WO2022181438A1 - 被験試料の皮膚における異物応答反応の惹起性の評価方法、皮膚における異物応答反応の抑制性を有する物質の探索方法、及び、皮膚における異物応答反応を抑制する剤 - Google Patents

被験試料の皮膚における異物応答反応の惹起性の評価方法、皮膚における異物応答反応の抑制性を有する物質の探索方法、及び、皮膚における異物応答反応を抑制する剤 Download PDF

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Definitions

  • the present invention relates to a foreign body response in the skin, and more particularly, a method for evaluating the ability to induce a foreign body response in the skin of a test sample, a method for searching for a substance having an ability to suppress the foreign body response in the skin, and the search. It relates to an agent that suppresses a foreign body reaction in the skin found using the method.
  • the skin is an organ that covers the whole body and protects the body from the outside.
  • Various chemicals are present in the environment, and the skin is in constant contact with these chemicals.
  • daily necessities such as cosmetics, detergents, toiletries, foodstuffs, and pharmaceuticals, which are indispensable in our lives, contain many chemical substances.
  • a great many chemical substances are contained in environments such as the air, the sea, and the soil.
  • the number of chemical substances existing around us continues to increase. For example, the number of chemical substances registered in CAS (Chemical Abstracts Service), the world's largest chemical substance database, reached 100 million in June 2015, and will already reach 177 million in February 2021. Over. Under such circumstances, it is extremely important to correctly evaluate the effects of chemical substances existing in the environment on the skin.
  • mice and guinea pigs such as GPMT (Guinea Pig Maximization Test) (Non-Patent Document 1) and LLNA (Local Lymph Node Assay) (Non-Patent Document 2).
  • GPMT Guidea Pig Maximization Test
  • LLNA Local Lymph Node Assay
  • these methods which are performed at the expense of the animal's life, are not only ethically unfavorable, but also inefficient because the tests require a relatively long period of time.
  • Various in vitro test methods have been developed to replace the above methods using animals (Non-Patent Document 3), but all focus on the activation of immune reactions in the skin by exogenous chemical substances. It is a step-modeled test method that only assesses a small part of the effects of exogenous chemicals on the skin.
  • Non-Patent Document 4 describes that environmental pollutants contained in the atmosphere evoke a foreign body response reaction involving AhR and XRE in the skin, and that such a foreign body response response evokes nerve Increased expression of the trophic factor artemin causes abnormal outgrowth of nerves into the epidermis, and such abnormal outgrowth of nerves causes hypersensitivity to itching (allonesis) and, in turn, loss of skin barrier function. and atopic dermatitis.
  • Non-Patent Document 5 states that matrix metalloprotease (MMP) is expressed by AhR activation in the skin, and collagen degradation due to MMP expression contributes to skin aging and wrinkle formation. Suggested. Foreign body reactions in the skin involving AhR and XRE thus cause various skin troubles such as atopic dermatitis and wrinkles.
  • MMP matrix metalloprotease
  • the aromatic hydrocarbon receptor is a receptor-type transcription factor found as a receptor for dioxins. It is known to induce the expression of xenobiotic-metabolizing enzymes by binding to ligand molecules such as dioxin (TCDD).
  • TCDD ligand molecules
  • AhR is activated as a ligand molecule, it migrates into the cell nucleus, recognizes a specific base sequence present in the enhancer sequence of the transcriptional regulatory region, and activates the expression of downstream genes.
  • the above specific base sequence is called a foreign body response element (XRE) and is known to have a sequence of 5'-CACGC-3'.
  • aromatic hydrocarbon receptors are mainly polyaromatic hydrocarbons (PAH) and halogenated aromatic hydrocarbons ( HAH: Halogenated Aromatic Hydrocarbons).
  • PAH polyaromatic hydrocarbons
  • HAH halogenated Aromatic Hydrocarbons
  • aromatic hydrocarbon receptors (AhR) have been activated by binding to not only polycyclic aromatic hydrocarbons and halogenated aromatic hydrocarbons but also chemical substances having a wide variety of structures. It has become clear that it plays an important role in maintaining the homeostasis of living organisms (Non-Patent Document 6).
  • An object of the present invention is to provide a simple and efficient evaluation method.
  • Another object of the present invention in another aspect is to provide a substance having a property of suppressing a foreign body reaction in the skin, and a method for searching for the same.
  • the present inventors found that the genes whose expression is enhanced by the foreign body response reaction involving the aromatic hydrocarbon receptor (AhR) and the foreign body response element (XRE) are It was noted that the transcriptional regulatory region of the gene has an enhancer sequence containing XRE, which is an element that controls the expression level of downstream genes in response to foreign body response. Then, keratinocytes are transformed with a reporter vector having an enhancer sequence containing XRE in the transcriptional regulatory region and a sequence encoding an easily detectable reporter protein downstream of the reporter vector, resulting in transformed keratinized cells. The inventors have found that when cells are brought into contact with a test sample, the expression level of a reporter protein that reflects the degree of foreign body response in the skin induced by the test sample can be measured, and the present invention has been completed.
  • AhR aromatic hydrocarbon receptor
  • XRE foreign body response element
  • the present invention is a method for evaluating the elicitability of a foreign body response reaction in the skin of a test sample, (1) a step of contacting keratinocytes transformed with a reporter vector having an enhancer sequence containing a foreign substance response element (XRE) and a sequence encoding a reporter protein downstream thereof with a solution containing the test sample; (2) measuring the expression level of the reporter protein in the keratinocytes contacted with the solution containing the test sample; (3) a step of evaluating the elicitability of a foreign body response reaction in the skin of the test sample based on the measured expression level of the reporter protein;
  • XRE foreign substance response element
  • a method for searching for a substance that suppresses a foreign body reaction in the skin comprising: (1) keratinocytes transformed with a reporter vector having an enhancer sequence containing a foreign substance response element (XRE) and a sequence encoding a reporter protein downstream thereof; contacting with a reference solution that does not contain (2) measuring the expression level of the reporter protein in the keratinocytes contacted with the test solution and in the keratinocytes contacted with the reference solution; (3) when the expression level of the reporter protein in the keratinocytes contacted with the test solution is smaller than the expression level of the reporter protein in the keratinocytes contacted with the reference solution; A step of evaluating that the candidate substance has an inhibitory effect on the foreign body reaction in the skin;
  • the above problem is solved by providing a search method including
  • the test solution and the reference solution contain a substance that induces a foreign body reaction in the skin.
  • the activation of the foreign body reaction in the skin is known to enhance the production of the neurotrophic factor artemin and matrix metalloproteinase 9, as described above, and cause atopic dermatitis and wrinkle formation. That is, in a preferred embodiment, the method for searching for a substance capable of suppressing a foreign body reaction in the skin includes a substance for the prevention and/or treatment of atopic dermatitis and the prevention and/or the formation of wrinkles. It is advantageously used to search for substances for improvement.
  • 5-hydroxy-4-phenyl-2(5H)butenolide (hereinafter referred to as "freglide 1", which is a kind of butenolide contained in vinegar) ) has an inhibitory effect on the foreign body reaction in the skin.
  • flickde 1 which is a kind of butenolide contained in vinegar
  • 5-hydroxy-4-phenyl-2(5H)butenolide has a foreign body response element.
  • XRE XRE
  • the present invention provides an agent for suppressing the production of matrix metalloprotease 9, containing 5-hydroxy-4-phenyl-2(5H)butenolide and/or a salt thereof as an active ingredient.
  • Matrix metalloproteinase 9 is known to degrade type IV collagen and laminin, which are basement membrane components that make up the extracellular matrix, and elastin, which is a dermal matrix component, and the production of matrix metalloproteinase 9 is the cause of wrinkles.
  • the agent containing 5-hydroxy-4-phenyl-2(5H)butenolide and/or a salt thereof as an active ingredient and suppressing the production of matrix metalloprotease 9 is suitable for preventing and/or improving wrinkles. can be used.
  • an agent for suppressing the production of artemin which contains 5-hydroxy-4-phenyl-2(5H)butenolide and/or a salt thereof as an active ingredient. It solves the above problems. As described above, the production of artemin in the skin is thought to induce abnormal proliferation of nerve cells and cause atopic dermatitis. That is, the above-described agent that suppresses artemin production, containing 5-hydroxy-4-phenyl-2(5H)butenolide and/or a salt thereof as an active ingredient, is suitable for the prevention and/or treatment of atopic dermatitis. can be used.
  • steroids e.g., prednisolone, hydrocortisone, etc.
  • immunosuppressants e.g., tacrolimus, pimecrolimus, etc.
  • the agent for suppressing the production of artemin according to one aspect of the present invention is distinct from the above-mentioned conventional therapeutic agents for atopic dermatitis, and the production of artemin, which is considered to be the cause of atopic dermatitis, is can be suppressed, so there is an advantage that atopic dermatitis can be completely cured.
  • the evaluation method of the present invention it is possible to quantitatively evaluate the elicitability of a foreign body reaction in the skin of a test sample with a simple operation.
  • the searching method of the present invention it is possible to quickly search for a substance that can suppress the foreign body response reaction in the skin with a simple operation.
  • the agent of the present invention the expression of genes transcribed with the involvement of the foreign body response element (XRE) can be suppressed, and matrix metalloproteinase 9 and/or atopic skin causing wrinkles can be suppressed. It can suppress the production of artemin, which causes inflammation.
  • XRE foreign body response element
  • FIG. 1 shows the structure of a reporter vector encoding a foreign-body response element (XRE), a minimal promoter downstream thereof, and a reporter protein.
  • Fig. 2 shows the appearance of keratinocytes (XRE-NLuc::HaCaT cells) transformed with a reporter vector encoding a foreign-body response element (XRE), a minimal promoter downstream thereof, and a reporter protein.
  • FIG. 10 is a diagram showing expression levels of reporter proteins in XRE-NLuc::HaCaT cells that were contacted with a given concentration of FICZ.
  • FIG. 2 is a diagram showing the results of quantifying the expression level of artemin mRNA in HaCaT cells contacted with a predetermined concentration of FICZ using a PCR method.
  • FIG. 3 is a diagram showing the results of quantifying the expression level of matrix metalloprotease 9 mRNA in HaCaT cells contacted with a predetermined concentration of FICZ using a PCR method.
  • FIG. 4 is a diagram showing expression levels of reporter proteins in XRE-NLuc::HaCaT cells that were brought into contact with a medium containing a given concentration of fleglide 1 (FG1) or cinnamaldehyde (CA) together with a given concentration of FICZ.
  • FIG. 4 is a diagram showing the expression level of artemin mRNA in HaCaT cells that were brought into contact with a medium containing FICZ at a given concentration and freglide 1 (FG1) at a given concentration.
  • FIG. 4 is a diagram showing the expression level of artemin mRNA in HaCaT cells that were brought into contact with a medium containing FICZ at a given concentration and freglide 1 (FG1) at a given concentration.
  • FIG. 4 is a diagram showing the expression level of artemin mRNA in HaCaT cells that were brought into contact with a medium containing FICZ at a given concentration and freglide 1 (FG1) at a given concentration.
  • FIG. 3 is a diagram showing the results of quantifying the expression level of matrix metalloprotease 9 (MMP9) mRNA in HaCaT cells that were contacted with freglide 1 at a predetermined concentration, using a PCR method.
  • FIG. 4 is a diagram showing the results of quantifying the expression level of matrix metalloproteinase 2 (MMP2) mRNA in HaCaT cells that were contacted with freglide 1 at a predetermined concentration, using a PCR method.
  • MMP9 matrix metalloprotease 9
  • MMP2 matrix metalloproteinase 2
  • FIG. 3 is a diagram showing the results of evaluation by gelatin zymography of the expression level of matrix metalloprotease 9 (MMP9) at the protein level in HaCaT cells contacted with freglide 1 at a predetermined concentration.
  • FIG. 3 is a diagram showing the results of quantification by PCR of the expression level of matrix metalloproteinase 9 (MMP9) mRNA in HaCaT cells contacted with retinoic acid or nicotinamide at a predetermined concentration.
  • MMP9 matrix metalloprotease 9
  • FIG. 3 is a diagram showing the results of quantifying the expression level of matrix metalloproteinase 2 (MMP2) mRNA in HaCaT cells that were brought into contact with retinoic acid or nicotinamide at a predetermined concentration, using a PCR method.
  • MMP2 matrix metalloproteinase 2
  • FIG. 3 is a diagram showing the results of quantifying the expression level of TIMP-1 (Tissue Inhibitor of Matrix Metalloprotease-1) mRNA in HaCaT cells contacted with freglide 1 at a predetermined concentration, using a PCR method.
  • TIMP-1 tissue Inhibitor of Matrix Metalloprotease-1
  • FIG. 2 is a diagram showing the results of quantifying the expression level of TIMP-1 (Tissue Inhibitor of Matrix Metalloprotease-1) mRNA in HaCaT cells contacted with a predetermined concentration of retinoic acid or nicotinic acid amide using a PCR method.
  • FIG. 3 is a diagram showing the results of evaluating the cell viability of HaCaT cells treated with a predetermined concentration of fraglide 1 by the WST-1 method.
  • a foreign body response in the skin means a foreign body response in the skin involving a foreign body response element (XRE).
  • XRE foreign body response element
  • XRE foreign body response element
  • the expression of a gene having the foreign substance response element (XRE) as an enhancer in its transcriptional regulatory region is activated. It is presumed that this is mainly because the aromatic hydrocarbon receptor (AhR) recognizes the xenobiotic response element (XRE) and specifically activates the expression of genes present downstream thereof.
  • the foreign body response in the skin can also be called a foreign body response involving the aromatic hydrocarbon receptor (AhR) and the foreign body response element (XRE) in the skin.
  • the elicitability of a foreign body response refers to the property that causes the above-mentioned foreign body response, and is a concept that includes its strength and weakness.
  • a high foreign-body reaction elicitability means that the foreign-body response reaction is strongly activated, and a low foreign-body-response-elicitance means that the property of activating the foreign-body response reaction is weak.
  • Evoking a foreign body response more specifically means expressing and/or enhancing the expression of a gene that is transcribed with the participation of a foreign body response element (XRE).
  • a substance having the ability to elicit a foreign body response reaction comes into contact with skin cells, it causes the cells to express or enhance the expression of genes transcribed with the involvement of the foreign body response element (XRE).
  • expression of a gene means that the protein encoded by that gene is produced, and enhancing expression of a gene means increasing the amount of production of the protein encoded by that gene.
  • Xenobiotic Response Element is an enhancer sequence found as a base sequence specifically recognized by activated aromatic hydrocarbon receptor (AhR: Aryl Hydrocarbon Receptor). and is known to have the sequence 5'-CACGC-3'.
  • Aromatic hydrocarbon receptors (AhR) present in the cytoplasm translocate to the cell nucleus when activated by binding to self-activating ligand molecules, where they translocate to the cell nucleus and translocate an enhancer sequence containing a foreign body response element (XRE) in the transcriptional regulatory region. known to specifically enhance the expression of genes with
  • the skin is an organ that protects the external surface of the body, composed of skin cells such as keratinocytes, fibroblasts, and corneocytes.
  • the skin is composed of three layers, the epidermis, the dermis, and the subcutaneous tissue. It is believed to be induced by the binding of hydrocarbon receptors (AhR) to exogenous foreign substances. Therefore, keratinocytes are particularly preferably used in the evaluation method according to the present invention.
  • the keratinocytes used in the evaluation method according to the present invention are not particularly limited, and keratinocytes derived from animals such as humans, mice, rats, hamsters, rabbits, dogs, cats, pigs, sheep, horses, and cows can be used. Human-derived keratinocytes are preferred, although they can be used.
  • the keratinocytes may be those collected from animals, or commercially available established cell lines. For example, established cell lines of human-derived keratinocytes include HaCaT cells and NHEK cells.
  • a reporter vector used for transformation should have at least an enhancer sequence containing a foreign substance response element (XRE) and a sequence encoding a reporter protein downstream thereof.
  • an enhancer sequence is a nucleotide sequence that exists in the transcriptional regulatory region of a gene and has the function of activating the expression of that gene in response to a specific stimulus, and is sometimes simply called an enhancer.
  • the expression of a reporter protein having an enhancer sequence containing a foreign body response element (XRE) in its upstream transcriptional regulatory region is activated by the foreign body response reaction in the skin.
  • the expression level of the reporter protein reflects the degree of the foreign body response reaction. Therefore, by using keratinocytes transformed with such a reporter vector, it is possible to evaluate the elicitability of the foreign body response reaction in the skin of the test sample.
  • the foreign body response element (XRE) is a nucleotide sequence found in the transcriptional regulatory region of a gene whose expression is increased by activation of the aromatic hydrocarbon receptor (AhR), 5'-CACGC-3' is an enhancer sequence having a basic sequence of
  • the reporter vector used in the method of the present invention has at least one foreign body response element (XRE) in the transcriptional regulatory region upstream of the sequence encoding the reporter protein.
  • the foreign body response element (XRE) may be included repeatedly, and from the viewpoint of increasing the detection sensitivity, it is preferable that two or more foreign body response elements (XRE) are included, and three or more are included.
  • XRE foreign substance response elements
  • P4501A1 CYP1A1
  • P4501B1 CYP1B1
  • glutathione-S-transferase gene glutathione-S-transferase gene
  • quinone reductase gene UDP-glucuronosyltransferase gene, etc. Anything found may be used.
  • the nucleotide sequences of these genes can be obtained from public databases such as the database of the National Center for Biotechnology Information (NCBI).
  • the reporter vector used for transformation has a sequence encoding a reporter protein downstream of an enhancer sequence containing a foreign substance response element (XRE).
  • XRE foreign substance response element
  • Any reporter protein can be used as long as the signal reflecting its expression level can be directly or indirectly measured.
  • reporter proteins should be selected. For example, when a luminescence photometer is available, luminophore proteins such as firefly luciferase, Renilla luciferase, marine copepod luciferase, and spiny gossamer luciferase can be measured using a fluorometer or fluorescence microscope.
  • Fluorescent proteins such as Blue Fluorescent Protein (BFP), Green Fluorescent Protein (GFP), Yellow Fluorescent Protein (YFP), Red Fluorescent Protein (RFP), etc. If an absorptiometer is available, a chromogenic enzyme protein such as ⁇ -galactosidase can be used as the reporter protein. Nucleotide sequences encoding reporter proteins can be obtained from public databases such as the database of the US National Center for Biotechnology Information (NCBI).
  • NCBI National Center for Biotechnology Information
  • the reporter vector used for transformation can contain various sequences necessary for expressing the reporter protein in keratinocytes into which the reporter vector has been introduced.
  • a reporter vector used for transformation may contain a promoter sequence, a sequence that confers a ribosome binding site to the mRNA, a terminator sequence for transcription termination, an origin of replication sequence, a sequence that encodes a resistance gene to a drug of choice, and the like.
  • the reporter vector used in the evaluation method of the present invention may be commercially available or may be produced by oneself.
  • a reporter vector containing a foreign body response element (XRE) in an enhancer sequence can be purchased from Promega Corporation (eg, product name "pNL[NLucP/XRE/Hygro] Vector", catalog number: CS186808).
  • the reporter vector used in the evaluation method of the present invention can also be produced by purchasing a reporter vector having a multicloning site and incorporating an enhancer sequence containing a foreign substance response element (XRE) according to a conventional method.
  • reporter vector used for transformation there are no particular restrictions on the type of reporter vector used for transformation, and for example, plasmids, cosmids, phagemids, virus vectors, etc. can be used. In any case, a reporter vector that can be expressed in target keratinocytes may be appropriately selected.
  • the above-mentioned reporter vector may be introduced into keratinocytes according to a routine method in the art.
  • the method of introducing the reporter vector into keratinocytes there is no particular limitation on the method of introducing the reporter vector into keratinocytes, and any appropriate method, whether physical or chemical, can be used. Examples of physical introduction methods include electroporation, sonoporation, and microinjection.
  • a chemical introduction method in addition to the calcium phosphate method and the lipofection method using liposomes, cationic lipids, lipidoids, cationic polymers, membrane-permeable peptides, antibodies, antibody fragments, proteins, nanoparticles, and microparticles. , an emulsion, etc., using an appropriate delivery means.
  • the transformed keratinocytes used in the evaluation method of the present invention are transformants in which the DNA introduced by the reporter vector is stably introduced, that is, Stably transformed keratinocytes are preferred.
  • Stably transformed keratinocytes can be established according to routine methods in the art.
  • a reporter vector a reporter vector further containing a gene resistant to a selective drug is introduced into keratinocytes, and then the keratinocytes introduced with the reporter vector are introduced using a cell culture medium containing a predetermined amount of the selective drug. Culture should be done for about two weeks.
  • stably transformed keratinocytes can be obtained by culturing keratinocytes for a predetermined period of time using a cell culture medium containing a selection agent.
  • the selective drug for example, hygromycin B, diocin, geneticin, puromycin, blasticidin, etc. can be used.
  • the type of substance to be the test sample used in the evaluation method of the present invention may be a naturally occurring substance, an artificially synthesized substance, or an organic compound or an inorganic compound.
  • examples include low-molecular-weight organic compounds, amino acids, lipids, peptides, proteins, nucleotides, nucleic acids, carbohydrates, natural polymers, synthetic polymers, and combinations thereof.
  • the test sample does not necessarily have to be an isolated substance, and may be a mixture of multiple substances.
  • Such mixtures include, for example, plant extracts, cosmetics such as lotions, makeup bases, serums, moisturizing creams, milky lotions, blushers, lipsticks, hand creams, lip balms, mascara and eye shadows, laundry detergents, Daily necessities such as dishwashing detergents, facial soaps, bath salts, hand soaps, body soaps, shampoos, hand sanitizers, ointments, insect repellent sprays, medicated cosmetics, and quasi-drugs such as sunscreen creams. It is not limited to these.
  • the evaluation method according to the present invention is suitably used for safety evaluation and skin compatibility evaluation of the product.
  • the test sample may be river, lake, well water, spring water, tap water, or sea water.
  • the evaluation method of the present invention can be suitably used as a method for evaluating wrinkle-inducing properties and atopic dermatitis-inducing properties of test samples.
  • Step of contacting transformed keratinocytes with a solution containing a test sample This step is a step of contacting transformed keratinocytes with a solution containing a test sample to be evaluated.
  • a solution containing a test sample can be prepared by mixing and dissolving the test sample with an appropriate solvent such as purified water, physiological saline, or cell culture medium.
  • an appropriate solvent such as purified water, physiological saline, or cell culture medium.
  • the test sample is insoluble in water, it may be used in a state of being suspended or dispersed in water, or dissolved in an organic solvent such as DMSO that has low cytotoxicity and is miscible with water. may be diluted with cell culture medium or saline.
  • a solution/suspension/dispersion containing the test sample thus prepared (hereinafter simply referred to as "solution” unless otherwise specified) is applied to a cell culture plate in which transformed keratinocytes are present;
  • a solution containing the test sample can be brought into contact with the transformed keratinocytes by adding a predetermined amount to the culture dish.
  • the components other than the test sample contained therein substantially do not induce a foreign body response reaction in the skin. can be used.
  • a predetermined After incubation for a period of time it is preferably used in step (2) described below.
  • the incubation is preferably at least 6 hours or longer, more preferably 12 hours or longer, even more preferably 18 hours or longer, and 24 hours. Incubation as above is even more preferable. Incubation can be performed under the conditions of 37° C. and 5% CO 2 according to a conventional method.
  • test sample-free solution a solution that is substantially the same as the solution containing the test sample except that it does not contain the test sample.
  • test sample-free solution a solution that is substantially the same as the solution containing the test sample except that it does not contain the test sample.
  • a solution that does not contain the test sample can be, for example, the cell culture medium used to prepare the solution that contains the test sample.
  • a solution containing no test sample and keratinocytes may be brought into contact with the keratinocytes in step (2) described below.
  • Step (2) Step of measuring the expression level of the reporter protein
  • the expression level of the reporter protein in the keratinocytes contacted with the solution containing the test sample in step (1) and a negative control were used.
  • it is a step of measuring the expression level of the reporter protein in the keratinocytes contacted with a solution containing no test sample.
  • the expression level of the reporter protein can be determined by quantitatively measuring the intensity of the signal derived from the reporter protein that reflects the expression level of the reporter protein.
  • the intensity of the signal derived from the reporter protein can be measured by appropriate means depending on the type of reporter protein. For example, when using a luminous enzyme protein such as firefly luciferase, Renilla luciferase, marine copepod luciferase, or spiny gooseberry luciferase as the reporter protein, it has the property of emitting light upon enzymatic reaction by the luminous enzyme protein.
  • the intensity of the signal derived from the reporter protein can be measured by using a substrate and a luminescence photometer for measuring luminescence intensity.
  • reporter proteins blue fluorescent protein (BFP), green fluorescent protein (GFP), yellow fluorescent protein (YFP), red fluorescent protein (RFP), etc.
