CN100384998C - 重组鹅白细胞介素-2蛋白的制备方法及其用途 - Google Patents

重组鹅白细胞介素-2蛋白的制备方法及其用途 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种重组鹅白细胞介素-2(gsIL-2)蛋白的制备方法及其用途。RT-PCR扩增的浙东白鹅白细胞介素-2的DNA片段与原核表达载体pBAD/HisB、真核表达载体pMETαB和pMETB构建表达质粒pBAD/HisB/gsIL-2、pMETαB/gsIL-2和pMETA/gsIL-2,分别转化大肠杆菌LMG194、酵母菌PMAD11和PMAD16后诱导表达。表达量分别占菌体总蛋白的9~10%、20~25%和10~12%。大肠杆菌和酵母菌PMAD16诱导后经超声波裂解、离心去沉淀即为gsIL-2蛋白粗制品,PMAD11表达的gsIL-2主要分泌于培养基中,离心取上清即为gsIL-2蛋白粗制品。用Ni-NTAArgarose蛋白纯化系统可以较快的得到gsIL-2纯品,粗制品或纯品可以作为免疫佐剂和疾病治疗药物。本发明应用基因工程技术制备的重组gsIL-2蛋白,具有工艺流程简单,生产成本低,稳定性好,生物学活性高等特点。

Description

重组鹅白细胞介素-2蛋白的制备方法及其用途
技术领域
本发明涉及生物技术领域,尤其涉及一种重组鹅白细胞介素-2蛋白的制备方法及其用途。
背景技术
1.Schauenstein等(1982)首先发现了鸡脾淋巴细胞分泌一种具有类似于哺乳动物白细胞介素-2样活性的细胞因子,随后,Schnetlzler等(1983)应用硫酸铵沉淀,碳酸氢铵重悬浮,Sephadex G-100凝胶过滤得到两类具有活性的分离物,其分子量分别位于9~11.5KDa和19.5~21.5Kda之间。Vainio等此后用同样方法得到了分子量为13KDa的分子,而且他们用等电聚焦估计鸡IL-2的PI为5.9。Frederickson等(1987)应用Phenyl-sepharose、阴离子交换及superose-12过柱等方法,分离出两类具有活性的物质,其一分子量为14KDa,其二分子量约为26~30KDa,后者比前者活性更强,两者均具有低亲水性。Myers(1992)报道了一种从ConA刺激的鸡脾淋巴细胞培养液中纯化鸡IL-2的“五步法”,即(1)凝胶过滤初步浓缩ConA刺激的鸡脾淋巴细胞悬液;(2)硫酸铵沉淀;(3)用Sephadex G-100层析;(4)反向高压液相层析(high performanceliquid chromatography,HPLC)和(5)Phenyl-sepharose层析。所纯化的IL-2蛋白在还原条件下进行SDS-PAGE电泳,得到的蛋白有两个峰值,分子量约为36~39KDa和17.5~25KDa,将高峰的蛋白烷化还原,再用Sephadex G-100层析,可产生低分子量的峰。
Sundick等(1997)通过构建cDNA文库的方法首次从鸡脾脏中获得鸡IL-2基因,Choi等(1998)把含信号序列长430个核苷酸的鸡IL-2基因分别克隆入原核表达载体PUC18和真核表达载体pcDNA3,分别在大肠杆菌和CHO-K1细胞中进行表达,得到的两种蛋白都具有促进鸡T淋巴细胞增殖的生物学活性。Stepaniak等(1999)对鸡IL-2体外表达进行了比较深入的研究,将去除前导肽的鸡IL-2基因在大肠杆菌Pgex-2t系统中进行了表达,得到的蛋白具有天然鸡IL-2蛋白的生物学活性,但表达效率较低仅为63μg/L,且多为非可溶性蛋白,不利于蛋白的回收和纯化。为解决此问题,他们采用了pET32a+高效表达系统,将蛋白表达量提高到4mg/L,且绝大部分为可溶性蛋白。同时,该学者将含前导鸡IL-2基因的完整编码框克隆入真核表达载体pCR3.1+中,在肾成纤维细胞系中进行表达,结果发现该系统不但能稳定表达鸡IL-2蛋白,而且上清和经纯化的蛋白都具有良好的生物学活性,从而证明了鸡IL-2和哺乳动物IL-2相似,其活性并不依赖于前导序列。
