BG61066B1 - Авирулентна противобясна ваксина - Google Patents

Авирулентна противобясна ваксина Download PDF

Info

Publication number
BG61066B1
BG61066B1 BG97964A BG9796493A BG61066B1 BG 61066 B1 BG61066 B1 BG 61066B1 BG 97964 A BG97964 A BG 97964A BG 9796493 A BG9796493 A BG 9796493A BG 61066 B1 BG61066 B1 BG 61066B1
Authority
BG
Bulgaria
Prior art keywords
strain
mutant
avirulent
mutants
glycoprotein
Prior art date
Application number
BG97964A
Other languages
English (en)
Other versions
BG97964A (bg
Inventor
Jacqueline Benejean
Anne Flamand
Marie-Christine Tuffereau
Patrice Coulon
Florence Lafay
Original Assignee
Virbac Societe Anonyme
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Virbac Societe Anonyme filed Critical Virbac Societe Anonyme
Publication of BG97964A publication Critical patent/BG97964A/bg
Publication of BG61066B1 publication Critical patent/BG61066B1/bg

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/08Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from viruses
    • C07K16/10Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from viruses from RNA viruses
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • A61K39/205Rhabdoviridae, e.g. rabies virus
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/51Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/525Virus
    • A61K2039/5254Virus avirulent or attenuated
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2760/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses negative-sense
    • C12N2760/00011Details
    • C12N2760/20011Rhabdoviridae
    • C12N2760/20111Lyssavirus, e.g. rabies virus
    • C12N2760/20134Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Virology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Ваксината се състои от авирулентен мутант на щам sаd на вируса на бяс, гликопротеинът на който включва в позиция 333 естествено възникнала аминокиселина, чийто кодон се различава от този на аргинина най-малко с два нуклеотида.

