RO112582B1 - Dublu mutant avirulent al unei suse sad a virusului rabic, procedeu de obtinere si vaccin - Google Patents
Dublu mutant avirulent al unei suse sad a virusului rabic, procedeu de obtinere si vaccin Download PDFInfo
- Publication number
- RO112582B1 RO112582B1 RO93-01010A RO9301010A RO112582B1 RO 112582 B1 RO112582 B1 RO 112582B1 RO 9301010 A RO9301010 A RO 9301010A RO 112582 B1 RO112582 B1 RO 112582B1
- Authority
- RO
- Romania
- Prior art keywords
- mutant
- strain
- sad
- double
- avirulent
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K16/00—Immunoglobulins [IG], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
- C07K16/08—Immunoglobulins [IG], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from viruses
- C07K16/10—RNA viruses
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K39/12—Viral antigens
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K39/12—Viral antigens
- A61K39/205—Rhabdoviridae, e.g. rabies virus
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K2039/51—Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
- A61K2039/525—Virus
- A61K2039/5254—Virus avirulent or attenuated
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2760/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses negative-sense
- C12N2760/00011—Details
- C12N2760/20011—Rhabdoviridae
- C12N2760/20111—Lyssavirus, e.g. rabies virus
- C12N2760/20134—Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Virology (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Immunology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Public Health (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Mycology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Saccharide Compounds (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Description
Prezenta invenție se referă la un dublu mutant avirulent al unei sușe SAD a virusului rabic, procedeu de obținere și vaccin.
Virusul rabic este un rabdovirus constituit din cinci proteine, din care o proteină externă, glicoproteina care declanșează sinteza anticorpilor neutralizanți la animalele inoculate. Injectarea glicoproteinei purificate protejează animalul contra unei suprainfecții. Sușele virusului rabic cele mai utilizate, mai ales sușa CVS, de la care derivă sușele SAD, ca și sușele SAD Berne și SAD B19. Secvența de aminoacid a glicoproteinei sușei CVS a fost descrisă în literatura de specialitate. Această glicoproteina comportă două poziții antigenice majore distincte legate de neutralizarea virusului (situsurile II și III). Situsul III în poziția 33O-34D conține arginină 333 care determină virulența acestei sușe. Secvența de aminoacid a glicoproteinei sușei SAD Berne n-a fost stabilită în întregime. Totuși, s-a putut determina faptul că situsul antigenic II al glicoproteinei sușei SAD Berne este identic cu cel al glicoproteinei CVS.
Vaccinurile antirabice folosite la ora actuală sunt fie vaccinuri fabricate pornind de la viruși inactivați, fie vaccinuri constituite din sușe virale a căror virulență a fost atenuată, fie viruși recombinați (de exemplu vaccina).
Inactivarea virușilor poate fi realizată prin diferite procedee, mai ales prin procedee chimice cum ar fi tratamentul cu B-propiolactona.
Inconvenientul major al acestui procedeu de fabricație al vaccinurilor este manipularea sușelor virulente care necesită condiții de lucru foarte stricte și prezintă riscuri de contaminare a personalului. Pe de altă parte vbaccinurile inactivate care sunt administrate pe cale orală nu au putere de protecție.
Atenuarea virulenței sușelor virale este o tehnică bine cunoscută; ea poate fi realizată de exemplu, prin treceri succesive a sușelor virale la o gazdă diferită de spațiul vector (de exemplu iepure sau șoarece) sau în cultură de celule. Se obțin, astfel, sușe care nu mai sunt adaptate, de la gazda de origine, și deci mai puțin patogene, dar care își păstrează totuși capacitatea de vaccin.
Sușele SAD, ca și sușele SAD B19 și SAD Berne care sunt accesibile publicului, sunt sușe atenuate care au fost deja testate pentru vaccinarea vulpilor. Ele pot fi amestecate cu momeli pentru a fi adminsitrate pe cale orală. Totuși, s-a demonstrat că aceste sușe ar fi patogene pentru alte specii de animale și pentru om. Există deci un risc potențial de contaminare care diminuează considerabil interesul acestor sușe pentru vaccinarea orală.
