CN100564515C

CN100564515C - 一株博德特氏菌及其在制备胆固醇氧化酶及胆甾-4-烯-3-酮中的应用

Info

Publication number: CN100564515C
Application number: CNB200710114218XA
Authority: CN
Inventors: 宋欣; 林彦良; 林建强; 曲音波
Original assignee: Shandong University
Current assignee: Shandong University
Priority date: 2007-11-09
Filing date: 2007-11-09
Publication date: 2009-12-02
Anticipated expiration: 2027-11-09
Also published as: CN101182481A

Abstract

本发明公布了一株博德特氏菌及其在制备胆固醇氧化酶及胆甾-4-烯-3-酮中的应用。所述菌株为博德特氏菌(Bordetella sp.)B4 CGMCC No.2229，该菌株能够合成胞外型胆固醇氧化酶，并能将胆固醇转化为胆甾-4-烯-3-酮。本发明菌株具有发酵时间短，产酶活性高的特点，胞外酶活能够达到2000U/L，已经达到或高于国际领先水平。

Description

一株博德特氏菌及其在制备胆固醇氧化酶及胆甾-4-烯-3-酮中的应用

技术领域

本发明涉及到一株博德特氏菌及其应用，尤其涉及一株产胆固醇氧化酶的博德特氏菌及其在制备胆固醇氧化酶及胆甾-4-烯-3-酮中的应用。

背景技术

胆固醇是一种动物性甾醇，胆固醇的代谢异常会引起人体的许多疾病，例如动脉粥样硬化、心肌梗塞、中风、动脉瘤以及胆结石等疾病，因此，检测血浆和食品中的胆固醇以及降低食品中的胆固醇含量具有重要的临床意义，胆固醇氧化酶可以作为检测血浆中的胆固醇含量的重要工具；将胆固醇氧化酶添加到食品中可以降低食品中的胆固醇含量。此外，胆固醇氧化酶还可以抑制鳞翅目幼虫的生长。而且，胆固醇氧化酶可以把胆固醇氧化为胆甾-4-烯-3-酮，胆甾-4-烯-3-酮是许多甾体类药物重要前体，在治疗肝病及抗肥胖等方面具有显著疗效。

胆固醇氧化酶可以作为一种重要的临床药物，并且能够进一步开发作为食品添加剂和作为农业杀虫剂，具有非常良好的市场前景。

目前，已报道的能够产胆固醇氧化酶的菌株主要有以下几个属：节杆菌属、棒状杆菌属、诺卡氏菌属、分支杆菌属、假单胞菌属、裂褶菌、短杆菌属、链霉菌属、红球菌属。但是，其胆固醇氧化酶的产率是非常低的，已经报导的菌株所产的胆固醇氧化酶酶活都处于比较低的水平。经检索，关于利用博德特氏菌属产胆固醇氧化酶并在胞外高表达的文献及专利还未见报道。

发明内容

针对目前胆固醇氧化酶产率低的问题和需要各种甾体类药物中间体以制备重要的甾体药物的现状，本发明要解决的问题是提供一株产胆固醇氧化酶的博德特氏菌及其在制备胆固醇氧化酶及胆甾-4-烯-3-酮中的应用。

本发明所述的博德特氏菌，其特征在于：该菌命名为博德特氏菌(Bordetella sp.)B4，已于2007年10月24日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(中国科学院微生物研究所，中国北京)，其保藏编号为CGMCC No.2229。

上述博德特氏菌(Bordetella sp.)B4为革兰氏阴性菌，单个细胞为球杆状，大小0.3um～0.7um×0.6um～1.1um，专性好氧；16srDNA的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示，显示与博德特氏菌属的相似度达到99％。