  • BFP blue fluorescent protein
  • GFP green fluorescent protein
  • YFP yellow fluorescent protein
  • RFP red fluorescent protein
  • the fluorescence intensity emitted by the fluorescent protein may be measured using a fluorometer.
  • a chromogenic enzyme protein such as ⁇ -galactosidase
  • a substrate having the property of absorbing light of a specific wavelength or emitting fluorescence upon enzymatic reaction by the chromogenic enzyme protein for example, When the chromogenic enzyme protein is ⁇ -galactosidase, 5-bromo-4-chloro-3-indolyl- ⁇ -D-galactopyranoside, 2-nitrophenyl- ⁇ -D-galactopyranoside, fluorescein- ⁇ -D-galactopyranoside, etc.
  • an absorptiometer for measuring absorbance or a fluorometer for measuring fluorescence intensity the intensity of the signal derived from the reporter protein can be measured.
  • the expression level of the reporter protein produced by the transformed keratinocytes used in the present invention reflects the degree of the foreign body response response involving the foreign body response element (XRE). Therefore, the elicitability of the foreign body response can be evaluated based on the expression level of the reporter protein. In other words, the higher the expression level of the reporter protein, the higher the elicitability of the foreign body response reaction.
  • the expression level of the reporter protein is typically determined by the expression level of the reporter protein in the keratinocytes contacted with the solution containing the test sample, and the expression level of the reporter protein in the keratinocytes contacted with the solution containing no test sample (negative control).
  • test sample can be evaluated as having the ability to induce a foreign body reaction in the skin. Needless to say, the larger the degree of increase in the expression level of the reporter protein compared to the negative control, the stronger the elicitability of the foreign body response reaction.
  • keratinocytes brought into contact with a solution containing a test sample and a negative control are used. If so, it may further include a step of measuring the number of viable keratinocytes that have been brought into contact with the solution that does not contain the test sample.
  • the expression level of the reporter protein measured in step (2) above is divided by the number of viable cells measured in this step to obtain the reporter protein per unit viable cell number. Expression levels can be obtained.
  • the number of viable cells can be measured according to a conventional method in the art.
  • the XTT method, MTS method, WST method, etc., which are color determination methods, may be used, but are not limited to these.
  • the present invention provides a method for searching for a substance that has inhibitory properties against foreign body response reactions in the skin. The search method will be described below.
  • the inhibitory property of a foreign substance response reaction refers to the property of suppressing a foreign substance response reaction, and more specifically, the suppression of a foreign substance response reaction means that the expression of a gene that is transcribed with the involvement of a foreign substance response element (XRE) is suppressed. means to reduce Incidentally, as mentioned above, the expression of a gene means that the protein encoded by the gene is produced, and the suppression of the expression of a gene means that the production amount of the protein encoded by the gene is reduced. means that
  • candidate substances to be searched there are no particular restrictions on the types of candidate substances to be searched, and they may be naturally derived substances or artificially synthesized substances. Moreover, it may be an organic compound or an inorganic compound. To give examples, examples include low-molecular-weight organic compounds, amino acids, lipids, peptides, proteins, nucleotides, nucleic acids, carbohydrates, natural polymers, synthetic polymers, and combinations thereof.
  • the candidate substance does not necessarily have to be an isolated substance, and may be a mixture of multiple substances. Such mixtures include, for example, but are not limited to plant extracts.
  • Genes transcribed with the involvement of the foreign body response element include, for example, genes encoding matrix metalloproteinase 9, which causes wrinkles, and artemin, which causes atopic dermatitis. Therefore, it can be said that a substance that has an inhibitory effect on the foreign body reaction in the skin has the property of inhibiting the expression of the above gene.
  • the method for searching according to the present invention can be suitably used as a method for searching for substances that prevent and/or improve wrinkles and substances that have an effect of preventing and/or treating atopic dermatitis. can.
  • the same transformed keratinocytes as already described for the evaluation method can be used. Therefore, for the transformed keratinocytes and the method for establishing the same, please refer to the above description of the evaluation method.
  • a step of contacting the transformed keratinocytes with a test solution containing the candidate substance or a reference solution containing no candidate substance A step of contacting a test solution and a reference solution containing no candidate substance as a control.
  • the method for preparing the test solution containing the candidate substance and the reference solution not containing the candidate substance, and the method for contacting these solutions with keratinocytes are described in the section on the evaluation method described in the solution containing the test sample. is the same as described for
  • the candidate substance-containing test solution and the candidate substance-containing reference solution preferably contain a substance that induces a foreign body reaction in the skin.
  • the detection sensitivity can be improved by evaluating the ability to suppress the foreign body response reaction based on the expression level of the reporter protein induced by the reference solution containing the substance that induces the foreign body response reaction.
  • the substance that induces a foreign body response reaction in the skin may be any substance that increases the expression of the gene that is transcribed in the skin with the involvement of the foreign body response element (XRE).
  • a test solution containing the candidate substance and the candidate substance After contact with a reference solution that does not contain, it is preferably used in step (2) described later after incubation for a predetermined time.
  • the incubation time is not particularly limited, for example, after contacting the keratinocytes with the test solution and the keratinocytes with the reference solution, incubation for at least 6 hours or more may be used in the subsequent step (2). Incubation for 12 hours or longer is preferred, incubation for 18 hours or longer is more preferred, and incubation for 24 hours or longer is even more preferred.
  • Step of measuring expression level of reporter protein This is the step of measuring the expression level of the reporter protein in the keratinocytes contacted with the reference solution containing no reference solution.
  • a specific method for measuring the expression level of the reporter protein is described in ⁇ 1. Method for Evoking Evoking Ability of Foreign Body Response in Skin>.
  • Step (3) Step of comparing the expression level of the reporter protein in the keratinocytes contacted with the test solution containing the candidate substance measured in step (2) above, and the expression level of the reporter protein in the keratinocytes that do not contain the candidate substance.
  • This is a step of comparing the expression levels of the reporter protein in the keratinocytes that have been brought into contact with the reference solution, and evaluating whether or not the candidate substance has the ability to suppress the foreign body reaction in the skin based on the comparison results. Specifically, the expression level of the reporter protein in keratinocytes contacted with a test solution containing the candidate substance is compared with the expression level of the reporter protein in keratinocytes contacted with a reference solution containing no candidate substance.
  • the candidate substance has an inhibitory effect on the foreign body reaction in the skin.
  • the greater the degree of decrease in the expression level of the reporter protein in the keratinocytes contacted with the test solution the more the foreign body response reaction in the skin. This indicates that the inhibitory effect of Therefore, according to the search method of the present invention, it is possible to evaluate not only the presence or absence of the inhibitory effect of the candidate substance on the foreign body response, but also the degree of the inhibitory effect of the candidate substance on the foreign body response.
  • keratinocytes contacted with the test solution and keratinocytes contacted with the reference solution may further include the step of measuring the viable cell count of the cells.
  • the expression level of the reporter protein measured in step (2) above is divided by the number of viable cells measured in this step to obtain the reporter protein per unit viable cell number. Expression levels can be obtained. As a result, it is possible to correct the effect of variations in the number of cells between samples, so that it is possible to more accurately evaluate the suppressive properties of foreign body responses.
  • the number of viable cells can be measured according to a routine method in the art.
  • suppressing the foreign body response reaction means reducing the expression of genes transcribed with the involvement of the foreign body response element (XRE). That is, an agent that suppresses the foreign body response in the skin can also be said to be an agent that suppresses the expression of genes that are transcribed with the involvement of the foreign body response element (XRE).
  • the agent for suppressing foreign body reaction in the skin of the present invention contains 5-hydroxy-4-phenyl-2(5H)butenolide and/or its salt as an active ingredient.
  • 5-Hydroxy-4-phenyl-2(5H)butenolide is a butenolide compound found in vinegar and is also called fleglide 1 or 5-hydroxy-4-phenyl-2(5H)furanone, and its structural formula is (I) (Aydan H. Yatmaz et al., Journal of Oleo Science, 2017, 66: 1381-1386).
  • 5-Hydroxy-4-phenyl-2(5H)butenolide is known to exhibit tautomerism, and tautomers represented by chemical formula (II) and chemical formula (III) are Are known. In this specification, unless otherwise specified, 5-hydroxy-4-phenyl-2(5H)butenolide also includes its tautomers.
  • 5-hydroxy-4-phenyl-2(5H)butenolide can be obtained by extraction from vinegar.
  • a method for obtaining 5-hydroxy-4-phenyl-2(5H)butenolide from vinegar is described, for example, in WO2016/006548.
  • 5-hydroxy-4-phenyl-2(5H)butenolide can also be artificially synthesized.
  • 5-Hydroxy-4-phenyl-2(5H)butenolide can be synthesized, for example, by the methods described in JP-A-6-211825 and JP-A-11-152280.
  • the salt of 5-hydroxy-4-phenyl-2(5H)butenolide is not particularly limited as long as it is a pharmaceutically acceptable salt.
  • 5-Hydroxy-4-phenyl-2(5H)butenolide and salts thereof may be hydrates, organic solvates such as alcohols, or anhydrides.
  • prodrugs having functional groups modified so that 5-hydroxy-4-phenyl-2(5H)butenolide and its salts are produced in vivo may be used.
  • 5-hydroxy-4-phenyl-2(5H)butenolide and/or salts thereof suppress the foreign body response response in the skin, that is, the foreign body response element (XRE) in the skin.
  • XRE foreign body response element
  • such genes are known to be expressed up-regulated in the presence of an activated aromatic hydrocarbon receptor (AhR).
  • 4-phenyl-2(5H)butenolide has the effect of suppressing the expression of artemin in keratinocytes. That is, an agent containing 5-hydroxy-4-phenyl-2(5H)butenolide and/or a salt thereof as an active ingredient can be used as an agent for suppressing the production of artemin.
  • Artemin is a member of the glial cell line-derived neurotrophic factor (GDNF) family, and has the ability to induce proliferation and elongation of nerve cells through binding to the GDNF family receptor ⁇ 3 (Gfr ⁇ 3). Artemin is expressed in the skin of mice in which AhR is constitutively activated, and this causes abnormal extension of nerves into the skin epidermis, causing symptoms of hypersensitivity and itching, which in turn reduces the skin barrier. It is thought to cause loss of function and atopic dermatitis.
  • GDNF glial cell line-derived neurotrophic factor
  • an agent for inhibiting artemin production containing 5-hydroxy-4-phenyl-2(5H)butenolide and/or a salt thereof as an active ingredient is suitably used for the prevention and/or treatment of atopic dermatitis.
  • the prevention and / or treatment of atopic dermatitis means suppression of one or more symptoms of atopic dermatitis or symptoms associated therewith (e.g., itching, eczema, lichenification, etc.), or It means to prevent the development of such symptoms or to reduce the rate of development.
  • -4-Phenyl-2(5H)butenolide has the effect of suppressing the expression of matrix metalloproteinase 9 in keratinocytes. That is, an agent containing 5-hydroxy-4-phenyl-2(5H)butenolide and/or a salt thereof as an active ingredient can be used as an agent for suppressing the production of matrix metalloproteinase 9.
  • Matrix metalloprotease is a general term for metalloprotease (protease having a metal ion at the catalytic site of the active center) that degrades extracellular matrix. At least 11 types of MMPs are known in humans, and they differ in substrate proteins and expression sites. Matrix metalloprotease 9 (MMP9) is an MMP with gelatinase activity, and is closely related to wrinkle formation, as evidenced by the fact that its production is increased in rats with severe wrinkles due to UV irradiation. Therefore, it is believed that suppression of MMP9 expression is effective in preventing skin aging and wrinkle formation (Japanese Unexamined Patent Application Publication No. 2011-178747, Shinji Inomata et al., Journal of Investigative Dermatology 2003, 120: 128 -134.).
  • an agent that suppresses the production of matrix metalloprotease 9, containing 5-hydroxy-4-phenyl-2(5H)butenolide and/or a salt thereof as an active ingredient is preferably used to prevent and/or improve wrinkles.
  • the prevention and/or improvement of wrinkles means preventing the formation of wrinkles or improving already formed wrinkles.
  • matrix metalloproteinase 9 is a factor involved not only in the formation of wrinkles but also in many inflammatory skin diseases such as vitiligo, psoriasis, atopic dermatitis, scleroderma, hypomelanosis, and albinism.
  • skin diseases such as vitiligo, psoriasis, atopic dermatitis, scleroderma, hypomelanosis, and albinism.
  • it is involved in skin inflammation caused by ultraviolet rays and the formation of blisters in pemphigoid (Takashi Kobayashi, Inflammation and Regeneration 2004, 24: 578-583.), and is also related to depigmentation disorders associated with the above inflammatory skin diseases. It is known to do (Japanese Patent Publication No. 2020-504719).
  • the agent according to the present invention can be used for various inflammatory skin diseases caused by increased expression of matrix metalloprotease 9 and those associated with such inflammatory skin diseases. It is effectively used for the prevention and/or treatment of hypopigmentation disorder.
  • prevention and / or treatment means suppressing one or more of these various diseases or symptoms associated with them, or preventing the development of such symptoms or reducing the incidence As mentioned above, it means to let
  • matrix metalloproteinase 9 which has gelatinase activity and acts to degrade the extracellular matrix that constitutes elastic tissues such as arteries, tendons, and skin, such as collagen, gelatin, and elastin, is used not only for inflammatory diseases in the skin, but also for many other diseases. It has been clarified to be involved in various diseases in organs, for example, it plays an important role in the invasion and metastasis of cancer cells (Takashi Kobayashi, Inflammation and Regeneration 2004, 24: 578-583. ), rheumatoid arthritis, osteoporosis, periodontitis, etc. (JP 2015-17048 A).
  • the agent according to the present invention particularly an agent that suppresses the production of matrix metalloproteinase 9, can be used in various diseases caused by increased expression of matrix metalloprotease 9, such as cancer, rheumatoid arthritis, osteoporosis, and tooth decay. It can also be suitably used for the prevention and/or treatment of peritis.
  • 5-hydroxy-4-phenyl-2(5H)butenolide and/or salts thereof not only suppress the production of matrix metalloprotease 9, but also inhibit matrix metalloprotease. It has the effect of promoting the production of TIMP-1 (tissue inhibitor of matrix metalloprotease-1). That is, in still another aspect of the present invention, there is provided an agent that promotes the production of TIMP-1, containing 5-hydroxy-4-phenyl-2(5H)butenolide and/or a salt thereof as an active ingredient.
  • TIMP-1 acts as a matrix metalloprotease inhibitor, thus promoting the production of TIMP-1 containing 5-hydroxy-4-phenyl-2(5H)butenolide and/or a salt thereof as an active ingredient.
  • the agent can be suitably used for preventing and/or improving wrinkles.
  • the agent that promotes the production of TIMP-1 can be effectively used not only for the prevention and/or improvement of wrinkles, but also for the prevention and/or treatment of various diseases caused by increased expression of matrix metalloproteinase 9. It goes without saying that
  • the content of 5-hydroxy-4-phenyl-2(5H)butenolide and/or salts thereof contained in the agent according to the present invention is not particularly limited, but for example, 0.0001% by weight to 10% by weight, 0 0.0005% to 5%, 0.001% to 2% or 0.005% to 1% by weight.
  • the agent according to the present invention can be used particularly preferably for skin cells, more preferably for skin epidermal cells, and even more preferably for keratinocytes.
  • the agent according to the present invention may be applied to other types of cells than skin.
  • the agent according to the present invention may be applied to cancer cells.
  • the agent according to the present invention may of course be provided as a pharmaceutical, but may also be provided as a quasi-drug, cosmetics, daily necessities, foodstuffs, and the like.
  • Food products here include health foods (functional foods, dietary supplements, health supplements, nutrient-enriched foods, nutrient-adjusting foods, and supplements), foods for special dietary uses, and foods with health claims (foods for specified health uses, foods with nutrient function claims).
  • cosmetics include skin care cosmetics (lotion, milky lotion, cream, serum, pack, cleansing, facial cleanser, soap, hand soap, etc.), makeup cosmetics (makeup base, foundation, concealer, face powder, lipstick, blusher, eyeshadow, eyeliner, eyebrow, mascara, etc.), body care cosmetics (body soap, body milk, body lotion, body cream, body oil, body powder, sunscreen, sun oil, deodorant spray, bleaching cream, depilatory cream, hand cream, etc.), hair care cosmetics (shampoo, rinse, rinse-in shampoo, dry shampoo, hair treatment, conditioner, hair milk, hair cream, hair oil, hair mist, tonic, hair foam, hair gel, wax, pomade, hair liquid, wave agent, hair color, bleach, color rinse, hair restorer, hair restorer, etc.), toothpaste, mouthwash, gargle, bath cosmetics (bath milk, bath salt, bath oil, etc.), and fragrance cosmetics (perfume) , eau de cologne, etc.) and the like, but are
  • Examples of daily necessities include, but are not limited to, laundry detergents, kitchen detergents, household detergents, bathroom detergents, disinfectants, insect repellents, insect repellents, and wet wipes.
  • These quasi-drugs, cosmetics, daily necessities, or foodstuffs containing fraglide 1 are used for the prevention and/or treatment of inflammatory skin diseases such as atopic dermatitis, or the prevention and/or improvement of wrinkles. It can be preferably used.
  • the administration method of the agent according to the present invention is not particularly limited, and may be administered orally or parenterally.
  • Parenteral administration includes skin administration, transdermal administration, transmucosal administration, ocular administration, nasal administration, tube administration, inhalation administration, nebulization administration, subcutaneous injection, intradermal injection, intravenous injection, and intramuscular injection. and so on.
  • the dosage form of the agent according to the present invention is not particularly limited, and an appropriate dosage form may be appropriately selected according to the route of administration.
  • oral administration for example, tablets, capsules, powders, powders, granules, syrups, etc.
  • parenteral administration for example, injections, liquids, ointments, poultices, creams , lotions, gels, external preparations for skin, sprays, poultices, etc., but are not limited to these.
  • the agent according to the present invention may further contain other ingredients, depending on its formulation form and/or application.
  • excipients for example, excipients, base materials, buffers, preservatives, chelating agents, antioxidants , surfactants, pearl luster imparting agents, pH adjusters, thickeners and/or other common pharmaceuticals, quasi-drugs, cosmetics, daily necessities or foodstuffs, etc.
  • One or two or more ingredients It may be provided as a composition containing.
  • excipients include monosaccharides such as glucose, galactose and fructose; disaccharides such as maltose, trehalose and lactose; oligosaccharides such as maltotriose and maltotetraose; sugar alcohols such as sorbitol, mannitol and maltitol.
  • cellulose including crystalline cellulose), starch, dextrin, dextran, polysaccharides such as cyclic sugars (cyclodextrin, isomaltodextrin, etc.), and the like, but are not limited thereto.
  • base materials include water; seawater, deep sea water; lower alcohols such as ethanol and isopropanol; higher alcohols such as cetanol and stearyl alcohol; polyhydric alcohols such as glycerin, butylene glycol, propylene glycol and polyethylene glycol; Hydrocarbons such as liquid paraffin; silicone oils such as dimethiconol and modified silicone; oils and fats such as coconut oil, olive oil and rice bran oil; waxes such as jojoba oil and beeswax;
  • buffers include, but are not limited to, phosphate buffers, borate buffers, citrate buffers, tartrate buffers, acetate buffers, amino acids, and the like.
  • Preservatives include, for example, benzoic acid, sodium benzoate, paraoxybenzoic acid esters such as methyl paraoxybenzoate, quaternary ammonium salts such as benzalkonium chloride, benzyl alcohol, sorbic acid and its salts, thimerosal, methylparaben, May include, but are not limited to, ethylparaben, propylparaben, butylparaben, cetylpyridinium chloride, catechin, phenoxyethanol, and the like.
  • Chelating agents may include, for example, sodium edetate, disodium edetate, citric acid, phytic acid, gluconic acid, sodium gluconate, etidronic acid, tetrasodium etidronate, pentasodium pentetate, and the like. Not limited.
  • antioxidants include sodium bisulfite, sodium sulfite, sodium pyrosulfite, ascorbic acid, ergothioneine, reduced 3,4-dihydroxyphenylethanol elenolic acid, and the like. but not limited to these.
  • the surfactant may be a nonionic surfactant, a cationic surfactant, an anionic surfactant, an amphoteric surfactant, or a silicone surfactant.
  • nonionic surfactants include polyoxyethylene alkyl ethers such as ceteareth-13 and laureth-7; polyoxyethylene fatty acid esters; polyglyceryl-2 oleate, polyglyceryl-10 oleate, polyglyceryl-10 decaisostearate, etc.
  • polyglycerin fatty acid esters such as polysorbate-20; polyoxyethylene sorbitan fatty acid esters such as polysorbate-20; polyoxyethylene hydrogenated castor oil; sorbitan fatty acid esters such as sorbitan sesquioleate; glycerin fatty acid esters such as glyceryl stearate; Fatty acid alkanolamides such as cocamide methyl MEA; alkyl glycosides and the like, but are not limited to these.
  • cationic surfactants include cationized cellulose such as polyquaternium-10; fatty acid amide amine salts; monoalkyl-type quaternary ammonium salts such as behentrimonium methosulfate; dialkyl-type quaternary ammonium salts. , but not limited to.
  • anionic surfactants include fatty acid salts such as laurate, stearate, myristate and palmitate; alkyl sulfate salts such as sodium lauryl sulfate; alkyl ether sulfate salts such as sodium laureth sulfate.
  • cocoyl alanine salts such as sodium cocoyl alanine and cocoyl alanine triethanolamine
  • cocoyl methyl alanine salts such as sodium cocoyl methyl alanine
  • lauroyl methyl alanine salts such as sodium lauroyl methyl alanine and lauroyl methyl alanine triethanolamine
  • cocoyl glutamine salts, etc. may include, but are not limited to:
  • Amphoteric surfactants can include, but are not limited to, betaine surfactants such as lauryl betaine.
  • silicone-based surfactants include dimethicone (methylpolysiloxane), amodimethicone (aminoethylaminopropylmethylsiloxane/dimethylsiloxane copolymer), PEG-10 dimethicone (polyoxyethylene/methylpolysiloxane copolymer), and the like. may include, but are not limited to:
  • pearl luster imparting agent examples include, but are not limited to, ethylene glycol diastearate, ethylene glycol monostearate, and the like.
  • pH adjusters include inorganic acids such as hydrochloric acid and sulfuric acid and salts thereof, organic acids such as lactic acid and succinic acid and salts thereof, inorganic bases such as potassium hydroxide and sodium hydroxide, and organic bases such as triethanolamine.
  • inorganic acids such as hydrochloric acid and sulfuric acid and salts thereof
  • organic acids such as lactic acid and succinic acid and salts thereof
  • inorganic bases such as potassium hydroxide and sodium hydroxide
  • organic bases such as triethanolamine.
  • thickeners examples include vinyl thickeners such as polyvinyl alcohol, polyvinylpyrrolidone, and carbomer (carboxyvinyl polymer); cellulose thickeners such as methylcellulose, ethylcellulose, hydroxymethylcellulose, hydroxyethylcellulose, and hydroxypropylmethylcellulose; and guar gum. , pectin, pullulan, gelatin, carrageenan, polysaccharides such as alginic acid, and the like, but are not limited thereto.
  • FIG. 1 shows the structure of the reporter vector (hereinafter sometimes referred to as "XRE-NLuc vector") used for transformation. As shown in FIG.
  • the XRE-NLuc vector used for transformation is a circular plasmid DNA consisting of 4930 base pairs, and an enhancer sequence ("XRE1", “XRE2 ""XRE3"), downstream of which are a Minimal Promoter, a base sequence encoding a reporter protein NLuc ("NLucP reporter” in FIG. 1), a polyadenylation signal derived from simian virus 40 (SV40) (in FIG. 1 "SV40 Late poly (A)”), further downstream thereof, the SV40 promoter ("SV40 Promoter” in FIG. 1) and the sequence encoding the resistance gene to the selection drug hygromycin B (in FIG. 1, "Hyg R").
  • SV40 polyadenylation signal derived from simian virus 40
  • Poly (A) signal in FIG. 1
  • a reporter vector product name “pNL[NLucP/XRE/Hygro]Vector”, catalog number: CS186808
  • a reporter vector prepared by oneself by inserting an XRE sequence or a Minimal Promoter into a reporter vector containing the gene may be used.
  • the XRE-NLuc vector is introduced into HaCaT cells according to the following procedure and treated with the selective drug hygromycin B to transform stably expressing a luciferase reporter that is transcriptionally regulated by the foreign substance response element (XRE).
  • a cell line (hereinafter sometimes referred to as "XRE-NLuc::HaCaT") was established.
  • HaCaT cells (CLI, catalog number: 300493) were seeded on a cell culture plate (product name “True Line Dish”, Nippon Genetics, catalog number TR4002) so that the number of cells was 2 ⁇ 10 6 . did.
  • the medium used was a DMEM medium (Dulbecco's modified Eagle's medium) supplemented with FBS (fetal bovine serum) at a final concentration of 10%.