2.鸡IL-2前体蛋白由143个氨基酸组成,成熟的蛋白由121个氨基酸组成。它和哺乳动物IL-2具有相类似的生物学活性,如促进B淋巴细胞和T淋巴细胞的增殖,增强NK细胞的杀伤活性等功能,在机体免疫中发挥重要作用。基于鸡IL-2的研究,我们利用RT-PCR技术从脾淋巴细胞中扩增了浙东白鹅IL-2的DNA片段,并实现了在原核和真核细胞中的高效表达,表达产物具有刺激鹅脾淋巴细胞增殖的生物学活性。
发明内容
本发明的目的是提供一种重组鹅白细胞介素-2蛋白的制备方法及其用途。
重组鹅白细胞介素-2蛋白制备方法的步骤如下:
1)自浙东白鹅单核淋巴细胞中克隆出鹅白细胞介素-2(gsIL-2)的DNA片段与含有PBAD启动子的原核表达载体pBAD/His B组建成表达载体pBAD/HisB/gsIL-2;或者上述gsIL-2DNA片段与含有PAUGI启动子的真核表达载体pMETαB组建成分泌型表达载体pMETαB/gsIL-2;或者上述gsIL-2DNA片段与含有PAUGI启动子的真核表达载体pMETB组建成胞内型表达载体pMET B/gsIL-2;
2)用RM作为基础培养基,通过发酵扩增大肠杆菌工程菌LMG194;
3)用BMDY作为基础培养基,通过发酵扩增酵母工程菌PMAD11和PMAD16,在表达不同时间加氮源、碳源等营养素;
4)大肠杆菌LMG194和酵母菌PMAD16诱导后经超声波裂解、离心去沉淀即为gsIL-2粗制品,PMAD11表达的gsIL-2主要分泌于培养基中,经过离心取上清即为gsIL-2粗制品。用Ni-NTA Argarose蛋白纯化系统可得到gsIL-2纯品;
5)粗制品或纯品加入甘氨酸等稳定剂和助溶剂后,无菌过滤、分装和冻干后制成成品,保存于-20℃的冷藏环境中。
重组gsIL-2蛋白用于提高机体免疫功能和免疫佐剂;用于治疗水禽类疾病;
本发明的优点:(1)大肠杆菌表达的gsIL-2蛋白主要以融合蛋白的形式存在基因工程菌内,经超声波就可以使目的蛋白释放出来,不需要其他的处理就可以得到gsIL-2粗蛋白,且蛋白稳定性好、生物学活性较高;(2)选用分泌型酵母表达载体pMETαB,所表达的gsIL-2蛋白大部分被分泌到培养基中,不但不需要任何的处理就可以得到gsIL-2粗制品,且目的蛋白具有良好的稳定性和生物学活性;(3)选用非分泌型酵母表达载体pMET B,表达的gsIL-2蛋白主要以融合蛋白的形式存在工程菌内,经超声波处理就可以得到gsIL-2粗蛋白,粗蛋白具有比较高的稳定性和生物学活性;(4)所用的Ni-NTA Agarose蛋白纯化系统操作简单,得到的蛋白纯度高。(5)重组gsIL-2作为免疫佐剂和疾病治疗药物效果显著。
具体实施方式
1鹅白细胞介素-2基因克隆用刀豆素(ConA)刺激鹅脾单核细胞,Trizol一步法提取总RNA,通过RT-PCR方法扩增和克隆了浙东白鹅白细胞介素-2cDNA片段,将其连接到测序载体pGEM-T Easy Vector,测定gsIL-2DNA序列。
2重组表达鹅白细胞介素-2基因工程大肠杆菌的构建鹅白细胞介素-2的PCR扩增产物亚克隆到一新型表达载体pBAD/His B中,构建成gsIL-2原核表达载体pBAD/His B/gsIL-2,它能在大肠杆菌LMG194中表达,使gsIL-2蛋白占菌体总蛋白的9~10%,表达率经100次以上传代不降低。
3重组表达鹅白细胞介素-2基因工程酵母菌的构建将鹅白细胞介素-2的PCR扩增产物亚克隆到新型真核表达载体pMETαB和pMET B中,分别构建成gsIL-2表达载体pMETαB/gsIL-2和pMET B/gsIL-2,用BMDY作为基础培养基,用甲醇作为诱导剂,通过优化溶氧、震荡速度、发酵pH值等工艺参数,可以使gsIL-2基因在P.methanolica表达菌株PMAD11和PMAD16中得到表达,表达量分别占菌体总蛋白的20~25%和10~12%。,表达率经100次以上传代不降低。
