CN101613746A - 产气荚膜梭菌的快速定量检测方法及检测试剂盒 - Google Patents
产气荚膜梭菌的快速定量检测方法及检测试剂盒 Download PDFInfo
- Publication number
- CN101613746A CN101613746A CN200910041690A CN200910041690A CN101613746A CN 101613746 A CN101613746 A CN 101613746A CN 200910041690 A CN200910041690 A CN 200910041690A CN 200910041690 A CN200910041690 A CN 200910041690A CN 101613746 A CN101613746 A CN 101613746A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- clostridium perfringens
- seq
- dna
- test kit
- sequence
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Images
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明提供的定量检测产气荚膜梭菌的方法,其包括以下步骤:(a)获得患者分泌物并提取其中细菌的基因组DNA;(b)以SEQ ID NO:1和SEQ ID NO:2中的序列为引物,以SEQ ID NO:3的序列为探针,对步骤(a)中获得的DNA进行荧光定量PCR扩增;(c)制作CT值与所述产气荚膜梭菌的浓度之间的标准曲线,根据步骤(b)的扩增结果,对患者分泌物中的产气荚膜梭菌进行定量。本发明的方法具有高度的特异性、灵敏性和定量准确度,可以检出细菌或病毒的存在,全部检测过程在2-3小时内可以完成;最低可检出约10个细菌,定量误差小于5%,特异性和试剂稳定性等指标符合有关国家标准。而且,本发明利用荧光定量PCR方法,一次检测量可以达到96或384个样本。
Description
技术领域
本发明涉及一种快速定量检测气性坏疽病原体的方法及检测试剂盒,具体涉及利用TaqMan荧光定量PCR方法快速定量检测人感染产气荚膜梭菌的方法及检测试剂盒。
背景技术
气性坏疽主要是产气荚膜梭菌侵入伤口引起的严重急性感染,多见于软组织严重开放性损伤,在战场中发生率很高。该病以组织坏死、水肿、胀气、全身中毒为特征,死亡率高达40%-100%。在战争状态下,由于疫原通常是多样性的和未知的,一旦发生气性坏疽,样品的检测量大、生物安全性要求高,重要的是危害性评估要求定量准确。然而,目前的技术还不能解决在短时间内快速定量的问题,因此有必要提供一种快速测定产气荚膜梭菌的数量的方法以满足日常和战时需要。
发明内容
本发明的一个目的在于提供一种定量检测人感染产气荚膜梭菌的方法,其能够在短时间内准确测定产气荚膜梭菌的数量。
本发明的另一目的在于提供一种定量检测人感染产气荚膜梭菌的试剂盒。
为实现上述目的,本发明提供的定量检测人感染产气荚膜梭菌的方法,其包括以下步骤:
(a)获得患者分泌物并提取其中细菌的基因组DNA;
(b)以SEQ ID NO:1和SEQ ID NO:2中的序列为引物,以SEQ ID NO:3的序列为探针,对步骤(a)中获得的DNA进行荧光定量PCR扩增;
(c)制作CT值与所述产气荚膜梭菌的浓度之间的标准曲线,根据步骤(b)的扩增结果,对患者分泌物中的产气荚膜梭菌进行定量。
在本发明的一个实施方式中,步骤(a)所述的提取其中细菌的基因组DNA包括使用柱提取方法。
在本发明的一个实施方式中,步骤(b)中所获得的扩增产物的序列如SEQID NO:4所示。
本发明的另一个方面提供一种快速定量检测产气荚膜梭菌的试剂盒,所述试剂盒包括:SEQ ID NO:1和SEQ ID NO:2所示的引物对;和SEQ ID NO:3所示的探针。
在本发明的一个实施方式中,可通过如下方式获得DNA对照标准品以建立标准曲线:(a)克隆由所述引物对扩增获得的产气荚膜梭菌基因;(b)用质粒法制作DNA对照标准品。
在本发明的一个实施方式中,所述试剂盒包括SEQ ID NO:1和SEQ ID NO:2所示的引物对;SEQ ID NO:3所示的探针;和DNA对照标准品。
