CN100519753C - 重组微生物 - Google Patents

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Abstract

一种重组微生物，其通过将编码蛋白质或多肽的基因转移到能够以提高的生产率生产蛋白质或多肽的宿主微生物上而获得，以及使用该重组微生物生产蛋白质或多肽的方法。该重组微生物通过将编码异性蛋白质或多肽的基因转移到枯草杆菌基因comA、yopO、treR、yubA、cspB、yvaN、yttP、yurK、yozA、licR、sigL、mntR、glcT、yvdE、ykvE、slr、rocR、ccpA、yaaT、yyaA、yycH、yacP、hprK、rsiX、yhdK以及ylbO的任意一种或一个或多个与这些基因的任意一种功能相当的基因缺失或被剔除的微生物的突变株上而制备。

Description

重组微生物
技术领域
本发明涉及可用于生产有用蛋白质或多肽的重组微生物，以及涉及该蛋白质和多肽。
背景技术
微生物广泛用于工业生产大量有用物质，包括酒精饮料、例如味噌和酱油之类的某些类型的食品、氨基酸、有机酸、核酸相关物质、抗生素、糖、脂质和蛋白质。这些物质还发现具有多种用途，包括食品、医药品、洗涤剂、例如化妆品之类的日用品和各种化工原料。
在利用微生物工业生产有用物质时，生产率的提高是一个主要关注点，因此一种方法是通过诱变或其它基因手段进行微生物育种。最近，特别是随着微生物遗传学和生物技术的进步，通过基因重组技术进行更有效的有用微生物育种，并与其相关地是正在开发用于获得重组基因的宿主微生物。例如，已经进一步改进了枯草杆菌Marburg No.168，其作为宿主微生物已经被证实是安全且具有优异特性的。
然而，微生物本身拥有各种基因使其能够应对自然界中的环境变化，因此，它们在只采用有限的生产媒介的工业生产中不一定表现出蛋白质和类似物质的高生产效率。
发明内容
本发明提供一种重组微生物，其通过将编码异性蛋白质或多肽的基因转移到枯草杆菌基因comA、yopO、treR、yvbA、cspB、yvaN、yttP、yurK、yozA、licR、sigL、mntR、glcT、yvdE、ykvE、slr、rocR、ccpA、yaaT、yyaA、yycH、yacP、hprK、rsiX、yhdK以及ylbO的任意一种或一个或多个与这些基因的任意一种功能相当的基因缺失或被剔除的微生物的突变株上而制备。
附图说明
图1示意性地显示了通过SOE-PCR(SOE：重叠延伸拼接法)(参见Gene，77，61(1989))缺失基因以制备DNA片段的方法，和使用该DNA缺失目标基因的方法(用抗药性基因取代目标基因)。
具体实施方式
本发明针对一种通过将编码蛋白质或多肽的基因转移到能够以提高的生产率生产蛋白质或多肽的宿主微生物上而获得的重组微生物，以及针对使用该重组微生物生产蛋白质或多肽的方法。
本发明入在微生物基因组上编码的许多不同基因中对有用蛋白质或多肽的生产中不需要或有害的基因进行了广泛的研究，并发现，当特异性基因从微生物的基因组中缺失或剔除之后，编码目标蛋白质或多肽的基因转移到例如枯草杆菌之类的微生物上，与缺失或剔除之前的情况相比，目标蛋白质或多肽的生产率提高。
在本发明的微生物中，由于缺失或剔除了对目标蛋白质或多肽的生产不必要或有害的基因，因此包括能量损耗、副产物生成和单位生产率降低在内的培养基的浪费显著减少，并且此外，蛋白质和多肽可以持续生产，从而高效地生产目标产物。
在本发明中，氨基酸序列之间的同源性和核酸序列之间的同源性都使用Lipman-Pearson法(Science，227，1435(1985))测定。具体而言，将ktup参数(相匹配的单元大小)设定为2，使用Genetyx-Win(Software Development Co.，Ltd.)的遗传信息处理软件开发的同源性分析程序(Search Homology)进行计算。
对构成本发明的微生物的母体微生物没有特别的限制，只要其含有对于目标蛋白质或多肽的生产不是必需的基因。具体而言，可以使用如表1所示的任何枯草杆菌基因或与其功能相当的基因，其中基因可以是野生型或突变体。具体例子包括枯草杆菌和属于芽孢杆菌属的类似微生物、属于梭状芽胞杆菌属的微生物和酵母。其中，优选属于芽孢杆菌属的微生物。特别是从已经获得该微生物的完全基因组信息、并由此确立了基因工程技术和基因组工程技术、并且该微生物具有细胞外分泌所得蛋白质的能力的角度考虑，优选枯草杆菌。
使用本发明的微生物生产的目标蛋白质或多肽的例子包括酶、生理活性物质，和其它发现在食品、医药品、化妆品、洗涤剂、纤维处理剂、临床化验剂等有用的蛋白质和多肽。
以已知在基因组上含有4,106个基因的枯草杆菌为例，要被缺失或剔除的一个或多个基因是表1所示的任一枯草杆菌基因，或者选自与其功能相当的基因。本发明人已经发现，这些基因不会直接参与目标蛋白质或多肽的生产并且对于微生物在普通工业生产培养基中的生长不是必需的。
此处所含表中的各个基因的名称、数量和功能与Nature，390，249-256(1997)中报道并由JAFAN(Japan Functional Analysis Networkfor Bacillu ssubtilis；BSORFDB)在互联网上公开(http://bacillus.genome.ad.jp/，2003年6月17日更新)的枯草杆菌基因组数据相符。
表1
 
基因名称 基因编号 该基因的功能或其它信息
comA BG10381 两元组分反应调节因子
yopO BG13648 推导(deduced)的转录调节因子，sp β原噬菌体蛋白质
treR BG11011 海藻糖操纵子转录阻遏物(GntR族)
yvbA BG14078 推导的转录调节因子(ArsR族)
cspB BG10824 冷休克-相关的主要因子
yvaN BG14069 推导的转录调节因子
yttP BG13927 推导的转录调节因子(TetR族)
yurK BG13997 推导的转录调节因子(GntR族)
yozA BG13748 推导的转录调节因子(ArsR族)
licR BG11346 转录调节因子(抗终止子)，地衣淀粉操控子(LicBCAH)调节
sigL BG10748 RNA聚合酶σ因子(o54)
mntR BG11702 锰转运调节因子
glcT BG12593 对于ptsGHI操纵子的表达必不可少的转录调节因子(BglG族，抗终止子)
yvdE BG12414 推导的转录调节因子(LacI族)
ykvE BG13310 推导的转录调节因子(MarR族)
slr BG11858 感受态相关基因或孢子形成相关基因的转录激活剂
 
rocR BG10723 精氨酸同化操纵子的转录激活剂(NtrC族)
ccpA BG10376 碳源代谢阻遏相关的转录调节因子(Lacl族)
yaaT BG10096 II型信号肽酶样蛋白质
yyaA BG10057 DNA-结合蛋白SpoOJ样蛋白质
yycH BG11462 功能未知(同源基因在其它生物体中发现)
yacP BG10158 功能未知(同源基因在其它生物体中发现)
hprK BG14125 Hpr蛋白质Ser残基含磷酶(phosphoenzyme)/去磷酶(dephosphoenzyme)
rsiX BG10537 抗σX因子
yhdK BG13017 功能未知，与σM因子表达的阻遏有关
ylbO BG13367 σE相关的metrocytein中基因的表达调节因子
来源于其它微生物的基因，优选来源于属于芽胞杆菌属的细菌的基因，其具有与表1所示的任一枯草杆菌相同的功能，或具有与表1所示任一基因的核苷酸序列70％或更高的同源性，优选80％或更高的同源性，更优选90％或更高，进一步优选95％或更高，仍然更优选98％或更高的同源性的，应该被认为与表1所示的基因功能相当，并因此构成根据本发明要缺失或剔除的基因。在这一方面，使用Lipman-Pearson法(Science，227，1435，1985)用计算机计算核苷酸的同源性。
表1所示的编码枯草杆菌的多种基因是参与各种基因表达的活化或抑制的调节基因，或被推导成这种调节基因的基因。基于此发现实现了本发明；即，在本发明中揭示了对蛋白质或多肽的生产不必要或有害的调节基因的存在。
值得注意地是下列事实已经引起了注意，即所列的许多“不必要”或“有害”基因是参与糖摄取或代谢的调节基因，以下列基因为例：glcT基因，其对葡萄糖PTS摄取操纵子起到抗终止子的作用；LicT基因，其对地衣淀粉水解操纵子起到抗终止子的作用；treR基因，其起到海藻糖摄取和代谢的阻遏物的作用；和hprk基因和ccpA基因，其关系到葡萄糖分解代谢物的阻遏。
而且，除了参与糖摄取和代谢的调节基因外，可以缺失或剔除参与激活精氨酸同化的rocR基因、和感受态相关的comA基因和slr基因，它们也是调节基因，从而提高蛋白质或多肽的生产率。
表1所示的基因包括yhdK基因，以及编码抑制ECFσ(sigma)因子表达的抗EC Fσ因子，即抗σx因子的rsiX基因。有报道yhdK参与了σM的抑制(Mol.Microbiol.，32，41，1999)。编码σL的σ基因也包括在表1的基因中。这表明，在σX或σM调节下的基因表达有利于蛋白质生产，相反，在σL调节下的一些基因表达是不利的。