  • the XRE-NLuc vector was introduced into HaCaT cells by using a transfection reagent (product name “PEImax”, Polysciences, catalog number 24765-1). That is, 20 ⁇ L of 0.1% aqueous solution of PEImax and 10 ⁇ L of 500 ⁇ g/mL XRE-NLuc vector were mixed, and the entire amount of the resulting mixture was added to the cell culture medium.
  • a transfection reagent product name “PEImax”, Polysciences, catalog number 24765-1
  • FIG. 2 shows a photograph of the obtained XRE-NLuc::HaCaT cells taken with an optical microscope. As seen in FIG. 2, the morphology of XRE-NLuc::HaCaT cells was unchanged from pre-transformation HaCaT cells.
  • XRE-NLuc::HaCaT cells were suspended in DMEM medium to a concentration of 1 ⁇ 10 5 cells/mL. 100 ⁇ L of the resulting cell suspension was added to each well of a white 96-well plate (ThermoFisher Scientific, catalog number: 136102) so that each well contained 10,000 cells. According to a conventional method, after incubation under conditions of 5% CO 2 and 37° C.
  • the DMEM medium was removed, and the test sample was FICZ known as a substance that activates the foreign body response reaction involving XRE ( 6-Formylindolo[3,2-b]carbazole, CAS number: 172922-91-7) at a predetermined concentration was added to 100 ⁇ L of DMEM medium, and the mixture was further incubated at 37° C. under 5% CO 2 for 24 hours. .
  • FICZ known as a substance that activates the foreign body response reaction involving XRE ( 6-Formylindolo[3,2-b]carbazole, CAS number: 172922-91-7) at a predetermined concentration was added to 100 ⁇ L of DMEM medium, and the mixture was further incubated at 37° C. under 5% CO 2 for 24 hours.
  • a negative control was also prepared by adding 100 ⁇ L of DMEM medium not containing FICZ instead of the DMEM medium containing FICZ, and incubated under conditions of 5% CO 2 and 37° C.
  • the absorbance at 450 nm (A450) and the absorbance at 670 nm as a reference wavelength (A670) were measured using an iMark microplate reader (Bio-Rad, catalog number: 168-1130JA). measured by The value (A450-A670) is obtained by subtracting the absorbance (A670) at 670 nm from the absorbance (A450) at 450 nm, and the value obtained for the negative control (A450-A670) is expressed as a relative value to 100%. It was defined as the relative number of viable cells (%).
  • FIG. 3 the luminescence intensity per unit viable cell number obtained from XRE-NLuc::HaCaT cells incubated in DMEM medium containing each concentration of FICZ is compared to the luminescence intensity per unit viable cell number obtained for the negative control. is shown as a relative value when the emission intensity of is set to 1. Also, the results shown in FIG. 3 are average values obtained from four independent experiments, and error bars represent standard errors (SEM). "*" and "**” in the figure indicate statistically significant differences (p ⁇ 0.05 and p ⁇ 0.01, respectively) from the negative control ("FICZ Concentration 0 nM" in FIG. 3). ).
  • the XRE-NLuc::HaCaT cells showed a concentration-dependent increase in luminescence intensity of FICZ, which has the effect of activating the foreign body response sequence XRE.
  • This result indicates that the expression level of the reporter protein produced by the XRE-NLuc::HaCaT cells reflects the degree of activation of the foreign body response response involving the foreign body response element XRE. That is, XRE-NLuc::HaCaT cells, which are keratinocytes transformed with an XRE-NLuc vector, which is a reporter vector having an enhancer sequence containing a foreign body response element (XRE) and a sequence encoding a reporter protein downstream thereof.
  • XRE-NLuc::HaCaT cells which are keratinocytes transformed with an XRE-NLuc vector, which is a reporter vector having an enhancer sequence containing a foreign body response element (XRE) and a sequence encoding a reporter protein downstream thereof.
  • XRE-NLuc::HaCaT cells emit approximately 3-fold stronger luminescence compared to negative controls without FICZ, even when cultured in medium containing a very low concentration of FICZ as low as 4 nM. showed strength. This result indicates that the evaluation method according to the present invention can evaluate the elicitability of the foreign body reaction in the skin with extremely high detection sensitivity.
  • HaCaT cells (CLI, catalog number: 300493) were suspended in DMEM medium to a cell concentration of 1 ⁇ 10 5 cells/mL. 100 ⁇ L of the resulting cell suspension was added to each well of a white 96-well plate (ThermoFisher Scientific, catalog number: 136102) so that each well contained 10,000 cells. After incubation at 37° C. in the presence of 5% CO 2 for 24 hours, the DMEM medium was removed and 100 ⁇ L of DMEM medium containing FICZ at a given concentration (5 nM, 50 nM, 500 nM, or 5,000 nM) was added. and incubated at 37° C. in 5% CO 2 for an additional 24 hours. A negative control was also prepared by adding 100 ⁇ L of DMEM medium not containing FICZ instead of the DMEM medium containing FICZ, and incubated under conditions of 5% CO 2 and 37° C. for 24 hours.
  • RNA extraction and cDNA preparation> After the above 24 hours of incubation, the PCR kit "SuperPrep II Cell Lysis & RT Kit for qPCR" manufactured by Toyobo Co., Ltd. (catalog number: SCQ-401) was used according to the method described in the procedure attached to the product. was used to extract total RNA and prepare cDNA. That is, after the 24-hour incubation, the medium was removed from each well, and the cells were washed with PBS (phosphate-buffered saline).
  • PBS phosphate-buffered saline
  • Lysis Reagent prepared by mixing 0.3 ⁇ L of gDNA Remover and 1 ⁇ L of RNase Inhibitor with 58.7 ⁇ L of Lysis Solution attached to the PCR kit was added to each well, shaken for about 30 seconds, and incubated at room temperature for 5 minutes.
  • Lysis Solution is a cell lysing agent for lysing cells
  • gDNA Remover is a reagent containing DNase I that degrades genomic DNA
  • RNase Inhibitor is a reagent for suppressing degradation of RNA by cellular components such as RNase.
  • cDNA was synthesized from the extracted RNA by reverse transcription.
  • a master mix for the reverse transcription reaction was thus prepared.
  • preparation of the master mix was performed on ice.
  • Each 32 ⁇ L of the obtained master mix was dispensed into a PCR tube, and 8 ⁇ L of the cell lysate present in each well was added to make a total volume of 40 ⁇ L, which was used for the reverse transcription reaction.
  • the reverse transcription reaction conditions are 37°C for 15 min, 50°C for 5 min, and 98°C for 5 min. 80 ⁇ L of sterilized water was added to the obtained solution containing cDNA and stored frozen at -20°C.
  • THUNDERBIRD Next SYBR qPCR Mix (Toyobo Co., Ltd., catalog number: QPX-201) and StepOne Real-Time PCR System (ThermoFisher Scientific). Specifically, THUNDERBIRD Next SYBR qPCR Mix, which is provided as a 2-fold concentration premix reagent, was diluted with sterilized water to 1-fold concentration. A mixed solution was prepared by mixing 6 pmoles each of the primer and the reverse primer. On the other hand, after thawing the frozen solution containing cDNA, it was diluted 5-fold with sterilized water to obtain a diluted cDNA solution.
  • the amount of mRNA of the target gene was determined from the Ct value obtained by quantitative PCR.
  • the amount of mRNA of GAPDH which is an endogenous gene, was used, and the amount of mRNA of each target gene was corrected by dividing by the amount of mRNA of GAPDH.
  • the quantitative PCR conditions are as shown in Table 2. That is, after holding the above reaction solution for PCR at 95° C. for 20 seconds, a total of 40 cycles were performed with two steps of a denaturation step at 95° C. for 3 seconds and an annealing/extension step at 60° C. for 30 seconds. After 40 cycles, it was held at 95°C for 15 seconds, then held at 60°C for 60 seconds, and further held at 95°C for 15 seconds.
  • the expression level of artemin mRNA in HaCaT cells increased depending on the concentration of FICZ added to the cell culture medium. This result indicates that the activation of the foreign body response reaction in HaCaT cells can also be detected by quantification of mRNA by the PCR method. However, when the concentration of FICZ is 50 nM or less, no change in the expression level of artemin mRNA is observed. FICZ concentrations as high as 000 nM were required.
  • MMP9 the expression level of MMP9 mRNA in HaCaT cells was increased depending on the concentration of FICZ added to the cell culture medium, similar to that observed for Artemin.
  • the degree of increase in its expression was still extremely small, and a high concentration of FICZ of about 5,000 nM was necessary to observe a significant increase in the expression level of MMP9 mRNA.
  • XRE-NLuc HaCaT cell evaluation of foreign body response reaction-Part 2-> Instead of FICZ as test samples, I3C (indole-3-carbinol, CAS number: 700-06-1), ITE (2-(1'H-indole-3'-carbonyl)-thiazole-4-carboxylic acid Methyl ester, CAS number: 448906-42-1), and Indirubin (CAS number: 479-41-4) were used, and the amount of each test sample added to the DMEM medium was changed as appropriate except for Experiment 1-2. Similarly, XRE-NLuc::HaCaT cells were used to evaluate the elicitability of the foreign body response of each test sample.
  • XRE-NLuc::HaCaT cells showed reactivity to various chemical substances. That is, according to the evaluation method of the present invention, it is possible to evaluate the evoking ability of a foreign body response reaction in the skin of a test sample containing chemical substances having a wide variety of structures.
  • the expression level of the reporter protein by XRE-NLuc::HaCaT cells reflects the degree of XRE-related foreign body response
  • individual test samples exhibit a foreign body response in the skin.
  • Table 3 also shows the maximum effective concentration of each test sample, that is, the literature value of the concentration of the test sample at which the foreign body response reaches a plateau. All of these literature values are the maximum effective concentration obtained by experiments using human liver cancer-derived cell line HepG2 cells instead of keratinocytes, but compared with the maximum effective concentration in keratinocytes obtained in this experiment. As a result, it can be seen that the degree of foreign body reaction induced by human hepatoma-derived cells and keratinocytes is markedly different.
  • Experiment 2 Search for a substance that suppresses the foreign body reaction in the skin>
  • XRE-NLuc::HaCaT cells expressed an amount of reporter protein corresponding to the degree of activation of the foreign-body response response involving the foreign-body response element XRE. Therefore, the present inventors considered that by using XRE-NLuc::HaCaT cells, contrary to Experiment 1-2, it is possible to search for a substance that suppresses the foreign body response reaction involving the foreign body response element XRE. did The experimental procedure is shown below.
  • XRE-NLuc::HaCaT cells were suspended in DMEM medium to a concentration of 1 ⁇ 10 5 cells/mL, and the resulting cell suspension was transferred to white 96-well cells. After adding 100 ⁇ L of each well to a plate (ThermoFisher Scientific, catalog number: 136102) so that the number of cells in each well was 10,000, the cells were treated in a standard manner at 5% CO 2 and 37°C. for 24 hours. After removing the DMEM medium, 100 ⁇ L of DMEM medium containing 5 nM of FICZ, which was confirmed to activate the expression of the reporter protein in Experiment 1-2, and the candidate substance at a predetermined concentration, was added.
  • FG1 5-hydroxy-4-phenyl-2(5H)butenolide
  • the expression level (luminescence intensity) of the reporter protein and the number of viable cells were measured according to the method described in Experiment 1-2, and the number of viable cells per unit was determined.
  • the expression level of the reporter protein per sample was determined, and the inhibition rate (Inhibition (%)) of the reporter protein expression exerted by each candidate substance was calculated according to the following formula.
  • (Reporter Expression) FICZ is the expression of the reporter protein per unit of viable cells obtained from cells incubated in a medium containing 5,000 nM of FICZ and no candidate substance. showing quantity.
  • (Reporter Expression) FICZ+TEST SAMPLE shows the expression level of the reporter protein per unit viable cell number obtained from cells incubated in a medium containing 5,000 nM FICZ and a candidate substance. The results obtained are shown in FIG. The results shown in FIG. 6 are average values obtained from three independent experiments, and error bars represent standard errors (SE).
  • fraglide 1 has the property of significantly suppressing foreign body response reactions. Therefore, in order to further investigate the effect of fraglide 1 on suppressing the foreign body response reaction, fraglide 1 was found to affect the expression level of artemin, which is known to be a gene whose transcription is regulated in the keratinocyte HaCaT by the involvement of the foreign body response element.
  • HaCaT cells were brought into contact with FCTZ, which is a substance that induces a foreign body response reaction, and fleglide 1, and then the change in the expression level of artemin mRNA due to fleglide 1 was observed using a quantitative PCR method. The procedure is shown below.
  • HaCaT cells (CLI, catalog number: 300493) were suspended in DMEM medium to a cell concentration of 1 ⁇ 10 5 cells/mL. 100 ⁇ L of the resulting cell suspension was added to each well of a white 96-well plate (ThermoFisher Scientific, catalog number: 136102) so that each well contained 10,000 cells.
  • a white 96-well plate (ThermoFisher Scientific, catalog number: 136102) so that each well contained 10,000 cells.
  • FICZ was added at a predetermined concentration (500 nM or 5,000 nM)
  • freglide 1 was added at a predetermined concentration ( 100 ⁇ L of DMEM medium containing 0 nM or 250 ⁇ M) was added.
  • the results obtained are shown in FIG.
  • the results obtained for each sample in FIG. 7 are based on the expression level of artemin mRNA in HaCaT cells incubated for 24 hours in DMEM medium containing neither FICZ nor freglide 1, assuming 1. is shown as a relative value of
  • HaCaT cells incubated in medium containing 500 nM or 5,000 nM FICZ were compared to HaCaT cells incubated in medium without FICZ.
  • the expression level of artemin mRNA was increased by about 3.0-fold and about 3.7-fold. This is presumably because FICZ activated the foreign body response reaction involving XRE.
  • HaCaT cells incubated in medium containing 250 ⁇ M fleglide 1 in addition to 500 nM or 5,000 nM FICZ (“FG1 +” in FIG. 7)
  • No increase in artemin mRNA expression was observed compared to incubated HaCaT cells.
  • (mRNA Expression) CONTROL is the expression level of artemin mRNA in HaCaT cells (i.e., untreated HaCaT cells) incubated in a medium containing neither FICZ nor freglide 1
  • (mRNA Expression) FICZ is the expression level of Artemin mRNA in HaCaT cells incubated in a medium containing 5,000 nM FICZ.
  • (mRNA Expression) FICZ+TEST SAMPLE is HaCaT cells incubated in a medium containing 5,000 nM FICZ and a predetermined concentration of freglide 1. shows the expression level of artemin mRNA in .
  • freglide 1 suppressed the expression of artemin induced by FICZ in a concentration-dependent manner. Surprisingly, a small dose of only 100 nM (0.1 ⁇ M) of fleglide 1 inhibited artemin expression induced by 5,000 nM (5 ⁇ M) of FICZ by approximately 50%. This result indicates that fleglide 1 very effectively suppresses the XRE-mediated foreign body response and normalizes the expression of artemin. As described above, the induction of artemin expression is considered to be a cause of atopic dermatitis, and it has been reported that the expression of artemin is also induced by chemical substances contained in air pollutants (for example, non-patented Reference 4). Fraglide 1, which has an effect of extremely effectively suppressing the expression of artemin in the skin, is considered to be extremely useful for the prevention and/or treatment of atopic dermatitis.
  • MMP9 matrix metalloproteinase 9
  • FIGS. 9 and 10 show that the expression of MMP9 or MMP2 in HaCaT cells (i.e., untreated HaCaT cells) incubated for 24 hours in DMEM medium not containing fraglide 1. It is shown as a relative value when the expression level of mRNA is set to 1.
  • the results shown in FIGS. 9 and 10 are average values obtained from three independent experiments, and error bars represent standard deviations (SD).
  • MMP2 mRNA expression which is an MMP that is not subject to transcriptional control by the foreign body response element XRE, was expressed. No volume reduction was observed. Thus, freglide 1 was shown to selectively reduce the expression level of MMP9, which is transcriptionally regulated by the foreign body response reaction involving the foreign body response element XRE.
  • HaCaT cells were suspended in DMEM medium at a cell concentration of 1 x 10 cells/mL, and the resulting cell suspension was transferred to a 96-well plate at a cell number of 1 x 10 per well. 100 ⁇ L of each well was seeded so that 5 cells/well. After incubating overnight under conditions of 5% CO 2 and 37° C., the culture supernatant, DMEM medium, was removed, 100 ⁇ L of serum-free medium containing 0 ⁇ M and 100 ⁇ M fraglide 1 was added, and the mixture was further incubated at 5% CO 2 for 24 hours. , and incubated at 37°C. 10 ⁇ L of this culture supernatant was subjected to gelatin zymography.
  • Gelatin zymography was performed according to the standard method (https://www.abcam.com/protocols/gelatin-zymography-protocol). Specifically, proteins in the culture supernatant were separated by SDS-PAGE using a 7.5% polyacrylamide gel containing gelatin at a final concentration of 1 mg/mL. After electrophoresis, the SDS in the gel was removed by soaking the gel in a washing buffer containing final concentrations of 5 mM Ca 2+ , 1 ⁇ M Zn 2+ and 2.5% Triton X-100.
  • the washed gel was further immersed in an incubation buffer containing final concentrations of 5 mM Ca 2+ , 1 ⁇ M Zn 2+ , and 1% Triton X-100 overnight at 37° C. for enzymatic reaction.
  • Gelatin in the resulting gel was visualized by Coomassie blue staining.
  • gelatin in the gel is decomposed by its gelatinase activity in the portion where active MMP9 is present.
  • gelatin is not decomposed in the area where active MMP9 is not present, and the area is stained blue by Coomassie blue staining. Therefore, active MMP9 is detected as a clear band in the gel stained blue by Coomassie blue staining.
  • the results obtained are shown in FIG.
  • the gelatinase activity of MMP9 was about 54% or 24% in HaCaT cells incubated in medium containing 100 ⁇ M fleglide 1 compared to HaCaT cells incubated in medium without freglide 1. Decreased. This result indicates that the protein level of MMP9 was reduced by fleglide 1, and is consistent with the experimental results shown in FIG. 9 that fleglide 1 significantly reduces the expression level of MMP9 mRNA.
  • retinoic acid and nicotinamide which have been conventionally used as active ingredients in anti-wrinkle agents, non-specifically suppress the expression of many genes, including MMP2, a matrix metalloprotease other than MMP9.
  • MMP2 a matrix metalloprotease other than MMP9.
  • freglide 1 selectively suppresses the expression of MMP9, which is transcriptionally regulated by the foreign body response element XRE, but does not suppress the expression of MMP2. It has the advantage of being less likely to degrade the required extracellular matrix. In other words, fraglide 1 selectively suppresses only the expression of MMP9 caused by the foreign body reaction in the skin induced by various chemical substances such as environmental pollutants, so it is less likely to exhibit side effects. It is particularly suitable for use as an active ingredient of anti-wrinkle agents.
  • freglide 1 which selectively suppresses only the expression of MMP9 in this way, is not only an active ingredient of anti-wrinkle agents, but also various diseases known to be involved in the enhancement of MMP9 expression. Needless to say, it is extremely useful as an active ingredient of an agent for treatment and/or prevention.
  • MMP matrix metalloproteinase
  • TIMP Tissue Inhibitors of Metalloproteinase
  • results obtained are shown in FIG.
  • the results obtained for each sample in FIG. 14 show the expression level of TIMP-1 in HaCaT cells (that is, untreated HaCaT cells) incubated for 24 hours in DMEM medium containing no freglide 1. It is shown as a relative value when it is set to 1. Also, the results shown in FIG. 14 are average values obtained from three independent experiments, and error bars represent standard deviations (SD).
  • freglide 1 can function not only as an active ingredient of an agent that suppresses the production of MMP9, but also as an active ingredient of an agent that promotes the production of TIMP-1.
  • Freglide 1, which exerts an anti-wrinkle effect, is considered to be extremely useful for improving and/or preventing wrinkles.
  • retinoic acid and nicotinic acid amide which are known as active ingredients of anti-wrinkle agents, were also evaluated in the same way using the cDNA obtained in Experiment 4-2.
  • the quantitative PCR procedure was the same as already described in Experiment 3-1, except that the primers shown in Table 5 were used.
  • results obtained are shown in FIG.
  • the results obtained for each sample in FIG. 15 show the expression of TIMP-1 in HaCaT cells (untreated HaCaT cells) incubated for 24 hours in DMEM medium containing no retinoic acid or nicotinamide. It is shown as a relative value when the amount is set to 1. Also, the results shown in FIG. 15 are average values obtained from three independent experiments, and error bars represent standard deviations (SD).
  • the cell viability exceeds 50% even in HaCaT cells incubated for 24 hours in DMEM medium containing 500 ⁇ M fleglide 1, and the LC50 (median lethal concentration) of fleglide 1 for HaCaT cells is at least 500 ⁇ M. was shown to be super.
  • This result indicates that fleglide 1 is a substance with low cytotoxicity and high safety. Therefore, fraglide 1 can be advantageously used as a component of a wide range of products including pharmaceuticals, cosmetics, health foods, functional foods, and daily necessities.
  • ⁇ Prescription Example 1 Shampoo> Water 87.20% by weight Lauroyl methylalanine TEA 6.00% by weight Lauryl betaine 3.00% by weight Polyquaternium-10 0.30% by weight Sodium hydrogen carbonate 0.02% by weight Sodium lactate 0.20% by weight Cocamidomethyl MEA 1.00% by weight Cocamide DEA 1.00% by weight Lactic acid 0.28% by weight Etidronic acid 0.06% by weight Pentasodium pentetate 0.04% by weight Sodium benzoate 0.40% by weight Perfume 0.30% by weight Fraglide 1 0.20% by weight
  • ⁇ Prescription Example 7 Body Milk> Water 85.60% by weight EDTA-2Na 0.01% by weight Carbomer 0.20% by weight Hydroxyethyl cellulose 0.10% by weight 1,3-butylene glycol 8.00% by weight Phenoxyethanol 0.30% by weight Methylparaben 0.20% by weight Potassium hydroxide 0.17% by weight Polyglyceryl decaisostearate 3.00% by weight Olive oil 2.00% by weight (Acrylates/alkyl acrylate) crosspolymer 0.20% by weight Perfume 0.20% by weight Fraglide 1 0.02% by weight
  • ⁇ Prescription Example 8 Bath Milk> Water 24.37% by weight Olive oil 45.00% by weight 1,3-butylene glycol 8.00% by weight Polyglyceryl oleate 5.00% by weight Polyglyceryl decaisostearate 2.00% by weight Bentonite 15.00% by weight Methylparaben 0.20% by weight Citric acid/sodium citrate 0.40% by weight Fraglide 1 0.03% by weight
  • the evaluation method of the present invention which enables easy and rapid evaluation of foreign body response reactions in the skin of various test samples, is expected to be applied in a wide range of industrial fields, such as cosmetics, pharmaceuticals, and foodstuffs. be.
  • the agent for suppressing the foreign body response reaction in the skin of the present invention may be incorporated in any product to keep the skin healthy, such as prevention and/or treatment of atopic dermatitis, prevention and/or improvement of wrinkles. can be done.
  • the searching method of the present invention it is possible to easily and rapidly screen for a substance that can be used as an active ingredient of such an agent and that has the ability to suppress the foreign body reaction in the skin.
  • the present invention has a very large industrial applicability.