Description

Настоящото изобретение се отнася до нова противобясна ваксина.
Вирусът на бяса е КЬаЬдоуйих, състоящ се от пет протеина, включително един външен протеин, по-точно глюкопротеин, който стимулира образуването на неутрализиращи антитела в заразени животни. Инжектирането с пречистен гликопротеин защитава животното от суперинфекция.
ПРЕДШЕСТВАЩО СЪСТОЯНИЕ НА ТЕХНИКАТА
Най-често използваните щамове на вируса на бяса, по-специално щам СУ5 и щам ЕКА, от които са получени щамовете 8АИ, такива като 5ΑΏ Вете и ΞΑϋ В19, са описани в /1/. Аминокиселинната последователност на гликопротеина на щам СУ8 е описана от Υεΐνετΐοη и др. в /2/.
Този гликопротеин има два отделни основни антигенни сайта, свързани с неутрализацията на вируса (сайт II и сайт III). Сайт III в позиция 330-340 съдържа аргинни 333, който определя вирулентността на този щам.
Аминокиселинната последователност на гликопротеина от щама δΑϋ Вете не е напълно установена. Все пак, възможно е да се определи, че антигенният сайт III на гликопротеина от щам 5Αϋ Вете е идентичен с този на гликопротеина от щам СУ5.
Противобясните ваксини, които се използват в момента са или ваксини, произведени от инактивирани вируси, или ваксини, състоящи се от вирусни щамове с атенюирана вирулентност или рекомбинантни вируси.
Вирусите могат да бъдат инактивирани с множество методи, по-специално с химически методи, такива като обработване с формалдехид илиуЗ -пропиолактон. Основният недостатък на този метод за получаване на ваксината е боравенето с вирулентни щамове, което изисква много стриктни работни условия и носи риск от заразяване на работещия персонал.
Освен това, инактивираните ваксини, когато се прилагат орално нямат защитни свойства.
Атенюирането на вирулентността на вирусните щамове е добре известно; например може да бъде осъществено чрез последователни пасажи на вирусните щамове върху различен гостоприемник, от векторен тип (например заек или мишка) или в клетъчни култури. Така се получават щамове, слабо адаптирани към изходния гостоприемник и следователно по-малко патогенни към него, като в същото време се запазва тяхната ваксинираща способност.
Щамовете 5ΑΏ, като 8Αϋ В19 и δΑϋ Вете са атенюирани щамове, които са вече тествани в Европа за ваксиниране на лисици. Те могат да се смесват със стръв за орално прилагане. Все пак тези щамове се оказват патогенни към други животински видове и към хората. Следователно има потенциален риск от заразяване, който значително намалява възможността за прилагане на тези щамове за орално ваксиниране.
Например оралното прилагане на щама 5Αϋ Вете на група от 23 диви гризачи, избрани от видовете Аройетих ПаУ1Со1их и хуШаОсих, Атсо1а 1еггех1пх, С1е1Ъпопотух с1агео1их и ΜϊηοΦχ а^гехй, причини смъртта на две животни от бяс.
Тестовете върху мишки показват, че щамът 8Αϋ Вете е патогенен също и към тези видове, както при церебрално така и при мускулно приложение, както е показано на кривите на приложените фигури 1а и 1Ь, от които:
Фигура 1а показва кривата на смъртност при възрастни мишки като функция от дозите (единица за образуване на плаки = ЕОП), приложени церебрално;
Фигура 1Ь показва кривата на смъртност при възрастни мишки като функция от дозите (единица за образуване на плаки = ЕОП), приложени мускулно.
При мишки поели орално 10 ЕОП се наблюдава 10% смъртност.
Изходният щам δΑϋ Вете представлява опасност за дивите животни и хората, ако се използва за ваксиниране на лисици. Същото се отнася за щам 8ΑΏ В19.
Предложена е авирулентна противобясна ваксина за смекчаване на този недостатък. Ваксината, описана в /3/, се състои от авирулентен мутант на щам 5Αϋ от вируса на бяс, в който аргинин 333 от гликопротеина е заменен с аминокиселина, различна от лизин, например глицин, изолевцин или серин.
Този мутант възниква вследствие на замяна на един единствен нуклеотид в кодона на аргинин 333. За съжаление този мутант може да се върне обратно към родителския щам чрез проста реверсивна мутация. Следователно тази ваксина, използвана за орално приложение, не е изцяло безопасна спрямо другите животински видове.
ТЕХНИЧЕСКА СЪЩНОСТ НА ИЗОБРЕТЕНИЕТО
Настоящото изобретение се отнася до ефективна ваксина, която позволява да бъдат смекчени горните недостатъци.
Ваксината съгласно изобретението се състои от авирулентен мутант на щам 8Αϋ на вируса на бяса, в който аргинин 333 от гликопротеина е заместен с природна аминокиселина, чийто кодон се различава с два нуклеотида от този на аргинина.
Изобретението по-нататък се отнася до авирулентни мутанти на щам 8Αϋ на вируса на бяса, в който аргининът от позиция 333 на гликопротеина е заместен с аминокиселина, чийто кодон се различава от този на аргинина с два нуклеотида.
Изобретението се отнася също до метод за получаване на описаните авирулентни мутанти.
МЕТОДЪТ СЕ СЪСТОИ ОТ:
1/ селекция от щам 5Αϋ на вируса на бяса на тези мутанти, които не се неутрализират с моноклонално антитяло неутрализиращо щам 3Αϋ, но без да неутрализира щама ТАО1 определен по-долу;
2/ изолиране на мутант, имащ лизин в позиция 333, чрез секвениране на участъка на 333-та позиция от гликопротеина на мутантите селекционирани в 1;