本发明所述博德特氏菌在制备胆固醇氧化酶及胆甾-4-烯-3-酮中的应用。

其中：应用中涉及的步骤顺序如下：

(1)菌种选择：选用博德特氏菌(Bordetella sp.)B4 CGMCC No.2229；

(2)斜面培养：将菌种接种于基本无机盐培养基，其中添加质量体积比为1.5～2.0％的琼脂，25～37℃条件下，静止培养24～72小时；

(3)种子培养：将步骤(2)培养的菌株，在无菌条件下用接种环接1～2环于20～100mL含有质量体积比为0.01～1.0％的胆固醇的基本无机盐培养基中，25～37℃条件下，振荡培养24～72小时，制得种子液；

(4)扩大培养：以体积比为1～10％的接种量，将种子液接种于50～1000mL含有质量体积比为0.1～1.0％的胆固醇的基本无机盐培养基中，25～37℃条件下，振荡培养48～144小时；

(5)收集发酵产物：将步骤(4)所得的发酵液在2000～8000rpm转速离心，分别收集上清液和沉淀，上清液即为胆固醇氧化酶粗酶液，沉淀为菌体和胆甾-4-烯-3-酮的混合物；

(6)胆固醇氧化酶的分离纯化：将步骤(5)中获得的粗酶液分别通过质量百分比为5～10％的硫酸铵和30～80％的硫酸铵，进行分级沉淀；收集沉淀物，用pH 7.0的磷酸缓冲液溶解，利用透析的方法除去残余的硫酸铵；利用超滤的方法将发酵液浓缩至1～10ml，通过离子交换层析获得纯胆固醇氧化酶；

(7)收集并分离胆甾-4-烯-3-酮：将步骤(5)中获得的沉淀用有机溶剂溶解；2000～8000rpm转速离心，上清液即为胆甾-4-烯-3-酮溶液；利用制备型TLC分离纯化，于真空干燥器中干燥，得到胆甾-4-烯-3-酮固体。

上述的应用中：步骤(2)、(3)、(4)中所述的培养温度优选是32～37℃，胆固醇的质量体积比优选为0.1％～1.0％。

上述的应用中：步骤(3)所述的菌体培养时间优选是48～72小时。

上述的应用中：步骤(4)中所述的接种量的体积比优选是3～7％，所述的菌体振荡培养时间优选是60～120小时。

上述的应用中：步骤(5)、(7)中所述的离心机转速优选为5000～6000rpm。

上述的应用中：步骤(7)所述的有机溶剂为非极性的有机溶剂。

其中：步骤(7)所述的有机溶剂优选为三氯甲烷或乙酸乙酯。

上述博德特氏菌(Bordetella sp.)B4 CGMCC No.2229培养温度优选是32～37℃，可以在基本无机盐培养基上以葡萄糖和胆固醇作为碳源生长。

其中：所述菌株培养使用液体基本无机盐培养基(Basal Salts Medium，BSM)，配方为：

每1000毫升蒸馏水中添加KH₂PO₄ 0.6g，Na₂HPO₄ 1.2g，NaCl 0.1g，MgSO₄·7H₂O 2.7g，CaCl₂ 0.1g，(NH₄)₂SO₄ 0.2g，FeSO₄ 0.02g。

115℃条件下灭菌30分钟。

上述固体斜面基本无机盐培养基优选为上述液体无机盐培养基成分添加质量体积百分比浓度为1.8％的琼脂粉。

发明人从2005年即开始了胆固醇氧化酶产生菌的筛选，本发明所述博德特氏菌是发明人筛选获得的一株高产胆固醇氧化酶的博德特氏菌Bordetella sp.B4 CGMCC No.2229菌株，经过培养条件的初步优化，产胞外胆固醇氧化酶的酶活达到2000U/L。

本发明利用博德特氏菌属产胆固醇氧化酶并在胞外高表达是首次报道。博德特氏菌所产的胆固醇氧化酶大部分分泌到细胞外，胞外酶活能够达到2000U/L(一个酶活单位定义为：在37℃下1min内，催化1μmol胆固醇氧化为胆甾-4-烯-3-酮所需的酶量)，已经达到或高于国际领先水平，如果通过发酵罐发酵会进一步提高酶活。

