AT397803B - Humaner monoklonaler antikörper und hybridom zur herstellung desselben - Google Patents

Description

AT 397 803 B

Die vorliegende Erfindung betrifft einen humanen monoklonalen Antikörper auf Pseudomonas aeruginosa (nachfolgend als "P. aeruginosa" bezeichnet) sowie dessen Herstellung und Verwendung. Insbesondere betrifft sie einen humanen monoklonalen Antikörper, der ein Oligosaccharid einer äusseren Kernkomponente des Lipopolysaccharids von P. aeruginosa erkennen kann, welches verschiedenen Stämmen von P. aeruginosa unterschiedlicher Serotypen gemeinsam ist, wobei der Antikörper Bindungsvermögen an P. aeruginosa von zwei oder mehr Serotypen aufweist. Die Erfindung betrifft ebenfalls ein Hybridom, das den Antikörper hersteilen kann, sowie ein Verfahren zur Herstellung des Antikörpers. Der erfindungsgemässe humane monoklonale Antikörper wird zur Verhinderung und Behandlung infektiöser Krankkeiten, die durch P. aeruginosa hervorgerufen werden, verwendet.

Die infektiöse Krankheiten hervorrufenden Bakterienarten, d.h. prophlogistische Bakterien, haben sich mit Entwicklung und Wechsel klinisch verwendeter Antibiotika verändert. Als Ergebnis davon haben sich infektiöse Krankheiten, die durch die Bakterien hervorgerufen werden, welche im allgemeinen nur eine niedrige Pathogenität oder Virulenz aufwiesen, vermehrt. Mithin gehören P. aeruginosa derzeit zu den wesentlicheren pathogenen Bakterien, die infektiöse Krankheiten hervorrufen, deren ernsthafte Symptome oft zum Tod von Patienten führen, insbesondere dann, wenn deren Immunität infolge fortgesetzter Verabreichung von Immunosupressiva gering ist, und zwar bei Patienten, die Krebs haben oder Verbrennungen oder dergleichen erlitten haben.

Unter den verschiedenen präventiven oder therapeutischen Methoden gegen bakterielle Infektionen ist die Chemotherapie unter Verwendung von Antibiotika oder antimikrobiellen Mitteln am bedeutendsten. Tatsächlich wurden hierzu verschiedene Antibiotika entwickelt, einschliesslich Streptomycin, Kanamycin, Penicillin, Cephalosporin etc., die gegen fast alle gram-positiven Bakterien (z.B. Staphylococci) und gramnegative Bakterien (z.B. E. coli) wirken und einen deutlichen klinischen Effekt hervorrufen. Es gibt jedoch nur wenige medizinische Produkte, die gegen P. aeruginosa wirksam sind. Auch diese medizinischen Produkte wirken auf P. aeruginosa nur bakteriostatisch und nicht bakteriozid. Sie können daher das Wachstum von P. aeruginosa verhindern, zeigen jedoch klinisch keinen bemerkenswerten therapeutischen Effekt.

Eine weitere präventive oder therapeutische Methode stellt die Antikörper-Therapie dar, die die Verabreichung von Immunoglobulin umfasst. Diese Methode wird oft in Kombination mit einer Chemotherapie durchgeführt und lenkt heute grosse Aufmerksamkeit als Ersatz für eine Chemotherapie auf sich. Ein Serum mit hohem Antikörpertiter kann durch aktive Immunisierung von Tieren, wie Pferden oder Kaninchen, erhalten werden; die Antikörper-Therapie kann durch Verabreichung eines solchen Serums erfolgen. In der Tat wurden die damit zu erzielenden bemerkenswerten therapeutischen Wirkungen an experimentellen Infektionen an verschiedenen Tieren bestätigt. Von Diphtherietoxin und Vipertoxin weiss man, dass die Antikörper-Therapie unter Verwendung von Seren, die von Tieren stammen, auch beim Menschen äusserst wirksam ist. Die Einführung eines heterogenen Proteins, das von Tieren stammt, in einen menschlichen Körper, führt jedoch zu einem ernsthaften Nebeneffekt, wie Anaphylaxe.oder anderen allergischen Reaktionen. Es ist daher äusserst wünschenswert, ein Immunoglobulin vom Menschen mit einem hohen Antikörpertiter gegen Bakterien zu entwickeln, das einen deutlichen therapeutischen Effekt gegen bakterielle Infektionen zeigt.

Konventionelle Immunoglobulin-Präparationen vom Menschen gewinnt man durch Sammeln von Blut von gesunden Personen oder von bakterien-infizierten Patienten, wobei das Blut einer Fraktionierung unterworfen wird, um eine Immunoglobulinfraktion zu erhalten; diese Immunogiobulinfraktion wird gereinigt und durch Zugabe von Ethylenglykol agglutinierende Materialien daraus entfernt; darauf folgt eine Behandlung mit Protease, Sulfonierung, DEAE-Säulenchromatografie etc.; anschliessend wird das sich ergebende Produkt zu intramuskulär oder intravenös injizierbaren Präparationen formuliert. Diese Präparationen erweisen sich als vorteilhaft, indem sie nicht zu Anaphylaxe oder anderen Nebeneffekten führen, wie dies bei der Verabreichung von Immunoglobulin aus Tieren beobachtet wird. Sie weisen jedoch einige andere Nachteile auf. Einer der Nachteile ist, dass ihr Antikörpertiter gegen Bakterien niedrig ist, so dass eine ausreichende therapeutische Wirkung nicht zwingend erzielt werden kann. Ein weiterer Nachteil ist, dass es schwierig ist, die Präparationen in stabiler Form mit einem hohen Antikörpertiter in grossen Mengen zur Verfügung zu stellen, da sie durch das Sammeln von Blut von gesunden Personen oder von bakterien-infizierten Patienten gewonnen werden, und das konstante und kontinuierliche Gewinnen von Seren mit einem hohen Antikörpertiter ist ziemlich schwierig. Ein weiterer Nachteil besteht darin, dass sie mit Hepatitisvirus, z.B. HB-Virus), Adult-T-Zellen-Leukämie-Virus (ATLV, HTLV) etc. kontaminiert sein können, da als Ausgangsmaterial Blut von einer Vielzahl unbekannter Personen erhalten wird. Um diese Nachteile zu überwinden, ist die Herstellung eines humanen monoklonalen Antikörpers in hohem Masse wünschenswert, der zur Prophylaxe und Therapie bakterieller Infektionen verwendet wird und herkömmliche Immunoglobulin-Präparationen vom Menschen sowie monoklonale Antikörper von Mäusen ersetzen kann. 2

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Wenn ein Antikörper an die Oberfläche einer Bakterienzeile gebunden wird, beschleunigt sich die Phagocytose einer Makrophase auf der Bakteienzelle (d.h. Beschleunigung der Phagocytose infolge Opsonierung), oder es erfolgt die Spaltung der Bakterienzelle durch ein Komplement. Als Target-Antigen auf der Oberfläche der Bakterienzelle von P. aeruginosa kennt man Lipopolysaccharid (LPS), äussere Membranproteine, Flageilum, Pilus etc..

Sawada et al berichteten, dass eine grössere Menge an monoklonalen Mäuse-Antikörpern, die ein äusseres Membranprotein erkennen, zur Bekämpfung von Bakterien erforderlich ist, verglichen mit einem monoklonalen Mäuse-Antikörper, der LPS erkennt (J. Infect. Dis. 150, 570-576 (1984)). LPS besteht aus O-Polysaccharid, das ein O-Antigen darstellt, aus einem äusseren Kernoligosaccharid, das verschiedenen Spezies in gewissem Masse gemeinsam ist, aus einem inneren Kernoligosaccharid, das im allgemeinen allen Enterobakterien fast gemeinsam ist, sowie aus Lipid A. Das O-Polysaccharid-Antigen, das sich an der äussersten Oberfläche einer Bakterienzelle befindet, besteht aus sich wiederholenden Einheiten aus zwei bis fünf Zuckerresten, und seine Struktur schwankt in starkem Masse. Siehe Fig. 1. Die Strukturen fast aller O-Antigene von Standard-Serotyp-Stämmen von P. aeruginosa sind bereits bestimmt worden (Acta Microbiol. Hung. 35, 3-24 (1988)).

Da die Strukturbestimmung von O-Antigenen durch chemische Analyse zeitaufwendig und mühsam ist, werden Antiseren oder monoklonale Mäuse-Antikörper gegen die O-Antigene aus den Standardstämmen zur Klassifizierung der Stämme von P. aeruginosa verwendet, ln anderen Worten, ein unbekannter Stamm von P. aeruginosa wird in Übereinstimmung mit der immunologischen Reaktivität mit bekannten Antikörpern oder Antiseren klassifiziert. Die Klassifizierung kennt man als Serotyp und typische Beispiele der Serotyp-Klassifizierung sind die folgenden: Typen 1 bis 17 gemäss der Klassifizierung nach Homma et al (Japan. J. Exp. Med. 44, 1 (1974)); Typen 1 bis 7 gemäss der Klassifizierung nach Fisher et al (J. Bacteriol., 98, 835 (1969)); Typen A bis M gemäss der Klassifizierung durch das Serotyping Komitee für die japanische Pseudomonas Aeruginosa Gesellschaft (nachfolgend als "Japanisches Komitee” bezeichnet) (Japan. J. Exp. Med. 45, 329 (1976)); Typen 1 bis 17 gemäss der Klassifizierung durch das International Antigenic Typing System (IATS) (Int. J. Syst. Bacteriol. 33, 256-264 (1983)) etc. Diese Klassifizierungen und ihre gegenseitigen Beziehungen sind in Tabelle 1 gezeigt (Japan. J. Exp. Med., 46, 329 (1976)). TABELLE 1

Serotyp-Klassifizierung von P. aeruginosa Japanisches Homma et al 1974 IATS 1983 Fisher et al 1969 Komitee 1976 A 1 3 - B 2, 7,13,16 2, 5,16 3,7 C 3 8 6 D 4 9 - E 5 11 2 F 6 4 - G 8 6 1 H 9 10 5 I 10 1 4 J 11 15 - K 12 13 - L 14 - - M 15,17 - - - - 7, 12,14,17 -

Es ist bekannt, dass ein gegenüber einem bestimmten O-Antigen spezifischer Antikörper eine starke präventive oder therapeutische Wirkung auf Infektionen zeigt, die durch P. aeruginosa des Serotyps hervorgerufen werden, zu dem das genannte O-Antigen gehört, jedoch keine Wirkung gegen P. aeruginosa eines jeden anderen Serotyps zeigt.

