CN101016571A - 一种果树主要病毒的pcr检测试剂盒及使用方法 - Google Patents
一种果树主要病毒的pcr检测试剂盒及使用方法 Download PDFInfo
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Abstract
本发明属于生物技术领域,具体涉及一种果树主要病毒的PCR检测试剂盒及其使用方法。该试剂盒由RNA提取试剂和PCR检测试剂组成,利用PCR技术原理,根据科学研究优化的试剂组合结果整合而成,可用于苹果褪绿叶斑病毒、苹果茎沟病毒、苹果花叶病毒、李属坏死环斑病毒、葡萄卷叶病毒和李矮缩病毒的PCR检测,需要配合PCR仪和高速冷冻离心机等的使用。具有灵敏度高、专一性强、操作简便、用时短等特点。适用于植病检疫检验部门、高等院校、科研院所。
Description
技术领域
本发明属于生物技术领域,具体涉及果树主要病毒的检测。
技术背景
果树病毒病是难以控制的病害,一旦侵染,在自然条件下难以清除,终生保存在树体内。感染病毒病的果树,体内的生理机能遭到破坏,生长不良、产量下降、品质变劣,并且对果树形成长期的慢性危害,严重时致树体死亡,给生产带来巨大的经济损失。
果树病毒种类多,危害持久,迄今尚无有效的药物可以控制。目前较为可行的控制措施是实行检疫,控制其扩展。因此,建立高效灵敏的检测技术,成为解决种苗检疫、抗病性早期鉴定等基本问题的前提,并能为果树无毒化栽培提供基本保障。
果树病毒常用的检测方法有:植物学症状鉴定法、指示植物鉴定法、电子显微镜技术检测法、血清学检测法、分子生物学检测法等。每一类方法都有其优缺点,在使用上也具有一定的局限性,其中分子生物学检测法以其灵敏度高、特异性更强、检测病毒范围广、可批量检测等优势正逐渐受到广泛的重视。
逆转录—多聚酶链式反应(RT-PCR)技术是一种选择性体外扩增DNA或RNA的方法,是近几年被广泛的应用于生物学各个领域的前沿性生物技术,该技术用于植物病毒的检测具有特异性强、灵敏度高、快速简便、结果可靠等优点,目前我国在这一领域的研究还刚刚起步。
本发明经过反复验证,此次申报的试剂盒及检测方法在原有的基础上进一步优化。具有如下特点:
1.检测成本进一步降低,不足国外同类检测成本的一半。
2.检测所需时间缩短,3-4h即可检测完毕。
3.该试剂盒使用简便,重复性强,准确性高。
4.该试剂盒检测果树病毒时,不受检测时间和检测部位的限制,可以周年使用。
发明内容
本发明旨在提供一种果树主要病毒的PCR检测试剂盒,该试剂盒由果树病毒RNA提取试剂和PCR检测试剂组成。该试剂盒需要保存在-70℃的低温下。
果树病毒RNA提取试剂为:液氮、RNA提取缓冲液、酚、氯仿、异戊醇、氯化锂、0.1%焦碳酸二乙酯的水溶液、3mol/L醋酸钠(pH5.3)、无水乙醇。
PCR检测试剂为:dNTPs 100μmol/L、0.67mol/L Buffer缓冲液(pH8.8)、RNasin(RNA酶抑制剂)、MgCl2、Pc引物、Ph引物、Mo-MLV RTase(逆转录酶)、总RNA模板、Taq酶、无菌双蒸水。
反应中所使用的Pc引物为:
Cl-Pc(苹果褪绿叶斑病毒互补引物)5′-cagaccctta ttgaagtcga a-3′
Sg-Pc(苹果茎沟病毒互补引物)5′-ctgcaagacc gcgaccaagt tt-3′
Ap-Pc(苹果花叶病毒互补引物)5′-ttctagcagg tcttcatcga-3′
Nr-Pc(李属坏死环斑病毒互补引物)5′-acgcgcaaaa gtgtcgaaat ctaaa-3’
Lr-Pc(葡萄卷叶病毒互补引物)5′-cggcacgatc gtactttcta a-3′
Pd-Pc(李矮缩病毒互补引物)5′-tagtgcaggt taaccaaaag gat-3′
反应中所使用的Ph引物为:
Cl-Ph(苹果褪绿叶斑病毒同源引物)5′-ggcaaccctg gaacaga-3′