通过缺失或剔除一个或多个选自上述基因的基因，可以防止对蛋白质或多肽的生产不必要的或有害的表达，从而使该蛋白质或多肽生产中的生产率提高。
要缺失或剔除的基因数为一个或更多，优选两个或更多，更优选三个或更多，甚至更优选5个或更多。当构筑本发明的微生物时，可以缺失或失活上述基因以外的一个或多个基因。在这种情况下，预计会有更好的效果。另一种实现本发明的方法是通过将另一来源的DNA片段插入到目标基因中或在该基因的转录/转译起始区域引入突变体来使目标基因失活或剔除。然而，优选物理缺失目标基因。
在缺失或剔除基因的示例性的方法中，根据之前提出的方案缺失或剔除表1所示的任一目标基因。或者，进行基因的随机缺失或通过剔除进行突变，然后对蛋白质生产率进行评测并进行基因分析。
目标基因可以通过同源重组而缺失或剔除。也就是，用合适的质粒载体克隆含有部分目标基因的DNA片段从而获得环形重组质粒，并将所得质粒转移到母体微生物的细胞中。此后，通过在目标基因的部分区域中进行同源重组，使母体微生物基因组上的目标基因裂解，从而完成目标基因的失活。或者，通过碱基的取代或插入来使目标基因剔除，或者通过PCR或类似方法构成含有目标基因序列外的区域但不含目标基因的线型DNA片段，并将由此制成的基因或片段转移到母体微生物的细胞中。在母体微生物基因组的目标基因中突变点外部的两个位点上，或在目标基因序列外的两个区域上，发生双交换同源重组，从而替换成基因组上的目标基因缺失或剔除的基因片段。
特别是当用于构筑本发明的微生物的母体微生物是枯草杆菌时，由于一些文献已经描述了缺失或剔除目标基因的方法(参见，例如，Mol.Gen.Genet.，223，268 1990)，可以根据这些方法的任何一种重复，从而生产本发明的宿主微生物。
基因随机缺失或失活可以通过使用与上述通过使用随机克隆的DNA片段诱发同源重组的方法类似的方法，或通过用γ射线或类似射线辐射母体微生物而进行。
接下来将更详细地描述通过使用为缺失目的而设计的DNA片段采用双交换的缺失方法，该DNA片段是通过SOE-PCR制备的(Gene，77，61，1989)。然而，在本发明中，缺失基因的方法不仅仅限于下述方法。
用于缺失目的的DNA片段是如下构成的片段：抗药标记基因在ca.0.5至3kb上游序列的侧面之间插入并且处于要缺失的基因的上游，以及抗药标记基因在ca.0.5至3kb下游序列的侧面之间插入并且处于相同基因的下游。在PCR的第一次循环中，制备下列三个片段：要缺失的上游片段和下游片段，和抗药标记基因。例如，要在该步骤中使用的引物可以是专门设计的引物，以便将抗药性基因的上游10-30碱基对序列加入到上游片段的下端，以及将抗药性标记基因的下游10-30碱基对序列加入到下游片段的上端(图1)。
接下来，使用在第一次循环中制备的三个PCR片段作为模板，使用上游片段的上部引物和下游片段的下部引物进行PCR的第二次循环。该步骤导致与如上制成的抗药性基因序列中的抗药性标记基因片段退火接合，并通过PCR扩增，可以获得在上游片段和下游片段之间插有抗药性标记基因的DNA片段(图1)。
当采用抗氯霉素基因作为抗药性标记基因时，可以使用合适的DNA模板和如表2所示的引物组和传统的PCR酶试剂盒(例如PyrobestDNA聚合酶(Takara Shuzo的产品)在文献中描述的典型条件下(参见，例如，PCR Protocols.Current Methods and Applications，Edited by B.A.White，Humana Press，pp.251(1993)，Gene，77，61，1989)通过SOE-PCR获得用于缺失基因的DNA片段。
当由此获得的用于实现基因缺失的DNA片段通过转化方法(competent method)或类似方法引入细胞中时，在要缺失的基因上游和下游存在的同源区域中发生细胞内基因重组。因此，其中的目标基因已经被抗药性基因取代的细胞可以通过使用抗药性标记物而选择性地分离(图1)。具体而言，当在细胞中引入通过表2所列的引物组而制备的用于基因缺失的DNA片段时，分离出在含有氯霉素的琼脂培养基上生长的菌落，并通过例如使用基因组作模板的PCR之类的合适方法来证实通过被抗氯霉素基因取代而缺失了目标基因。
随后，当将编码目标蛋白质或多肽的基因转移到表1所示的任一枯草杆菌基因或一个或多个选自与其相对应的基因的基因从中缺失或剔除的宿主突变微生物菌株上时，可以获得本发明的微生物。
对编码目标蛋白质或多肽的基因没有特别的限制。蛋白质和多肽的例子包括用于工业用途的例如洗涤剂、食品、纤维、饲料、化学品、药品和诊断用药之类的生理活性多肽和酶。工业酶从功能上可以分成氧化还原酶、转移酶、水解酶、裂合酶、异构酶和连接酶/合成酶。优选地，可以使用例如纤维素酶、α-淀粉酶和蛋白质酶之类的水解酶。具体例子包括属于水解酶分类中的族5的纤维素酶(Bioche M.J.，280，309，1991)；特别是源自微生物的纤维素酶，更特别是源自芽孢杆菌属的纤维素酶。这些类型的工业酶的其它具体例子包括源自芽孢杆菌属并含有氨基酸序列号：2或4的碱性纤维素酶，以及含有与所述氨基酸序列具有70％同源性，优选80％同源性，更优选90％同源性，进一步优选95％同源性，又进一步优选98％或更高同源性的另一氨基酸序列的纤维素酶。
α-淀粉酶的具体例子包括源自微生物的α-淀粉酶，优选源自芽孢杆菌属的液化淀粉酶。更具体的例子包括源自芽孢杆菌属并含有序列号：6的氨基酸序列的碱性淀粉酶，以及含有与所述氨基酸序列具有70％同源性，优选80％同源性，更优选90％同源性，进一步优选95％同源性，特别优选98％或更高同源性的另一氨基酸序列的淀粉酶。氨基酸序列的同源性通过Lipman-Pearson法(Science，227，1435(1985))计算。蛋白酶的具体例子包括源自微生物，特别是源自属于芽孢杆菌属的微生物的丝氨酸蛋白酶和金属蛋白酶。
优选地，编码目标蛋白或多肽的基因在其上游区域具有一个或多个适当地接合到其上的与基因的转录、转译或分泌有关的调节区域(具体而言，一个或多个选自包含启动子和转录起始位点的转录起始调节区域；包含核蛋白体结合位点和起始密码子的转译起始区域；和分泌信号肽区域的区域)。优选将由转录起始调节区域、转译起始调节区域和分泌信号区域构成的三个区域接合到目标基因上。更优选分泌信号肽区域是源自属于芽孢杆菌属的微生物的纤维素酶基因，且转录起始区域和转译起始区域是该纤维素酶基因上游的0.6至1kb区域。在一个优选例子中，在例如日本专利申请(公开)第2000-210081号和第190793/1990号中公开的源自属于芽孢杆菌属的微生物的纤维素酶基因；即，源自KSM-S237菌株(FERMBP-7875)或KSM-64菌株(FERMBP-2886)的纤维素酶基因的转录起始调节区域、转译起始区域、和分泌信号肽区域，适当地接合到目标蛋白或多肽的结构基因上。更具体地，要接合的优选DNA片段包括序列号：1的碱基数量为1至659的核苷酸序列；序列号：3的纤维素酶基因的碱基数量为1至696的核苷酸序列；含有与所述任意一种核苷酸序列具有70％同源性，优选80％同源性，更优选90％同源性，进一步优选95％同源性，甚至更优选98％或更高同源性的核苷酸序列的DNA片段；或含有缺失了所述任意一种核苷酸序列的一部分的核苷酸序列的DNA片段。优选将这些DNA片段的一种适当地接合到目标蛋白质或多肽的结构基因上。正如此处所用，含有缺失上述任意一种核苷酸序列的一部分的核苷酸序列的DNA片段是指不含上述任意一种核苷酸序列的一部分并具有与该基因的转录、转译和分泌有关的功能的DNA片段。
本发明的重组微生物可以通过传统的转化技术获得，其中将含有包括编码目标蛋白质或多肽的基因并接合到适当的质粒载体上的DNA片段的重组质粒转移到宿主微生物细胞中。或者，重组微生物可以利用通过将上述DNA片段接合到与宿主微生物基因组的某一部分同源的一个合适区域上而制备的DNA片段，并直接插入宿主微生物基因组中而获得。
使用本发明的重组微生物获得的目标蛋白质或多肽可以按照如下方式生产：将相应的细胞株植入含有可同化的碳源和氮源以及其它主要组分的培养基上；通过传统的微生物培养法培养细胞株；随后，收集并提纯蛋白质或多肽。
通过前述方法，可以生产宿主突变微生物株，其中表1所示的任一枯草杆菌基因或一个或多个选自与其功能相当的基因的基因已经缺失或剔除。此外，通过使用这种突变株，可以生产重组微生物。由此，通过使用突变株或重组微生物可以有效地生产有用的蛋白质或多肽。
下面将以构筑属于枯草杆菌的已经从中缺失了枯草杆菌的ccpA基因(BG10376)的重组菌株的实施例为中心，详细描述根据本发明构筑重组微生物的方法，以及使用该重组微生物生产纤维素酶和α-淀粉酶的方法。
实施例
实施例1
