CN101182343A - 动物关节软骨组织总rna提取方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种动物关节软骨组织总RNA提取方法,该方法有以下步骤:(1)取动物关节软骨组织,研磨,加入变性液,β-巯基乙醇,匀浆;(2)冰水浴下,加酸性水饱和酚,摇匀,加醋酸钠,氯仿、异戊醇混合液,冰水浴上15min;(3)4℃下,离心,取上清液,加氯仿、异戊醇混合液,离心取上清,加异丙醇,-20℃下沉淀,离心,得到凝胶状RNA和蛋白多糖混合沉淀,加无RNA酶水,溶解得胶状溶液;(4)取胶状溶液用plant RNAout试剂盒的RNA提取步骤得到总RNA沉淀,取沉淀,乙醇洗涤后用无RNA酶水溶解沉淀,即得关节软骨组织总RNA溶液。采用本发明方法提取的动物关节软骨组织总RNA的收率高,并且纯度高、质量、完整性好,可以满足分子生物学研究应用。
Description
技术领域
本发明涉及一种富含蛋白多糖的RNA提取方法,特别涉及一种动物关节软骨组织总RNA提取方法。
背景技术
各种关节疾病和脊柱关节的疾病的治疗一直是医学界面临的难题,国内外正在开始尝试的基因治疗有望获得该领域治疗的突破。从基因水平对软骨组织进行研究意义重大,而从软骨组织中提取高质量的RNA是各种基因表达研究的基础。
关节软骨基质多,细胞少,细胞成分只占20%,软骨基质的主要成分是II型胶原,由于II型胶原中富含羟赖氨酸,并且羟赖氨酸的羟基几乎全部和糖结合,因而糖化率高,含糖量约为10%,因此软骨基质主要成分是蛋白多糖。关节软骨属于细胞含量少的组织,组织RNA含量低,并且多糖的理化性质与核糖核酸RNA非常相似,在沉淀RNA时,蛋白多糖和RNA一块无区分的沉淀下来,产生富含多糖的凝胶状沉淀,这种含有多糖的RNA沉淀难溶于水,或溶解后产生粘稠状的溶液,这样的RNA由于蛋白多糖的干扰无法进行后续的各种分子生物学试验。在去除多糖的同时RNA也被带走,造成RNA的大量丢失,因此从软骨中提取高质、足量的RNA非常困难。
由于软骨组织的特殊结构,目前尚无有效的方法来解决这一难题,基于酸酚/胍盐原理的总RNA抽提方法是动物组织、细胞核酸分离的主要方法,如一步法、trizol法等,但基于酸酚/胍盐原理的方法不适于富含多糖的动物组织,因为该种方法不能区分理化性质相似的多聚核糖和蛋白多糖,在进行RNA沉淀的时候,蛋白多糖和RNA一起沉淀下来,而去除蛋白多糖的步骤也是RNA损失的步骤。plant RNAout法是基于CTAB裂解法的总RNA提取方法,其优点是操作简便、易行,含CTAB的裂解液是用于富含多糖和多酚的植物总RNA抽提的首选细胞裂解方法,可以有效的分离植物组织中的多糖和RNA,但通过多次实验证明,该方法用于抽提新西兰白兔关节软骨组织的总RNA时引入DAN污染。因此,我们试验证明用一步法、trizol法、anima RNAout法、植物RNA提取法等成熟的RNA提取方法都不能获得高质量总RNA,采用经典的去除多糖的方法如高盐、低醇沉淀法都不能去除大量的多糖。
发明内容
本发明的目的是提供一种动物关节软骨组织总RNA提取方法,它适用于含蛋白多糖的RNA难提组织的小量总RNA提取,采用本发明方法提取的动物关节软骨组织总RNA的收率高,并且质量好、纯度高、完整性好,可以满足分子生物学研究应用。
本发明方法有以下步骤:
(1)取动物关节软骨组织,立即投入液氮中研磨至粉末状,每50重量份的关节软骨组织加入1体积变性液,0.007体积的β-巯基乙醇,匀浆至无明显组织块;
(2)将匀浆液置于冰水浴上,加酸性水饱和酚,摇匀,加醋酸钠,氯仿、异戊醇混合液,置于冰水浴上15min;
(3)4℃下,离心,取上清液,加入氯仿、异戊醇混合液,离心取上清加入异丙醇,-20℃下沉淀30min,离心30分钟,得到凝胶状RNA和蛋白多糖混合沉淀,加入无RNA酶水,溶解沉淀得到胶状溶液;
(4)取胶状溶液用plant RNAout试剂盒的RNA提取步骤得到总RNA沉淀,取沉淀,乙醇洗涤二次后用无RNA酶水溶解沉淀即得关节软骨组织总RNA溶液。
本发明所述的重量与体积的计量单位,采用克与毫升或千克与升或微克与微升等。
通常细胞中约75%的RNA酶存在于胞液中,当细胞裂解后,RNA酶会释放出来,在没有有效的抑制措施下,RNA酶会迅速降解RNA。一步法所用的裂解液主要成分为异硫氰酸胍,它是一种强烈的蛋白质变性剂,能有效的抑制RNase活性,使RNase变性,裂解液中加入的β-巯基乙醇也是RNase的强烈抑制剂,联合应用可有效防止RNA降解。
