WO2022108315A1 - 신장 오가노이드 배양 및 이식을 위한 탈세포 신장 조직 유래 지지체 및 이의 제조방법 - Google Patents
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- C12N2533/90—Substrates of biological origin, e.g. extracellular matrix, decellularised tissue
Definitions
- the present invention relates to a scaffold derived from decellularized kidney tissue for culturing and transplanting kidney organoids and a method for preparing the same.
- Organoids are tissue analogs that can be used for various clinical applications such as drug screening, drug toxicity evaluation, disease modeling, cell therapy, and tissue engineering. It is a technology that is rapidly growing all over the world. Organoids are not only composed of various cells constituting specific organs and tissues of the human body within a three-dimensional structure, but also can implement complex interactions between them. Compared to that, it can be applied as a much more accurate in vitro model platform.
- Kidney organoids can be prepared from pluripotent stem cells, such as human induced pluripotent stem cells or embryonic stem cells, or by extracting and culturing adult stem cells from kidney tissue.
- pluripotent stem cells such as human induced pluripotent stem cells or embryonic stem cells
- Matrigel used for culturing kidney organoids does not implement a complex kidney tissue-specific microenvironment in vivo, there is a need to improve kidney organoid differentiation efficiency and function. Therefore, the development of a new culture system for producing more mature and functional kidney organoids is urgently required.
- kidney diseases such as end-stage renal disease and chronic nephritis
- the patient has to undergo hemodialysis for the rest of his life or undergo a kidney transplant. It is a serious disease that causes great suffering. Therefore, the development of a system that can efficiently cultivate kidney organoids as a precise in vitro model for the development of therapeutic agents for kidney disease is a very important issue from the point of view of health care.
- a hydrogel matrix composed of kidney tissue-specific extracellular matrix components was prepared through a decellularization process of kidney tissue, and this was applied to kidney organoid culture.
- the present invention not only simplifies the decellularization process, so that the matrix production process is very easy, but also the kidney tissue-specific extracellular matrix components and growth factors are well preserved, thereby enabling efficient growth and differentiation of kidney organoids.
- the potential as a culture matrix that can replace the existing Matrigel was verified.
- the present invention is to chemically process pig kidney tissue to obtain a large amount of decellularized tissue, and to prepare a hydrogel scaffold based on this to apply it to kidney organoid culture.
- One aspect of the present invention provides a scaffold for culturing and transplanting kidney organoids using a kidney tissue-derived extracellular matrix (KEM).
- KEM kidney tissue-derived extracellular matrix
- the kidney tissue-derived extracellular matrix may be prepared using a solution of Triton X-100 and ammonium hydroxide.
- the concentration of the kidney tissue-derived extracellular matrix in the scaffold may be 1 mg/ml to 10 mg/ml.
- Another aspect of the present invention comprises the steps of: 1) crushing the isolated kidney tissue; And 2) treating the shredded kidney tissue with Triton X-100 and ammonium hydroxide to decellularize to prepare a decellularized kidney tissue-derived extracellular matrix (KEM).
- KEM kidney tissue-derived extracellular matrix
- 3) lyophilizing the decellularized kidney tissue-derived extracellular matrix may further include the step of preparing a freeze-dried kidney tissue-derived extracellular matrix .
- the method may further include the step of 4) forming the lyophilized kidney tissue-derived extracellular matrix as a support for culturing and transplanting a kidney organoid in the form of a hydrogel.
- step 4) may be to dissolve the lyophilized kidney tissue-derived extracellular matrix in a pepsin solution to form a solution, and then to hydrogel by adjusting the pH.
- Another aspect of the present invention provides a method for culturing kidney organoids on the support or the support prepared by the production method.
- the decellular support developed in the present invention enables efficient culturing of renal organoids, it is widely used in the medical industry such as new drug development, drug toxicity and efficacy evaluation, and patient-specific drug selection by replacing the existing Matrigel, which has various problems. It is expected to be useful. Through this, it is expected that it will improve the quality of life of the people in terms of health and society and create great added value in terms of economy and industry.
- Decellularized kidney tissue-derived artificial matrix scaffolds are expected to be widely used in various fields, such as disease modeling research that implements various intractable kidney diseases (acute/chronic nephritis, renal failure, etc.) in vitro and reveals the mechanism, and establishment of a transplant treatment platform. . Since the prevalence of such intractable kidney disease has recently increased significantly and a lot of research is needed, it is possible to generate profits as a research material for related basic research.
- intractable kidney diseases acute/chronic nephritis, renal failure, etc.
- Renal organoids have endless potential as a disease model as well as a cell therapy for regenerative medicine and tissue regeneration therapy.
- daily life is impossible due to hemodialysis, but the quality of life of the patient will be greatly improved if the fundamental kidney disease treatment is possible through renal organoid transplantation treatment using the decellularized kidney-derived scaffold developed in the present invention. and can significantly reduce related costs.
- the artificial scaffold developed in the present invention can be applied not only to stem cell-derived kidney organoids but also to kidney cancer organoid culture. Considering the size of the precision medicine market, it is expected to create enormous added value.
- the artificial scaffold developed in the present invention shows more functionality than Matrigel as a culture system, and is safer and very advantageous in terms of cost. It has advantages. Therefore, it is predicted that huge economic profits will be created only by the replacement effect of Matrigel.
- kidney tissue-derived extracellular matrix (KEM) scaffold for culturing kidney organoids.
- kidney tissue-derived extracellular matrix KEM
- Figure 5 shows the results of comparative analysis of the proteomic matrix of the decellularized kidney tissue-derived extracellular matrix (Kidney Extracellular Matrix, KEM) for culturing kidney organoids.
- FIG. 6 shows the analysis results for selecting the optimal concentration of the decellularized kidney tissue-derived KEM hydrogel scaffold for culturing kidney organoids.
- FIG. 7 shows the results of expression analysis (cell immunostaining analysis) of the proliferation and differentiation markers of kidney organoids cultured on a KEM hydrogel support derived from decellularized kidney tissue.
- kidney organoids formed on a KEM hydrogel scaffold derived from decellularized kidney tissue.
- kidney Extracellular Matrix KEM
- kidney Extracellular Matrix 10 and 11 show the results of verifying the long-term storage possibility of a decellularized kidney tissue-derived extracellular matrix scaffold (Kidney Extracellular Matrix, KEM).
- kidney Extracellular Matrix KEM
- Kidney Extracellular Matrix, KEM shows the results of analysis of the functionality of kidney organoids cultured on a decellularized kidney tissue-derived extracellular matrix (Kidney Extracellular Matrix, KEM).
- kidney fibrosis model is a result of constructing a kidney fibrosis model using kidney organoids cultured on a decellularized kidney tissue-derived extracellular matrix (KEM).
- KEM kidney tissue-derived extracellular matrix
- kidney Extracellular Matrix, KEM Kidney Extracellular Matrix
- molecular biology, microbiology, protein purification, protein engineering, and DNA sequencing may be performed by conventional techniques commonly used in the art of recombinant DNA and within the abilities of those skilled in the art. Such techniques are known to those skilled in the art and are described in many standardized textbooks and reference books.
- One aspect of the present invention provides a scaffold for culturing and transplanting kidney organoids using a kidney tissue-derived extracellular matrix (KEM).
- KEM kidney tissue-derived extracellular matrix
- extracellular matrix refers to a natural scaffold for cell growth prepared through decellularization of tissues found in mammals and multicellular organisms.
- the extracellular matrix can be further processed through dialysis or crosslinking.
- the extracellular matrix is collagen, elastin, laminins, glycosaminoglycans, proteoglycans, antimicrobials, chemoattractants, cytokines , and a mixture of structural and non-structural biomolecules, but not limited to growth factors.
- the extracellular matrix may contain about 90% collagen in various forms in mammals.
- the extracellular matrix derived from various living tissues may have a different overall structure and composition due to the unique role required for each tissue.
- derived or “derived” means an ingredient obtained from the source mentioned by any useful method.
- the kidney tissue-derived extracellular matrix may be prepared by using a mixed solution of Triton X-100 and ammonium hydroxide.
- the concentration of the kidney tissue-derived extracellular matrix in the scaffold may be 1 mg/ml to 10 mg/ml, specifically 1 mg/ml to 7 mg/ml.
- the concentration of the renal extracellular matrix 1 mg/ml to 7 mg/ml, 1 mg/ml to 5 mg/ml, 1 mg/ml to 3 mg/ml, 3 mg/ml to 7 mg/ml, It may be 3 mg/ml to 5 mg/ml or 5 mg/ml to 7 mg/ml, and in one embodiment may be 1 mg/ml, 3 mg/ml, 5 mg/ml or 7 mg/ml.
- the support includes a three-dimensional hydrogel prepared based on the extracellular matrix derived from kidney tissue obtained by decellularization, and can be effectively used for culturing kidney organoids.
- kidney tissue contains an actual tissue-specific extracellular matrix component, it is possible to provide a physical, mechanical, and biochemical environment of the corresponding tissue, and is very effective in promoting differentiation into kidney tissue cells and tissue-specific functionality. to be.
- the “organoid” refers to a micro-organism manufactured in the form of an artificial organ by culturing cells derived from tissues or pluripotent stem cells in 3D form.
- the organoids are three-dimensional tissue analogs including organ-specific cells that arise from stem cells and self-organize (or self-pattern) in a manner similar to the in vivo state, and are limited to specific tissues by patterning of factors (Ex. growth factor). can develop into
- the organoid has the intrinsic physiological properties of a cell, and may have an anatomical structure that mimics the original state of a cell mixture (including not only defined cell types, but also residual stem cells, proximal physiological niche). .
- the organoid may have a shape and tissue-specific function, such as an organ, in which cells and cell functions are better arranged through a three-dimensional culture method, and have functionality.
- Another aspect of the present invention comprises the steps of: 1) crushing the isolated kidney tissue; And 2) treating the shredded kidney tissue with Triton X-100 and ammonium hydroxide to decellularize to prepare a decellularized kidney tissue-derived extracellular matrix (KEM).
- KEM kidney tissue-derived extracellular matrix
- Step 1) is a step of crushing the separated kidney tissue
- the kidney tissue may be isolated from a known animal, and specific examples of the animal may be cattle, pigs, monkeys, humans, and the like.
- the decellularization efficiency is high because the decellularization treatment is performed after crushing the isolated kidney tissue.
- the method of crushing the isolated kidney tissue may be made by a known method. In the present invention, more efficient and high-level cell removal is possible because the kidney tissue is subjected to a decellularization process by crushing the kidney tissue.
- Step 2) is a step of preparing the decellularized kidney tissue-derived extracellular matrix (KEM) by treating the crushed kidney tissue with Triton X-100 and ammonium hydroxide to decellularize it.
- the present invention treats only Triton X-100 and ammonium hydroxide, thereby minimizing tissue damage, so that more various proteins in kidney tissue can be preserved.
- the decellularization process can be accomplished while stirring 100 and ammonium hydroxide together.