在本发明的一个实施方式中,所述试剂盒还包括使用说明书。
本发明针对气性坏疽病原体,建立一种荧光定量PCR方法,对战时气性坏疽病原体进行快速检测,实现对这种战时高发疾病安全、快速和定量检测,以便于对战时气性坏疽做出快速准确的报告,尽可能减少截肢的发生。本发明的方法具有高度的特异性、灵敏性和定量准确度,可以检出细菌或病毒的存在,全部检测过程在2-3小时内可以完成。本发明的检测方法和检测试剂盒最低可检出约10个细菌,定量误差小于5%,特异性和试剂稳定性等指标符合有关国家标准,检测全过程小于3小时。而且,本发明利用荧光定量PCR方法,一次检测量可以达到96或384个样本,这种集成化的自动检测手段,国内外尚无类似产品供应。
附图说明
图1为根据本发明的方法对患者分泌物进行气性坏疽病原体荧光定量PCR得到的产气荚膜梭菌DNA扩增曲线,其中CT值在15到34之间;
图2为对4个标准品进行气性坏疽病原体荧光定量PCR得到的Log浓度-CT值的标准曲线,其中标准品的浓度依次为5×107拷贝/ml、5×106拷贝/ml、5×105拷贝/ml和5×104拷贝/ml;
图3为根据本发明的方法对不同细菌的DNA进行荧光定量扩增得到的扩增曲线;
图4为根据本发明的方法对不同浓度梯度的产气荚膜梭菌DNA进行荧光定量扩增得到的扩增曲线;
图5为PCR扩增获得的本发明的目的基因片段的测序图谱。
具体实施方式
以下结合附图具体描述本发明的检测方法以及检测试剂盒及其优点。
本发明的基本原理:所选取的扩增产气荚膜梭菌目的基因片段的引物探针具有高度的特异性,仅能扩增产气荚膜梭菌目的基因并产生荧光。通过扩增曲线和标准曲线的分析,鉴定并定量产气荚膜梭菌的含量,从而达到快速、准确、定量检测气性坏疽病原体产气荚膜梭菌的目的。
本发明的方法中提取细菌基因组DNA时所用的硅基填料吸附分离方法是指采用溶解酶和蛋白酶K裂解细菌的方法释放细菌DNA后,采用柱提取方法,选择性吸附细菌DNA,再经过洗涤步骤,获得提纯的DNA。
试剂及仪器
试剂:NALC溶液(100ml NALC溶液包括:50ml 2.94%柠檬酸钠,50ml 4%氢氧化钠,500mg N-乙酰-L-半胱氨酸);PBS;溶菌酶(10mg/ml,在10mM tris-HCl中,pH8.0);结合缓冲液(Binding Buffer)(6M胍-HCl、10mM尿素,10mMTris-HCl、20%Triton X-100,pH4.4);Proternase K;异丙醇;抑制剂去除缓冲液(inhibitor removal buffer)(5M胍-HCl、20mM Tris-HCl,pH6.6);洗涤缓冲液(wash buffer)(20mM NaCl、2mM Tris-HCl,pH7.5);洗脱缓冲液(elution buffer)(10mM Tris-HCl,pH8.5);核酸提取柱5×PCR缓冲液;dNTPs;15μM引物1;15uM引物2;10μM探针;5U/μl Taq酶。
仪器:Roche LightCycler 480全自动荧光定量PCR扩增仪
细菌DNA模板的制备
以1∶1比例将NALC溶液加入到样本中,轻柔搅拌,直至样本变成流体;3000g离心5min,弃上清;沉淀物加入200μl PBS,用吸管反复吹打使之重悬;加入5μl溶菌酶混匀,37℃孵育15min;加入200μl结合缓冲液和40μlProternase K,混匀,70℃孵育15min;加入100μl异丙醇,混匀;采用柱提取方法,将所有样品吸取到核酸提取柱上面,8000g离心1min,选择性吸附细菌DNA;加入500μl抑制剂去除缓冲液8000g离心1min;加入500μl洗涤缓冲液8000g离心lmin,重复洗涤一遍;14000rpm离心1min,充分去除残留洗涤缓冲液;加入200μl预热到70℃的洗脱缓冲液,8000g离心1min,获得提纯的DNA。
荧光定量PCR
按顺序向PCR管中加入5μl 5×PCR缓冲液;1μl 5mmol/L dNTPs;1μl 15μM引物1;1μl 15uM引物2;0.6μl 10μM探针;0.2μl 5U/μl Taq酶及2μl细菌DNA模板,最后以无菌双蒸水补足至体积为25μl,各试剂充分混匀并稍加离心后收集于管底;将加样后的小离心管置于Roche LightCycler 480全自动荧光定量PCR扩增仪中,扩增程序为95℃ 5分钟,然后95℃ 15秒、55℃ 20秒、72℃ 20秒、55℃时采集荧光,重复40个循环。在上述PCR中,探针的序列为:
