CN101962397A - 生物转化液中分离纯化2'-脱氧腺苷的方法 - Google Patents

生物转化液中分离纯化2'-脱氧腺苷的方法 Download PDF

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王洪钟
张荣庆
谢丽萍
张文权
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Abstract

本发明公开了一种从生物转化液中分离纯化2′-脱氧腺苷的方法。该方法,是将制得的生物转化液离心除去菌体,得到上清液,上清液经过离子交换树脂柱吸附,吸附完毕后,先用Na2CO3水溶液洗脱,再用有机溶剂的混合液洗脱,用乙醇结晶后得到2′-脱氧腺苷。该方法将生物转化液中的2′-脱氧腺苷与其它杂质分离和提取出来,产品纯度达99%以上;而且提高了分离和提取速度,降低了成本、减少环境污染,具有重要的应用价值。

Description

生物转化液中分离纯化2'-脱氧腺苷的方法 
技术领域
本发明于生物医药技术领域,涉及一种从生物转化液中分离纯化2′-脱氧腺苷的方法。 
背景技术
2′-脱氧腺苷是脱氧核糖核酸DNA的结构片段,是基因药物和基因工程研究的重要原材料,具有很好的生理活性,虽未有报道其可直接用于抗病毒,但是可作为一种重要的原料,经过化学结构改造得到的2′-脱氧腺苷类似物具有良好的抗肿瘤活性,因此在市场上有广泛需求。2′-脱氧腺苷可通过脱氧核糖核酸的降解而得到,但是由于降解后产物分离困难等原因,使得该方法并不实用。脱氧腺苷也可通过化学合成法合成,但其步骤过于复杂,比如一些基团的保护与去保护以及糖基的活化等。图1是一种化学合成方法,以3`5`-二苯甲酰基腺苷为原料和N,N-二甲基苯甲酰胺及碳酰氯反应,再与硫化氢及吡啶反应,然后经三正丁基锡化氢脱氧,最后经甲醇氨脱保护得到2`-脱氧腺苷。 
上述化学法生产2′-脱氧腺苷有以下缺点:1、其原料1-氯-3,5-二对硝基苯-2-脱氧核糖不易得到,需要自己生产;2、产率较低(约26%),难以实现工业化生产;3、是使用汞盐,不利于环保与工人健康;4、得到的产物为α,β混合物,后期纯化困难,产品纯度低。 
通过生物转化法合成2′-脱氧腺苷的方法(见图2所示),具有步骤简单,反应时间短等优点,避免了以上不足。目前,国内外文献对提高转化产率的研究较多,但对提取纯化工艺的研究却相对较少。 
发明内容
本发明的目的是提供一种分离纯化2′-脱氧腺苷的方法。 
本发明提供的分离纯化2′-脱氧腺苷的方法,包括如下步骤: 
1)生物转化液预处理: 
将生物转化液离心,取上清液,置于0-25℃冰箱中保存,得到预处理完毕的所述生物转化液; 
2)样品吸附及2′-脱氧腺苷的解析: 
将pH值调节至5-8的所述预处理完毕的生物转化液上样于所述层析柱中,依次用碳酸钠水溶液和乙醇水溶液进行洗脱,收集用所述乙醇水溶液洗脱得到的洗脱液; 
所述层析柱中的介质为离子交换树脂或大孔吸附树脂; 
3)结晶: 
将所述步骤2)得到的洗脱液中加入无水乙醇,于0-25℃结晶后得到2′-脱氧腺苷晶体粗品,将所述2′-脱氧腺苷晶体粗品用乙醇水溶液进行重结晶,得到所述2′-脱氧腺苷。 
上述方法的步骤1)中,所述生物转化液是按照如下方法所得:以2′-脱氧胸苷为核糖基供体,腺嘌呤为碱基供体,通过微生物发酵产生的核糖磷酸化酶进行生物转化,得到所述生物转化液。制备所述生物转化液步骤中,所述微生物为瑞士乳杆菌(Lactobacillus helveticus),所述瑞士乳杆菌的保藏编号CGMCC 1.1877(中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心);所述离心步骤中,温度为0-25℃,优选4℃,时间为10-60分钟,优选20分钟,转速为3000-8000rpm,具体可为3500rpm、5000rpm或3500-5000rpm,优选4000rpm,离心半径为150-400mm,优选200mm。 