- the method may further include the step of 3) lyophilizing the decellularized kidney tissue-derived extracellular matrix (KEM) to prepare a freeze-dried kidney tissue-derived extracellular matrix.
- KEM decellularized kidney tissue-derived extracellular matrix
- Step 3) is a step of lyophilizing the decellularized kidney tissue-derived extracellular matrix (KEM) to prepare a freeze-dried kidney tissue-derived extracellular matrix.
- KEM decellularized kidney tissue-derived extracellular matrix
- the lyophilized kidney tissue-derived extracellular matrix may be exposed to electron beam, gamma radiation, ethylene oxide gas or supercritical carbon dioxide after drying for sterilization.
- the method may further include 4) forming the lyophilized kidney tissue-derived extracellular matrix as a support for culturing and transplanting a kidney organoid in the form of a hydrogel.
- Step 4) is a step of forming the lyophilized kidney tissue-derived extracellular matrix into a hydrogel-type kidney organoid culture and support for transplantation.
- the step may be made through gelation, specifically, the lyophilized kidney tissue-derived extracellular matrix may be dissolved in a pepsin solution to form a solution, and then hydrogelled by adjusting the pH.
- a three-dimensional hydrogel-type scaffold can be prepared by crosslinking the extracellular matrix derived from the decellularized kidney tissue, and the gelled scaffold can be used in various fields related to experiments and screening as well as organoid culture.
- the “hydrogel” is a material that loses fluidity and forms a porous structure by solidifying a liquid using water as a dispersion medium through a sol-gel phase change. can be formed.
- the gelation is performed by dissolving the lyophilized kidney tissue-derived extracellular matrix in an acidic solution with a proteolytic enzyme such as pepsin or trypsin, and adjusting the pH, specifically, using 10X PBS and 1 M NaOH to neutral pH and 1X PBS buffer. It may be set to an electrolyte state and made for 30 minutes at a temperature of 37°C.
- a proteolytic enzyme such as pepsin or trypsin
- Another aspect of the present invention provides a method for culturing kidney organoids on the support or the support prepared by the production method.
- the existing Matrigel-based culture system is an extract derived from animal cancer tissue, and the difference between batches is large and does not mimic the actual liver environment, and the efficiency of differentiation and development into kidney organoids is insufficient, whereas the scaffold creates a kidney tissue-like environment. Therefore, it is suitable for culturing kidney organoids.
- the culture refers to a process of maintaining and growing cells under suitable conditions, and suitable conditions include, for example, the temperature at which the cells are maintained, nutrient availability, atmospheric CO 2 content, and cell density.
- Conditions suitable for the formation of the organoid may be conditions that facilitate or allow cell differentiation and formation of multicellular structures.
- the decellularized kidney tissue-derived extracellular matrix scaffold developed in the present invention can be manufactured through a minimized chemical treatment method, there is less damage to tissue-specific components compared to the scaffold prepared by the existing decellularization method, and the production time and It is more efficient in terms of cost reduction and has the advantage of easy mass production. Therefore, it is expected to be more advantageous in terms of commercialization compared to the existing decellular matrix.
- kidney tissue-derived scaffold developed in the present invention, it was confirmed that, while all immunogenic cells were removed, various extracellular matrix components and growth factors contained in the actual kidney tissue were well preserved. Through proteomic analysis, important extracellular matrix components and related proteins in kidney tissue were identified. Therefore, the decellularized kidney tissue-derived matrix provided a kidney tissue-specific microenvironment, enabling efficient culturing of kidney organoids.
- kidney organoids was successfully induced in the developed decellularized kidney tissue-derived hydrogel.
- Decellular scaffolds of various extracellular matrix concentrations were prepared and applied to kidney organoid culture to select the optimal concentration conditions for the most efficient kidney organoid culture.
- kidney organoids cultured on the developed decellular support and the kidney organoids cultured on the Matrigel support used as a control were compared and analyzed, it was confirmed that the differentiation of kidney organoids cultured on the decellularized support was further enhanced. Based on these results, it was confirmed that kidney organoids cultured on decellularized scaffolds can reproduce the actual kidney tissue more accurately and precisely than kidney organoids cultured using the conventional method. As a result, it was confirmed that the decellularized kidney tissue-derived scaffold actually contributes to the efficient differentiation and development of kidney organoids, demonstrating its potential as a substitute for Matrigel.
- pig kidney tissue was subjected to a decellularization process to prepare an extracellular matrix-based scaffold (Kidney Extracellular Matrix; KEM).
- KEM Kid Extracellular Matrix
- the decellularization process used in the present invention is differentiated from the existing decellularization methods in that it uses only a solution mixed with 1% Triton X-100 and 0.1% ammonium hydroxide, which is a more relaxed condition than the conventional method, and thus tissue damage. It was possible to preserve more various extracellular matrix and growth factor proteins in kidney tissue by minimizing In addition, since the decellularization process was performed after the kidney tissue was chopped, it had the advantage of more effective and reliable removal of cellular components (DNA) from the tissue.
- DNA cellular components
- Kidney Extracellular Matrix (KEM) derived from decellularized kidney tissue was prepared from pig kidney tissue and the properties were analyzed.
- KEM hydrogel can provide a structural microenvironment suitable for culturing kidney organoids.
- Hydrogel scaffolds of 4 concentrations were prepared using extracellular matrix (KEM) derived from decellularized kidney tissue, and changes in physical properties according to concentrations were measured. Gels of all concentration conditions were prepared through crosslinking reaction for 30 minutes in an incubator at 37°C. It was confirmed that the storage modulus (G′) value was consistently higher than the loss modulus (G′′) value under all concentration conditions including the lowest concentration of 1 mg/ml. As a result, it was confirmed that a stable polymer network was formed through crosslinking in the hydrogel, and as the KEM concentration increased, the mechanical properties (modulus) also increased.
- KEM extracellular matrix
- Proteomics was performed to confirm the extracellular matrix component contained in the KEM scaffold derived from decellularized kidney tissue.
- KEM hydrogel a scaffold derived from decellularized kidney tissue produced through proteomic analysis, contains various types of extracellular matrix components such as collagens, glycoproteins, and proteoglycans. It was confirmed that various secreted factors, such as growth factors, coagulation factors, and cytokines, that exist in a pre-existing state are also contained.
- Collagen type VI (COL6), which occupies a large proportion among the 10 major ECMs constituting KEM hydrogel, is a major component of the renal glomerular extracellular matrix and plays an important role in the formation of kidney tissue, and laminin (LAM) glycoprotein of the basement membrane As a major component, it was involved in renal cell and tissue differentiation, homeostasis and survival.
- LAM laminin glycoprotein of the basement membrane
- BGN biglycan
- kidney organoid formation and development Therefore, it is expected that these various proteins present in the actual kidney tissue observed in the KEM hydrogel can induce kidney organoid formation and development.
- KEM derived from decellularized kidney tissue for culturing kidney organoids and the proteomic matrix of Matrigel support were comparatively analyzed. Specifically,
- Tubular fragments were extracted from mouse kidney tissue.
- KEM hydrogels of various concentration conditions were first prepared. The extracted tubular fragments were uniformly mixed with KEM hydrogel scaffolds derived from decellularized kidney tissue at each concentration, and then three-dimensional culture was performed to induce the formation of kidney organoids. Subculture was carried out on the 7th day of culture and further cultured for 5 days, and on the 12th day of total culture, the form, formation efficiency, and gene expression of kidney organoids formed under each KEM concentration condition were confirmed. Matrigel was used as a control.
- Kidney organoids were formed in KEM hydrogels under the concentration conditions other than 1 mg/ml, and it was confirmed that they were formed in a spherical shape similar to the organoids cultured in Matrigel used as a control. No organoids were formed in the hydrogel at a concentration of 1 mg/ml.
- organoids could be cultured at all concentrations except KEM hydrogel at a concentration of 1 mg/ml. .
- ZO-1 a marker involved in tight-junction between cells, was also well expressed in kidney organoids cultured in KEM hydrogels of all concentrations.
- KI67 a marker related to organoid proliferation, was also well expressed in kidney organoids cultured in KEM hydrogels of all concentrations.
- kidney organoids can be continuously cultured for more than 2 months in KEM hydrogel, and the various cell type markers of the kidney are similar or higher than Matrigel, a commercially available organoid culture matrix. was confirmed to be expressed.
- Kidney Extracellular Matrix (KEM) derived from decellularized kidney tissue ( FIGS. 10 and 11 )
- kidney Extracellular Matrix KEM
- A Decellularized kidney tissue-derived KEM solution (concentration 7 mg/ml) is refrigerated at 4 °C for up to one month, and it is used for culturing kidney organoids to check whether the KEM hydrogel can be stored for a long time and whether it is stable or not did
- kidney-specific markers AQP3 collected duct cell
- CALB1 distal tubule cell
- PAX8 renal progenitor cell
- kidney Extracellular Matrix, KEM Kid Extracellular Matrix
- A Decellularized kidney tissue-derived KEM solution (concentration 7 mg/ml) is stored frozen at -80 °C for up to 3 months, and then re-thawed and used for kidney organoid culture to determine whether KEM can be stored for a long time and whether it is stable or not. Confirmed.
- the KEM hydrogel solution derived from decellularized kidney tissue can be stored stably for at least 3 months without affecting its activity and function even if it is stored frozen in a freezing condition (-80 °C).
- kidney organoids After culturing kidney organoids on decellularized scaffolds from other organs to demonstrate the tissue-specific effects of kidney-specific extracellular matrix components contained in decellularized kidney tissue-derived KEM scaffolds on the formation and development of kidney organoids Comparative analysis was performed.
- kidney organoids As a result of culturing kidney organoids on decellularized hydrogel scaffolds derived from kidney (KEM), intestine (IEM), muscle (MEM), skin (SkEM), and heart (HEM), skin and heart-derived dehydration on day 7 It was confirmed that kidney organoids were not properly formed in the cell scaffold. In addition, when subculture was performed once and additional culture was performed for 4 days (a total of 11 days of culture), it was observed that all of the decellularized tissue scaffolds except for the decellularized kidney tissue-derived scaffolds were formed with small organoid sizes, and cardiac-derived In the support, it was confirmed that organoids were not formed in the same way as on the 7th day.
- Kidney Extracellular Matrix (KEM) derived from decellularized kidney tissue (FIG. 13)
- kidney organoids cultured in KEM hydrogel derived from decellularized kidney tissue could well implement kidney function in vivo.
- P-gp P-glycoprotein
- kidney organoids cultured in KEM hydrogel have the function of efflux pump to discharge foreign substances.
- kidney fibrosis disease model was constructed using kidney organoids cultured in KEM hydrogel. To this end, renal fibrosis was induced by treatment with TGF-b drug in mouse kidney organoids. On the 9th day of renal organoid culture (passage 1 on the 7th day, additional culture for 2 days), each concentration was treated for 3 days, the analysis was performed on the 12th day, and kidney organoids not treated with TGF- ⁇ (NT, No treatment) was compared as a control.
- C Expression of renal fibrosis-related markers Vimentin, COL1 (collagen type 1), and ⁇ -SMA (alpha smooth muscle actin) was confirmed through immunostaining.