într-adevăr, de exemplu, administrarea pe cale orală a sușei SAD Berne unui lot de 23 de rozătoare sălbatice alese dintre Apodemus favicolus, Apodemus sxlvaticus, Arvicola teiristris, Clethrionomys calreolus, Minotus agresti a provocat moarte prin turbare la două animale.
încercările pe șoarece au demonstrat, de asemenea, că sușa SAD Berne este patogenă pentru această specie atât pe cale intracerebrală cât și pe cale intramusculară, după cum arată curbele din figurile din prezenta invenție.
Pe cale orală, s-a observat la șoareci o mortalitate de 10 % la doza de 105'5UFP.
Sușa SAD Berne ca atare, utilizată pentru campanii de vaccinare a vulpilor, prezintă deci un risc pentru fauna sălbatică și pentru om. La fel se întâmplă și cu sușa SADB19.
Pentru a înlătura acest incovenient, s-a propus un vaccin antirabic avirulent. Acest vaccin este constituit dintr-un mutant avirulent al sușei SAD a virusului turbării care este caracterizat prin faptul că posedă în locul argininei 333 a glicoproteinei un alt aminoacid decât lizina, de exemplu glicină, izoleucină sau serină. Acest mutant derivează prin schimbarea unei singure nucleotide în codonul argininei 333. Totuși, acest vaccin care este utilizat pentru administrare pe cale orală, nu este totuși fără pericol pentru celelalte specii de animale.
Dublu mutant al unei sușe SAD a virusului rabic, conform invenției, are caracteristica că glicoproteina posedă în
RO 112582 Bl poziția 333 un aminoacid natural al cărui codon diferă de cel al argininei prin două nucleotide. Aminoacidul din poziția 333 este acidul glutamic. Dublul mutant este un mutant al sușei SAD Berne și este depus în Colecția Națională de Culturi de Microorganisme (CNCM) a Institutului Pasteur - Franța, sub nr. 1-1238 din 9 iulie 1992. Procedeul de obținere a dublului mutant, în conformitate cu prezenta invenție, cuprinde următoarele etape: selecționarea, plecând de la sușa SAD a virusului rabic, a mutanților care nu sunt neutralizați de un anticorp monoclonal care neutralizează sușa SAD dar nu neutralizează sușa TAGI; izolarea, prin secventarea regiunii 333 a glicoproteinei mutanților obținuți în prima etapă, a unui mutant ce posedă în poziția 333 o lizină; prepararea unui anticorp monoclonal care neutralizează în același timp sușa SAD și mutantul obținut^în a 2-a etapă, dar nu neutralizează Sușa TAGI; efectuarea unei a doua selecții printre mutanții obținuți în prima etapă, cu ajutorul anticorpului monoclonal preparat în a 3-a etapă.
Vaccinul antirabic avirulent este constituit dintr-un dublu mutant al unei sușe SAD a virusului rabic, în conformitate cu cele arătate mai sus, în amestec cu un purtător acceptabil din punct de vedere farmaceutic.
Invenția prezintă avantajul că noul mutant, precum și vaccinul, nu prezintă risc pentru fauna sălbatică și pentru om.
Se dau, în continuare, trei exemple de realizare a invenției în legătură cu figura care reprezintă: a) curba mortalității la șoareci adulți, în funcție de dozele administrate (în unități formând plaja) pe cale intracelebrală; 2i b) Curba mortalității la șoareci adulți, în funcție de dozele administrate (în unități formând plaja) pe cale intramusculară.
Exemplul 1. Dublul mutant avirulent al sușei SAD a virusului rabic posedă în locul argininei 333 a glicoproteinei, un aminoacid al cărui codon diferă de cel al arigininei prin două nucleotide.
Exemplul 2. Procedeu de obținere a mutandului avirulent al sușei SAD al virusului rabic, cuprinde următoarele faze:
1) selecționarea, pornind de la o sușă SAD a virusului rabic, a mutanților care nu sunt neutralizați de un anticorp monoclonal care neutralizează sușa SAD, dar nu neutralizează sușa TAGI definită mai jos;
2) izolarea, prin secvențare a reginunii 333 a glicoproteinei mutanților selecționați în etapa 1), un mutant care posedă în poziția 333 o lizină;
3) prepararea unui anticorp monoclonal care neutralizează în acelșași timp sușa SAD și mutantul obținut în etapa
2) , dar nu neutralizează sușa TACI;
4) are loc o a doua selecție a mutanților obținuțftn etapa 1) cu ajutorul anticorpului monoclonal preparat în etapa
3) .