4重组鹅白细胞介素-2蛋白粗制品的制备及纯化工艺。
所建立的粗制品的制备及纯化工艺流程简单、稳定性好、活性高。本工艺具有以下特点:(1)大肠杆菌表达的gsIL-2蛋白主要以融合蛋白的形式存在工程菌内,经超声波就可以使目的蛋白释放出来,不需要其他的处理就可以得到gsIL-2粗蛋白,且其生物学活性较高;(2)选用分泌型酵母表达载体pMETαB,所表达的gsIL-2蛋白大部分被分泌到培养基中,不但不需要任何的处理就可以得到gsIL-2蛋白粗产品,且目的蛋白具有良好的生物学活性;(3)选用非分泌型酵母表达载体PMET B,表达的gsIL-2蛋白主要以融合蛋白的形式存在工程菌内,经超声波处理就可以得到gsIL-2粗蛋白,且粗蛋白具有比较高的生物学活性;(4)所用的Ni-NTA Agarose蛋白纯化系统操作简单,得到的蛋白纯度高。
5粗制品或纯品加入磷酸缓冲液等助溶剂,用微空滤膜过滤除菌,可以作为免疫佐剂和疾病治疗药物。
IL-2的一个重要生物学功能就是促进T淋巴细胞的增殖,我们用经ConA刺激的鹅脾T淋巴细胞作为靶细胞,用MTT法对重组gsIL-2蛋白的活性进行了检测,证实表达产物具有较高的生物学活性。
本发明运用重组DNA技术,采用反转录PCR方法得到了一种重组gsIL-2蛋白。经过下游纯化,中试规模下的产品达到了临床应用的质量要求。
实施例1.寡核苷酸引物的设计与合成
根据GenBank中注册的鸭(AF294323)、鸡(AF017645)和火鸡(AJ007463)IL-2核苷酸序列,设计1对RT-PCR引物:
上游引物,5’-AATACTAGCACAGAGACAACCAG-3’
下游引物,5’-TTACTGAAATTTATTAAATATCATCTA-3’
实施例2.脾单核淋巴细胞的分离
无菌采集1月龄浙东白鹅脾脏、剪碎置于无Ca2+、Mg2+离子的PBS中(717mmol/L K2HPO4,283mmol/L KH2PO4,PH7.2),300×g 4℃离心10min,取上清500×g 4℃离心30min收集淋巴细胞,然后用PBS洗2次,再以RPMI1640培养液(不含犊牛血清)洗涤1次,台盼蓝(0.1%)染色活细胞计数后,用RPMI1640生长培养液(含10%的犊牛血清、100IU/ml的青霉素和100μg/ml的链霉素)将细胞配成1×107/ml的细胞悬液。细胞悬液中加入10mg/L终浓度ConA,分装细胞培养板,5%二氧化碳培养箱40℃培养16h收集淋巴细胞培养物用Trizol试剂一步法提取细胞总RNA。
实施例3.RT-PCR扩增目的基因片段
First Strand cDNA Synthesis Kit反转录合成鹅IL-2cDNA第一链;转录产物在95℃1min、47℃45s、72℃2min环境下30个循环进行PCR,最后72℃延伸10min。PCR产物经1%琼脂糖凝胶电泳分析。
实施例4.测序载体的构建和序列测定
用PCR Purification试剂盒纯化回收目的PCR产物片段,利用T-A克隆策略直接连接于pGEM-T Easy载体,连接产物转化E.coli TOP10感受态细胞,在含氨苄青霉素、X-gal和IPTG的LB平板上进行筛选。PCR和酶切鉴定阳性克隆。选择5个阳性克隆进行测序。浙东白鹅白细胞介素-2基因核苷酸及推导氨基酸序列见表1。
1  AATACTAGCACAGAGACAACCAGAACACTGACAAGATGTGCAAAGTACTGATCTTCAGCTGCCTTTCGG   69
2                                      M  C  K  V  L  I  F  S  C  L  S     69
1  TAGTAATGCTTATGACTACAGCTTATGGAGCACCTCTATCAGAGAAAAATGACACTCTTACAACTTTAA  138
2  V  V  M  L  M  T  T  A  Y  G  A  P  L  S  E  K  N  D  T  L  T  T  L    138