3/ получаване на моноклонално антитяло, което неутрализира, както щам 5Αϋ, така и мутанта, получен в 2, но без да неутрализира щам ТАС1;
и
4/ втора селекция на мутантите, получени в 1, с помощта на моноклонално антитяло, получено в 3.
Моноклоналните антитела, използвани за селекция на мутантите съгласно изобретението, са получени чрез сливане на миеломни клетки с клетки, произвеждащи антивирусни антитела според хибридизационния метод, описан от КОНЬЕК. и М1Ь8ТЕШ в /4/, широко известен метод на специалистите в областта.
Този метод може да бъде използван за сливане на клетки, произхождащи от различни видове, но все пак за предпочитане е да се използват клетки от един и същи животински вид. Например за предпочитане е използването от една страна на миши миеломни клетки, от друга страна на клетки от миши далак, предварително имунизирани с щам на вируса на бяса съгласно протокола, описан по-долу.
Най-общо този хибридизационен метод, отнасящ се до миши клетки, се състои от следните операции:
1/ имунизиране на мишки с определено количество вирус, инактивиран с /3-пропиолактон;
2/ отделяне на далака на имунизираните мишки и разделяне на спленоцитите;
3/ сливане на така получените спленоцити с мишите миеломни клетки в присъствието на фузионен промотор;
4/ култивиране на хибридните клетки, получени в селективна среда, в която неслетите миеломни клетки не се развиват и в присъствието на подходящи компоненти;
и
5/ селекция на клетките, произвеждащи желаните антитела и клониране на тези клетки.
Имунизацията включва интраперитонеално инжектиране на Ва1Ь-С мишки с 100 μβ от вирус СУ 5, инактивиран с /?-пропиолактон, заедно с добавка на ΡΚΕΕΙΝϋ, усилваща действието му (аджувант) и повторна венозна доза 4 дни преди сливането, след период на почивка от 1 месец.
Спленоцитите на имунизираните мишки се отделят след оперативно премахване на далака съгласно конвенционалната процедура.
Мишите миеломни клетки, използвани за получаване на неутрализиращи моноклонални антитела, са Ва1Ь-С миши миеломни клетки, произхождащи от линията 5Р2О. Тези миеломни клетки са селекционирани за тяхната чувствителност към аминоптерина и се култивират в подходяща среда, като модифицирана Еа£1е среда на ОиЕВЕССО (Ои1Ьессо Μοάΐίϊεύ Еав1етейшт), тук означена като ϋΜΕΜ, към която се прибавя 15%-ен серум от жребче.
Миеломните клетки се сливат със спленоцитите чрез смесване на 5-107 миеломни клетки с 5-107 клетки от далак на имунизирани мишки, в присъствието на фузионен промотор, като например полиетиленгликол.
След инкубация при 37°С клетките се промиват с БМЕМ, ресуспендират се и се култивират върху селективна среда, подходяща само за израстване на хибридни клетки. Тази среда съдържа хипоксантин, аминоптерин и тимидин. 7 до 20 дни след сливането се селекционират супернатантите от културите чрез поставянето им в контакт със суспензия от СУ5 вирус и отделяне на антителата, които неутрализират горната суспензия.
Под понятието “неутрализиращи вирус антитела” се разбира антитела, които, доведени в контакт със суспензия от горния вирус, инхибират вирулентността му. Степента на неутрализация на получените моноклонални антитела се определя по добре известен на специалистите конвенционален метод. Този метод се състои в смесване на 100 μ 1 от суспензия на вируса, съдържаща 1000 ЕОП вирус с 100 μΐ от супернатантата на хибридомната култура, като с тази смес се заразява клетъчна култура и след 4-дневна инкубация се преброяват лизисните плаки в агар по метода на ΒυδδΕΕΕΑυ и др. /5/. Антитялото е неутрализиращо, ако то инхибира всяко образуване на плаки в агар при условията описани по-горе. След това се отделят тези антитела, които не неутрализират авирулентния мутант ТАС1, получен от щама СУ8, депозиран в Националната колекция за култури и микроорганизми (С.И.С.М) Институт Пастьор Франция на 12 април 1985 под № 1-433.
Получените моноклонални антитела, които неутрализират щам СУ8, но не неутрализират авирулентния мутант ТАС1, правят възможно отделянето на авирулентните мутанти от всеки щам на вируса на бяса, който се неутрализира с тези моноклонални антитела.
Така получените моноклонални антитела са антитела, които неутрализират и щам 3Αϋ на вируса на бяса, следователно те са удобни за осъществяване на първата селекция по метода съгласно изобретението.
Секвенирането на участъка на 333-та позиция от гликопротеина на мутантите, селекционирани в 1, се осъществява по известен на специалистите конвенционален метод /6/.
Това секвениране прави възможно да се изолира мутант, който съдържа лизин в позиция 333 на гликопротеина; този мутант по-нататък се означава като “8К мутант”. Кодонът (ААА) на тази аминокиселина (лизин) се отличава от този на аргинина в позиция 333 на щам 8Αϋ само по 1 нуклеотид, като кодонът на аргинина в позиция 333 на щам 5АБ е АСА.
Следва получаване на моноклонално антитяло, което неутрализира както щама 8Αϋ, така и мутанта получен по-горе.