Sg-Ph(苹果茎沟病毒同源引物)5′-cccgctgttg gatttgatac acctc-3
Ap-Ph(苹果花叶病毒同源引物)5′-caaccgagag gttggca-3′
Nr-Ph(李属坏死环斑病毒同源引物)5′-tggtcccact cagagctcaa caaag-3
Lr-Ph(葡萄卷叶病毒同源引物)5′-gatgctttcg cgtatttctt g-3′
Pd-Ph(李矮缩病毒同源引物)5′-atggatggga tggataaaat agt-3′
本发明中,果树主要病毒的PCR检测试剂盒的使用方法包括以下步骤:
第一步:果树病毒RNA提取
①取200-300mg果树组织,加液氮研磨成粉末状,并快速移入1.5ml离心管中,加300-600μl RNA提取缓冲液和500-800μl热酚,振荡30-60秒,4℃,10000-12000转/分,离心5-10分钟;
②取水相,加入1-2倍体积的酚∶氯仿∶异戊醇(25∶24∶1),混匀,4℃,10000-12000rpm,离心5-10分钟;
③取水相,加入2.5倍体积的氯化锂,于4℃条件下保存2小时;
④沉淀溶于0.1%焦碳酸二乙酯的水溶液250μl中,室温下放置1.5小时后,再用氯仿∶异戊醇(24∶1)抽提两次,4℃,10000-12000rpm,离心5-10分钟;
⑤取水相,加入1/10体积的3mol/L醋酸钠(pH5.3)和2.5倍体积的无水乙醇,-20℃放置0.5小时后,于4℃,10000-12000rpm,离心5-10分钟;
⑥沉淀用70%乙醇洗1-2次,干燥后溶于30-50μl无菌双蒸水或0.1%焦碳酸二乙酯的水溶液中,得到总RNA模板,于-20℃或-70℃保存备用;
第二步:逆转录
取dNTPs 100-300μmol/L、0.67mol/L Buffer缓冲液(pH8.8)1.0μl、RNasin(RNA酶抑制剂)8-10U、氯化镁0.5-1.1mmol/L、Pc引物0.35-0.60μmol/L、Mo-MLV RTase(逆转录酶)50U、总RNA模板0.5-1.0μl,以无菌双蒸水或焦碳酸二乙酯的水溶液补足10μl,于37-42℃反应1h,再于95℃反应5min;
第三步:PCR扩增
取上述RT反应产物10μl、dNTPs 80-100μmol/L、PCR Buffer2.5μl、MgCl20.6-1.2mmol/L、引物0.3-0.5μmol/L、Ph 0.35-0.6μmol/L、TaqE 1U,用无菌双蒸水补足25μl,于90-94℃反应30-6s,再于50-60℃反应30s-2min,接着于72℃反应1-2min,反应循环30-35次,最后一轮反应延伸7min。
第四步:对扩增产物进行电泳、染色,产生特异DNA谱带,进行结果判断。
本发明主要用于苹果褪绿叶斑病毒、苹果茎沟病毒、苹果花叶病毒、李属坏死环斑病毒、葡萄卷叶病毒和李属矮缩病毒的PCR检测。
本发明中所使用的无菌双蒸水与0.1%焦碳酸二乙酯的水溶液可以相互替换。
本发命中所使用的RNA提取缓冲液的组成为:50mmol/L TrisCl pH8.0、140mmol/L NaCl、10mmol/L EDTA、1%SDS、2%PVP、10U RNasin、2%巯基乙醇,其中的RNasin和2%巯基乙醇为临用前加入。
具体实施方式
实施例一:一种果树主要病毒的PCR检测试剂盒,由果树病毒RNA提取试剂和PCR检测试剂组成,其中,
果树病毒RNA提取试剂为:液氮、RNA提取缓冲液、酚、氯仿、异戊醇、氯化锂(LiCl)、焦碳酸二乙酯的水溶液(浓度?)、3mol/L NaAc(pH5.3)、无水乙醇;
PCR检测试剂为:dNTPs 100μmol/L、0.67mol/L Buffer缓冲液(pH8.8)、RNA酶抑制剂(RNasin)、MgCl2、引物、Mo-MLV RTase(逆转录酶)、总RNA模板、Taq酶、无菌双蒸水。
该试剂盒用于检测苹果褪绿叶斑病毒时按如下程序操作:
第一步:果树病毒RNA提取