1  TAAAAGATTTAGAAAAGCTGGGAACAAGCATGAAGAAGATTAATCTTGAGCTCTACACACCAAATGAGA  207
2  I  K  D  L  E  K  L  G  T  S  M  K  K  I  N  L  E  L  Y  T  P  N  N    207
1  AACAGGAGTGCAGCTGGCAAACTCTACAATGTTACTTGAAAGAAATAGTCACCTTGGAGAATGAAATTG  276
2  K  Q  E  C  S  W  Q  T  L  Q  C  Y  L  K  E  I  V  T  L  N  E  N  I    276
1  AAGATGAGGATGAAATTGAAGATGAGAACGTATTTAGTGTTAGGAATATTGAAAAGAATCTCCAAAAAC  345
2  E  D  E  D  E  I  E  D  E  N  V  F  S  V  R  N  I  E  K  N  L  Q  K    345
1  TTACGGACCTAATTCCCCCAGGAACGGGATGCAAGATCTGTGAAGCTAATGACAAGAAGGAGTTTCCTG  414
2  L  T  D  L  I  P  P  G  T  G  C  K  I  C  E  A  N  D  K  K  E  F  P    414
1  AATTTCACCGAGAGCTGACCAACTTTCTGAGATCTATGCTAAAATAAGCAGATGACCATTTATATTTTT  483
2  E  F  H  R  E  L  T  N  F  L  R  S  M  L  K  -                         483
1  ACTGCTACGTTATTTATTTAAGTATTTAATTACAAATAATTTATATATTTTACCCTGGGGCTAACTAAC  552
1  TTGCTGTCCATTTTGGGACCACTGTATGCTCTTAGTGTGGGTGATAACGTGTCTGTTCTAAGATCACAT  621
1  TTGATCCTTTCTGTAAGCCCTACGGGCTCAAAATGTATGTTGGAAAACTAATTGGTTCTCACTTTGTCA  690
1  GTAAACTTAAAATGACAACTATTTATTGAAAGAATTGTTAAAAGTTACTTGTAGATGATATTTAATAAA  759
1  TTTCAGTAA                                                              768
表1.浙东白鹅白细胞介素-2基因核苷酸(SEQ ID No.1)及推导氨基酸序列
实施例5.pBAD/His B/gs IL-2表达载体构建、筛选及鉴定
根据已克隆的浙东白鹅白细胞介素-2序列,在成熟蛋白序列两端合成上下游引物:UP1(5’GCGAATTCGCACCTCTATCAGAGAA3’),5’端含EcoRI酶切位点;DOWN1(5’GCAAGCTTTTATTTTAGCATAGATCT 3’),5’端含HandIII酶切位点;以pGEM-T-Easy/gsIL-2为模板在95℃1min、47℃45s、72℃2min环境下30个循环进行PCR,最后延伸10min。PCR产物电泳回收后,经EcoRI、HandIII双酶切后,回收目的片段并克隆于表达质粒pBAD/His B的EcoRI+HandIII酶切窗口中,构建重组表达质粒pBAD/His B/gsIL-2,转化宿主菌TOP10,提取重组质粒进行PCR、双酶切鉴定和序列测定。
实施例6.重组gsIL-2的发酵生产(大肠杆菌)