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Abstract

動物を用いずに、被験試料の皮膚における異物応答反応の惹起性を簡易かつ効率的に評価する方法、並びに皮膚における異物応答反応の抑制性を有する物質及びその探索方法を提供することを課題とし、異物応答配列を含むエンハンサー配列と、その下流にレポーター蛋白質をコードする配列を有するベクターにより形質転換された角化細胞を被験試料を含有する溶液と接触させる工程、角化細胞におけるレポーター蛋白質の発現量を測定する工程、及び、レポーター蛋白質の発現量の多寡に基づいて被験試料の皮膚における異物応答反応の惹起性を評価する工程を含む、被験試料の皮膚における異物応答反応の惹起性の評価方法と、前記評価方法を利用した皮膚における異物応答反応の抑制性を有する物質の探索方法、及び、前記探索方法により見出された、フレグライド１を含有する皮膚における異物応答反応を抑制する剤を提供することにより上記課題を解決する。

Description

被験試料の皮膚における異物応答反応の惹起性の評価方法、皮膚における異物応答反応の抑制性を有する物質の探索方法、及び、皮膚における異物応答反応を抑制する剤
　本発明は、皮膚における異物応答反応に関し、より詳細には、被験試料の皮膚における異物応答反応の惹起性の評価方法、皮膚における異物応答反応の抑制性を有する物質の探索方法、及び、前記探索方法を用いて見出された皮膚における異物応答反応を抑制する剤に関する。
　皮膚は、全身を被覆して外部から生体を保護する器官である。環境中には様々な化学物質が存在し、皮膚はこれらの化学物質と絶えず接している。例えば、我々が生活する上で欠かせない化粧品、洗剤、トイレタリー用品、食料品、医薬品などの生活必需品には数多くの化学物質が含まれている。また、環境汚染問題が近年深刻化していることからも明らかなとおり、大気、海、土壌などの環境中にも非常に多くの化学物質が含まれている。しかも、我々の身の回りに存在する化学物質の数は現在も増加し続けている。例えば、世界最大の化学物質データベースであるＣＡＳ（Ｃｈｅｍｉｃａｌ　Ａｂｓｔｒａｃｔｓ　Ｓｅｒｖｉｃｅ）に登録されている化学物質の数は２０１５年６月に１億件に達し、２０２１年２月においては既に１．７７億件を超えている。このような状況の下、環境中に存在する化学物質が皮膚に対して与える影響を正しく評価することは極めて重要であると言える。
　化学物質が皮膚に及ぼす影響を評価する方法としては、ＧＰＭＴ（Ｇｕｉｎｅａ　Ｐｉｇ　Ｍａｘｉｍａｚａｔｉｏｎ　Ｔｅｓｔ）（非特許文献１）やＬＬＮＡ（Ｌｏｃａｌ　Ｌｙｍｐｈ　Ｎｏｄｅ　Ａｓｓａｙ）（非特許文献２）などのマウスやモルモットを用いる方法が知られている。しかしながら、動物の命を犠牲にして行われるこれらの方法は倫理上好ましくないだけでなく、比較的長時間を要する試験であるため効率的ではない。動物を用いる上記の方法を代替するｉｎ　ｖｉｔｒｏの試験方法が種々開発されているが（非特許文献３）、いずれも外因性の化学物質による皮膚における免疫反応の活性化に注目し、その活性化ステップをモデル化した試験方法であり、外因性の化学物質が皮膚に及ぼす影響の極一部を評価しているに過ぎない。
　一方、近年、環境中に存在する化学物質に対する皮膚における異物応答反応に芳香族炭化水素受容体（ＡｈＲ：Ａｒｙｌ　Ｈｙｄｒｏｃａｒｂｏｎ　Ｒｅｃｅｐｔｏｒ）及び異物応答配列（ＸＲＥ：Ｘｅｎｏｂｉｏｔｉｃ　Ｒｅｓｐｏｎｓｅ　Ｅｌｅｍｅｎｔ）が関与することが徐々に明らかとなってきている。例えば、非特許文献４には、大気中に含まれる環境汚染物質により、皮膚においてＡｈＲ及びＸＲＥが関与する異物応答反応が惹起されること、そして、このような異物応答反応が惹起されると神経栄養因子アルテミンの発現が亢進し、表皮内への神経の異常な伸長が起こること、このような神経の異常な伸長により、痒み過敏症（アロネーシス）が引き起こされ、ひいては、皮膚のバリア機能の喪失やアトピー性皮膚炎の原因となることが示唆されている。一方、非特許文献５には、皮膚においてＡｈＲが活性化することにより、マトリックスメタロプロテアーゼ（ＭＭＰ）が発現すること、ＭＭＰの発現によるコラーゲンの分解は皮膚の老化、シワの形成に寄与することが示唆されている。このようにＡｈＲ及びＸＲＥが関与する皮膚における異物応答反応はアトピー性皮膚炎やシワなどの種々の肌トラブルを引き起こす。
　ちなみに、芳香族炭化水素受容体（ＡｈＲ）は、ダイオキシン類の受容体として見出された受容体型の転写因子であり、ダイオキシンの一種である２，３，７，８－四塩化ジベンゾ－ｐ－ジオキシン（ＴＣＤＤ）などのリガンド分子と結合して、異物代謝酵素の発現を誘導することが知られている。ＡｈＲはリガンド分子として活性化すると、細胞核内へ移行して転写調節領域のエンハンサー配列に存在する特定の塩基配列を認識して、その下流の遺伝子の発現を活性化する。上記特定の塩基配列は異物応答配列（ＸＲＥ）と呼ばれ、５’－ＣＡＣＧＣ－３’という配列を有することが知られている。ダイオキシン類の受容体として見出されたことから芳香族炭化水素受容体（ＡｈＲ）を活性化するリガンドは、主として、多環芳香族炭化水素（ＰＡＨ：Ｐｏｌｙａｒｏｍａｔｉｃ　Ｈｙｄｒｏｃａｒｂｏｎｓ）やハロゲン化芳香族炭化水素（ＨＡＨ：Ｈａｌｏｇｅｎａｔｅｄ　Ａｒｏｍａｔｉｃ　Ｈｙｄｒｏｃａｒｂｏｎｓ）であると考えられてきた。しかしながら、近年、芳香族炭化水素受容体（ＡｈＲ）は多環芳香族炭化水素やハロゲン化芳香族炭化水素のみならず極めて多様な構造を有する化学物質と結合して活性化され、その活性化は生体の恒常性維持に重要な役割を果たしていることが明らかとなってきている（非特許文献６）。
Ｂ．　Ｍａｇｎｕｓｓｏｎ，　ａｎｄ　Ａ.　Ｍ.　Ｋｌｉｇｍａｎ，　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｖｅ　Ｄｅｒｍａｔｏｌｏｇｙ　１９６９，５２：２６８－２７６． Ｄ．　Ａ．　Ｂａｓｋｅｔｔｅｒ　ｅｔ　ａｌ．，　Ｆｏｏｄ　ａｎｄ　Ｃｈｅｍｉｃａｌ　Ｔｏｘｉｃｏｌｏｇｙ　２００２，４０：５９３－５９８． Ｓｅｂａｓｔｉａｎ　Ｈｏｆｆｍａｎｎ　ｅｔ　ａｌ．，　Ｃｒｉｔｉｃａｌ　Ｒｅｖｉｅｗｓ　ｉｎ　Ｔｏｘｉｃｏｌｏｇｙ　２０１８，４８：３４４－３５８． Ｔａｋａｎｏｒｉ　Ｈｉｄａｋａ　ｅｔ　ａｌ．,　Ｎａｔｕｒｅ　Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ　２０１７，１８：６４－７３． Ｅ．　Ｄｕｐｏｎｔ，Ｊ．　Ｇｏｍｅｚ，ａｎｄ　Ｄ．　Ｂｉｌｏｄｅａｕ，　Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｃｏｓｍｅｔｉｃ　Ｓｃｉｅｎｃｅ　２０１３，３５：２２４－２３２． Ｍｉｃｈａｅｌ　Ｓ．　Ｄｅｎｉｓｏｎ　ａｎｄ　Ｓｃｏｔｔ　Ｒ．　Ｎａｇｙ，　Ａｎｎｕａｌ　Ｒｅｖｉｅｗ　ｏｆ　Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ　ａｎｄ　Ｔｏｘｉｃｏｌｏｇｙ　２００３，４３：３０９－３３４．
　以上のように皮膚における異物応答反応が惹起されると、アトピー性皮膚炎の発症、皮膚の老化、シワの形成などの種々の肌のトラブルの原因となり、且つ、皮膚における異物応答反応の原因となり得る芳香族炭化水素受容体（ＡｈＲ）の活性化は非常に多様な化学物質により惹起されることが明らかとなってきている。しかしながら、本発明者らの知る限りにおいて、化粧品、医薬部外品、食料品などの化学物質を含む種々の製品の皮膚への安全性、皮膚への影響を評価するにあたって、ＡｈＲ及びＸＲＥが関与する皮膚における異物応答反応は一切顧みられていない。また、人体に安全に適用することができるとともに、このような異物応答反応を抑制する物質は知られていない。
　本発明は、上記のような従来技術の課題を解決するために為されたものであり、動物愛護の視点から、動物を用いずに、種々の被験試料の皮膚における異物応答反応の惹起性を簡易かつ効率的に評価する方法を提供することを課題とするものである。また、本発明は、他の一側面において、皮膚における異物応答反応の抑制性を有する物質、及び、その探索方法を提供することを課題とするものである。
　本発明者らは上記課題を解決するために鋭意研究努力を重ねる過程で、芳香族炭化水素受容体（ＡｈＲ）及び異物応答配列（ＸＲＥ）が関与する異物応答反応により発現が増強する遺伝子は、その遺伝子の転写調節領域に、異物応答反応に応答して下流の遺伝子の発現量を制御するエレメントであるＸＲＥを含むエンハンサー配列を有していることに着目した。そして、転写調節領域にＸＲＥを含むエンハンサー配列を有し、その下流に、容易に検出が可能なレポーター蛋白質をコードする配列を有するレポーターベクターにより角化細胞を形質転換し、形質転換された角化細胞と被験試料を接触させると、当該被験試料による皮膚における異物応答反応の惹起の程度を反映したレポーター蛋白質の発現量を測定できることを見出し、本発明を完成した。
　すなわち、本発明は、被験試料の皮膚における異物応答反応の惹起性の評価方法であって、
（１）異物応答配列（ＸＲＥ）を含むエンハンサー配列と、その下流にレポーター蛋白質をコードする配列を有するレポーターベクターにより形質転換された角化細胞を、前記被験試料を含有する溶液と接触させる工程、
（２）前記被験試料を含有する溶液と接触させた前記角化細胞における前記レポーター蛋白質の発現量を測定する工程、及び、
（３）測定された前記レポーター蛋白質の発現量の多寡に基づいて、前記被験試料の皮膚における異物応答反応の惹起性を評価する工程、
を含む評価方法を提供することにより上記課題を解決するものである。
　また、本発明は、他の一側面において、皮膚における異物応答反応の抑制性を有する物質の探索方法であって、
（１）異物応答配列（ＸＲＥ）を含むエンハンサー配列と、その下流にレポーター蛋白質をコードする配列を有するレポーターベクターにより形質転換された角化細胞を、候補物質を含有する試験溶液及び前記候補物質を含有しない基準溶液と接触させる工程、
（２）前記試験溶液と接触させた前記角化細胞及び前記基準溶液と接触させた前記角化細胞における前記レポーター蛋白質の発現量を測定する工程、及び、
（３）前記試験溶液と接触させた前記角化細胞における前記レポーター蛋白質の発現量が、前記基準溶液と接触させた前記角化細胞における前記レポーター蛋白質の発現量と比較して小さい場合に、前記候補物質が皮膚における異物応答反応の抑制性を有すると評価する工程、
を含む探索方法を提供することにより上記課題を解決するものである。好適な一態様において、前記試験溶液及び前記基準溶液は皮膚における異物応答反応を惹起する物質を含有している。
　ちなみに、皮膚における異物応答反応の活性化は、前述したとおり神経栄養因子アルテミンやマトリックスメタロプロテアーゼ９の産生を増強し、アトピー性皮膚炎やシワの形成の原因となることが知られている。すなわち、皮膚における異物応答反応の抑制性を有する物質の上記探索方法は、好適な一態様において、アトピー性皮膚炎の予防及び／又は治療のための物質、及び、シワの形成の予防及び／又は改善のための物質を探索するために有利に用いられる。
　本発明者らは上記探索方法を用いることにより更に鋭意研究努力を重ねた結果、香醋に含まれるブテノライドの一種である５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライド（以下、「フレグライド１」ということもある。）が皮膚における異物応答反応の抑制性を有することを見出した。そして、５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライドが有する皮膚における異物応答反応の抑制性を更に詳細に検討した結果、５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライドは異物応答配列（ＸＲＥ）が関与して転写される遺伝子、具体的には、神経栄養因子アルテミン及びマトリックスメタロプロテアーゼ９の産生を顕著に抑制することを見出した。
　すなわち、本発明は、さらに他の一側面において、５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライド及び／又はその塩を有効成分として含有する、マトリックスメタロプロテアーゼ９の産生を抑制する剤を提供することにより上記課題を解決するものである。マトリックスメタロプロテアーゼ９は、細胞外マトリックスを構成する基底膜成分であるタイプＩＶコラーゲンやラミニン、真皮マトリックス成分であるエラスチン等を分解することが知られており、マトリックスメタロプロテアーゼ９の産生はシワの原因となると考えられている。すなわち、５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライド及び／又はその塩を有効成分として含有する、マトリックスメタロプロテアーゼ９の産生を抑制する上記剤は、シワの予防及び／又は改善に好適に用いることができる。
　一方、本発明は、さらに他の一側面において、５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライド及び／又はその塩を有効成分として含有する、アルテミンの産生を抑制する剤を提供することにより上記課題を解決するものである。前述したとおり、皮膚におけるアルテミンの産生は神経細胞の異常な増殖を惹起し、アトピー性皮膚炎の原因となると考えられている。すなわち、５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライド及び／又はその塩を有効成分として含有する、アルテミンの産生を抑制する上記剤は、アトピー性皮膚炎の予防及び／又は治療に好適に用いることができる。
　なお、現在、アトピー性皮膚炎を始めとするアレルギー性皮膚炎の治療に一般的に用いられる薬剤としてはステロイド剤（例えば、プレドニゾロンやヒドロコルチゾンなど）や免疫抑制剤（例えば、タクロリムス、ピメクロリムスなど）が知られているが、これらはいずれも皮膚におけるアレルギー反応を抑制し、アレルギー性皮膚炎の症状を軽減することを目的とするものであり、アレルギー性皮膚炎をその原因から根本的に治療するものではない。本発明の一側面に係るアルテミンの産生を抑制する剤は、上記従来のアトピー性皮膚炎の治療剤とは一線を画するものであり、アトピー性皮膚炎の原因と考えられているアルテミンの産生を抑制することができるので、アトピー性皮膚炎を根治し得るという利点がある。
　本発明の評価方法によれば、被験試料の皮膚における異物応答反応の惹起性を簡便な操作で、かつ定量的に評価することができる。また、本発明の探索方法によれば、皮膚における異物応答反応の抑制性を有する物質を簡便な操作で、かつ迅速に探索することができる。そして、本発明の剤によれば、異物応答配列（ＸＲＥ）が関与して転写される遺伝子の発現を抑制することができ、シワの原因となるマトリックスメタロプロテアーゼ９、及び／又は、アトピー性皮膚炎の原因となるアルテミンの産生を抑制することができる。
異物応答配列（ＸＲＥ）と、その下流に最小プロモーター及びレポーター蛋白質をコードしたレポーターベクターの構成を示す図である。 異物応答配列（ＸＲＥ）と、その下流に最小プロモーター及びレポーター蛋白質をコードしたレポーターベクターで形質転換された角化細胞（ＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴ細胞）の外観を示す図である。 所定濃度のＦＩＣＺと接触させたＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴ細胞におけるレポーター蛋白質の発現量を示す図である。 所定濃度のＦＩＣＺと接触させたＨａＣａＴ細胞におけるアルテミンのｍＲＮＡの発現量をＰＣＲ法を用いて定量した結果を示す図である。 所定濃度のＦＩＣＺと接触させたＨａＣａＴ細胞におけるマトリックスメタロプロテアーゼ９のｍＲＮＡの発現量をＰＣＲ法を用いて定量した結果を示す図である。 所定濃度のＦＩＣＺとともに、所定濃度のフレグライド１（ＦＧ１）又はシンナムアルデヒド（ＣＡ）を含む培地と接触させたＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴ細胞におけるレポーター蛋白質の発現量を示す図である。 所定濃度のＦＩＣＺとともに、所定濃度のフレグライド１（ＦＧ１）を含む培地と接触させたＨａＣａＴ細胞におけるアルテミンのｍＲＮＡの発現量を示す図である。 所定濃度のＦＩＣＺとともに、所定濃度のフレグライド１（ＦＧ１）を含む培地と接触させたＨａＣａＴ細胞におけるアルテミンのｍＲＮＡの発現量を示す図である。 所定濃度のフレグライド１と接触させたＨａＣａＴ細胞におけるマトリックスメタロプロテアーゼ９（ＭＭＰ９）のｍＲＮＡの発現量をＰＣＲ法を用いて定量した結果を示す図である。 所定濃度のフレグライド１と接触させたＨａＣａＴ細胞におけるマトリックスメタロプロテアーゼ２（ＭＭＰ２）のｍＲＮＡの発現量をＰＣＲ法を用いて定量した結果を示す図である。 所定濃度のフレグライド１と接触させたＨａＣａＴ細胞におけるマトリックスメタロプロテアーゼ９（ＭＭＰ９）のタンパク質レベルでの発現量を、ゼラチンザイモグラフィーを用いて評価した結果を示す図である。 所定濃度のレチノイン酸又はニコチン酸アミドと接触させたＨａＣａＴ細胞におけるマトリックスメタロプロテアーゼ９（ＭＭＰ９）のｍＲＮＡの発現量をＰＣＲ法を用いて定量した結果を示す図である。 所定濃度のレチノイン酸又はニコチン酸アミドと接触させたＨａＣａＴ細胞におけるマトリックスメタロプロテアーゼ２（ＭＭＰ２）のｍＲＮＡの発現量をＰＣＲ法を用いて定量した結果を示す図である。 所定濃度のフレグライド１と接触させたＨａＣａＴ細胞におけるＴＩＭＰ－１（Ｔｉｓｓｕｅ　Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ　ｏｆ　Ｍａｔｒｉｘ　Ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅａｓｅ－１）のｍＲＮＡの発現量をＰＣＲ法を用いて定量した結果を示す図である。 所定濃度のレチノイン酸又はニコチン酸アミドと接触させたＨａＣａＴ細胞におけるＴＩＭＰ－１（Ｔｉｓｓｕｅ　Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ　ｏｆ　Ｍａｔｒｉｘ　Ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅａｓｅ－１）のｍＲＮＡの発現量をＰＣＲ法を用いて定量した結果を示す図である。 所定濃度のフレグライド１で処理したＨａＣａＴ細胞の細胞生存率をＷＳＴ－１法により評価した結果を示す図である。
　以下、本発明について、より詳細に説明する。
＜１．皮膚における異物応答反応の惹起性の評価方法＞
　まず、本発明に係る被験試料の皮膚における異物応答反応の惹起性の評価方法について説明する。
　本明細書において、皮膚における異物応答反応とは、皮膚において異物応答配列（ＸＲＥ）が関与する異物応答反応を意味する。なお、異物応答配列（ＸＲＥ）が関与する異物応答反応が惹起されると、転写調節領域に異物応答配列（ＸＲＥ）をエンハンサーとして有する遺伝子の発現が活性化される。これは、主として、芳香族炭化水素受容体（ＡｈＲ）が異物応答配列（ＸＲＥ）を認識し、その下流に存在する遺伝子の発現を特異的に活性化するためであると推測される。皮膚における異物応答反応は、皮膚において芳香族炭化水素受容体（ＡｈＲ）及び異物応答配列（ＸＲＥ）が関与する異物応答反応とも言い得る。
　一方、異物応答反応の惹起性とは、上記のような異物応答反応を惹起する性質を言い、その強弱を包含する概念である。異物応答反応の惹起性が高いということは、異物応答反応を強く活性化することを意味し、異物応答反応の惹起性が低いということは異物応答反応を活性化する性質が弱いことを意味する。異物応答反応を惹起するとは、より具体的には、異物応答配列（ＸＲＥ）が関与して転写される遺伝子を発現させること及び／又はその発現を増強することを意味する。したがって、異物応答反応の惹起性を有する物質は、皮膚の細胞と接触すると、その細胞において、異物応答配列（ＸＲＥ）が関与して転写される遺伝子を発現させ、又は、その発現を増強する。ちなみに、遺伝子の発現とは、その遺伝子がコードする蛋白質が産生されることを意味しており、遺伝子の発現を増強するとは、その遺伝子がコードする蛋白質の産生量を増大させることを意味している。
　繰り返しになるが、異物応答配列（ＸＲＥ：Ｘｅｎｏｂｉｏｔｉｃ　Ｒｅｓｐｏｎｓｅ　Ｅｌｅｍｅｎｔ）とは、活性化した芳香族炭化水素受容体（ＡｈＲ：Ａｒｙｌ　Ｈｙｄｒｏｃａｒｂｏｎ　Ｒｅｃｅｐｔｏｒ）が特異的に認識する塩基配列として見出されたエンハンサー配列であり、５’－ＣＡＣＧＣ－３’という配列を有することが知られている。細胞質に存在する芳香族炭化水素受容体（ＡｈＲ）は、自己を活性化するリガンド分子と結合して活性化すると細胞核へ移行して、転写調節領域に異物応答配列（ＸＲＥ）を含むエンハンサー配列を有する遺伝子の発現を特異的に増強することが知られている。
　一方、皮膚とは、角化細胞（ケラチノサイト）、線維芽細胞（フィブロブラスト）、角質細胞（コルネオサイト）などの皮膚細胞から構成される生体の外面を保護する器官である。皮膚は表皮、真皮、皮下組織の三つの層から構成されているが、皮膚における異物応答反応は、主として、表皮の細胞の全体の約９５％を占める細胞である角化細胞に発現する芳香族炭化水素受容体（ＡｈＲ）が外因性の異物と結合することに端を発して惹起されると考えられている。したがって、本発明に係る評価方法には角化細胞が特に好適に用いられる。
　本発明に係る評価方法に用いられる角化細胞に特段の制限はなく、ヒト、マウス、ラット、ハムスター、ウサギ、イヌ、ネコ、ブタ、ヒツジ、ウマ、ウシ等の動物に由来する角化細胞を使用することができるが、ヒト由来の角化細胞であることが好ましい。角化細胞は動物より採取したものであっても良いが、樹立細胞株として販売されているものであっても良い。例えば、ヒト由来の角化細胞の樹立細胞株としてはＨａＣａＴ細胞、ＮＨＥＫ細胞などが挙げられる。
　本発明に係る評価方法には、以上のような角化細胞を形質転換して用いる。形質転換に用いるレポーターベクターは、少なくとも、異物応答配列（ＸＲＥ）を含むエンハンサー配列と、その下流にレポーター蛋白質をコードする配列を有していれば良い。ここでエンハンサー配列とは、遺伝子の転写調節領域に存在し、特定の刺激に応答してその遺伝子の発現を活性化する機能を有する塩基配列であり、単にエンハンサーと呼ばれることもある。異物応答配列（ＸＲＥ）を含むエンハンサー配列を上流の転写調節領域に有するレポーター蛋白質の発現は、皮膚における異物応答反応が惹起されることにより活性化されるため、形質転換された角化細胞における当該レポーター蛋白質の発現量は異物応答反応の程度を反映する。したがって、このようなレポーターベクターにより形質転換された角化細胞を用いることにより、被験試料の皮膚における異物応答反応の惹起性を評価することができる。
　前述したとおり、異物応答配列（ＸＲＥ）とは、芳香族炭化水素受容体（ＡｈＲ）の活性化により発現が増大する遺伝子の転写調節領域に見られる塩基配列であり、５’－ＣＡＣＧＣ－３’という基本配列を有するエンハンサー配列である。本発明に係る方法に使用されるレポーターベクターは、レポーター蛋白質をコードする配列の上流の転写調節領域に、異物応答配列（ＸＲＥ）を少なくとも１つ有している。しかしながら、異物応答配列（ＸＲＥ）は繰り返し含まれていれも良く、検出感度を高めるという観点からは、異物応答配列（ＸＲＥ）は２つ以上含まれていることが好ましく、３つ以上含まれていることがより好ましい。なお、異物応答配列（ＸＲＥ）を含むエンハンサー配列としては、Ｐ４５０１Ａ１（ＣＹＰ１Ａ１）遺伝子、Ｐ４５０１Ｂ１（ＣＹＰ１Ｂ１）遺伝子、グルタチオン－Ｓ－トランスフェラーゼ遺伝子、キノンレダクターゼ遺伝子、ＵＤＰ－グルクロノシルトランスフェラーゼ遺伝子などの遺伝子上流に見出されているものを用いても良い。これらの遺伝子の塩基配列は、公共のデータベース、例えば、アメリカ国立生物工学情報センター（ＮＣＢＩ：Ｎａｔｉｏｎａｌ　Ｃｅｎｔｅｒ　ｆｏｒ　Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ　Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ）のデータベース等から取得することができる。
　一方、形質転換に用いるレポーターベクターは、異物応答配列（ＸＲＥ）を含むエンハンサー配列の下流にレポーター蛋白質をコードする配列を有する。レポーター蛋白質は、その発現量を反映するシグナルを直接的又は間接的に測定することができる限りにおいて、どのようなレポーター蛋白質であっても良く、試験実施者が利用可能な測定機器に応じて適宜のレポーター蛋白質を選択すれば良い。例えば、発光光度計を利用できる場合には、ホタルルシフェラーゼ、ウミシイタケルシフェラーゼ、海生カイアシ類ルシフェラーゼ、及び、トゲオキヒオドシエビルシフェラーゼなどの発光酵素蛋白質を、蛍光光度計や蛍光顕微鏡を利用できる場合には、青色蛍光蛋白質（ＢＦＰ：Ｂｌｕｅ　Ｆｌｕｏｒｅｃｅｎｔ　Ｐｒｏｔｅｉｎ）、緑色蛍光蛋白質（ＧＦＰ：Ｇｒｅｅｎ　Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ　Ｐｒｏｔｅｉｎ）、黄色蛍光蛋白質（ＹＦＰ：Ｙｅｌｌｏｗ　Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ　Ｐｒｏｔｅｉｎ）、赤色蛍光蛋白質（ＲＦＰ：Ｒｅｄ　Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ　Ｐｒｏｔｅｉｎ）などの蛍光蛋白質を、吸光光度計を利用できる場合には、β－ガラクトシダーゼなどの発色酵素蛋白質をレポーター蛋白質として用いることができる。レポーター蛋白質をコードする塩基配列は、公共のデータベース、例えば、アメリカ国立生物工学情報センター（ＮＣＢＩ）のデータベース等から取得することができる。
　また、上述した配列に加えて、形質転換に用いるレポーターベクターは、レポーターベクターを導入した角化細胞において上記レポーター蛋白質を発現させるために必要な種々の配列を含むことができる。例えば、形質転換に用いるレポーターベクターは、プロモーター配列、ｍＲＮＡにリボソーム結合部位を付与する配列、転写終結のターミネーター配列、複製起源配列、選択薬物に対する耐性遺伝子をコードする配列などを含み得る。