Die Verwendung einer Mischung aus 13 oder 17 monoklonalen Antikörpern, die jeweils für P. aeruginosa-Stämme von 13 oder 17 Serotypen verantwortlich sind, würde zur Behandlung von Infektionen wirksam sein, die durch jeden der Stämme hervorgerufen werden. Die Herstellung einer solchen Mischung ist jedoch sehr mühsam. Vom praktischen Standpunkt aus ist die klinische Verwendung einer solchen 3

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Präparation schwierig durchzuführen.

Bisher wurden verschiedene Untersuchungen an experimentell infizierten Tieren und klinische Studien vorgenommen, wobei sich herausstellte, dass verschiedene Antiseren und monoklonale Antikörper, die spezifisch auf Kernglycolipid gram-negativer Bakterien reagieren, gram-negative Infektionen wirksam verhindern, insbesondere den Endotoxinschock (WO 8404458; WO 8501659; EP-A-0174204; JA-A-61 -130300; Mutharia et al.: Inf. Immun., 45, 631-636 (1984); Teng et al: Proc. Natl. Acad. Sei., USA, 82, 1790-1794 (1985); Gigliotti & Shenep: J. Inf. Dis., 151, 1005-1011 (1985); Braude et al: J. Inf. Dis., 136 (Suppl), S167-173 (1977); Nellesand Niswander: Inf. Immun., 46, 677-681 (1984); Pollack et al: J. Clin. Invest., 72,1874-1881 (1983); Young et al: Clin. Res., 30,522A (1982); Young et al: Clin. Res., 32,518A (1984)).

Die vorgenannten Antiseren oder monoklonalen Antikörper, die auf der Basis von Kernglycolipid-Antigen hergestellt werden, werden an verschiedene gram-negative Bakterien gebunden. Dies zeigt offensichtlicht, dass sich das verbundene Epitop in einer inneren Kernkomponente, umfassend Heptose, KDO etc., oder in der Lipid-A-Komponente befindet.

Sawada et al erhielten einen monoklonalen Antikörper, der ein Kernantigen von P. aeruginosa erkennt (Annual Reports of the 21 st Meeting of the Japan Pseudomonas Aeruginosa Society 16, 1987). Tierversuche zeigten jedoch, dass der monoklonale Antikörper Versuchstiere vor Infektionen nicht wirksam schützte und gegen die innere Kern- oder Lipid-A-Komponente nur schwach wirksam ist, um die Tiere vor den genannten Infektionen zu schützen.

Wie vorstehend festgestellt, sind sowohl ein monoklonaler Antikörper gegen ein äusseres Membranprotein als auch konventionelle Antikörper gegen einen LPS-Kern therapeutisch nicht wirksam, obwohl deren Bindungsspektren in P. aeruginosa sehr breit sind. Andererseits besitzt ein monoklonaler Antikörper auf O-Antigen nur eine sehr eingeschränkte Verwendbarkeit, weil er nur auf P. aeruginosa,das einen relevanten Serotyp aufweist, wirkt. Infolgedessen ist die Entwicklung von Immunoglobulin-Präparationen, die breitere Bindungsspektren und signifikante präventive und therapeutische Wirkung auf P. aeruginosa-lnfektionen aufweisen, in hohem Masse wünschenswert.

Die Lösung der vorgenannten Aufgabe besteht darin, ein allen Stämmen von P. aeruginosa gemeinsames Antigen aufzufinden, und einen humanen monoklonalen Antikörper zu entwickeln, der das gemeinsame Antigen erkennt, ein breites Bindungsspektrum aufweist und gegenüber durch P. aeruginosa verschiedener Serotypen hervorgerufenen Infektionen prophylaktisch und therapeutisch wirksam ist.

Es wurden grosse Anstrengungen unternommen, um ein Verfahren zur Herstellung eines humanen monoklonalen Antikörpers, der zur Verhinderung und Behandlung von durch P. aeruginosa hervorgerufenen infektiösen Krankheiten wirksam ist, sowie ebenfalls ein Verfahren zur Herstellung von humanen Immunoglobulin-Präparationen mit hohem Titer, die den monoklonalen Antikörper enthalten, in industriellem Massstab zur Verfügung zu stellen. Die Erfinder der vorliegenden Anmeldung haben ihr besonderes Augenmerk auf eine Oligosaccharid-Komponente des äusseren Kerns in LPS, die P. aeruginosa gemeinsam ist, gerichtet, und versucht, eine Zellinie zur Herstellung eines humanen Antikörpers, der die genannte Oligosaccharid-Komponente erkennt, unter Verwendung von B-Lymphocyten, bereitzustellen. Als Ergebnis dieser Anstrengungen ist es nunmehr gelungen, einen humanen monoklonalen Antikörper zu erhalten, der das äussere Kernoligosaccharid, das eine spezifische chemische Struktur besitzt und zur Verhinderung und Behandlung von durch P. aeruginosa verschiedener Serotypen hervorgerufenen infektiösen Krankheiten wirksam eingesetzt wird, in spezifischer Weise erkennt. Der erfindungsgemässe monoklonale Antikörper ist dadurch gekennzeichnet, dass er an Stämme von P. aeruginosa, die zu den Serotypen A, F, G, Η, K und M gehören, gebunden wird, und unterscheidet sich von den bekannten serotyp-spezifischen monoklonalen Antikörpern, die O-Antigen-Polysaccharid erkennen und nur an einen spezifischen Stamm von P. aeruginosa eines hervorgehobenen Serotyps gebunden werden können. Ausserdem wird der erfindungsgemässe monoklonale Antikörper an E. coli-Stämme des Serotyps 026 gebunden. Insbesondere sind die Antigendeterminante oder das Epitop für den erfindungsgemässen monoklonalen Antikörper in der Nähe von Rhamnose- oder Galactosamin-Resten in der äusseren Kenrkomponente von LPS von P. aeruginosa positioniert. Der erfindungsgemässe monoklonale Antikörper ist auch dadurch gekennzeichnet, dass er prophylaktische und therapeutische Wirksamkeit bei experimenteil infizierten Mäusen zeigt.

Die bekannten monoklonale Antikörper gegen den Kern von LPS werden an eine Vielzahl von gramnegativen Bakterien gebunden, was nahelegt, dass deren Epitope im inneren Kern oder der Lipid-A-Komponente von LPS angeordnet sind. Die prophylaktische Wirksamkeit der bekannten Antikörper ist bei experimentell infizierten Tieren relativ niedrig.

Wie aus dem vorstehenden verständlich ist, unterscheidet sich der monoklonale Antikörper gemäss der vorliegenden Erfindung deutlich dadurch von den vorgenannten Anti-Kernglycolipid-Antikörpern, dass erste-rer mit der äusseren Kernkomponente reagiert, welche den Stämmen von P. aeruginosa in hohem Masse gemeinsam ist, und dass ersterer einen bedeutenden prophylaktischen und therapeutischen Effekt bei 4

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Der von Sawada et al (siehe oben) hergestellte humane monoklonale Antikörper, der ein Kernantigen von P. aeruginosa erkennt, wird zu 75 % an P. aeruginosa des Serotyps A, zu 100 % an B, 0 % an E, 43 % an G, 100 % an H und 60 % an I gebunden und unterscheidet sich im Bindungsspektrum vom monoklonalen Antikörper gemäss der vorliegenden Erfindung. Somit erkennt der Antikörper nach Sawada et al ganz offensichtlich ein Epitop, das vom Epitop des Antikörpers der Erfindung unterschiedlich ist. Andererseits wurde beim Antikörper nach Sawada et al gezeigt, dass dieser keine prophylaktische Wirksamkeit bei experimentell infizierten Tieren aufwies. Demzufolge unterscheidet sich der monoklonale Antikörper der vorliegenden Erfindung, der die äussere Kernkomponente von LPS von P. aeruginosa erkennt, vom humanen monoklonalen Anti-Kern-Antikörper nach Sawada et al.

Demgemäss ist es ein erstes Ziel der vorliegenden Erfindung, einen humanen monoklonalen Antikörper bereitzustellen, der ein Oligosaccharid der äusseren Kernkomponente von LAS von P. aeruginosa erkennen kann und an Stämme von P. aeruginosa verschiedener Serotypen mit hoher Frequenz gebunden wird und zur Verhinderung und Behandlung infektiöser, durch P. aeruginosa hervorgerufener Krankheiten auf wirksame Weise eingesetzt wird. Ein anderes Ziel der Erfindung ist es, eine Zellinie vom Menschen bereitzustellen, die zur kontinuierlichen Herstellung des genannten monoklonalen Antikörpers befähigt ist. Ein weiteres Ziel der Erfindung ist es, Immunoglobulin-Präparationen mit hohem Titer zur Verhinderung oder Behandlung von durch P. aeruginosa hervorgerufenen infektiösen Krankheiten bereitzustellen, welche mindestens einen erfindungsgemässen monoklonalen Antikörper enthalten. Noch ein Ziel der Erfindung ist es, ein Verfahren zur Herstellung des monoklonalen Antikörpers und der genannten Zellinie vom Menschen zur Verfügung zu stellen. Diese und andere Ziele der vorliegenden Erfindung werden für den Fachmann aus dem vorstehend gesagten und der nachfolgenden Beschreibung erkennbar.

Der monoklonale Antikörper der Erfindung, der das Oligosaccharid der äusseren Kernkomponente von LPS von P. aeruginosa erkennt, soll einen monoklonalen Antikörper vom Menschen bedeuten, der durch einen einzigen, einen Antikörper erzeugenden Klon hergestellt wird, wobei der Antikörper befähigt ist, sich an Stämme von P. aeruginosa verschiedener Serotypen, insbesondere an Serotyp A, G, F, Η, K und M, mit hoher Frequenz zu binden.