①取200果树组织,加液氮研磨成粉末状,并快速移入1.5ml离心管中,加300μl RNA提取缓冲液和500μl热酚,振荡30秒,4℃,10000转/分,离心5分钟;
②取水相,加入1倍体积的酚∶氯仿∶异戊醇(25∶24∶1),混匀,4℃,10000rpm,离心5分钟;
③取水相,加入2.5倍体积的LiCl,于4℃条件下保存2小时;
④沉淀溶于250μl 0.1%焦碳酸二乙酯的水溶液中,室温下放置1.5小时后,再用氯仿∶异戊醇(24∶1)抽提两次,4℃,10000rpm,离心5分钟;
⑤取水相,加入1/10体积的3mol/L NaAc(pH5.3)和2.5倍体积的无水乙醇,-20℃放置0.5小时后,于4℃,10000rpm,离心5分钟;
⑥沉淀用70%乙醇洗1次,干燥后溶于30μl DEPC H2O(焦碳酸二乙酯的水溶液)中,得到总RNA模板,于-20℃保存备用;
第二步:逆转录
取dNTPs 100μmol/L、0.67mol/L Buffer缓冲液(pH8.8)1.0μl、RNasin(RNA酶抑制剂)10U、MgCl2 0.8mmol、Cl-Pc 0.40uM、Mo-MLV RTase(逆转录酶)50U、总RNA模板1.0μl,用DEPC ddH2O补足10μl,混合,于42℃温育1h,再于95℃反应5min;
第三步:PCR扩增
取dNTPs 80μmol/L、PCR Buffer2.5μl、MgCl2 1.2mmol/L、C1-Pc 0.5μmol/L、Cl-Ph 0.5μmol/L、TaqE 1U、RT产物10μl,用DEPC水补足25μl,依次于94℃反应30s;55℃反应1min;72℃反应1min;将反应循环30次,最后延伸7min;
第四步:对扩增产物进行电泳、染色,产生特异DNA谱带,进行结果判断。
实施例二:一种果树主要病毒的PCR检测试剂盒,其组成同实施例一,用于检测葡萄卷叶病毒时按如下程序操作:
第一步:果树病毒RNA提取,同实施例一;
第二步:逆转录
取dNTPs 100μmol/L、0.67mol/L Buffer(10x)缓冲液(pH8.8)1μl、RNasin10U、MgCl2 0.8mmol/L、GLR-Pc 0.4μmol/L、MMLV RTase50U、总RNA 1μl(0.5-1.0μg)。用DEPC ddH2O补足10μl,混合后于42℃温育1h;
第三步:PCR扩增
取dNTPs 80μmol/L、PCR Buffer 2.5μl、MgCl2 1.0mmol/L、GLR-Pc0.45μmol/L、GLR-Ph 0.50μmol/L、Taq DNA聚合酶1U,用DEPC ddH2O补足25μl。混合后依次于94℃反应30s,52℃反应1min,72℃反应1min,将反应循环30次,最后一轮延伸7min;
第四步:对扩增产物进行电泳、染色,产生特异DNA谱带,进行结果判断。
实施例三:一种果树主要病毒的PCR检测试剂盒,其组成同实施例一,用于检测苹果茎沟病毒时按如下程序操作:
第一步:果树病毒RNA提取
①取300mg果树组织,加液氮研磨成粉末状,并快速移入1.5ml离心管中,加600μl RNA提取缓冲液和800μl热酚,振荡60秒,4℃,12000转/分,离心10分钟;
②取水相,加入2倍体积的酚∶氯仿∶异戊醇(25∶24∶1),混匀,4℃,12000rpm,离心10分钟;
③取水相,加入2.5倍体积的LiCl,于4℃条件下保存2小时;
④沉淀溶于250μl 0.1%焦碳酸二乙酯的水溶液中,室温下放置1.5小时后,再用氯仿∶异戊醇(24∶1)抽提两次,4℃,12000rpm,离心10分钟;
⑤取水相,加入1/10体积的3mol/L NaAc(pH5.3)和2.5倍体积的无水乙醇,-20℃放置0.5小时后,于4℃,12000rpm,离心5-10分钟;
⑥沉淀用70%乙醇洗2次,干燥后溶于50μl DEPC H2O(焦碳酸二乙酯的水溶液)中,得到总RNA模板,于-70℃保存备用;
第二步:逆转录