经鉴定的重组质粒转入LMG194宿主菌,挑取单克隆接种到含有氨苄青霉素和葡萄糖的RM培养基中,37℃培养过夜,按1∶100的比例将培养物接种于RM培养基中,250rpm震荡培养2小时左右,使OD600≈0.5,按1∶100的比例加入20%浓度的L(+)-阿拉伯糖诱导培养3小时,离心收集菌体。将菌体加入适量的1×SDS上样缓冲液,采用15%的SDS-PAGE鉴定,Bradford法测定产物表达量可达9~10%。
实施例7.pMETαB/gsIL-2和pMETB/gsIL-2表达载体构建、筛选及鉴定
根据浙东白鹅白细胞介素-2序列,在其成熟蛋白序列两端合成上下游引物:上游引物同实例5中UP1;下游引物DOWN2(5’GCGGATCCTATTTTAGCATAGATCT3’),5’端含BamHI酶切位点。以pGEM-T-Easy/gsIL-2为模板进行PCR,扩增条件同实例5。PCR产物电泳回收后,经EcoRI、BamHI双酶切后,回收目的片段并分别克隆于表达质粒pMETαB和pMETB强启动子下游的EcoRI+BamHI酶切窗口中,构建重组表达质粒,转化宿主菌TOP10,提取重组质粒进行PCR、双酶切鉴定和序列测定。
采用Choi等报道的方法制备PMAD11和PMAD16感受态细胞,分别取100μlPMAD11和PMAD16酵母感受态细胞与2μg经KpnI酶切完全的pMETαB/gsIL-2和pMETB/gsIL-2混合,使用Bio-Rad Gene Pluser在375V/cm,25μF、250Ω的条件下进行转化,然后加入1ml室温的YPAD,28~30℃孵育1h,1500×g室温离心3min收集菌体,重新悬于100μl 1×YNB,将菌液涂布于MD选择平板上,28~30℃培养3~4天,观察转化子的生长情况。随机筛选MD平板上白色菌落,用Genomic DNA mini-prepkit提取酵母基因组DNA进行PCR扩增鉴定。
实施例8.重组gsIL-2蛋白的发酵生产(酵母)
分别挑取PCR鉴定为阳性的PMAD11和PMAD16克隆接种于20mL BMDY培养基中,28~30℃,250r/min震荡培养16~18h至OD600=2~10。室温,1500×g离心5min,收集菌体重悬于10mL BMMY培养基中。28~30℃,250r/min继续震荡培养4天,每24小时补加5%的甲醇使甲醇终浓度为0.5%,离心分别收集上清和沉淀,SDS-PAGE电泳进行gsIL-2表达鉴定,Bradford法测定gsIL-2在PMAD11中的表达量为20~25%,在PMAD16中的表达量为10~12%。
实施例9.重组基因工程大肠杆菌的保存与稳定性
工程菌加30%甘油,-70℃保存。短期保存菌种可用LB平板。为检查工程菌的稳定性,将原始菌种、50代和100代菌分别抽提质粒进行序列测定。结果三者相同。同时3代菌种扩增培养物表达水平相当,证明本发明中的工程菌是十分稳定的。
实施例10.重组基因工程酵母菌的保存与稳定性
工程菌加30%甘油,-70℃保存。短期保存菌种可用YPAD平板。为检查工程菌的稳定性,将原始菌种、50代和100代菌分别抽提质粒进行序列测定。结果三者相同。同时3代菌种扩增培养物表达水平相当,证明本发明中的工程菌是十分稳定的。
实施例11.重组gsIL-2粗蛋白的制备及分离纯化
经大肠杆菌LMG194表达的gsIL-2蛋白主要以融合蛋白的形式存在,菌体经超声波破碎后,可以得到gsIL-2蛋白粗制品,进一步用QIAGEN公司的Ni-NTAAgarose蛋白纯化系统可以较快的得到gsIL-2蛋白纯品。
含有pMETαB/gsIL-2重组载体的P.methanolica表达菌株PMAD11表达的gsIL-2蛋白主要分泌于培养基中,经过离心取上清即可得到gsIL-2蛋白粗制品,含有pMETB/gsIL-2重组载体的P.methanolica表达菌株PMAD16表达的gsIL-2蛋白主要存在酵母细胞内,经超声波裂解、离心去沉淀即可得到gsIL-2蛋白粗制品,用QIAGEN公司的Ni-NTA Agarose蛋白纯化系统可以较快的得到gsIL-2蛋白纯品