Exemplul 3. Vaccinul este constituit din mutantul avirulent al sușei SAD a virusului rabic, care posedă în locul argininei 333 a glicoproteinei, un aminoacid natural al cărui codon diferă de cei care codifică pentru ariginină prin două nucleotide.
Anticorpii monoclonali folosiți pentru selecționarea mutanților, conform cu prezenta invenție, sunt obținuți prin fuziunea celulelor de mielom și a celulelor care produc anticorpi antivirali conform tehnicii de hibridare care este binecunoscută specialiștilor în domeniu. Conform cu această tehnică, pot fi fuzionate celule care provin de la specii diferite, totuși este avantajos de folosit celule care provin de la aceeași specie de animale. De exemplu se folosesc de preferință, pe de o parte celule de mielom de șoarece și pe de altă parte celule de splină de șoarece, imunizate în prealabil cu o sușă a virusului turbării, în conformitate cu procedeul care este redat mai jos.
Sub aspectul său general, acest procedeu de hibridare descris, cu referință la celulele de șoarece, cuprinde următoarele etape:
1) imunizarea șoarecelui cu o cantitate dată de virus inactivat cu Bpropiolactonă;
2) prelevarea splinei șoarecilor imunizați și separarea splenocitelor;
RO 112582 Bl
3) fuziunea splenocitelor astfel obținute cu celule de mielom de șoarece în prezența unui promotor de fuziune;
4) cultura celulelor hibride obținute într-un mediu selectiv pe care nu se dezvoltă celulele de mielom nefuzionate, și în prezența de elemente adecvate;
5) selectarea celulelor care produc anticorpul dorit și clonajul acestor celule.
Protocolul imunizării cuprinde injectarea șoarecilor Balb-C cu 100 g de virus CV5 inactivat cu B-propiolactonă pe cale intraperitoneală, cu adjuvant complet FREUND, și un rapel pe cale intravenoasă 4 zile înainte de fuziune, după o perioadă de repaos de o lună.Splenocitele șoarecilor imunizați sunt recuperate după prelevarea splinei, după metoda operatorie clasică. Celulele de mielom ale șoarecilor folosiți pentru obținerea anticorpilor monoclonali neutralizați sunt celulele de mielom a șoarecelui Balb-C care provine din SP20. S-au selecționat acele celule de mielom, pentru sensibilitatea lor la aminopterină și cultivate într-un mediu propice, cum ar fi mediul esențial Eagle modificat, care este denumit mai jos DMEM, la care s-a adăugat 15 % ser de vițel.
Fuziunea celulelor de mielom cu splenocitele, s-a realizat prin amestecarea a 5 x 1d7 celule de mielom cu 5x107 celule de splină de șoareci imunizați, în prezența unui producător de fuziune cum ar fi de exemplu polietilenglicol. După incubare la temperatura de 37°C, celulele se spală în mediu DMEM și sunt aduse în suspensie, apoi cultivate într-un mediu selectiv propice numnai creșterii de celule hibride. Un astfel de mediu conține hipoxantină, aminopterină și timidină. Se colecționează apoi supernatantele de cultură, 7 până la 20 de zile după fuzionare, și se pun în contact aceste supernatante cu o suspensie de virus CV5 și se rețin anticorpii care neutralizează suspensia respectivă.
Prin “anticorpii care neutralizează un virus” se înțeleg acei anticorpi care, în prezența unei suspensii a virusului, înhibă virulența acestuia.