Това моноклонално антитяло се получава чрез селекция от моноклоналните антитела, които неутрализират щама 5АБ и не неутрализират ТАС1, на това моноклонално антитяло, което също неутрализира лизиновия мутант или 8К мутанта получен по-горе.
Това моноклонално антитяло прави възможно осъществяването на втората селекция (операция 4) по метода съгласно изобретението.
Патогенната способност на мутантите, получени при тази втора селекция, се изследва чрез интрацеребрално инжектиране на възрастни мишки с 105 ЕОП. Мутантите, които не убиват при тази доза и при тази инжекционна схема, се считат за авирулентни.
Мутантите съгласно изобретението са двойни авирулентни мутанти на щам 8АБ, такива като щам 5АБ Вегпе, получени от две последователни селекции с помощта на описаните моноклонални антитела.
Мутантите съгласно изобретението могат също да имат и други мутации, като например мутация, придаваща резистентност на моноклонално антитяло, специфично за антигенен сайт И, което позволява откриването на възможен ревертант на вирулентност от щамовете 8АБ, използвани за орално ваксиниране на лисици.
Мутантите съгласно изобретението могат да бъдат мултиплицирани върху ВНК 21 бъбречни клетки от новороден хамстер в присъствието на СЕМ хранителна среда и 2% телешки серум при 33°С и във влажна атмосфера, съдържаща 5% СО2. Титруват се по известни методи, например чрез определяне на 50% летална доза (ЬО50) в млади мишки, чрез имунофлуоресценция или преброяване на лизисните плаки в агар. Те могат да бъдат съхранявани при -70°С. Анализът на нуклеотидната последователност на гликопротеина на тези мутанти показва, че кодонът на аминокиселината в позиция 333 се различава с наймалко два нуклеотида от всички възможни кодони на аргинина. Най-предпочитан от мутантите, които задоволяват това условие, е мутантът, който има глутаминова киселина в позиция 333, защото той се мултиплицира добре в клетъчна култура, по-малко патогенен е към новородени мишки и има добра защитна способност. Двойният мутант, съдържащ глутаминова киселина, чийто кодон е САА на мястото на аргинина в позиция 333, получен чрез горния метод от щам 8ΑΏ Вегпе и наричан оттук нататък 8АС2 е депозиран в Националната колекция за култури и микроорганизми (С.И.С.М) Институт Пастьор Франция на 9 юли 1992 под № 1-1238. Този мутант съдържа друга мутация, по-точно резистентност към моноклонално антитяло, специфично за антигенен сайт И, което е допълнителен маркер на щама.
По-нататък изобретението се описва поподробно по отношение на мутанта 8АС2, без това да ограничава обхвата на изобретението.
ПРИМЕРИ ЗА ИЗПЪЛНЕНИЕ НА ИЗОБРЕТЕНИЕТО
Пример 1. Тестове за генетична стабилност на щама при пасажи върху мозък на млади мишки мишки на 4-дневна възраст се инжектират с 103 ЕОП от 8АС2. Когато животните се разболеят, те се убиват. Подготвят се 6 отделни основни проби от смлян мозък; всяка проба се титрува и 3 възрастни мишки (контрола за патогенност) и една млада мишка (следващ пасаж) се инжектират с 30 μ\ при разреждане 1/10. 6-те млади мишки позволяват по този начин да се направят 6 самостоятелни серии по 3 пасажа.
Титрите на мозъците в ЕОП/т1 са показани в следната таблица:
Се- рии А В С ϋ Е Е
|>и па- саж >5.10’ 1.5.107 107 106 106 106
2Р па- саж >5.10’ 2.5.107 >5.10’ >5.107 >5.107 >5.10’
3™ па- саж >5.10’ >5.10’ >5.10’ >5.107 >5.107 >5.10’
Всички възрастни (54 мишки) инжектирани след 1ви, 2ри или Зти пасаж оцеляват, показвайки липса на ревертивност.
Пример 2. Защитна способност на 8АС2.
Мишки се инжектират интрацеребрално с мутант 8АС2 и защитната способност на този мутант се определя чрез мускулно тестуване на 100 ЬО50 от щам СУЗ. Получените резултати са показани на фиг.2, която представлява графика, на чиято ордината е дадена защитната способност (%), като функция от количеството инжектиран мутант, изразено в ЕОП/мишка (Ιοβ). Същият тест се повтаря с мутанта 8К, имащ лизин в позиция 333.
Защитната способност на 5К и 8АС2 е 100% при 104 ЕОП/мишка и повече.
Пример 3. Патогенност на 5АС2 при интрацеребрално приложение
Инжектират се мишки с мутанта ЗАС2 с дози в граници от 10 °5 до 106 ЕОП/мишка и не се наблюдава смъртност през период от 28 дни.
Успоредно с това, същият експеримент се провежда с вируса 8Αϋ Вегпе или с мутанта ЗК.
Резултатите са показани на фиг.З, която представлява графика, на ординатата на която е изразена смъртност в % като функция от количеството мутант, инжектиран на мишка (на абсцисата).
Установено е, че мутантът 8АО2 не причинява смъртност, там където мутантът ЗК има слаба остатъчна патогенна способност.
Пример 4. Патогенност на 8АС2 при мускулно приложение
Горният тест се повтаря, но при мускулно приложение. Резултатите са показани на фиг.4, която показва смъртността в проценти (на ординатата), като функция от приложената доза в ЕОП/мишка (на абсцисата). Както се вижда мутантите 8АО2 и 8К не предизвикват смъртност.
Мутантите съгласно изобретението могат да се прилагат като жива ваксина, по който и да е от начините на приложение, обикновено използвани за ваксинация, по-специално мускулно или орално. Мутантите се разтварят предимно във фармацевтично приемлив инертен носител, като физиологичен серум.

