (zh) | 一种花生基因组dna的提取方法 | |
CN103820434A (zh) | 一种真菌菌丝总dna的提取方法 | |
CN107475243B (zh) | 一种改良酚抽提总rna的方法 | |
CN103966204B (zh) | 一种提取高质量鱼翅制品dna的方法 | |
CN102643801B (zh) | 一种适用于全基因组测序的产糖被细菌基因组dna的提取方法 | |
CN102703430B (zh) | 一种提取普洱茶渥堆发酵过程中微生物总dna的方法 | |
CN101979541A (zh) | 一种快速共价闭合环状dna纯化试剂盒 | |
CN102250882B (zh) | 一种浮游动物及其肠道内含物总基因组dna的提取方法 | |
CN103196980B (zh) | 鱼源链球菌脉冲场凝胶电泳快速分型方法 | |
CN102888396B (zh) | 一种分离植物低分子量rna的方法 | |
Wang et al. | A simple method for DNA extraction from sporophyte in the brown alga Laminaria japonica |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C02 | Deemed withdrawal of patent application after publication (patent law 2001) | ||
WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication |
Application publication date: 20110817 |