使用从枯草杆菌168菌株中提取的用作模板的基因组DNA样品和表1和2所示的两个引物组(ccpA-AF和ccpA-A/CmR；和ccpA-B/CmF和ccpA-BR)制备在该基因组上的ccpA基因上游侧侧面的0.6kb片段(A)和在ccpA基因下游侧侧面的0.6kb片段(B)。将质粒pC194的抗氯霉素基因(J.Bacteriol.150(2)，815(1982))插入质粒pUC18的XbaI-BamHI裂解位点，由此制备重组质粒pCBB31。使用重组质粒pCBB和表2所示的由CmF和CmR构成的引物组制备含有抗氯霉素基因的1kb片段(C)。随后，使用表2所示的引物ccpA-AF和ccpA-BR进行SOE-PCR，并结合使用由此制成的三个片段(A)、(B)和(C)作为模板，制备2.2kb DNA片段，其中在该序列中接合了片段(A)、(B)和(C)(参见图1)。使用由此制成的DNA片段，通过转化方法转化枯草杆菌168菌株。收集在含氯霉素的LB琼脂培养基中生长的菌落作为转化体。提取上述转化体的基因组，在其上进行的PCR证实，ccpA基因已经被缺失并被抗氯霉素基因取代。
表2-1
 
引物 核苷酸序列 序列号：
comA-AF AAGGATGATAATCCGTCCCGTG 7
comA-A/CmR GTTATCCGCTCACAATTCGGATGGTCATCAATCACTAG 8
comA-B/CmF CGTCGTGACTGGGAAAACTGCGAAATCAGACGGTGTAC 9
comA-BR CGTCGCCTATCGGCGGGCAC 10
yopO-AF ATGTATATAGGAGGTTGGTGGTATG 11
yopO-A/CmR GTTATCCGCTCACAATTCGCTCTGACATGTCAACCTCC 12
yopO-B/CmF CGTCGTGACTGGGAAAACAGATGAGAAAGGAGGAGAAG 13
yopO-BR ATAACTGTTACTATATAATGGCC 14
treR-AF GCTGGGGATGACGAATCCGA 15
treR-A/CmR GTTATCCGCTCACAATTCTCACCTTCATTATGGACCAC 16
treR-B/CmF CGTCGTGACTGGGAAAACCACCGTCTCGACAAATTCCG 17
treR-BR GTTGCCAAGCGCGATATAGG 18
yvbA-AF TATACAGGGATTATCAGTATTGAGC 19
yvbA-A/CmR GTTATCCGCTCACAATTCTTTTCTCCTTGTTGGATCTG 20
yvbA-B/CmF CGTCGTGACTGGGAAAACGGGGATAACGATTTATGAAG 21
yvbA-BR TTTTGTAATAATGATATGAAGCTAGTGTTG 22
cspB-AF ATATCCAGCCCTGCCTCTTC 23
cspB-A/CmR CTGTGTGAAATTGTTATCCGCTCACAATTCGAAATTTCCTCCTAAAGCGATCATAACG 24
cspB-B/CmF GTCGTTTTACAACGTCGTTGACTGGGAAAACCCACAAGCTGCTAACGTTAC 25
cspB-BR TCCTGTTTGGGCTCCTGTTG 26
yvaN-AF TGTTTATGTATGGCGGCCTGCGGGAC 27
yvaN-A/CmR GTTATCCGCTCACAATTCAGCTTTCCATATATCTCACC 28
yvaN-B/CmF CGTCGTGACTGGGAAAACACGGTCTGCTGATGACTGAC 29
yvaN-BR GCGTTTACTTAAGATGTCGA 30
yttP-AF TTTCTAGCGTTTCGGCAAATTGAGTTAAG 31
yttP-A/CmR GTTATCCGCTCACAATTCCTTACTTTCATACGGCTCAC 32
yttP-B/CmF CGTCGTGACTGGGAAAACGAGACGTGGCGCTCACCAAC 33
yttP-BR CGGATTAAAAAAAGAATATCGCGGACAGC 34
yurK-AF TGCCGCTGCCCGCCGGAGAG 35
表2-2
 
yurK-A/CmR GTTATCCGCTCACAATTCAAGGTGTAGAACTTCCGTTG 36
yurK-B/CmF CGTCGTGACTGGGAAAACACCATCAACAGCCCCTACAC 37
yurK-BR TCAAATAAAGGCGGCATTCAGTCC 38
yozA-AF ATAATGGTATCCAAATCCACGC 39
yozA-A/CmR GTTATCCGCTCACAATTCATTCAGTCATATGTATCACC 40
yozA-B/CmF CGTCGTGACTGGGAAAACGATCCATCATACACAGCATG 41
yozA-BR CACTTCTCAACGGAGGGGATTTCACATC 42
licR-AF TAATGGAGGAGAGAAGGCCG 43
licR-A/CmR GTTATCCGCTCACAATTCAGTCGCCCATGAAGCATGAG 44
licR-B/CmF CGTCGTGACTGGGAAAACACCAAAAAATGCTGAGCTGACAGC 45
licR-BR TTGCCAATGATGAGGAAAAAGGAACC 46
sigL-AF CTGAACGTCTTGAATAAAAAAGCAGG 47
sigL-A/CmR GTTATCCGCTCACAATTCGCTGAAGTTTCATATCCATC 48
sigL-B/CmF CGTCGTGACTGGGAAAACATTCCGTCATCGGCAGCGAG 49
sigL-BR AGCGGTTTACAAGTTGGAGG 50
mntR-AF ATTTCAGAAGGCATACTTCAAG 51
mntR-A/CmR GTTATCCGCTCACAATTCCATACTTGGTGTTGTCATCG 52
mntR-B/CmF CGTCGTGACTGGGAAAACCATAATCAGTAAAAAGGCGGTC 53
mntR-BR TTCTGACCGCTCTGGCAACC 54
glcT-AF ATAATGCCCGCTTCCCAACC 55
glcT-A/CmR GTTATCCGCTCACAATTCCGATCCTCAGCTCCTTTGTC 56
glcT-B/CmF CGTCGTGACTGGGAAAACTCATCTGATACCGATTAACC 57
glcT-BR CAACTGAATCCGAAGGAATG 58
yvdE-AF TCGGGGTCATGCCGAGCGGT 59
yvdE-A/CmR GTTATCCGCTCACAATTCCAATGTTGCCATTTTCATCC 60
yvdE-B/CmF CGTCGTGACTGGGAAAACTTGTACGAGAATCAACGCTG 61
yvdE-BR CACGGCAATGCATTCTTCGG 62
ykvE-AF AGATCTGTCGGCCAGGTTTAC 63
ykvE-A/CmR GTTATCCGCTCACAATTCTGATTTTTCTGTCATGTCTC 64
ykvE-B/CmF CGTCGTGACTGGGAAAACGGTAGAGATGTGCACCGAAA 65
ykvE-BR GAGTCAGACGGCATCGATGA 66
slr-AF TTCTGATTCATTTTCACTGCTGG 67
slr-A/CmR GTTATCCGCTCACAATTCAACGGATAATTCTTCCAATC 68
slr-B/CmF CGTCGTGACTGGGAAAACTGTCCATGAAGTCAAATCC 69
slr-BR CGCTGAAATATTCTCTCGCA 70
rocR-AF CGCCGCTTTCACCGCGGATTC 71
rocR-A/CmR GTTATCCGCTCACAATTCCTTTGACCACTGTATGAACC 72
表2-3
 
rocR-B/CmF CGTCGTGACTGGGAAAACACTCGTCTAACGAATAATCC 73        
rocR-BR               TGTCATCACGGAATTTGACG 74        
ccpA-AF              CCAAATTATCCTTTGTGAGCGCGGAATCAG 75        
ccpA-A/CmR         GTTATCCGCTCACAATTCCGTAGATCGTAATATTGCTC 76      
ccpA-B/CmF            CGTCGTGACTGGGAAAACAGCTTAGAAAGTCAACCAAG 77        
ccpA-BR              TTTGAGCATCAGCACAAGCC 78        
yaaT-AF              TGTAGCAGAAGCAGTCGAATT 79        
yaaT-A/Cm2R       CTAATGGGTGCTTTAGTTGACAATTACGCAGCTGTCATGT 80        
yaaT-B/Cm2F         CTGCCCCGTTAGTTGAAGAACTGATAAACCGTGAAAAAGTG 81        
yaaT-RV              CCTTTGAAAAAGGCTCCCGT 82        
yyaA-AF              GTTTTCCAAGTCTGCCGATAAAAATATGC 83        
yyaA-A/CmR          GTTATCCGCTCACAATTCATGCTTTCATGTACCTACACC 84        