5’-[FAM]TCATCATTCAACCAAAGGAGCAATCC[TAMRA]-3’
标准曲线的制作
在本发明中可综合分析仪器给出的各项数据,设定合理的阈值(threshold)和基线(baseline):基线选取2-6或3-7个循环,阈值线选在阴性扩增曲线的上方。此处阈值为0.8268,噪音限(noise band)为0.9491,基线循环数(baselinecycle)为3-7个循环。仪器自动生成标准曲线,并计算给出样本的结果。如图2所示,Roche LightCycler 480全自动荧光定量PCR扩增仪自动生成的标准曲线参数为:斜率为-3.319,截距为42.00,效率为2.001。
在其他实施方式中,可通过以下步骤来获得DNA对照标准品以建立标准曲线:(a)克隆由所述引物对扩增获得的产气荚膜梭菌基因;(b)用质粒法制作DNA对照标准品。这种DNA对照标准品由于只含有100个碱基左右的产气荚膜梭菌基因,完全没有感染性和危险性;而且质粒中的DNA相当稳定,非常适合批量和规范制备的需要。
扩增产物的测序结果
使用SEQ ID NO:1和SEQ ID NO:2的引物对,对提取的DNA进行普通PCR后,采用Takara(日本)公司的pMD19-T载体和目的片段连接后,转化到DH5α大肠杆菌中,获得阳性克隆,经过琼脂糖电泳鉴定后测序。测序所得序列如SEQID NO:4所示。测序图谱如图5所示。
本发明方法的特异性测试
以相似方法对大肠杆菌、铜绿假单胞菌、金黄色葡萄球菌、表皮葡萄球菌、化脓性链球菌、诺氏梭菌等其他细菌的基因组DNA进行扩增,扩增曲线无明显抬高。
实验步骤:取1ml培养的菌液(3×108个细菌),3000g离心5分钟,弃上清;沉淀物加入200μl PBS,用吸管反复吹打使之重悬;加入5μl溶菌酶混匀,37℃孵育15min;加入200μl结合缓冲液和40μl Proternase K,混匀,70℃孵育15min;加入100μl异丙醇,混匀;采用柱提取方法,将所有样品吸取到柱子上面,8000g离心1min,选择性吸附细菌DNA;加入500μl抑制剂去除缓冲液,8000g离心1min;加入500μl洗涤缓冲液,8000g离心1min,重复洗涤一遍;14000rpm离心1min,充分去除残留洗涤缓冲液;加入200μl预热到70℃的洗脱缓冲液,8000g离心1min,获得提纯的DNA。
按顺序向PCR管中加入5μl 5×PCR缓冲液;1μl 5mmol/L dNTPs;1μl 15μM引物1;1μl 15uM引物2;0.6μl 10μM探针;0.2μl 5U/μl Taq酶及2μl细菌DNA模板,最后以无菌双蒸水补足至体积为25μl,各试剂充分混匀并稍加离心后收集于管底;将加样后的小离心管置于Roche LightCycler 480全自动荧光定量PCR扩增仪中,扩增程序为95℃ 5分钟,然后95℃ 15秒、55℃ 20秒、72℃ 20秒、55℃时采集荧光,重复40个循环。
结果分析:综合分析仪器给出的各项数据,此处阈值为0.2657,噪音限为0.2657,基线循环数为2-6个循环,结果如图3所示,阳性曲线为产气荚膜梭菌,CT值为30,水平曲线从上往下依次为:创伤弧菌、弗劳地枸橼酸杆菌、产吲哚黄杆菌、ATCC25923金黄色葡萄球菌、ATCC27853铜绿假单胞菌、ATCC25922大肠埃希菌、ATCC35656多食鞘氨醇杆菌、ATCC43047阴沟肠杆菌、ATCC12453奇异变形杆菌、ATCC35157肺炎克雷伯菌、ATCC14028伤寒沙门菌、ATCC51331嗜麦芽窄食单胞菌。实验结果总结在下表1中,可见本发明只可扩增产气荚膜梭菌,因而具有非常高的特异性。
表1
细菌名称 | 扩增结果 |
ATCC13124产气荚膜梭菌 | 阳性 |
创伤弧菌 | 阴性 |
弗劳地枸橼酸杆菌 | 阴性 |
产吲哚黄杆菌 | 阴性 |
ATCC25923金黄色葡萄球菌 | 阴性 |
ATCC27853铜绿假单胞菌 | 阴性 |
ATCC25922大肠埃希菌 | 阴性 |
ATCC35656多食鞘氨醇杆菌 | 阴性 |
ATCC43047阴沟肠杆菌 | 阴性 |
ATCC12453奇异变形杆菌 | 阴性 |
ATCC35157肺炎克雷伯菌 | 阴性 |
ATCC14028伤寒沙门菌 | 阴性 |
ATCC51331嗜麦芽窄食单胞菌 | 阴性 |