- TGF- ⁇ was treated with kidney organoids cultured in 7 mg/ml KEM, it was confirmed that the KEM hydrogel contracted and the fibrosis-induced organoids merged into one mass.
- the expression of all fibrosis markers was increased in kidney organoids treated with TGF- ⁇ , and it was confirmed that all of the kidney organoids in Matrigel and KEM support showed similar fibrosis marker expression patterns.
- KEM hydrogel scaffold is suitable as a material for transplantation of kidney organoids
- 5 mg/ml KEM scaffold derived from the decellularized kidney tissue was transplanted into the mouse subcutaneous tissue, followed by histological analysis.
- H&E staining was performed to check the degree of infiltration of inflammatory cells into the transplanted KEM hydrogel scaffold
- Toluidine blue staining was performed to check the presence or absence of mast cells caused by an immune response.
- kidney organoids were transplanted into the mouse kidney capsule using KEM hydrogel.
- KEM hydrogel was mixed 1:20 (v/v ) (KEM: culture medium composition) ratio was mixed and transplanted into the living body.
- kidney tissue was obtained on the 4th day after transplantation and histological analysis was performed. As a result, as shown in FIG. 16 , the presence of a fluorescence signal inside the renal capsule was confirmed, and thus, it was confirmed that the transplanted organoid was well engrafted in the tissue.
- kidney organoids Animal experiments and histological analysis were performed to confirm that the KEM hydrogel scaffold derived from decellularized kidney tissue can be used as a material for transplantation of kidney organoids.
- AKI acute kidney injury
- 10 mg/kg cisplatin drug was injected intraperitoneally once into the mouse intraperitoneal cavity and 25 ⁇ l of 7 mg/ml KEM hydrogel to enhance transplantation efficiency and engraftment the next day 600-700 kidney organoids were transplanted into mouse kidney capsules using On the 14th day of transplantation, kidney tissues from each group of mice were obtained and subjected to H&E staining and immunostaining analysis.
- A As a result of H&E staining, areas of acute tubular necrosis (ATN) and hyperemic kidney, which are typical aspects of acute kidney injury, were extensively observed in damaged kidney tissue that was not transplanted with organoids. In contrast, when kidney organoids were transplanted using KEM scaffolds, it was confirmed that the kidney organoids were well engrafted in the cortical area of the damaged kidney tissue, and the damaged area was significantly reduced compared to the control kidney tissue that was not treated. In addition, as a result of quantitative analysis of the glomerular area to confirm the degree of contraction of the glomerular structure, which is one of the symptoms of acute kidney injury, the kidney tissue transplanted with kidney organoids maintains a less damaged glomerular structure than the non-transplanted tissue. was confirmed.
- the KEM hydrogel scaffold can be used as a material for organoid transplantation to treat a kidney disease model, and can improve the engraftment efficiency of organoids in damaged tissue and at the same time induce renal structure recovery. .
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Abstract
본 발명은 탈세포 신장 조직(Kidney Extracellular Matrix; KEM)을 이용한 신장 오가노이드 배양 및 이식용 지지체에 관한 것이다.
Description
본 발명은 신장 오가노이드 배양 및 이식을 위한 탈세포 신장 조직 유래 지지체 및 이의 제조방법에 관한 것이다.
기존의 2차원 세포 배양법은 실제 생체 내 미세환경을 구현하는데 한계가 있기 때문에 배양 효율이 낮으며 따라서 2D 세포주는 체외 모델로서 한계가 있다. 이러한 한계점을 개선하기 위한 새로운 방안으로 최근 3차원 오가노이드 배양 기술이 큰 각광을 받고 있는데 오가노이드는 신약 스크리닝, 약물 독성 평가, 질환 모델링, 세포 치료제, 조직공학 등 다양한 임상적 적용이 가능한 조직 유사체로서 전 세계적으로 급격하게 성장하고 있는 기술이다. 오가노이드는 삼차원 구조체 내에 인체의 특정 장기 및 조직을 구성하는 다양한 세포로 이루어져 있을 뿐만 아니라 그들 간의 복합적인 상호 작용을 구현할 수 있기 때문에 단순 2D 세포주 모델이나 동물 모델과 같은 기존에 주로 이용되던 약물 평가 모델과 비교해서 훨씬 정확한 체외 모델 플랫폼으로 적용이 가능하다.
전세계적으로 다양한 장기 유래 오가노이드 플랫폼들이 구축되었고 현재까지도 관련 연구가 활발히 진행중인데, 현재까지 오가노이드를 배양하기 위해 배양 지지체로서 공통적으로 매트리젤(Matrigel) 제품을 이용하고 있다. 하지만 매트리젤은 쥐의 육종암 조직에서 추출한 성분이기 때문에, 제품의 품질을 균일하게 유지하기 어려우며 고가이고 동물성 감염균 및 바이러스 전이 등 안전성 측면에서 문제가 있어 오가노이드 배양 시스템으로서 매트리젤은 해결해야 하는 많은 문제점을 가지고 있다. 특히, 암 조직 유래의 소재로서 특정 조직 오가노이드 배양을 위해 필요한 최적의 조직 특이적 미세환경을 제공해 주지 못한다. 매트리젤을 대체하기 위한 고분자 기반 하이드로젤 개발 연구가 일부 진행되어 왔으나 아직까지 매트리젤을 대체할만한 수준의 소재는 보고된 바 없다.
신장 오가노이드는 신장 조직에서 성체줄기세포를 추출하여 배양하거나 인간 유도만능줄기세포 또는 배아줄기세포와 같은 전분화능 줄기세포로부터 제작할 수 있다. 그러나 신장 오가노이드 배양을 위해 사용되는 매트리젤은 생체 내 복합적인 신장 조직 특이적 미세환경을 구현하지 못하기 때문에 신장 오가노이드 분화 효율 및 기능을 향상시켜야 할 필요가 있다. 따라서 보다 성숙하고 기능적인 신장 오가노이드를 제작하기 위한 새로운 배양 시스템의 개발이 절실히 요구되고 있다.
말기 신부전, 만성 신장염 등 난치성 신장 질환은 마땅한 치료제가 없어 환자가 평생 혈액 투석을 해야 하거나 신장 이식을 받아야 하기 때문에 일상 생활이 어려워져 환자의 삶의 질이 크게 저하되고 신장 이식 후 면역억제제 복용 및 부작용으로 인해 큰 고통을 받는 심각한 질환이다. 따라서 신장 질환 치료제 개발을 위한 정밀한 체외모델로서 신장 오가노이드를 효율적으로 배양할 수 있는 시스템 개발은 보건의료 관점에서 매우 중요한 이슈이다.
본 발명에서는 신장 조직의 탈세포 공정을 통해 신장 조직 특이적 세포외기질 성분으로 구성된 하이드로젤 매트릭스 제작하고 이를 신장 오가노이드 배양에 적용하였다. 기존 장기 탈세포 방법과 비교하여 본 발명에서는 탈세포 공정을 단순화하여 매트릭스 제작 과정이 매우 용이할 뿐 아니라 신장 조직 특이적 세포외기질 성분 및 성장인자가 잘 보존되어 신장 오가노이드의 효율적인 생장 및 분화를 유도할 수 있음을 확인하여 기존 매트리젤을 대체할 수 있는 배양 매트릭스로서의 가능성을 검증하였다.
본 발명은 돼지 신장 조직을 화학적 처리하여 대량의 탈세포 조직을 얻고 이를 기반으로 하이드로젤 지지체를 제작하여 신장 오가노이드 배양에 적용하기 위한 것이다.
그러나, 본 발명이 이루고자 하는 기술적 과제는 이상에서 언급한 과제에 제한되지 않으며, 언급되지 않은 또 다른 과제들은 아래의 기재로부터 당업자에게 명확하게 이해될 수 있을 것이다.
본 발명의 일 양상은 신장 조직 유래 세포외기질(Kidney Extracellular Matrix; KEM)을 이용한 신장 오가노이드 배양 및 이식용 지지체를 제공한다.
본 발명의 일 구체예로, 상기 신장 조직 유래 세포외기질은 Triton X-100 및 수산화암모늄을 혼합한 용액을 이용하여 제조된 것일 수 있다.
본 발명의 일 구체예로, 상기 지지체 내 상기 신장 조직 유래 세포외기질의 농도는 1 mg/ml 내지 10 mg/ml일 수 있다.
본 발명의 다른 일 양상은 1) 분리된 신장 조직을 파쇄하는 단계; 및 2) 상기 파쇄된 신장 조직에 Triton X-100 및 수산화 암모늄을 처리하여 탈세포하여 탈세포된 신장 조직 유래 세포외기질 (KEM)을 제조하는 단계를 포함하는 신장 오가노이드 배양 및 이식용 지지체 제조방법을 제공한다.
본 발명의 일 구체예로, 상기 2) 단계 이후 3) 상기 탈세포 신장 조직 유래 세포외기질 (KEM)을 동결건조 하여 동결건조 신장 조직 유래 세포외기질을 제조하는 단계를 더 포함하는 것일 수 있다.
본 발명의 일 구체예로, 상기 3) 단계 이후 4) 상기 동결건조 신장 조직 유래 세포외기질을 하이드로젤 형태의 신장 오가노이드 배양 및 이식용 지지체로 형성하는 단계를 더 포함하는 것일 수 있다.
본 발명의 일 구체예로, 상기 4) 단계는 상기 동결건조 신장 조직 유래 세포외기질을 펩신 용액에 용해시켜 용액화 한 뒤 pH를 조정하여 하이드로젤화 하는 것일 수 있다.
본 발명의 다른 일 양상은 상기 지지체 또는 상기 제조방법에 의해 제조된 지지체에서 신장 오가노이드를 배양하는 방법을 제공한다.
본 발명에서 개발된 탈세포 지지체를 이용하면 신장 오가노이드의 효율적인 배양이 가능하므로 여러가지 문제점을 가지고 있는 기존 매트리젤을 대체하여 신약 개발, 약물 독성 및 유효성 평가, 환자 맞춤형 약물 선별 등 의료 산업 분야에 광범위하게 활용될 수 있을 것으로 기대된다. 이를 통해 보건사회적으로 국민의 삶의 질 향상과 더불어 경제/산업적으로도 큰 부가가치를 창출할 것이라고 전망한다.
탈세포 신장 조직 유래 인공 매트릭스 지지체는 다양한 난치성 신장 질환(급성/만성 신장염, 신부전 등)을 체외에서 구현하고 그 기전을 밝히는 질병 모델링 연구 및 이식 치료 플랫폼 구축 등 다양한 분야에서 광범위하게 이용 가능할 것으로 기대된다. 이러한 난치성 신장 질환은 최근 유병률이 크게 증가하여 많은 연구가 필요한 상황이므로 관련 기초연구를 위한 연구용 소재로서도 수익 창출이 가능하다.