yyaA—B/CmF CGTCGTGACTGGGAAJ6LACCAATTAACGATTCGCATACC 85        
yyaA-BR              AAAAAGAAGAAGTCACAGTACAGAACGTGG 86        
yycH-AF        ATTTTTCGCCATCTTGAATTTTC 87        
yycH-A/Cm2R       CTAATGGGTGCTTTAGTTGGATGATCCTCTCGTTGAACTG 88        
yycH-B/Cm2F         CTGCCCCGTTAGTTGAAGGGATGAGCCTTCAGAAAAGTT 89        
yycH-BR              GCCGGACAGAGATCTGTAfG 90        
yacP-B/Cm4F         GAAGAAGGTTTTTATGTTGACGCTTTTTTGCCCAATACTGTATAA 91        
yacP-B/Cm4R         CAAAAAAGCGTCAACATAAAAACCTTCTTCAACTAACGGGGCAGG 92        
yacP-BR              AAGACGAGTACTTTTCTCrCTAAATCACTT 93        
yacP-AF              AACTCGATCAAATGGTGACAGGACAGCATC 94        
yacP-A/Cm4F         GGAGAATAAAGACCCTCTTCAACTAAAGCACCCATTAGTTCAACA 95        
yacP-A/Cm4R         TGCTTTAGTTGAAGAGGGTCTTTATTCTCCCACAGGGTTTCGTTT 96        
hprK-B/Cm4F         TTTTTATATTACAGCGAGTTGGCGTTAAATGAATGAAGCGATAGA 97        
hprK-B/Cm4R         ATTTAACGCCAACTCGCTGTAATATAAAAACCTTCTTCAACTAAC 98        
hprK-BR              TTGATTGATGATAAATTCAGGCAGGTGCAG 99        
hprK-AF              CAAAGCTTGAGAAAIGTTCCCATGCTCTTG 100       
hprK-A/Cm4F         CAGGAGGAACATATCTCTTCAACTAAAGCACCCATTAGTTCAACA     102       
hprK-A/Cm4R         TGCTfTAGTTGAAGAGATATGTTCCrCCTGTTCCGGGCTGCCCCG     102       
rsiX-AF               ATTCCAGTTACTCGTAATATAGTTG 103       
rsiX-A/CmR          GTTATCCGCTCACAATTCACTTCATCATCCATTAGCTC 104       
rsiX-B/CmF       CGTCGTGACTGGGAAACCTGCTCCAAATCCGAfTTCC 105       
rsiX-BR              GTCCTGCATTTTTCGAAGTCTGG 106       
yhdK-AF              TACACATCCTTCAAACAAGTCTGAACAAAC 107       
表2-4
 
yhdK-A/Cm4R TGCTTTAGTTGAAGATTACCAGTTCCATAATTCCACCTCGCCGAC 108
yhdK-B/Cm4F TTTTTATATTACAGCGTGTGTATACCATTGTATCTGTAGATACGA 109
yhdK-BR GCTATGATCATTGTAACGAAAGGAAAGGGG 110
yhdK-A/Cm4F TTATGGAACTGGTAATCTTCAACTAAAGCACCCATTAGTTCAACA 111
yhdK-B/Cm4R CAATGGTATACACACGCTGTAATATAAAAACCTTCTTCAACTAAC 112
ylbO-AF AATCTGAACAAGAAAAAGGAGCTGCTCCTC 113
ylbO-A/Cm4R TGCTTTAGTTGAAGAATTCAATCTCCCTCCATGTCAGCTTATTTA 114
ylbO-B/Cm4F TTTTTATATTACAGCAGAAACGCCTGAAATGAACCGGCCCTATAG 115
ylbO-BR TGTTTGACAAAGGTAGAACGTCTGCTTATC 116
ylbO-A/Cm4F GGAGGGAGATTGAATTCTTCAACTAAAGCACCCATTAGTTCAACA 117
ylbO-B/Cm4R ATTTCAGGCGTTTCTGCTGTAATATAAAAACCTTCTTCAACTAAC 118
CmF GAATTGTGAGCGGATAAC 119
CmR GTTTTCCCAGTCACGACG 120
Cm2F CAACTAAAGCACCCATTAG 121
Cm2R CTTCAACTAACGGGGCAG 122
实施例2
按照与实施例1所述相似的方式，通过使用由选自表2所示的各种引物组；即，基因-AF、基因-A/CmR、基因-B/CmF、基因-BR、CmF以及CmR的适当引物组而制成的用于实现缺失的DNA片段来分离孢子形成基因缺失了的菌株，在该菌株中已经通过取代下述缺失的基因而引入了抗氯霉素基因。从基因组中缺失的基因是comA、yopO、treR、yvbA、yvaN、yttP、yurK、yozA、licR、sigL、mntR、glcT、ykvE、slr、rocR、yyaA或rsiX。
实施例3
按照与实施例2所述相似的方式，通过使用选自表2所示的基因-AF、基因-A/Cm2R、基因-B/Cm2F、基因-BR、Cm2F以及Cm2R的适当引物组来制备用于缺失的DNA片段。通过使用由此制成的DNA片段，分离孢子形成基因缺失了的菌株，在该菌株中已经通过取代下述缺失的基因而引入了抗氯霉素基因。从基因组中缺失的基因是cspB、yvdE、yaaT、yycH或ylbO。
实施例4
按照与实施例2所述相似的方式，由选自表2所示的基因-AF、基因-A/Cm4R、基因-B/Cm4F、基因-BR、Cm4F以及Cm4R的适当引物组制备用于实现缺失的DNA片段。通过使用由此制成的DNA片段，分离孢子形成基因缺失了的菌株，在该菌株中已经通过取代缺失的基因yacP、hprK和yhdK而引入了抗氯霉素基因。
实施例5
在实施例1到4获得的每种基因缺失的菌株中和在用作对照物的枯草杆菌168菌株中，通过原生质体转化法引入重组质粒pHY-S237。重组质粒pHY-S237的制备如下：将源自芽孢杆菌sp.KSM-S237菌株的编码碱性纤维素酶的DNA片段(3.1kb)(序列号：1，日本专利申请(公开)第2000-210081号)插入穿梭载体pHY300PLK的限制性内切酶BamHI裂解位点。将由此制成的每种细胞株在LB培养基(5毫升)中以30℃震荡培养过夜。将培养液(0.03毫升)注入2×L-麦芽糖培养基(2％胰胨、1％酵母提取物、1％NaCl、7.5％麦芽糖、7.5ppm4-5水合硫酸锰和15ppm四环素)中，然后在30℃震荡培养三天。在培养完成后，通过离心去除细胞，并测定由培养物获得的上层清液的碱性纤维素酶活性，由此计算细胞在培养过程中分泌出的碱性纤维素酶的量；即，在细胞外生成的碱性纤维素酶的量。从表3中清楚看出，与对照物168菌株(野生型菌株)相比，在使用基因缺失的可形成孢子的菌株作为宿主的所有情况下，碱性纤维素酶的生产或分泌都被证实更为有效。
表3
 
缺失基因的名称 基因编号 基因大小(bp) 缺失片段的大小(bp) 制得的(分泌的)碱性纤维素酶的量(相对值)
comA BG10381 645 588 160
yopO BG13648 213 169 154
treR BG11011 717 656 139
yvbA BG14078 273 210 137
cspB BG10824 204 171 132
yvaN BG14069 408 379 124
yttP BG13927 624 590 121
yurK BG13997 729 677 118
yozA BG13748 324 289 117
licR BG11346 1926 1889 116
sigL BG10748 1311 1256 114
mntR BG11702 429 399 114
glcT BG12593 858 811 110
yvdE BG12414 951 916 109
ykvE BG13310 438 356 108
slr BG11858 459 394 105
rocR BG10723 1386 1359 128
ccpA BG10376 1005 957 205
yaaT BG10096 828 828 127
yyaA BG10057 852 816 113