Puterea neutralizantă a anticorpilor monoclonali obținuți ca mai sus, se determină conform unui procedeu care este binecunoscut specialiștilor în domeniu. Acest procedeu constă în punerea în contact a 100 ul se suspensie de virus ce conține 1000 UFP de virus și 100 ul supernatant de cultură de hibridon, în infectarea unei culturi de celule cu acest amestec, și după 4 zile de incubare, determinarea plajelor de lizare sub agrar, conform metodelor cunoscute în literatura de specialitate. Anticorpul este neutralizat dacă inhibă orice formare de palja sub agar, în condițiile descrise mai sus. Printre acești anticorpi se mai rețin și anticorpii care nu neutralizează mutantul avirulent TAGI care derivă din sușa CVS, depusă în Colecția Națională de Culturi de Microorganisme a Institutului Pasteur - Franța, sub nr. I-433 la data de 12 aprilie 1985.
Anticorpii monoclonali rezultați, care neutralizează deci sușa CVS, nu neutralizează mutantul avirulent TAGI, și permit selecționarea fnutanților avirulenți placând de la orice sușă a virusului turbării, care este neutralizată de acești anticorpi monoclonali.
Anticorpii monoclonali, astfel obținuți, sunt anticorpi care neutralizează în mod egal sușele SAD ale virusului rabic. Nu sunt convenabili pentru efectuarea primei selecții a procedeului din prezenta invenție.
Secvențarea regiunii 333 a glicoproteinei mutanților selecționați în etapa 1) se realizează conform metodei clasice, care este binecunoscută specialiștilor în domeniu. Această secvențare permite izolarea unui mutant care posedă în poziția 333 a glicoproteinei o lizină. Acest mutant este denumit, mai jos, “mutant SK”.
Codonul (AAA) al acestui aminoacid (lizină) diferă de cel al argininei în poziția 333 a sușei SAD printr-o singură nucleotidă; codonul argininei în poziția 333 a sușei SAD fiind AGA. Se procedează, apoi, la prepararea anticorpului monoclonal care neutralizează în același timp sușa SAD și mutantul obținut mai sus. Acest anticorp monoclonal se obține reținând dintre anticorpii monoclonali care neutralizează sușa SAD și nu neutralizează sușa TAGI,
RO 112582 Bl pe cel care neutralizează în aceași măsură mutantul lizină sau mutantul SK obținut mai sus.
Acest anticorp monoclonal permite apoi să se procedeze la o a doua selecție 5 (etapa 4] a procedeului din prezenta invenție. Puterea patogenă a mutanților care rezultă din această a doua selecție este apoi etstată prin injectarea intracelebrală la 105 UFP la șoareci adulți. 10 Mutanții care nu omoară la această doză, și pe această cale de injectare, sunt considerați avirulenți.
Mutanții, conform invenției, sunt dublu mutanți avirulenți ai unei sușe SAD, 15 cum ar fi în special sușa SAD Berne, care rezultă din două selecții succesive cu ajutorul anticorpilor monoclonali obținuți mai sus.
Mutanții, conform invenției, pot să 20 conțină alte mutații cum ar fi de exemplu o mutație care conferă rezistență unui anticorp monoclonal specific al situsului antigenic II, ceea ce permite recunoașterea unei eventuale revitalizări a virulenței 25 sușelor SAD utilizate pentru vaccinarea orală a vulpilor.
Mutanții, conform invenției, pot fi multiplicați pe celule de rinichi de hamsteri nou-născuți BHK 21, în prezența de mediu 30 GEM (mediu esențial de modificare minimă) și de 2 % ser de vițel, la temperatura de 33°C și în atmosferă umedă cu 5 % C02.
Ei se utilizează conform metodelor obișnuite, de exemplu prin determinarea 35 dozei letale 50 (DL50) la șoareci, prin imunofluorescență sau detrminarea plajelor de liză sub agar. Pot fi conservate la -70°C.
Analiza secvenței în nucleotide a glicoproteinei acestor mutanți a relevat 40 faptul că, codonul aminoacidului în poziția
333 diferă prin cel puțin două nucleotide de toți codonii posibili ai argininei. Printre mutanții care îndeplinesc această condiție, este preferat în mod deosebit mutantul care posedă în poziția 333 un acid glutamic, căci el se multiplică bine în cultura celulelor, este mai puțin patogen pentru șoarecii nou-născuți și are o bună putere protectoare. Dublul mutant care are acid glutamic în codon este GAA în locul argininei 333, obținut conform procedeului de mai sus și plecând de la sușa Berne și care este denumită mai jos SAG2, și care a fost depusă în Colecția Națională de Culturi de Microorganisme a Institutului Pasteur - Franța, sub nr. I1238 la data de 9 iulie 1992. Acest mutant conține o altă mutație, și anume rezistența la un anticorp monoclonal specific situsului antigenic II, ceea ce servește la marcarea adițională a sușei.
