CN102144556A - 瑶山苣苔组织培养及快速繁殖的方法 - Google Patents
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Abstract
瑶山苣苔(Dayaoshania cotinifolia W.T.Wang)组织培养及快速繁殖的方法,本发明以分布于广西金秀县老山林场的野生瑶山苣苔叶片为外植体,通过筛选和优化初代诱导、继代增殖、生根和移栽培养基配方和培养条件,经过不定芽的初代诱导、继代增殖和生根培养以及试管苗的移栽阶段,实现珍稀濒危植物瑶山苣苔种苗的快速繁殖,为该物种的生物学研究、遗传改良、种质资源保护和可持续利用奠定基础。
Description
技术领域
本发明属于植物组织培养技术领域,具体涉及瑶山苣苔的组织培养及快速繁殖的方法。
背景技术
瑶山苣苔(Dayaoshania cotinifolia W.T.Wang)是苦苣苔科多年生草本植物,1983年由王文采命名发表的瑶山苣苔属植物新种,为中国广西特有植物。由于其居群数量少,分布范围狭窄,并受人为活动的影响,其种群数量和分布面积急剧减少。在1999年国务院颁布的《国家重点保护植物名录》(第一批)中被列为国家I级重点保护野生植物,被《中国物种红色名录》(第一卷,2004)定为极危种。瑶山苣苔是苦苣苔科较原始的种,具有较高的科研价值和经济价值,由于资源数量分布极其有限,生境特殊,其基础生物学研究近乎空白,更谈不上对其进行繁育及开发利用。因此,利用瑶山苣苔叶片为外植体,通过组织培养技术成功建立其快速繁殖技术体系,为该物种的生物学研究、遗传改良、种质资源保护和可持续利用奠定基础。
发明内容
本发明的目的在于提供一种瑶山苣苔组织培养及快速繁殖的方法。
瑶山苣苔组织培养及快速繁殖的方法,以野外采集的瑶山苣苔植株叶片为外植体,按以下步骤进行组织培养和快速繁殖:
(1)不定芽的初代诱导:将瑶山苣苔植株叶片外植体经表面消毒后接种到诱导培养基上,在温度25±3℃、光照强度20μmol·m-2·s-1、光照时间12h/d的条件下,培养100~140天后,叶片外植体诱导形成愈伤组织和不定芽,其中,所用的初代诱导培养基为:MS+6-BA 0.1~0.4mg·L-1+KT 0.1~0.4mg·L-1+IAB 0.04~0.05mg·L-1+Mg2+50mg·L-1+蔗糖30g·L-1+琼脂6g·L-1,pH 5.0;
(2)芽的继代增殖:将愈伤组织和不定芽转入继代增殖培养基上,在温度25±3℃、光照强度40μmol·m-2·s-1、光照时间12h/d的条件下,培养50~60天,获得从生芽,繁殖系数4.6~5.0/60d,每60天继代一次,其中,所用的继代增殖培养基为:MS+2-ip 0.05~0.2mg·L-1+KT0.05~0.1mg·L-1+IAB 0.02mg·L-1+Mg2+50mg·L-1+蔗糖30g·L-1+琼脂6g·L-1,pH 5.0;
(3)生根培养:将丛生芽苗分切转入生根培养基上,在温度25±3℃、光照强度40μmol·m-2·s-1、光照时间12h/d的条件下,培养40天后获得长好根的试管苗,其中,所用的生根培养基为:1/2MS+2-ip 0.01~0.05mg·L-1+IAB 0.1~0.4mg·L-1+Mg2+50mg·L-1+活性碳0.5~1.0g·L-1+蔗糖20g·L-1+琼脂6g·L-1,pH 5.0;
(4)试管苗移栽:将长好根的试管苗移栽到移栽基质中,放置于遮荫、湿润的原生环境下培养,其中,所用的移栽基质为:腐质土和椰糠按重量份1∶1混均,并添加Mg2+100mg/kg,将pH调至pH 4.5~5.5。