Claims (9)

1. Авирулентна противобясна ваксина, която се състои от авирулентен мутант на щам 8Αϋ на вируса на бяса, гликопротеинът на който включва в позиция 333 естествено възникнала аминокиселина, чийто кодон се различава от този на аргинина най-малко с два нуклеотида.
2. Ваксина съгласно претенция 1, характеризираща се с това, че аминокиселината в позиция 333 е глутаминова киселина.
3. Ваксина съгласно претенции 1 или 2, характеризираща се с това, че мутантът е мутант на щама 8Αϋ Вегпе.
4. Ваксина съгласно претенциите 1 до 3, характеризираща се с това, че мутантът е депозиран в С.М.С.М. (Националната колекция за култури и микроорганизми) - Институт Пастьор - Франция на 9 юли 1992 г. под № I1238.
5. Двоен авирулентен мутант на щам 55Αϋ на вируса на бяса, чийто гликопротеин има в позиция 333 естествено възникнала аминокиселина, чийто кодон се различава от този на аргинина с два нуклеотида.
6. Двоен авирулентен мутант съгласно претенция 5, характеризиращ се с това, че аминокиселината в позиция 333 е глутаминова киселина.
7. Двоен авирулентен мутант съгласно една от претенциите 5 или 6, характеризиращ се с това, че е мутант на щам 5Αϋ Вегпе.
8. Двоен авирулентен мутант на щам 8Αϋ, характеризиращ се с това, че е депозиран в Ο.Ν.Ο.Μ. (Националната колекция за култури и микроорганизми) - Институт Пастьор - Франция на 9 юли 1992 г, под номер 1-1238.
9. Метод за получаване на двойни мутанти, характеризиращ се с това, че се състои от:
- селекция от изходен щам 55 А ϋ на ви5 руса на бяса на мутанти, които не се неутрализират с моноклонално антитяло, неутрализиращо щам 55 Αϋ, и което неутрализира щам
ТАС1, определен по-долу;
- изолиране на мутант, имащ лизин в 10 позиция 333, чрез секвениране на участъка на 333-та позиция от гликопротеина на селекционираните мутанти;
- получаване на моноклонално антитяло, което неутрализира както щам 55Αϋ, така и
15 мутанта, получен от него, но не неутрализира щам ТАС1;
и
- втора селекция на мутантите, получени при първата селекция, с помощта на вече полученото специфично моноклонално антитяло.
BG97964A 1992-07-20 1993-07-16 Авирулентна противобясна ваксина BG61066B1 (bg)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FR9208947A FR2693655B1 (fr) 1992-07-20 1992-07-20 Vaccin antirabique avirulent.