yycH BG11462 1368 1368 146
yacP BG10158 513 513 156
hprK BG14125 933 933 196
rsiX BG10537 1107 1068 125
yhdK BG13017 291 228 114
ylbO BG13367 582 582 136
None(Wildtype) — — — 100
实施例6
在实施例1至4获得的每种基因缺失的菌株中和在用作对照物的枯草杆菌168菌株中，通过原生质体转化法引入重组质粒pHSP-K38。重组质粒pHSP-K38的制备如下：在穿梭载体pHY300PLK的限制性内切酶BagII-XbaI裂解位点插入如下制成的2.1kb片段(序列号：5)：将包含碱性纤维素酶基因的启动子区域和信号序列区域部分的上游0.6kb片段(序列号：3)与编码源自芽孢杆菌sp.KSM-K38菌株的碱性淀粉酶基因的成熟酶区域(Asp1-Gln480)的DNA片段(1.5kb)的上游侧接合(日本专利申请(公开)第2000-1884882号，Eur.J.Biochem.，268，2974(2001))。将由此获得的每种细胞株在LB培养基(5毫升)中以30℃震荡培养过夜。将培养液(0.03毫升)注入2×L-麦芽糖培养基(2％胰胨、1％酵母提取物、1％NaCl、7.5％麦芽糖、7.5ppm4-5水合硫酸锰和15ppm四环素)中，然后在30℃震荡培养三至六天。在培养完成后，通过离心去除细胞，并测定由培养物获得的上层清液的碱性淀粉酶的活性，由此计算在培养过程中细胞分泌出的碱性淀粉酶的量；即，在细胞外生成的碱性淀粉酶的量。从表4中清楚看出，与对照物168菌株(野生型菌株)相比，在使用基因缺失的菌株作为宿主的情况下，碱性淀粉酶的生产或分泌被证实更为有效。
表4
序列表
<110>花王株式会社
<120>重组微生物
<130>KS0795
<150>JP 2003-379167
<151>2003.11.7
<160>122
<170>PatentIn Ver.2.1
<210>1
<211>3150
<212>DNA
<213>Bacillus sp.KSM-S237
<220>
<221>CDS
<222>(573)..(3044)
<223>
<220>
<221>sig_peptide
<222>(573)..(659)
<223>
<220>
<221>mat_peptide
<222>(660)..()
<223>
<400>1
Figure C200480031689D00191
Figure C200480031689D00201
Figure C200480031689D00211
Figure C200480031689D00221
Figure C200480031689D00231
Figure C200480031689D00241
<210>2
<211>824
<212>PRT
<213>Bacillus sp.KSM-S237
<400>2
Figure C200480031689D00242
Figure C200480031689D00261
Figure C200480031689D00271
Figure C200480031689D00281
<210>3
<211>3332
<212>DNA
<213>Bacillus sp.KSM-64
<220>
<221>CDS
<222>(610)..(3075)
<223>
<220>
<221>sig_peptide
<222>(610)..(696)
<223>
<220>
<221>mat_peptide
<222>(697)..()
<223>
<400>3
Figure C200480031689D00291
Figure C200480031689D00311
Figure C200480031689D00321
Figure C200480031689D00331
Figure C200480031689D00341
<210>4
<211>822
<212>PRT
<213>Bacillus sp.KSM-64
<400>4
Figure C200480031689D00342
Figure C200480031689D00351
Figure C200480031689D00361
Figure C200480031689D00371
Figure C200480031689D00381
<210>5
<211>2343
<212>DNA
<213>Bacillus sp.pHSP-K38
<220>
<221>CDS
<222>(580)..(2067)
<223>
<220>
<221>sig_peptide
<222>(580)..(627)
<223>
<220>
<221>mat_peptide
<222>(628)..()
<223>
<400>5
Figure C200480031689D00382
Figure C200480031689D00391
Figure C200480031689D00401
Figure C200480031689D00411
Figure C200480031689D00421
<210>6
<211>496
<212>PRT
<213>Bacillus sp.pHSP-K38
<400>6
Figure C200480031689D00422
Figure C200480031689D00431
<210>7
<211>22
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer comA-AF
<400>7
Figure C200480031689D00451
<210>8
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer comA-A/CmR
<400>8
Figure C200480031689D00452
<210>9
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer comA-B/CmF
<400>9
Figure C200480031689D00453
<210>10
<211>20
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer comA-BR
<400>10
Figure C200480031689D00454
<210>11
<211>25
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yopO-AF
<400>11
Figure C200480031689D00461
<210>12
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yopO-A/CmR
<400>12
Figure C200480031689D00462
<210>13
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yopO-B/CmF
<400>13
Figure C200480031689D00463
<210>14
<211>23
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yopO-BR
<400>14
Figure C200480031689D00464
<210>15
<211>20
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer treR-AF
<400>15
<210>16
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer treR-A/CmR
<400>16
Figure C200480031689D00471
<210>17
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer treR-B/CmF
<400>17
Figure C200480031689D00472
<210>18
<211>20
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer treR-BR
<400>18
Figure C200480031689D00473
<210>19
<211>25
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yvbA-AF
<400>19
<210>20
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yvbA-A/CmR
<400>20
Figure C200480031689D00481
<210>21
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yvbA-B/CmF
<400>21
<210>22
<211>30