Der erfindungsgemässe monoklonale Antikörper kann beispielsweise durch die folgenden Vorgehensweisen hergestellt werden. B-Lymphocyten vom Menschen, die sensibilisiert werden mit (1) P. aeruginosa (lebende Bakterien oder durch Formalin oder Erhitzen getötete Bakterien) oder (2) der R-Mutante von P. aeruginosa, die kein O-Antigen-Polysaccharid aufweist, oder (3) vorzugsweise LPS, abgeleitet von der R-Mutante, werden einer Zellfusion mit Myelomzellen oder B-Lymphoplastoidzellen unterworfen, worauf man das sich ergebende Hybridom kontinuierlich in vitro wachsen lässt, wodurch eine Zellinie erzeugt wird, die zur kontinuierlichen Herstellung des angestrebten Antikörpers befähigt ist. Die erzeugte Zellinie wird in vitro kultiviert, und der im Kulturmedium sekretierte Antikörper wird extrahiert und gereinigt, um den angestrebten Antikörper in grossen Mengen zu erhalten.

Der hier verwendete Serotyp stimmt mit der Klassifizierung gemäss dem Japanischen Komitee überein und wird auf der Grundlage des Unterschiedes in der immunologischen Reaktion unter Verwendung eines Antiserums oder eines monoklonalen Mäuse-Antikörpers, welche gegenüber dem Standardstamm von P. aeruginosa des jeweiligen Serotyps spezifisch reaktiv sind, bestimmt. LPS steht für ein Lipopolysaccharid und stellt einen Hauptbestandteil der äusseren Membran gramnegativer Bakterien dar. LPS besteht aus (1) einem Glycolipid, bezeichnet als Lipid A, (2) einem inneren Kernoligosaccharid, enthaltend 2-Keto-3-desoxyoctonsäure, Heptose, Ethanolamin,

Phosphat etc., (3) einem äusseren Kernoligosaccharid, bei dem sich die Bestandteile, abhängig von der Spezies, unterscheiden, und das, soweit P. aeruginosa betroffen ist,Glucose, Rhamnose, Galactosamin, Alanin etc., enthält, und (4) einem Polysaccharid, bezeichnet als O-Antigen, das den Serotyp bestimmt, wobei das genannte Lipid A an die genannten inneren und äusseren Kernkomponenten und das genannte O-Antigen an die genannte äussere Kernkomponente gebunden sind.

Das äussere Kernoligosaccharid von LPS, welches ein vielen Stämmen von P. aeruginosa gemeinsames Antigen darstellt, ist an der Stelle angeordnet, man die das O-Polysaccharid gebunden wird. Auf diese Weise wird das äussere Kernoligosaccharid in unmittelbarer Nähe des O-Polysaccharids, das an der äussersten Aussenseite der Bakterienzellenoberfläche angeordnet ist, positioniert. 5

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Bekanntlich variieren chemische Struktur und Zusammensetzung des äusseren Kernoligosaccharids in Abhängigkeit der Stämme (Wilkinson, Rev. Infect. Dis. 5, S941-S949 (1983)). Die Bestandteile des Oligosaccharids sind jedoch vielen Stämmen von P. aeruginosa gemeinsam und umfassen Glucose, Rhamnose, Galactosamin, Alanin etc. als Hauptbestandteile.

Der hier verendete Begriff "monoklonaler Antikörper" bedeutet einen Antikörper, der eine einheitliche molekulare Struktur aufweist und durch einen einzigen Antikörper erzeugenden Klon hergestellt wird, welcher seinerseits durch Zellfusion (Nature, 256, 495 (1975)) oder EB-Virus-Transformation (Proc. Natl. Acad. Sei. USA, 70,190 (1973)) erhalten werden kann.

Die Herstellung des humanen monoklonalen Antikörpers gemäss der Erfindung umfasst die folgenden Stufen: (1) Herstellung von B-Lymphocyten vom Menschen, die mit einem Antigen sensibilisiert werden; (2) Herstellung der Zellinie, die den spezifischen monoklonalen Antikörper durch Immortalisieren der in (1) hergestellten Zellen erzeugt; (3) Kultivierung der in (2) hergestellten Zellinien; (4) Reinigung des monoklonalen spezifischen Antikörpers aus der in (3) erhaltenen Kultur; und (5) Herstellung einer Immunogiobuiin-Präparation mit hohem Titer, welche den in (4) gereinigten spezifischen monoklonalen Antikörper enthält.

Jede dieser Stufen wird im folgenden näher erläutert. STUFE 1:

Als B-Lymphocyten vom Menschen können Lymphocytenzellen vom Menschenverwendet werden, die einen Antikörper auf das äussere Kernoligosaccharid von LPS von P. aeruginosa produzieren, wobei die Lymphocyten durch Zentrifugation unter Verwendung einer Lymphocyten-Trennfiüssigkeit, wie Lympho-prepR oder Mono-Poly-Resolving-MediumR (Row Lab.) aus peripherem Blut abgetrennt werden können. Es können auch B-Lymphocyten verwendet werden, die aus Geweben oder Organen (z.B. Lymphknoten, Milz), die für Diagnose- oder Therapiezwecke extrahiert wurden, oder aus dem Blut der Nabelschnur oder dergleichen stammen. Es ist wünschenswert, die Zellen von Personen zu gewinnen, die in der Vergangenheit mit P. aeruginosa infiziert wurden und deren Zellen durch die Infektion sensibilisiert sind. Geeignete Personen, von denen die Zellen gewonnen werden können, kann man durch vorheriges Messen des Antikörpertiters ihrer Seren auswählen, welcher gegen mit Formalin behandelte P. aeruginosa-Zellen oder gegen von P. aeruginosa abgeleitetes LPS erhoben worden ist. Alternativ können B-Lymphocyten vom Menschen von beliebigen Personen, ungeachtet ihrer Krankengeschichte in der Vergangenheit, erhalten werden. Solche Lymphocyten werden vor dem Einsatz zur Zellfusion mit mit Formalin behandelten P. aeruginosa oder vorzugsweise mit von P. aeruginosa abgeleitetem LPS vermischt. Das heisst, durch Formalinbehandlung abgetötete P. aeruginosa oder vorzugsweise LPS aus P. aeruginosa werden den B-Lymphocyten alss Antigen zugefügt. Ausserdem können Lösungen, die Lymphokine enthalten, wie B-Zellen-Proliferationsfaktoren und B-Zellen-Differenzierungsfaktoren (z.B. Pflanzenlectine, wie Pokeweed-Mitogen (PWM), Bakterienkomponenten, wie Cowan l·, Human-Lymphocyt-Mischkultur, Milz, Thymus oder eine Blutzellenkultur aus der Nabelschnur) zu den B-Lymphocyten vom Menschen zur in vitro-Sensibilisierung zugegeben werden, worauf Proliferation und Differenzierung erfolgen, um antikörperproduzierende Zeilen zu ergeben. Die auf diese Weise erhaltenen B-Lymphocyten vom Menschen ein Antikörper-Molekül auf der Zelloberfläche auf und können für begrenzte Zeit eine geringe Menge an Antikörper freisetzen, sie sind jedoch nicht unsterblich. STUFE 2:

Um die vorstehenden, sensibilisierten B-Lymphocyten vom Menschen in kontinuierlich proliferierbare, unsterbliche Zellinien umzuwandeln, werden die sensibilisierten Human-Lymphocyten und Myelomzellen in Gegenwart von Polyethylenglykol einer Zellfusion unterworfen. Die verwendeten Myelomzellen sind Hypox-anthin-Guanin-Phosphoribosyl-Transferase (HGPRT)-Mangelmutanten (z.B. P3X63-Ag 8 (P3), P3X63-Ag 8.653), die von Mäuse-Myelomzellen stammen, HGPRT-Mangeimutanten, die von der Human-Myelomzelle U-266 stammen, HGPRT-Mangeimutanten, die von einer Maus-Human-Heteromyelomzelle stammen, die durch Zellfusion zwischen Mäuse- und Human-Myelomzellen oder einer Maus-Myelomzelle, wie SHM D-33, und einer Human-Lymphocyten-B-Zelle erhalten wird. HGPRT-Mangeimutanten, die von Human-B-Lympho-blastoidzellen stammen, können anstelle von Myelomzellen eingesetzt werden.

Das verwendete Polyethylenglykol (PEG) kann beispielsweise PEG 1000 bis 6000 in einer Konzentration von 30 bis 50 % (G/V) sein. Die Fusionseffizienz kann durch Inkorporation von Lectin, Poiy-L-Lysin, 6

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Dimethylsulfoxid etc., gesteigert werden.

Die Fusion kann beispielsweise in deseiben Weise,wie von Köhler et al (Nature, 256, 495 (1975)) beschrieben, durchgeführt werden, wobei Mäusezellen fusioniert werden, um ein einen monoklonalen Mäuse-Antikörper erzeugendes Hybridom zu erhalten. Die sensibilisierten Human-Lymphocyten und HGPRT-defizienten Myelomzellen oder Human-Maus-Heteromyelomzellen werden beispielsweise in einem Verhältnis von 3 bis 1:1 miteinander vermischt, 45 % (G/V) PEG 1500 bis 6000 werden anteilweise während 0,5 bis 1 Minute zugefügt, und die sich ergebende Mischung 0,5 bis 3 Minuten lang stehen gelassen. Zu dieser Mischung werden 10 bis 50 ml eines Kulturmediums, das kein Serum enthält, während 5 bis 10 Minuten zugegeben, anschliessend werden 2 ml FCS zugefügt und die Mischung bei 37°C 10 bis 60 Minuten lang inkubiert. Nach Zentrifugieren wird frisches Kulturmedium zugefügt, um eine Zellkonzentration von 105 bis lO^/ml einzustellen. Eine Mikroplatte mit 96 Vertiefungen wird mit der auf diese Weise erhaltenen Zellsuspension inokuliert, und zwar mit 2 x 104 bis 2 x 10s Zellen pro Vertiefung. Am nächsten Tag wird die halbe Menge durch ein Hypoxanthin-Aminopterin-Thymidin-haltiges Medium (HAT-Medium) oder ein Hypoxanthin-Azaserin-haltiges Medium (HAZ-Medium) ersetzt, die Kultivierung wird bei 32 bis 37°C unter 5 % CO2 durchgeführt. Das Kulturmedium wird während ungefähr 10 bis 20 Tagen durch HAT-Medium oder HAZ-Medium und anschliessend während ungefähr 3 bis 5 Tagen durch ein Hypoxanthin-Thymidin-haltiges Medium (HT-Medium) oder ein Hypoxanthin-haltiges Medium (H-Medium) ersetzt. Der Ersatz erfolgte auf der Basis der halben Menge in Intervallen von drei Tagen während zwei oder drei Wochen, um eine proliferative Kolonie, d.h. ein Hybridom, zu erhalten. Es ist ebenfalls möglich, ein Hybridom durch die kombinierte Verwendung von Metabolismusinhibitoren ohne Einsatz einer HGPRT-Mangelmutante zu selektieren.