取dNTPs 100μmol/L、0.67mol/L Buffer缓冲液(pH8.8)1.0μl、RNasin 10U、MgCl2 0.8mmol/L、Sg-Pc 0.40μmol/L、Mo-MLV RTase 50U、总RNA 1.0μl,用无菌双蒸水补足10μl,混合后依次于42℃温育1.5h,95℃温育5min;
第三步:PCR扩增
取dNTPs 80μmol/L、PCR Buffer 2.5μl、MgCl2 1.0mmol/L、Sg-Pc 0.30μmol/L、Sg-Ph 0.35μmol/L、TaqE 1U、RT产物10μl,用DEPC ddH2O补足25μl。混合后依次于94℃反应1min,60℃反应1min,72℃反应1min,将反应循环30次,最后延伸7min;
第四步:对扩增产物进行电泳、染色,产生特异DNA谱带,进行结果判断。
实施例四:一种果树主要病毒的PCR检测试剂盒,其组成同实施例一,用于检测苹果花叶病毒时按如下程序操作:
第一步:果树病毒RNA提取,同实施例一;
第二步:逆转录
取0.67mol/L Buffer(5×)缓冲液(pH8.8)2μl、Pc0.7μmol/L;RNasin 6U、dNTPs0.25 mmol/L、MgCl20.5mmol/L、Mo-MLV RTase 100U、总RNA 2μl,用无菌双蒸水补足10μl,混合后依次于37℃温育30分钟,95℃温育5分钟;
第三步:PCR扩增
取0.2mmol/L dNTPs、10×PCR Buffer 2.5μl、MgCl2 0.5mmol/L、Pc0.68μmol/L、Ph 0.84μmol/L、Taq DNA聚合酶1U,用无菌双蒸水补足25μl,混合后依次于90℃反应45秒、50℃反应45秒、72℃反应45秒,将反应循环40次,之后在72℃下延伸7分钟;
第四步:对扩增产物进行电泳、染色,产生特异DNA谱带,进行结果判断。
实施例五:一种果树主要病毒的PCR检测试剂盒,其组成同实施例一,用于检测李矮缩病毒时按如下程序操作:
第一步:果树病毒RNA提取,同实施例二;
第二步:逆转录
取0.67mol/L Buffer(5×)缓冲液(pH8.8)2μl、Pd-Pc 0.6μmol/L、RNasin 8U、dNTPs125μmol/L、MgCl20.5mmol/L、M-MLV RTase 50U、总RNA 0.5μl,用无菌双蒸水补足10μl,混合后于37℃温育30分钟;
第三步:PCR扩增
取100μmol/L dNTPs、10×PCR Buffer 2.5μl、MgCl2 0.9mmol/L、Pd-Pc0.3μmol/L、Pd-Ph 0.3μmol/L、Taq DNA聚合酶1U,用无菌双蒸水补足25μl,依次于94℃预变性3分钟、94℃反应45秒、60℃反应30秒、72℃反应45秒,将反应循环30次,最后一轮延伸为72℃7分钟,4℃保存;
第四步:对扩增产物进行电泳、染色,产生特异DNA谱带,进行结果判断。
实施例六:一种果树主要病毒的PCR检测试剂盒,其组成同实施例一,用于检测李属坏死环斑病毒时按如下程序操作:
第一步:第一步:果树病毒RNA提取,同实施例二;
第二步:逆转录
取dNTPs125μmol/L、0.67mol/L Buffer缓冲液(pH8.8)1.0μl、RNasin 8U、MgCl21.13mmol/L、Nr-Pc 0.496μmol/L、Mo-MLV RTase 50U、总RNA 0.5μl,用无菌双蒸水补足10μl,依次于37℃温育1小时,95℃温育5分钟;
第三步:PCR扩增
取dNTPs100μmol/L、PCR Buffer 2.5μl、MgCl21.2mmol/L、Nr-Pc0.396μmol/L、Nr-Pb0.456μmol/L、TaqE 1U、RT产物1U,用无菌双蒸水补足25μl,混合后依次于94℃反应30秒、54℃反应1分钟、72℃反应1分钟,将反应循环25次,最后一轮延伸为5分钟;
第四步:对扩增产物进行电泳、染色,产生特异DNA谱带,进行结果判断。
SEQUENCE LISTING