利用本发明所述的博德特氏菌Bordetella sp.B4 CGMCC No.2229可以制备高活性的胆固醇氧化酶和胆甾-4-烯-3-酮，前者可以作为检测血浆中的胆固醇含量的重要工具；将胆固醇氧化酶添加到食品中可以降低食品中的胆固醇含量；胆固醇氧化酶还可以抑制鳞翅目幼虫的生长；后者能够应用到心血管疾病治疗及抗肥胖治疗。这两种生物产品可以应用在医药、食品工业和农业等诸多领域，具有极大的应用前景。

附图说明

本发明提供的菌株博德特氏菌(Bordetella sp.)B4，已于2007年10月24日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，保藏地址：北京市海淀区中关村北一条13号，邮政编码：100080，其保藏编号为CGMCC No.2229。

图1本发明所述博德特氏菌16s rDNA测序结果与NCBI中的序列比对。

图2利用薄层层析法(TLC)检测胆甾-4-烯-3-酮产生情况。

其中：1.接种时 2.接种后12h 3.接种后24h 4.接种后48h 5.接种后72h6.接种后96h 7.接种后120h。

具体实施方式

实施例1：博德特氏菌(Bordetella sp.)B4 CGMCC No.2229的筛选。

从来自济南郊区稻田、大豆根部土壤、玉米根部土壤、菜园等的土样中，经过富集培养，平板划线等方法获得了48株菌株，经摇瓶发酵后检测发酵产物，获得一株转化能力很强的菌株，经16s rDNA鉴定，确定该菌株为博德特氏菌属(Bordetella sp.)。在培养温度为37℃，摇床转速260rpm，发酵培养基初始pH为pH 7.0的条件下进行发酵，经薄层层析检测和质谱分析、核磁分析，表明博德特氏菌(Bordetella sp.B4)产生的是胆甾-4-烯-3酮，胆固醇氧化酶酶活达到2000U/L。

上述菌株富集培养使用液体基本无机盐培养基，添加质量百分比为0.1％的胆固醇作为唯一碳源。

上述平板初筛培养基使用液体基本无机盐培养基，添加质量百分比为0.1％的胆固醇作为唯一碳源。

上述生产胆固醇氧化酶及胆甾-4-烯-3酮的发酵培养基使用液体基本无机盐培养基，添加质量百分比为0.75％的葡萄糖和0.3％的胆固醇。

115℃条件下灭菌30分钟。

固体基本无机盐培养基为上述液体无机盐培养基成分添加质量体积百分比为1.8％的琼脂粉。

上述菌株博德特氏菌(Bordetella sp.)B4，已于2007年10月24日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，保藏地址：北京市海淀区中关村北一条13号，邮政编码：100080，其保藏编号为CGMCC No.2229。

实施例2：博德特氏菌(Bordetella sp.)B4 CGMCC No.2229的16s rDNA鉴定。

粗提实施例1所述博德特氏菌(Bordetella sp.)B4 CGMCC No.2229菌体的基因组，设计引物为：上游引物5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′，下游引物5′-AAGGAGGTGATCCAGCCGCA-3′，常规PCR扩增16s rDNA。

测序结果：16srDNA的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示。

与NCBI中的序列进行比对，比对结果见图1。

根据16s rDNA序列比对结果显示，筛选到的本发明所属的菌株确定为博德特氏菌(Bordetella sp.)。

实施例3：利用博德特氏菌(Bordetella sp.)B4 CGMCC No.2229制备胆固醇氧化酶及胆甾-4-烯-3-酮。其中，转速为220rpm。

(1)菌种选择：选用博德特氏菌(Bordetella sp.)B4 CGMCC No.2229；

(2)斜面培养：将菌种接种于基本无机盐培养基，其中添加质量体积比为1.8％的琼脂，37℃条件下，静止培养38小时；

(3)种子培养：将步骤(2)培养的菌株，在无菌条件下用接种环接1～2环于100mL含有质量体积比为0.3％的胆固醇的基本无机盐培养基中，28℃条件下，振荡培养24小时，制得种子液；