Die Antikörpertiter des Kulturmediums gegen 17 Stämme von durch Formalinbehandlung abgetötete P. aeruginosa oder gegen ihre LPS, wobei die genannten Stämme eine Liste von 17 Serotypen verzeichnen, werden mittels ELISA oder Radioimmunoassay gemessen, und die angestrebte Zelle, die den spezifischen Antikörper auf die äussere Kernkomponente von LPS von P. aeruginosa erzeugt, wird mit Hilfe der Western-Blotting-Methode selektiert. Das Klonen wird zwei- oder dreimal mittels der limitierenden Verdünnungsmethode oder der Agarosemethode wiederholt, um eine stabile Zelllinie mit einer hohen Proliferationsrate und einer hohen Produktion des spezifischen Antikörpers zu erhalten.

Die aus sensibilisierten Human-B-Lymphocyten hergestellten Zelllinien gemäss dem Zellfusionverfahren (Hybridomverfahren) können kontinuierlich proliferiert werden und erzeugen den spezifischen Antikörper in stabiler Form in einer grossen Menge. STUFE 3:

Die auf diese Weise erhaltenen Hybridome (0,5 bis 5 x 105 Zellen/ml) werden in einer beruhigten oder bewegten Kultur unter Verwendung eines üblichen Kulturmediums für tierische Zellen in einem Gefäss, wie einer Zellkulturflasche oder -platte,mit Hilfe eines CO2-Inkubators bei 32 bis 37°C unter 2 bis 10 % CO2 kultiviert. Insbesondere bei Kulturen in grossem Massstab können ein Kolbenfermenter, ein Hohifasersy-stem oder dergleichen, wie sie für tierische Zellen konstruiert werden, eingesetzt werden. Das übliche Kulturmedium kann beispielsweise ein Medium (z.B. RPMI1640, Eagle's MEM), enthaltend 2 bis 20 % Serum von Rinderfötus, Kalb, Rind, Pferd, vom Menschen oder dergleichen, ein serumfreies Medium, enthaltend für das Zellwachstum erforderliche Zusatzstoffe (z.B. Insulin, Transferrin, Ethanolamin, Selenit, Rinderalbumin, Lipid) oder dergleichen sein.

Die Kultivierung des Hybridoms kann ebenso anstelle der vorgenannten in vitro-Kultivierung erfolgen, indem man intraperitoneal impft und das Hybridom in Tieren, wie einer nackten Maus, züchtet. Werden eine Maus oder eine nackte Maus herangezogen, werden 0,5 bis 2,5 x 107 Zellen pro Maus geimpft. Vorzugsweise wird Pristane (2,6,10,14-Tetramethyl-pentadecan) oder Anti-Asialo-GMi-Antikörper vor der Impfung verabreicht. Bestrahlung mit Röntgenstrahlen oder Milzextraktion können ebenfalls für den Erfolg der Impfung hilfreich sein. STUFE 4:

Die Reinigung des Antikörpers kann nach konventionellen biochemischen Verfahren erfolgen (z.B. Ammoniumsulfatfällung, Ethanolfällung, PEG-Fraktionierung, lonenaustauschchromatografie, Gelfiltration, Af-finitätschromtografie, HPLC, Elektrophorese). Beim Reinigungsverfahren sollte darauf geachtet werden, dass eine Agglutinierung oder Absenkung der Antikörperaktivität vermieden werden. Zu diesem Zweck kann Human-Serumalbumin (HSA) in einer Menge von 0,05 bis 2 % zugegeben werden. Die Zugabe von Aminosäuren, wie Glycin oder Alanin, insbesondere von basischen Aminosäuren, wie Lysin, Arginen oder 7

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Histidin, von Kohlenhydraten, wie Glucose oder Mannitol, von Salzen, wie Natriumchlorid, etc., kann manchmal bevorzugt sein. Es kann zu Agglutinierungen kommen, insbesondere im Falle eines IgM-Antikörpers, und eine Behandlung mit /S-Propiolacton, Essigsäureanhydrid oder dergleichen wirkt gegen eine solche Agglutinierung. In einem solchen Fall wird intravenöse Verabreichung ermöglicht. STUFE 5:

Der gereinigte monoklonale Antikörper kann nach einem an sich konventionellen Verfahren, wobei man beispielsweise durch einen Membranfilter zur Entfernung von Bakterien filtert, in sterilisierte Ampullen mit Stabilisatoren abfüllt und lyophilisiert, zu einer biologischen Präparation formuliert werden.

Die erfindungsgemässe Herstellung des humanen monoklonalen Antikörpers kann lediglich eine Art des humanen monoklonalen Antikörpers auf die äussere Kernkomponente von LPS von P. aeruginosa als präventives oder therapeutisches Mittel für Infektionen mit P. aeruginosa umfassen. Vorzugsweise umfasst die Herstellung zusätzlich mindestens eine Art eines humanen monoklonalen Antikörpers, der ein unterschiedliches Epitop einer unterschiedlichen chemischen Struktur im äusseren Kernoligosaccharid von LPS von P. aeruginosa erkennen kann.

Die Herstellung kann auch einen humanen monoklonalen Antikörper beinhalten, der jedes andere Oberflächenantigen von P. aeruginosa erkennen kann, wie O-Antigen, äussere Membranproteine, Flageilum, Pilus, pathogene Faktoren von P. aeruginosa, wie Exotoxine,oder Exoenzyme, wie Elastase und Proteasen. Die erfindungsgemässe Herstellung kann nach Kombination mit jeder herkömmlichen Herstellung von Human-Immunoglobulin angewandt werden. Die Herstellung kann auch nach Kombination mit jedem humanen monoklonalen Antikörper auf andere als P. aeruginosa-Bakterien, Viren, Fungi, Protozoen, Krebszellen, und mit anderen konventionellen Human-Immunoglobulin-Präparationen erfolgen. Andererseits kann der erfindungsgemässe humane monoklonale Antikörper einer herkömmlichen Human-Immunoglobulin-Präparation einverleibt werden, um eine Immunoglobulin-Präparation mit hohem Titer auf P. aeruginosa herzustellen.

Der humane monoklonale Antikörper der vorliegenden Erfindung wird an die Oberfläche von P. aeruginosa-Zellen gebunden, insbesondere an die äussere Kernkomponente des LPS der Zellenoberfläche, welches ein vielen Stämmen von P. aeruginosa gemeinsames Antigen darstellt. Die Bindung des Antikörpers führt zur Opsonierung der P. aeruginosa-Zelle, wodurch Phagocytose und Bakteriolyse von Phagocy-ten auf der Zelle sowie die Aktivierung von Komplementen, die die Zellspaltung beschleunigt, gesteigert werden. Demgemäss können durch P. aeruginosa hervorgerufene experimentelle Mäuse-Infektionen durch Verabreichung des erfindungsgemässen humanen monoklonalen Antikörpers behandelt werden.

Zur Verhinderung und Behandlung von Infektionskrankheiten durch P. aeruginosa oder von Infektionen durch P. aeruginosa enthaltende Bakterien kann der erfindungsgemässe humane monoklonale Antikörper an einen erwachsenen Patienten in einer Menge von ungefähr 0,5 bis 500 mg, vorzugsweise 5 bis 50 mg, verabreicht werden.

Wie vorstehend ausgeführt, besteht der Hauptvorteil des erfindungsgemässen humanen monoklonalen Antikörpers darin, dass er einen hohen Antikörpertiter auf sein Antigen besitzt, eine ausgezeichnete therapeutische Wirkung im System experimenteller Mäuse-Infektionen zeigt, und wirksam gegen verschiedene P. aeruginosa unterschiedlichen Serotyps ist. Andere Vorteile des Antikörpers der Erfindung sind die folgenden.

Da er ein Protein humanen Ursprungs ist, treten keine Nebeneffekte (z.B. Anaphylaxe) auf, wie sie bei der Verabreichung eines heterogenen Proteins beobachtet werden. Da er aus einer bestimmten spezifischen Zelllinie erzeugt wird, ist die Möglichkeit einer Kontaminierung mit unbekannten biociskanten Materialien viel geringer, verglichen mit herkömmlichen Immunoglobulinen, die aus menschlichem Blut, das aus einer Anzahl unbekannter Personen stammt, hergestellt werden. Der erfindungsgemässe humane monoklonale Antikörper wird mit einem hohen Antikörpertiter in vitro in stabiler Form in einer grossen Menge erzeugt, und sein Herstellungsverfahren ist vorteilhafter als herkömmliche Verfahren, die menschliches Blut unter vereinfachter Qualitätskontrolle verwenden.

Die vorliegende Erfindung wird nachfolgend anhand von Beispielen detailliert erläutert, selbstverständlich soll die Erfindung jedoch durch diese Beispiele nicht eingeschränkt werden. 8

AT 397 803 B BEISPIEL 1

Herstellung einer humanen monoklonalen Antikörper MH-4H7-produzierenden Zellinie, hergestellt durch Human-Maus-Zellfusion: (1) Herstellung von Human-Lymphocyten aus peripherem Blut und deren Züchtung.

Peripheres Blut (100 ml) mit einem hohen Antikörpertiter gegen P. aeruginosa-Oberflächenantigene wurde einem gesunden freiwilligen Spender entnommen. Einem Zentrifugenröhrchen (50 ml, Sumitomo Bakelite) wurden Mono-Poly-Resolving-Medium® (Fow Lab.) zugefügt und peripheres Blut (20 ml) langsam darübergelegt, dann wurde mit einer Zentrifuge niedriger Geschwindigkeit (BS-20BH, Tommy Precision Ind.) bei 1500 Upm (Roter-TS-7) bei Raumtemperatur 30 Minuten lang zentrifugiert, wodurch Erythrocyten und Lymphocyten abgetrennt wurden.

Der die Lymphocyten enthaltende Teil wurde gesammelt und dreimal mit einem Dulbecco's modified Eagle's minimum essential Medium (nachfolgend als D-MEM bezeichnet) gewaschen, worauf die Auszählung der Zellzahlen erfolgte, um Lymphocytenzellen von 1,2 x 108 zu erhalten.