本发明方法的灵敏度测试
实验表明,本发明的方法可检出约10个产气荚膜梭菌。当患者分泌物中含有10个产气荚膜梭菌时,气性坏疽病原体荧光定量PCR检测结果显示扩增曲线有明显抬高。
制备浓度梯度的产气荚膜梭菌悬液:分别含有6×107、6×106、6×105、6×104、6×103、6×102、60、6个产气荚膜梭菌,后续操作步骤同特异性测试中的实验步骤。
结果分析:综合分析仪器给出的各项数据,此处阈值为0.1146,噪音限为0.1159,基线循环数为3-7个循环,结果如图4所示,阳性曲线从左往右产气荚膜梭菌悬液的浓度依次是6×107,6×106,6×105,6×104,6×103,6×102,60,6。CT值从左往右依次为14.31,17.23,20.91,24.95,28.65,31.21,32.98,34.73。从图4中可看出,本发明的方法对于浓度只有6个产气荚膜梭菌的悬液仍具有显著的效果,因而灵敏度极高。
检测试剂盒
本发明还提供一种快速定量检测产气荚膜梭菌的试剂盒,所述试剂盒包括:SEQ ID NO:1和SEQ ID NO:2所示的引物对、SEQ ID NO:3所示的探针,任选地,包括DNA对照标准品。
在实际应用中,该试剂盒中还可包含用于试剂盒操作的使用说明书。
以上所述仅为本发明的较佳实施例而已,并不用以限制本发明,凡在本发明的精神和原则之内所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。
序列表
<110>广州军区广州总医院
<120>产气荚膜梭菌的快速定量检测方法及检测试剂盒
<160>4
<210>1
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>根据目的基因设计,以用作PCR扩增的引物。
<400>1
CGCATAACGT TGAAAGATGG 20
<210>2
<211>19
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>根据目的基因设计,以用作PCR扩增的引物。
<400>2
CCTTGGTAGG CCGTTACCC 19
<210>3
<211>26
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>根据目的基因设计,以用作PCR扩增的探针。
<400>3
TCATCATTCA ACCAAAGGAG CAATCC 26
<210>4
<211>105
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>PCR扩增的目的基因片段
<400>4
CGCATAACGT TGAAAGATGG CATCATCATT CAACCAAAGG 40
AGCAATCCGC TATGAGTTGG ACCCGCGGCG CATTAGCTAG 80
TTGGTGGGGT AACGGCCTAC CAAGG 105
Claims (7)
1.一种定量检测产气荚膜梭菌的方法,其包括以下步骤:
(a)获得患者分泌物并提取其中细菌的基因组DNA;
(b)以SEQ ID NO:1和SEQ ID NO:2中的序列为引物,以SEQ ID NO:3的序列为探针,对步骤(a)中获得的DNA进行荧光定量PCR扩增;
(c)制作CT值与所述产气荚膜梭菌的浓度之间的标准曲线,根据步骤(b)的扩增结果,对患者分泌物中的产气荚膜梭菌进行定量。
2.如权利要求1所述的方法,其特征在于,步骤(a)所述的提取其中细菌的基因组DNA包括使用柱提取方法。
3.如权利要求1所述的方法,其特征在于,步骤(b)中所获得的扩增产物的序列如SEQ ID NO:4所示。
4.如权利要求1所述的方法,其特征在于,步骤(c)中制作所述标准曲线包括通过如下方式获得DNA对照标准品的步骤:(a)克隆由所述引物对扩增获得的产气荚膜梭菌基因;(b)用质粒法制作DNA对照标准品。
5.一种快速定量检测产气荚膜梭菌的试剂盒,所述试剂盒包括:SEQ IDNO:1和SEQ ID NO:2所示的引物对;和SEQ ID NO:3所示的探针。
6.如权利要求5所述的试剂盒,其特征在于,所述试剂盒还包括DNA对照标准品。