Publications (2)

Publication Number Publication Date
BG97964A BG97964A (bg) 1994-04-29
BG61066B1 true BG61066B1 (bg) 1996-10-31

Family

ID=9432070

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
BG97964A BG61066B1 (bg) 1992-07-20 1993-07-16 Авирулентна противобясна ваксина

Country Status (20)

Country Link
US (1) US5853735A (bg)
EP (1) EP0583998B1 (bg)
AT (1) ATE175877T1 (bg)
BG (1) BG61066B1 (bg)
BR (1) BR9302910A (bg)
CA (1) CA2100591C (bg)
CZ (1) CZ283400B6 (bg)
DE (1) DE69323130T2 (bg)
FI (1) FI933210A (bg)
FR (1) FR2693655B1 (bg)
HR (1) HRP931065B1 (bg)
HU (1) HU219266B (bg)
MA (1) MA22938A1 (bg)
MX (1) MX9304349A (bg)
PL (1) PL172853B1 (bg)
RO (1) RO112582B1 (bg)
RU (1) RU2128519C1 (bg)
SI (1) SI9300392A (bg)
SK (1) SK280104B6 (bg)
TN (1) TNSN93083A1 (bg)

Families Citing this family (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
IL143149A0 (en) * 1998-11-27 2002-04-21 Akzo Nobel Nv Stable, attenuated rabies virus mutants and live vaccines thereof
PL352840A1 (en) 1999-06-03 2003-09-08 Nippon Suisan Kaisha, Ltd. Tricyclic fused heterocycle compounds, process for preparing the same and use thereof
US7074413B2 (en) 2000-03-23 2006-07-11 Thomas Jefferson University Genetically engineered rabies recombinant vaccine for immunization of stray dogs and wildlife
MXPA04000589A (es) 2001-07-20 2005-06-17 Univ Georgia Res Found Virus de la rabia atenuado con mutacion de nucleoproteina en el sitio de fosforilacion para vacunacion contra la rabia y terapia genetica en el snc.
ATE307606T1 (de) * 2001-10-04 2005-11-15 Ct Voor Onderzoek In Diergenee Abgeschwächter mutantenstamm eines virus der newcastle-krankheit für eine in ovo impfung und dessen benutzung
WO2003030933A1 (en) * 2001-10-10 2003-04-17 Thomas Jefferson University Recombinant rabies vaccine and methods of preparation and use
EP1415665A3 (en) * 2002-11-01 2004-06-30 ID-Lelystad, Instituut voor Dierhouderij en Diergezondheid B.V. BHV5 mutants
EP1768697B1 (en) 2004-07-12 2010-06-02 Thomas Jefferson University Recombinant rabies virus compositions
BRPI0617373B1 (pt) 2005-10-14 2022-04-05 The Goverment of The United States of America, Representado por, The Secretary of The Department of Health and Human Services, Centers for Disease Control and Prevention Composições e métodos do vírus da raiva
FR2944292B1 (fr) 2009-04-08 2013-08-23 Sanofi Pasteur Procede de purification du virus rabique
RU2694836C1 (ru) * 2018-12-14 2019-07-17 федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности" (ФГБНУ "ФЦТРБ-ВНИВИ") Способ получения антигена вируса бешенства для серологической диагностики

