发明内容
本发明的目的是提供c-KIT基因突变检测液相芯片,该液相芯片可用于检测c-KIT基因四种常见基因型AY502-503dup、V560G、T670I、和/或D816H/V的野生型和突变型。
一种c-KIT基因突变检测液相芯片,主要包括有:
(A)针对c-KIT基因的突变位点,分别设计的野生型和突变型的ASPE引物对:每种ASPE引物由5’端的tag序列和3’端针对突变位点的特异性引物组成,所述特异性引物是:针对AY502-503dup突变位点的SEQ ID NO.10和SEQ ID NO.11、针对V560G突变位点的SEQ ID NO.12和SEQ ID NO.13、针对T670I突变位点的SEQ ID NO.14和SEQ ID NO.15、和/或针对D816H/V突变位点的SEQ ID NO.16及SEQ ID NO.17和SEQ ID NO.18;所述tag序列选自SEQ ID NO.1~SEQ ID NO.9;
(B)分别包被有特异的anti-tag序列的、具有不同颜色编码的微球,所述anti-tag序列选自SEQ ID NO.19~SEQ ID NO.27中的序列,所述anti-tag序列能相应地与(A)中所选的tag序列互补配对,且所述anti-tag序列与微球连接中间还设有间隔臂序列;
(C)用于扩增出具有AY502-503dup、V560G、T670I、和/或D816H/V的突变位点的c-KIT基因目标序列的扩增引物。
优选地,所述扩增引物为:针对AY502-503dup和V560G突变位点的SEQ ID NO.28和SEQ ID NO.29、针对T670I突变位点的SEQ ID NO.30和SEQ ID NO.31、和/或针对D816H/V突变位点的SEQ ID NO.32和SEQ ID NO.33。
本发明的主要优点在于:
(1)本发明所提供的液相芯片的检测结果与测序法的吻合率高达100%。所制备的c-KIT基因突变检测液相芯片具有很好的信号-噪声比,并且所涉及的探针以及anti-TAG序列之间基本上不存在交叉反应,TAG标签序列、anti-TAG标签序列的选取以及TAG标签序列与具体ASPE引物的结合,均能够避免交叉反应,实现多个突变位点的并行检测。
(2)本发明设计的ASPE特异引物具有非常好的特异性,能准确区分各种型号的基因型。
(3)本发明的所述液相芯片的检测方法步骤简单,4种突变位点检测可通过一步多重PCR即可完成含有4个突变位点的目标序列的扩增,避免了反复多次PCR等复杂操作过程中存在的诸多不确定因素,因而可大大提高检测的准确率,同时能够定性、定量分析的特征。
(4)本发明不仅克服了传统固相芯片敏感性不高、检测结果可重复性差的缺陷,同时对现有的液相芯片技术进行改进,使得所制备的微球能适用于不同的检测项目,具有很强的拓展性。检测的荧光信号值大大提高,从而使得检测的灵敏度进一步得到提高,信噪比增强,检测结果更加准确可靠。
具体实施方式
实施例1
本实施例所述c-KIT基因突变检测液相芯片,主要包括有:
一、ASPE引物
针对c-KIT基因的4种常见突变位点AY502-503dup、V560G、T670I、D816H/V,分别设计特异性引物序列。ASPE引物由“Tag序列+特异性引物序列”组成。ASPE引物序列如下表所示:
表1ASPE引物序列(Tag序列+特异性引物序列)
每条ASPE引物包括两个部分,5’端为针对相应微球上anti-tag序列的特异性tag序列,3’端为突变型或野生型特异的引物片段(如上述表1所示)。所有ASPE引物由上海生工生物工程技术服务有限公司合成。合成后的每条引物分别用10mmol/LTris Buffer配制成100pmol/mL的贮存液。
二、anti-tag序列包被的微球
根据所设计的ASPE特异性引物片段,选择tag序列,最大限度地减少各微球的anti-tag序列之间以及tag与ASPE特异性引物片段可能形成的二级结构,选择的9种微球编号与微球上相应的anti-tag序列如表2所示:
表2微球编号与微球上相应的anti-tag序列