由于动物RNA提取方法基于酸性环境,而植物RNA提取方法是基于碱性环境。本发明将动物RNA提取方法和植物RNA提取方法两种方法结合,并根据关节软骨组织总RNA的理化性质做进一步的改进,使得提取的动物关节软骨组织总RNA的收率高,完整性好。原因是一步法提取的总RNA沉淀非常彻底,RNA损失少,得率是最高的,而且一步法所用的试济对RNA酶的抑制也是可靠的。用一步法分离DNA和RNA,在移取上清的步骤尽量多取,虽然在已取上清夜中引入了少量的中间层蛋白质,但在后续的氯仿抽提过程可以去除。加入异丙醇后要在-20°沉淀30分钟,沉淀离心时间也延长到30分钟,都能有效的增加RNA的得率,虽然这两个步骤增加了蛋白多糖的污染,但在后续的plantRNAout提取过程中可以有效的去除多糖。
本发明适用于小量关节软骨组织或其他部位软骨组织的RNA提取,并且有方法简单、经济、适用的优点适合于分子生物学研究应用。采用本发明方法提取的动物关节软骨组织总RNA的收得率、质量和纯度均高于动物RNA提取方法和植物RNA提取方法。
附图说明
图1为一步法提取RNA电泳图;
图2为Trizol法提取RNA电泳图;
图3为animal RNAout法提取RNA电泳图;
图4为plant RNAout法提取总RNA电泳图;
图5为酶消化实验电泳图;
图6为本发明方法提取总RNA电泳图;
图7为用所提取总RNA经过不同循环数LD-PCR合成的双链cDAN电泳图。
具体实施方式
实施例采用的试剂和设备:
本发明所述试剂均采用市售的分析纯试剂。
1.无RNase的DEPC水:
双蒸水中加0.1%的DEPC摇匀后置室温内过夜,再进行高压灭菌处理即可使用。
2.变性液:
秤异硫氰酸胍23.6320g,柠檬酸三钠0.3676g,十二烷基肌氨酸钠0.25g,加入25ml高压灭菌三蒸水,定容到50ml。
3.pH为4.0的2mol/L醋酸钠50ml:
无水醋酸钠8.28g,三蒸水30ml溶解,冰醋酸调pH值到4.0加水定容至50ml。
4.氯仿、异戊醇混合液:氯仿∶异戊醇为49∶1;
吸取氯仿49ml,加入异戊醇1ml混匀;
5.75%乙醇100ml:
取新开瓶乙醇75ml,加入进行了无RNase处理的瓶子,加入无RNase水25ml;
6.plant RNAout试剂盒由绵羊天择基因公司生产的同名产品;
7.PH为4.5的酸性水饱和酚由上海生工公司生产的产品;
8.AJ-30I型低温超速离心机(Beckman,USA);
9.Chemilmager 5500型凝胶成像仪(Alpha Innotech,USA);
10.DU-800型核酸/蛋白检测仪(Beckman,USA);
实施例1 关节软骨组织总RNA的提取
组织匀浆:取新西兰白兔关节软骨组织后立即投入液氮中,按每50mg新西兰白兔关节软骨组织加入变性液1ml中裂解,7μl β-巯基乙醇,匀浆。
将匀浆液分装入无酶无菌(无RNase)1.5ml离心管,每管0.5ml,置于冰水浴上,每管加500μl酸性水饱和酚,用力摇匀,每管加50μl 2mol/L pH为4.0的醋酸钠溶液,100μl氯仿∶异戊醇(49∶1)混合液,用力摇匀,置于冰水浴上15min。
于4℃,12,000g,离心10min,取上清加入无RNase 1.5ml离心管,每管加500μl氯仿∶异戊醇(49∶1)混合液,用力摇匀。
于4℃,12,000g,离心5min,取上清加入无RNase 1.5ml离心管。
每管加等体积异丙醇,用力摇匀,置于-20℃沉淀30min。
于4℃,14,000g,离心30min,小心将上清吸出并抛弃。
加入20μl用焦碳酸二乙酯(DEPC)处理的无RNA酶水无RNA酶水,振荡溶解沉淀,得到沉淀溶解后的胶状溶液,将胶状溶液合并于一个无RNase 1.5ml离心管。
加入1ml溶液A,充分混匀后加入0.3ml溶液B和0.2ml氯仿,充分混匀。
于4℃,15,000g,离心5min,小心将上清吸出转移到另一个1.5ml离心管。
加入0.3ml溶液C和0.2ml氯仿,充分混匀。
于4℃,15,000g,离心3min,小心将上清吸出转移到另一个1.5ml离心管。
加入1/2体积溶液D,充分混匀。
于4℃,15,000g,离心30min。
小心吸弃上清液,加入1ml 75%乙醇,轻摇离心管洗沉淀30秒。
于4℃,15,000g,离心3min。
小心吸弃上清液,加入1ml 75%乙醇,轻摇离心管洗沉淀30秒。
于4℃,15,000g,离心3min。