신장 오가노이드는 질환 모델뿐 아니라 재생의학적 목적의 세포 치료제 및 조직 재생 치료제로서 무궁한 가능성을 가진다. 말기 신부전 환자의 경우 혈액 투석으로 인해 일상적인 생활이 불가능한데 본 발명에서 개발된 탈세포 신장 유래 지지체를 이용한 신장 오가노이드 이식 치료를 통해 근본적인 신장 질환 치료가 가능하게 된다면 환자의 삶의 질을 크게 향상시킬 수 있으며 관련 비용을 크게 절감할 수 있다.
본 발명에서 개발된 인공 지지체는 줄기세포 유래 신장 오가노이드 뿐 아니라 신장암 오가노이드 배양에도 적용이 가능하므로 난치성 질환 및 암 환자 맞춤형 질환 모델 구축에 기여하여 정밀의학 플랫폼 기술로서도 활용될 수 있으며 최근 급증하는 정밀의학 시장의 규모를 고려하면 막대한 부가가치 창출이 가능할 것으로 기대된다.
종합하면 위에서 기술했듯이 신장 오가노이드의 배양 및 응용을 위해서 필수적으로 요구되는 매트리젤과 비교하여 본 발명에서 개발된 인공 지지체는 배양 시스템으로서 매트리젤 이상의 기능성을 보여주며 보다 안전하고 비용적인 측면에서도 매우 유리한 장점을 가지고 있다. 따라서 이러한 매트리젤 대체 효과만으로도 막대한 경제적 수익 창출이 예측된다.
도 1은 신장 오가노이드 배양을 위한 탈세포 신장 조직 유래 세포외기질(Kidney Extracellular Matrix; KEM) 지지체 제작 과정을 나타낸 것이다.
도 2는 신장 오가노이드 배양을 위한 탈세포 신장 조직 유래 KEM 지지체를 분석한 결과를 나타낸 것이다.
도 3은 탈세포 신장 조직 유래 하이드로젤 지지체의 KEM 농도에 따른 물성을 분석한 결과를 나타낸 것이다.
도 4는 신장 오가노이드 배양을 위한 탈세포 신장 조직 유래 세포외기질 (Kidney Extracellular Matrix, KEM)의 단백체를 분석한 결과를 나타낸 것이다.
도 5는 신장 오가노이드 배양을 위한 탈세포 신장 조직 유래 세포외기질 (Kidney Extracellular Matrix, KEM)과 매트리젤의 단백체를 비교 분석한 결과를 나타낸 것이다.
도 6는 신장 오가노이드 배양을 위한 탈세포 신장 조직 유래 KEM 하이드로젤 지지체의 최적 농도 선정을 위한 분석 결과를 나타낸 것이다.
도 7은 탈세포 신장 조직 유래 KEM 하이드로젤 지지체에서 배양된 신장 오가노이드의 증식 및 분화 마커 발현 분석(세포 면역염색 분석) 결과를 나타낸 것이다.
도 8은 탈세포 신장 조직 유래 KEM 하이드로젤 지지체에서 형성된 신장 오가노이드 성장 양상을 나타낸 것이다.
도 9은 탈세포 신장 조직 유래 세포외기질 지지체(Kidney Extracellular Matrix, KEM)에서 장기 배양한 신장 오가노이드를 분석한 결과를 나타낸 것이다.
도 10 및 11은 탈세포 신장 조직 유래 세포외기질 지지체(Kidney Extracellular Matrix, KEM)의 장기 보관 가능성을 검증한 결과를 나타낸 것이다.
도 12은 신장 오가노이드 배양을 위한 탈세포 신장 조직 유래 세포외기질 지지체(Kidney Extracellular Matrix, KEM)의 조직 특이적 효과를 확인한 결과이다.
도 13은 탈세포 신장 조직 유래 세포외기질 지지체(Kidney Extracellular Matrix, KEM)에서 배양된 신장 오가노이드의 기능성을 분석한 결과를 나타낸 것이다.
도 14는 탈세포 신장 조직 유래 세포외기질 지지체(Kidney Extracellular Matrix, KEM)에서 배양된 신장 오가노이드를 이용하여 신장 섬유증 모델을 제작한 결과이다.
도 15는 탈세포 신장 조직 유래 세포외기질 (Kidney Extracellular Matrix, KEM) 지지체의 생체적합성을 확인한 결과이다.
도 16 및 17은 탈세포 신장 조직 유래 세포외기질 지지체(Kidney Extracellular Matrix, KEM)를 이용한 신장 오가노이드 생체 내 이식의 결과를 나타낸 것이다.
이하에서는 첨부한 도면을 참조하여 본 발명을 설명하기로 한다. 그러나 본 발명은 여러 가지 상이한 형태로 구현될 수 있으며, 따라서 여기에서 설명하는 실시예로 한정되는 것은 아니다. 어떤 부분이 어떤 구성요소를 "포함"한다고 할 때, 이는 특별히 반대되는 기재가 없는 한 다른 구성요소를 제외하는 것이 아니라 다른 구성요소를 더 구비할 수 있다는 것을 의미한다.
달리 정의되지 않는 한, 분자 생물학, 미생물학, 단백질 정제, 단백질 공학, 및 DNA 서열 분석 및 당업자의 능력 범위 안에서 재조합 DNA 분야에서 흔히 사용되는 통상적인 기술에 의해 수행될 수 있다. 상기 기술들은 당업자에게 알려져 있고, 많은 표준화된 교재 및 참고저서에 기술되어 있다.
본 명세서에 달리 정의되어 있지 않으면, 사용된 모든 기술 및 과학 용어는 당업계에 통상의 기술자가 통상적으로 이해하는 바와 같은 의미를 가진다.
본 명세서에 포함되는 용어를 포함하는 다양한 과학적 사전이 잘 알려져 있고, 당업계에서 이용가능하다. 본 명세서에 설명된 것과 유사 또는 등가인 임의의 방법 및 물질이 본원의 실행 또는 시험에 사용되는 것으로 발견되나, 몇몇 방법 및 물질이 설명되어 있다. 당업자가 사용하는 맥락에 따라, 다양하게 사용될 수 있기 때문에, 특정 방법학, 프로토콜 및 시약으로 본 발명이 제한되는 것은 아니다. 이하 본 발명을 더욱 상세히 설명한다.
본 발명의 일 양상은 신장 조직 유래 세포외기질(Kidney Extracellular Matrix; KEM)을 이용한 신장 오가노이드 배양 및 이식용 지지체를 제공한다.
상기 “세포외기질(extracellular matrix)”은 포유류 및 다세포 생물(multicellular organisms)에서 발견된 조직의 탈세포화를 통해 제조된 세포 성장용 자연 지지체를 의미한다. 상기 세포외기질은 투석 또는 가교화를 통해 더 처리할 수 있다.
상기 세포외기질은 콜라겐(collagens), 엘라스틴(elastins), 라미닌(laminins), 글리코스아미노글리칸 (glycosaminoglycans), 프로테오글리칸(proteoglycans), 항균제(antimicrobials), 화학유인물질(chemoattractants), 시토카인 (cytokines), 및 성장 인자에 제한되지 않는, 구조형 및 비구조형 생체 분자(biomolecules)의 혼합물일 수 있다.
상기 세포외기질은 포유 동물에 있어서 다양한 형태로서 약 90%의 콜라겐을 포함할 수 있다. 다양한 생체 조직에서 유래한 세포외기질은 각각의 조직에 필요한 고유 역할 때문에 전체 구조체 및 조성이 상이할 수 있다.
상기 “유래(derive)", "유래된(derived)"은 유용한 방법에 의해 언급한 원천으로부터 수득한 성분을 의미한다.
본 발명의 일 구체예로 상기 신장 조직 유래 세포외기질은 Triton X-100 및 수산화암모늄을 혼합한 용액을 이용하여 제조된 것일 수 있다.
본 발명의 일 구체예로 상기 지지체 내 상기 신장 조직 유래 세포외기질의 농도는 1 mg/ml 내지 10 mg/ml, 구체적으로는 1 mg/ml 내지 7 mg/ml 일 수 있다. 상기 신장 세포외기질의 농도의 예시로, 1 mg/ml 내지 7 mg/ml, 1 mg/ml 내지 5 mg/ml, 1 mg/ml 내지 3 mg/ml, 3 mg/ml 내지 7 mg/ml, 3 mg/ml 내지 5 mg/ml 또는 5 mg/ml 내지 7 mg/ml 일 수 있고, 일 실시예로 1 mg/ml, 3 mg/ml, 5 mg/ml 또는 7 mg/ml일 수 있다. 상기 범위외의 농도로 포함될 경우, 본 발명이 목적하는 효과를 얻을 수 없다.
상기 지지체는 탈세포화하여 수득한 신장 조직 유래 세포외기질을 기반으로 제조한 3차원 하이드로젤을 포함하며, 신장 오가노이드 배양에 효과적으로 활용될 수 있다.
상기 탈세포화된 신장 조직은 실제 조직 특이적 세포외기질 성분을 포함하므로 해당 조직의 물리적, 기계적, 생화학적 환경을 제공할 수 있으며, 신장 조직 세포로의 분화 및 조직 특이적 기능성을 증진시키는데 매우 효율적이다.
상기 “오가노이드(organoid)”는 조직 또는 전분화능줄기세포에서 유래된 세포를 3D 형태로 배양하여 인공장기와 같은 형태로 제작한 초소형 생체기관을 의미한다.
상기 오가노이드는 줄기세포에서 발생하고 생체 내 상태와 유사한 방식으로 자가-조직화(또는 자가-패턴화)하는 장기 특이적 세포를 포함한 삼차원 조직 유사체로서 제한된 요소(Ex. growth factor) 패터닝에 의해 특정 조직으로 발달할 수 있다.
상기 오가노이드는 세포의 본래 생리학적 특성을 가지며, 세포 혼합물(한정된 세포 유형뿐만 아니라 잔존 줄기 세포, 근접 생리학적 니치(physiological niche)를 모두 포함) 원래의 상태를 모방하는 해부학적 구조를 가질 수 있다. 상기 오가노이드는 3차원 배양 방법을 통해 세포와 세포의 기능이 더욱 잘 배열되고, 기능성을 가지는 기관 같은 형태와 조직 특이적 기능을 가질 수 있다.
본 발명의 다른 일 양상은 1) 분리된 신장 조직을 파쇄하는 단계; 및 2) 상기 파쇄된 신장 조직에 Triton X-100 및 수산화 암모늄을 처리하여 탈세포하여 탈세포된 신장 조직 유래 세포외기질 (KEM)을 제조하는 단계를 포함하는 신장 오가노이드 배양 및 이식용 지지체 제조방법을 제공한다.
상기 1) 단계는 분리된 신장 조직을 파쇄하는 단계로, 상기 신장 조직은 공지의 동물에서 분리된 것일 수 있고, 상기 동물의 구체적인 예시로, 소, 돼지, 원숭이, 인간 등일 수 있다. 또한 본 발명에서는 상기 분리된 신장 조직을 파쇄한 뒤 탈세포 처리하기 때문에 탈세포의 효율이 높다. 분리된 신장 조직을 파쇄하는 방법은 공지의 방법으로 이루어질 수 있다. 본 발명은 상기 신장 조직을 파쇄하여 탈세포 공정을 거쳤기 때문에 더 효율적이고 높은 수준의 세포 제거가 가능하다.