7.如权利要求5所述的试剂盒,其特征在于,所述试剂盒还包括使用说明书。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN200910041690A CN101613746A (zh) | 2009-08-05 | 2009-08-05 | 产气荚膜梭菌的快速定量检测方法及检测试剂盒 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN200910041690A CN101613746A (zh) | 2009-08-05 | 2009-08-05 | 产气荚膜梭菌的快速定量检测方法及检测试剂盒 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN101613746A true CN101613746A (zh) | 2009-12-30 |
Family
ID=41493632
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN200910041690A Pending CN101613746A (zh) | 2009-08-05 | 2009-08-05 | 产气荚膜梭菌的快速定量检测方法及检测试剂盒 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN101613746A (zh) |
Cited By (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102242221A (zh) * | 2011-07-20 | 2011-11-16 | 贵州省畜牧兽医研究所 | 羊魏氏梭菌pcr检测试剂盒 |
CN104372078A (zh) * | 2014-10-24 | 2015-02-25 | 河北省食品检验研究院 | 一种食品中产气荚膜梭菌的hda引物及其应用方法 |
CN105349664A (zh) * | 2015-11-27 | 2016-02-24 | 首都医科大学宣武医院 | 检测中枢神经系统细菌性感染者脑脊液中病原菌的基因芯片及试剂盒 |
CN105755121A (zh) * | 2016-03-17 | 2016-07-13 | 四川农业大学 | 一种肉鸭肠道产气荚膜梭菌的检测方法 |
CN106148548A (zh) * | 2016-08-31 | 2016-11-23 | 青海省畜牧兽医科学院 | 一种能同时检测产气荚膜梭菌、溶血梭菌和b型诺维氏梭菌的多重pcr检测试剂盒及其应用 |
CN107012239A (zh) * | 2017-05-06 | 2017-08-04 | 雷宇 | 一种产气荚膜梭菌的多重pcr分型方法 |
CN111518923A (zh) * | 2019-11-12 | 2020-08-11 | 广州微芯生物科技有限公司 | 用于检测产气荚膜梭菌的荧光定量pcr方法及相应的试剂盒 |
CN112132576A (zh) * | 2020-09-07 | 2020-12-25 | 陈建芸 | 基于区块链通信的支付信息处理方法及区块链信息平台 |
-
2009
- 2009-08-05 CN CN200910041690A patent/CN101613746A/zh active Pending
Cited By (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102242221A (zh) * | 2011-07-20 | 2011-11-16 | 贵州省畜牧兽医研究所 | 羊魏氏梭菌pcr检测试剂盒 |
CN104372078A (zh) * | 2014-10-24 | 2015-02-25 | 河北省食品检验研究院 | 一种食品中产气荚膜梭菌的hda引物及其应用方法 |
CN105349664A (zh) * | 2015-11-27 | 2016-02-24 | 首都医科大学宣武医院 | 检测中枢神经系统细菌性感染者脑脊液中病原菌的基因芯片及试剂盒 |
CN105755121A (zh) * | 2016-03-17 | 2016-07-13 | 四川农业大学 | 一种肉鸭肠道产气荚膜梭菌的检测方法 |
CN106148548A (zh) * | 2016-08-31 | 2016-11-23 | 青海省畜牧兽医科学院 | 一种能同时检测产气荚膜梭菌、溶血梭菌和b型诺维氏梭菌的多重pcr检测试剂盒及其应用 |