Die Lymphocytenzellen (6 x 107) wurden in einem Lymphocyten-Kulturmedium (66 ml),enthaltend mit Formalin abgetötete Zellen von P. aeruginosa (IID1001 (Typ A) und IID1020 (Typ G), jeweils 0,0002 %) suspendiert, und die Suspension wurde auf Mikroplatten mit 24 Vertiefungen (Costar, #3424) in einer Menge von 1,5 x 106 Lymphocytenzellen/Vertiefunggegeben und bei 37°C unter 5 % CO2 sechs Tage lang kultiviert. Das vorstehend genannte Lymphocyten-Kulturmedium bedeutet RPMI-1640-Medium, das 20 % (V/V) inaktiviertes Fötal-Kälberserum (CFS), 0,05 mg/ml Natriumpyruvat, 5 x 10-s Mol 2-Mercaptoethanol, 30 ng/mi Transferrin, abgeleitet von Kälberplasma (United States Biochemical Corp.) und 0,01 % (V/V) Pflanzenlectin, abgeleitet von Pokeweed (Gibco Lab.), enthält. (2) Zellfusion

Human-Maus-Heteromyelomzellen (SHM-D33, ATCC Nr. CRL1668) wurden in D-MEM, enthaltend 15 % FCS, subkultiviert, 2,5 x 107 Zellen wurden zweimal mit D-MEM gewaschen.

Andererseits wurden periphere Blutlymphocyten gewonnen, die sechs Tage lang in Mikroplatten mit 24 Vertiefungen gemäss Beispiel 1(1) gezüchtet wurden, um 7,4 x 107 Lymphocytenzellen zu ergeben. Die Zellen wurden dreimal mit D-MEM gewaschen und in einem Zentrifugenröhrchen mit den vorstehenden Human-Maus-Heteromyelomzellen vermischt und dann zentrifugiert, um Präzipitate zu ergeben.

Den Präzipitaten im Zentrifugenröhrchen wurde 1 ml einer Polyethylenglykol (PEG)-Lösung (0,45 g PEG4000 (Merck), 0,45 ml PBS(-) und 0,1 ml Dimethylsulfoxid) im Laufe ungefähr 1 Minute unter Rollen des Röhrchens zugefügt und die Mischung bei Raumtemperatur 1 Minute lang stehen gelassen. Dann wurde dem Röhrchen unter Rollen des Röhrchens mit einer Rate von 2 ml/Min. D-MEM zugefügt, was viermal wiederholt wurde. Unter Verwendung von D-MEM, enthaltend 10 % FCS, anstatt D-MEM, wurde die vorgenannte Vorgehensweise dreimal wiederholt. Schliesslich wurden 1,5 ml FCS dem Röhrchen zugefügt und die Mischung 20 Minuten lang bei 37°C stehen gelassen. Die Zellen wurden durch Zentrifugieren gesammelt und in 40 ml D-MEM-Medium suspendiert, enthaltend FCS (15 %), Natriumpyruvat (0,05 mg/ml), Insulin (0,2 E/ml), Oxalessigsäure (0,15 mg/ml), Azaserin (1 ug/ml) und Hypoxanthin (100 μ.Μ), wobei das genannte Medium nachfolgend als "HAZ-selektives Medium" bezeichnet wird. Die Suspension wurde auf Mikroplatten mit 96 Vertiefungen (Falcon #3040) in einer Menge von 100 ul/Platte gegeben, so dass eine Vertiefung 6,5 x 10* Myelomzellen aufnahm. Die jeweiligen Mikroplatten wurden vorher mit 100 Ul der Suspension gegen das vorstehend genannte Medium belegt, so dass jede Vertiefung Maus-BALB/c Miizzellen (1 x 105) und Maus-BALB/c-peritoneale Exudatzelien (1 x 10*) enthalten konnte. Die Platten waren bei 37°C einen Tag lang unter 5 % CO2 inkubiert worden. Die Mikroplatten wurden bei 37°C unter 5 % CO2 inkubiert, und die Hälfte des Kulturmediums wurde durch HAZ-Selektionsmedium in Intervallen von zwei oder drei Tagen ersetzt. Nach einer Woche wurde die Hälfte des Kulturmediums durch H-Medium ersetzt, das azaserinfreiem HAz-selektiven Medium entspricht. Danach wurde die Hälfte des Mediums durch azaserin- und hypoxanthinfreies, Hybridom kultivierendes D-MEM-Medium in Abständen von zwei oder drei Tagen ersetzt, wobei das Medium ein D-MEM-Medium ist, das FCS (15 %), Natriumpyruvat (0,05 mg/ml), Insulin (0,2 E/ml) und Oxalessigsäure (0,15 ug/ml) enthält. Die Produktion von Antikörper auf P. aeruginoa-sa-Oberflächenantigen wurde durch Enzyme Linked Immuno Sorbent Assay (ELISA) an Kulturüberständen der Vertiefungen bestimmt, die zum Zeitpunkt von drei Wochen nach der Zellfusion Zellwachstum zeigten, wobei Mikroplatten mit 96 Vertiefungen (Falcon #3912), an die P. aeruginosa durch Glutaraldehyd fixiert wurde, verwendet wurden. Es wurden die Standardstämme von P. aeruginosa von 17 verschiedenen 9

AT 397 803 B

Serotypen gemäss Homma’s Klassifizierung in diesem Versuch eingesetzt, welche vom Institute of Medical Science, Tokyo University, Japan, oder von ATCC erhältlich sind. Der Versuch offenbarte, dass in einer Vertiefung ein IgM-Antikörper erzeugt wurde, der in starkem Masse mit mehreren Standardstämmen von P. aeruginosa verschiedener Serotypen reagiert. Das Heterohybridom in der Vertiefung wurde weitergezüchtet 5 und mit Hilfe der limitierenden Verdünnung kloniert, wodurch eine als MH-4H7 bezeichnete Zellinie erhalten wurde, die einen Human-IgM-Antikörper in stabiler Form erzeugt. Die Bezeichnung "MH-4H7" kann hier ebenfalls als Name des humanen monoklonalen Antikörpers verwendet werden, der durch die Zellinie MH-4H7 erzeugt wird. Das Hybridom MH-4H7 wurde unter der Hinterlegungsnummer FERM P-9996 am 19.April 1988 beim Fermentation Research Institute, Agency of Industrial Science and Technology, in Tsukuba, io Ibaraki-ken, Japan, hinterlegt. Diese Hinterlegung wurde am 26.4.1989 in eine Hinterlegung gemäss Budapester Vertrag umgewandelt und erhielt die Hinterlegungsnummer FERM BP-2402. Der humane monoklonale Antikörper MH-4H7 war ein IgM ( u, lambda).

Ein dem vorgenannten ähnliches IgM-produzierendes Hybridom wurde von einem anderen Donor, dessen Serum einen hohen Antikörpertiter auf P.aeruginosa-Oberflächenantigen zeigte, durch Abtrennung 15 von Lymphocyten, Aktivierung von spezifischen B-Zeiien in vitro und die vorstehende Zellfusion erhalten. BEISPIEL 2

Untersuchung des Bindungsspektrums des humanen monoklonalen Antikörpers MH-4H7 durch ELISA. 20

(1) Messung von Anti-P. aeruginosa-Antikörper durch ELISA

Der Antikörpertiter gegen P. aeruginosa-Oberflächenatigen wurde wie folgt gemessen. P. aeruginosa wurde in einer phosphatgepufferten Kochsalzlösung (PBS) (pH 7,2; enthaltend 8 g/l NaCI, 0,2 g/l KCl, 2,99 25 g/l NaHPO*. 12H2O und 0,2 g/l KH2PO*) suspendiert, um ein Absorptionsvermögen von 0,2 bei einer . Weilenlänge von 600 nm zu ergeben. Die Suspension wurde in Mikroplatten mit 96 Vertiefungen (Falcon #3912) in einer Menge von 50 ui/Vertiefung gegeben, dann wurde bei 2000 Upm 15 Minuten lang zentrifugiert. 2 %-iger Glutaraldehyd wurde jeder Vertiefung in einer Menge von 50 ul/Vertiefung zugefügt, um die Bakterienzelle an die Mikroplatte zu fixieren. Nach Entfernen der Bakteriensuspension aus den 30 Mikroplatten wurde die Mikroplatte mit 3 %-iger PBS-Lösung, enthaltend Rinderserumalbumin (BSA), mit einer Menge von 120 ul/Vertiefung belegt und bei 37°C 30 Minuten lang inkubiert, um den ungebundenen Teil der Assay-Platte zu blockieren. Die sich ergebende Mikroplatte wurde als die mit Antigen beschichtete Platte im nachfolgenden Verfahrensschritt verwendet. Gewünschtenfalls kann eine solche Mikroplatte bei -20°C gelagert werden. 35 Vor dem Assay wurde die Mikroplatte mit 0,05 %-igem Tween 20, enthaltend PBS-Lösung (PBST), dreimal gewaschen. PBST wurde in die Vertiefungen in einer Menge von 50 ul/Vertiefung gegeben, es wurde eine Probe (Serum, Ascites oder Kulturüberstand), gegebenenfalls verdünnt mit PBS, in einer Menge von 50 u.l/Vertiefung zugefügt, dann erfolgte 2-stündige Inkubation bei 37°C. Die Probe wurde von der Platte entfernt, die dreimal mit PBST gewaschen wurde. Alkalischer phosphatase-konjugierter affinitätsgerei-40 nigter Ziegen-Anti-Human-Immunoglobulin-Antikörper (Kirkegaard & Perry Lab. Inc.) (sekundärer Antikörper), verdünnt mit PBS-Lösung enthaltendem 1 %-igen BSA, wurde der Mikroplatte in 500- bis 1000-fachem Überschuss in einer Menge von 100 ul/Vertiefung zur 2-stündigen Inkubation bei 37°C zugefügt. Zur Messung des IgG-Antikörpertiters und des IgM-Antikörpertiters wurden alkalischer phosphatase-konjugierter Ziegen-Anti-Human-lgG-Antikörper bzw. alkalischer phosphatase-konjugierter Ziegen-Anti-Human-45 IgM-Antikörper verwendet. Nach Entfernen des sekundären Antikörpers wurde die Mikroplatte dreimal mit PBST gewaschen. Eine Substratiösung, d.h. eine wässrige Lösung, enthaltend Natrium-p-nitrophenylphos-phat (3 mg/ml) in 10 %-igem Diethanolamin-Puffer (pH 9,1), enthaltend 0,2 mg/ml NaN3 und 0,1 mg/ml MgCl2.6H20, wurden der Mikroplatte in einer Menge von 100 ul/Vertiefung zugefügt, worauf die Reaktion bei 37°C erfolgte. Die Bindungsaktivität des Antikörpers (OD405) wurde an MultiskanR (Titertek) gemessen. 50 (2) Bindungsvermögen von MH-4H7 an Serotyp-Standardstämme von P. aeruginosa.