(4)扩大培养：以4.0％的体积比的接种量，将种子液接种于50mL含有质量体积比为0.3％的胆固醇的基本无机盐培养基中，28℃条件下，220rpm培养64小时；

(5)收集发酵产物：将步骤(4)所得的发酵液6000rpm离心，分别收集上清液和沉淀，上清液即为粗酶液，沉淀为菌体和胆甾-4-烯-3-酮的混合物。

(6)胆固醇氧化酶的分离纯化：将步骤(5)中获得的粗酶液分别通过质量百分比为8％的硫酸铵和50％的硫酸铵，进行分级沉淀；收集沉淀物，用pH 7.0的磷酸缓冲液溶解，利用透析的方法除去残余的硫酸铵；利用超滤的方法将发酵液浓缩至7～10ml，通过离子交换层析获得纯胆固醇氧化酶；

(7)收集并分离胆甾-4-烯-3-酮：将步骤(5)中获得的沉淀用三氯甲烷溶解；6000rpm转速离心，上清液即为胆甾-4-烯-3-酮溶液；利用制备型TLC分离纯化，于真空干燥器中干燥，得到胆甾-4-烯-3-酮固体。

实施例4：利用博德特氏菌(Bordetella sp.)B4 CGMCC No.2229制备胆固醇氧化酶及胆甾-4-烯-3-酮。其中，转速为240rpm。

(1)菌种选择：选用博德特氏菌(Bordetella sp.)B4 CGMCC No.2229；

(2)斜面培养：将菌种接种于基本无机盐培养基，其中添加质量体积比为1.8％的琼脂，32℃条件下，静止培养42小时；

(3)种子培养：将步骤(2)培养的菌株，在无菌条件下用接种环接1～2环于100mL含有质量体积比为0.3％的胆固醇的基本无机盐培养基中，32℃条件下，振荡培养36小时，制得种子液；

(4)扩大培养：以4.0％的体积比的接种量，将种子液接种于150mL含有质量体积比为0.3％的胆固醇的基本无机盐培养基中，32℃条件下，240rpm培养48小时；

(5)收集发酵产物：将步骤(4)所得的发酵液5000rpm离心，分别收集上清液和沉淀，上清液即为粗酶液，沉淀为菌体和胆甾-4-烯-3-酮的混合物。

(6)胆固醇氧化酶的分离纯化：将步骤(5)中获得的粗酶液分别通过质量百分比为5％的硫酸铵和40％的硫酸铵，进行分级沉淀；收集沉淀物，用pH 7.0的磷酸缓冲液溶解，利用透析的方法除去残余的硫酸铵；利用超滤的方法将发酵液浓缩至7～10ml，通过离子交换层析获得纯胆固醇氧化酶；

(7)收集并分离胆甾-4-烯-3-酮：将步骤(5)中获得的沉淀用三氯甲烷溶解；5000rpm转速离心，上清液即为胆甾-4-烯-3-酮溶液；利用制备型TLC分离纯化，于真空干燥器中干燥，得到胆甾-4-烯-3-酮固体。

实施例5：利用博德特氏菌(Bordetella sp.)B4 CGMCC No.2229制备胆固醇氧化酶及胆甾-4-烯-3-酮。其中，转速为260rpm。

(1)菌种选择：选用博德特氏菌(Bordetella sp.)B4 CGMCC No.2229；

(2)斜面培养：将菌种接种于基本无机盐培养基，其中添加质量体积比为1.8％的琼脂，37℃条件下，静止培养48小时；

(3)种子培养：将步骤(2)培养的菌株，在无菌条件下用接种环接1～2环于100mL含有质量体积比为0.7％的胆固醇的基本无机盐培养基中，37℃条件下，振荡培养48小时，制得种子液；