实施例12.重组gsIL-2蛋白的鉴定
HPLC检定纯度均98%以上,MTT法测定粗制品及纯品的生物学活性,大肠杆菌和P.methanolica酵母的表达产物不但具有刺激T淋巴细胞生长的活性,且活性明显高于ConA诱导的T淋巴细胞上清液的活性。
实施例13.重组gsIL-2蛋白理化性质及稳定性
重组gsIL-2蛋白对热较稳定,56℃1小时、37℃12小时或70℃15分钟处理仍保留活性,4℃可保存1年以上,其活性在pH2~9范围内保持稳定。重组gsIL-2蛋白对蛋白酶敏感,对DNA酶、RNA酶不敏感。
实施例14.重组gsIL-2蛋白作为免疫佐剂和疾病治疗药物。
用重组gsIL-2蛋白可以使鹅伤寒沙门氏菌器官侵入率降低49%~58%,另外,以重组gsIL-2蛋白注入鹅胚,可以显著降低孵化期鹅胚的沙门氏菌器官侵入率。在寄生虫方面,在鹅感染球虫的前一天或感染后的第1天,用重组gsIL-2蛋白皮下注射1周龄鹅后,可以明显降低(p<0.05)球虫感染后卵囊的排出量。30日龄鹅感染小鹅瘟后,肌肉注射抗小鹅瘟血清的有效保护率为78.2%,肌肉注射重组gsIL-2蛋白加抗小鹅瘟血清的保护率高达91.5%,而单独肌肉注射抗小鹅瘟血清和小鹅瘟疫苗的的保护率为64.8%和2.7%。

Claims (9)

1.用大肠杆菌LMG194制备重组鹅白细胞介素-2(gsIL-2)蛋白的方法,其特征在于它的步骤如下:用刀豆素刺激浙东白鹅脾单核细胞,Trizol一步法提取总RNA,通过RT-PCR方法扩增和克隆了SEQ ID NO.1所示序列的gsIL-2cDNA片段,将其连接到测序载体pGEM-T Easy Vector,测定gsIL-2DNA序列;5’GCGAAT TCG CAC CTC TAT CAG AGA A3’为上游引物,5’GCA AGC TTT TAT TTT AGCATA GAT CT 3’为下游引物,以pGEM-T-Easy/gsIL-2为模板克隆出gsIL-2的DNA片段,该DNA片段与含有PBAD启动子的原核表达载体pBAD/HisB组建成重组表达质粒pBAD/HisB/gsIL-2;用该重组表达质粒转化大肠杆菌LMG194,用RM作为基础培养基,发酵扩增含重组表达质粒pBAD/HisB/gsIL-2的大肠杆菌LMG194;含重组表达质粒pBAD/HisB/gsIL-2的大肠杆菌LMG194经诱导后,进行超声波裂解、离心去沉淀,即为gsIL-2粗制品,往gsIL-2粗制品中加入稳定剂和助溶剂后,无菌过滤、分装和冻干后制成成品,保存于-20℃的冷藏环境中。
2.根据权利要求1的方法,其特征在于:所述的gsIL-2粗制品进一步用Ni-NTA Argarose蛋白纯化系统进行纯化,得到gsIL-2纯品;往纯品中加入稳定剂和助溶剂,无菌过滤、分装和冻干后制成成品,保存于-20℃的冷藏环境中。
3.根据权利要求1的方法,其特征在于所说的gsIL-2DNA片段与含有PBAD启动子的原核表达载体pBAD/His B组建成重组表达质粒pBAD/His B/gsIL-2,转化大肠杆菌LMG194,转化后的大肠杆菌LMG194用RM作为基础培养基,由L-阿拉伯糖诱导表达后,产物以融合蛋白的形式存在大肠杆菌LMG194内。
4.用酵母工程菌PMAD11制备重组鹅白细胞介素-2(gsIL-2)蛋白的方法,其特征在于它的步骤如下:用刀豆素刺激浙东白鹅脾单核细胞,Trizol一步法提取总RNA,通过RT-PCR方法扩增和克隆了SEQ ID NO.1所示序列的gsIL-2cDNA片段,将其连接到测序载体pGEM-T Easy Vector,测定gsIL-2DNA序列;以5’GCGAAT TCG CAC CTC TAT CAG AGA A3’为上游引物,5’GCG GAT CCT ATT TTA GCATAG ATC T3’为下游引物,pGEM-T-Easy/gsIL-2为模板克隆出gsIL-2的DNA片段,该DNA片段与含有PAUG1启动子的真核表达载体pMETαB组建成分泌型重组表达质粒pMETαB/gsIL-2;KpnI酶切完全的pMETαB/gsIL-2,电转化酵母工程菌PMAD11,用BMDY作为基础培养基,通过发酵扩增含pMETαB/gsIL-2的酵母工程菌PMAD11,在表达不同时间加氮源、碳源营养素;含pMETαB/gsIL-2的酵母工程菌PMAD11表达的gsIL-2主要分泌于培养基中,经过离心取上清,即为gsIL-2粗制品;往gsIL-2粗制品中加入稳定剂和助溶剂,无菌过滤、分装和冻干后制成成品,保存于-20℃的冷藏环境中。