　本発明の評価方法に使用されるレポーターベクターは、市販のものを用いても良いし、自ら作製したものを用いても良い。例えば、異物応答配列（ＸＲＥ）をエンハンサー配列に含むレポーターベクターはプロメガ株式会社より購入することができる（例えば、製品名「ｐＮＬ［ＮＬｕｃＰ/ＸＲＥ/Ｈｙｇｒｏ］Ｖｅｃｔｏｒ」、カタログ番号：ＣＳ１８６８０８）。一方、マルチクローニングサイトを備えるレポーターベクターを購入し、常法に従って異物応答配列（ＸＲＥ）を含むエンハンサー配列を組み込むことによっても、本発明の評価方法に用いられるレポーターベクターを作製することができる。
　また、形質転換に用いるレポーターベクターの種類に特段の制限はなく、例えば、プラスミド、コスミド、ファージミド、ウイルスベクターなどを使用することができる。いずれにせよ、標的となる角化細胞で発現できるレポーターベクターを適宜選択すれば良い。
　形質転換された角化細胞を作製するには、当技術分野における常法に従って、上記のレポーターベクターを角化細胞に導入すれば良い。レポーターベクターの角化細胞への導入方法に特段の制限はなく、物理的方法又は化学的方法を問わず適宜の方法を用いて行うことができる。物理的な導入方法としては、例えば、エレクトロポレーション法、ソノポレーション法、マイクロインジェクション法などが例示される。一方、化学的な導入方法としては、リン酸カルシウム法や、リポソームを用いたリポフェクション法に加え、カチオン性脂質、リピドイド、カチオン性ポリマー、膜透過性ペプチド、抗体、抗体フラグメント、タンパク質、ナノ粒子、マイクロ粒子、エマルジョン等の適宜の送達手段を用いたトランスフェクション法が例示される。
　一方、安定した測定結果を得るという観点から、本発明の評価方法に用いられる形質転換された角化細胞は、上記レポーターベクターにより導入されたＤＮＡが安定的に導入された形質転換体、すなわち、安定的に形質転換された角化細胞であることが好ましい。安定的に形質転換された角化細胞は、当該技術分野における常法に従って樹立することができる。例えば、レポーターベクターとして、更に選択薬剤に対する耐性遺伝子を含むレポーターベクターを角化細胞に導入し、その後に、所定量の選択薬剤を含有する細胞培養培地を用いてレポーターベクターを導入した角化細胞を２週間程度培養すれば良い。レポーターベクターが安定的に導入された細胞は選択薬剤に対する耐性遺伝子を発現する一方、レポーターベクターが一過的に導入されたに過ぎない細胞は選択薬剤に対する耐性遺伝子の発現が次第に失われるため、選択薬剤を含有する細胞培養培地中で死滅する。よって、選択薬剤を含有する細胞培養培地を用いて所定の期間、角化細胞を培養することにより、安定的に形質転換された角化細胞を得ることができる。なお、選択薬剤としては、例えば、ハイグロマイシンＢ、ジオシン、ジェネティシン、ピュ―ロマイシン、ブラストサイジンなどを用いることができる。
　一方、本発明の評価方法に用いられる被験試料となる物質の種類に特段の制限はなく、天然由来の物質であっても人工的に合成された物質であっても良いし、また、有機化合物であっても無機化合物であっても良い。敢えて例示するのであれば、例えば、低分子有機化合物、アミノ酸、脂質、ペプチド、タンパク質、ヌクレオチド、核酸、糖質、天然高分子、合成高分子又はそれらの結合物が挙げられる。また、被験試料は必ずしも単離された物質である必要はなく、複数の物質の混合物であっても良い。このような混合物には、例えば、植物抽出液や、化粧水、化粧下地、美容液、保湿クリーム、乳液、頬紅、口紅、ハンドクリーム、リップクリーム、マスカラ、アイシャドーなどの化粧品、洗濯用洗剤、食器洗い用洗剤、洗顔せっけん、入浴剤、ハンドソープ、ボディソープ、シャンプー、手指消毒剤などの日用品、軟膏、虫よけスプレー、薬用化粧品、日焼け止めクリームなどの医薬部外品などが含まれるが、これらに限られない。被験試料が上記のような製品である場合には、本発明に係る評価方法は、当該製品の安全性評価、皮膚への適合性評価に好適に用いられる。なお、被験試料は河川、湖、井戸水、湧き水、上水や海の水のような試料であっても良い。
　なお、皮膚における異物応答反応、すなわち、皮膚において異物応答配列（ＸＲＥ）が関与する異物応答反応が惹起されると、シワの原因となるマトリックスメタロプロテアーゼ９やアトピー性皮膚炎の原因となるアルテミンの産生が活性化されることが知られている（例えば、非特許文献４、非特許文献５）。したがって、本発明の評価方法は、被験試料のシワの惹起性、アトピー性皮膚炎の惹起性を評価する方法として好適に用いられ得る。
　以下、本発明の評価方法の各工程について説明する。
（１）形質転換された角化細胞を、被験試料を含有する溶液と接触させる工程
　本工程は、形質転換された角化細胞に、評価対象となる被験試料を含有する溶液を接触させる工程である。被験試料を含有する溶液は、被験試料を精製水、生理食塩水、又は、細胞培養培地などの適宜の溶媒と混合し、溶解させることにより調製することができる。被験試料が水に不溶である場合には、水に懸濁又は分散させた状態で用いても良いし、例えば、ＤＭＳＯなどの細胞毒性が低く、且つ、水と混和する有機溶媒に溶解したものを、細胞培養培地や生理食塩水で希釈すれば良い。このようにして調製した被験試料を含有する溶液／懸濁液／分散液（以下、特に断りがない限り、単に「溶液」という）を、形質転換された角化細胞が存在する細胞培養プレート、培養皿に所定量添加することによって、被験試料を含有する溶液と形質転換された角化細胞を接触させることができる。なお、被験試料を含有する溶液において、そこに含まれている被験試料以外の成分は実質的に皮膚における異物応答反応を惹起しないことが好ましく、例えば、細胞培養培地や生理食塩水などを好適に用いることができる。
　被験試料と角化細胞を十分に接触させ、被験試料が惹起する異物応答反応を十分に反映した量のレポーター蛋白質を発現させるという観点からは、被験試料を含有する溶液と接触させた後、所定時間のインキュベーションの後に、後述する工程（２）に用いることが好ましい。例えば、角化細胞と被験試料を含有する溶液との接触後、少なくとも、６時間以上インキュベーションすることが好ましく、１２時間以上インキュベーションすることがより好ましく、１８時間以上インキュベーションすることがさらに好ましく、２４時間以上インキュベーションすることがよりさらに好ましい。インキュベーションは常法に従って、３７℃、５％ＣＯ２の条件下で行うことができる。
　一方、比較対照として、被験試料を含有しないこと以外は実質的に被験試料を含有する前記溶液と同じ溶液（以下、「被験試料を含有しない溶液」ということもある。）を陰性対照として用いることにより、被験試料の皮膚における異物応答反応の惹起性をより正確に評価することができる。被験試料を含有しない溶液は、例えば、被験試料を含有する溶液を調製するのに用いた細胞培養培地であり得る。陰性対照を用いる場合には、被験試料を含有する溶液に代えて被験試料を含有しない溶液と角化細胞を接触させたものを、後述する工程（２）に用いれば良い。
（２）レポーター蛋白質の発現量を測定する工程
　本工程は、前記工程（１）において、被験試料を含有する溶液と接触させた角化細胞におけるレポーター蛋白質の発現量、及び、陰性対照を使用した場合には被験試料を含有しない溶液と接触させた角化細胞におけるレポーター蛋白質の発現量を測定する工程である。
　レポーター蛋白質の発現量は、レポーター蛋白質の発現量を反映するレポーター蛋白質に由来するシグナルの強度を定量的に測定することにより行うことができる。レポーター蛋白質に由来するシグナルの強度は、レポーター蛋白質の種類に応じて適宜の手段で測定することができる。例えば、レポーター蛋白質として、ホタルルシフェラーゼ、ウミシイタケルシフェラーゼ、海生カイアシ類ルシフェラーゼ、トゲオキヒオドシエビルシフェラーゼなどの発光酵素蛋白質を用いる場合には、当該発光酵素蛋白質による酵素反応を受けて発光する性質を有する基質と、発光強度を測定する発光光度計を用いることにより、レポーター蛋白質に由来するシグナルの強度を測定することができる。一方、レポーター蛋白質として、青色蛍光蛋白質（ＢＦＰ：Ｂｌｕｅ　Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ　Ｐｒｏｔｅｉｎ）、緑色蛍光蛋白質（ＧＦＰ：Ｇｒｅｅｎ　Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ　Ｐｒｏｔｅｉｎ）、黄色蛍光蛋白質（ＹＦＰ：Ｙｅｌｌｏｗ　Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ　Ｐｒｏｔｅｉｎ）、赤色蛍光蛋白質（ＲＦＰ：Ｒｅｄ　Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ　Ｐｒｏｔｅｉｎ）などの蛍光蛋白質を用いる場合には、当該蛍光蛋白質が発する蛍光強度を蛍光光度計を用いて測定すれば良い。また、β－ガラクトシダーゼなどの発色酵素蛋白質をレポーター蛋白質として用いる場合には、当該発色酵素蛋白質による酵素反応を受けて特定の波長の光を吸収する、又は、蛍光を発する性質を有する基質（例えば、発色酵素蛋白質がβ－ガラクトシダーゼである場合には、５－ブロモ－４－クロロ－３－インドリル－β－Ｄ－ガラクトピラノシド、２－ニトロフェニル－β－Ｄ－ガラクトピラノシド、フルオレセイン－β－Ｄ－ガラクトピラノシド等）と、吸光度を測定する吸光光度計、又は、蛍光強度を測定する蛍光光度計を用いることにより、レポーター蛋白質に由来するシグナルの強度を測定することができる。
（３）異物応答反応の惹起性を評価する工程
　本発明に用いられる形質転換された角化細胞が産生するレポーター蛋白質の発現量は異物応答配列（ＸＲＥ）が関与する異物応答反応の程度を反映するため、該レポーター蛋白質の発現量の多寡に基づいて、異物応答反応の惹起性を評価することができる。すなわち、レポーター蛋白質の発現量が大きいほど、異物応答反応の惹起性が高いということになる。レポーター蛋白質の発現量の多寡は、典型的には、被験試料を含有する溶液と接触させた角化細胞におけるレポーター蛋白質の発現量と、被験試料を含有しない溶液（陰性対照）と接触させた角化細胞におけるレポーター蛋白質の発現量を比較することによって評価することができる。すなわち、被験試料を含有する溶液と接触させた場合のレポーター蛋白質の発現量が、被験試料を含有しない溶液（陰性対照）と接触させた場合のレポーター蛋白質の発現量と比較して大きい場合に、当該被験試料が皮膚における異物応答反応の惹起性を有すると評価することができる。なお、陰性対照と比較して、レポーター蛋白質の発現量の増加の程度が大きいほど、異物応答反応の惹起性が強いことを示していることは言うまでもない。
　なお、本発明に係る評価方法は、その好適な一態様において、前記（２）の工程の後又は前に、被験試料を含有する溶液と接触させた角化細細胞、及び、陰性対照を用いた場合には、被験試料を含有しない溶液と接触させた角化細胞の生細胞数を測定する工程を更に含んでいても良い。生細胞数を測定する場合には前記（２）の工程で測定されるレポーター蛋白質の発現量を、本工程で測定される生細胞数で除することにより、単位生細胞数当たりのレポーター蛋白質の発現量を得ることができる。これにより、各サンプル間における細胞数のバラつきの影響を補正することができるので、より正確な異物応答反応の惹起性の評価が可能となる。なお、生細胞数は当技術分野の常法に従って測定することができ、例えば、生細胞中のミトコンドリア脱水素酵素の活性に応じて発色する還元発色試薬を使用するＭＴＴ法、ＭＴＴ法と同じく比色定量法であるＸＴＴ法、ＭＴＳ法、ＷＳＴ法などを用いれば良いが、これらに限定されない。
＜２．皮膚における異物応答反応の抑制性を有する物質の探索方法＞
　一方、形質転換された上記角化細胞に対して、レポーター蛋白質の発現量を低下させる作用を有する物質は、皮膚における異物応答反応の抑制性を有する物質であると評価することができる。よって、本発明は、他の一側面において、皮膚における異物応答反応の抑制性を有する物質の探索方法を提供するものである。以下、当該探索方法について説明する。
　異物応答反応の抑制性とは、異物応答反応を抑制する性質をいい、異物応答反応を抑制するとは、より具体的には、異物応答配列（ＸＲＥ）が関与して転写される遺伝子の発現を低減させることを意味する。ちなみに、遺伝子の発現とは、その遺伝子がコードする蛋白質が産生されることを意味することは前述したとおりであり、遺伝子の発現を抑制するとは、その遺伝子がコードする蛋白質の産生量を低減させることを意味している。
　探索対象となる候補物質の種類に特段の制限はなく、天然由来の物質であっても人工的に合成された物質であっても良い。また、有機化合物であっても無機化合物であっても良い。敢えて例示するのであれば、例えば、低分子有機化合物、アミノ酸、脂質、ペプチド、タンパク質、ヌクレオチド、核酸、糖質、天然高分子、合成高分子又はそれらの結合物が挙げられる。また、候補物質は必ずしも単離された物質である必要はなく、複数の物質の混合物であっても良い。このような混合物としては、例えば、植物抽出物が挙げられるが、これに限られることはない。
　なお、異物応答配列（ＸＲＥ）が関与して転写される遺伝子には、例えば、シワの原因となるマトリックスメタロプロテアーゼ９やアトピー性皮膚炎の原因となるアルテミンをコードする遺伝子が含まれる。したがって、皮膚における異物応答反応の抑制性を有する物質は上記遺伝子の発現を抑制する性質を有するということができる。換言すれば、本発明に係る探索方法は、シワを予防及び／又は改善するための物質やアトピー性皮膚炎を予防及び／又は治療する作用を有するための物質の探索方法として好適に用いることができる。
　本発明の探索方法においては、上記評価方法について既に説明したと同様の形質転換された角化細胞（ケラチノサイト）を用いることができる。よって、形質転換された角化細胞、及びその樹立方法については上記評価方法に関する説明を参照されたい。
　以下、本発明の探索方法の各工程について説明する。
（１）形質転換された角化細胞を、候補物質を含有する試験溶液又は前記候補物質を含有しない基準溶液と接触させる工程
　本工程は、形質転換された角化細胞に、候補物質を含有する試験溶液、及び、コントロールとして前記候補物質を含有しない基準溶液を接触させる工程である。候補物質を含有する試験溶液、及び、候補物質を含有しない基準溶液の調製方法、及び、これらの溶液と角化細胞と接触させる方法は、評価方法についての説明の欄で被験試料を含有する溶液について述べたと同様である。
　なお、候補物質を含有する試験溶液及び前記候補物質を含有する基準溶液は、皮膚における異物応答反応を惹起する物質を含有していることが好ましい。異物応答反応を惹起する物質を含有する基準溶液により惹起されるレポーター蛋白質の発現量を基準として、異物応答反応の抑制性を評価することにより検出感度を向上させることができる。なお、皮膚における異物応答反応を惹起する物質は、皮膚において異物応答配列（ＸＲＥ）が関与して転写される遺伝子の発現を増加させる物質であれば良く、例えば、６－ホルミルインドロ［３，２－ｂ］カルバゾール（ＦＩＣＺ：６－Ｆｏｒｍｙｌｉｎｄｏｌｏ［３，２－ｂ］ｃａｒｂａｚｏｌｅ、ＣＡＳ番号：１７９２２－９１－７）、インドール－３－カルビノール（Ｉ３Ｃ：Ｉｎｄｏｌｅ－３－Ｃａｒｂｉｎｏｌ、ＣＡＳ番号：７００－０６－１）、２－（１’Ｈ－インドール－３’－カルボニル）－チアゾール－４－カルボン酸メチルエステル（ＩＴＥ：２－（１’Ｈ－ｉｎｄｏｌｅ－３’－ｃａｒｂｏｎｙｌ）－ｔｈｉａｚｏｌｅ－４－ｃａｒｂｏｘｙｌｉｃ　ａｃｉｄ　ｍｅｔｈｙｌ　ｅｓｔｅｒ、ＣＡＳ番号：４４８９０６－４２－１）、インジルビン（Ｉｎｄｉｒｕｂｉｎ、ＣＡＳ番号：４７９－４１－４）などを使用することができるが、これらに限定されない。ある物質が皮膚における異物応答反応を惹起するか否かは、例えば、本発明の他の一側面に係る評価方法を用いて評価することができる。
　また、候補物質と角化細胞を十分に接触させ、候補物質による異物応答反応の抑制性を十分に反映した試験結果を得るという観点からは、候補物質を含有する試験溶液、及び、前記候補物質を含有しない基準溶液と接触させた後、所定時間のインキュベーションの後に、後述する工程（２）に用いることが好ましい。インキュベーション時間に特段の制限はないが、例えば、角化細胞と試験溶液、及び、角化細胞と基準溶液との接触後、少なくとも、６時間以上インキュベーションした後に、続く工程（２）に用いることが好ましく、１２時間以上インキュベーションすることがより好ましく、１８時間以上インキュベーションすることがさらに好ましく、２４時間以上インキュベーションすることがよりさらに好ましい。
（２）レポーター蛋白質の発現量を測定する工程
　本工程は、前記工程（１）において、候補物質を含有する試験溶液と接触させた角化細胞におけるレポーター蛋白質の発現量、及び、前記候補物質を含有しない基準溶液と接触させた角化細胞におけるレポーター蛋白質の発現量を測定する工程である。レポーター蛋白質の発現量の具体的な測定方法については、前記＜１．皮膚における異物応答反応の惹起性の評価方法＞についての説明の欄で既に述べたとおりである。
（３）レポーター蛋白質の発現量を比較する工程
　前記（２）の工程で測定された候補物質を含有する試験溶液と接触させた角化細胞におけるレポーター蛋白質の発現量と、前記候補物質を含有しない基準溶液と接触させた角化細胞におけるレポーター蛋白質の発現量を比較し、比較結果に基づいて候補物質が皮膚における異物応答反応の抑制性を有するか否かを評価する工程である。具体的には、候補物質を含む試験溶液と接触させた角化細胞におけるレポーター蛋白質の発現量が、前記候補物質を含まない基準溶液と接触させた角化細胞におけるレポーター蛋白質の発現量と比較して少ない場合に、当該候補物質が皮膚における異物応答反応の抑制性を有すると評価することができる。なお、基準溶液と接触させた角化細胞におけるレポーター蛋白質の発現量と比較して、試験溶液と接触させた角化細胞におけるレポーター蛋白質の発現量の減少の程度が大きいほど、皮膚における異物応答反応の抑制性が強いことを示している。したがって、本発明に係る探索方法によれば、候補物質の異物応答反応の抑制性の有無のみならず、候補物質の異物応答反応の抑制性の程度を評価することができる。
　なお、本発明に係る探索方法は、その好適な一態様において、前記（２）の工程の後又は前に、試験溶液と接触させた角化細細胞、及び、基準溶液と接触させた角化細胞の生細胞数を測定する工程を更に含んでいても良い。生細胞数を測定する場合には前記（２）の工程で測定されるレポーター蛋白質の発現量を、本工程で測定される生細胞数で除することにより、単位生細胞数当たりのレポーター蛋白質の発現量を得ることができる。これにより、各サンプル間における細胞数のバラつきの影響を補正することができるので、より正確な異物応答反応の抑制性の評価が可能となる。なお、生細胞数は当技術分野の常法に従って測定することができることは前述したとおりである。
＜３．皮膚における異物応答反応を抑制する剤＞
　次に、本発明の他の一側面に係る皮膚における異物応答反応を抑制する剤について説明する。
　前述したとおり、異物応答反応を抑制するとは、異物応答配列（ＸＲＥ）が関与して転写される遺伝子の発現を低減させることを意味する。すなわち、皮膚における異物応答反応を抑制する剤は、異物応答配列（ＸＲＥ）が関与して転写される遺伝子の発現を抑制する剤ということもできる。
　本発明の皮膚における異物応答反応を抑制する剤は、５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライド及び／又はその塩を有効成分として含有する。５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライドは、香醋から発見されたブテノライド化合物でありフレグライド１又は５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）フラノンとも呼ばれ、その構造式は化学式（Ｉ）で表されるとおりである（Ａｙｄａｎ　Ｈ．　Ｙａｔｍａｚ　ｅｔ　ａｌ．，　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｏｌｅｏ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，　２０１７，　６６：１３８１－１３８６）。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
　５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライドは互変異性を示すことが知られており、互変異性体としては化学式（ＩＩ）、化学式（ＩＩＩ）で表される互変異性体が知られている。本明細書において、特に明記しない限り、５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライドにはその互変異性体も包含される。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000003
　５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライドは香醋から抽出して得ることができる。香醋から５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライドを得る方法は、例えば、国際公開公報第２０１６／００６５４８号に記載されている。一方、５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライドは人工的に合成することもできる。５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライドは、例えば、特開平６－２１１８２５号公報、特開平１１－１５２２８０号公報に記載されている方法で合成することができる。
　一方、５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライドの塩は、薬学的に許容される塩であれば、特に限定されない。５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライド及びその塩は、水和物であっても良く、アルコール等の有機溶媒和物であっても良く、無水物であっても良い。また、５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライド及びその塩が生体内で産生されるよう官能基を修飾したプロドラッグを用いても良い。
　本発明者らが見出した知見によれば、５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライド及び／又はその塩は、皮膚における異物応答反応を抑制、すなわち、皮膚において異物応答配列（ＸＲＥ）が関与して転写される遺伝子の発現を抑制する作用を有する。なお、皮膚において異物応答配列（ＸＲＥ）が関与して転写される遺伝子は、転写調節領域に異物応答配列（ＸＲＥ）を含むエンハンサー配列を有している。前述したとおり、このような遺伝子は活性化した芳香族炭化水素受容体（ＡｈＲ）の存在下で発現が亢進することが知られている。
　異物応答配列（ＸＲＥ）が関与して転写される遺伝子としては、例えば、アトピー性皮膚炎の原因とされる神経栄養因子アルテミンが知られており、後述する実験例で示すとおり、５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライドは角化細胞においてアルテミンの発現を抑制する作用を有している。すなわち、５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライド及び／又はその塩を有効成分として含む剤は、アルテミンの産生を抑制する剤として使用することができる。
　アルテミンはグリア細胞株由来神経栄養因子（ＧＤＮＦ）ファミリーの一種であり、ＧＤＮＦファミリー受容体α３（Ｇｆｒα３）との結合を介して、神経細胞の増殖、伸長を誘導する働きを有している。ＡｈＲが恒常的に活性化したマウスの皮膚においてはアルテミンが発現しており、これにより皮膚表皮内への神経の異常な伸長が起こることによって過敏に痒みを感じる症状が引き起こされ、ひいては皮膚のバリア機能の喪失、アトピー性皮膚炎の原因となると考えられている。
　したがって、５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライド及び／又はその塩を有効成分として含有する、アルテミンの産生を抑制する剤は、アトピー性皮膚炎の予防及び／又は治療に好適に用いることができる。ここでアトピー性皮膚炎の予防及び／又は治療とは、アトピー性皮膚炎又はそれに伴い生じる症状（例えば、痒み、湿疹、苔癬化など）の症状の１つ以上を抑制すること、又は、このような症状が発症することを未然に阻止すること又は発症率を低下させることを意味する。
　一方、異物応答配列（ＸＲＥ）が関与して転写される他の遺伝子としては、例えば、シワの原因とされるマトリックスメタロプロテアーゼ９が知られており、後述する実験例で示すとおり、５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライドは角化細胞においてマトリックスメタロプロテアーゼ９の発現を抑制する作用を有している。すなわち、５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライド及び／又はその塩を有効成分として含む剤は、マトリックスメタロプロテアーゼ９の産生を抑制する剤として使用することができる。