Invenția deci va fi descrisă mai detaliat, cu referință la mutantul SAG2, fără a se limita la acest unic mutant.
S-au efectuat teste cu mutantul SAG2, astfel:
A. Teste de stabilitate genetică a sușei în cursul trecerilor în creierii șoarecilor: 103 UFP de SAG2 au fost injectați la 6 șoareci de 4 zile. Când animalele se îmbolnăvesc, acestea sunt sacrificate. Se efctuează șase probe individuale; fiecare probă a fost triată și, apoi, 30 ul a unei diluții de 1/10 au fost injectați la 3 șoareci adulți (control de patogenitate) și la un șoricel (trecerea următoare). Cei șase șoareci au dat astfel posibilitatea să facă 6 serii independente de câte trei treceri.
Titrările creierilor în UFP/ml sunt date în tabelul care urmează.
| Serii | A | B | C | D | E | F |
| Prima trecere | >5X107 | 1,5X107 | 107 | 106 | 106 | 106 |
| A doua trecere | >5X1O7 | 2,5X107 | >5X1O7 | >5X107 | >5X107 | >5X107 |
| A treia trecere | >5X107 | >5X1O7 | >5X1O7 | >5X1O7 | >5X107 | >5X107 |
RO 112582 Bl
Toți adulții injectați (54 șoareci) după prima, a doua și a treia trecere au supraviețuit arătând absența reversiei.
B. Puterea protectoare a SAG2: Mutantul SAG2 a fost injectat pe cale intracerebrală unor șoareci și a fost determinată puterea protectoare a acestui mutant prin proba intramusculară de 100 DL a sușei CVS.
Rezultatele obținute sunt raportate în figura 2 care este un grafic ce arată puterea protectoare (5) în ordonate, în funcție de cantitatea mutantului injectat și exprimat în UFP/șoarece (100 g). A fost repetat testul cu mutantul SK, care poseda în poziția 333 o lizină.
S-a constatat ca puterea protectoare a SK și a SAG2 este de 100 %, plecând de la 104 UFP/șoarece.
C. Patogenia lui SAG2 pe cale intracelulară: Mutantul SAG2 a fost injectat șoarecilor, în doze mergând de la 10Ό'5 la 106 UFP/șoarece, și nu s-a constatat mortalitate timp de 28 zile. în paralel, s-a efectuat aceeași experineță cu virusul SAD Berne sau mutantul SK.
Rezultatele sunt raportate în figura 3, care este un grafic ce exprimă procentul de mortalitate (în ordonate) în funcție de cantitatea de mutant injectată pe șoarece (în abcise).
Se constată că mutantul SAG2 nu provoacă mortalitate în timp ce mutantul SK are o slabă putere patogenă reziduală.
D. Patogenia lui SAG2 pe cale intramusculară: se repetă testul de mai sus, dar pe cale intramusculară. Rezultatele obținute sunt raportate într-o figură 4 care dă procentul de mortalitate (în ordonate) în funcție de doza administrată în UFP/șoarece (în abcise).
Se observă că mutantul SAG2 și mutantul SK nu provoacă mortalitate.
Mutanții în conformitate cu prezenta invenție se administrează sub formă de vaccin viu, utilizând metode de administrare care sunt cunoscute pentru vaccinare. Se preferă calea intramusculară sau orală. Acești mutanți sunt diluați într-un vehicul inert care este acceptabil din punct de vedere farmaceutic, cum ar fi, de exemplu, serul fiziologic.
Claims (6)
- Revendicări1. Dublu mutant avirulent al unei sușe SAD a virusului rabic, caracterizat prin aceea că glicoproteina posedă în poziția 333 un aminoacid natural al cărui codon diferă de cel al argininei prin două nucleotide.
- 2. Dublu mutant avirulent, conform revendicării 1, caracterizat prin aceea că aminoacidul din poziția 333 este acidul glutamic.