상기 2) 단계는 상기 파쇄된 신장 조직에 Triton X-100 및 수산화 암모늄을 처리하여 탈세포하여 탈세포된 신장 조직 유래 세포외기질 (KEM)을 제조하는 단계이다. 본 발명은 기존의 탈세포 방식과 달리 Triton X-100 및 수산화 암모늄 만을 처리하여, 조직 손상을 최소화함으로써 신장 조직 내의 다양한 단백질들이 더 많이 보존될 수 있다, 구체적인 예시로 파쇄된 신장 조직을 Triton X-100 및 수산화 암모늄을 함께 교반하면서 탈세포 공정이 이루어질 수 있다.
본 발명의 일 구체예로 상기 2) 단계 이후 3) 상기 탈세포 신장 조직 유래 세포외기질 (KEM)을 동결건조 하여 동결건조 신장 조직 유래 세포외기질을 제조하는 단계를 더 포함할 수 있다.
상기 3) 단계는 상기 탈세포 신장 조직 유래 세포외기질 (KEM)을 동결건조 하여 동결건조 신장 조직 유래 세포외기질을 제조하는 단계이다. 상기 동결건조 신장 조직 유래 세포외기질은 멸균을 위해 건조 후 전자 빔, 감마 방사선, 에틸렌 옥사이드 가스 또는 초임계 이산화탄소에 노출시킬 수 있다.
본 발명의 일 구체예로 상기 3) 단계 이후 4) 상기 동결건조 신장 조직 유래 세포외기질을 하이드로젤 형태의 신장 오가노이드 배양 및 이식용 지지체로 형성하는 단계를 더 포함할 수 있다.
상기 4) 단계는 상기 동결건조 신장 조직 유래 세포외기질을 하이드로젤 형태의 신장 오가노이드 배양 및 이식용 지지체로 형성하는 단계이다. 상기 단계는 젤화 (gelation)를 통해 이루어질 수 있으며, 구체적으로는 상기 동결건조 신장 조직 유래 세포외기질을 펩신 용액에 용해시켜 용액화 한 뒤 pH를 조정하여 하이드로젤화하는 것일 수 있다. 상기 탈세포 신장 조직 유래 세포외기질을 가교시켜 3차원 하이드로젤 형태의 지지체를 제작할 수 있고, 겔화된 지지체는 실험, 스크리닝 뿐만 아니라 오가노이드 배양과 관련된 분야에서 다양하게 활용될 수 있다.
상기 “하이드로젤”은 졸-겔 상변이를 통해 물을 분산매로 하는 액체가 굳어 유동성을 상실하고 다공성 구조를 이루는 물질로서, 3차원 망목 구조와 미결정 구조를 갖는 친수성 고분자가 물을 함유하여 팽창함으로써 형성될 수 있다.
상기 젤화는 동결건조 신장 조직 유래 세포외기질을 산성 용액에서 펩신 또는 트립신과 같은 단백질 분해 효소로 용액화하고, pH를 조정, 구체적으로 10X PBS와 1 M NaOH를 이용하여 중성 pH와 1X PBS 버퍼의 전해질 상태로 맞추고 37℃의 온도에서 30분 동안 이루어지는 것일 수 있다.
본 발명의 다른 일 양상은 상기 지지체 또는 상기 제조방법에 의해 제조된 지지체에서 신장 오가노이드를 배양하는 방법을 제공한다.
기존의 매트리젤 기반 배양 시스템은 동물 암조직 유래의 추출물로서 배치 간의 차이가 크고 실제 간의 환경을 모사해주지 못하고, 신장 오가노이드로 분화, 발달되는 효율이 미흡한 반면, 상기 지지체는 신장 조직 유사 환경을 조성할 수 있으므로 신장 오가노이드 배양에 있어서 적합하다.
상기 배양은 적합한 조건에서 세포를 유지 및 성장시키는 과정을 의미하며, 적합한 조건은 예컨대, 세포가 유지되는 온도, 영양소 가용성, 대기 CO2 함량 및 세포 밀도를 의미할 수 있다.
서로 다른 유형의 세포를 유지, 증식, 확대 및 분화시키기 위한 적절한 배양 조건은 당해 기술분야에 공지되어 있고, 문서화 되어있다. 상기 오가노이드 형성에 적합한 조건은 세포 분화 및 다세포 구조의 형성을 용이하게 하거나 허용하는 조건일 수 있다.
본 발명에서 개발된 탈세포 신장 조직 유래 세포외기질 지지체는 최소화된 화학적 처리 방식을 통해 제작이 가능하기 때문에 기존의 탈세포 방식으로 제조된 지지체와 비교하여 조직 특이적 성분의 손상이 적고 제작 시간 및 비용 절감 측면에서 더욱 효율적이며 대량 생산도 용이한 장점이 있다. 따라서, 기존 탈세포 매트릭스와 비교하여 상용화 측면에서 더욱 유리할 것으로 전망된다.
본 발명에서 개발된 탈세포 신장 조직 유래 지지체는 면역원성을 지니는 세포들이 모두 제거된 반면, 실제 신장 조직에 함유된 다양한 세포외기질 성분 및 성장인자들은 잘 보존되어 있음을 확인하였다. 단백체 분석을 통해 신장 조직에 중요한 세포외기질 성분 및 관련 단백질들을 파악하였다. 따라서 탈세포 신장 조직 유래 매트릭스는 신장 조직 특이적 미세환경을 제공하여 신장 오가노이드의 효율적인 배양을 가능하게 하였다.
실제로 본 발명에서는 개발된 탈세포 신장 조직 유래 하이드로젤 내에서 신장 오가노이드의 형성과 분화가 성공적으로 유도됨을 확인하였다. 다양한 세포외기질 농도의 탈세포 지지체를 제작하고 이를 신장 오가노이드 배양에 적용하여 가장 효율적인 신장 오가노이드 배양이 가능한 최적의 농도 조건을 선정하였다.
개발된 탈세포 지지체에서 배양한 신장 오가노이드와 대조군으로 사용된 매트리젤 지지체에서 배양한 신장 오가노이드를 비교 분석해 보았을 때, 탈세포 지지체에서 배양한 신장 오가노이드의 분화가 더 증진되었음을 확인하였다. 이러한 결과를 바탕으로 탈세포 지지체에서 배양한 신장 오가노이드가 기존의 방식으로 배양한 신장 오가노이드보다 실제 신장 조직을 더욱 정확하고 정밀하게 재현할 수 있음을 확인하였다. 결과적으로 탈세포 신장 조직 유래 지지체가 실제로 신장 오가노이드의 효율적인 분화와 발달에 기여함을 확인하여 매트리젤 대체재로서의 가능성을 보여준다.
이하, 본 발명의 이해를 돕기 위하여 바람직한 실시예를 제시한다. 그러나 하기의 실시예는 본 발명을 보다 쉽게 이해하기 위하여 제공되는 것일 뿐, 하기 실시예에 의해 본 발명의 내용이 한정되는 것은 아니다.
신장 오가노이드 배양을 위한 탈세포 신장 조직 유래 세포외기질(Kidney Extracellular Matrix; KEM) 지지체 제작(도 1)
신장 오가노이드 배양 지지체를 제작하기 위하여 돼지 신장 조직을 탈세포 공정 처리하여 세포외기질 기반 지지체(Kidney Extracellular Matrix; KEM)를 제작하였다. 본 발명에서 사용된 탈세포 공정은 기존 방식보다 완화된 조건인 1% Triton X-100과 0.1% ammonium hydroxide를 혼합한 용액만을 사용한다는 점에서 기존의 탈세포 방법들과 차별화를 두었고, 따라서 조직 손상을 최소화함으로써 신장 조직 내의 다양한 세포외기질 및 성장인자 단백질들을 더 많이 보존할 수 있었다. 또한, 신장 조직을 잘게 자른 후에 탈세포화 처리를 진행하였기 때문에 조직으로부터 더욱 효과적이고 확실한 세포 성분(DNA) 제거가 가능하다는 장점을 보유하였다.
(A) 돼지 신장 조직을 작은 조각들로 자른 다음 일련의 화학적 처리를 거쳐 조직 내 대부분의 세포들을 제거하여 탈세포화를 진행하였다. 그 후 이를 동결 건조하여 파우더 형태의 탈세포 신장 조직 매트릭스(Lyophilized KEM)를 제작하였다.
(B) 신장 조직의 세포외기질을 함유하는 파우더 형태의 탈세포 신장 조직 매트릭스(Lyophilized KEM) 10 mg에 4 mg/ml 펩신 용액(돼지 위 점막 유래 펩신 파우더 4 mg를 0.02 M HCL 1 ml에 녹인 용액)을 처리한 후 상온에서 48시간 동안 용액화 시켰다. 10X PBS와 1 M NaOH를 용액화된 KEM에 알맞은 비율로 첨가하고 균일하게 섞어주어 세포 배양이 가능한 중성 pH와 1X PBS 버퍼의 전해질 상태로 맞추어 주었다. 마지막으로 인큐베이터 내 37℃ 온도 조건에서 30분 동안 겔화(gelation)을 유도하였다. 유리 용기에서 겔화를 유도하여 형성된 KEM 하이드로젤이 용기를 뒤집어도 흘러내리지 않는다는 것을 통해 온도에 따른 가교반응을 통하여 고형화된 하이드로젤이 제조되었음을 확인하였다.
신장 오가노이드 배양을 위한 탈세포 신장 조직 유래 KEM 지지체 분석(도 2)
돼지의 신장 조직으로부터 탈세포 신장 조직 유래 세포외기질 지지체(Kidney Extracellular Matrix, KEM)를 제작하고 특성을 분석하였다.
(A) H&E 조직 염색 분석을 통해 탈세포 과정 후, 조직의 세포핵이 대부분 제거된 반면 전반적인 구조는 잘 유지가 되어있는 것을 확인하였다. 또한 Masson’s Trichrome 염색을 통해 collagen 역시 잘 보존된 것을 확인하였고, Alcian blue 염색을 통해 GAG 성분이 잘 보존되어 유지되는 것을 확인하였다.
(B) 탈세포 과정 후에도 신장 조직의 ECM 단백질이 잘 보존되는지 확인하기 위해 면역염색을 진행하였다. 탈세포 공정 이후에도 fibronectin과 laminin과 같은 주요 ECM 단백질들이 잘 유지되었음을 확인하였다.
(C) 주사전자현미경 (Scanning electron microscopy, SEM)을 이용해 탈세포 신장 조직 유래 KEM 하이드로겔의 내부 구조를 관찰했을 때 콜라겐 나노섬유 특이적인 다공성 미세구조로 구성되어 있음을 확인하였다. 따라서 KEM 하이드로젤이 신장 오가노이드 배양에 적합한 구조적 미세환경을 제공해 줄 수 있을 것으로 생각된다.