<110>侯义龙
<120>一种果树主要病毒的PCR检测试剂盒及使用方法
<160>12
<210>1
<211>21
<212>RNA
<213>苹果褪绿叶斑病毒(Apple chlorotic leaf spot virus)
<400>1
cagaccctta ttgaagtcga a 21
<210>2
<211>22
<212>RNA
<213>苹果茎沟病毒(Apple stem grooving virus)
<400>2
ctgcaagacc gcgaccaagt tt 22
<210>3
<211>20
<212>RNA
<213>苹果花叶病毒(Apple mosaic virus)
<400>3
ttctagcagg tcttcatcga 20
<210>4
<211>25
<212>RNA
<213>李属坏死环斑病毒(Prunus necrotic ring spot virus)
<400>4
acgcgcaaaa gtgtcgaaat ctaaa 25
<210>5
<211>21
<212>RNA
<213>葡萄卷叶病毒(Grapevine leaf roll-associated virus)
<400>5
cggcacgatc gtactttcta a 21
<210>6
<211>23
<212>RNA
<213>李矮缩病毒(Prune dwarf virus)
<400>6
tagtgcaggt taaccaaaag gat 23
<210>7
<211>17
<212>RNA
<213>苹果褪绿叶斑病毒(Apple chlorotic leafspot virus)
<400>7
ggcaaccctg gaacaga 17
<210>8
<211>25
<212>RNA
<213>苹果茎沟病毒(Apple stem grooving virus)
<400>8
cccgctgttg gatttgatac acctc 25
<210>9
<211>17
<212>RNA
<213>苹果花叶病毒(Apple mosaic virus)
<400>9
caaccgagag gttggca 17
<210>10
<211>25
<212>RNA
<213>李属坏死环斑病毒(Prunus necrotic ring spot virus)
<400>10
tggtcccact cagagctcaa caaag 25
<210>11
<211>21
<212>RNA
<213>葡萄卷叶病毒(Grapevine leaf roll-associated virus)
<400>11
gatgctttcg cgtatttctt g 21
<210>12
<211>23
<212>RNA
<213>李矮缩病毒(Prune dwarf virus)
<400>12
atggatggga tggataaaat agt 23
Claims (9)
1、一种果树主要病毒的PCR检测试剂盒,其特征在于由果树病毒RNA提取试剂和PCR检测试剂组成,其中,
果树病毒RNA提取试剂为:液氮、RNA提取缓冲液、酚、氯仿、异戊醇、氯化锂、0.1%焦碳酸二乙酯的水溶液、3mol/L醋酸钠(pH5.3)、无水乙醇;
PCR检测试剂为:dNTPs 100μmol/L、0.67mol/L Buffer缓冲液(pH8.8)、RNA酶抑制剂、氯化镁、Pc引物、Ph引物、Mo-MLV RTase、总RNA模板、Taq酶、无菌双蒸水。
2、根据权利要求1所述的一种果树主要病毒的PCR检测试剂盒,其特征在于反应中所使用的Pc引物为:
Cl-Pc 5′-cagaccctta ttgaagtcga a-3′
Sg-Pc 5′-ctgcaagacc gcgaccaagt tt-3′
Ap-Pc 5′-ttctagcagg tcttcatcga-3′
Nr-Pc 5′-acgcgcaaaa gtgtcgaaat ctaaa-3’
Lr-Pc 5′-cggcacgatc gtactttcta a-3′