所述步骤2)中,所述离子交换树脂优选为阴离子型树脂。各种常用的由公开商业途径购买所得阴离子交换树脂均适用,如717型阴离子型树脂、D201型阴离子型树脂或D290型阴离子型树脂,优选717型阴离子型树脂;各种常用的由公开商业途径购买所得大孔吸附树脂均适用,如D101型大孔吸附树脂、DM18型大孔吸附树脂、HPD722型大孔吸附树脂或AB-8型大孔吸附树脂,优选D101型大孔吸附树脂。所述层析柱中的介质在使用前进行如下预处理:将所述层析柱中的介质先用乙醇水溶液浸泡后,用去离子水洗涤后用氢氧化钠水溶液浸泡,再用去离子水洗涤至中性后用盐酸水溶液浸泡,最后用去离子水洗涤至中性;所述乙醇水溶液的体积百分浓度为75-99.9%,优选95%,所述氢氧化钠水溶液的浓度为0.5-2.0mol/L,优选1mol/L,所述盐酸水溶液的浓度为0.5-2.0mol/L,优选1mol/L。所述用乙醇水溶液浸泡步骤中,时间为12-36小时,优选24小时;所述用氢氧化钠水溶液浸泡步骤中,时间为2-8小时,优选4小时;所述用盐酸水溶液浸泡步骤中,时间为2-8小时,优选4小时。 
所述步骤2)洗脱步骤中,所述碳酸钠水溶液的浓度为0.05M-0.2M,具体为0.1-0.15M,优选0.1M,所述乙醇水溶液的体积百分浓度为30-75%,具体为45-55%,优选45%。所述用碳酸钠水溶液进行洗脱步骤中,所述碳酸钠水溶液的用量为所述分离纯化2′-脱氧腺苷用层析柱的柱体积的2-10倍,具体为2-6倍、2倍或6倍,优选4倍,洗脱次数为1次;所述用乙醇水溶液进行洗脱步骤中,所述乙醇水溶液的用量为所述分离纯化2′-脱氧腺苷用层析柱的柱体积的1-5倍,具体为3-4倍,优选3倍,洗脱次数为1次。该步骤中,用碳酸钠水溶液洗脱的目的是去除层析柱中蛋白等杂质。洗脱速率为洗脱液由层析柱顶端依靠重力自然流出的速率,不需额外人为设定洗脱速率。 
所述步骤3)所述加入无水乙醇步骤中,无水乙醇的用量为所述步骤2)得到的 洗脱液体积的0.2-2倍,优选0.5倍;所述2′-脱氧腺苷晶体粗品用乙醇水溶液进行重结晶步骤中,所述乙醇水溶液的体积百分浓度为10-50%,具体为20%、30%或20-30%,优选45%,所述乙醇水溶液的用量为所述2′-脱氧腺苷粗品体积的0.2-2倍,具体为0.4倍、2倍或0.4-2倍,优选0.4倍。 
上述方法的步骤1)中,所述生物转化液具体可按照包括如下步骤的方法制备而得:将瑞士乳杆菌接入发酵培养基中发酵培养,得到菌体,将所述菌体破碎,制成细胞破碎液,向所述细胞破碎液中加入2′-脱氧胸苷和腺嘌呤进行酶促反应,获得所述2′-脱氧腺苷;所述腺嘌呤的直径小于等于10μm; 
各种能够发酵培养瑞士乳杆菌的培养基均适用,如可用由下列重量份的物质组成的培养基:葡萄糖10-20、蛋白胨1-5、玉米麸质粉10-25、柠檬酸胺1-2、磷酸氢二钾1-2、硫酸钠5-10、硫酸锰0.02-0.4和水1000;所述发酵培养的温度为30-42℃,搅拌转速为120-160转/分钟,pH值为6.0-7.5,发酵时间为24-36小时; 
所述瑞士乳杆菌种子液与所述发酵培养基的体积比可为10%-15%; 
所述瑞士乳杆菌种子液是按照如下方法获得:将瑞士乳杆菌接种到斜面培养基培养制成斜面菌种,将所述斜面菌种接入发酵培养基中培养获得种子液;各种能够培养获得种子液的斜面培养基均适用,如所述斜面培养基可为由下列重量份的物质组成:葡萄糖10-20、蛋白胨10-20、酵母膏3-8、柠檬酸胺1-2、磷酸氢二钾1-2、硫酸钠5-10、硫酸锰0.02-0.4,琼脂15-20和水1000;所述瑞士乳杆菌接种到斜面培养基培养的温度为30-42℃,pH值为6.5-8.0,培养24-48小时; 
对菌体进行破碎的目的是为了释放菌体内的核糖磷酸化酶,所述细胞破碎液按照如下方法制备:将所述粗菌体用柠檬酸缓冲液洗涤,然后用pH值为6.0-7.0磷酸缓冲液悬浮,获得细胞悬浮液,超声破碎所述细胞悬浮液,获得细胞破碎液;所述柠檬酸缓冲液的pH值为6.0-7.0;所述磷酸缓冲液的pH值为6.0;所述超声条件为功率为300-400瓦,频率为3-5次/10秒,时间为5-15分钟;所述细胞悬浮液中菌体的质量百分含量为15%-35%;所述酶促反应的温度为35-50℃。 