Das Bindungsvermögen von MH-4H7 an die Serotyp-Standardstämme von P. aeruginosa wurde mit Hilfe von ELISA untersucht, wie in Beispiel 2(1) beschrieben. Die Stämme wurden vom Institute of Medical 55 Science, Tokyo University, Japan, erhalten und in Herzinfusions-Agarmedium gezüchtet. Die Versuchsergebnisse sind in Tabelle 2 gezeigt. 10

AT 397 803 B TABELLE 2

Bindungsaktivität von MH-4H7 an Serotyp-Standardstämme von P. aeruginosa gemäss der Klassifizierung des Japanischen Komitees Serotyp Stamm ELISA-Wert A HD 1001 (ATCC27577) 1,78 B HD 1002 (ATCC27578) 0 B HD 1007 (ATCC27583) 0 B HD 1013 (ATCC27589) 0 B HD 5004 0 C HD 1021 0 D HD 1004 (ATCC27580) 0 E HD 1130 0 F HD 1006 (ATCC27582) 1,77 G HD 1008 (ATCC27584) 1,88 G HD 1020 1,98 H HD 1009 (ATCC27585) 1,33 I HD 1010 (ATCC27586) 0 J HD 1011 (ATCC27587) 0 K HD 1012 (ATCC27588) 1,80 L HD 5141 0 M HD 5018 0 M HD 1015 0

Die Tabelle 2 zeigt, dass MH-4H7 selektiv an die Serotyp-Standardstämme der Typen A, F, G, H und K von P. aeruginosa gebunden wurde. (3) Bindungsvermögen von MH-4H7 an klinische Isolate.

Im vorstehenden Versuch wurde gezeigt, dass MH-4H7 an die Serotyp-Standardstämmeder Typen A, F, G, H und K gebunden werden kann. Demzufolge wurde das Bindungsvermögen von MH-4H7 an mehrere klinische Isolate dieser Serotypen als auch der Typen B, E, I und M, die klinisch mit hoher Frequenz isoliert werden, untersucht. Als Ergebnis wurde MH-4H7 an klinische Isolate vom Typ A (70 %), Typ F (80 %), Typ G (86 %), Typ H (60 %), Typ K (75%) und Typ M (45 %) gebunden, wie in Tabelle 3 gezeigt. Klinische Isolate der Typen B, E und I (jeweils 20 Stämme) wurden nicht an MH-4H7 gebunden. 11

AT 397 803 B TABELLE 3: Bindungsaktivität von MH-4H7 an klinische Isolate

Serotyp Stamm ELISA-Wert (0D405) A sp 6745 0/53 sp 6746 1/46 sp 6783 1/10 sp 6818 2,03 sp 6830 0,13 sp 6840 1,17 sp 6708a 1,82 sp 9710 1,67 sp 9711 1,07 sp 9731 0 sp 9762 0 sp 9763 0 sp 9768 1,26 sp 9780 1/75 sp 10029 0,33 sp 10040 0 sp 10060 0,39 sp 10648 1,78 sp 10676 0 E sp 6770 2/15 sp 6771 0 sp 6808 0,49 sp 6851 2,24 sp 6921 1,53 12

AT 397 803 B FORTSETZUNG TABELLE 3

Serotyp Stamm ELI SA-Wert <0D4Q5> G sp 9701 2/23 sp 9709 2/31 sp 9712 0 sp 9714 2/29 sp 9717 0/06 sp 9718 2/28 sp 9738 2/23 sp 9785 1/29 sp 9743 2/31 sp 9792 1/98 sp 9755 2/26 sp 9761. 0 sp 9767 2/45 sp 9772 2/33 GN 11187 2/44 TL 2378 2/33 TL 2424 2/43 sp 6788 2/44 sp 9728a 2/44 H sp 6896 0 sp 6931 0 sp 7503 - 2/23 sp 7507 2/44 sp 7514 2,42 sp 7520 2,40 sp 7522 0 sp 7532 0 sp 7555 2,42 sp 10054 0 sp 10068 0,04 sp 10678 2,06 sp 10681 1,71 K sp 9751 1,96 sp 7861 0,06 sp 7873 1,96 M sp 9716 0 sp 9730 0 sp 9744 0,03 sp 9748 0 sp 9749 0,44 sp 9752 0 sp 9775 0 sp 10067 2,19 sp 10675 0 sp 6763 2,29 13

AT 397 803 B FORTSETZUNG TABELLE 3

Serotyp Stamm ELISA-Wert (0D4Q5> sp 6764 2,24 sp 6765 2,22 sp 6782 0,85 sp 6794 0,59 sp 6833 0 sp 6852 2,31 sp 6890 0 sp 6892 2,15 sp 6895 0 sp 6908 1,02 BEISPIEL 3

Untersuchung der Agglutinierungsaktivität des humanen monoklonalen Antikörpers MH-4H7 an Serotyp-Standardstämme von P. aeruginosa

Die Agglutinierungsaktivität von MH-4H7 an mit Formalin behandelte Serotyp-Standardstämme von P. aeruginosa wurde gemessen und ausgedrückt durch eine Minimum-Agglutinierungskonzentration des Antikörpers. Jeder der in Tabelle 4 aufgelisteten Standardstämme wurde auf Herzinfusions-Agarmedium, das mit 1 %-igem Formalin behandelt worden war, gezüchtet und bei 37°C über Nacht stehen gelassen. Die sich ergebenden abgetöteten Zellen wurden in PBS(-) suspendiert, um ein Absorptionsvermögen von 0,2 bei einer Wellenlänge von 600 nm zu ergeben. 50 ul-Anteile der Suspension wurden in Mikroplatten mit 96 U-förmigen Vertiefungen (Sumitomo Bakelite) gegeben. Den Platten wurden MH-4H7-Lösungen (jeweils 50 U.I) in 2-facher Serenverdünnung zugefügt. Als Vergleich wurden Lösungen, enthaltend einen humanen monoklonalen Antikörper, d.h. Anti-B-Typ-hMcAb (IgM), der O-Antigen vom Typ B erkennt, anstatt der MH-4H7-Lösungen zugegeben. Die Reaktionsmischungen wurden über Nacht bei 4°C stehen gelassen, und es wurde die An- oder Abwesenheit von Agglutinierung untersucht. Die Ergebnisse sind in Tabelle 4 gezeigt. TABELLE 4

Minimum-Agglutinierungskonzentration von MH-4H7 Antikörper Stämme (Serotyp) Minimum-Agglutinierungskonzentration MH-4H7 IID 1001 (A) 2,5 ixg/ml HD 1006 (F) 2,5 IID 1020 (G) 5,0 IID 1009 (H) 2,5 IID 1012 (K) 1,25 IID 1002 (B) n.b* Anti-B-Typ-hMcAb IID 1002 (B) 1,25 * nicht bestimmt; >25 ug/ml MH-4H7 zeigte Agglutinierungsaktivität an bindungs-positive Stämme, ermittelt durch ELISA (Tabelle 2), derselben Grösse wie der Anti-B-Typ-hMcAb an den Stamm von Serotyp B, obwohl sich die Grösse von Stamm zu Stamm etwas unterscheidet. 14

AT 397 803 B BEISPIEL 4

Charakterisierung der Erkennungsstelle des humanen monoklonalen Antikörpers MH-4H7 mit Hilfe der Western-Blotting-Analyse. (1) Western-Blotting-Analyse von Lipopolysaccharid

Lipopolysaccharide wurden aus Serotyp-Standardstämmen von P. aeruginosa, IID1001 (Typ A) und IID1020 (Typ G), gemäss dem von Westphal & Jann beschriebenen Verfahren gesammelt (Methods Carbohydr. Chem., 5, 83-91, (1965)). Auf diese Weise wurden P. aeruginosa bis zur späten exponentiellen Phase in Herzinfusions-Nährmedium (Nisuui Pharmaceuticals) gezüchtet und die Zellen wurden durch Zentrifugation gesammelt. Die nassen Zellen wurden mit 45 %-igem Phenol bei 68°C behandelt und bei 3000 Upm 15 Minuten lang bei einer Temperatur von 10°C zentrifugiert, wobei Lipopolysaccharide in die wässrige Schicht extrahiert wurden. Die wässrige Schicht wurde mit Cetyltrimethylammoniumbromid behandelt, um Nukleinsäuren zu entfernen, und mit Ethanol gefällt, um Lipopolysaccharide zu ergeben.

Die aus IID1001 und IID1020 erhaltenen Lipopolysaccharide wurden jeweils mit einer Pufferprobe, enthaltend Tris-Puffer (31 mM), pH 6,8, SDS (1,5 %), Glycerin (5 %), Mercaptoethanol (2,5 %) und Bromphenol Blau (0,005 %), bei 100°C 5-Minuten lang behandelt, einer Elektrophorese an 12,5 %-igem Polyacrylamidgel, enthaltend 0,2 % SDS, unterworfen und auf einen DuraporeR-Filter (Miilipore) gegeben. Die Bindungsstelle des humanen monoklonalen Antikörpers MH-4H7 wurde an der Membran durch ein enzym-markiertes Antikörper-Färbeverfahren unter Verwendung des alkalischen phosphatase-konjugierten Ziegen-Anti-Human-IgM-Antikörpers (Kirkegaard & Gaithersburg Perry Lab. Inc.) identifiziert. Als phoreti-sches Bestimmungsmuster von LPS wurde dieselbe Testprobe in derselben Weise einer Elektrophorese unterworfen, das Gel wurde durch Silberfärbung mit Hilfe eines Bio-Rad-Kits entwickelt.

Die Silberfärbung zeigt im Bereich höheren Molekulargewichtes die Anwensenheit einer Gruppe von Banden in Leiterform gemäss LPS vom glatten Typ, das O-Polysaccharid enthält, an. Die charakteristischen Banden können der Heterogenität der Anzahl der sich wiederholenden Einheit des O-Polysaccharids zugeordnet werden. Einzelne breite oder einige wenige Banden, die man im Bereich niedrigeren Molekulargewichtes beobachtet, werden LPS vom R-Typ oder vom SR-Typ zugeordnet, bei denen O-Polysaccharid fehlt oder die nur einige wenige, sich wiederholende Einheiten aufweisen.