(D) 탈세포 전 신장 조직 (Native)과 탈세포 후 신장 조직 (Decell)에 대해서 DNA 정량과 GAG (Glycosaminoglycans) 정량 분석을 실시하였다. 탈세포 전후 결과를 비교해 보았을 때 탈세포 공정 후에 DNA가 96.8% 이상 제거되어 효율적으로 세포가 제거되었음을 확인하였다. 또한, 탈세포 공정 후에도 GAG는 실제 신장 조직과 비슷한 수준으로 잘 보존되었음을 확인하였고, collagen 역시 잘 유지되어 존재하는 것을 확인하였다.
탈세포 신장 조직 유래 하이드로젤 지지체의 KEM 농도에 따른 물성 분석(도 3)
탈세포 신장 조직 유래 세포외기질(KEM)을 이용하여 4가지 농도의 하이드로젤 지지체를 제작한 뒤, 각 농도에 따른 물성 변화를 측정하였다. 모든 농도 조건의 젤은 37℃의 인큐베이터에서 30분 동안의 가교반응을 통해 제작되었다. 가장 낮은 농도인 1 mg/ml의 농도 조건을 포함한 모든 농도 조건에서 storage modulus(G′) 값이 loss modulus(G″) 값 보다 일관되게 높음을 확인하였다. 이로 인해 하이드로젤 내 가교를 통해 안정적인 고분자 네트워크가 형성됨을 확인했고 KEM 농도가 증가할수록 기계적 물성(modulus)도 높아지는 것을 확인하였다.
신장 오가노이드 배양을 위한 탈세포 신장 조직 유래 KEM 지지체의 단백체 분석(도 4)
탈세포 신장 조직 유래 KEM 지지체에 함유된 세포외기질 성분을 확인하기 위해 단백체 분석 (Proteomics)을 실시하였다.
단백체 분석을 통해 제작된 탈세포 신장 조직 유래 지지체인 KEM 하이드로젤에는 다양한 종류의 collagens, glycoproteins, proteoglycans 등의 세포외기질 성분들이 포함되어 있고, 이 외에도 조직 내 세포에서 분비되어 주로 세포외기질과 결합되어 있는 상태로 존재하는, 성장인자, 응고인자, 사이토카인 등의 다양한 인자(secreted factors)들도 함께 함유되어 있다는 것을 확인하였다.
KEM 하이드로젤을 구성하는 주요 10가지 ECM 중에서 큰 비중을 차지하는 collagen type VI (COL6)는 신장 사구체 세포외기질의 주요 구성 성분으로서 신장 조직형성에 중요한 역할을 수행하고, Laminin (LAM) 당단백질은 기저막의 주요 성분으로서 신장세포 및 조직 분화, 항상성 및 생존에 관여하였다. 또한, biglycan (BGN) 프로테오글리칸은 신장의 면역반응의 조절에 있어서 중요한 매개자 역할을 한다.
이에 더해 KEM 지지체에는 다른 조직에 비해 신장 조직에서 4배 이상 발현이 높은 단백질 (Top 10 kidney-elevated protein)들이 존재한다는 것을 확인하였다.
따라서, KEM 하이드로젤 내에서 관찰되는 실제 신장 조직에 존재하는 이러한 다양한 단백질들이 신장 오가노이드 형성 및 발달을 유도할 수 있을 것으로 기대된다.
신장 오가노이드 배양을 위한 탈세포 신장 조직 유래 KEM과 매트리젤 지지체의 단백체 비교 분석(도 5)
신장 오가노이드 배양을 위한 탈세포 신장 조직 유래 KEM과 매트리젤 지지체의 단백체를 비교 분석하였다. 구체적으로
(A) 탈세포 신장 조직 유래 KEM 지지체와 매트리젤의 구성성분 비교 결과, 매트리젤은 대부분이 glycoproteins으로만 이루어진 반면, KEM은 glycoproteins을 포함한 다양한 collagens와 proteoglycans 등으로 구성되어 있음을 확인하였다.
(B) 유전자 온톨로지(Gene Ontology) 분석을 통해 탈세포 신장 조직 유래 KEM 지지체에 포함된 주요 Top 10 ECM 성분의 기능과 기존의 매트리젤 지지체의 주성분의 기능을 비교해 보았을 때, KEM 지지체에 신장이 관여하는 질소화합물 대사 과정과 관련된 단백질들이 매트리젤 보다 더 많이 존재함을 확인하였다.
(C) 매트리젤과 KEM의 단백질 발현 패턴을 비교하기 위해 히트맵 (heatmap)과 volcano plot으로 분석한 결과, 두 지지체에 포함되어 있는 단백질들의 구성이 매우 상이한 것을 확인하였다. 또한, volcano plot 분석을 통해 각 지지체에서 유의미하게 더 많이 발현되는 단백질들끼리 비교해 보았을 때에도 발현 경향이 확연히 다른 것을 확인하였다.
신장 오가노이드 배양을 위한 탈세포 신장 조직 유래 KEM 하이드로젤 지지체의 최적 농도 선정(도 6)
마우스 신장 조직으로부터 tubular fragment를 추출하였다. 신장 오가노이드 배양에 가장 적합한 최적농도의 KEM 하이드로젤을 선정하기 위해 우선 다양한 농도 조건의 KEM 하이드로젤을 제작하였다. 추출한 tubular fragment를 각 농도의 탈세포 신장 조직 유래 KEM 하이드로젤 지지체에 균일하게 섞어준 후 삼차원 배양을 진행하여 신장 오가노이드의 형성을 유도하였다. 배양 7일차에 계대 배양을 진행하고 5일 동안 추가 배양하여, 총 배양 12일차에 각 KEM 농도 조건에서 형성된 신장 오가노이드의 형태와 형성 효율 그리고 유전자 발현을 확인하였다. 매트리젤은 대조군으로 이용되었다.
(A) 1 mg/ml의 농도 조건을 제외한 나머지 농도 조건의 KEM 하이드로젤에서 신장 오가노이드가 형성되었으며 대조군으로 이용된 매트리젤에서 배양된 오가노이드와 유사하게 구형의 형태로 형성되는 것을 확인하였다. 1 mg/ml 농도의 하이드로젤에서는 오가노이드가 형성되지 않았다.
(B) 계대배양 시점을 기준으로 0일차와 5일차의 오가노이드 수를 각각 측정한 후 이를 비율로 나타내어 형성 효율을 측정하였다. 각 KEM 농도 별로 신장 오가노이드의 형성 효율을 비교해 보았을 때, KEM 하이드로젤에서의 형성 효율이 전반적으로 매트리젤에 비해 낮지만, 7 mg/ml 농도의 KEM 하이드로젤에서 가장 높은 형성 효율을 보여줌을 확인하였다.
(C) 각 농도별로 제작된 KEM 하이드로젤에서 12일간 신장 오가노이드를 배양한 후, 분화 마커에 대한 유전자 발현을 정량적 qPCR 분석을 통해 비교 분석하였다. 신장의 특정세포에서 발현하는 유전자인 Aqp1(proximal tubule cell)은 KEM의 농도가 증가할수록 낮아지는 경향을 보이지만 모든 농도의 KEM에서 매트리젤 그룹 보다 유의미하게 높고, Scl12a1(loop of Henle cell)은 대체로 매트리젤 그룹과 유사한 발현 수준으로 보이나 7 mg/ml 농도의 KEM에서는 유의미하게 증가하였다. 또한 Aqp2(collecting duct cell) 유전자는 7 mg/ml 농도의 KEM에서 매트리젤 그룹과 가장 유사한 수준으로 발현되었다.
위의 분석들을 통하여 1 mg/ml 농도의 KEM 하이드로젤을 제외한 모든 농도에서 오가노이드의 배양은 가능하지만, 종합적으로 보았을 때 7 mg/ml KEM 농도 조건에서 신장 오가노이드의 분화능이 가장 우수함을 확인하였다.
탈세포 신장 조직 유래 KEM 하이드로젤 지지체에서 배양된 신장 오가노이드의 증식 및 분화 마커 발현 분석(세포 면역염색 분석)(도 7)
배양 12일 차에 면역염색을 통해 각종 마커 발현 분석을 진행해 보았을 때, 신장 오가노이드 특이적인 분화 마커인 AQP3(collecting duct cell)과 CALB1(distal tubule cell) 모두 대조군인 매트리젤과 모두 비슷한 수준으로 잘 발현이 되는 것을 확인하였다.
또한, 세포 간 밀착연접(tight-junction)에 관여하는 마커인 ZO-1도 모든 농도의 KEM 하이드로젤에서 배양된 신장 오가노이드에서 잘 발현되는 것을 확인하였다.
오가노이드의 증식과 관련된 마커인 KI67 역시 모든 농도의 KEM 하이드로젤에서 배양된 신장 오가노이드에서 잘 발현이 되는 것을 확인하였다.
탈세포 신장 조직 유래 KEM 하이드로젤 지지체에서 형성된 신장 오가노이드 성장 양상(도 8)
배양 7일차에 계대 배양을 진행한 이후로부터 Day 1 ~ Day 4까지 매트리젤과 탈세포 신장 조직 유래 KEM 하이드로젤(5 mg/ml, 7mg/ml)에서 각각 배양한 신장 오가노이드의 성장 양상을 비교 관찰하였다.
각 농도의 KEM 하이드로젤에서 모두 매트리젤과 비슷한 양상을 보이며 오가노이드가 성장하였고 4일 동안 잘 배양되는 것을 확인하였다.
탈세포 신장 조직 유래 세포외기질 지지체(Kidney Extracellular Matrix, KEM)에서 장기 배양한 생쥐 신장 오가노이드 분석 (도 9)
(A) 탈세포 KEM 하이드로젤과 매트리젤에서 신장 오가노이드를 52일까지 장기 배양을 시도했을 때 9번의 계대배양을 진행하여도 두 지지체에서 모두 오가노이드가 유사한 구형의 모양과 크기를 잘 유지하며 배양되는 것을 확인하였다.
(B) 각각의 배양 지지체에서 52일 동안 9번의 계대배양을 진행한 신장 오가노이드의 Pax8 (renal progenitor cell) 과 Aqp1 (proximal tubule cell)의 mRNA 발현양을 비교해본 결과, 두 배양 지지체에서 Pax8은 비슷한 수준으로 발현되었고, Aqp1의 발현은 KEM 하이드로젤에서 더 높게 발현되었음을 확인하였다.
(C) 각각의 배양 지지체에서 9번의 계대배양을 진행한 오가노이드를 PAX8 (renal progenitor cell), Villin (proximal tubule cell), AQP3 (collecting duct cell), CALB1 (distal tubule cell) 항체를 사용하여 면역염색을 진행하였다. 면역염색 결과, 신장의 세뇨관을 구성하는 4종류의 세포들이 52일차까지도 이들 마커 발현을 잘 유지하면서 배양된다는 것을 확인하였고, cell-cell interaction에 관여하는 cytoskeleton 마커인 F-actin도 잘 발현되는 것을 확인하였다.