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yvbA-BR
<400>22
<210>23
<211>20
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer cspB-AF
<400>23
Figure C200480031689D00484
<210>24
<211>58
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primcr cspB-A/CmR
<400>24
Figure C200480031689D00491
<210>25
<211>51
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer cspB-B/CmF
<400>25
Figure C200480031689D00492
<210>26
<211>20
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer cspB-BR
<400>26
<210>27
<211>26
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yvaN-AF
<400>27
Figure C200480031689D00494
<210>28
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yvaN-A/CmR
<400>28
Figure C200480031689D00501
<210>29
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yvaN-B/CmF
<400>29
Figure C200480031689D00502
<210>30
<211>20
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yvaN-BR
<400>30
Figure C200480031689D00503
<210>31
<211>29
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yttP-AF
<400>31
<210>32
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yttP-A/CmR
<400>32
<210>33
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yttP-B/CmF
<400>33
Figure C200480031689D00512
<210>34
<211>29
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yttP-BR
<400>34
Figure C200480031689D00513
<210>35
<211>20
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yurK-AF
<400>35
Figure C200480031689D00514
<210>36
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yurK-A/CmR
<400>36
Figure C200480031689D00521
<210>37
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yurK-B/CmF
<400>37
Figure C200480031689D00522
<210>38
<211>24
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yurK-BR
<400>38
Figure C200480031689D00523
<210>39
<211>22
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yozA-AF
<400>39
Figure C200480031689D00524
<210>40
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yozA-A/CmR
<400>40
Figure C200480031689D00531
<210>41
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yozA-B/CmF
<400>41
Figure C200480031689D00532
<210>42
<211>28
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yozA-BR
<400>42
Figure C200480031689D00533
<210>43
<211>20
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer licR-AF
<400>43
Figure C200480031689D00534
<210>44
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer l icR-A/CmR
<400>44
Figure C200480031689D00541
<210>45
<211>42
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer licR-B/CmF
<400>45
Figure C200480031689D00542
<210>46
<211>26
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer licR-BR
<400>46
Figure C200480031689D00543
<210>47
<211>26
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer sigL-AF
<400>47
Figure C200480031689D00544
<210>48
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer sigL-A/CmR
<400>48
<210>49
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer sigL-B/CmF
<400>49
Figure C200480031689D00552
<210>50
<211>20
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer sigL-BR
<400>50
Figure C200480031689D00553
<210>51
<211>22
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer mntR-AF
<400>51
Figure C200480031689D00554
<210>52
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer mntR-A/CmR
<400>52
Figure C200480031689D00561
<210>53
<211>40
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer mntR-B/CmF
<400>53
Figure C200480031689D00562
<210>54
<211>20
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer mntR-BR
<400>54
Figure C200480031689D00563
<210>55
<211>20
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer glcT-AF
<400>55
Figure C200480031689D00564
<210>56
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer glcT-A/CmR
<400>56
Figure C200480031689D00571
<210>57
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer glcT-B/CmF
<400>57
<210>58
<211>20
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer glcT-BR
