WO2022106790A1 - Aliment pour ameliorer le rendement d'un elevage de decapodes - Google Patents

Aliment pour ameliorer le rendement d'un elevage de decapodes Download PDF

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    • A61K35/64—Insects, e.g. bees, wasps or fleas

Definitions

  • TITLE FEED TO IMPROVE THE YIELD OF A DECAPODS FARM
  • the invention relates to the field of aquaculture. More particularly, the invention relates to the use of a food comprising Hermetic/illucens flour to improve the yield in aquaculture of a decapod farm, in particular of shrimps.
  • Decapods are crustaceans appreciated for the taste qualities of their flesh, in particular that of shrimp, langoustine, crayfish, lobster, lobster and crab.
  • Industrial farming methods are developing. The performance objectives must take into account the ecological footprint of these methods, and in particular the availability of food resources.
  • the Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei) is the most produced shrimp species in the world, with production volumes exceeding 4.1 million metric tonnes in 2016 (FAO 2018).
  • insects such as the grasshopper, grasshopper, termite, mealworm, Asian rhinoceros beetle, giant mealworm, domesticated silkworm, house fly, common mosquito and black soldier fly have been studied for the production of insect-based ingredients (Henry et al. 2015).
  • the black soldier fly (Hermetic/ illucens) is a very promising species for the production of aquaculture feed, because mass rearing techniques for the industrial production of high quality insect meal at from this species are much more advanced in their development process.
  • insects of the order Diptera including the black soldier fly (Hermetic/illucens), shows a greater level of similarity to fishmeal than soybean meal, but also other insects (Orthoptera and Coleoptera) (Barroso et al. 2014). Insect meal from the black soldier fly also has a high protein content (50–70%), and protein has been shown to be highly digestible.
  • Chitin in insect meal has also been shown to modulate the immune system of shrimp and fish, which may have health benefits and disease resistance (Mousavi et al 2020, Gasco et al 2018 ).
  • compositions comprising HI flour obtained by alcoholic extraction, combined with soy flour.
  • the inclusion rate of HI flour is between 7% and 36%. No significant difference in terms of growth performance or survival was observed in shrimp fed the diet with HL meal.
  • the article by Mastoraki et al. (2019) report a comparative study of two diets comprising insect meal, in particular HI, combined with either vegetable meal or fish meal. In these trials, the inclusion rate of HI flour is 7.8%. This study shows an improvement in the growth performance of shrimp fed with the formulations containing HI insect meal or Musca domestica and fish meal compared to a diet containing Tenebrio molitor meal.
  • Shrimp farms are also affected by pathogens such as the bacterium Vibrio responsible for acute hepatopancreatic necrosis syndrome (AHPNS) and the virus responsible for white spot syndrome (WSSV).
  • AHPNS acute hepatopancreatic necrosis syndrome
  • WSSV white spot syndrome
  • HI flour can improve resistance to bacterial infections.
  • Document CN110754586 describes a protein-rich food for feeding shrimp, comprising a fermentation raw material containing soybean meal as the main component to which a fermentation agent is added in order to obtain a fermented vegetable protein food. Said protein feed is then mixed with Atlantic sturgeon worm mash to obtain organic shrimp feed. This document shows that the food comprising HI meal contains antibacterial peptides absent from fish meal.
  • HI larvae flour is of particular and specific interest for improving the yield of decapod rearing in aquaculture, in particular by improving resistance to viral infections.
  • the present invention relates to the use of a food for decapods comprising from 1% to 25% by weight of HI larva flour, to improve resistance to viral infections.
  • the aim of the invention is to propose an improved food intended for decapods.
  • This food comprises HI flour, which is reported for the first time to have particularly advantageous properties for decapods, in particular for shrimp.
  • HI flour in a food intended for the feeding of decapods makes it possible to significantly improve the yield of the breeding. This improvement is observed on several key parameters in aquaculture.
  • this food makes it possible to increase the weight gain and the growth rate of the decapod and this in a linear way up to a rate of incorporation of the flour of Hermetia illucens of approximately 15%. , and globally over a range from 1% to 25% by weight relative to a control diet without insect meal.
  • An improvement in the speed of growth implies that the decapods reach a given weight in a reduced time, which translates into a reduction in the fixed costs of production.
  • This feed also makes it possible to improve the feed conversion rate in proportion to the rate of incorporation of the Hermetia illucens flour.
  • This parameter is economically essential to control the cost of production in aquaculture, since thanks to this food, the decapods reach the same weight thanks to a lower quantity of food.
  • this food makes it possible to increase resistance to infections during breeding. This results in a lower mortality rate.
  • the use of this food makes it possible to increase resistance to viral infections, in particular with respect to the virus responsible for the white spot syndrome which is very widespread in shrimps, but more generally present in decapods.
  • the use of this food also increases resistance to infections bacteria, in particular against the bacterium Vibrio responsible for the syndrome of acute hepatopancreatic necrosis.
  • a first object of the invention relates to the use of a food for decapods comprising between 1% and 25% by weight of flour from Hermetic/illucens larvae to improve resistance to viral infections.
  • This food therefore improves the performance of livestock.
  • improved yield is meant higher production, ie higher weight gain and higher growth rate, but also more profitable production due to an improved feed conversion rate.
  • yield also covers the fact that the food provides better resistance to infection; by minimizing on-farm mortality, overall production is improved.
  • the inventors have found that the inclusion of HI flour in a food for decapods significantly improves the nutritional properties of this food, that is to say that the decapods show a faster and higher weight gain than in the absence of HI flour.
  • the HI flour is obtained via a mechanical preparation process, without chemical treatment, without extraction in a solvent.
  • a mechanical process can be a mechanical extraction of the solid part of the previously ground and heated larvae, followed by drying and grinding of this solid part to obtain flour.
  • the main advantage of the HI flour obtained by mechanical preparation is that it has not been transformed by a chemical treatment step, such as for example an enzymolysis step.
  • the components of HI flour are maintained in their original form, thus allowing a greater concentration of these components and an undenatured HI flour.
  • the food comprises between 3% and 25% HI flour, even more preferably between 5% and 25%, or even between 10% and 25%.
  • the food comprises between 10% and 20% HI flour.
  • the food generally includes a protein supply complementary to that of the HL flour. This is provided by animal flour, vegetable flour or a mixture of the two.
  • the vegetable flour can be chosen from wheat flour, soya flour, or any other appropriate flour, alone or in a mixture.
  • the animal meal can be chosen from fish meal, poultry meal or any other suitable flour, alone or in a mixture.
  • HI flour can therefore be added to an existing formulation to improve its performance, or can partially or totally replace one of the components of a decapod food.
  • the use of a feed according to the invention improves the weight gain and the growth rate of the decapods.
  • the weight gain can thus be doubled as illustrated in Example 1.
  • the use of a food according to the invention improves the resistance to infections of the decapod.
  • this food improves resistance to viral infections.