上述步骤(1)中所述初代诱导培养基优选为MS+6-BA 0.2mg·L-1+KT 0.2mg·L-1+IAB0.04mg·L-1+Mg2+50mg·L-1+蔗糖30g·L-1+琼脂6g·L-1,pH 5.0。
上述步骤(2)中所述继代增殖培养基优选为MS+2-ip 0.1mg·L-1+KT 0.05mg·L-1+IAB0.02mg·L-1+Mg2+50mg·L-1+蔗糖30g·L-1+琼脂6g·L-1,pH 5.0。
上述步骤(3)中所述生根培养基优选为1/2MS+2-ip 0.02mg·L-1+IAB 0.2mg·L-1+Mg2+50mg·L-1+活性碳0.5g·L-1+蔗糖30g·L-1+琼脂6g·L-1,pH 5.0。
所述培养基中的Mg2+由硫酸镁提供。
本发明所使用的植物材料:为分布于广西金秀县老山林场的野生瑶山苣苔叶片。
瑶山苣苔是一种对环境要求十分严格的植物,一旦离开原生地植株不能成活,目前为止,原生地之外地区的引种栽培尚未获得成功。本方法在对瑶山苣苔生境土壤进行详细研究的基础上,发现Mg2+对瑶山苣苔的生长起关键作用。因此,本发明利用瑶山苣苔叶片,通过向培养基添加Mg2+,利用组织培养和植株再生技术,成功地在原生地之外对其种苗进行试管快速繁殖,为瑶山苣苔异地引种奠定了基础。
本发明方法的优点在于:利用本方法繁育出的瑶山苣苔种苗,有繁殖速度快、生根率高、遗传稳定性好等特点,能在短期内迅速提高该物种个体数量,达到保护和可持续利用的目的。
具体实施方式:
下面结合实施例对本发明作进一步的说明,但不是对本发明的限定。
实施例1
瑶山苣苔的组织培养及快速繁殖方法,具体步骤如下:
(1)叶片外植体的表面消毒:将从广西金秀县老山林场采集的野生瑶山苣苔叶片作为外植体,用1.0%的洗洁精浸泡10分钟,在流动的自来水下冲洗干净后,置于超净工作台上用70%的酒精浸泡60秒,再用浓度0.1%的HgCl2消毒3分钟,取出叶片,用无菌水浸洗5次;
(2)不定芽的初代诱导:将经过表面消毒的瑶山苣苔叶片剪成1.2×1.5cm小块,接种于初代诱导培养基MS+6-BA 0.4mg·L-1+KT 0.1mg·L-1+IAB 0.05mg·L-1+Mg2+50mg·L-1+蔗糖30g·L-1+琼脂6g·L-1、pH 5.0上,在温度25±3℃、光照强度20μmol·m-2·s-1、光照时间12h/d的条件下,培养30~35天,叶片切口处增厚膨大,形成暗绿色的愈伤组织,培养100天后,愈伤组织逐渐分化形成不定芽,不定芽的分化率为31.7%;
(3)芽的继代增殖:将愈伤组织和不定芽转入继代增殖培养基MS+2-ip 0.2mg·L-1+KT0.01mg·L-1+IAB 0.02mg·L-1+Mg2+50mg·L-1+蔗糖30g·L-1+琼脂6g·L-1、pH 5.0上,在温度25±3℃、光照强度40μmol·m-2·s-1、光照时间12h/d的条件下,培养30~35天,形成较多丛生小芽,再培养30~35天,丛生芽逐渐长成具有2~3片真叶的比较粗壮的无根苗,繁殖系数4.6/60d;
(4)生根培养:将长有2~3片真叶的比较粗壮的无根苗分切,接入生根培养基1/2MS+2-ip 0.05+IAB 0.4mg·L-1+Mg2+50mg·L-1+活性碳1.0g·L-1+蔗糖20g·L-1+琼脂6g·L-1、pH 5.0中,在温度25±3℃、光照强度40μmol·m-2·s-1、光照时间12h/d的条件下,培养40天后,无根苗逐渐长出不定根,生根率90.7%,不定根较粗大,须根也较多;