5.根据权利要求4的方法,其特征在于:所述的gsIL-2粗制品,进一步用Ni-NTA Argarose蛋白纯化系统纯化,得到gsIL-2纯品;往纯品中加入稳定剂和助溶剂,无菌过滤、分装和冻干后制成成品,保存于-20℃的冷藏环境中。
6.根据权利要求4的方法,其特征在于:所说的gsIL-2DNA片段与含有PAUG1启动子的真核表达载体pMETαB组建成分泌型重组表达质粒pMETαB/gsIL-2,电转化酵母工程菌PMAD11,用BMDY作为基础培养基,在表达不同时间加入氮源、碳源营养素,经甲醇诱导表达后,产物以分泌物形式存在于含pMETαB/gsIL-2的酵母工程菌PMAD11的BMDY培养基中。
7.用酵母工程菌PMAD16制备重组鹅白细胞介素-2(gsIL-2)蛋白的方法,其特征在于它的步骤如下:用刀豆素ConA刺激浙东白鹅脾单核细胞,Trizol一步法提取总RNA,通过RT-PCR方法扩增和克隆了SEQ ID NO.1所示序列的gsIL-2cDNA片段,将其连接到测序载体pGEM-T Easy Vector,测定gsIL-2DNA序列;以5’GCG AAT TCG CAC CTC TAT CAG AGA A3’为上游引物,5’GCG GAT CCT ATTTTA GCA TAG ATC T3’为下游引物,pGEM-T-Easy/gsIL-2为模板克隆出gsIL-2的DNA片段,该DNA片段与含有PAUG1启动子的真核表达载体pMETB组建成胞内型重组表达质粒pMETB/gs IL-2;KpnI酶切完全的pMET B/gs IL-2,电转化酵母工程菌PMAD16,用BMDY作为基础培养基,通过发酵扩增含pMET B/gsIL-2的酵母工程菌PMAD16,在表达不同时间加氮源、碳源营养素;含pMET B/gsIL-2的酵母工程菌PMAD16经诱导后,超声波裂解、离心去沉淀,即为gsIL-2粗制品;往gsIL-2粗制品中加入稳定剂和助溶剂,无菌过滤、分装和冻干后制成成品,保存于-20℃的冷藏环境中。
8.根据权利要求7的方法,其特征在于:所述的gsIL-2粗制品进一步用Ni-NTA Argarose蛋白纯化系统纯化,得到gsIL-2纯品;往纯品中加入稳定剂和助溶剂,无菌过滤、分装和冻干后制成成品,保存于-20℃的冷藏环境中。
9.根据权利要求7的方法,其特征在于:gsIL-2的DNA片段与含有PAUG1启动子的真核表达载体pMETB组建成胞内型重组表达质粒pMETB/gsIL-2,电转化酵母工程菌PMAD16,用BMDY作为基础培养基,在表达不同时间加入氮源、碳源营养素,经甲醇诱导表达后,产物主要存在于含pMET B/gs IL-2的酵母工程菌PMAD16菌体内。
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鸡白细胞介素-2 cDNA克隆. 李祥瑞等.南京农业大学学报,第22卷第2期. 1999
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鸡白细胞介素-2的分子生物学研究进展. 陈吉刚等.黑龙江畜牧兽医,第8期. 2002
鸡白细胞介素-2的分子生物学研究进展. 陈吉刚等.黑龙江畜牧兽医,第8期. 2002 *

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