　マトリックスメタロプロテアーゼ９を含むマトリックスメタロプロテアーゼ（ＭＭＰ：Ｍａｔｒｉｘ　Ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅａｓｅ）は、細胞外マトリックスを分解するメタロプロテアーゼ（活性中心の触媒部位に金属イオンを有するプロテアーゼ）の総称である。ヒトにおいては少なくとも１１種類のＭＭＰが知られており、基質となる蛋白質や発現場所が異なっている。マトリックスメタロプロテアーゼ９（ＭＭＰ９）はゼラチナーゼ活性を有するＭＭＰであり、紫外線照射により高度にシワを形成したラットにおいて産生量が向上していることが報告されるなど、シワの形成と深く関係していることからＭＭＰ９の発現の抑制は皮膚の老化・シワの形成の予防に有効であると考えられている（特開２０１１－１７８７４７号公報、Ｓｈｉｎｊｉ　Ｉｎｏｍａｔａ　ｅｔ　ａｌ．，　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｖｅ　Ｄｅｒｍａｔｏｌｏｇｙ　２００３，１２０：１２８－１３４．）。
　したがって、５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライド及び／又はその塩を有効成分として含有する、マトリックスメタロプロテアーゼ９の産生を抑制する剤は、シワの予防及び／又は改善に好適に用いることができる。ここでシワの予防及び／又は改善とは、シワの形成を未然に阻止すること、又は、既に形成したシワを改善することを意味する。
　ちなみに、マトリックスメタロプロテアーゼ９はシワの形成のみならず、数多くの炎症性皮膚疾患、例えば、白斑、乾癬、アトピー性皮膚炎、強皮症、ハイポメラノース及び白毛症などに関わる因子であり、例えば、紫外線による皮膚の炎症や類天疱瘡における水疱の形成に関わること（Ｔａｋａｓｈｉ　Ｋｏｂａｙａｓｈｉ，　Ｉｎｆｌａｍｍａｔｉｏｎ　ａｎｄ　Ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　２００４，２４：５７８－５８３．）、また、上記炎症性皮膚疾患に伴う色素脱失障害に関連すること（特表２０２０－５０４７１９号公報）が知られている。したがって、本発明に係る剤、特に、マトリックスメタロプロテアーゼ９の産生を抑制する剤は、マトリックスメタロプロテアーゼ９の発現の亢進が原因となる種々の炎症性皮膚疾患及びこのような炎症性皮膚疾患に付随する色素脱失障害の予防及び／又は治療に有効に用いられる。ここで、予防及び／又は治療とは、これらの各種疾患又はそれに伴い生じる症状の１つ以上を抑制すること、又は、このような症状が発症することを未然に阻止すること又は発症率を低下させることを意味することは前述したとおりである。
　また、コラーゲン、ゼラチン、エラスチンなどの動脈、腱、皮膚など弾性組織を構成する細胞外基質を分解する働きを有するゼラチナーゼ活性を有するマトリックスメタロプロテアーゼ９は、皮膚における炎症性疾患のみならず、数多くの臓器における各種の疾患に関わることが明らかとなっており、例えば、がん細胞が浸潤・転移する上で重要な役割を果たしていることや（Ｔａｋａｓｈｉ　Ｋｏｂａｙａｓｈｉ，　Ｉｎｆｌａｍｍａｔｉｏｎ　ａｎｄ　Ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　２００４，２４：５７８－５８３．）、慢性関節リウマチ、骨粗鬆症、歯周炎などに関与すること（特開２０１５－１７０４８号公報）が知られている。したがって、本発明に係る剤、特に、マトリックスメタロプロテアーゼ９の産生を抑制する剤は、マトリックスメタロプロテアーゼ９の発現の亢進が原因となる種々の疾患、例えば、がん、慢性関節リウマチ、骨粗鬆症、歯周炎の予防及び／又は治療のために好適に用いることもできる。
　一方、後述する実験例で示すように、５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライド及び／又はその塩は、マトリックスメタロプロテアーゼ９の産生を抑制するのみならず、マトリックスメタロプロテアーゼの阻害因子であるＴＩＭＰ－１（Ｔｉｓｓｕｅ　Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ　ｏｆ　Ｍａｔｒｉｘ　Ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅａｓｅ－１）の産生を促進する効果を奏する。すなわち、本発明はさらに他の一側面において、５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライド及び／又はその塩を有効成分として含有するＴＩＭＰ－１の産生を促進する剤を提供する。上述したとおり、ＴＩＭＰ－１はマトリックスメタロプロテアーゼの阻害因子として作用するため、５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライド及び／又はその塩を有効成分として含有するＴＩＭＰ－１の産生を促進する剤は、シワの予防及び／又は改善に好適に用いることができる。なお、ＴＩＭＰ－１の産生を促進する上記剤が、シワの予防及び／又は改善のみならず、マトリックスメタロプロテアーゼ９の発現の亢進が原因となる種々の疾患の予防及び／又は治療に有効に用いられることは言うまでもない。
　本発明に係る剤が含有する５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライド及び／又はその塩の含有量に特段の制限はないが、例えば、０．０００１重量％～１０重量％、０．０００５重量％～５重量％、０．００１重量％～２重量％又は０．００５重量％～１重量％とされ得る。
　なお、本発明に係る剤は、特に皮膚細胞に好適に使用することができ、より好適には皮膚の表皮細胞、さらに好適には角化細胞（ケラチノサイト）に好適に使用することができる。しかしながら、本発明に係る剤を皮膚以外の他の種類の細胞に適用しても良いことは言うまでもない。例えば、本発明に係る剤は、がん細胞に適用しても良い。
　本発明に係る剤は医薬品として提供されても良いことは勿論であるが、医薬部外品、化粧品、日用品、食料品などとして提供されても良い。ここで食料品には、健康食品（機能性食品、栄養補助食品、健康補助食品、栄養強化食品、栄養調整食品、サプリメン卜）、特別用途食品、保健機能食品（特定保健用食品、栄養機能食品）等が含まれ、また、化粧品としては、スキンケア化粧品（化粧水、乳液、クリーム、美容液、パック、クレンジング、洗顔料、せっけん、ハンドソープ等）、メイクアップ化粧品（化粧下地、ファンデーション、コンシーラー、フェイスパウダー、口紅、ほお紅、アイシャドー、アイライナー、アイブロー、マスカラ等）、ボディケア化粧品（ボディソープ、ボディミルク、ボディローション、ボディクリーム、ボディオイル、ボディパウダー、サンスクリーン、サンオイル、デオドラントスプレー、脱色クリーム、脱毛クリーム、ハンドクリーム等）、ヘアケア化粧品（シャンプー、リンス、リンスインシャンプー、ドライシャンプー、ヘアトリートメント、コンディショナー、ヘアミルク、ヘアクリーム、ヘアオイル、ヘアミスト、トニック、ヘアフォーム、ヘアジェル、ワックス、ポマード、ヘアリキッド、ウェーブ剤、ヘアカラー、ブリーチ、カラーリンス、育毛剤、発毛剤等）、歯磨き、マウスウォッシュ、うがい薬、浴用化粧品（バスミルク、バスソルト、バスオイル等）、及び、フレグランス化粧品（香水、オーデコロン等）等が含まれるが、これらに限定されない。また、日用品としては、例えば、洗濯用洗剤、台所用洗剤、住宅用洗剤、浴室用洗剤、消毒液、防虫剤、虫よけ、ウェットティッシュ等が含まれるが、これらに限定されない。フレグライド１を含有するこれらの医薬部外品、化粧品、日用品、又は食料品は、アトピー性皮膚炎をはじめとする炎症性皮膚疾患の予防及び／又は治療、或いは、シワの予防及び／又は改善に好適に用いられ得る。
　また、本発明に係る剤の投与方法に特段の制限はなく、経口投与されてもよいし、非経口投与されても良い。ここで非経口投与には、皮膚投与、経皮投与、経粘膜投与、経眼投与、経鼻投与、経管投与、吸入投与、噴霧投与、皮下注射、皮内注射、静脈注射、筋肉内注射などが含まれる。
　本発明に係る剤の製剤形態に特段の制限はなく、投与経路に応じて適切な剤型を適宜選択すればよい。経口投与される場合には、例えば、錠剤、カプセル剤、散剤、粉剤、顆粒剤、シロップ剤など、非経口投与される場合には、例えば、注射剤、液剤、軟膏剤、湿布剤、クリーム剤、ローション剤、ゲル剤、皮膚外用剤、噴霧剤、パップ剤などを例示することができるが、これらに限られない。
　本発明に係る剤は、その製剤形態及び／又は用途に応じて、さらに他の成分を含んでいても良く、例えば、賦形剤、基材、緩衝剤、防腐剤、キレート剤、抗酸化剤、界面活性剤、パール光沢付与剤、ｐＨ調整剤、増粘剤及び／又はその他の通常の医薬品、医薬部外品、化粧品、日用品又は食料品等に配合される１種又は２種以上の成分を含む組成物として提供されても良い。
　賦形剤としては、例えば、グルコース、ガラクトース、果糖などの単糖類；マルトース、トレハロース、乳糖などの二糖類；マルトトリオース、マルトテトラオースなどのオリゴ糖；ソルビトール、マンニトール、マルチトールなどの糖アルコール；セルロース（結晶セルロースを含む）、澱粉、デキストリン、デキストラン、環状糖類（シクロデキストリン、イソマルトデキストリンなど）などの多糖類などが含まれ得るが、これらに限定されない。
　基材としては、例えば、水；海水、海洋深層水；エタノール、イソプロパノールなどの低級アルコール；セタノール、ステアリルアルコールなどの高級アルコール；グリセリン、ブチレングリコール、プロピレングリコール、ポリエチレングリコールなどの多価アルコール；ワセリン、流動パラフィンなどの炭化水素類；ジメチコノール、変性シリコーンなどのシリコーン油；ヤシ油、オリーブ油、コメヌカ油などの油脂；ホホバ油、ミツロウなどのロウ類などが含まれ得るが、これらに限定されない。
　緩衝剤としては、例えば、リン酸緩衝剤、ホウ酸緩衝剤、クエン酸緩衝剤、酒石酸緩衝剤、酢酸緩衝剤、アミノ酸などが含まれ得るが、これらに限定されない。
　防腐剤としては、例えば、安息香酸、安息香酸ナトリウム、パラオキシ安息香酸メチルなどのパラオキシ安息香酸エステル、塩化ベンザルコニウムなどの第四級アンモニウム塩、ベンジルアルコール、ソルビン酸およびその塩、チメロサール、メチルパラベン、エチルパラベン、プロピルパラベン、ブチルパラベン、塩化セチルピリジニウム、カテキン、フェノキシエタノールなどが含まれ得るが、これらに限定されない。
　キレート剤としては、例えば、エデト酸ナトリウム、エデト酸二ナトリウム、クエン酸、フィチン酸、グルコン酸、グルコン酸ナトリウム、エチドロン酸、エチドロン酸４ナトリウム、ペンテト酸５ナトリウムなどが含まれ得るが、これらに限定されない。
　抗酸化剤としては、例えば、亜硫酸水素ナトリウム、亜硫酸ナトリウム、ピロ亜硫酸ナトリウム、アスコルビン酸、エルゴチオネイン、還元型３，４－ジヒドロキシフェニルエタノール　エレノール酸（Ｒｅｄｕｃｅｄ　３，４－Ｄｉｈｙｄｒｏｘｙｐｈｅｎｙｌｅｔｈａｎｏｌ　ｅｌｅｎｏｌｉｃ　ａｃｉｄ）などが含まれ得るが、これらに限定されない。
　界面活性剤は、非イオン界面活性剤、陽イオン界面活性剤、陰イオン性界面剤、両性界面活性剤のいずれであってもよく、また、シリコーン系界面活性剤であってもよい。非イオン界面活性剤としては、例えば、セテアレス－１３、ラウレス－７などのポリオキシエチレンアルキルエーテル；ポリオキシエチレン脂肪酸エステル；オレイン酸ポリグリセリル－２、オレイン酸ポリグリセリル－１０、デカイソステアリン酸ポリグリセリル－１０などのポリグリセリン脂肪酸エステル；ポリソルベート－２０などのポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル：ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油；セスキオレイン酸ソルビタンなどのソルビタン脂肪酸エステル；ステアリン酸グリセリルなどのグリセリン脂肪酸エステル；コカミドＤＥＡ、コカミドＭＥＡ、コカミドメチルＭＥＡなどの脂肪酸アルカノールアミド；アルキルグリコシドなどが含まれ得るが、これらに限定されない。陽イオン界面活性剤としては、例えば、ポリクオタニウム－１０などのカチオン化セルロース；脂肪酸アミドアミン塩；ベヘントリモニウムメトサルフェートなどのモノアルキル型四級アンモニウム塩；ジアルキル型四級アンモニウム塩などが含まれ得るが、これらに限定されない。陰イオン界面活性剤としては、例えば、ラウリン酸塩、ステアリン酸塩、ミリスチン酸塩、パルミチン酸塩などの脂肪酸塩；ラウリル硫酸ナトリウムなどのアルキル硫酸エステル塩；ラウレス硫酸ナトリウムなどのアルキルエーテル硫酸エステル塩；ココイルアラニンナトリウム、ココイルアラニントリエタノールアミンなどのココイルアラニン塩；ココイルメチルアラニンナトリウムなどのココイルメチルアラニン塩；ラウロイルメチルアラニンナトリウム、ラウロイルメチルアラニントリエタノールアミンなどのラウロイルメチルアラニン塩；ココイルグルタミン塩などが含まれ得るが、これらに限定されない。両性界面活性剤としては、ラウリルベタインなどのベタイン系界面活性剤が含まれ得るが、これに限定されない。シリコーン系界面活性剤としては、ジメチコン（メチルポリシロキサン）、アモジメチコン（アミノエチルアミノプロピルメチルシロキサン・ジメチルシロキサン共重合体）、ＰＥＧ－１０ジメチコン（ポリオキシエチレン・メチルポリシロキサン共重合体）などが含まれ得るが、これらに限定されない。
　パール光沢付与剤としては、例えば、ジアステアリン酸エチレングリコール、モノアステアリン酸エチレングリコールなどが含まれ得るが、これらに限定されない。
　ｐＨ調整剤としては、例えば、塩酸、硫酸などの無機酸及びその塩、乳酸、コハク酸などの有機酸及びその塩、水酸化カリウム、水酸化ナトリウムなどの無機塩基、トリエタノールアミンなどの有機塩基が含まれ得るが、これらに限定されない。
　増粘剤としては、例えば、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、カルボマー（カルボキシビニルポリマー）などのビニル系増粘剤、メチルセルロース、エチルセルロース、ヒドロキシメチルセルロース、ヒドロキシエチルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロースなどのセルロース系増粘剤、グァーガム、ペクチン、プルラン、ゼラチン、カラギーナン、アルギン酸などの多糖類などが含まれ得るが、これらに限定されない。
　本明細書において引用されたすべての文献の開示内容は、全体として明細書に参照により組み込まれる。また、本明細書が英語に翻訳された場合において、単数形の「ａ」、「ａｎ」、および「ｔｈｅ」の単語が含まれる場合、文脈から明らかにそうでないことが示されていない限り、単数のみならず複数のものを含むものとする。
　以下、実験例を挙げて本発明を更に詳細に説明するが、これらの実験例は、あくまでも本発明の実施形態の例示にすぎず、本発明の範囲を何ら限定するものではない。
＜実験１－１　ヒト表皮角化細胞ＨａＣａＴの形質転換＞
＜ＸＲＥ－ＮＬｕｃベクター＞
　以下の手順にて、異物応答配列（ＸＲＥ）を含むエンハンサー配列と、その下流にレポーター蛋白質ＮＬｕｃ（ＮａｎｏＬｕｃ（登録商標））をコードする配列を有するレポーターベクターにより形質転換された角化細胞を作製した。まず、形質転換に用いたレポーターベクター（以下、「ＸＲＥ－ＮＬｕｃベクター」ということもある。）の構造を図１に示す。図１に示すとおり、形質転換に用いたＸＲＥ－ＮＬｕｃベクターは４９３０塩基対からなる環状プラスミドＤＮＡであり、３つの異物応答配列ＸＲＥがタンデムに連結したエンハンサー配列（図１において、「ＸＲＥ１」「ＸＲＥ２」「ＸＲＥ３」）を有しており、その下流にＭｉｎｉｍａｌ　Ｐｒｏｍｏｔｅｒ、レポーター蛋白質ＮＬｕｃをコードする塩基配列（図１において「ＮＬｕｃＰレポーター」）、シミアンウイルス４０（ＳＶ４０）由来のポリアデニル化シグナル（図１において「ＳＶ４０　Ｌａｔｅ　ｐｏｌｙ（Ａ）」）を有しており、さらにその下流にＳＶ４０プロモーター（図１において「ＳＶ４０　Ｐｒｏｍｏｔｅｒ」）及び選択薬剤であるハイグロマイシンＢに対する耐性遺伝子をコードする配列（図１において、「Ｈｙｇ　Ｒ」）を有している。また、バックグラウンドを低減するための配列として、エンハンサー配列の上流にポリアデニル化シグナル（図１において「Ｐｏｌｙ（Ａ）シグナル」）を有している。本実験では、このような構造を有するレポーターベクターとしてプロメガ株式会社より購入したレポーターベクター（製品名「ｐＮＬ［ＮＬｕｃＰ/ＸＲＥ/Ｈｙｇｒｏ］Ｖｅｃｔｏｒ」、カタログ番号：ＣＳ１８６８０８）を用いたが、マルチクローニングサイトを有するレポーターベクターにＸＲＥ配列やＭｉｎｉｍａｌ　Ｐｒｏｍｏｔｅｒをインサートすることにより自ら作製したレポーターベクターを用いても良いことは言うまでもない。
＜形質転換＞
　次に、以下の手順にてＨａＣａＴ細胞へ上記ＸＲＥ－ＮＬｕｃベクターを導入し、選択薬剤ハイグロマイシンＢで処理することにより、異物応答配列（ＸＲＥ）により転写制御を受けるルシフェラーゼレポーターを安定発現する形質転換細胞株（以下、「ＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴ」ということもある。）を樹立した。まず、ＨａＣａＴ細胞（ＣＬＩ社、カタログ番号：３００４９３）を、細胞数が２×１０６個となるように細胞培養プレート（製品名「トゥルーラインディッシュ」、日本ジェネティクス社、カタログ番号ＴＲ４００２）に播種した。ここで、培地としては、ＤＭＥＭ培地（ダルベッコ改変イーグル培地）に最終濃度１０％でＦＢＳ（ウシ胎児血清）を添加したものを用いた。播種から７時間後に、遺伝子導入試薬（製品名「ＰＥＩｍａｘ」、Ｐｏｌｙｓｃｉｅｎｃｅｓ社、カタログ番号２４７６５－１）を用いることによりＸＲＥ－ＮＬｕｃベクターをＨａＣａＴ細胞に導入した。すなわち、ＰＥＩｍａｘの０．１％水溶液２０μＬと５００μｇ／ｍＬのＸＲＥ－ＮＬｕｃベクター１０μＬを混合し、得られた混合物全量を細胞培養培地に添加した。５％ＣＯ２、３７℃の条件で４８時間インキュベートした後に、ＤＭＥＭ培地を除去し、選択薬剤であるハイグロマイシンＢを０．０８ｗｔ％含むＤＭＥＭ培地を加えた。その後、約４日毎に培地交換をしながら計１４日間、ハイグロマイシンＢを０．０８ｗｔ％含むＤＭＥＭ培地中で培養を続けることにより、ＸＲＥ－ＮＬｕｃを安定発現する細胞株ＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴを得た。得られたＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴ細胞を光学顕微鏡で撮影した写真を図２に示す。図２に見られるとおりＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴ細胞の形態は、形質転換前のＨａＣａＴ細胞と変わりがないものであった。
＜実験１－２　ＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴ細胞による異物応答反応の惹起性の評価＞
　実験１－１において得たＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴ細胞を用いて、被験試料の皮膚における異物応答反応の惹起性を評価した。具体的な手順を以下に示す。
＜被験試料との接触＞
　まず、ＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴ細胞をＤＭＥＭ培地に１×１０５個／ｍＬの濃度となるように懸濁した。得られた細胞懸濁液を、白色の９６ｗｅｌｌプレート（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社、カタログ番号：１３６１０２）に、各ウェルの細胞の数が１０，０００個となるように各ウェル１００μＬずつ加えた。常法に従い、５％ＣＯ２、３７℃の条件下で２４時間インキュベートした後に、ＤＭＥＭ培地を除去し、被験試料として、ＸＲＥが関与する異物応答反応を活性化する物質として知られているＦＩＣＺ（６－Ｆｏｒｍｙｌｉｎｄｏｌｏ［３，２－ｂ］ｃａｒｂａｚｏｌｅ、ＣＡＳ番号：１７２９２２－９１－７）を所定の濃度で含むＤＭＥＭ培地１００μＬを加え、さらに２４時間、５％ＣＯ２、３７℃の条件下でインキュベートした。一方、ＦＩＣＺを含有するＤＭＥＭ培地に代えて、ＦＩＣＺを含有しないＤＭＥＭ培地１００μＬを加えた陰性対照も用意し、５％ＣＯ２、３７℃の条件下で２４時間インキュベートした。
＜生細胞数の測定＞
　上記２４時間のインキュベートの後、各ウェルにおける細胞数の計測を生存細胞内のミトコンドリア脱水素酵素によるテトラゾリウム塩（ＷＳＴ－１）の分解に基づく比色定量法により行った。具体的には、Ｐｒｅｍｉｘ　ＷＳＴ－１（製品名「Ｐｒｅｍｉｘ　ＷＳＴ－１　Ｃｅｌｌ　Ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ　Ａｓｓａｙ　Ｓｙｓｔｅｍ」、タカラバイオ株式会社、カタログ番号：ＭＫ４００）を９６ウェルプレートの各ウェルに３μＬずつ加え、３７℃、５％ＣＯ２の条件下で１時間培養した。その後、各ウェルの上清の吸光度を測定するために、各ウェルから９３μＬずつ上清を取り出した。取り出した上清を、透明の９６ウェルプレートへ移した後、４５０ｎｍにおける吸光度（Ａ４５０）及び対照波長として６７０ｎｍにおける吸光度（Ａ６７０）をｉＭａｒｋマイクロプレートリーダー（Ｂｉｏ－Ｒａｄ社、カタログ番号：１６８－１１３０ＪＡ）によって測定した。４５０ｎｍにおける吸光度（Ａ４５０）から６７０ｎｍにおける吸光度（Ａ６７０）を差し引いた値（Ａ４５０－Ａ６７０）を求め、前記陰性対照について得られた値（Ａ４５０－Ａ６７０）を１００％とする相対値として表した値を相対生細胞数（％）とした。
＜レポーター蛋白質の発現量の測定＞
　一方、上記生細胞数測定用の上清を取り出した後、白色の９６ウェルプレートに残ったサンプルを用いて、レポーター蛋白質の発現量を測定した。具体的には、白色の９６ウェルプレートの各ウェルに、Ｎａｎｏ－Ｇｌｏ　Ｌｕｃｉｆｅｒａｓｅ　Ａｓｓａｙ　Ｓｙｓｔｅｍ（Ｐｒｏｍｅｇａ社、カタログ番号：Ｎ１１０）を７μＬずつ加え、３分後にＧｌｏＭａｘ　Ｎａｖｉｇａｔｏｒ　Ｍｉｃｒｏｐｌａｔｅ　Ｌｕｍｉｎｏｍｅｔｅｒ（Ｐｒｏｍｅｇａ社、カタログ番号：ＧＭ２０００）を用いて各ウェルのＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴ細胞により産生されたレポーター蛋白質から得られる発光強度を測定した。得られた発光強度を、上述した比色定量法により得られた相対生細胞数で除することにより単位生細胞数当たりのレポーター蛋白質の発現量（発光強度）を得た。
　得られた結果を図３に示す。図３においては、各濃度のＦＩＣＺを含むＤＭＥＭ培地中でインキュベートしたＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴ細胞から得られた単位生細胞数当たりの発光強度を、前記陰性対照について得られた単位生細胞数当たりの発光強度を１とした場合の相対値として示している。また、図３において示す結果は、独立した４回の実験から得られた値の平均値であり、エラーバーは標準誤差（ＳＥＭ）を表している。図中「＊」及び「＊＊」は、前記陰性対照（図３において、「ＦＩＣＺ　Ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ　０ｎＭ」）との間で、それぞれ統計学的な有意差（ｐ＜０．０５及びｐ＜０．０１）があることを示す。
　図３に示されるとおり、ＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴ細胞は、異物応答配列ＸＲＥの活性化作用を有するＦＩＣＺの濃度に依存的な発光強度の上昇を示した。この結果は、ＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴ細胞が産生するレポーター蛋白質の発現量は、異物応答配列ＸＲＥが関与する異物応答反応の活性化の程度を反映することを示している。すなわち、異物応答配列（ＸＲＥ）を含むエンハンサー配列と、その下流にレポーター蛋白質をコードする配列を有するレポーターベクターであるＸＲＥ－ＮＬｕｃベクターにより形質転換された角化細胞であるＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴ細胞が産生するレポーター蛋白質の発現量、すなわち本実験においては発光強度、をモニタリングすることにより被験試料の皮膚における異物応答反応の惹起性を評価することができる。特に、ＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴ細胞は、僅か４ｎＭという非常に低濃度のＦＩＣＺを含む培地中で培養を行った場合であっても、ＦＩＣＺを含まない陰性対照と比較して約３倍強い発光強度を示した。この結果は本発明に係る評価方法によれば、非常に高い検出感度で皮膚における異物応答反応の惹起性を評価できることを示している。
＜実験１－３　ＰＣＲ法による皮膚における異物応答反応の惹起性の評価＞
　次に、ＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴ細胞を用いた本発明に係る評価方法と従来の評価方法の感度を比較するため、ＨａＣａＴ細胞において異物応答反応により惹起されるｍＲＮＡの発現レベルの変化をＰＣＲ法で測定することにより、異物応答反応の惹起性の評価を行った。なお、以下の実験において標的遺伝子はアルテミン及びマトリックスメタロプロテアーゼ９とした。これらの遺伝子の発現は、皮膚において異物応答配列ＸＲＥが関与する異物応答反応により活性化することが知られている。以下に、具体的な手順を示す。
＜被験試料との接触＞
　まず、ＨａＣａＴ細胞（ＣＬＩ社、カタログ番号：３００４９３）を、ＤＭＥＭ培地に１×１０５個／ｍＬの細胞濃度となるように懸濁した。得られた細胞懸濁液を、白色の９６ｗｅｌｌプレート（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社、カタログ番号：１３６１０２）に、各ウェルの細胞の数が１０，０００個となるように各ウェル１００μＬずつ加えた。常法に従い、５％ＣＯ２存在下、３７℃で２４時間インキュベートした後に、ＤＭＥＭ培地を除去し、ＦＩＣＺを所定の濃度（５ｎＭ、５０ｎＭ、５００ｎＭ、又は５，０００ｎＭ）で含むＤＭＥＭ培地１００μＬを加え、さらに２４時間、５％ＣＯ２、３７℃の条件下でインキュベートした。また、ＦＩＣＺを含有するＤＭＥＭ培地に代えて、ＦＩＣＺを含有しないＤＭＥＭ培地１００μＬを加えた陰性対照も用意し、５％ＣＯ２、３７℃の条件下で２４時間インキュベートした。