本发明提供的分离纯化2′-脱氧腺苷的方法,是将制得的生物转化液离心除去菌体,得到上清液,上清液经过阴离子交换树脂柱吸附,吸附完毕后,先用Na2CO3水溶液洗脱,再用有机溶剂的混合液洗脱,洗脱液经减压浓缩,得2′-脱氧腺苷结晶,洗脱后的树脂用有机溶剂冲洗后重复使用。该方法将生物转化液中的2′-脱氧腺苷与其它杂质分离和提取出来,产品纯度达99%以上;而且提高了分离和提取速度,降低了成本、减少环境污染,具有重要的应用价值。 
附图说明
图1为化学法合成2′-脱氧腺苷。 
图2为生物转化法合成2′-脱氧腺苷。 
图3为实施例1步骤4)所得洗脱液的HPLC谱图。 
图4为实施例1制备所得重结晶后的2′-脱氧腺苷的HPLC谱图。 
图5为HPLC检测产品纯度所用标准曲线。 
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明作进一步说明,但本发明并不限于以下实施例。 
下述实施例步骤4)和5)中HPLC的检测条件均如下所示:色相:Waters 600E高效液相色谱仪系统,色谱柱:迪马Platisil ODS C18 5u,250mmx4.6mm,流动相:由甲醇和水以体积比30∶70混合而得的混合液,吸收波长:254nm,流速:0.9ml/min;柱温:30℃;进样量:10μl。 
计算产品2′-脱氧腺苷纯度时所用标准曲线如图5所示,回归方程为y=4E-08x,相关系数R2=0.9992,其中,x代表吸光度值,单位为微伏×秒,y代表样品含量,单位为g/ml。 
实施例1 
1)将3000毫升的生物转化液,在4℃下离心,离心转速为3500rpm,离心半径为200mm,离心15min以除去菌体,取上清液,得到预处理完毕的生物转化液,将其置于4℃冰箱中保存备用。 
2)将717型阴离子树脂先用体积百分浓度为95%的乙醇水溶液充分浸泡24h,经检测无有机性物质后用去离子水洗至无醇味,然后在1mol/L NaOH溶液中浸泡4h,去离子水洗至中性,接着在1mol/L HCl水溶液中浸泡4h,去离子水洗至中性,得到预处理完毕的717型阴离子型树脂。 
3)将步骤2)预处理完毕的717型阴离子型树脂12Kg填装于内径10厘米、高150厘米的玻璃层析柱内,调节步骤1)预处理完毕的生物转化液的pH值为8.0后,将该生物转化液500ml加入到该层析柱内,使其被树脂吸附,得到分离纯化2′-脱氧腺苷用层析柱。 
4)分别用6个柱体积的0.1M浓度的Na2CO3水溶液、3个柱体积的45%体积分数的乙醇水溶液对步骤3)所得分离纯化2′-脱氧腺苷用层析柱进行洗脱各一次,收集乙醇水溶液洗脱而得的洗脱液,该洗脱液的HPLC检测结果如图3所示,经计算该洗脱液中产品纯度为68.7%,2′-脱氧腺苷的收率93.9%。 
5)由于上述步骤4)所得洗脱液中仍含有少量胸苷和碱基,减压浓缩(真空度为100Pa,时间30分钟。)洗脱液,向其中加入0.5倍体积的无水乙醇,于冰箱中在4℃结晶,得到2′-脱氧腺苷晶体粗品,HPLC检测并用标准曲线计算可知,该粗品的纯 度为88.91%的2′-脱氧腺苷晶体粗品,将该2′-脱氧腺苷晶体粗品用体积百分浓度为30%的乙醇水溶液进行重结晶,所用体积百分浓度为30%的乙醇水溶液的用量为该2′-脱氧腺苷晶体粗品体积的2倍,得到2′-脱氧腺苷晶体,该HPLC检测结果如图4所示,经计算该2′-脱氧腺苷晶体的纯度为99.1%,收率为72.5%。 
该实施例中步骤1)中所用生物转化液是按照如下方法制备而得: 
(1)菌种斜面培养 
将瑞士乳杆菌(Lactobacillus helveticus)CGMCC 1.1877(中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心)接种到斜面培养基,37℃、pH值6.5,培养24小时制成斜面菌种;斜面培养基由下列重量份的组分组成: 