选择的9种微球购自美国Luminex公司,将anti-tag序列包被与微球上。anti-tag序列与微球之间连接有5-10个T的间隔臂序列,即在每个anti-tag序列前加上一段5-10个T的间隔臂序列,anti-tag序列由上海生工生物工程技术服务有限公司合成。将合成的anti-tag序列用灭菌ddH2O配成100nmol/mL的贮存液。所述间隔臂为用于将anti-tag与微球表面间隔开来或是将anti-tag置于亲水性环境中的序列。通过在anti-tag序列与微球之间设置适当长度的间隔臂序列,可减少空间位阻,提高杂交反应的效率以及杂交反应的特异性。常见的间隔臂序列包括多聚dT,即poly(dT),寡聚四聚乙二醇以及(CH2)n间隔臂(n≥3),如(CH2)12、(CH2)18等。另外,如果存在poly(dA)干扰,还可以用poly(TTG)作为间隔臂。本发明间隔臂优选为5-10个T,微球包被的过程如下:
分别取5×106个上述编号的羧基化的微球(购自Luminex公司)悬浮于50μl 0.1mol/L的MES溶液中(pH4.5),加入10μl合成的anti-tag分子(100nmol/mL)。配制10ng/mL的EDC(N-(3-Dimethylaminopropyl-N-ethylcarbodiimide)(购自Pierce Chemical公司)工作液。往微球悬液中加入2.5μl的EDC工作液,恒温孵育30分钟,再加入2.5μl的EDC工作液,再恒温孵育30分钟。反应结束后,用0.02%的Tween-20洗涤一次,再用0.1%的SDS液洗涤一次。将洗涤后的包被有anti-tag序列的微球重悬于100μl的Tris-EDTA溶液[10mmol/LTris(pH8.0)],1mmol/LEDTA中,2-8℃避光保存。
三、扩增出含有突变位点的目标序列的引物
针对4种c-KIT基因常见突变位点D816H/V、AY502-503dup、V560G、T670I,分别利用Primer5.0设计扩增引物对(见表3),分别扩增出3条含有突变位点的目标序列。
表3扩增出具有目标位点的目标序列的引物
所有引物由上海生工生物工程技术服务有限公司合成。合成后的每条引物分别用10mmol/LTris Buffer配制成100pmol/mL的贮存液。
实施例2 c-KIT基因突变检测液相芯片对样本的检测
所述各种溶液的配方如下:
50mM的MES缓冲液(pH5.0)配方(250mL):
2×Tm杂交缓冲液:
过滤后贮存于4℃。
ExoSAP-IT试剂盒购自美国USB公司。
生物素标记的dCTP购自上海生工生物工程技术服务有限公司。
一、样本的DNA提取:
参照《分子克隆》关于DNA提取的相关方法,得到待检测的DNA。
二、待测样品的PCR扩增
利用Primer5.0设计3对引物,多重PCR一步扩增出c-KIT基因AY502-503dup、V560G、T670I、D816H/V,产物大小分别为350bp、309bp、301bp,引物序列(SEQ ID NO.28-33)见上述表3所示。
首先配制多重PCR引物工作液:分别各取SEQ ID NO.28-33的引物贮存液100μl于1.5mL微量离心管中,混合均匀即为多重PCR引物工作液。多重PCR反应体系如下:
2×缓冲液(含Mg2+) 25μl
dNTP(各2.5mmol/L) 4μl
Taq酶(5U/μl) 0.2μl
多重PCR引物工作液(各8.3pmol/mL) 6μl
模板DNA(10ng/μl) 2μl
ddH2O 12.8μl
共 50μl
PCR扩增程序为:95℃3min;94℃30s,56℃30s,72℃40s,30个循环;72℃10min;4℃保存备用。
三、PCR产物的酶切处理
1.取7.5μl PCR反应后的产物,加入1μl 10×SAP缓冲液、1μl SAP酶和0.5μl Exo-I酶;
2.37℃孵育15min,80℃孵育15min,灭活多余的酶。酶切处理后的产物直接用于后续的ASPE引物延伸反应。
四、位点特异的引物延伸反应(ASPE)
利用上述设计的ASPE引物进行引物延伸反应,在反应过程中掺入生物素标记的dCTP,从而使反应后的产物带上多个的生物素标记。
首先配制混合的ASPE引物工作液:分别取待检测c-KIT基因的突变位点相应的野生型和突变型ASPE引物贮存液10μl于1.5mL微量离心管中,加入10mmol/LTris Buffer补至200μl,混合均匀即为ASPE混合引物工作液。
ASPE反应的体系如下:
10×缓冲液 2μl
MgCl2(50mmol/L) 0.5μl
Biotin-dCTP(400μmol/L) 0.25μl
dATP、dGTP、dTTP混合液(各100μmol/L) 1μl
Tsp酶(5U/μl) 0.25μl
混合的ASPE引物工作液(各500nmol/L) 1μl
酶切处理的PCR扩增产物 5μl
ddH2O 10μl
共 20μl
反应程序为:96℃2min;94℃30s,58℃1min,72℃2min,30个循环;4℃保存备用。