이를 통해 KEM 하이드로젤에서 신장 오가노이드가 2달 이상으로 지속적인 장기 배양이 가능하는 것을 입증하였고, 상용화된 오가노이드 배양 매트릭스인 매트리젤과 비교하여 신장의 다양한 세포타입 마커들이 유사하거나 또는 그 이상의 수준으로 발현됨을 확인하였다.
탈세포 신장 조직 유래 세포외기질 지지체(Kidney Extracellular Matrix, KEM)의 장기 보관 가능성 검증 (도 10, 11)
먼저 탈세포 신장 조직 유래 세포외기질 지지체(Kidney Extracellular Matrix, KEM)의 장기 냉장 보관 가능성을 검증하였다 (도 10).
(A) 탈세포 신장 조직 유래 KEM 용액 (농도 7 mg/ml)을 4 ℃에서 최대 한 달 동안 냉장 보관하고, 이를 신장 오가노이드 배양에 이용하여 KEM 하이드로젤의 장기 보관 가능 여부와 안정성 여부를 확인하였다.
(B) 배양 직전에 새로 제작한 KEM 용액으로 제작한 하이드로젤과 (Day 0), 일주일 (Day 7) 및 1개월 (Day 31) 동안 냉장 보관한 KEM 용액으로 제작한 하이드로젤 지지체 모두에서 매트리젤과 비슷한 수준으로 신장 오가노이드 형성과 배양이 잘 되는 것을 확인하였다. (배양 12일차, 계대배양 1번 진행한 오가노이드 이미지) 계대배양 직후와 4일간 추가 배양한 이후 오가노이드 수를 각각 측정하고 이를 비율로 나타내어 오가노이드 형성 효율을 측정하였다.
(C) 정량적 qPCR 분석을 진행하였을 때, KEM 하이드로젤 그룹에서 stemness와 연관된 Pax8 유전자는 매트리젤 그룹과 비슷한 수준으로 발현이 되었다. 신장 특이적 마커인 Aqp1 (proximal tubule cell)은 매트리젤 그룹보다 KEM 하이드로젤 그룹에서 전반적으로 mRNA 발현양이 높게 관찰되었다. (배양 12일차, 계대배양 1번 진행한 오가노이드를 샘플로 분석 진행)
(D) 오가노이드 면역염색 분석 결과, 신장 특이적 마커들인 AQP3 (collecting duct cell), CALB1 (distal tubule cell)과 PAX8 (renal progenitor cell)이 KEM 하이드로젤 조건에서도 매트리젤에서와 유사한 수준으로 잘 발현됨을 확인하였다.
본 실험을 통해 탈세포 신장 조직 유래 KEM 하이드로젤 용액을 액상으로 냉장 보관하여도 최소 한달까지 활성 및 기능에 영향 없이 장기 보관이 가능하다는 것을 확인하였다. 이는 제품 개발에 있어 중요한 KEM 하이드로젤의 장기 보관 가능성을 입증하는 결과이다.
그리고 탈세포 신장 조직 유래 세포외기질 지지체(Kidney Extracellular Matrix, KEM)의 장기 냉동 보관 가능성을 검증하였다 (도 11).
(A) 탈세포 신장 조직 유래 KEM 용액 (농도 7 mg/ml)을 -80 ℃에서 최대 3달 동안 냉동 보관하고, 이를 다시 녹여서 신장 오가노이드 배양에 이용함으로써 KEM의 장기 보관 가능 여부와 안정성 여부를 확인하였다.
(B) 배양 직전에 새로 제작한 KEM 용액으로 제작한 하이드로젤과 (Day 0), 일주일 (Day 7) 및 3달 (Day 90) 동안 냉동보관한 KEM 용액으로 제작한 하이드로젤 배양 지지체 모두에서 매트리젤과 비슷한 수준으로 신장 오가노이드의 형성과 배양이 잘 되는 것을 확인하였다. (배양 12일차, 계대배양 1번 진행한 오가노이드 이미지)
(C) 정량적 qPCR 분석을 실시하였을 때, KEM 하이드로젤 그룹에서 stemness와 연관된 Pax8 유전자는 매트리젤 그룹과 비슷한 수준으로 발현이 되었다. 또한 신장 특이적 마커인 Aqp1 (proximal tubule cell)은 매트리젤 그룹 보다 KEM 하이드로젤 그룹에서 mRNA 발현양이 높음을 확인하였다. (배양 12일차, 계대배양 1번 진행한 오가노이드를 샘플로 분석 진행)
(D) 면역염색 분석 결과, 신장 특이적 마커인 AQP3 (collecting duct cell)이 KEM 하이드로젤 조건에서도 매트리젤에서와 유사한 수준으로 잘 발현됨을 확인하였다.
본 실험을 통해 탈세포 신장 조직 유래 KEM 하이드로젤 용액을 냉동 조건 (-80 ℃)에서 얼려서 보관을 하여도 최소 3개월까지 활성 및 기능에 영향 없이 안정적으로 장기 보관이 가능하다는 것을 확인한 것이다.
신장 오가노이드 배양을 위한 탈세포 신장 조직 유래 세포외기질 지지체(Kidney Extracellular Matrix, KEM)의 조직 특이적 효과 확인 (도 12)
탈세포 신장 조직 유래 KEM 지지체에 함유된 신장 특이적인 세포외기질 성분들이 신장 오가노이드의 형성과 발달에 미치는 조직 특이적인 효과를 입증하기 위해 다른 장기 유래 탈세포 지지체들에서도 신장 오가노이드를 배양한 후 비교 분석을 진행하였다.
(A) 신장(KEM), 장(IEM), 근육(MEM), 피부(SkEM), 심장(HEM) 유래 탈세포 하이드로젤 지지체에 신장 오가노이드를 배양한 결과, 7일차에 피부와 심장 유래 탈세포 지지체에서는 신장 오가노이드가 제대로 형성되지 않은 것을 확인하였다. 또한, 계대배양을 한번 진행하고 4일동안 추가 배양한 경우에는(총 11일 배양) 탈세포 신장 조직 유래 지지체를 제외한 나머지 탈세포 조직 지지체들에서 모두 오가노이드 크기가 작게 형성된 것을 관찰했고, 심장 유래 지지체에서는 7일차와 동일하게 오가노이드가 형성되지 않은 것을 확인하였다.
(B) 신장 오가노이드 형성 효율의 정량 분석 결과, 신장 유래의 탈세포 KEM 지지체에서 형성 효율이 가장 높았고 다른 장기 유래의 탈세포 지지체에서는 형성 효율이 유의미하게 감소함을 확인할 수 있었다. 계대배양 직후 및 추가 배양 4일 후에 오가노이드 수를 각각 측정한 후 이를 비율로 나타내어 형성 효율을 측정하였다.
(C) 각 장기 유래 탈세포 하이드로젤 지지체에서 11일동안 배양된 신장 오가노이드의 마커 단백질 발현양을 비교하기 위해 세포 증식과 관련된 KI67 항체와 collecting duct cell과 연관 있는 AQP3 항체를 사용하여 면역염색을 진행하였다. KEM 하이드로젤 지지체에서 배양된 신장 오가노이드의 경우 가장 뚜렷한 마커 발현을 보여주었고, 나머지 다른 조직 유래 지지체에서 배양된 오가노이드에서는 모두 상대적으로 미세한 발현만 관찰되거나 제대로 구조가 형성되지 못하였음을 확인할 수 있다.
본 실험을 통해 신장 조직 유래 KEM 하이드로젤의 신장 오가노이드 형성과 발달에 미치는 조직 특이적 효과를 알 수 있다.
탈세포 신장 조직 유래 세포외기질 지지체(Kidney Extracellular Matrix, KEM)에서 배양된 신장 오가노이드의 기능성 분석 (도 13)
탈세포 신장 조직 유래 KEM 하이드로젤에서 배양한 신장 오가노이드가 생체 내 신장의 기능성을 잘 구현할 수 있는 여부를 확인하기 위한 분석을 진행하였다. 신장 오가노이드를 구성하는 여러 세포 타입들 중 하나인 근위 세뇨관 세포에 존재하는 P-glycoprotein (P-gp) xenobiotics efflux pump의 기능성을 확인하기 위해 P-gp 억제제인 verapamil을 처리한 후, calcein AM에 노출시켜 세포 내에 calcein AM의 축적 정도를 형광으로 확인하였다.
(A) Verapamil을 처리하지 않은 조건에서는 P-gp가 calcein을 세포 밖으로 배출시켜 형광 신호가 오가노이드 내에 거의 축적되지 않음을 확인하였다 (No treatment 그룹). Verapamil 약물의 처리 농도가 높아질수록 calcein이 세포 내부에 축적되어 상대적으로 오가노이드 내에서 형광이 더 높게 발현되는 것을 확인하였다.
(B) Verapamil 약물을 처리하지 않은 조건과 100 μM verapamil을 처리한 조건에서 신장 오가노이드 내 calcein 형광 세기를 정량한 결과, verapamil을 처리한 조건에서 유의미하게 형광 세기가 증가한 것을 확인하였다.
이를 통해 KEM 하이드로젤에서 배양한 신장 오가노이드가 외부 물질을 배출하는 efflux pump 기능성을 보유하고 있음을 알 수 있다.
탈세포 신장 조직 유래 세포외기질 지지체(Kidney Extracellular Matrix, KEM)에서 배양된 생쥐 신장 오가노이드를 이용한 신장 섬유증 모델 제작 (도 14)
KEM 하이드로젤에서 배양된 신장 오가노이드를 이용하여 신장 섬유증 질환 모델을 제작하였다. 이를 위해 마우스 신장 오가노이드에 TGF-b 약물을 처리하여 신장 섬유화를 유발하였다. 신장 오가노이드 배양 9일차에 (7일차에 계대배양 1번 진행 후, 2일 동안 추가적으로 배양) 각 농도별로 3일간 처리해주었고, 12일차에 분석을 진행하고, TGF-β를 처리하지 않은 신장 오가노이드 (NT, No treatment)를 대조군으로 비교하였다.
(A) 신장 섬유증 모델을 제작하기 위해 TGF-β를 농도별로 처리한 결과, TGF-β를 처리하지 않은 신장 오가노이드는 잘 성장하였으나, TGF-β를 처리한 신장 오가노이드는 형태적 변이가 일어났고, 성장이 잘 일어나지 않음을 확인하였다.
(B) 신장 섬유증 관련 마커인 Acta2와 Col1a1에 대한 qPCR 분석을 진행한 결과, 처리하는 TGF-β의 농도가 높아질수록 섬유화 마커 mRNA의 발현이 비례적으로 증가하는 것을 확인하였다.
(C) 신장 섬유화 관련 마커인 Vimentin, COL1 (collagen type 1), α-SMA (alpha smooth muscle actin)의 발현을 면역염색을 통해 확인하였다. 7 mg/ml KEM에서 배양한 신장 오가노이드에 TGF-β를 처리하였을 때, KEM 하이드로젤이 수축하면서 섬유화가 유발된 오가노이드들이 한 덩어리로 합쳐지는 현상을 확인하였다. 면역염색 결과, TGF-β를 처리한 신장 오가노이드에서 모든 섬유증 마커들의 발현이 증가하는 것을 확인하였고, 매트리젤과 KEM 지지체에서의 신장 오가노이드들이 모두 비슷한 섬유화 마커 발현 양상을 보이는 것을 확인하였다.