(4)扩大培养：以4.0％的体积比的接种量，将种子液接种于250mL含有质量体积比为0.7％的胆固醇的基本无机盐培养基中，37℃条件下，260rpm培养36小时；

(6)胆固醇氧化酶的分离纯化：将步骤(5)中获得的粗酶液分别通过质量百分比为10％的硫酸铵和70％的硫酸铵，进行分级沉淀；收集沉淀物，用pH 7.0的磷酸缓冲液溶解，利用透析的方法除去残余的硫酸铵；利用超滤的方法将发酵液浓缩至7～10ml，通过离子交换层析获得纯胆固醇氧化酶；

(7)收集并分离胆甾-4-烯-3-酮：将步骤(5)中获得的沉淀用乙酸乙酯溶解；6500rpm转速离心，上清液即为胆甾-4-烯-3-酮溶液；利用制备型TLC分离纯化，于真空干燥器中干燥，得到胆甾-4-烯-3-酮固体。

实施例6：利用博德特氏菌(Bordetella sp.)B4 CGMCC No.2229制备胆固醇氧化酶及胆甾-4-烯-3-酮。分别在接种时、接种后12h、24h、48h、72h、96h、120h取样，薄层层析法(TLC)检测胆甾-4-烯-3-酮产生情况。

(1)菌种选择：选用博德特氏菌(Bordetella sp.)B4 CGMCC No.2229；

(3)种子培养：将步骤(2)培养的菌株，在无菌条件下用接种环接1～2环于100mL含有质量体积比为0.5％的胆固醇的基本无机盐培养基中，37℃条件下，振荡培养48小时，制得种子液；

(4)扩大培养：以4.0％的体积比的接种量，将种子液接种于50mL含有质量体积比为0.5％的胆固醇的基本无机盐培养基中，37℃条件下，260rpm培养96小时，分别在接种时、接种后12h、24h、48h、72h、96h、120h取样；

(5)收集发酵产物：将步骤(4)所得的发酵液6000rpm离心，收集沉淀，用三氯甲烷溶解。

(6)将步骤(5)中获得的胆甾-4-烯-3-酮溶液利用薄层层析法(TLC)检测胆甾-4-烯-3-酮产生情况(结果见图2)。

上述实施例中菌株培养使用液体基本无机盐培养基(Basal Salts Medium，BSM)，配方为：

每1000毫升蒸馏水中添加KH₂PO₄ 0.6g，Na₂HPO₄ 1.2g，NaCl 0.1g，MgSO₄·7H₂O2.7g，CaCl₂ 0.1g，(NH₄)₂SO₄ 0.2g，FeSO₄ 0.02g。

115℃条件下灭菌30分钟。

序列表

<110>山东大学

<120>一株博德特氏菌及其在制备胆固醇氧化酶及胆甾-4-烯-3-酮中的应用

<141>2007-11-6

<210>1

<211>1523

<212>DNA

<213>博德特氏菌(Bordetella sp.)

<221>博德特氏菌(Bordetella sp.)B4 CGMCC No.2229 16S rDNA

<222>(1)…(1523)