＜ＲＮＡの抽出とｃＤＮＡの調製＞
　上記２４時間のインキュベートの後、東洋紡株式会社製のＰＣＲ用キット「ＳｕｐｅｒＰｒｅｐ　ＩＩ　Ｃｅｌｌ　Ｌｙｓｉｓ　＆　ＲＴ　Ｋｉｔ　ｆｏｒ　ｑＰＣＲ」（カタログ番号：ＳＣＱ－４０１）を、同製品に付属の手順書に記載の方法に準じて使用して、全ＲＮＡの抽出とｃＤＮＡの調製を行った。すなわち、上記２４時間のインキュベートの後、各ウェルから培地を除去し、ＰＢＳ（リン酸緩衝生理食塩水）で細胞を洗浄した。その後、上記ＰＣＲ用キットに付属しているＬｙｓｉｓ　Ｓｏｌｕｔｉｏｎ５８．７μＬにｇＤＮＡ　Ｒｅｍｏｖｅｒ０．３μＬ及びＲＮａｓｅ　Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ１μＬを混合することにより調製したＬｙｓｉｓ　Ｒｅａｇｅｎｔを各ウェルにつき１０μＬずつ加え、約３０秒程度振盪し、室温で５分間静置することにより、逆転写反応の鋳型として利用可能な全ＲＮＡを含む細胞溶解液を得た。なお、Ｌｙｓｉｓ　Ｓｏｌｕｔｉｏｎは細胞を溶解する細胞溶解剤、ｇＤＮＡ　ＲｅｍｏｖｅｒはゲノムＤＮＡを分解するＤＮａｓｅＩを含む試薬、ＲＮａｓｅ　ＩｎｈｉｂｉｔｏｒはＲＮａｓｅ等の細胞成分によるＲＮＡの分解を抑制するための試薬である。
　次に、抽出したＲＮＡから逆転写によりｃＤＮＡを合成した。まず、東洋紡株式会社製の上記ＰＣＲ用キット「ＳｕｐｅｒＰｒｅｐ　ＩＩ　Ｃｅｌｌ　Ｌｙｓｉｓ　＆　ＲＴ　Ｋｉｔ　ｆｏｒ　ｑＰＣＲ」に付属している「５×ＲＴ　Ｍａｓｔｅｒ　Ｍｉｘ」８μＬに「Ｎｕｃｌｅａｓｅ－ｆｒｅｅ　Ｗａｔｅｒ」２４μＬの割合で両者を混合することにより、逆転写反応用のマスターミックスを調製した。なお、マスターミックスの調製は氷上で行った。得られたマスターミックスを３２μＬずつＰＣＲ用チューブに分注し、各ウェル中に存在する上記細胞溶解液を８μＬ加え、合計体積を４０μＬとしたものを逆転写反応に用いた。逆転写反応条件は、３７℃　１５ｍｉｎ、５０℃　５ｍｉｎ、９８℃　５ｍｉｎである。得られたｃＤＮＡを含む溶液に８０μＬの滅菌水を加え、－２０℃で冷凍保存した。
＜定量ＰＣＲ＞
　定量ＰＣＲは、ＴＨＵＮＤＥＲＢＩＲＤ　Ｎｅｘｔ　ＳＹＢＲ　ｑＰＣＲ　Ｍｉｘ（東洋紡株式会社、カタログ番号：ＱＰＸ－２０１）とＳｔｅｐＯｎｅ　Ｒｅａｌ－Ｔｉｍｅ　ＰＣＲ　Ｓｙｓｔｅｍ（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）を用いて行った。具体的には、２倍濃度のプレミックス試薬として提供されるＴＨＵＮＤＥＲＢＩＲＤ　Ｎｅｘｔ　ＳＹＢＲ　ｑＰＣＲ　Ｍｉｘを滅菌水で１倍濃度に希釈した溶液５μＬに、以下の表１に示す塩基配列を有する各標的遺伝子のフォワードプライマー及びリバースプライマーを６ｐｍоｌｅずつ混合し混合液を調製した。一方、冷凍保存したｃＤＮＡを含む溶液を解凍した後、滅菌水で５倍希釈してｃＤＮＡ希釈液を得た。得られたｃＤＮＡ希釈液５μＬと上記混合液５μＬを混合し、合計体積を１０μＬとしたものをＰＣＲ用反応液とし、定量ＰＣＲに供した。定量ＰＣＲにより得られたＣｔ値から標的遺伝子のｍＲＮＡの量を求めた。なお、リファレンスとしては内在性遺伝子であるＧＡＰＤＨＡのｍＲＮＡの量を用い、各標的遺伝子のｍＲＮＡの量はＧＡＰＤＨのｍＲＮＡの量で除することにより補正した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
　なお、定量ＰＣＲ条件は表２に示すとおりである。すなわち、上記ＰＣＲ用反応液を９５℃で２０秒間保持した後、９５℃で３秒間の変性ステップ及び６０℃で３０秒間のアニーリング・伸長ステップの２ステップを１サイクルとして計４０サイクル行った。４０サイクル後、９５℃で１５秒間保持した後、６０℃で６０秒間保持し、さらに、９５℃で１５秒間保持した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
　得られた結果を図４及び図５に示す。図４及び図５においては、各濃度のＦＩＣＺを含むＤＭＥＭ培地中でインキュベートしたＨａＣａＴ細胞におけるｍＲＮＡの発現量を、陰性対照であるＦＩＣＺを含んでいないＤＭＥＭ培地中で２４時間のインキュベートを行ったＨａＣａＴ細胞におけるｍＲＮＡの発現量を１とした場合の相対値として示している。また、図４及び図５において示す結果は、それぞれ独立した４回又は３回の実験から得られた値の平均値であり、エラーバーは標準偏差（ＳＤ）を表している。
　図４に示すとおり、ＨａＣａＴ細胞におけるアルテミンのｍＲＮＡの発現量は、細胞培養培地に添加したＦＩＣＺの濃度に依存して上昇した。この結果はＰＣＲ法によるｍＲＮＡの定量によってもＨａＣａＴ細胞における異物応答反応の活性化を検出できることを示している。しかしながら、ＦＩＣＺの濃度が５０ｎＭ以下の場合にはアルテミンのｍＲＮＡの発現量に変化は見られず、アルテミンのｍＲＮＡの発現量の有意な上昇を観察するためには、少なくとも５００ｎＭ、より好ましくは５，０００ｎＭもの高濃度のＦＩＣＺが必要であった。
　一方、図５に示すとおり、ＭＭＰ９についても、アルテミンについて観察されたと同様に、細胞培養培地に添加したＦＩＣＺの濃度に依存して、ＨａＣａＴ細胞におけるＭＭＰ９のｍＲＮＡの発現量の上昇が確認された。しかしながら、その発現の上昇の程度はやはり極めて小さいものであり、ＭＭＰ９のｍＲＮＡの発現量の有意な上昇を観察するためには５，０００ｎＭ程度の高濃度のＦＩＣＺが必要であった。
　これに対して実験１－２で示したとおり、ＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴ細胞を用いた本発明の一態様に係る評価方法によれば、僅か４ｎＭという非常に低濃度のＦＩＣＺを用いた場合においても、ＦＩＣＺを添加していない陰性対照と比較して約３倍程度の強い発光強度が観察された。この結果は、本発明の評価方法によれば、ｍＲＮＡの発現量をＰＣＲ法により定量する従来の評価方法と比較して、遥かに感度良く、かつ、迅速に、各被験試料の皮膚における異物応答反応の惹起性を評価できることを示している。
＜実験１－４　ＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴ細胞による異物応答反応の惹起性の評価－その２－＞
　被験試料としてＦＩＣＺに代えて、Ｉ３Ｃ（インドール－３－カルビノール、ＣＡＳ番号：７００－０６－１）、ＩＴＥ（２－（１’Ｈ－インドール－３’－カルボニル）－チアゾール－４－カルボン酸メチルエステル、ＣＡＳ番号：４４８９０６－４２－１）、及びＩｎｄｉｒｕｂｉｎ（ＣＡＳ番号：４７９－４１－４）を用い、ＤＭＥＭ培地中への各被験試料の添加量を適宜変更した以外は実験１－２と同様にして、ＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴ細胞を用いて各被験試料の異物応答反応の惹起性を評価した。評価結果から、常法に従ってレポーター蛋白質の発現量を最大とした被験試料の濃度である最大作用濃度、ＥＣ５０（５０％効果濃度）、及びＬＣ５０（半数致死濃度）を求めた。得られた値を表３に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
　表３に示されるとおり、ＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴ細胞は種々の化学物質に対する反応性を示した。すなわち、本発明の評価方法によれば、非常に多様な構造を有する化学物質を含む被験試料の皮膚における異物応答反応の惹起性を評価することができる。また、ＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴ細胞によるレポーター蛋白質の発現量はＸＲＥが関与する異物応答反応の程度を反映するので、本発明の評価方法によれば、個々の被験試料が皮膚における異物応答反応を惹起する性質を有するか否かのみならず、表３に示すとおり、皮膚における異物応答反応の惹起性の程度を定量的に評価することができる。
　一方、表３には、各被験試料の最大作用濃度、すなわち、異物応答反応がプラトーに達する被験試料の濃度の文献値を併せて示した。これらの文献値は、いずれも角化細胞ではなくヒト肝癌由来細胞株ＨｅｐＧ２細胞を用いた実験により得られた最大作用濃度であるが、本実験において得られた角化細胞における最大作用濃度と比較すると、ヒト肝癌由来細胞と角化細胞においては惹起される異物応答反応の程度が顕著に異なることが分かる。例えば、Ｉｎｄｉｒｕｂｉｎはヒト肝癌由来細胞においては最大作用濃度が５～１０μＭであるのに対して、角化細胞においてＩｎｄｉｒｕｂｉｎの最大作用濃度は０．２５μＭであり、２０分の１以下であった。この結果はＩｎｄｉｒｕｂｉｎが角化細胞においてはヒト肝癌由来細胞よりも少ない量で異物応答反応を惹起し得ることを示唆している。このように、角化細胞を用いることを特徴とする本発明に係る評価方法によれば、被験試料の皮膚における異物応答反応の惹起性を正しく評価することができるので、被験試料の皮膚に対する適合性、安全性を評価する上で極めて有利であるといえる。
＜実験２　皮膚における異物応答反応の抑制性を有する物質の探索＞
　実験１－２で示したように、ＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴ細胞は異物応答配列ＸＲＥが関与する異物応答反応の活性化の程度に応じた量のレポーター蛋白質を発現した。したがって、本発明者らは、ＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴ細胞を用いることにより実験１－２とは反対に異物応答配列ＸＲＥが関与する異物応答反応を抑制する物質を探索できるものと考え、その検討を行った。以下、実験の手順を示す。
　まず、実験１－２と同様にして、ＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴ細胞をＤＭＥＭ培地に１×１０５個／ｍＬの濃度となるように懸濁し、得られた細胞懸濁液を、白色の９６ｗｅｌｌプレート（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社、カタログ番号：１３６１０２）に、各ウェルの細胞の数が１０，０００個となるように各ウェル１００μＬずつ加えた後、常法に従い、５％ＣＯ２、３７℃の条件下で２４時間インキュベートした。ＤＭＥＭ培地を除去した後、実験１－２においてレポーター蛋白質の発現を活性化することが確かめられたＦＩＣＺ５ｎＭと、それに加えて候補物質を所定の濃度で含むＤＭＥＭ培地１００μＬを加えた。一方、ＦＩＣＺ５，０００ｎＭを含み、候補物質を含んでいないＤＭＥＭ溶液１００μＬを加えた基準試料も用意した。なお、本実験において、候補物質としては５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライド（以下、「フレグライド１」又は「ＦＧ１」ということもある。）及び、陽性対照として異物応答配列ＸＲＥが関与する異物応答反応を抑制する作用を有することが知られているシンナムアルデヒドを用いた。５％ＣＯ２、３７℃の条件下で２４時間インキュベートした後、実験１－２において述べた方法に準じて、レポーター蛋白質の発現量（発光強度）及び生細胞数を測定し、単位生細胞数当たりのレポーター蛋白質の発現量を求め、各候補物質が奏するレポーター蛋白質の発現の阻害率（Ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ（％））を以下の式に従って計算した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-M000007
　なお、上記式中において、（Ｒｅｐｏｒｔｅｒ　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ）ＦＩＣＺは上記基準試料、すなわち、ＦＩＣＺ５，０００ｎＭを含み、候補物質を含んでいない培地でインキュベートした細胞から得られた単位生細胞数当たりのレポーター蛋白質の発現量を示している。一方、（Ｒｅｐｏｒｔｅｒ　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ）ＦＩＣＺ＋ＴＥＳＴ　ＳＡＭＰＬＥは、ＦＩＣＺ５，０００ｎＭを含み、かつ候補物質を含む培地でインキュベートした細胞から得られた単位生細胞数当たりのレポーター蛋白質の発現量を示している。得られた結果を図６に示す。なお、図６において示す結果は、独立した３回の実験から得られた値の平均値であり、エラーバーは標準誤差（ＳＥ）を表している。
　図６に示されるとおり、陽性対照であるシンナムアルデヒド（図６において「ＣＡ」）を１２．５μＭ、２５μＭ、５０μＭ添加したＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴ細胞においては、ＦＩＣＺ（５，０００ｎＭ）により惹起されるレポーター蛋白質の発現量がそれぞれ８％、１４％、及び１６％抑制された。この結果は、シンナムアルデヒドの添加によって、ＦＩＣＺにより惹起される異物応答反応が抑制されていることを示している。そして、ＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴ細胞に対して、異物応答反応を惹起する物質（本実験において、「ＦＩＣＺ」）と共に探索対象となる候補物質を添加し、候補物質を含んでいない基準試料よりもレポーター蛋白質の発現が低減する候補物質を選択することによって、異物応答反応の抑制性を有する物質を得ることができることを示している。
　一方、驚くべきことに、フレグライド１（図６において「ＦＧ１」）を１２．５μＭ、２５μＭ、５０μＭ添加したＸＲＥ－ＮＬｕｃ：：ＨａＣａＴ細胞においては、ＦＩＣＺ（５，０００ｎＭ）により惹起される異物応答反応がそれぞれ５８％、６８％、及び８３％抑制された。この結果は、フレグライド１は異物応答配列ＸＲＥが関与する異物応答反応の抑制性を有し、かつ、その抑制性はシンナムアルデヒドが有する抑制性を遥かに上回ることを示している。
＜実験３－１　フレグライド１によるアルテミン産生抑制＞
　以上の実験より、フレグライド１は異物応答反応を顕著に抑制する性質を有することが示された。そこで、フレグライド１が奏する異物応答反応抑制効果を更に詳細に検討すべく、フラグライド１が角化細胞ＨａＣａＴにおいて異物応答配列が関与して転写制御される遺伝子として知られているアルテミンの発現量に与える影響を検討した。具体的には、ＨａＣａＴ細胞を異物応答反応を惹起する物質であるＦＣＴＺとフレグライド１に接触させた後、定量ＰＣＲ法を用いて、フレグライド１によるアルテミンのｍＲＮＡの発現量の変化を観察した。その手順を以下に示す。
　まず、ＨａＣａＴ細胞（ＣＬＩ社、カタログ番号：３００４９３）を、ＤＭＥＭ培地に１×１０５個／ｍＬの細胞濃度となるように懸濁した。得られた細胞懸濁液を、白色の９６ｗｅｌｌプレート（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社、カタログ番号：１３６１０２）に、各ウェルの細胞の数が１０，０００個となるように各ウェル１００μＬずつ加えた。常法に従い、５％ＣＯ２、３７℃の条件下で２４時間インキュベートした後に、ＤＭＥＭ培地を除去し、ＦＩＣＺを所定の濃度（５００ｎＭ又は５，０００ｎＭ）含み、且つ、フレグライド１を所定の濃度（０ｎＭ又は２５０μＭ）含むＤＭＥＭ培地１００μＬを加えた。５％ＣＯ２、３７℃の条件下で２４時間インキュベートした後に、実験２において述べたと同様の手順にて、ＲＮＡを抽出、ｃＤＮＡを調製し、得られたｃＤＮＡを用いて定量ＰＣＲを行った。得られた結果を図７に示す。なお、図７において各サンプルについて得られた結果は、ＦＩＣＺ及びフレグライド１のいずれをも含んでいないＤＭＥＭ培地中で２４時間のインキュベートを行ったＨａＣａＴ細胞におけるアルテミンのｍＲＮＡの発現量を１とした場合の相対値として示している。
　図７に示すとおり、５００ｎＭ又は５，０００ｎＭのＦＩＣＺを含む培地中でインキュベートしたＨａＣａＴ細胞（図７において、「ＦＧ１　－」）においては、ＦＩＣＺを含んでいない培地中でインキュベートしたＨａＣａＴ細胞と比較して、アルテミンのｍＲＮＡの発現量が約３．０倍及び約３．７倍まで増加していた。これはＦＩＣＺによってＸＲＥが関与する異物応答反応が活性化したためであると考えられる。これに対して、５００ｎＭ又は５，０００ｎＭのＦＩＣＺに加えて、２５０μＭのフレグライド１を含む培地中でインキュベートしたＨａＣａＴ細胞（図７において、「ＦＧ１　＋」）においては、ＦＩＣＺを含んでいない培地中でインキュベートしたＨａＣａＴ細胞と比較してアルテミンのｍＲＮＡの発現量の増加は観察されなかった。この結果はフレグライド１によって異物応答反応により惹起されるアルテミンの発現が抑制されることを示しており、これはフレグライド１によりＦＩＣＺによる異物応答反応の活性化が阻害されたためであると考えられる。しかも、フレグライド１を作用させた場合、アルテミンのｍＲＮＡの発現量はＦＩＣＺを含んでいない培地中でインキュベートしたＨａＣａＴ細胞と比較して同程度の水準であり、過剰にアルテミンの発現量が低下することはなかった。すなわち、フレグライド１は、皮膚における異物応答反応を抑制することにより惹起される異常なアルテミンの発現を抑制する作用、換言すれば、アルテミンの発現量を正常化する作用を有していると考えられる。
＜実験３－２　フレグライド１によるアルテミンの産生抑制－その２－＞
　以上のようにフレグライド１はＦＩＣＺにより惹起されるアルテミンの産生を抑制した。そこで、フレグライド１によるアルテミンの産生の抑制効果を定量的に評価すべく、次の実験を行った。すなわち、ＦＩＣＺの濃度を５，０００ｎＭとし、フレグライド１の濃度を０μＭ、０．０１μＭ、０．１μＭ、１μＭ、１０μＭ、及び１００μＭとしたこと以外は、実験３－１と同様にして、ＨａＣａＴ細胞をＦＩＣＺ及びフレグライド１で処理し、ＲＮＡの抽出、ｃＤＮＡの調製、定量ＰＣＲを行った。得られた結果に基づいて、５，０００ｎＭのＦＩＣＺとともに所定の濃度のフレグライド１を細胞培養培地に添加した場合に得られる、ＦＩＣＺにより誘導されるアルテミンのｍＲＮＡ発現の阻害率（Ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ（％））を以下に示す式に従って求めた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-M000008
　なお、上記式において、（ｍＲＮＡ　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ）ＣＯＮＴＲＯＬはＦＩＣＺとフレグライド１のいずれをも含んでいない培地でインキュベートしたＨａＣａＴ細胞（すなわち、未処理のＨａＣａＴ細胞）におけるアルテミンのｍＲＮＡの発現量、（ｍＲＮＡ　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ）ＦＩＣＺは５，０００ｎＭのＦＩＣＺを含む培地でインキュベートしたＨａＣａＴ細胞におけるアルテミンのｍＲＮＡの発現量、（ｍＲＮＡ　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ）ＦＩＣＺ＋ＴＥＳＴ　ＳＡＭＰＬＥは５，０００ｎＭのＦＩＣＺと所定の濃度のフレグライド１を含む培地でインキュベートしたＨａＣａＴ細胞におけるアルテミンのｍＲＮＡの発現量を示している。
　図８に示すとおり、フレグライド１はＦＩＣＺにより惹起されるアルテミンの発現を濃度依存的に抑制した。驚くべきことに、フレグライド１は僅か１００ｎＭ（０．１μＭ）という少量で、５，０００ｎＭ（５μＭ）ものＦＩＣＺにより惹起されるアルテミンの発現を５０％程度抑制した。この結果は、フレグライド１は極めて効果的にＸＲＥが関与する異物応答反応を抑制し、アルテミンの発現を正常化することを示している。上述したとおり、アルテミンの発現の誘導はアトピー性皮膚炎の原因と考えられており、大気汚染物質に含まれる化学物質によってもアルテミンの発現が誘導されることが報告されている（例えば、非特許文献４）。極めて効果的に皮膚におけるアルテミンの発現を抑制する作用を奏するフレグライド１は、アトピー性皮膚炎の予防及び／又は治療に極めて有用であると考えられる。
＜実験４－１　フレグライド１によるマトリックスメタロプロテアーゼ９の産生抑制＞
　次に、フレグライド１が、ＨａＣａＴ細胞において異物応答配列が関与して転写制御される他の蛋白質として知られているマトリックスメタロプロテアーゼ９（ＭＭＰ９）の発現に与える影響を検討した。
　本実験では、まず、フレグライド１がＭＭＰ９のｍＲＮＡレベルでの発現量に与える影響を検討した。具体的には、ＦＩＣＺとフレグライド１の双方を含む培地中でＨａＣａＴ細胞を２４時間インキュベートしたことに代えて、フレグライド１を０μＭ、１μＭ、１０μＭ、及び１００μＭ含む培地中でＨａＣａＴ細胞を２４時間インキュベートした以外は実験３－１で述べたと同様にして、ＨａＣａＴ細胞をフレグライド１で処理し、ＲＮＡの抽出、ｃＤＮＡの調製を行い、得られたｃＤＮＡを用いて定量ＰＣＲを行った。なお、定量ＰＣＲの手順は、以下の表４に示すプライマーを用いたこと以外は実験３－１で述べたと同様である。なお、本実験では、ＭＭＰ９のｍＲＮＡに加えて、異物応答配列ＸＲＥによる転写制御を受けないＭＭＰであるＭＭＰ２のｍＲＮＡの定量も併せて行った。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
得られた結果を図９及び図１０に示す。なお、図９及び図１０において各サンプルについて得られた結果は、フレグライド１を含んでいないＤＭＥＭ培地中で２４時間のインキュベートを行ったＨａＣａＴ細胞（すなわち、未処理のＨａＣａＴ細胞）におけるＭＭＰ９又はＭＭＰ２のｍＲＮＡの発現量を１とした場合の相対値として示している。また、図９及び図１０において示す結果は、独立した３回の実験から得られた値の平均値であり、エラーバーは標準偏差（ＳＤ）を表している。
　図９に示すようにフレグライド１を１μＭ、１０μＭ、及び１００μＭ含有する培地中でインキュベートしたＨａＣａＴ細胞においては、フレグライド１を含有しない培地中でインキュベートしたＨａＣａＴ細胞と比較して、約４２％、５２％、及び８０％のＭＭＰ９のｍＲＮＡの発現量の低下が確認された。この結果は、フレグライド１が異物応答配列ＸＲＥにより転写制御を受けるＭＭＰであるＭＭＰ９の発現量を低下させる作用を有することを示している。これに対して、図１０に示すとおり、フレグライド１を１μＭ、１０μＭ、及び１００μＭ含有する培地中でインキュベートしたＨａＣａＴ細胞においても、異物応答配列ＸＲＥにより転写制御を受けないＭＭＰであるＭＭＰ２のｍＲＮＡの発現量の低下は確認されなかった。このようにフレグライド１は異物応答配列ＸＲＥが関与する異物応答反応により転写制御を受けるＭＭＰ９の発現量を選択的に低下させることが示された。
　次に、フレグライド１がＭＭＰ９のタンパク質レベルでの発現量に与える影響を検討した。具体的には、ＨａＣａＴ細胞をＤＭＥＭ培地に１×１０６個／ｍＬの細胞濃度となるように懸濁し、得られた細胞懸濁液を９６ウェルプレートに各ウェル当たりの細胞数が１×１０５個／ｗｅｌｌとなるように各ウェル１００μＬずつ播種した。５％ＣＯ２、３７℃の条件下で一晩インキュベートした後、培養上清であるＤＭＥＭ培地を除去し、フレグライド１を０μＭ及び１００μＭ含む無血清培地１００μＬを加え、さらに２４時間、５％ＣＯ２、３７℃の条件下でインキュベートした。この培養上清１０μＬをゼラチンザイモグラフィーに供した。
　ゼラチンザイモグラフィーは常法に従って行った（ｈｔｔｐｓ：／／ｗｗｗ．ａｂｃａｍ．ｃｏｍ／ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ／ｇｅｌａｔｉｎ－ｚｙｍｏｇｒａｐｈｙ－ｐｒｏｔｏｃｏl)。すなわち、終濃度１ｍｇ／ｍＬのゼラチンを含む７．５％ポリアクリルアミド・ゲルを用いて、ＳＤＳ－ＰＡＧＥによって、上記培養上清中のタンパク質を分離した。電気泳動の後、ゲルを終濃度５ｍＭのＣａ２＋、１μＭのＺｎ２＋、及び２．５％トリトンＸ－１００を含む洗浄バッファーに浸漬することにより、ゲル中のＳＤＳを除去した。洗浄後のゲルを、さらに、終濃度５ｍＭのＣａ２＋、１μＭのＺｎ２＋、及び１％トリトンＸ－１００を含むインキュベーションバッファー中に３７℃で一晩浸漬し、酵素反応させた。得られたゲル中のゼラチンをクマシー・ブルー染色によって可視化した。なお、活性型のＭＭＰ９が存在する部分では、そのゼラチナーゼ活性によりゲル中のゼラチンが分解される。これに対して、活性型のＭＭＰ９が存在しない部分では、ゼラチンは分解されず、クマシー・ブルー染色により青く染色される。したがって、クマシー・ブルー染色により青く染色されたゲルの中に、透明のバンドとして活性型のＭＭＰ９が検出される。得られた結果を図１１に示す。
　図１１に示すとおり、フレグライド１を１００μＭ含有する培地中でインキュベートしたＨａＣａＴ細胞においては、フレグライド１を含有しない培地中でインキュベートしたＨａＣａＴ細胞と比較して、ＭＭＰ９のゼラチナーゼ活性が約５４％又は２４％低下した。この結果は、フレグライド１により、ＭＭＰ９のタンパク質量が低下したことを示しており、図９に示したフレグライド１がＭＭＰ９のｍＲＮＡの発現量を有意に低下させるという実験結果と整合している。
＜実験４－２　レチノイン酸及びニコチン酸アミドとの比較＞
　次に、抗シワ効果のある物質として知られているレチノイン酸（ＣＡＳ番号：３０２－７９－４）及びニコチン酸アミド（ＣＡＳ番号：９８－９２－０）を用いて、ＨａＣａＴ細胞におけるＭＭＰ９及びＭＭＰ２を阻害する実験を行った。すなわち、フレグライド１に代えて、レチノイン酸及びニコチン酸アミドを用いた以外は実験４－１と同様にして、レチノイン酸及びニコチン酸アミドとＨａＣａＴ細胞を接触させ、ＲＮＡを抽出、ｃＤＮＡを調製した後に、得られたｃＤＮＡを用いて定量ＰＣＲを行った。