(5)试管苗移栽:用有机质含量比较丰富的腐质土和椰糠按重量份1∶1比例混合,每公斤添加100mg Mg2+,pH调至5.0,配制移栽基质,将长好根的试管苗移出培养室外炼苗2~3天,洗净根际培养基,移栽到装有移栽基质的营养杯中,在原生环境林下搭建小拱棚,每天定期补充水分,保持湿度,培养60~65天,小苗长出新根。
实施例2
瑶山苣苔的组织培养及快速繁殖方法,具体步骤如下:
(1)不定芽的初代诱导:将经过表面消毒的瑶山苣苔叶片剪成1.2×1.5cm小块,接种于初代诱导培养基MS+6-BA 0.2mg·L-1+KT 0.2mg·L-1+IAB 0.04mg·L-1+Mg2+50mg·L-1+蔗糖30g·L-1+琼脂6g·L-1、pH 5.0上,在温度25±3℃、光照强度20μmol·m-2·s-1、光照时间12h/d的条件下,培养35~40天,叶片外植体的切口处增厚膨大,形成暗绿色的愈伤组织,培养120天后,愈伤组织有逐渐分化形成不定芽,不定芽分化率为32.0%;
(2)芽的继代增殖培养:将愈伤组织和不定芽转入继代增殖培养基MS+2-ip 0.1mg·L-1+KT 0.05mg·L-1+IAB 0.02mg·L-1+Mg2+50mg·L-1+蔗糖30g·L-1+琼脂6g·L-1,pH 5.0上,在温度25±3℃、光照强度40μmol·m-2·s-1、光照时间12h/d的条件下,培养30~35天,形成丛生芽,继续培养30~35天,丛生芽逐渐长出2~3片真叶,所形成的无根苗较壮,繁殖系数为4.7/60d;
(3)生根培养:将长有2~3片真叶、比较粗壮的无根苗分切,接入生根培养基1/2MS+2-ip 0.02+IAB 0.2mg·L-1+Mg2+50mg·L-1+活性碳0.5g·L-1+蔗糖20g·L-1+琼脂6g·L-1、pH 5.0中,在温度25±3℃、光照强度40μmol·m-2·s-1、光照时间12h/d的条件下,培养40天后长出不定根,生根率93.6%,主根粗壮,须根发达。
其余均与实施例1相同。
实施例3
瑶山苣苔的组织培养及快速繁殖方法,具体步骤如下:
(1)不定芽的初代诱导:将经过表面消毒的瑶山苣苔叶片剪成1.2×1.5cm小块,接种于初代诱导培养基MS+6-BA 0.1mg·L-1+KT 0.4mg·L-1+IAB 0.05mg·L-1+Mg2+mg·L-1+蔗糖30g·L-1+琼脂6g·L-1、pH 5.0上,在温度25±3℃、光照强度20μmol·m-2·s-1、光照时间12h/d的条件下,培养35~40天,叶片外植体的切口处增厚膨大,形成暗绿色的愈伤组织,培养140天后,愈伤组织分化形成不定芽,不定芽的分化率为31.0%,所形成的不定芽较壮;
(2)芽的继代增殖培养:将愈伤组织和不定芽转入继代增殖培养基MS+2-ip 0.05mg·L-1+KT 0.1mg·L-1+IAB 0.02mg·L-1+Mg2+50mg·L-1+蔗糖30g·L-1+琼脂6g·L-1、pH 5.0上,在温度25±3℃、光照强度40μmol·m-2·s-1、光照时间12h/d的条件下,培养30~35天,形成丛生芽,继续培养30~35天,丛生芽逐渐长出2~3片真叶,繁殖系数为5.0/60d;
(3)生根培养:将长有2~3片真叶、比较粗壮的无根苗分切,接入生根培养基1/2MS+2-ip0.01mg·L-1+IAB 0.1mg·L-1+Mg2+50mg·L-1+活性碳0.5g·L-1+蔗糖20g·L-1+琼脂6g·L-1,pH 5.0中,在温度25±3℃、光照强度40μmol·m-2·s-1、光照时间12h/d的条件下,培养40天后长出不定根,生根率91.3%,根系发达,植株也较大。
其余均与实施例1相同。
上述实施例中所述培养基中Mg2+由硫酸镁提供。