  • viruses White Spot Syndrome Virus (WSSV) - dsDNA, Hepatopancreatic Parvovirus (HPV) - ssDNA, Monodont Baculovirus (MBV) - dsDNA
  • the food comprises at least 4.5% HL flour
  • This food also improves resistance to bacterial infections.
  • the shrimps fed with the food according to the invention also resist better to bacterial infections such as: • Vibriosis caused by: Vibrio's such as V. harveyi, V. parahaemolyticus, V. penaecida, V. nigripulcritudo, and V. vulnificus
  • Necrotic hepatopancreatitis caused by: gram-negative bacterial species, intracytoplasmic alphaproteobacterium (species not yet determined)
  • the food preferably comprises at least 10% HL flour
  • the term "decapod” covers shrimp, langoustine, crayfish, lobster, lobster and crab.
  • the decapod is a shrimp.
  • the shrimp may be chosen from the following species: Litopenaeus vannamei, Litopenaeus stylirostris and Penaeus monodon.
  • FIG. l Figure 1: Graphical representation of the average weight gain (%) of the shrimps according to the rate of incorporation of the flour of Hermetia illucens.
  • the horizontal line materializes the observation of a weight gain compared to the control food.
  • the oblique line materializes the positive trend observed in terms of weight gain.
  • the values associated with the same letter do not show any significant difference between them (Fisher test, p > 0.05).
  • FIG.2 Graphical representation of the average weight gain (g) of shrimp as a function of the food ingested.
  • CTRL corresponds to the control diet not comprising Hermetia illucens flour, while A, B and C correspond to diets comprising respectively 4.5%, 7.5% and 10.5% HI flour.
  • the values associated with the same letter do not show any significant difference between them (Fisher test, p > 0.05).
  • FIG.3 Graphic representation of the cumulative mortality of shrimp subjected to WSSV infection as a function of the food ingested. “Mock” corresponds to the negative control group for the disease, and “CTRL” to the positive control group for the disease. The shrimp in these groups were fed the Hermetic/illucens flourless control diet. A, B and C correspond to foods comprising respectively 4.5%, 7.5% and 10.5% HI flour
  • FIG.4 Graphic representation of the cumulative mortality of shrimp subjected to AHPNS infection as a function of the food ingested. “Mock” corresponds to the negative control group for the disease, and “CTRL” to the positive control group for the disease. The shrimp in these groups were fed the Hermetic/illucens flourless control diet. A, B and C correspond to foods comprising respectively 4.5%, 7.5% and 10.5% HI flour
  • EXAMPLE 1 Improvement of the yield of a shrimp farm L stylirostris by providing a feed enriched with Hermetia illucens flour
  • the transfer was carried out 7 days before the start of the study in order to acclimatize the animals to the experimental conditions. During this period, an individual weighing of the animals and their marking were carried out in order to establish the initial individual weights and allow their identification. throughout the rearing period. On the day of tagging, the density was reduced to 6 individuals/tank.
  • Control plan The temperature (°C) was monitored daily (07:30 and 16:00). Siphoning of remains, purging and counting of the number of shrimp per tank (survival monitoring) were also carried out 5 times a week (excluding weekends and public holidays). Where appropriate, observations were recorded regarding moulting periods, animal behavior or any other parameter of interest.
  • the flour is obtained from H. Illucens larvae which are heated, mechanically separated into 3 phases (mechanical extraction, without the use of solvent), dried and then ground.
  • the larvae are slaughtered by immersion in water heated to approximately 70°C.
  • the devitalized larvae are crushed then brought to at least 90°C.
  • the product thus obtained is mechanically separated into 3 phases: the solid part (cake), a liquid part containing water-soluble nutrients (glue water) and the oil.
  • the flour made up of the cake, glue water and antioxidant, is dried.
  • the output humidity of the flour is between 5 and 10%.
  • the flour is ground.
  • the particle size of the flour leaving the grinder is less than 2 mm.
  • the composition includes, in addition to animal and vegetable meal, the ingredients conventionally contained in food for decapods, namely: oil, amino acids, vitamins and minerals.
  • Table 2 Mean values obtained in weight gain, quantity of food ingested and conversion index accompanied by their standard deviations according to the different experimental foods. The values associated with the same letter do not show any significant difference between them (Fisher test, p > 0.05).
  • the conversion index makes it possible to obtain an objective measurement coupling both feed and growth data.
  • the CI therefore makes it possible to provide information on the capacity of transformation of the feed into animal biomass.
  • the results show that the IC of foods with Hermetia illucens flour tends to be numerically lower than with the control food, which implies that for the same quantity, or even a lower quantity of food ingested, shrimp fed a diet comprising HI meal showed higher weight gain.
  • EXAMPLE 2 Improvement of the yield of a Litopenaeus vannamei shrimp farm by providing a feed enriched with Hermetia illucens flour
  • the experimental area consists of 12 290L tanks.
  • the shrimp larvae were reared in a recirculating water system containing artificial seawater at a salinity of 20 g L 1 .
  • a full biological/mechanical filter and regular water changes kept the total ammonia (NH3/ NH 4 + ) content below 0.05 mg Ll and the nitrite (NO2 ) content lower or equal to 0.8 mg L 1 .
  • the water temperature was kept constant at 27°C ⁇ 1°C by means of an automatic temperature control system.
  • a total of 1200 shrimp with an average body weight of approximately 0.1 g were used to randomly compose 12 groups of 100 individuals. Each group was housed in a feeding unit. Each experimental diet was assigned 3 feeding units. The total weights of the groups were measured at the start of the experiment and at 28 days.
  • HI flour was added to the other ingredients (fish flour, vegetable flours, amino acids, vitamins and minerals...) and everything was carefully homogenized.
  • a feed binder and water were added.
  • the resulting paste was passed through a granulation machine. The temperature during the procedure did not exceed 50°C. 2 kg of each feed were produced.
  • Table 4 Mean values obtained in weight gain, specific growth rate and feed conversion rate accompanied by their standard deviations according to the different experimental foods. The values associated with the same letter do not show any significant difference between them (Fisher test, p > 0.05).
  • the results show a decreasing trend in the feed conversion rate correlated with the increase in the rate of incorporation of HI flour in the diet.
  • the feed conversion rate is significantly lower for diets B and C, which correspond to HI flour incorporation rates of 7.5% and 10.5% respectively, than for the CTRL diet. .
  • EXAMPLE 3 Improvement of resistance to the virus responsible for the white spot syndrome in a shrimp farm by providing a feed enriched with Hermetia illucens flour
  • the experimental rearing conditions used are identical to those described in Example 2.
  • the Litopenaeus vannamei shrimp used are certified specific pathogen-free (SPF) for the following pathogens: IMNV, EHP, WSSV, TSV, YHV, NHP-B, IHHNV, CMNV, PvNV, MBV, HPV, AHPND/EMS, BP.