　得られた結果を図１２及び図１３に示す。なお、図１２及び図１３において各サンプルについて得られた結果は、レチノイン酸及びニコチン酸アミドを含んでいないＤＭＥＭ培地中で２４時間のインキュベートを行ったＨａＣａＴ細胞（すなわち、未処理のＨａＣａＴ細胞）におけるＭＭＰ９又はＭＭＰ２のｍＲＮＡの発現量を１とした場合の相対値として示している。また、図１２及び図１３において示す結果は、独立した３回の実験から得られた値の平均値であり、エラーバーは標準偏差（ＳＤ）を表している。
　図１２に示すように、レチノイン酸（図１２において「ＲＡ」、図１３においても同じ。）又はニコチン酸アミド（図１２において「ＮＡ」、図１３においても同じ。）を含む培地中でインキュベートしたＨａＣａＴ細胞においてもＭＭＰ９の発現の減少が確認された。しかしながら、図１３に示すように、レチノイン酸又はニコチン酸アミドを含む培地中でインキュベートしたＨａＣａＴ細胞においては、異物応答配列ＸＲＥによって転写制御を受けるＭＭＰ９のみならず、異物応答配列ＸＲＥによって転写制御を受けない、すなわち皮膚における異物応答反応とは無関係であるはずのＭＭＰ２の発現の減少もが同時に確認された。この結果は従来抗シワ剤の有効成分として用いられてきたレチノイン酸及びニコチン酸アミドはＭＭＰ９以外のマトリックスメタロプロテアーゼであるＭＭＰ２を含め、多くの遺伝子の発現を非特異的に抑制することを示している。このような非特異的なＭＭＰの発現抑制は、正常な組織で必要とされる細胞外マトリックスの分解作用を阻害する恐れがあり好ましくない。
　これに対して、実験４－１において示されたとおり、フレグライド１は異物応答配列ＸＲＥによる転写制御を受けるＭＭＰ９のみの発現を選択的に抑制し、ＭＭＰ２の発現は抑制しないので、正常な組織で必要とされる細胞外マトリックスを分解する恐れが小さいという利点がある。換言すれば、フレグライド１は、環境汚染物質などの種々の化学物質により惹起される皮膚における異物応答反応に起因するＭＭＰ９の発現のみを選択的に抑制するので、副作用を発揮する可能性が少なく、抗シワ剤の有効成分として特に好適に用いられる。なお、このようにＭＭＰ９の発現のみを選択的に抑制する作用を奏するフレグライド１が抗シワ剤の有効成分としてのみならず、ＭＭＰ９の発現の亢進が関与することが知られている各種の疾患を治療及び／又は予防するための剤の有効成分として極めて有用であることは言うまでもない。
＜実験５：フレグライド１がＴＩＭＰ－１の発現に与える影響＞
　以上のように、フレグライド１はシワの原因物質であるマトリックスメタロプロテアーゼ９の発現を選択的に抑制することが示された。そこで、フレグライド１がシワに関連する他の因子に与える影響を検討するべく、フレグライド１がＭＭＰに対する阻害作用を有するタンパク質であるＴＩＭＰ－１（Ｔｉｓｓｕｅ　Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓ　ｏｆ　Ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ－１）の発現に与える影響を検討した。なお、生体内においては、コラーゲン分解酵素であるマトリックスメタロプロテアーゼ（ＭＭＰ）と、ＭＭＰに対する阻害作用を有するＴＩＭＰ（Ｔｉｓｓｕｅ　Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓ　ｏｆ　Ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ）が拮抗的に働くことによってコラーゲンの恒常性が維持されていることが知られている。両者のバランスが崩れ、ＭＭＰの発現が優勢になるとコラーゲンが過剰に分解され、シワの原因となると考えられている。
　具体的には実験４－１及で得たｃＤＮＡを用いて、定量ＰＣＲを行うことによりフレグライド１を作用させたＨａＣａＴ細胞におけるＴＩＭＰ－１のｍＲＮＡの発現量を評価した。定量ＰＣＲの手順は、プライマーとして以下の表５に示すプライマーを用いたこと以外は実験４－１で既に述べたと同様である。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
　得られた結果を図１４に示す。なお、図１４において各サンプルについて得られた結果は、フレグライド１を含んでいないＤＭＥＭ培地中で２４時間のインキュベートを行ったＨａＣａＴ細胞（すなわち、未処理のＨａＣａＴ細胞）におけるＴＩＭＰ－１の発現量を１とした場合の相対値として示している。また、図１４において示す結果は、独立した３回の実験から得られた値の平均値であり、エラーバーは標準偏差（ＳＤ）を表している。
　図１４に示すようにフレグライド１を１μＭ、１０μＭ、及び１００μＭ含有する培地中でインキュベートしたＨａＣａＴ細胞においては、フレグライド１の濃度に依存的にＴＩＭＰ－１の発現量が増加することが確認され、特に、１００μＭのフレグライド１を含む培地でインキュベートした場合にはＴＩＭＰ－１の発現量が未処理のＨａＣａＴ細胞と比較して約４倍上昇した。この結果は、フレグライド１はＭＭＰ９の発現量を低減させるのみならず、ＭＭＰ９の阻害因子として働くＴＩＭＰ－１の発現量を上昇させＭＭＰ９の働きを阻害する効果を奏することを示している。換言すれば、フレグライド１は、ＭＭＰ９の産生を抑制する剤の有効成分としてのみならず、ＴＩＭＰ－１の産生を促進する剤の有効成分としても機能し得るものであり、このような多面的な抗シワ作用を発揮するフレグライド１はシワの改善及び／又は予防のために極めて有用であると考えられる。
　一方、比較として、抗シワ剤の有効成分として知られているレチノイン酸及びニコチン酸アミドについても、実験４－２で得たｃＤＮＡを用いて同様の評価を行った。定量ＰＣＲの手順は、プライマーとして表５に示すプライマーを用いたこと以外は実験３－１で既に述べたと同様である。
　得られた結果を図１５に示す。なお、図１５において各サンプルについて得られた結果は、レチノイン酸及びニコチン酸アミドを含んでいないＤＭＥＭ培地中で２４時間のインキュベートを行ったＨａＣａＴ細胞（未処理のＨａＣａＴ細胞）におけるＴＩＭＰ－１の発現量を１とした場合の相対値として示している。また、図１５において示す結果は、独立した３回の実験から得られた値の平均値であり、エラーバーは標準偏差（ＳＤ）を表している。
　図１５に示すとおり、レチノイン酸及びニコチン酸アミドのいずれを添加した培地でインキュベートしたＨａＣａＴ細胞においてもＴＩＭＰ－１の発現の上昇は見られなかった。この結果は、ＭＭＰ９の発現量を低減させるのみならず、ＴＩＭＰ－１の発現量を上昇させるフレグライド１は、既存の抗シワ剤の有効成分であるレチノイン酸やニコチン酸アミドと比較して抗シワ剤の有効成分として極めて有用であることを物語っている。
＜実験６：フレグライド１の安全性評価＞
　水溶性テトラゾリウム塩（ＷＳＴ－１）を用いた生細胞数測定法によりフレグライド１の安全性について検討した。具体的には、ＨａＣａＴ細胞をＤＭＥＭ培地に１×１０５個／ｍＬの濃度となるように懸濁した。得られた細胞懸濁液を白色の９６ｗｅｌｌプレート（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社、カタログ番号：１３６１０２）に１ウェル当たりの細胞の数が１０，０００個となるように、１ウェル当たり１００μＬずつ加えた。常法に従い、５％ＣＯ２存在下、３７℃で２４時間インキュベートした後に、ＤＭＥＭ培地を除去し、フレグライド１を所定の濃度で含むＤＭＥＭ培地１００μＬ、及び、コントロールとしてフレグライド１を含んでいないＤＭＥＭ培地１００μＬを加え、さらに２４時間、５％ＣＯ２、３７℃の条件下でインキュベートした。上記２４時間のインキュベートの後、実験１－２において示した手順に従って、ＷＳＴ－１を含むプレミックス試薬である「Ｐｒｅｍｉｘ　ＷＳＴ－１　Ｃｅｌｌ　Ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ　Ａｓｓａｙ　Ｓｙｓｔｅｍ」（タカラバイオ株式会社、カタログ番号：ＭＫ４００）を用いて細胞数の測定を行った。得られた結果を図１６に示す。なお、図１６において示す結果は、独立した３回の実験から得られた値の平均値であり、エラーバーは標準誤差（ＳＥ）を表している。
　図１６に示すとおり、フレグライド１を５００μＭ含有するＤＭＥＭ培地中で２４時間インキュベートしたＨａＣａＴ細胞においても細胞生存率は５０％を超えており、フレグライド１のＨａＣａＴ細胞に対するＬＣ５０（半数致死濃度）は少なくとも５００μＭ超であることが示された。この結果は、フレグライド１は細胞毒性が低く、安全性の高い物質であることを示している。したがって、フレグライド１は医薬品、化粧品、健康食品、機能性食品、日用品をはじめとした幅広い製品の成分として有利に使用され得る。
　なお、特許請求の範囲の記載を逸脱せず、当業者が容易に想到できる範囲で種々の変形態様もこの発明に含まれる。本明細書の中で明示した論文、公開特許公報、及び特許公報などの内容は、その全ての内容を援用によって引用することとする。
　以下に、本発明に係る剤の処方例を示すが、本発明はこれらにより何ら限定されるものではない。
＜処方例１：シャンプー＞
水　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　８７．２０重量％
ラウロイルメチルアラニンＴＥＡ　　　　　　　　　　　　６．００重量％
ラウリルベタイン　　　　　　　　　　　　　　　　　　　３．００重量％
ポリクオタニウム－１０　　　　　　　　　　　　　　　　０．３０重量％
炭酸水素ナトリウム　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．０２重量％
乳酸ナトリウム　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．２０重量％
コカミドメチルＭＥＡ　　　　　　　　　　　　　　　　　１．００重量％
コカミドＤＥＡ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　１．００重量％
乳酸　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．２８重量％
エチドロン酸　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．０６重量％
ペンテト酸５ナトリウム　　　　　　　　　　　　　　　　０．０４重量％
安息香酸ナトリウム　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．４０重量％
香料　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．３０重量％
フレグライド１　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．２０重量％
＜処方例２：ヘアトリートメント＞
水　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　８６．７３重量％
グリセリン　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　５．００重量％
セタノール　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　３．００重量％
ステアリルアルコール　　　　　　　　　　　　　　　　　１．５０重量％
ベヘントリモニウムメトサルフェート　　　　　　　　　　１．５０重量％
アモジメチコン　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．５０重量％
ジメチコン　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　１．００重量％
ヒドロキシエチルセルロース　　　　　　　　　　　　　　０．０５重量％
フェノキシエタノール　　　　　　　　　　　　　　　　　０．３２重量％
香料　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．３０重量％
フレグライド１　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．１０重量％
＜処方例３：ヘアミルク（リーブオントリートメント）＞
水　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　９３．８５重量％
ジメチコノール　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　２．５０重量％
ポリアクリルアミド　　　　　　　　　　　　　　　　　　１．２０重量％
（Ｃ１３，１４）イソパラフィン　　　　　　　　　　　　０．７２重量％
硫酸ナトリウム　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．０２重量％
ヒドロキシエチルセルロース　　　　　　　　　　　　　　０．０１重量％
ラウリル硫酸ナトリウム　　　　　　　　　　　　　　　　０．０８重量％
ラウレス硫酸ナトリウム　　　　　　　　　　　　　　　　０．０８重量％
ポリソルベート２０　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．５０重量％
ラウレス－７　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．１８重量％
フェノキシエタノール　　　　　　　　　　　　　　　　　０．３３重量％
メチルパラベン　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．０１重量％
エチルパラベン　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．３０重量％
プロピルパラベン　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．０５重量％
ブチルパラベン　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．０２重量％
香料　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．１０重量％
フレグライド１　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．０５重量％
＜処方例４：スキンミルク（乳液）＞
水　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　８２．８９重量％
ＥＤＴＡ－２Ｎａ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．０１重量％
カルボマー　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．２０重量％
グリセリン　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　３．００重量％
１，３－ブチレングリコール　　　　　　　　　　　　　　７．００重量％
フェノキシエタノール　　　　　　　　　　　　　　　　　０．３０重量％
メチルパラベン　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．２０重量％
水酸化カリウム　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．０６重量％
セテアレス－１３　　　　　　　　　　　　　　　　　　　１．００重量％
セスキオレイン酸ソルビタン　　　　　　　　　　　　　　０．３０重量％
ミネラルオイル　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　５．００重量％
フレグライド１　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．０４重量％
＜処方例５：洗顔料＞
水　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　３７．１６重量％
ミリスチン酸　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　２０．００重量％
パルミチン酸　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　４．００重量％
ラウリン酸　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　２．００重量％
ステアリン酸　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　１．００重量％
水酸化カリウム　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　５．８０重量％
ポリグリセリル－ラウリルエーテル　　　　　　　　　　　３．００重量％
ステアリン酸グリセリル　　　　　　　　　　　　　　　　１．００重量％
ジステアリン酸グリコール　　　　　　　　　　　　　　　２．００重量％
グリセリン　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　２０．００重量％
１，３－ブチレングリコール　　　　　　　　　　　　　　１．００重量％
ラウリルベタイン　　　　　　　　　　　　　　　　　　　３．００重量％
フレグライド１　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．０４重量％
＜処方例６：ボディソープ＞
水　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　６５．５０重量％
ラウリン酸　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　５．５０重量％
ミリスチン酸　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　１０．００重量％
ステアリン酸　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　１．００重量％
ラウリルベタイン　　　　　　　　　　　　　　　　　　　３．５０重量％
ポリグリセリル－ラウリルエーテル　　　　　　　　　　　２．００重量％
プロピレングリコール　　　　　　　　　　　　　　　　　５．００重量％
ジステアリン酸グリコール　　　　　　　　　　　　　　　２．００重量％
（アクリレーツ／アクリル酸アルキル）クロスポリマー　　０．１０重量％
水酸化ナトリウム　　　　　　　　　　　　　　　　　　　４．００重量％
塩化ナトリウム　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　１．００重量％
香料　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．３０重量％
フレグライド１　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．１０重量％
＜処方例７：ボディミルク＞
水　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　８５．６０重量％
ＥＤＴＡ－２Ｎａ　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．０１重量％
カルボマー　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．２０重量％
ヒドロキシエチルセルロース　　　　　　　　　　　　　　０．１０重量％
１，３－ブチレングリコール　　　　　　　　　　　　　　８．００重量％
フェノキシエタノール　　　　　　　　　　　　　　　　　０．３０重量％
メチルパラベン　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．２０重量％
水酸化カリウム　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．１７重量％
デカイソステアリン酸ポリグリセリル　　　　　　　　　　３．００重量％
オリーブ油　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　２．００重量％
（アクリレーツ／アクリル酸アルキル）クロスポリマー　　０．２０重量％
香料　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．２０重量％
フレグライド１　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．０２重量％
＜処方例８：バスミルク＞
水　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　２４．３７重量％
オリーブ油　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　４５．００重量％
１，３－ブチレングリコール　　　　　　　　　　　　　　８．００重量％
オレイン酸ポリグリセリル　　　　　　　　　　　　　　　５．００重量％
デカイソステアリン酸ポリグリセリル　　　　　　　　　　２．００重量％
ベントナイト　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　１５．００重量％
メチルパラベン　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．２０重量％
クエン酸／クエン酸ナトリウム　　　　　　　　　　　　　０．４０重量％
フレグライド１　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　０．０３重量％
　多様な化学物質が身の回りの様々な製品で使用されている現代社会において、化学物質が皮膚に対して与える影響を知ることは極めて重要である。様々な被験試料の皮膚における異物応答反応の惹起性を容易かつ迅速に評価することができる本発明の評価方法は、化粧品、医薬品、食料品など分野を問わず幅広い産業分野での応用が期待される。また、本発明の皮膚における異物応答反応を抑制する剤は、アトピー性皮膚炎の予防及び／又は治療、シワの予防及び／又は改善など、皮膚を健康に保つためにあらゆる製品に配合されることができる。そして、本発明の探索方法によれば、このような剤の有効成分として用いられ得る皮膚における異物応答反応の抑制性を有する物質を容易かつ迅速にスクリーニングすることができる。以上のとおり、本発明は非常に大きな産業上の利用可能性を有する。

Claims (10)

  1. 　被験試料の皮膚における異物応答反応の惹起性の評価方法であって、
    （１）異物応答配列（ＸＲＥ）を含むエンハンサー配列と、その下流にレポーター蛋白質をコードする配列を有するレポーターベクターにより形質転換された角化細胞を、前記被験試料を含有する溶液と接触させる工程、
    （２）前記被験試料を含有する溶液と接触させた前記角化細胞における前記レポーター蛋白質の発現量を測定する工程、及び、
    （３）測定された前記レポーター蛋白質の発現量の多寡に基づいて、前記被験試料の皮膚における異物応答反応の惹起性を評価する工程、
    を含む評価方法。
  2. 　皮膚における異物応答反応の抑制性を有する物質の探索方法であって、
    （１）異物応答配列（ＸＲＥ）を含むエンハンサー配列と、その下流にレポーター蛋白質をコードする配列を有するレポーターベクターにより形質転換された角化細胞を、候補物質を含有する試験溶液及び前記候補物質を含有しない基準溶液と接触させる工程、
    （２）前記試験溶液と接触させた前記角化細胞及び前記基準溶液と接触させた前記角化細胞における前記レポーター蛋白質の発現量を測定する工程、及び、
    （３）前記試験溶液と接触させた前記角化細胞における前記レポーター蛋白質の発現量が、前記基準溶液と接触させた前記角化細胞における前記レポーター蛋白質の発現量と比較して小さい場合に、前記候補物質が皮膚における異物応答反応の抑制性を有すると評価する工程、
    を含む探索方法。
  3. 　前記試験溶液及び前記基準溶液が、皮膚における異物応答反応を惹起する物質を含むことを特徴とする請求項２に記載の探索方法。
  4. 　５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライド及び／又はその塩を含有する、異物応答配列（ＸＲＥ）が関与して転写される遺伝子の発現を抑制する剤。
  5. 　５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライド及び／又はその塩を含有する、マトリックスメタロプロテアーゼ９の産生を抑制する剤。
  6. 　シワを予防及び／又は改善するために使用される請求項５に記載の剤。
  7. 　５－ヒドロキシ－４－フェニル－２（５Ｈ）ブテノライド及び／又はその塩を含有する、アルテミンの産生を抑制する剤。
  8. 　アトピー性皮膚炎を予防及び／又は治療するために使用される請求項７に記載の剤。
  9. 　請求項４乃至８のいずれか一項に記載の剤を含有する医薬品、医薬部外品、化粧品、日用品、又は食料品。
  10. 　化粧水、乳液、クリーム、美容液、クレンジング、パック、洗顔料、せっけん、化粧下地、ファンデーション、コンシーラー、フェイスパウダー、口紅、ほお紅、アイシャドー、アイライナー、アイブロー、マスカラ、ボディソープ、ボディミルク、ボディローション、ボディクリーム、ボディオイル、ボディパウダー、サンスクリーン、サンオイル、デオドラントスプレー、脱色クリーム、脱毛クリーム、ハンドクリーム、シャンプー、リンス、リンスインシャンプー、ドライシャンプー、ヘアトリートメント、コンディショナー、ヘアミルク、ヘアクリーム、ヘアオイル、ヘアミスト、トニック、ヘアフォーム、ヘアジェル、ワックス、ポマード、ヘアリキッド、ウェーブ剤、ヘアカラー、ブリーチ、カラーリンス、育毛剤、発毛剤、歯磨き、マウスウォッシュ、うがい薬、バスミルク、バスソルト、バスオイル、香水、又はオーデコロンである請求項９に記載の化粧品。

     
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