Als Ergebnis wurde in beiden Stämmen von IID1001 und IID1020 an der Stelle der Lipopolysaccharide vom R-Typ oder SR-Typ, denen O-Polysaccharid überhaupt fehlt oder die ein kurzes O-Polysaccharid aufweisen, eine starke Farbentwicklung beobachtet. Eine positive Reaktion mit MH-4H7 wurde nicht beobachtet, und es trat lediglich eine schwache Farbentwicklung in dem Bereich auf, der den Banden in Leiterform entspricht, die durch die Silberfärbung entdeckt werden, wobei LPS vom glatten Typ mit einer Struktur von sich wiederholenden O-Polysaccharuden umfasst wird. (2) Western-Blotting-Analyse SDS-behandelter Zellen:

Wester-Blotting wurde an SDS-behandelten Zellen von Serotyp-Standardstämmen von P. aeruginosa, IID1001 (Typ A), IID1006 (Typ F), IID1008 (Typ G), IID1020 (Typ G), IID1009 (Typ H) und IID1012 (Typ K) durchgeführt. Die Zellen wurden jeweils in Herzinfusions-Nährmedium gezüchtet, in dem in Beispiel 3(1) beschriebenen Puffer suspendiert und bei 100°C 30 Minuten lang einer SDS-Behandlung unterworfen. Die so erhaltene Probe wurde an 12,5 %-igem Polyacrylamidgel, enthaltend 0,2 % SDS, mit der Anwendungsmenge der Probe, die 2 mg nassen Zellen entspricht, einer Elektrophorese unterworfen und in derselben Weise wie in Beispiel 3(1) auf ein DuraporeR-Filter gegeben. Die enzym-markierte Antikörperfärbung wurde an diesem Filter durchgeführt. In jedem Stamm wurde eine Farbentwicklung durch die Wirkung von MH-4H7 nur in dem Bereich beobachtet, der dem-R-Typ- oder SR-Typ-Lipopolysaccharid entspricht, und der Bereich höheren Molekulargewichtes ergab keine Farbentwicklung. BEISPIEL 5

Abtrennung und Fraktionierung von Polysaccharid- und Lipid-A-Anteilen von LPS von P. aeruginosa und Untersuchung des Bindungsvermögens der sich ergebenden Fraktionen an den humanen monoklonalen Antikörper MH-4H7 15

AT 397 803 B (1) Abtrennung des Polysaccharidanteils vom LPS von P. aeruginosa IID1001:

Gemäss dem Verfahren von Wilkinson & Galbraith (Eur. J. Biochem., 52, 331 (1975)) wurde der Polysaccharidanteil aus LPS von P. aeruginosa IID1001 abgetrennt und das erhaltene Polysaccharid fraktioniert. Das heisst, LPS (10 mg) wurde in 1 %-iger Essigsäure gelöst und bei 100°C 90 Minuten lang erhitzt, um die Ketosebindung im 2-Keto-3-desoxyoctonat (KDO)-Rest, die im inneren Kern von LPS vorliegt, selektiv zu hydrolysieren. Die Reaktionsmischung wurde mit Chloroform extrahiert, um eine Lipid-A-Präparation zu erhalten. Zur Fraktionierung wurde die Mutterlauge, aus der freies Lipid A somit entfernt worden war, einer SephadexR G-50-Säulenchromatografie (Pharmacia, Uppsala) (Säulenabmessung: 1 x 70 cm), äquilibriert mit 50 mM Pyridin/Acetatpuffer, pH 5,5, unterworfen. Die Elution von O-Polysaccharid, SR-Kernoligosaccharid und R-Kernoligosaccharid wurde durch die nachfolgend beschriebene, colorimetrische Bestimmung entdeckt.

Neutrale Zucker wurden durch die Phenol-Schwefelsäure-Methode (M. Dubois et al, Anal. Chem. 28, 350 (1956)) entdeckt. Aminozucker wurden entdeckt, indem man die Probe mit 2 N H2SO4. bei 100°C 2 Stunden lang hydrolysierte und das hydrolysierte Produkt dem MBTH (3-Methyl-2-benzothiazolinon-hydra-zon-hydrochlorid)-Verfahren unterwarf (A. Tsuji et al, Chem. Pharm. Bull. 17, 217 (1969)). Das Polysaccharid und die Kernoligosaccharide vom R-Typ und SR-Typ wurden durch Lyophilisierung der relevanten Fraktionen gewonnen. (2) Bindungsvermögen von MH-4H7 an die jeweilige von Lipopolysaccharid abgeleitete Fraktion.

Es wurde die kompetitive Reaktion in ELISA zur Untersuchung des Bindungsvermögens von MH-4H7 an die jeweiligen Fraktionen herangezogen, die das Polysaccharid, das SR-Kernoiigosaccharid, das R-Kernoligosaccharid und das Lipid A aus P. aeruginosa IID1001 enthalten, welche alle in Beispiel 4(1) erhalten wurden. Somit wurde eine Mischung des Kompetitors und des Antikörpers bei 37°C 1 Stunde lang inkubiert und ELISA unterworfen, wobei Mikroplatten mit 96 Vertiefungen verwendet wurden, die mit P. aeruginosa-Zellen belegt worden waren, wobei die Inhibierungsrate gemessen wurde. Die Menge der Kompetitoren entsprach derjenigen von 100 nmol der neutralen Zucker gemäss der in Beispiel 4(1) genannten Phenol-Schwefelsäure-Bestimmung.Die Ergebnisse sind in Tabelle 5 aufgeführt. TABELLE 5

Bindungsvermögen von MH-4H7 an Fraktionen von Polysaccharid und Kernoligosaccharide vom R-Typ und SR-Typ Kompetitive Substanz Inhibierungsrate (%) Polysaccharide 0 Kernoligosaccharide vom SR-Typ 72 Kernoligosaccharide vom R-Typ 99

Bei Verwendung von Lipid A als Kompetitor in einer höheren Dosis als 50 ug/ml wurde im ELISA eine Inhibierung nicht beobachtet. Dieses Ergebnis zeigt an, dass MH-4H7 an Lipid A nicht gebunden wird.

Dieser Versuch offenbarte, dass MH-4H7 an das Kernoligosaccharid vom R-Typ, dem O-Polysaccharid fehlt, sowie an das Kernoligosaccharid vom SR-Typ, das eine sich wiederholende Einheit von O-Polysac-charid besitzt, gebunden wird. Deshalb befindet sich die Antigendeterminante (Epitop) von MH-4H7 am Kernteil von LPS von P. aeruginosa.

Wie in Beispiel 5(1) angeführt, wurde der KDO-Rest mittels Essigsäure während der Abtrennung der Polysaccharide hydrolysiert. Demzufolge zeigt die Bindung von NH-4H7 an die Kernfraktion, dass das Epitop von MH-4H7 nicht mit einem KDO-Rest im inneren Kernteil assoziiert ist. BEISPIEL 6

Bindungsvermögen des humanen monoklonalen Antikörpers MH-4H7 an LPS verschiedener gram-negativer Bakterien

Das Bindungsvermögen von MH-4H7 an LPS verschiedener gram-negativer Bakterien, und zwar andere als P. aeruginosa, wurde durch die kompetitive Reaktion im ELISA untersucht, wie in Beispiel 5(2) 16

AT 397 803 B beschrieben. Als ein festes Antigen wurden Mikroplatten mit 96 Vertiefungen verwendet, an die P. aeruginosa IID1020-Zellen (Typ G) fixiert worden waren. Die Versuchsergebnisse sind in Tabelle 6-(1) aufgeführt. Die Intensität der Bindung wird durch die Inhibierungsrate der Farbentwicklung im ELISA gezeigt. Die Konzentration des Kompetitors betrug 50 ug/ml. Lipopolysaccharide aus Escherichia coli J5, E. coli 0111 :B4, Salmonella minnesota R595 und S. minnesota-wilder-Typ wurden von List Biological Laboratories Inc., Campbell, erhalten. Lipopolysaccharide aus P. aeruginosa IID1001 (Typ A) und IID1020 (Typ G) wurden durch Phenolextraktion hergestellt, wie in Beispiel 4(1) dargelegt. TABELLE 6-(1)

Bindungsvermögen von MH-4H7 an LPS aus verschiedenen gram-negativen Bakterien (1) Ursprung von LPS Chemotyp Konzentration (ug/ml) Inhibierungsrate (%) E. coli J5 Rc 50 0 E. coli 0001 :B4 S 50 0 S. minnesota R595 Re 50 0 S. minnesota wild S 50 0 P. aeruginosa IID1001 (Typ A) s 50 91 P. aeruginosa IID1020 (Typ G) S 50 98

Tabelle 6-(1) zeigt, dass MH-4H7 weder an R-Typ-LPS, erhalten von E. coli J5 und S. minnesota R595,noch an S-Typ-LPS, erhalten von deren Ursprungsstamm, gebunden wird. Angesichts der Versuchsergebnisse aus Beispiel 5(2) wird gefolgert, dass das Epitop von MH-4H7 nicht im LPS-Teil, der Enterobacte-riaceae gemeinsam ist, wie der inneren Kernkomponente, bestehend aus Heptose und KDO oder Lipidkomponente, sondern in der für P. aeruginosa charakteristischen äusseren Kernkomponente angeordnet ist.