<400>58
<210>59
<211>20
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yvdE-AF
<400>59
Figure C200480031689D00574
<210>60
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yvdE-A/CmR
<400>60
<210>61
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yvdE-B/CmF
<400>61
Figure C200480031689D00582
<210>62
<211>20
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yvdE-BR
<400>62
Figure C200480031689D00583
<210>63
<211>21
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer ykvE-AF
<400>63
Figure C200480031689D00584
<210>64
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer ykvE-A/CmR
<400>64
Figure C200480031689D00585
<210>65
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer ykvE-B/CmF
<400>65
Figure C200480031689D00591
<210>66
<211>20
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer ykvE-BR
<400>66
<210>67
<211>23
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer slr-AF
<400>67
Figure C200480031689D00593
<210>68
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer slr-A/CmR
<400>68
Figure C200480031689D00594
<210>69
<211>37
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer slr-B/CmF
<400>69
Figure C200480031689D00601
<210>70
<211>20
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer slr-BR
<400>70
Figure C200480031689D00602
<210>71
<211>21
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer rocR-AF
<400>71
Figure C200480031689D00603
<210>72
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer rocR-A/CmR
<400>72
Figure C200480031689D00604
<210>73
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR pr imer rocR-B/CmF
<400>73
Figure C200480031689D00611
<210>74
<211>20
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer rocR-BR
<400>74
Figure C200480031689D00612
<210>75
<211>30
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer ccpA-AF
<400>75
Figure C200480031689D00613
<210>76
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer ccpA-A/CmR
<400>76
Figure C200480031689D00614
<210>77
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer ccpA-B/CmF
<400>77
Figure C200480031689D00621
<210>78
<211>20
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer ccpA-BR
<400>78
Figure C200480031689D00622
<210>79
<211>21
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yaaT-AF
<400>79
Figure C200480031689D00623
<210>80
<211>40
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yaaT-A/Cm2R
<400>80
Figure C200480031689D00624
<210>81
<211>41
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yaaT-B/Cm2F
<400>81
<210>82
<211>20
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yaaT-RV
<400>82
<210>83
<211>29
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yyaA-AF
<400>83
Figure C200480031689D00633
<210>84
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yyaA-A/CmR
<400>84
Figure C200480031689D00634
<210>85
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yyaA-B/CmF
<400>85
<210>86
<211>30
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yyaA-BR
<400>86
Figure C200480031689D00642
<210>87
<211>23
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yycH-AF
<400>87
Figure C200480031689D00643
<210>88
<211>40
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yycH-A/Cm2R
<400>88
Figure C200480031689D00644
<210>89
<211>39
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yycH-B/Cm2F
<400>89
Figure C200480031689D00651
<210>90
<211>20
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yycH-BR
<400>90
Figure C200480031689D00652
<210>91
<211>45
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yacP-B/Cm4F
<400>91
Figure C200480031689D00653
<210>92
<211>45
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yacP-B/Cm4R
<400>92
<210>93
<211>30
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yacP-BR
<400>93
Figure C200480031689D00661
<210>94
<211>30
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yacP-AF
<400>94
Figure C200480031689D00662
<210>95
<211>45