葡萄糖18份、蛋白胨18份、酵母膏8份、柠檬酸胺2份、磷酸氢二钾2份、硫酸钠9份、硫酸锰0.02份,琼脂20份和水1000份。 
(2)接种发酵 
将斜面菌种接入发酵培养基中扩大培养作为种子液;将种子液按10%(体积百分比)的接种量接入装有发酵培养基的发酵罐中37℃,160转/分钟,pH值为6.0,发酵36小时;发酵培养基由下列重量份的组分组成: 
葡萄糖20份、蛋白胨4份、玉米麸质粉25份、柠檬酸胺2份、磷酸氢二钾2份、硫酸钠9份、硫酸锰0.02份和水1000份。 
(3)制备生物转化液 
a)发酵液在4℃、8000转/分钟、离心20分钟,收集湿菌体; 
b)柠檬酸缓冲液(pH值为6.5)洗涤步骤a)菌体,4℃离心10分钟,收集湿菌体,称重,用磷酸缓冲液(pH值为6.0)重悬菌体,制成15%(湿菌体重量和缓冲液的体积比)的细胞悬浮液; 
c)步骤b)的细胞悬浮液置于冰浴中,超声波破碎10分钟,超声波功率为400瓦,频率为3次/10秒; 
d)向步骤c)的破碎液中加入底物2′-脱氧胸苷和腺嘌呤混合后40℃反应24小时,得到生物转化液;每升破碎液中加入2′-脱氧胸苷50g和腺嘌呤30g,腺嘌呤为通过气流粉碎后的粉末,直径小于10μm; 
HPLC检测(色谱柱:Diamonsil C18,5um,250x4.6mm;流动相:由甲醇和pH值为6.0的磷酸缓冲盐以体积比为30∶70组成的混合液,该磷酸缓冲盐是由0.01mol/L的磷酸一氢钾水溶液和0.01mol/L的磷酸二氢钾水溶液组成;流速:0.9ml/min;检测波长:254nm)可知,2′-脱氧胸苷转化为2′-脱氧腺苷的转化率达82%,每升生物转化液中含有2′-脱氧腺苷42g。 
实施例2 
1)将3000毫升的生物转化液,在4℃下离心,离心转速为5000rpm,离心半径为200mm,离心10min除去菌体,得到上清液,得到预处理完毕的生物转化液,将其置于4℃冰箱中保存备用。 
2)将D101型大孔吸附树脂先用体积百分浓度为95%的乙醇水溶液充分浸泡24h,经检测无有机性物质后用去离子水洗至无醇味,然后在1mol/L NaOH水溶液中浸泡4h,去离子水洗至中性,接着在1mol/L HCl水溶液中浸泡4h,去离子水洗至中性,得到预处理完毕的D101型大孔吸附树脂。 
3)将步骤2)预处理完毕的D101型大孔吸附树脂装填于层析柱中,再将pH值调至5.0的步骤1)所得预处理完毕的生物转化液装填于该层析柱中,得到分离纯化2′-脱氧腺苷用层析柱; 
4)分别用2个柱体积的0.15M浓度的Na2CO3水溶液、4个柱体积的体积百分浓度55%的乙醇水溶液对步骤3)所得分离纯化2′-脱氧腺苷用层析柱进行洗脱各一次,收集乙醇水溶液洗脱而得的洗脱液,该洗脱液的HPLC检测结果与图3无实质性差别,此处不再熬述,经计算该洗脱液中产品2′-脱氧腺苷的纯度为70.7%,收率为92.6%。 
5)由于上述步骤4)所得洗脱液中仍含有少量胸苷和碱基,减压浓缩(真空度为10Pa,时间30分钟。)洗脱液,向其中加入0.5倍体积的无水乙醇,于冰箱中在4℃结晶,得到2′-脱氧腺苷晶体粗品,HPLC检测并用标准曲线计算可知,该粗品的纯度为89.87%,将该2′-脱氧腺苷晶体粗品用体积百分浓度为20%的乙醇水溶液进行重结晶,所用体积百分浓度为20%的乙醇水溶液的用量为该2′-脱氧腺苷晶体粗品体积的0.4倍,该HPLC检测结果与图4无实质性差别,此处不再熬述,经计算该2′-脱氧腺苷晶体的纯度为99.3%,收率为71.2%。 
该实施例中所用生物转化液是按照如下方法制备而得: 
(1)将瑞士乳杆菌(Lactobacillus helveticus)CGMCC 1.1877(中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心)接种到斜面培养基,40℃,pH值为6.5,培养24小时制成斜面菌种;斜面培养基由下列重量份的组分组成: 