CN107012239A (zh) * | 2017-05-06 | 2017-08-04 | 雷宇 | 一种产气荚膜梭菌的多重pcr分型方法 |
CN111518923A (zh) * | 2019-11-12 | 2020-08-11 | 广州微芯生物科技有限公司 | 用于检测产气荚膜梭菌的荧光定量pcr方法及相应的试剂盒 |
CN112132576A (zh) * | 2020-09-07 | 2020-12-25 | 陈建芸 | 基于区块链通信的支付信息处理方法及区块链信息平台 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN101613746A (zh) | 产气荚膜梭菌的快速定量检测方法及检测试剂盒 | |
CN100378230C (zh) | H5、h7、h9亚型禽流感病毒的实时荧光定量pcr检测方法 | |
CN101358246B (zh) | 用于检测猪瘟病毒的lamp试剂盒及其制备方法 | |
CN103320434B (zh) | 一种沙门氏菌lamp引物组和试剂盒及检测方法 | |
CN105420373A (zh) | 同时检测三种气单胞菌的多重pcr引物组及探针和检测方法 | |
CN111218527B (zh) | 一种环境样本非洲猪瘟病毒检测试剂盒及检测方法 | |
CN105112564A (zh) | 一种运用连接酶检测高危型HPV E6/E7 mRNA的方法及试剂盒 | |
CN104651534A (zh) | 一种猪圆环病毒环介导等温扩增试剂盒及其应用 | |
CN112646908A (zh) | 创伤弧菌等温扩增引物、探针、试剂盒与检测方法 | |
Tran et al. | Direct colorimetric LAMP assay for rapid detection of African swine fever virus: A validation study during an outbreak in Vietnam | |
CN110499394A (zh) | 检测非洲猪瘟病毒的lamp引物组、试剂盒及检测方法 | |
CN102071263B (zh) | 禽流感病毒h5亚型套式荧光rt-pcr检测试剂及检测试剂盒 | |
Zhang et al. | Diagnostics and detection of African swine fever virus | |
CN101178350B (zh) | 检测狂犬病毒的试剂盒 | |
CN104593486A (zh) | 一种用于检测血吸虫的引物、探针和试剂盒 | |
CN103215389B (zh) | 猪繁殖与呼吸综合症和猪乙型脑炎双重一步法rt-pcr诊断试剂盒 | |
CN102260750B (zh) | 用于口蹄疫病毒实时荧光rt-pcr检测的引物和方法 | |
CN104745724A (zh) | 一种用于检测jc病毒的引物、探针和试剂盒 | |
CN104745722A (zh) | 一种用于检测水痘带状疱疹病毒的引物、探针和试剂盒 | |
CN104450929A (zh) | 一种沙门氏菌的分子检测方法及其应用 | |
CN113502341A (zh) | 梅毒螺旋体16s RNA的实时荧光核酸恒温扩增检测试剂盒及其专用引物和探针 | |
CN114480726A (zh) | 非洲猪瘟病毒核酸检测的引物探针组、试剂盒及检测方法 | |
CN105779656A (zh) | 一种猪细环病毒2型环介导等温扩增试剂盒及其应用 | |
CN105821160A (zh) | 一种猪嵴病毒逆转录环介导等温扩增试剂盒及其应用 | |
CN116891910A (zh) | 一种具有抗干扰能力的非洲猪瘟病毒荧光pcr检测试剂盒 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C12 | Rejection of a patent application after its publication | ||
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |
Application publication date: 20091230 |