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yacP-A/Cm4F
<400>95
Figure C200480031689D00663
<210>96
<211>45
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yacP-A/Cm4R
<400>96
Figure C200480031689D00664
<210>97
<211>45
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer hprK-B/Cm4F
<400>97
Figure C200480031689D00671
<210>98
<211>45
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer hprK-B/Cm4R
<400>98
Figure C200480031689D00672
<210>99
<211>30
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer hprK-BR
<400>99
Figure C200480031689D00673
<210>100
<211>30
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer hprK-AF
<400>100
Figure C200480031689D00674
<210>101
<211>45
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer hprK-A/Cm4F
<400>101
Figure C200480031689D00681
<210>102
<211>45
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer hprK-A/Cm4R
<400>102
Figure C200480031689D00682
<210>103
<211>25
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer rsiX-AF
<400>103
Figure C200480031689D00683
<210>104
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer rsiX-A/CmR
<400>104
Figure C200480031689D00684
<210>105
<211>38
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer rsiX-B/CmF
<400>105
<210>106
<211>23
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer rsiX-BR
<400>106
Figure C200480031689D00692
<210>107
<211>30
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yhdK-AF
<400>107
Figure C200480031689D00693
<210>108
<211>45
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yhdK-A/Cm4R
<400>108
Figure C200480031689D00694
<210>109
<211>45
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yhdK-B/Cm4F
<400>109
<210>110
<211>30
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yhdK-BR
<400>110
Figure C200480031689D00702
<210>111
<211>45
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yhdK-A/Cm4F
<400>111
Figure C200480031689D00703
<210>112
<211>45
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer yhdK-B/Cm4R
<400>112
Figure C200480031689D00704
<210>113
<211>30
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer ylbO-AF
<400>113
Figure C200480031689D00705
<210>114
<211>45
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer ylbO-A/Cm4R
<400>114
Figure C200480031689D00711
<210>115
<211>45
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer ylbO-B/Cm4F
<400>115
Figure C200480031689D00712
<210>116
<211>30
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer ylbO-BR
<400>116
Figure C200480031689D00713
<210>117
<211>45
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer ylbO-A/Cm4F
<400>117
Figure C200480031689D00714
<210>118
<211>45
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer ylbO-B/Cm4R
<400>118
Figure C200480031689D00721
<210>119
<211>18
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer CmF
<400>119
<210>120
<211>18
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer CmR
<400>120
Figure C200480031689D00723
<210>121
<211>19
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer Cm2F
<400>121
Figure C200480031689D00724
<210>122
<211>18
<212>DNA
<213>Artificial Sequence
<220>
<223>Oligonucleotide as PCR primer Cm2R
<400>122
Figure C200480031689D00731

Claims (6)

1.一种重组微生物，其通过将编码异性蛋白质或多肽的基因转移到枯草杆菌基因comA、yopO、treR、yvbA、cspB、yvaN、yttP、yurK、yozA、licR、sigL、mntR、glcT、yvdE、ykvE、slr、rocR、ccpA、yaaT、yyaA、yycH、yacP、hprK、rsiX、yhdK以及ylbO的任意一种或一个或多个与这些基因的任意一种功能相当的基因缺失或被剔除的微生物的突变株上而制备，
其中一个或多个选自转录起始调节区域、转译起始调节区域和分泌信号区域的区域接合到编码异性蛋白或多肽的基因的上游区域。
2.如权利要求1所述的重组微生物，其中所述微生物是枯草杆菌或属于芽孢杆菌属的另一细菌。
3.如权利要求1或2所述的重组微生物，其中所述一个或多个区域是由转录起始调节区域、转译起始调节区域和分泌信号区域构成的三个区域。
4.如权利要求1或2所述的重组微生物，其中所述分泌信号区域来自属于芽孢杆菌属的细菌的纤维素酶基因，而转录起始调节区域和转译起始调节区域各自来自该纤维素酶基因上游的0.6至1kb区域。
5.如权利要求3所述的重组微生物，其中由所述转录起始调节区域、所述转译起始调节区域和所述分泌信号区域构成的三个区域是序列号：1的纤维素酶基因的碱基数为1至659的核苷酸序列；序列号：3的纤维素酶基因的碱基数为1至696的核苷酸序列；含有与所述核苷酸序列的任意一种具有70％同源性的核苷酸序列的DNA片段；或含有缺失了所述核苷酸序列的任意一种的一部分的核苷酸序列的DNA片段。
6.一种生产蛋白质或多肽的方法，其使用如权利要求1至5任意一项所述的重组微生物。
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