<400>1

agagtttgat cctggctcag attgaacgct agcgggatgc tttacacatg caagtcgaac 60

ggcagcgcgg acttcggtct ggcggcgagt ggcgaacggg tgagtaatgt atcggaacgt 120

gcctagtagc gggggataac tacgcgaaag cgtagctaat accgcatacg ccctttgggg 180

gaaagcgggg gaccttcggg cctcgcacta ttagagcggc cgatatcgga ttagctagtt 240

ggtggggtaa aggctcacca aggcgacgat ccgtagctgg tttgagagga cgaccagcca 300

cactgggact gagacacggc ccagactcct acgggaggca gcagtgggga attttggaca 360

atgggggcaa ccctgatcca gccatcccgc gtgtgcgatg aaggccttcg ggttgtaaag 420

cacttttggc aggaaagaaa cggccctggt taatacctgg ggcaactgac ggtacctgca 480

gaataagcac cggctaacta cgtgccagca gccgcggtaa tacgtagggt gcaagcgtta 540

atcggaatta ctgggcgtaa agcgtgcgca ggcggttcgg aaagaaagat gtgaaatccc 600

agagcttaac tttggaactg catttttaac taccgggcta gagtgtgtca gagggaggtg 660

gaattccgcg tgtagcagtg aaatgcgtag agatgcggag gaacaccgat ggcgaaggca 720

gcctcctggg ataacactga cgctcatgca cgaaagcgtg gggagcaaac aggattagat 780

accctggtag tccacgccct aaacgatgtc aactagctgt tggggccttc gggccttggt 840

agcgcagcta acgcgtgaag ttgaccgcct ggggagtacg gtcgcaagat taaaactcaa 900

aggaattgac ggggacccgc acaagcggtg gatgatgtgg attaattcga tgcaacgcga 960

aaaaccttac ctacccttga catgtctgga atgccgaaga gatttggcag tgctcgcaag 1020

agaactggaa cacaggtgct gcatggctgt cgtcagctcg tgtcgtgaga tgttgggtta 1080

agtcccgcaa cgagcgcaac ccttgtcatt agttgctacg aaagggcact ctaatgagac 1140

tgccggtgac aaaccggagg aaggtgggga tgacgtcaag tcctcatggc ccttatgggt 1200

agggcttcac acgtcataca atggtcggga cagagggttg ccaagccgcg aggtggagcc 1260

aatctcataa acccgatcgt agtccggatc gcagtctgca actcgactgc gtgaagtcgg 1320

aatcgctagt aatcgcggat cagcatgtcg cggtgaatac gttcccgggt cttgtacaca 1380

ccgcccgtca caccatggga gtgggtttta ccagaagtag ttagcctaac cgcaaggggg 1440

gcgattacca cggtaggatt catgactggg gtgaagtcgt aacaaggtag ccgtatcgga 1500

aggtgcggct ggatcacctc ctt

Claims

1、一株博德特氏菌，其特征在于：该菌命名为博德特氏菌(Bordetella sp.)B4，已于2007年10月24日保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心，其保藏编号为CGMCC No.2229。

2、如权利要求1所述的博德特氏菌，其特征在于：所述博德特氏菌(Bordetella sp.)B4为革兰氏阴性菌，单个细胞为球杆状，大小0.3um～0.7um×0.6um～1.1um，专性好氧；16srDNA的核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示。

3、权利要求1或2所述博德特氏菌在制备胆固醇氧化酶及胆甾-4-烯-3-酮中的应用。

4、如权利要求3所述的应用，其特征在于：应用中涉及的步骤顺序如下：

(1)菌种选择：选用博德特氏菌(Bordetella sp.)B4 CGMCC No.2229；

(7)收集并分离胆甾-4-烯-3-酮：将步骤(5)中获得的沉淀用三氯甲烷或乙酸乙酯溶解；2000～8000rpm转速离心，上清液即为胆甾-4-烯-3-酮溶液；利用制备型TLC分离纯化，于真空干燥器中干燥，得到胆甾-4-烯-3-酮固体；

其中，上述基本无机盐培养基的配方为：

每1000毫升蒸馏水中添加KH₂PO₄0.6g，Na₂HPO₄1.2g，NaCl 0.1g，MgSO₄·7H₂O2.7g，CaCl₂0.1g，(NH₄)₂SO₄0.2g，FeSO₄0.02g。

5.如权利要求4所述的应用，其特征在于：步骤(2)、(3)、(4)中所述的培养温度是32～37℃。

6.如权利要求4所述的应用，其特征在于：步骤(3)所述的菌体培养时间是48～72小时。

7.如权利要求4所述的应用，其特征在于：步骤(4)所述的菌体振荡培养时间是60～120小时。

8.如权利要求4所述的应用，其特征在于：步骤(5)、(7)中所述的离心机转速为5000～6000rpm。