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2580176B1 (fr) * 1985-04-12 1988-02-26 Centre Nat Rech Scient Vaccin antirabique avirulent
FR2633832B1 (fr) * 1988-07-05 1991-05-31 Virbac Vaccin antirabique avirulent

Also Published As

Publication number Publication date
EP0583998A1 (fr) 1994-02-23
RU2128519C1 (ru) 1999-04-10
CZ283400B6 (cs) 1998-04-15
HRP931065B1 (en) 1999-12-31
ATE175877T1 (de) 1999-02-15
DE69323130T2 (de) 1999-06-17
US5853735A (en) 1998-12-29
MA22938A1 (fr) 1994-04-01
RO112582B1 (ro) 1997-11-28
HU9302091D0 (en) 1993-11-29
HUT69961A (en) 1995-09-28
CZ140293A3 (en) 1994-02-16
HU219266B (en) 2001-03-28
FI933210A0 (fi) 1993-07-14
TNSN93083A1 (fr) 1994-03-17
EP0583998B1 (fr) 1999-01-20
HRP931065A2 (en) 1995-02-28
BG97964A (bg) 1994-04-29
SK280104B6 (sk) 1999-08-06
BR9302910A (pt) 1994-02-16
FR2693655B1 (fr) 1994-10-14
MX9304349A (es) 1994-06-30
CA2100591C (en) 2003-02-18
SI9300392A (en) 1994-06-30
CA2100591A1 (en) 1994-01-21
FR2693655A1 (fr) 1994-01-21
DE69323130D1 (de) 1999-03-04
FI933210A (fi) 1994-01-21
SK76193A3 (en) 1994-06-08
PL172853B1 (pl) 1997-12-31
PL299739A1 (en) 1994-01-24

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4810634A (en) Pseudorabies virus mutants incapable of producing glycoprotein X
Ludwig et al. Biology and neurobiology of Borna disease viruses (BDV), defined by antibodies, neutralizability and their pathogenic potential
Lafay et al. Vaccination against rabies: construction and characterization of SAG2, a double avirulent derivative of SADBern
DE69637264T2 (de) Virales Material und Multiple-Sklerose assoziierte Nukleotidfragmente mit diagnostischen, prophylaktischen und therapeutischen Verwendungen
Schneider et al. Application of monoclonal antibodies for epidemiological investigations and oral vaccination studies
EP0327305A2 (en) Preparation of a recombinant subunit vaccine against pseudorabies infection
JPH0586088A (ja) ニワトリ貧血ウイルスワクチン及び診断法
Schumacher et al. SAG-2 oral rabies vaccine
BG61066B1 (bg) Авирулентна противобясна ваксина
Flamand et al. Avirulent mutants of rabies virus and their use as live vaccine
US6241989B1 (en) Recombinant multivalent viral vaccine
Yang et al. Safety and immunogenicity of recombinant rabies virus (ERAGS) in mice and raccoon dogs
US5632989A (en) Attenuated, live vaccine for Delaware strain IBDV
Yokoyama et al. Construction of the recombinant feline herpesvirus type 1 deleted thymidine kinase gene
DK170393B1 (da) Avirulent rabies-vaccine samt avirulent mutant af stammen SAD Berne
US7087234B1 (en) Recombinant multivalent viral vaccine
CA2382993A1 (en) Attenuated recombinant rabies virus mutants and live vaccines thereof
US5275934A (en) Method of detecting viral infection in vaccinated animals
US5128128A (en) Virus vaccine
EP0263207B1 (en) Virus vaccine
Neutralizing Novel Human Monoclonal Antibody
JPH05503209A (ja) イヌパルボウイルス(cpv)を含む弱毒イヌパルボウイルスワクチンとイヌ科動物におけるcpv感染予防
IL149173A (en) Attenuated recombinant mutants of the rabies virus and vaccines prepared from them