五、杂交反应
1.根据设计的ASPE引物,每组选择相应的最优微球(微球浓度均为2.5×105个/mL);
2.分别取1μl每种编号的微球于1.5mL的微量离心管中;
3.微球于≥10000g离心1-2min;
4.弃去上清,微球重悬于100μl的2×Tm杂交缓冲液中,涡旋混匀;
5.取25μl上述微球悬液于96孔滤板相应的孔中,对照孔加25μl的ddH2O;
6.取5-25μl的ASPE反应液于相应的孔中,用ddH2O补足至50μl;
7.用锡箔纸包住96孔板以避光,95℃60s,37℃15min孵育杂交;
8.杂交后的微球于≥3000g离心2-5min;
9.去上清,将微球重悬于75μl的1×Tm杂交缓冲液中;
10.微球于≥3000g离心2-5min;
11.将微球重悬于75μl的1×Tm杂交缓冲液中,加入15μl浓度为10μg/mL的链霉亲和素-藻红蛋白(SA-PE);
12.37℃孵育15min,于Luminex仪器上检测。
六、结果检测与数据分析
反应后产物通过Luminex系列分析仪器检测。c-KIT各突变型检测荧光值(MFI)的cut-off值如表4所示,当检测的MFI值大于cut-off值时,判定该样本为存在相应的突变,否则判定该样本为野生型,检测结果如表5和表6所示。
使用本方法检测大量样本的c-KIT基因突变,以测序法检测与液相芯片结果作对照,计算本发明所提供的方法检测结果的吻合率。本方法检测20份样本的c-KIT基因突变检测结果与测序结果吻合率达到100%。可见本发明所提供的c-KIT基因突变检测液相芯片能够准确地检测出c-KIT基因的突变类型,且结果稳定可靠。
表4样本cut-of准
突变位点 |
AY502-503dup |
V560G |
T670I |
D816H |
D816V |
cut-off值 |
76 |
105 |
80 |
103 |
78 |
表5样本检测结果(MFI)
表6样本c-KIT基因突变类型分析结果
样本序号 |
液相芯片检测结果 |
测序结果 |
1 |
野生型 |
野生型 |
2 |
野生型 |
野生型 |
3 |
D816V突变型 |
D816V突变型 |
4 |
野生型 |
野生型 |
5 |
野生型 |
野生型 |
6 |
野生型 |
野生型 |
7 |
V560G突变型 |
V560G突变型 |
8 |
野生型 |
野生型 |
9 |
野生型 |
野生型 |
10 |
野生型 |
野生型 |
11 |
T670I、D816V突变型 |
T670I、D816V突变型 |
12 |
野生型 |
野生型 |
13 |
D816V突变型 |
D816V突变型 |
14 |
野生型 |
野生型 |
15 |
D816H突变型 |
D816H突变型 |
16 |
野生型 |
野生型 |
17 |
AY502-503dup突变型 |
AY502-503dup突变型 |
18 |
AY502-503dup突变型 |
AY502-503dup突变型 |
19 |
野生型 |
野生型 |
实施例3不同的ASPE引物的液相芯片对c-KIT基因突变位点的检测
一、液相芯片制备的设计(Tag序列及Anti-Tag序列的选择)
以c-KIT基因AY502-503dup位点突变检测液相芯片为例,分别针对AY502-503dup的野生型和突变型设计ASPE引物3’端的特异性引物序列,而ASPE引物5’端的Tag序列则选自SEQ ID NO.1-SEQ ID NO.9,相应的,包被于微球上的与对应tag序列互补配对的anti-tag序列选自SEQ ID NO.19-SEQ ID NO.27。具体设计如下表(表7)所示。ASPE引物的合成、anti-tag序列包被微球、扩增引物、检测方法等如实施例1和实施例2所述。
表7液相芯片制备的设计
二、样品检测
采用上述设计制备的液相芯片,按实施例2所述检测过程和方法对样品21-40进行检测,检测结果如下:
表8样本检测结果与基因突变分析
其它针对不同的突变位点的液相芯片,ASPE引物运用不同的Tag序列,其结果依然稳定可靠,具体数据省略。而ASPE引物选用实施例1中tag序列与特异性引物序列搭配时,效果更佳,参见本实施例试验组1。其它不同tag序列与特异性引物序列搭配,与实施例2和本实施例的结果相同,具体数据省略。
以上是针对本发明的可行实施例的具体说明,但该实施例并非用以限制本发明的专利范围,凡未脱离本发明技艺精神所为的等效实施或变更,均应包含于本发明的专利范围中。