- 3. Dublu mutant avirulent, conform revendicărilor 1 sau 2, caracterizat prin aceea că este un mutant al sușei SAD Berne.
- 4. Dublu mutant avirulent, conform cu oricare dintre revendicările 1 - 3, caracterizat prin aceea că este dublu mutant al unei sușei SAD Berne depus în Colecția Națională de Culturi de Microorganisme (CNCM) a Institutului Pasteur Franța, sub nr. 1-1238 la data de 9 iulie 1992.
- 5. Procedeu pentru obținerea mutanților dubli, conform cu oricare dintre revendicările 1-4, caracterizat prin aceea că, cuprinde etapele:- selecționarea, pornind de la o sușă SAD a virusului rabic, a mutanților care nu sunt neutralizați de un anticorp monoclonal care neutralizează sușa SAD, dar nu neutralizează sușa TAG I;-izolarea, prin secventarea reginunii 333 a glicoproteinei mutanților selecționați în prima etapă, a unui mutant ce posedă în poziția 333 o lizină;- prepararea unui anticorp monoclonal care neutralizează în același timp sușa SAD și mutantul obținut în etapa a doua, dar nu neutralizează sușa TAG I;- efectuarea unei a doua selecții a mutanților obținuți în prima etapă, cu ajutorul anticorpului monoclonal preparat în etapa a 3-a.
- 6. Vaccin antirabic avirulent, caracterizat prin aceea că este constituit dintrun dublu muatnt avirulent a sușei SAD a virusului rabic, conform cu oricare dintre revendicările 1 - 4, în amestec cu un purtător acceptabil din punct de vedere farmaceutic.
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| FR9208947A FR2693655B1 (fr) | 1992-07-20 | 1992-07-20 | Vaccin antirabique avirulent. |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RO112582B1 true RO112582B1 (ro) | 1997-11-28 |
Family
ID=9432070
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RO93-01010A RO112582B1 (ro) | 1992-07-20 | 1993-07-20 | Dublu mutant avirulent al unei suse sad a virusului rabic, procedeu de obtinere si vaccin |
Country Status (20)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US5853735A (ro) |
| EP (1) | EP0583998B1 (ro) |
| AT (1) | ATE175877T1 (ro) |
| BG (1) | BG61066B1 (ro) |
| BR (1) | BR9302910A (ro) |
| CA (1) | CA2100591C (ro) |
| CZ (1) | CZ283400B6 (ro) |
| DE (1) | DE69323130T2 (ro) |
| FI (1) | FI933210A7 (ro) |
| FR (1) | FR2693655B1 (ro) |
| HR (1) | HRP931065B1 (ro) |
| HU (1) | HU219266B (ro) |
| MA (1) | MA22938A1 (ro) |
| MX (1) | MX9304349A (ro) |
| PL (1) | PL172853B1 (ro) |
| RO (1) | RO112582B1 (ro) |
| RU (1) | RU2128519C1 (ro) |
| SI (1) | SI9300392A (ro) |
| SK (1) | SK280104B6 (ro) |
| TN (1) | TNSN93083A1 (ro) |
Families Citing this family (11)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| BR9915703B1 (pt) * | 1998-11-27 | 2012-09-04 | mutante do vìrus da raiva recombinante, e, vacina anti-rábica atenuada viva. | |
| IL146732A0 (en) | 1999-06-03 | 2002-07-25 | Nippon Suisan Kaisha Ltd | Tricyclic fused heterocycle compounds, process for preparing the same and use thereof |
| US7074413B2 (en) | 2000-03-23 | 2006-07-11 | Thomas Jefferson University | Genetically engineered rabies recombinant vaccine for immunization of stray dogs and wildlife |
| KR20040029377A (ko) * | 2001-07-20 | 2004-04-06 | 더 유니버시티 오브 죠지아 리서치 파운데이션, 인코포레이티드 | 공수병의 예방 접종 및 중추신경계 질환의 유전자 요법을위한 인산화 부위의 핵단백질 돌연변이를 갖는 약독화공수병 바이러스 |