  • Triplicate groups of shrimp were fed the foods previously described (Example 2) for 28 days. This procedure made it possible to evaluate the effect of these foods on the growth performance of shrimp. Three days before the start of the pathogen resistance test, the shrimp were transferred to 10L infection units filled with artificial seawater (1 shrimp per unit) to allow their acclimatization.
  • the WSSV Thai-1 strain (Escobedo-Bonilla et al., 2005) was used in this experiment. A stock of this virus is stored at -70°C. This strain was previously isolated in Thailand from naturally infected Penaeus monodon and passaged once in the crayfish Pacifastacus leniusculus (Jiravanichpaisal et al., 2001) as follows. Frozen stock of crayfish gill suspension (certified free of other major shrimp pathogens) was injected into Litopenaeus vannamei without a specific pathogen (SPF) to amplify the virus.
  • SPF specific pathogen
  • the resulting infected shrimp carcasses were used to prepare a WSSV suspension and immediately frozen. The level of infection was then determined according to the procedure described by Escobedo Bonilla et al. (2005). This inoculum was used to infect shrimp intramuscularly. The resulting infected carcasses were used to prepare the solid inoculum of WSSV, which was used in the oral infection experiment. Uninfected shrimp carcasses subjected to the same procedure but inoculated with a virus-free suspension were used to prepare a blank solid inoculum (Mock).
  • Table 5 Mean values obtained for final mortality in the WSSV resistance test accompanied by their standard deviations according to the different experimental foods. The values associated with the same letter do not show any significant difference between them (Fisher test, p > 0.05).
  • the experimental protocol implemented is equivalent to that described in Example 3 with the exception of the pathogen which is here a bacterium and which was inoculated by immersion.
  • the bacterium used in this experiment is a Vibrio parahaemolyticus isolated from AHPNS/EMS infected shrimp. More specifically, the AHPND/EMS specific TW01 strain was used in this experiment. This bacterium was isolated from infected shrimp ponds in Thailand. A stock of this bacterium is stored at -70°C. After thawing, the stock was aseptically inoculated into culture medium and cultured under standard conditions. Quantitated suspensions of TW01 were used to inoculate shrimp by immersion.
  • Table 6 Mean values obtained for final mortality in the AHPNS resistance test accompanied by their standard deviations according to the different experimental foods. The values associated with the same letter do not show any significant difference between them (Fisher test, p > 0.05).

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Abstract

L'invention se rapporte au domaine de l'aquaculture. Plus particulièrement, l'invention concerne l'utilisation d'un aliment comprenant de la farine de Hermetia illucens pour améliorer le rendement en aquaculture d'un élevage de décapodes du fait d'une amélioration de la résistance aux infections 5 virales, en particulier chez la crevette.

Description

DESCRIPTION
TITRE : ALIMENT POUR AMELIORER LE RENDEMENT D'UN ELEVAGE DE DECAPODES
L'invention se rapporte au domaine de l'aquaculture. Plus particulièrement, l'invention concerne l'utilisation d'un aliment comprenant de la farine de Hermetic/ illucens pour améliorer le rendement en aquaculture d'un élevage de décapodes, en particulier de crevettes.
Domaine de l'invention
Les décapodes sont des crustacés appréciés pour les qualités gustatives de leur chair, en particulier celle de la crevette, la langoustine, l'écrevisse, la langouste, le homard et le crabe. Des méthodes d'élevage industriel se développent. Les objectifs de performance doivent tenir compte de l'empreinte écologique de ces méthodes, et en particulier de la disponibilité des ressources alimentaires.
La crevette blanche du Pacifique (Litopenaeus vannamei) est l’espèce de crevette la plus produite au monde, avec des volumes de production dépassant 4,1 millions de tonnes métriques en 2016 (FAO 2018).
L’un des ingrédients les plus utilisés dans l’alimentation aquacole est la farine de poisson. Cette farine présente un avantage majeur : elle est très riche en protéines animales faciles à digérer. Toutefois, la production de farine de poisson pourrait devenir un facteur limitant dans un contexte d'expansion soutenue de l'aquaculture, notamment de l'élevage de crevettes. Ainsi, le secteur de l'aquaculture est à la recherche de sources protéiques alternatives à la farine de poisson.
Les ingrédients d’origine végétale sont devenus, au cours des dernières décennies, des ingrédients couramment utilisés dans la formulation des aliments aquacoles (Barrows et al. 2007, Gatlin et al. 2007, Oliva-Teles et al. 2015). Ils ont ainsi été utilisés avec succès pour remplacer une partie de la farine de poisson dans les formules de ces aliments. Cependant, les protéines végétales présentent certaines limites nutritionnelles pour les aliments aquacoles : présence de facteurs antinutritionnels, niveaux élevés de fibres et de polysaccharides non amylacés, acides gras inadéquats, profils déséquilibrés d’acides aminés essentiels, et digestibilité et appétence réduites. En outre, une substitution complète de la farine de poisson par des ingrédients végétaux peut entraîner des pressions supplémentaires sur les ressources agricoles essentielles et sur l'environnement (si l'on considère par exemple la déforestation liée à la culture du soja). Ainsi, des efforts de recherche ont été déployés pour trouver des ingrédients alternatifs plus performants, parmi lesquels les farines d'insecte constituent une alternative intéressante aux farines végétales et de poisson, souvent en substitution partielle.
Les larves de nombreuses espèces d’insectes, telles que le criquet, la sauterelle, la termite, le ténébrion meunier, le scarabée rhinocéros asiatique, le ver de farine géant, le ver à soie domestiqué, la mouche commune, le moustique commun et la mouche soldat noire ont été étudiées pour la production d’ingrédients à base d'insectes (Henry et al. 2015). Parmi ces espèces d’insectes, la mouche soldat noire (Hermetic/ illucens) est une espèce très prometteuse pour la production d’aliments aquacoles, car les techniques d’élevage de masse pour la production industrielle de farine d’insectes de haute qualité à partir de cette espèce sont bien plus avancées dans leur processus de développement.
Le profil en acides aminés des insectes de l’ordre des Diptères, dont fait partie la mouche soldat noire (Hermetic/ illucens), présente un plus grand niveau de similarité avec la farine de poisson que la farine de soja, mais également que la farine d’autres insectes (orthoptères et coléoptères) (Barroso et al. 2014). La farine d’insecte provenant de la mouche soldat noire présente également une teneur élevée en protéines (50 à 70 %), et ces dernières ont démontré leur haute digestibilité.
Il a également été démontré que la chitine présente dans la farine d'insecte modulait le système immunitaire des crevettes et des poissons, ce qui pourrait avoir des effets bénéfiques sur la santé et la résistance aux maladies (Mousavi et al 2020, Gasco et al 2018).
Toutefois l'art antérieur ne décrit pas de bénéfice particulier lié à l'usage de farine de Hermetic/ illucens (HI) dans un élevage de décapodes.