In Übereinstimmung mit der vorstehenden Verfahrensweise wurden zusätzliche Untersuchungen unter Verwendung anderer gram-negativer Bakterien, die in Tabelle 6-(2) aufgelistet sind, durchgeführt. Die eingesetzten LPS-Proben wurden von List Biological Laboratories Inc., Campbell, erhalten, Pseudomonas fluorescens wurde von Ribi Immunochem Research Inc., Hamilton, gekauft. Die LPS-Konzentration betrug ohne Ausnahme 50 ug/ml. Die Versuchsergebnisse sind in Tabelle 6-(2) aufgeführt. TABELLE 6-(2)

Bindungsvermögen von MH-4H7 an LPS aus verschiedenen gram-negativen Bakterien (2) Ursprung von LPS Inhibierungsrate (%) Escherichia coli D31 m4 O Escherichia coli K235 0 Escherichia coli 026:B6 98 Escherichia coli 055:B5 11 Escherichia coli 0127:B8 0 Salmonella typhimurium 0 Klebsiella pneumoniae 0 Yersinia enterocholitica 2 Vibria cholerae Inaba 569B 0 Serratia marcescens 0 Pseudomonas fluorescens 0 Pseudomonas aeruginosa (F-D Typ 1) 100

Wie vorstehend gezeigt, übt MH-4H7 eine Kreuzreaktion mit LPS aus E. coli 026:B6, und zwar in starkem Masse, und mit LPS aus E. coli 055:B5, und zwar in schwachem Masse, jedoch keine Reaktion mit LPS aus anderen Bakterien aus. Das bedeutet, dass diese beiden Stämme von E. coli, insbesondere Serotyp (026)-Stämme von E. coli, eine chemische Struktur im LPS-Teil aufweisen, der dem in der äusseren Kernkomponente des LPS von P. aeruginosa gemeinsam ist, wobei die Struktur zur Bindung an den monoklonalen Antikörper MH-4H7 befähigt ist. 17

AT 397 803 B BEISPIEL 7

Therapeutischer Effekt des Antikörpers MH-4H7 auf experimentelle P. aeruginosa-lnfektionen in Mäusen

Es wurde der therapeutische Effekt des humanen monoklonalen Antikörpers MH-4H7 auf experimentelle Infektionen bei Mäusen, hervorgerufen durch klinische Isolate von P. aeruginosa, zwei Stämme vom Typ A und vier Stämme vom Typ G, untersucht. IRC-sIc-Mäuse (4 Wochen alt, männlich, 10 Tiere pro Gruppe) wurden intraperitoneal mit einer Suspension, enthaltend die Zelle und 5 % Mutin, inokuliert. Nach 1 Stunde wurde der Antikörper MH-4H7 (0,1 ug/Maus) intraperitoneal verabreicht. Die Beurteilung des therapeutischen Effektes wurde auf der Grundlage der überlebensrate nach einer Woche vorgenommen. Die Versuchsergebnisse sind in Tabelle 7 gezeigt, woraus ersichtlich ist, dass der Antikörper MH-4H7 zur Behandlung experimenteller Infektionen, die durch mehrere Stämme von P. aeruginosa vom Serotyp A und G hervorgerufen wurden, wirksam ist. TABELLE 7-(1)

Therapeutischer Effekt von MH-4H7 auf klinische Isolate von P. aeruginosa von Serotyp A

Dosis (ug/Maus) Überlebensrate (%) Inokulierte Menge: (CFU/Maus) sp6818 IID1001 4,5 x 10* 1,8 x 10s 1,5 x 106 7,3 x 106 0,1 80 70 80 40 — 50 10 20 10 TABELLE 7-(2)

Therapeutischer Effekt von MH-4H7 auf klinische Isolate von P. aeruginosa von Serotyp G (1)

Dosis (ug/Maus) Überlebensrate (%) Inokulierte Menge: (CFU/Maus) sp 6788 sp 9701 3,0 x 10* 1,2 x 10S 1.3X106 5,1 x 106 0,1 100 90 100 90 — 30 0 60 20 TABELLE 7-(3)

Therapeutischer Effekt von MH-4H7 auf klinische Isolate von P. aeruginosa von Serotyp G (2)

Dosis (ug/Maus) Überlebensrate (%) Inokulierte Menge: (CFU/Maus) sp 9785 sp 9755 1,3x1ο6 5,1 x 106 4,6 x 103 1,1 x 105 0,1 100 50 90 70 — 60 20 30 20 18

AT 397 803 B BEISPIEL 8

Identifikation des Epitops, erkannt durch den humanen monoklonalen Antikörper NH-4H7 (1) Bindungsvermögen von MH-4H7 auf eine Gruppe von P. aeruginosa-Mutanten, die einen Mangel im LPS-Teil aufweisen, der von P. aeruginosa PAC1 abgeleitet ist.

Das Epitop, das in der äusseren Kemkomponente von LPS angeordnet ist und durch MH-4H7 erkannt wird, wurde identifiziert durch die Verwendung von P. aeruginosa-Stämmen PAC 608, PAC 557, PAC 556 und PAC 611, denen ein Teil der äusseren Kernkomponente fehlt, die vom P. aeruginosa-Stamm PAC1 oder PAC1R abgeleitet ist, wobei der Stamm PAC1R seinerseits wiederum von PAC1 abgeleitet ist. Die Stämme PAC1, PAC1R und die defekten Mutanten wurden von Pouline M. Meadow (London University College) erhalten. Die Stämme wurden jeweils auf Mikroplatten mit 96 Vertiefungen gegeben, in Übereinstimmung mit der Offenbarung in Beispiel 2(1), und ELISA unterworfen, um die Bindungsaktivität an MH-4H7 zu untersuchen. Die Ergebnisse sind in Tabelle 8-(1) aufgeführt. TABELLE 8-(1)

Bindungsvermögen von MH-4H7 an P. aeruginosa-Mutanten, die einen Mangel in der äusseren Kernkomponente von LPS aufweisen Stamm Chemotyp ELISA-Wert (OD+os) PAC 1 S 0,30 PAC 1R S 0,25 PAC 608 SR 1,11 PAC 557 R 1,13 PAC 556 R 0,02 PAC 611 R 0,06 HD 1001* S 0,68 ’ normaler Vergleich

Die Strukturen der äusseren Kernkomponente von Lipopolysacchariden von PAC1R und den vorgenannten Mutanten sind bekannt (P.S.N. Rowe & P.M. Meadow, Eur. J. Biochem., 132, 329-333 (1983)). Der äussere Kern von LPS, der im Elternstamm PAC1R aufgefunden wird, besteht aus Galactosamin, Alanin, Glucose und Rhamnose. Dem Mutant PAC556, der keine Reaktion mit MH-4H7 zeigt, fehlt nur Rhamnose. Demzufolge wird gefolgert, dass das Epitop von MH-4H7 in der Nähe des Rhamnose-Restes oder des Galactosamin-Restes, durch den der Rhamnose-Rest substituiert ist, angeordnet ist. (2) Bindungsvermögen von MH-4H7 an Monosaccharide und Derivate davon.

Zum Zwecke weiterer Untersuchungen der Beteiligung des Rhamnose-Restes am Epitop wurde das Bindungsvermögen von MH-4H7 an Monosaccharide und deren Derivate durch die ELISA-kompetitive-Reaktion in Übereinstimmung mit Beispiel 5(2) untersucht. Als ein immobilisiertes Antigen wurden Mikroplatten mit 96 Vertiefungen verwendet, auf die P. aeruginosa IID1001 (Typ A) fixiert wurde. Methylrhamno-sid, einer der verwendeten Kompetitoren, wurde erhalten, indem man eine Mischung von Rhamnose und Methanol in Gegenwart von 1 %-iger Salzsäure bei 100°C 4 Stunden lang erhitzte. Das so erhaltene Methylrhamnosid enthielt ungefähr 90 % alpha-Anomer. Die Versuchsergebnisse sind in Tabelle 8-(2) aufgeführt. 19

Claims (11)

1. AT 397 803 B TABELLE 8-(2) Bindungsvermögen von MH-4H7 an Monosaccharide und Derivate davon Monosaccharid Konzentration (mM) Inhibierungsrate (%)* Methyl-L-rhamnosid 500 100 50 22 L-Rhamnose 500 50 50 9 D-Glucose 500 0 ’ Prozentsatz des ELISA-Wertes (OD+os) mit und ohne Kompetitor. Tabelle 8-(2) zeigt, dass MH-4H7 spezifisch an Methylrhamnosid und Rhamnose gebunden wird. Demgemäss wird die Schlussfolgerung gezogen, dass das Epitop von MH-4H7 mit dem Rhamnose-Rest im äusseren Kernlipopolysaccharid einiger Stämme von P. aeruginosa tief assoziiert ist. Patentansprüche 1. Humaner monoklonaler Antikörper, der prophylaktische und therapeutische Wirkung auf infektiöse Krankheiten besitzt, die durch Pseudomonas aeruginosa hervorgerufen sind, wobei sich das Epitop in der äusseren Kernkomponente von LPS von Pseudomonas aeruginosa befindet.
2. 2. Humaner monoklonaler Antikörper gemäss Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass er das Epitop in LPS, welches P. aeruginosa-Stämmen des Serotyps A, F, G, Η, K und M, klassifiziert gemäss der Klassifizierung des Japanischen Komitees, gemeinsam ist, erkennt.
3. 3. Humaner monoklonaler Antikörper gemäss Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, dass sich das Epitop in der Nähe des Rhamnose- oder Galactosamin-Restes in der äusseren Kernkomponente von LPS von P. aeruginosa befindet.
4. 4. Humaner monoklonaler Antikörper gemäss Anspruch 1, 2 oder 3, dadurch gekennzeichnet, dass er gegenüber LPS, das aus Escherichia coli-Stämmen des Serotyps 026 stammt, reaktiv ist.
5. 5. Humaner monoklonaler Antikörper gemäss jedem der Ansprüche 1 bis 4, dadurch gekennzeichnet, dass er ein IgM ist.
6. 6. Humaner monoklonaler Antikörper MH-4H7.
7. 7. Humane Immunoglobulin-Präparation, die eine wirksame Menge mindestens eines humanen monoklonalen Antikörpers gemäss jedem der Ansprüche 1 bis 6 enthält.
8. 8. Prophylaktisches oder therapeutisches Mittel, das eine wirksame Menge mindestens eines humanen monoklonalen Antikörpers gemäss jedem der Ansprüche 1 bis 6 enthält.
9. 9. Hybridom, das zur Herstellung des humanen monoklonalen Antikörpers gemäss jedem der Ansprüche 1 bis 5 befähigt ist, sowie jede weitere davon abstammende Zellinie.
10. 10. Hybridom MH-4H7 (FERM BP-2402) sowie jede weitere davon abstammende Zellinie.
11. 11. Verfahren zur Herstellung eines humanen monoklonalen Antikörpers, dadurch gekennzeichnet, daß man ein Hybridom durch Zellfusion von Human-Lymphocyt-B-Zellen, die zur Herstellung des gemäss jedem der Ansprüche 1 bis 6 definierten Antikörpers befähigt sind, mit Heteromyelomzellen aus humanen und Mäuse-Zellen herstellt, das genannte Hybridom züchtet und den erzeugten Antikörper aus dem Kulturüberstand gewinnt. 20 AT 397 803 B Hiezu 1 Blatt Zeichnungen 21