简单离心,将残存乙醇聚于管低,小心用移液器吸弃。
室温干燥5分钟,加入适量无RNA酶水溶解沉淀。
实施例2 各种试验方法的比较:
见下表
方法 | OD260/280 | 新西兰白兔关节软骨组织 | 电泳图 | 结果 |
一步法 | 1.5 | 1.4微克/100毫克 | 参见图1,提取RNA量少,条带模糊,依稀可见5S\28\18S条带 | 有大量不溶白色沉淀(蛋白多糖) |
Trizol法 | 1.6 | 2微克/100毫克 | 参见图2,提取RNA量少,条带模糊,依稀可见5S\28\18S条带 | 有大量不溶白色沉淀(蛋白多糖) |
animalRNAout法 | 1.6 | 2微克/100毫克 | 参见图3,提取RNA量少,未见明显条带,依稀可见5S\28\18S条带 | 有大量不溶白色沉淀(蛋白多糖) |
植物RNA提取法 | 2.0 | 13微克/100毫克 | 参见图4,5S\28\18S条带可见,点样孔有荧光亮带,酶消化实验明为DNA污染 | 加样孔荧光试验验证为DNA污染 |
酶消化实验 | 参见图5,左侧泳道:RNA样品电泳;中间泳道:RNA样品加RNA酶消化15分钟后电泳;右侧泳道:样品加RNA酶和DNA酶消化15分钟后电泳,证明点样孔为DNA污染 | 证明加样孔荧光为DNA污染 | ||
本发明方法 | 2.0 | 10微克/100毫克 | 参见图6,5S\28S\18S条带清晰,28S无降解,点样孔未见荧光条带 | 无污染,完整性好,获得高质量的RNA |
结论:一步法、Trizol法和animal RNAout法的共同特点是提取物中含有大量白色不溶解沉淀,为蛋白多糖,所得RNA纯度差,得率低,增加抽提次数仍不能去除蛋白多糖;植物RNA提取法为植物RNA提取方法的尝试,多次试验结果显示有基因组DNA污染。本发明方法获得高质量、高纯度、完整性好、收率较高的RNA,完全满足后续分子生物学试验要求。
实施例3 总RNA的逆转录及LD-PCR扩增
采用美国CLONTECH公司的SMARTTM PCR cDNA Synthesis Kit进行逆转录。用LD-PCR方法,用本发明方法提取的新西兰白兔关节软骨总RNA为模板,利用引物SMART II A Oligonueleotide和3′SMART CDS Primer IIA在反转录酶作用下首先合成两端带有接头的cDNA,通过引物5 PCR Primer IIA继续合成并扩增双链cDNA。实验在PTC-200型PCR仪上进行15、18、21个循环,并确定17个循环为最优循环数字。提取的总RNA的LD-PCR结果见图7,由左至右依次为Marker、15、18、21循环,因此,用本发明方法提取的总RNA获得LD-PCR的成功。
结论:LD-PCR对RNA质量的要求高于普通的逆转录PCR,将分本发明方法所获得的总RNA进行LD-PCR获得成功说明总RNA质量好,完全满足分子生物学实验要求。
Claims (4)
1.一种动物关节软骨组织总RNA提取方法,其特征在于该方法有以下步骤:
(1)取动物关节软骨组织,立即投入液氮中研磨至粉末状,每50重量份的关节软骨组织加入1体积变性液,0.007体积的β-巯基乙醇,匀浆至无明显组织块;
(2)将匀浆液置于冰水浴上,加酸性水饱和酚,摇匀,加醋酸钠,氯仿、异戊醇混合液,置于冰水浴上15min;
(3)4℃下,离心,取上清液,加入氯仿、异戊醇混合液,离心取上清加入异丙醇,-20℃下沉淀30min,离心30分钟,得到凝胶状RNA和蛋白多糖混合沉淀,加入无RNA酶水,溶解沉淀得到胶状溶液;
(4)取胶状溶液用plant RNAout试剂盒的RNA提取步骤得到总RNA沉淀,取沉淀,乙醇洗涤二次后用无RNA酶水溶解沉淀即得关节软骨组织总RNA溶液。
2.根据权利要求1所述动物关节软骨组织总RNA提取方法,其特征在于步骤(1)中所述的变性液的组成为:
秤异硫氰酸胍 23.6320重量份
柠檬酸三钠 0.3676重量份
十二烷基肌氨酸钠 0.25重量份
加入25重量份三蒸水,定容至50体积。
3.根据权利要求1所述动物关节软骨组织总RNA提取方法,其特征在于:步骤(2)、(3)中所述的氯仿、异戊醇混合液中的氯仿:异戊醇为49∶1。
4.根据权利要求1所述动物关节软骨组织总RNA提取方法,其特征在于:步骤(2)中所述的醋酸钠溶液的浓度为2mol/L。
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