En particulier, l'article de Cummins et al (2017) décrit des compositions comprenant de la farine de HI obtenue par extraction alcoolique, combinée à la farine de soja. Dans ces essais, le taux d'inclusion de la farine de HI est compris entre 7% et 36%. Aucune différence significative en termes de performance de croissance, ni de survie n'a été observée chez les crevettes dont le régime comprenait de la farine de HL
L'article de Mastoraki et al. (2019) rapporte une étude comparative de deux régimes alimentaires comprenant de la farine d'insectes, notamment de HI, combinée soit à une farine végétale, soit à une farine de poisson. Dans ces essais, le taux d'inclusion de la farine de HI est de 7,8%. Cette étude montre une amélioration des performances de croissance des crevettes nourries avec les formulations contenant de la farine d'insecte HI ou de Musca domestica et de la farine de poisson comparé à une alimentation comprenant de la farine de Tenebrio molitor.
Les élevages de crevettes sont aussi affectés par les pathogènes tels que la bactérie Vibrio responsable du syndrome de la nécrose hépatopancréatique aiguë (AHPNS) et le virus responsable du syndrome des taches blanches (WSSV). Un sujet d'intérêt pour les éleveurs de crevettes est donc de disposer de solutions permettant de renforcer la résistance des crevettes vis-à-vis de ces pathogènes, cause d'épidémies affectant la production de crevettes dans le monde entier.
Il est connu de l'état de l'art que l'inclusion de la farine de HI dans le régime des décapodes peut améliorer la résistance aux maladies des alevins de crevettes. Le document CN110432381 décrit notamment un aliment de santé dérivé d’insectes pour les alevins de crevettes. L'aliment comprend les ingrédients, en partie en poids, suivants : Poudre sèche de mouche soldat noire 15% - 20%, farine de poisson 5% - 10%, farine d’arachide 15% - 25%, farine 10% - 28%, huile mélangée 2 - 5%, farine de soja 5 - 15%, farine de maïs 10 - 25%. La poudre sèche de mouche soldat noire est utilisée pour améliorer la résistance aux maladies des alevins de crevettes, augmenter le taux de croissance et améliorer le taux de survie.
Il est également connu de l'état de l'art que la farine de HI peut améliorer la résistance aux infections bactériennes. Le document CN110754586 décrit un aliment destiné à l'alimentation des crevettes riches en protéines, comprenant une matière première de fermentation contenant de la farine de soja comme composant principal auquel on ajoute un agent de fermentation afin d'obtenir un aliment protéique végétal fermenté. Ledit aliment protéique est ensuite mélangé avec de la purée de ver d'esturgeon noir pour obtenir un aliment biologique pour crevette. Ce document montre que l'aliment comprenant de la farine de HI contient des peptides antibactériens absents de la farine de poisson.
Pour soutenir la croissance de l’industrie de production de décapodes, il est nécessaire de trouver des ingrédients alimentaires performants, qui peuvent être produits de manière durable et d'améliorer l’efficacité des systèmes de production afin de fournir des volumes plus importants tout en exerçant moins de pression sur les ressources naturelles. Protéger à la fois le potentiel à long terme de l’industrie et préserver les ressources naturelles est un défi croissant, non seulement dans le contexte de la production de décapodes tels que la crevette L. vannamei, mais également dans tous les systèmes modernes de production alimentaire.
Compte tenu des enjeux que représente l'élevage de décapodes, un aliment permettant d'améliorer leur résistance face aux maladies est recherché. Exposé de l'invention
De manière inattendue, les inventeurs ont montré que la farine de larve de HI présente un intérêt particulier et spécifique pour améliorer le rendement d'un élevage de décapodes en aquaculture, en particulier en améliorant la résistance aux infections virales.
Ainsi, la présente invention concerne l'utilisation d'un aliment pour décapodes comprenant de 1% à 25 % en poids de farine de larve de HI, pour améliorer la résistance aux infections virales.
Avantages de l'invention
L'invention a pour objectif de proposer un aliment amélioré à destination des décapodes. Cet aliment comprend de la farine de HI dont il est rapporté pour la première fois qu'il présente des propriétés particulièrement intéressantes pour les décapodes, notamment pour la crevette.
L'ajout de farine de HI dans un aliment destiné à l'alimentation de décapodes permet d'améliorer de manière significative le rendement de l'élevage. Cette amélioration est observée sur plusieurs paramètres clés en aquaculture.
Tout d'abord, l'utilisation de cet aliment permet d'augmenter le gain de poids et la vitesse de croissance du décapode et ceci de façon linéaire jusqu'à un taux d'incorporation de la farine de Hermetia illucens d'environ 15%, et de manière globale sur une plage allant de 1% à 25% en poids par rapport à une alimentation contrôle sans farine d'insecte. Une amélioration de la vitesse de croissance implique que les décapodes atteignent un poids donné en un temps réduit, ce qui se traduit par une diminution des coûts fixes de production.
Cet aliment permet aussi d'améliorer le taux de conversion alimentaire de manière proportionnelle au taux d'incorporation de la farine de Hermetia illucens. Ce paramètre est économiquement essentiel pour maîtriser le coût de production en aquaculture, puisque grâce à cet aliment, les décapodes atteignent le même poids grâce à une quantité inférieure d'aliment.
Enfin, l'utilisation de cet aliment permet d'augmenter la résistance aux infections en cours d'élevage. Ceci se traduit par une baisse du taux de mortalité. En particulier, l'utilisation de cet aliment permet d'augmenter la résistance aux infections virales, notamment vis-à-vis du virus responsable du syndrome des taches blanches très répandu chez les crevettes, mais plus généralement présent chez les décapodes. L'utilisation de cet aliment permet également d'augmenter la résistance aux infections bactériennes, notamment vis-à-vis de la bactérie Vibrio responsable du syndrome de la nécrose hépatopancréatique aiguë.
DESCRIPTION DETAILLEE DE L'INVENTION
Un premier objet de l'invention concerne l'utilisation d'un aliment pour décapodes comprenant entre 1% et 25 % en poids de farine de larve de Hermetic/ illucens pour améliorer la résistance aux infections virales.
Cet aliment permet de ce fait d'améliorer le rendement de l'élevage.
Par « rendement amélioré », on entend une production plus élevée à savoir un gain de poids et une vitesse de croissance plus élevés, mais aussi une production plus rentable du fait d'un taux de conversion alimentaire amélioré. De plus, la notion de rendement couvre aussi le fait que l'aliment permet une meilleure résistance aux infections ; en minimisant la mortalité au sein de l'élevage, la production globale est améliorée.
Les inventeurs ont constaté que l'inclusion de farine de HI à un aliment pour décapode améliore significativement les propriétés nutritives de cet aliment, c'est-à-dire que les décapodes présentent un gain de poids plus rapide et plus élevé qu'en absence de farine de HI.