葡萄糖15份、蛋白胨18份、酵母膏6份、柠檬酸胺2份、磷酸氢二钾2份、硫酸钠8份、硫酸锰0.02份,琼脂20份和水1000份。 
(2)接种发酵 
将斜面菌株接入发酵培养基中扩大培养作为种子液;将种子液按20%(体积百分比)的接种量接入装有发酵培养基的发酵罐中37℃,140转/分钟,pH值为6.5,发酵36小时;发酵培养基由下列重量份的组分组成: 
葡萄糖15份、蛋白胨5份、玉米麸质粉20份、柠檬酸胺2份、磷酸氢二钾2份、 硫酸钠9份、硫酸锰0.02份水1000份。 
(3)制备生物转化液 
a)发酵液在4℃、10000转/分钟、离心10分钟,收集湿菌体; 
b)柠檬酸缓冲液(pH值为6.0)洗涤步骤a)菌体,4℃离心10分钟,收集湿菌体,称重,用磷酸缓冲液(pH值为6.0)重悬菌体,制成15%(湿菌体重量和缓冲液的体积比)的细胞悬浮液; 
c)步骤b)的细胞悬浮液置于冰浴中,超声波破碎10分钟,超声波功率为340瓦,频率为4次/10秒; 
d)向步骤c)的破碎液中加入底物2′-脱氧胸苷和腺嘌呤混合后50℃反应24小时,得到生物转化液;每升破碎液中加入2′-脱氧胸苷50g和腺嘌呤30g,腺嘌呤为通过气流粉碎后的粉末,直径小于10μm; 
HPLC检测(色谱柱:Diamonsil C18,5um,250x4.6mm;流动相:由甲醇和pH值为6.0的磷酸缓冲盐以体积比为30∶70组成的混合液,该磷酸缓冲盐是由0.01mol/L的磷酸一氢钾水溶液和0.01mol/L的磷酸二氢钾水溶液组成;流速:0.9ml/min;检测波长:254nm)2′-脱氧胸苷转化为2′-脱氧腺苷的转化率达80%,每升生物转化液中含有2′-脱氧腺苷41g。 

Claims (10)

1.一种分离纯化2′-脱氧腺苷的方法,包括如下步骤:
1)将生物转化液离心,取上清液,置于0-25℃冰箱中保存,得到预处理完毕的所述生物转化液;
2)将pH值调节至5-8的所述预处理完毕的生物转化液上样于所述层析柱中,依次用碳酸钠水溶液和乙醇水溶液进行洗脱,收集用所述乙醇水溶液洗脱得到的洗脱液;
所述层析柱中的介质为离子交换树脂或大孔吸附树脂;
3)将所述步骤2)得到的洗脱液中加入无水乙醇,于0-25℃结晶后得到2′-脱氧腺苷晶体粗品,将所述2′-脱氧腺苷晶体粗品用乙醇水溶液进行重结晶,得到所述2′-脱氧腺苷。
2.根据权利要求1所述的方法,其特征在于:所述步骤1)离心步骤中,温度为0-25℃,优选4℃,时间为10-60分钟,优选20分钟,转速为3000-8000rpm,优选4000rpm,离心半径为150-400mm,优选200mm;
所述生物转化液是按照如下方法制备而得:以2′-脱氧胸苷为核糖基供体,腺嘌呤为碱基供体,通过微生物发酵产生的核糖磷酸化酶进行生物转化,得到所述生物转化液。
3.根据权利要求2所述的方法,其特征在于:所述步骤1)中,制备所述生物转化液步骤中,所述微生物为瑞士乳杆菌。
4.根据权利要求1-3任一所述的方法,其特征在于:所述步骤2)中,所述离子交换树脂为阴离子树脂;所述阴离子交换树脂为717型阴离子树脂、D201型阴离子树脂或D290型阴离子树脂,优选717型阴离子树脂;
所述大孔吸附树脂为D101型大孔吸附树脂、DM18型大孔吸附树脂、HPD722型大孔吸附树脂或AB-8型大孔吸附树脂,优选D101型大孔吸附树脂。
5.根据权利要求1-4任一所述的方法,其特征在于:所述步骤2)中,所述层析柱中的介质在使用前进行如下预处理:将所述层析柱中的介质先用乙醇水溶液浸泡后,用去离子水洗涤后用氢氧化钠水溶液浸泡,再用去离子水洗涤至中性后用盐酸水溶液浸泡,最后用去离子水洗涤至中性;所述乙醇水溶液的体积百分浓度为75-99%,优选95%,所述氢氧化钠水溶液的浓度为0.5-2mol/L,优选1mol/L,所述盐酸水溶液的浓度为0.5-2mol/L,优选1mol/L。
6.根据权利要求5所述的方法,其特征在于:所述用乙醇水溶液浸泡步骤中,时间为12-36小时,优选24小时;所述用氢氧化钠水溶液浸泡步骤中,时间为2-8小时,优选4小时;所述用盐酸水溶液浸泡步骤中,时间为2-8小时,优选4小时。