| ATE307606T1 (de) | 2001-10-04 | 2005-11-15 | Ct Voor Onderzoek In Diergenee | Abgeschwächter mutantenstamm eines virus der newcastle-krankheit für eine in ovo impfung und dessen benutzung |
| DE60231821D1 (de) * | 2001-10-10 | 2009-05-14 | Univ Jefferson | Rekombinante tollwut-vakzine und verfahren zu ihrer herstellung und verwendung |
| EP1415665A3 (en) * | 2002-11-01 | 2004-06-30 | ID-Lelystad, Instituut voor Dierhouderij en Diergezondheid B.V. | BHV5 mutants |
| RS51371B (sr) | 2004-07-12 | 2011-02-28 | Thomas Jefferson University, Office Of Technology Transfer | Smeše rekombinantnog rabijes virusa |
| CN101287838B (zh) | 2005-10-14 | 2016-03-30 | 美国政府健康及人类服务部,疾病控制和预防中心 | 狂犬病病毒组合物和方法 |
| FR2944292B1 (fr) | 2009-04-08 | 2013-08-23 | Sanofi Pasteur | Procede de purification du virus rabique |
| RU2694836C1 (ru) * | 2018-12-14 | 2019-07-17 | федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности" (ФГБНУ "ФЦТРБ-ВНИВИ") | Способ получения антигена вируса бешенства для серологической диагностики |
Family Cites Families (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| FR2580176B1 (fr) * | 1985-04-12 | 1988-02-26 | Centre Nat Rech Scient | Vaccin antirabique avirulent |
| DE3526809A1 (de) * | 1985-07-26 | 1987-04-02 | Behringwerke Ag | Tollwut-lebendimpfstoff |
| FR2633832B1 (fr) * | 1988-07-05 | 1991-05-31 | Virbac | Vaccin antirabique avirulent |
-
1992
- 1992-07-20 FR FR9208947A patent/FR2693655B1/fr not_active Expired - Fee Related
-
1993
- 1993-07-14 FI FI933210A patent/FI933210A7/fi not_active Application Discontinuation
- 1993-07-14 CZ CZ931402A patent/CZ283400B6/cs not_active IP Right Cessation
- 1993-07-16 BG BG97964A patent/BG61066B1/bg unknown
- 1993-07-16 EP EP93401843A patent/EP0583998B1/fr not_active Expired - Lifetime
- 1993-07-16 AT AT93401843T patent/ATE175877T1/de active
- 1993-07-16 DE DE69323130T patent/DE69323130T2/de not_active Expired - Lifetime
- 1993-07-19 BR BR939302910A patent/BR9302910A/pt not_active Application Discontinuation
- 1993-07-19 HR HR9208947A patent/HRP931065B1/xx not_active IP Right Cessation
- 1993-07-19 MX MX9304349A patent/MX9304349A/es unknown
- 1993-07-19 SK SK761-93A patent/SK280104B6/sk not_active IP Right Cessation
- 1993-07-19 RU RU93048174A patent/RU2128519C1/ru not_active IP Right Cessation
- 1993-07-19 MA MA23238A patent/MA22938A1/fr unknown
- 1993-07-20 CA CA002100591A patent/CA2100591C/en not_active Expired - Lifetime
- 1993-07-20 HU HU9302091A patent/HU219266B/hu unknown
- 1993-07-20 PL PL93299739A patent/PL172853B1/pl unknown
- 1993-07-20 TN TNTNSN93083A patent/TNSN93083A1/fr unknown
- 1993-07-20 RO RO93-01010A patent/RO112582B1/ro unknown
- 1993-07-20 SI SI9300392A patent/SI9300392A/sl not_active IP Right Cessation
-
1997
- 1997-01-17 US US08/785,616 patent/US5853735A/en not_active Expired - Lifetime
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| MA22938A1 (fr) | 1994-04-01 |
| FR2693655A1 (fr) | 1994-01-21 |
| CZ283400B6 (cs) | 1998-04-15 |
| FR2693655B1 (fr) | 1994-10-14 |
| RU2128519C1 (ru) | 1999-04-10 |
| BG97964A (bg) | 1994-04-29 |
| CA2100591A1 (en) | 1994-01-21 |
| CZ140293A3 (en) | 1994-02-16 |
| HU9302091D0 (en) | 1993-11-29 |
| BR9302910A (pt) | 1994-02-16 |
| FI933210L (fi) | 1994-01-21 |
| TNSN93083A1 (fr) | 1994-03-17 |
| MX9304349A (es) | 1994-06-30 |
| US5853735A (en) | 1998-12-29 |
| PL299739A1 (en) | 1994-01-24 |