下面表1至表3显示实例1至3中不同的激素种类、浓度和组合对诱导、继代和生根培养材料的影响。
表1不同激素浓度对瑶山苣苔初代诱导的影响
表2不同激素浓度对瑶山苣苔继代增殖的影响
表3不同激素和活性碳浓度对瑶山苣苔生根的影响
Claims (4)
1.瑶山苣苔组织培养及快速繁殖的方法,其特征在于,以野外采集的瑶山苣苔植株叶片作为外植体,按以下步骤进行组织培养和快速繁殖:
(1)不定芽的初代诱导:将瑶山苣苔植株叶片外植体经表面消毒后接种到诱导培养基上,在温度25±3℃、光照强度20μmol·m-2·s-1、光照时间12h/d的条件下,培养100~140天,叶片外植体诱导形成愈伤组织和不定芽,其中,所用的初代诱导培养基为:MS+6-BA 0.1~0.4mg·L-1+KT 0.1~0.4mg·L-1+IAB 0.04~0.05mg·L-1+Mg2+50mg·L-1+蔗糖30g·L-1+琼脂6g·L-1,pH 5.0;
(2)芽的继代增殖:将愈伤组织和不定芽转入继代增殖培养基上,在温度25±3℃、光照强度40μmol·m-2·s-1、光照时间12h/d的条件下,培养50~60天,获得从生芽,繁殖系数4.6~5.0/60d,每60天继代一次,其中,所用的继代增殖培养基为:MS+2-ip 0.05~0.2mg·L-1+KT0.05~0.1mg·L-1+IAB 0.02mg·L-1+Mg2+50mg·L-1+蔗糖30g·L-1+琼脂6g·L-1,pH 5.0;
(3)生根培养:将丛生芽苗分切转入生根培养基上,在温度25±3℃、光照强度40μmol·m-2·s-1、光照时间12h/d的条件下,培养40天后获得长好根的试管苗,其中,所用的生根培养基为:1/2MS+2-ip 0.01~0.05mg·L-1+IAB 0.1~0.4mg·L-1+Mg2+50mg·L-1+活性碳0.5~1.0g·L-1+蔗糖20g·L-1+琼脂6g·L-1,pH 5.0;
(4)试管苗移栽:将长好根的试管苗移栽到移栽基质中,放置于遮荫、湿润的原生环境下培养,其中,所用的移栽基质为:腐质土和椰糠按1∶1混均,并添加Mg2+100mg/kg,将pH调至4.5~5.5。
2.根据权利要求1所述的方法,其特征在于:步骤(1)中所述初代诱导培养基为MS+6-BA 0.2mg·L-1+KT 0.2mg·L-1+IAB 0.04mg·L-1+Mg2+50mg·L-1+蔗糖30g·L-1+琼脂6g·L-1,pH 5.0。
3.根据权利要求1所述的方法,其特征在于:步骤(2)中所述继代增殖培养基为MS+2-ip 0.1mg·L-1+KT 0.05mg·L-1+IAB 0.02mg·L-1+Mg2+50mg·L-1+蔗糖30g·L-1+琼脂6g·L-1,pH 5.0。
4.根据权利要求1所述的方法,其特征在于:步骤(3)中所述生根培养基为1/2MS+2-ip 0.02mg·L-1+IAB 0.2mg·L-1+Mg2+50mg·L-1+活性碳0.5g·L-1+蔗糖30g·L-1+琼脂6g·L-1,pH 5.0。
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C02 | Deemed withdrawal of patent application after publication (patent law 2001) | ||
WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication |
Application publication date: 20110810 |