Dans un mode de réalisation préféré, la farine de HI est obtenue via un procédé de préparation mécanique, sans traitement chimique, sans extraction dans un solvant. Un tel procédé mécanique peut être une extraction mécanique de la partie solide des larves préalablement broyées et chauffées, suivie d'un séchage et d'un broyage de cette partie solide pour obtenir de la farine.
La farine de HI obtenue par préparation mécanique a pour principal avantage de ne pas avoir été transformée par une étape de traitement chimique, telle que par exemple une étape d'enzymolyse. Les composants de la farine de HI sont maintenus sous leur forme initiale, permettant ainsi une plus grande concentration de ces composants et une farine de HI non dénaturée.
Les bénéfices de l'utilisation d'un aliment selon l'invention sont observés dès que l'aliment comprend 1% de farine de HI. Dans un mode de réalisation préféré, l'aliment comprend entre 3% et 25% de farine de HI, de manière encore plus préférée entre 5% et 25%, voire entre 10% et 25%. Dans un mode de réalisation particulier, l'aliment comprend entre 10% et 20% de farine de HI. L'aliment comprend généralement un apport protéique complémentaire à celui de la farine de HL Celui-ci est fourni par une farine animale, une farine végétale ou un mélange des deux. La farine végétale peut être choisie parmi la farine de blé, la farine de soja, ou toute autre farine appropriée, seule ou en mélange. De même, la farine animale peut être choisie parmi la farine de poisson, la farine de volaille ou toute autre farine appropriée, seule ou en mélange.
L'homme du métier sait préparer un aliment de base répondant aux besoins des décapodes en termes de protéines, acides aminés, vitamines et minéraux. La farine de HI peut donc être ajoutée à une formulation existante pour en améliorer les performances, ou venir se substituer partiellement ou totalement à l'un des composants d'un aliment pour décapode.
L'utilisation d'un aliment selon l'invention améliore le gain de poids et la vitesse de croissance des décapodes. En particulier, le gain de poids peut ainsi être doublé comme cela est illustré à l'Exemple 1.
L'utilisation d'un aliment selon l'invention améliore le taux de conversion alimentaire.
L'utilisation d'un aliment selon l'invention améliore la résistance aux infections du décapode.
Plus particulièrement, cet aliment améliore la résistance aux infections virales.
Dans un mode de réalisation préféré, cet aliment permet d'améliorer la résistance aux virus suivants : le virus du syndrome des points blancs (WSSV) - ADNdb, le Parvovirus hépatopancréatique (HPV) - ADNsb, le baculovirus du monodonte (MBV) - ADNdb, le virus de la nécrose hypodermique et hématopoïétique infectieuse (IHHNV) - ADNs, le virus responsable du syndrome de la coquille lâche (LSS) - ADNdb, le virus de Laem-Singh (LSNV) - ARNdb, le virus associé à Gill (GAV) - ARNsb, le virus responsable du syndrome de Taura - ssRNA , le virus de la myonécrose infectieuse (IMNV) - dsRNA (ADNdb = ADN double brin ; ADNs = ADN simple brin).
Dans un autre mode de réalisation préféré, il améliore la résistance au virus responsable du syndrome des taches blanches chez les décapodes appelé WSSV (white spot syndrome virus). Dans ce mode de réalisation préféré, l'aliment comprend au moins 4,5 % de farine de HL
Cet aliment permet également d'améliorer la résistance aux infections bactériennes.
Les crevettes nourries avec l'aliment selon l'invention résistent également mieux aux infections bactériennes telles que : • Vibriosis cause par : Vibrio's such as V. harveyi, V. parahaemolyticus, V. penaecida, V. nigripulcritudo, et V. vulnificus
• Les maladies bactériennes filamenteuses causes par : Leucothrix sp., Thiothrix sp., Flexibacter sp., Cytophaga sp., Flavobacterium sp.
• Hépatopancréatite nécrotique (NHP) causée par: des espèces de bactéries gram négative, intracytoplasmique d'alphaproteobacterium (espèces pas encore déterminées)
• Mycobactériose causée par : Mycobacterium marinum, Mycobacterium fortuitum, et plus généralement Mycobacterium sp.
Dans un mode de réalisation préféré, il améliore la résistance au syndrome de nécrose pancréatique sévère causé par la souche V. parahaemolyticus TW01 (AHPNS). Dans ce mode de réalisation préféré, l'aliment comprend de préférence au moins 10% de farine de HL
Au sens de l'invention, le terme « décapode » couvre la crevette, la langoustine, l'écrevisse, la langouste, le homard et le crabe. Dans un mode de réalisation préféré, le décapode est une crevette. La crevette peut être choisie parmi les espèces suivantes : Litopenaeus vannamei, Litopenaeus stylirostris et Penaeus monodon.
La présente invention sera mieux comprise à la lecture des exemples qui suivent, fournis à titre d'illustration et ne devant en aucun cas être considérés comme limitant la portée de la présente invention.
DESCRIPTION DES FIGURES
[Fig. l]Figure 1 : Représentation graphique du gain de poids moyen (%) des crevettes en fonction du taux d'incorporation de la farine de Hermetia illucens. La ligne horizontale matérialise l'observation d'un gain de poids par rapport à l'aliment contrôle. La ligne oblique matérialise la tendance positive observée quant au gain de poids. Les valeurs associées à une même lettre ne présentent pas de différence significative entre elles (test de Fisher, p > 0,05).
[Fig.2]Figure 2 : Représentation graphique du gain de poids moyen (g) des crevettes en fonction de l'aliment ingéré. CTRL correspond à l'aliment contrôle ne comprenant pas de farine de Hermetia illucens, tandis que A, B et C correspondent aux aliments comprenant respectivement 4,5%, 7,5% et 10,5% de farine de HI. Les valeurs associées à une même lettre ne présentent pas de différence significative entre elles (test de Fisher, p > 0,05).