| BG61066B1 (bg) | 1996-10-31 |
| PL172853B1 (pl) | 1997-12-31 |
| DE69323130D1 (de) | 1999-03-04 |
| DE69323130T2 (de) | 1999-06-17 |
| EP0583998B1 (fr) | 1999-01-20 |
| HRP931065A2 (en) | 1995-02-28 |
| SK280104B6 (sk) | 1999-08-06 |
| HU219266B (en) | 2001-03-28 |
| FI933210A7 (fi) | 1994-01-21 |
| CA2100591C (en) | 2003-02-18 |
| HRP931065B1 (en) | 1999-12-31 |
| EP0583998A1 (fr) | 1994-02-23 |
| SI9300392A (en) | 1994-06-30 |
| HUT69961A (en) | 1995-09-28 |
| FI933210A0 (fi) | 1993-07-14 |
| SK76193A3 (en) | 1994-06-08 |
| ATE175877T1 (de) | 1999-02-15 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Tuffereau et al. | Arginine or lysine in position 333 of ERA and CVS glycoprotein is necessary for rabies virulence in adult mice | |
| Badrane et al. | Evidence of two Lyssavirus phylogroups with distinct pathogenicity and immunogenicity | |
| Bourhy et al. | Antigenic and molecular characterization of bat rabies virus in Europe | |
| Morrison et al. | Protection of guinea pigs from Lassa fever by vaccinia virus recombinants expressing the nucleoprotein or the envelope glycoproteins of Lassa virus | |
| Lafay et al. | Vaccination against rabies: construction and characterization of SAG2, a double avirulent derivative of SADBern | |
| Morimoto et al. | Genetic engineering of live rabies vaccines | |
| Dietzschold et al. | Antigenic diversity of the glycoprotein and nucleocapsid proteins of rabies and rabies-related viruses: implications for epidemiology and control of rabies | |
| US4810634A (en) | Pseudorabies virus mutants incapable of producing glycoprotein X | |
| Olmsted et al. | Sindbis virus mutants selected for rapid growth in cell culture display attenuated virulence in animals | |
| Schumacher et al. | SAG-2 oral rabies vaccine | |
| Kuwert et al. | Rabies in the Tropics | |
| US5853735A (en) | Avirulent anti-rabies vaccine | |
| Vasudevacharya et al. | The NS and capsid genes determine the host range of porcine parvovirus | |
| Saijo et al. | Nucleotide sequence of thymidine kinase gene of sequential acyclovir‐resistant herpes simplex virus type 1 isolates recovered from a child with Wiskott–Aldrich syndrome: evidence for reactivation of acyclovir‐resistant herpes simplex virus | |
| Schoepp et al. | Directed mutagenesis of a Sindbis virus pathogenesis site | |
| Greene et al. | Specific thymus-derived (T) cell recognition of papova virus-transformed cells. | |
| Turner | Humoral and cellular immune responses of mice to rabies and smallpox vaccines | |
| Juto et al. | The first human isolate of Puumala virus in Scandinavia as cultured from phytohemagglutinin stimulated leucocytes | |
| DK170393B1 (da) | Avirulent rabies-vaccine samt avirulent mutant af stammen SAD Berne | |
| George 4th et al. | Identification of a T-cell epitope on the circumsporozoite protein of Plasmodium vivax | |
| KR20150138956A (ko) | 재조합 광견병 바이러스, 이를 포함하는 광견병 예방용 백신 조성물 및 야외 광견병 바이러스와의 감별을 위한 멀티플렉스 rt-pcr | |
| Mathews* et al. | Specificity of the murine T helper cell immune response to various alphaviruses | |
| Shi et al. | Study on an attenuated rabies virus strain CTN181-3 | |
| US5128128A (en) | Virus vaccine | |
| Mathews et al. | Murine T-helper cell immune response to recombinant vaccinia—Venezuelan equine encephalitis virus |