Pd-Pc 5′-tagtgcaggt taaccaaaag gat-3′
3、根据权利要求1所述的一种果树主要病毒的PCR检测试剂盒,其特征在于所使用的Ph引物为:
Cl-Ph 5′-ggcaaccctg gaacaga-3′
Sg-Ph 5′-cccgctgttg gatttgatac acctc-3
Ap-Ph 5′-caaccgagag gttggca-3′
Nr-Ph 5′-tggtcccact cagagctcaa caaag-3
Lr-Ph 5′-gatgctttcg cgtatttctt g-3′
Pd-Ph 5′-atggatggga tggataaaat agt-3′
4、根据权利要求1所述的一种果树主要病毒的PCR检测试剂盒,其特征在于该试剂盒需要保存在-70℃的低温下。
5、根据权利要求1所述的一种果树主要病毒的PCR检测试剂盒,其特征在于使用时按如下方法进行操作:
第一步:果树病毒RNA提取
①取200-300mg果树组织,加液氮研磨成粉末状,并快速移入1.5ml离心管中,加300-600μl RNA提取缓冲液和500-800μl热酚,振荡30-60秒,4℃,10000-12000转/分,离心5-10分钟;
②取水相,加入1-2倍体积的酚∶氯仿∶异戊醇(25∶24∶1),混匀,4℃,10000-12000rpm,离心5-10分钟;
③取水相,加入2.5倍体积的氯化锂,于4℃条件下保存2小时;
④沉淀溶于250μl 0.1%焦碳酸二乙酯的水溶液中,室温下放置1.5小时后,再用氯仿∶异戊醇(24∶1)抽提两次,4℃,10000-12000rpm,离心5-10分钟;
⑤取水相,加入1/10体积的3mol/L NaAc(pH5.3)和2.5倍体积的无水乙醇,-20℃放置0.5小时后,于4℃,10000-12000rpm,离心5-10分钟;
⑥沉淀用70%乙醇洗1-2次,干燥后溶于30-50μl DEPC H2O(焦碳酸二乙酯的水溶液)中,得到总RNA模板,于-20℃保存备用;
第二步:逆转录
取dNTPs 100-300μmol/L、0.67mol/L Buffer缓冲液(pH8.8)1.0μl、RNA酶抑制剂8-10U、MgCl20.5-1.1 mmol/L、Pc引物0.35-0.60μmol/L、Mo-MLV RTase50U、总RNA模板0.5-1.0μl,以无菌双蒸水补足10μl,于37-42℃反应1h,再于95℃反应5min;
第三步:PCR扩增
取上述逆转录反应产物10μl、dNTPs 80-100μmol/L、PCR Buffer2.5μl、氯化镁0.6-1.2mmol/L、Pc引物0.3-0.5μmol/L、Ph引物0.35-0.6μmol/L、Taq酶1U,用无菌双蒸水补足25μl,于90-94℃反应30-60s,再于50-60℃反应30s-2min,接着于72℃反应1-2min,反应循环30-35次,最后一轮反应延伸7min;
第四步:对扩增产物进行电泳、染色,产生特异DNA谱带,进行结果判断。
6、根据权利要求1所述的一种果树主要病毒的PCR检测试剂盒,其特征在于可用于苹果褪绿叶斑病毒、苹果茎沟病毒、苹果花叶病毒、李属坏死环斑病毒、葡萄卷叶病毒和李属矮缩病毒的PCR检测。
7、根据权利要求1所述的一种果树主要病毒的PCR检测试剂盒,其特征在于所使用的无菌双蒸水可以由焦碳酸二乙酯的水溶液替换。
8、根据权利要求1所述的一种果树主要病毒的PCR检测试剂盒,其特征在于RNA提取缓冲液的组成为:50mmol/L TrisCl pH8.0、140mmol/L NaCl、10mmol/L EDTA、1%SDS、2%PVP、10U RNasin、2%巯基乙醇。
9、根据权利要求1所述的一种果树主要病毒的PCR检测试剂盒,其特征在于其RNA提取缓冲液中的RNasin和2%巯基乙醇为临用前加入。
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