[Fig.3]Figure 3 : Représentation graphique de la mortalité cumulée des crevettes soumises à une infection au WSSV en fonction de l'aliment ingéré. « Mock » correspond au groupe contrôle négatif pour la maladie, et « CTRL » au groupe contrôle positif pour la maladie. Les crevettes de ces groupes ont été nourries avec l'aliment contrôle sans farine de Hermetic/ illucens. A, B et C correspondent aux aliments comprenant respectivement 4,5%, 7,5% et 10,5% de farine de HI
[Fig.4]Figure 4 : Représentation graphique de la mortalité cumulée des crevettes soumises à une infection au AHPNS en fonction de l'aliment ingéré. « Mock » correspond au groupe contrôle négatif pour la maladie, et « CTRL » au groupe contrôle positif pour la maladie. Les crevettes de ces groupes ont été nourries avec l'aliment contrôle sans farine de Hermetic/ illucens. A, B et C correspondent aux aliments comprenant respectivement 4,5%, 7,5% et 10,5% de farine de HI
EXEMPLES
EXEMPLE 1 : Amélioration du rendement d'un élevage de crevettes L stylirostris par l'apport d'un aliment enrichi en farine de Hermetia illucens
Matériel et méthodes
Conditions expérimentales : Cette expérience a été réalisée sur des crevettes de l'espèce L. stylirostris. La zone expérimentale est constituée de 40 bacs de 50L et leur cuve d'approvisionnement en eau. Un renouvellement en eau de mer de 100% par heure a été appliqué à l'ensemble des bacs. La qualité de l'approvisionnement en eau de mer est assurée par un système de filtration mécanique. De plus, une thermorégulation de l'eau a été réalisée par le biais d'un « groupe froid » et/ou de résistances dans les cuves. Seule la salinité (salinité naturelle avoisinant les 35%o) et la photopériode ne disposent pas de système de contrôle continu. Cette expérimentation a été effectuée avec des animaux provenant d'un bassin de soutien (Ifremer/LEAD-NC) d'un poids moyen initial 5,83±l,23g et à une densité de 7 individus/bac. Le transfert a été réalisé 7 jours avant le début de l'étude afin d'acclimater les animaux aux conditions expérimentales. Pendant cette période, une pesée individuelle des animaux et leur marquage ont été effectués afin d'établir les poids initiaux individuels et permettre leur identification tout au long de la période d'élevage. Au jour du marquage, la densité a été ramenée à 6 individus/bac.
Ainsi, les poids individuels finaux et la survie ont pu être évalués en fin de période d'étude.
Plan de contrôle : La température (°C) a été suivie quotidiennement (07:30 et 16:00). Un siphonage des restes, une purge et un comptage du nombre de crevettes par bac (suivi de la survie) ont également été effectués 5 fois par semaine (hors week-end et jours fériés). Le cas échéant, des observations ont été consignées concernant les périodes de mues, le comportement des animaux ou tout autre paramètre d'intérêt.
Préparation de la farine de Hermetic/ illucens :
La farine est obtenue à partir des larves H. Illucens qui sont chauffées, séparées mécaniquement en 3 phases (extraction mécanique, sans utilisation de solvant), séchées puis broyées.
Les larves sont abattues par immersion dans une eau chauffée à environ 70°C. Les larves dévitalisées sont broyées puis portées au minimum à 90°C. Le produit ainsi obtenu est séparé mécaniquement en 3 phases : la partie solide (gâteau), une partie liquide contenant des nutriments hydrosolubles (eau de colle) et l'huile. La farine, composée du gâteau, de l’eau de colle et d'antioxydant, est séchée. L'humidité en sortie de la farine est entre 5 et 10%. Enfin, la farine est broyée. La granulométrie de la farine en sortie de broyeur est inférieure à 2 mm.
Préparation et caractéristiques des aliments expérimentaux cibles :
La composition comprend en plus des farines animales et végétales, les ingrédients contenus classiquement dans les aliments pour décapodes à savoir : huile, acides aminés, vitamines et minéraux.
Figure imgf000010_0001
Tableau 1 : Composition des aliments en % (ingrédients principaux)
Formules de calcul des paramètres étudiés dans cette étude : - Gain de poids (GP ; %) = [(Pfinai-Pinitiai) * 100] / Pinitiai où P est le poids individuel ;
- Quantité ingérée (Ing. ; g/individu) = Qingéré/Nb où Q est la quantité d'aliment ingéré et Nb le nombre d'individus ;
- Indice de conversion (IC) = Ing. / GP, qui correspond au taux de conversion alimentaire
Résultats
Figure imgf000011_0001
Tableau 2 : Valeurs moyennes obtenues en gain de poids, quantité d'aliment ingéré et indice de conversion accompagnées de leurs écarts-types en fonction des différents aliments expérimentaux. Les valeurs associées à une même lettre ne présentent pas de différence significative entre elles (test de Fisher, p > 0,05).
Concernant le gain de poids, les résultats sont présentés au Tableau 2, ainsi qu'à la Figure 1. On observe des gains de poids supérieurs à celui de l'aliment contrôle pour les aliments 1 à 6. Même si les gains de poids associés à des taux d'incorporation de farine de HI plus faibles ne présentent pas de différence significative par rapport à l'aliment contrôle, une tendance linéaire est clairement observée, avec des valeurs qui augmentent proportionnellement jusqu'à un taux d'incorporation de farine de HI d'environ 15%. Par ailleurs, les gains de poids pour les aliments 2 à 5, correspondant à un taux d'incorporation de farine de HI de 6,6% à 19,8%, sont significativement plus élevés que celui associé à l'aliment contrôle. En particulier, on observe que les aliments 4 et 5, comprenant respectivement 13,2% et 19,8% de farine de HI présentent des gains de poids près de deux fois supérieurs au groupe contrôle.
En ce qui concerne la prise alimentaire, on observe à nouveau des quantités ingérées plus élevées que celle observée pour l'aliment contrôle, ce qui traduit une appétence supérieure. Les résultats indiquent par ailleurs une tendance numérique entre la quantité d'aliment ingéré et le taux d'incorporation de farine de HI entre 3,3% et 9,9%. En particulier, la quantité ingérée pour l'aliment 3, qui correspond à un taux d'incorporation de farine de HI de 9,9%, est significativement plus élevée que celle associée à l'aliment contrôle.
L'indice de conversion permet d'obtenir une mesure objective couplant à la fois les données d'ingérés et de croissance. L'IC permet donc d'informer sur la capacité de transformation de l'aliment en biomasse des animaux. Dans cette expérimentation, les résultats montrent que l'IC des aliments avec de la farine de Hermetia illucens tend à être numériquement plus faible qu'avec l'aliment contrôle, ce qui implique que pour une même quantité, voire une quantité inférieure d'aliment ingéré, les crevettes nourries avec un aliment comprenant de la farine de HI présentent un gain de poids plus élevé.
Conclusion : Ces résultats montrent l'effet bénéfique de l'inclusion de farine de Hermetia illucens dans le régime alimentaire de crevettes, en particulier sur le gain de poids, la prise alimentaire et l'indice de conversion.
EXEMPLE 2 : Amélioration du rendement d'un élevage de crevettes Litopenaeus vannamei par l'apport d'un aliment enrichi en farine de Hermetia illucens
Matériels et méthodes
Conditions expérimentales :
Ces expériences ont été réalisées sur des crevettes de l'espèce Litopenaeus vannamei.
La zone expérimentale est constituée de 12 bacs de 290L. Les larves de crevettes ont été élevées dans un système de recirculation d’eau contenant de l’eau de mer artificielle à une salinité de 20 g L 1. Un filtre biologique / mécanique complet et des changements d’eau réguliers ont permis de conserver la teneur en ammoniac total (NH3/ NH4 +) inférieure à 0,05 mg L-l et la teneur en nitrites (NO2 ) inférieure ou égale à 0,8 mg L 1. La température de l'eau a été maintenue constante à 27°C ± 1°C au moyen d'un système de contrôle de la température automatique. Un total de 1200 crevettes d'un poids corporel moyen d'environ 0,1 g a été utilisé pour composer au hasard 12 groupes de 100 individus. Chaque groupe était logé dans une unité d'alimentation. Chaque régime expérimental a été attribué à 3 unités d'alimentation. Les poids totaux des groupes ont été mesurés au début de l'expérimentation et à 28 jours.