본 실험을 통해 KEM 하이드로젤 지지체에서 배양된 신장 오가노이드를 기반으로 신장 섬유증 질환 모델의 제작 가능성을 확인할 수 있다.
탈세포 신장 조직 유래 세포외기질 (Kidney Extracellular Matrix, KEM) 지지체의 생체적합성 확인 (도 15)
탈세포 신장 조직 유래 KEM 하이드로젤 지지체가 신장 오가노이드 이식용 소재로서 적합한지 확인하기 위해 탈세포 신장 조직 유래 5 mg/ml KEM 지지체를 마우스 피하조직에 이식한 후, 조직학 분석을 진행하였다. 이식된 KEM 하이드로젤 지지체 내로의 염증세포의 침윤 정도를 확인하기 위해 H&E 염색을 진행하였고, 면역반응으로 인해 발생한 비만세포 (mast cell)의 유무를 확인하기 위해 Toluidine blue 염색을 진행하였다. 분석 결과, KEM 하이드로젤을 이식한 부위에서 염증관련 세포들이 발견되지 않았음을 통해 KEM 하이드로젤 이식 시 생체 내에서 면역반응이나 염증반응은 거의 유발되지 않는다는 것을 확인하였다.
탈세포 신장 조직 유래 세포외기질 지지체(Kidney Extracellular Matrix, KEM)를 이용한 신장 오가노이드 생체 내 이식 결과 (도 16, 17)
탈세포 신장 조직 유래 KEM 하이드로젤을 오가노이드 이식 소재로서 활용 가능한지 확인하기 위해 마우스 신장 신피막 (kidney capsule)에 KEM 하이드로젤을 이용하여 신장 오가노이드를 이식하였다. 이식한 세포들의 생착과 존재여부를 확인하기 위해 DiI 형광 dye로 표지된 신장 오가노이드를 사용하였고, 신장 조직 내로 이식 효율을 높이기 위한 하이드로젤 점도를 맞추기 위해 KEM 하이드로젤을 1:20 (v/v) (KEM : 배양액 조성) 비율로 혼합하여 생체 내로 이식하였다.
생체 내로 이식한 신장 오가노이드의 생착 정도를 관찰하기 위해 이식 후 4일차에 신장 조직을 수득하여 조직학 분석을 진행하였다. 그 결과, 도 16에서 확인되는 바와 같이 신피막 안쪽에 형광 신호의 존재를 확인하였고, 따라서 이식된 오가노이드가 조직에 잘 생착된 것을 확인하였다.
탈세포 신장 조직 유래 KEM 하이드로젤 지지체가 신장 오가노이드 이식용 소재로서 활용 가능한지 확인하기 위해 동물 실험과 조직학 분석을 진행하였다. 급성 신손상 (acute kidney injury, AKI) 모델을 유발하기 위해 10 mg/kg cisplatin 약물을 마우스 복강 내에 1회 주입하고 다음 날 이식 효율 및 생착을 증진시키기 위해 25 ㎕의 7 mg/ml의 KEM 하이드로젤을 이용하여 600~700개의 신장 오가노이드를 마우스 신장 capsule에 이식하였다. 이식 14일차에 각 그룹 마우스의 신장 조직들을 수득하여 H&E 염색과 면역염색 분석을 진행하였다.
그리고, 신장 손상 동물모델에서 신장 오가노이드의 생체 내 이식 가능성을 확인하였다 (도 17)
(A) H&E 염색 결과, 오가노이드가 이식되지 않은 손상된 신장 조직에서는 급성 신손상의 대표적인 양상인 급성 세뇨관 괴사(acute tubular necrosis, ATN)와 충혈 (hyperemic kidney) 부위가 광범위하게 관찰되었다. 이에 반해, KEM 지지체를 이용하여 신장 오가노이드를 이식한 경우에는 손상된 신장 조직의 피질 부위에 신장 오가노이드들이 잘 생착하였고 치료를 받지 않은 대조군 신장 조직보다 상대적으로 손상 부위가 크게 줄어든 것을 확인하였다. 또한, 급성 신손상의 증상 중 하나인 사구체 구조의 수축 정도를 확인하기 위해 사구체 면적 정량분석을 실시한 결과, 신장 오가노이드를 이식한 신장 조직의 경우 이식되지 않은 조직보다 덜 손상된 사구체 구조를 유지하고 있음을 확인하였다.
(B) 각 조건에서 급성 신손상의 주요 증상 중 하나인 근위 세뇨관의 세포사멸 정도를 확인하기 위해 근위 세뇨관 마커인 Villin에 대한 면역염색을 진행하였다. 그 결과, 오가노이드가 이식되지 않은 손상된 신장조직 보다 오가노이드를 이식한 신장 조직에서 근위 세뇨관의 비율이 유의미하게 높음을 확인하였고, 따라서 이식된 오가노이드가 손상 부위에 생착하여 근위세뇨관의 재생이 이루어짐을 확인하였다.
본 실험을 통해 KEM 하이드로젤 지지체가 신장 질환 모델을 치료하기 위한 오가노이드 이식용 소재로서 활용될 수 있고, 손상된 조직 내 오가노이드의 생착 효율을 향상시키고 동시에 신장 구조 회복을 유도할 수 있음을 입증하였다.
전술한 본 발명의 설명은 예시를 위한 것이며, 본 발명이 속하는 기술분야의 통상의 지식을 가진 자는 본 발명의 기술적 사상이나 필수적인 특징을 변경하지 않고서 다른 구체적인 형태로 쉽게 변형이 가능하다는 것을 이해할 수 있을 것이다. 그러므로 이상에서 기술한 실시예들은 모든 면에서 예시적인 것이며 한정적이 아닌 것으로 이해해야만 한다.
Claims (8)
- 신장 조직 유래 세포외기질(Kidney Extracellular Matrix; KEM)을 이용한 신장 오가노이드 배양 및 이식용 지지체.
- 제1항에 있어서,상기 신장 조직 유래 세포외기질은 Triton X-100 및 수산화암모늄을 혼합한 용액을 이용하여 제조된 것인, 지지체.
- 제1항에 있어서,상기 지지체 내 상기 신장 조직 유래 세포외기질의 농도는 1 mg/ml 내지 10 mg/ml인, 지지체.
- 1) 분리된 신장 조직을 파쇄하는 단계; 및2) 상기 파쇄된 신장 조직에 Triton X-100 및 수산화 암모늄을 처리하여 탈세포하여 탈세포된 신장 조직 유래 세포외기질 (KEM)을 제조하는 단계를 포함하는 신장 오가노이드 배양 및 이식용 지지체 제조방법.
- 제4항에 있어서,상기 2) 단계 이후 3) 상기 탈세포 신장 조직 유래 세포외기질 (KEM)을 동결건조 하여 동결건조 신장 조직 유래 세포외기질을 제조하는 단계를 더 포함하는 신장 오가노이드 배양 및 이식용 지지체 제조방법.
- 제5항에 있어서,상기 3) 단계 이후 4) 상기 동결건조 신장 조직 유래 세포외기질을 하이드로젤 형태의 신장 오가노이드 배양 및 이식용 지지체로 형성하는 단계를 더 포함하는 신장 오가노이드 배양 및 이식용 지지체 제조방법.
- 제 6항에 있어서,상기 4) 단계는 상기 동결건조 신장 조직 유래 세포외기질을 펩신 용액에 용해시켜 용액화 한 뒤 pH를 조정하여 하이드로젤화 하는 것인 신장 오가노이드 배양 및 이식용 지지체 제조방법.
- 제1항의 지지체 또는 제4항의 제조방법에 의해 제조된 지지체에서 신장 오가노이드를 배양하는 방법.
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|---|---|---|---|---|
| KR20150074672A (ko) * | 2013-12-24 | 2015-07-02 | 연세대학교 산학협력단 | 세포 배양 및 세포 분화를 위한 탈세포화 기관 매트릭스 동결건조 분쇄물 및 이의 제조 방법 |
| KR20160106795A (ko) * | 2015-03-02 | 2016-09-13 | 강원대학교산학협력단 | 탈세포화된 생체 조직 유래의 생체적합성 가용화 스캐폴드 추출물을 유효성분으로 포함하는 줄기세포 배양 또는 분화용 배지 조성물 |
| KR20190143830A (ko) * | 2018-06-21 | 2019-12-31 | 연세대학교 산학협력단 | 탈세포화된 뇌조직 매트릭스 기반 뇌 오가노이드 배양용 조성물 및 이의 제조방법 |
| KR20200025502A (ko) * | 2018-08-30 | 2020-03-10 | 연세대학교 산학협력단 | 탈세포 조직 기반 세포 봉입 및 배양용 비드, 및 이의 용도 |
| KR102285598B1 (ko) * | 2020-04-01 | 2021-08-05 | 가톨릭대학교 산학협력단 | 네프론 유사 구조를 갖는 신장 오가노이드 및 이의 제조 방법 |
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Patent Citations (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| KR20150074672A (ko) * | 2013-12-24 | 2015-07-02 | 연세대학교 산학협력단 | 세포 배양 및 세포 분화를 위한 탈세포화 기관 매트릭스 동결건조 분쇄물 및 이의 제조 방법 |
| KR20160106795A (ko) * | 2015-03-02 | 2016-09-13 | 강원대학교산학협력단 | 탈세포화된 생체 조직 유래의 생체적합성 가용화 스캐폴드 추출물을 유효성분으로 포함하는 줄기세포 배양 또는 분화용 배지 조성물 |
| KR20190143830A (ko) * | 2018-06-21 | 2019-12-31 | 연세대학교 산학협력단 | 탈세포화된 뇌조직 매트릭스 기반 뇌 오가노이드 배양용 조성물 및 이의 제조방법 |
| KR20200025502A (ko) * | 2018-08-30 | 2020-03-10 | 연세대학교 산학협력단 | 탈세포 조직 기반 세포 봉입 및 배양용 비드, 및 이의 용도 |
| KR102285598B1 (ko) * | 2020-04-01 | 2021-08-05 | 가톨릭대학교 산학협력단 | 네프론 유사 구조를 갖는 신장 오가노이드 및 이의 제조 방법 |
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| SU JIMMY, SATCHELL SIMON C., SHAH RAMILLE N., WERTHEIM JASON A.: "Kidney decellularized extracellular matrix hydrogels: Rheological characterization and human glomerular endothelial cell response to encapsulation : Kidney decellularized extracellular matrix hydrogels", JOURNAL OF BIOMEDICAL MATERIALS RESEARCH PART A, JOHN WILEY & SONS, US, vol. 106, no. 9, 1 September 2018 (2018-09-01), US , pages 2448 - 2462, XP055842573, ISSN: 1549-3296, DOI: 10.1002/jbm.a.36439 * |
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