7.根据权利要求1-6任一所述的方法,其特征在于:所述步骤2)中,所述碳酸钠水溶液的浓度为0.05M-0.2M,优选0.1M,所述乙醇水溶液的体积百分浓度为30-75%,优选45%。
8.根据权利要求1-7任一所述的方法,其特征在于:所述步骤2)中,所述用碳酸钠水溶液进行洗脱步骤中,所述碳酸钠水溶液的用量为所述分离纯化2′-脱氧腺苷用层析柱的柱体积的2-10倍,优选4倍,洗脱次数为1次;
所述用乙醇水溶液进行洗脱步骤中,所述乙醇水溶液的用量为所述分离纯化2′-脱氧腺苷用层析柱的柱体积的1-5倍,优选3倍,洗脱次数为1次。
9.根据权利要求1-8任一所述的方法,其特征在于:所述步骤3)所述加入无水乙醇步骤中,无水乙醇的用量为所述步骤2)得到的洗脱液体积的0.2-2倍,优选0.5倍;
所述2′-脱氧腺苷晶体粗品用乙醇水溶液进行重结晶步骤中,所述乙醇水溶液的体积百分浓度为45%,所述乙醇水溶液的用量为所述2′-脱氧腺苷晶体粗品体积的0.2-2倍,优选0.4倍。
10.根据权利要求1-9任一所述的方法,其特征在于:所述步骤1)中,所述生物转化液是按照包括如下步骤的方法制备而得:将瑞士乳杆菌接入发酵培养基中发酵培养,得到菌体,将所述菌体破碎,制成细胞破碎液,向所述细胞破碎液中加入2′-脱氧胸苷和腺嘌呤进行酶促反应,获得所述2′-脱氧腺苷;所述腺嘌呤的直径小于等于10μm。
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Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104178541A (zh) * 2013-11-06 2014-12-03 西藏天虹科技股份有限责任公司 一种利用大肠埃希氏菌转化生产2′-脱氧腺苷的方法
CN105859809B (zh) * 2016-04-09 2018-12-04 南昌大学 一种从发酵液中提取β-胸苷的方法
CN111500659A (zh) * 2020-07-01 2020-08-07 苏州汇涵医用科技发展有限公司 一种利用酶催化制备2`-脱氧腺苷纯品的方法

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101575630A (zh) * 2009-06-03 2009-11-11 北京博尔莱生物技术有限公司 生物转化法生产脱氧腺苷的方法

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101575630A (zh) * 2009-06-03 2009-11-11 北京博尔莱生物技术有限公司 生物转化法生产脱氧腺苷的方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
《Eur.J.Biochem.》 19711231 Wolfgang UERKVITZ Trans-N-deoxyribosylase from Lactobacillus helveticus Crystallization and Properties 第387-395页 1-10 第23卷, *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104178541A (zh) * 2013-11-06 2014-12-03 西藏天虹科技股份有限责任公司 一种利用大肠埃希氏菌转化生产2′-脱氧腺苷的方法
CN105859809B (zh) * 2016-04-09 2018-12-04 南昌大学 一种从发酵液中提取β-胸苷的方法
CN111500659A (zh) * 2020-07-01 2020-08-07 苏州汇涵医用科技发展有限公司 一种利用酶催化制备2`-脱氧腺苷纯品的方法

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