Préparation et caractéristiques des aliments expérimentaux :
De la farine de HI a été ajoutée aux autres ingrédients (farine de poisson, farines végétales, acides aminés, vitamines et minéraux...) et le tout a été homogénéisé soigneusement. Afin de granuler les mélanges résultants, un liant d’alimentation et de l’eau ont été ajoutés. La pâte résultante a été passée à travers une machine de granulation. La température pendant la procédure n'a pas dépassé 50°C. 2 kg de chaque aliment ont été produits.
Figure imgf000013_0001
Tableau 3 : Composition des aliments en % (ingrédients principaux)
Pendant la période d'expérimentation, les aliments ont été distribués automatiquement 6fois par jour. Les groupes de crevettes ont reçu leur régime respectif selon une ration quotidienne calculée à partir du poids moyen des crevettes (pourcentage standard du poids) et ajustée quotidiennement en fonction de la croissance attendue, de la mortalité observée et de la consommation d'aliment par groupe.
La performance a été évaluée selon les paramètres suivants :
- Gain de poids
- Taux de croissance spécifique (TCS ; %/jour) = [(In Pfinai - In Pinitiai) * 100] / 1 où t est la durée en jours
- Taux de conversion d'alimentation Résultats
Figure imgf000014_0001
Tableau 4 : Valeurs moyennes obtenues en gain de poids, taux de croissance spécifique et taux de conversion alimentaire accompagnées de leurs écarts-types en fonction des différents aliments expérimentaux. Les valeurs associées à une même lettre ne présentent pas de différence significative entre elles (test de Fisher, p > 0,05).
Tous les groupes de crevettes nourries avec de la farine de Hermetia illucens ont présenté une performance significativement plus élevée par rapport au traitement témoin (CTRL) à la fois pour le gain de poids et pour le taux de croissance spécifique. Les résultats sont présentés au Tableau 4, ainsi qu'à la Figure 2. On observe une amélioration globale significative du gain de poids et de la vitesse de croissance (mesurée par le taux de croissance spécifique) chez les crevettes nourries avec des régimes où de la farine de HI a été ajoutée par rapport au groupe contrôle (CTRL). Cette amélioration est proportionnelle au niveau d’inclusion de la farine de Hermetia illucens dans le régime.
Les résultats montrent également une tendance décroissante du taux de conversion alimentaire corrélée à l'augmentation du taux d'incorporation de farine de HI dans le régime alimentaire. En particulier, le taux de conversion d’alimentation est significativement plus bas pour les régimes B et C, qui correspondent à des taux d'incorporation de farine de HI de 7,5% et 10,5% respectivement, que pour le régime CTRL.
Conclusion : Les résultats de cet Exemple montrent une amélioration significative du gain de poids, de la vitesse de croissance et du taux de conversion alimentaire lors de l'inclusion de farine de Hermetic/ illucens entre 4,5% et 10,5% dans le régime alimentaire de crevettes.
De plus, ces résultats confirment ceux obtenus à l'Exemple 1. Ainsi, il ressort que la farine de HI est bénéfique chez différentes espèces de crevettes, en particulier chez L. stylirostris et chez L. vannamei.
EXEMPLE 3 : Amélioration de la résistance au virus responsable du syndrome des taches blanches dans un élevage de crevettes par l'apport d'un aliment enrichi en farine de Hermetia illucens
Matériel et méthodes
Conditions
Figure imgf000015_0001
Les conditions expérimentales d'élevage mises en oeuvre sont identiques à celles décrites à l'Exemple 2. Les crevettes Litopenaeus vannamei utilisées sont certifiées sans agent pathogène spécifique (SPF) pour les agents pathogènes suivants : IMNV, EHP, WSSV, TSV, YHV, NHP-B, IHHNV, CMNV, PvNV, MBV, HPV, AHPND / EMS, BP. Des groupes en triplicata de crevettes ont été nourris avec les aliments décrits précédemment (Exemple 2) pendant 28 jours. Cette procédure a permis d'évaluer l’effet de ces aliments sur les performances de croissance des crevettes. Trois jours avant le début du test de résistance aux pathogènes, les crevettes ont été transférées dans des unités d'infection de 10L remplies d'eau de mer artificielle (1 crevette par unité) pour permettre leur acclimatation. Pour le test de résistance au virus responsable du syndrome des taches blanches, 3 blocs de 10 individus chacun ont été formés à partir des crevettes de chacun des groupes A, B et C. 1 bloc pour le contrôle négatif (Mock) et 3 pour le contrôle positif ont été constitués à partir des crevettes du groupe CTRL. Les crevettes ont été inoculées par voie orale avec la préparation virale. Après l'inoculation, les crevettes ont été nourries deux fois par jour avec leur régime respectif. Les signes cliniques de maladie et de mortalité ont été suivis deux fois par jour. virale
La souche WSSV Thai-1 (Escobedo-Bonilla et al., 2005) a été utilisée dans cette expérience. Un stock de ce virus est conservé à -70°C. Cette souche a été précédemment isolée en Thaïlande à partir de Penaeus monodon infecté naturellement et passée une fois dans l’écrevisse Pacifastacus leniusculus (Jiravanichpaisal et al., 2001) comme suit. Un stock congelé de suspension branchiale d’écrevisses (certifié exempt d’autres agents pathogènes majeurs de la crevette) a été injecté dans Litopenaeus vannamei sans pathogène spécifique (SPF) pour amplifier le virus.
Les carcasses de crevettes infectées résultantes ont été utilisées pour préparer une suspension de WSSV et immédiatement congelées. Le niveau d'infection a ensuite été déterminé selon la procédure décrite par Escobedo Bonilla et al. (2005). Cet inoculum a été utilisé pour infecter les crevettes par voie intramusculaire. Les carcasses infectées résultantes ont été utilisées pour préparer l’inoculum solide de WSSV, qui a été utilisé dans l’expérience d’infection orale. Des carcasses non infectées de crevettes soumises à la même procédure mais inoculées avec une suspension sans virus ont été utilisées pour préparer un inoculum solide à blanc (Mock).
Résultats
Figure imgf000016_0001
Tableau 5 : Valeurs moyennes obtenues en mortalité finale dans le test de résistance au WSSV accompagnées de leurs écarts-types en fonction des différents aliments expérimentaux. Les valeurs associées à une même lettre ne présentent pas de différence significative entre elles (test de Fisher, p > 0,05).
Les résultats sont présentés au Tableau 5, ainsi qu'à la Figure 3.
Comme attendu, la mortalité du groupe contrôle CTRL (contrôle positif pour la maladie) est comprise entre 50 et 80% et celle du groupe contrôle Mock (contrôle négatif pour la maladie) est de 0%. Cela démontre la validité du protocole. On observe une tendance générale montrant une survie plus élevée des crevettes nourries avec un aliment contenant de la farine de HI que dans le groupe contrôle positif. D'un point de vue statistique, cette amélioration est significative pour le groupe nourri avec l'aliment A. Ces résultats suggèrent que l'inclusion de farine HI dans le régime alimentaire des crevettes peut améliorer leur résistance au WSSV de manière significative à un taux d'incorporation de 4,5%. La réduction de mortalité observée avec les aliments B et C suggère qu’il existe en général une amélioration de la résistance des crevettes à une infection au WSSV par apport de farine de HI dans un élevage de crevettes pendant la phase de croissance. EXEMPLE 4 : Amélioration de la résistance au syndrome de nécrose pancréatique sévère causé par la souche V. parahaemolyticus dans un élevage de crevettes par l'apport d'un aliment enrichi en farine de Hermetia illucens
Le protocole expérimental mis en oeuvre est équivalent à celui décrit à l'Exemple 3 à l'exception du pathogène qui est ici une bactérie et qui a été inoculé par immersion.
Préparation bactérienne
La bactérie utilisée dans cette expérience est un Vibrio parahaemolyticus isolé à partir de crevettes infectées par AHPNS / EMS. De manière plus spécifique, c'est la souche TW01 spécifique AHPND / EMS qui a été utilisée dans cette expérimentation. Cette bactérie a été isolée de bassins de crevettes infectés en Thaïlande. Un stock de cette bactérie est conservé à -70°C. Après décongélation, le stock a été inoculé de manière aseptique dans un milieu de culture et cultivé dans des conditions standard. Des suspensions quantifiées de TW01 ont été utilisées pour inoculer les crevettes par immersion.
Résultats
Figure imgf000017_0001
Tableau 6 : Valeurs moyennes obtenues en mortalité finale dans le test de résistance au AHPNS accompagnées de leurs écarts-types en fonction des différents aliments expérimentaux. Les valeurs associées à une même lettre ne présentent pas de différence significative entre elles (test de Fisher, p > 0,05).
Les résultats sont présentés au Tableau 6, ainsi qu'à la Figure 4.
Comme attendu, la mortalité du groupe contrôle CTRL (contrôle positif de la maladie) est comprise entre 50 et 80% alors que celle du groupe contrôle Mock (contrôle négatif pour la maladie) était de 0%. Cela démontre la validité du protocole. Aucune différence significative de mortalité n'a été observées entre les groupes nourris avec les aliments A et B et le groupe CTRL. Cela montre que l'apport d'un aliment contenant de la farine de HI n'entraîne pas d'augmentation de la mortalité face à la bactérie responsable du syndrome de la nécrose hépatopancréatique aiguë. Une réduction significative de la mortalité est observée avec l'aliment C, qui correspond à un taux d'incorporation de la farine de HI de 10,5%. Ces résultats suggèrent que l'inclusion de farine de HI dans une alimentation de croissance des crevettes peut améliorer la résistance de ces crevettes à l’AHPNS, en particulier à un taux d'incorporation de HI de 10,5%.

Claims

REVENDICATIONS
1. Aliment pour décapodes comprenant entre 1% et 25 % en poids de farine de larve de Hermetia illucens pour son utilisation pour améliorer la résistance aux infections virales.
2. Aliment selon la revendication 1 dans lequel la quantité en poids de farine de larve de Hermetia illucens est compris entre 5% et 25%.
3. Aliment selon l'une des revendications 1 ou 2 pour son utilisation selon l'une des revendications 1 ou 2, dans laquelle l'infection virale est causée par un virus choisi parmi le virus du syndrome des points blancs (WSSV), un parvovirus hépatopancréatique (HPV), le baculovirus du monodonte (MBV), le virus de la nécrose hypodermique et hématopoïétique infectieuse (IHHNV), le virus responsable du syndrome de la coquille lâche (LSS), le virus de Laem-Singh (LSNV), le virus associé à Gill (GAV), le virus responsable du syndrome de Taura, le virus de la myonécrose infectieuse (IMNV).
4. Aliment selon la revendications 3 pour son utilisation selon la revendication 3, pour améliorer la résistance au virus responsable du syndrome des taches blanches.
5. Aliment selon l'une des revendications 1 à 4 pour son utilisation selon l'une des revendications 1 à 4, dans laquelle ledit décapode est choisi parmi la crevette, la langoustine, l'écrevisse, la langouste, le homard et le crabe.
6. Aliment selon la revendication 5 pour son utilisation selon la revendication 5, dans laquelle ledit décapode est une crevette.
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN115005138A (zh) * 2022-06-24 2022-09-06 海南省菜篮农业与渔业发展有限公司 一种青龙虾露天水泥池的养殖方法

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2018134524A1 (fr) * 2017-01-18 2018-07-26 Ynsect Utilisations thérapeutiques d'une poudre d'insectes
CN110432381A (zh) 2019-08-29 2019-11-12 清远海贝生物技术有限公司 一种昆虫源性虾苗专用保健饲料
CN110754586A (zh) 2019-12-02 2020-02-07 博益德（北京）生物科技有限公司 一种含黑水虻幼虫粉的虾用生物饲料及其制备方法
US20200196631A1 (en) * 2018-12-19 2020-06-25 Intrexon Corporation Animal feed containing black soldier fly larvae

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2018134524A1 (fr) * 2017-01-18 2018-07-26 Ynsect Utilisations thérapeutiques d'une poudre d'insectes
US20200196631A1 (en) * 2018-12-19 2020-06-25 Intrexon Corporation Animal feed containing black soldier fly larvae
CN110432381A (zh) 2019-08-29 2019-11-12 清远海贝生物技术有限公司 一种昆虫源性虾苗专用保健饲料
CN110754586A (zh) 2019-12-02 2020-02-07 博益德（北京）生物科技有限公司 一种含黑水虻幼虫粉的虾用生物饲料及其制备方法

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
AQUACULTURE RESEARCH, vol. 51, no. 9, September 2020 (2020-09-01), ISSN: 1355-557X(print), DOI: 10.1111/ARE.14692 *
DATABASE BIOSIS [online] BIOSCIENCES INFORMATION SERVICE, PHILADELPHIA, PA, US; September 2020 (2020-09-01), MASTORAKI MARIA ET AL: "The effect of insect meal as a feed ingredient on survival, growth, and metabolic and antioxidant response of juvenile prawn Palaemon adspersus (Rathke, 1837)", XP002803576, Database accession no. PREV202000724766 *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN115005138A (zh) * 2022-06-24 2022-09-06 海南省菜篮农业与渔业发展有限公司 一种青龙虾露天水泥池的养殖方法
CN115005138B (zh) * 2022-06-24 2023-04-07 海南省菜篮农业与渔业发展有限公司 一种青龙虾露天水泥池的养殖方法

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