FR3116180A1 - Aliment pour ameliorer le rendement d’un elevage de decapodes - Google Patents

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Abstract

L’invention se rapporte au domaine de l’aquaculture. Plus particulièrement, l’invention concerne l’utilisation d’un aliment comprenant de la farine de Hermetia illucens pour améliorer le rendement en aquaculture d’un élevage de décapodes, en particulier de crevettes.

Description

ALIMENT POUR AMELIORER LE RENDEMENT D’UN ELEVAGE DE DECAPODES
L’invention se rapporte au domaine de l’aquaculture. Plus particulièrement, l’invention concerne l’utilisation d’un aliment comprenant de la farine deHermetia illucenspour améliorer le rendement en aquaculture d’un élevage de décapodes, en particulier de crevettes.
Domaine de l’invention
Les décapodes sont des crustacés appréciés pour les qualités gustatives de leur chair, en particulier celle de la crevette, la langoustine, l’écrevisse, la langouste, le homard et le crabe. Des méthodes d’élevage industriel se développent. Les objectifs de performance doivent tenir compte de l’empreinte écologique de ces méthodes, et en particulier de la disponibilité des ressources alimentaires.
La crevette blanche du Pacifique (Litopenaeus vannamei) est l'espèce de crevette la plus produite au monde, avec des volumes de production dépassant 4,1 millions de tonnes métriques en 2016 (FAO 2018).
L'un des ingrédients les plus utilisés dans l'alimentation aquacole est la farine de poisson. Cette farine présente un avantage majeur : elle est très riche en protéines animales faciles à digérer. Toutefois, la production de farine de poisson pourrait devenir un facteur limitant dans un contexte d’expansion soutenue de l’aquaculture, notamment de l’élevage de crevettes. Ainsi, le secteur de l’aquaculture est à la recherche de sources protéiques alternatives à la farine de poisson.
Les ingrédients d'origine végétale sont devenus, au cours des dernières décennies, des ingrédients couramment utilisés dans la formulation des aliments aquacoles (Barrows et al. 2007, Gatlin et al. 2007, Oliva-Teles et al. 2015). Ils ont ainsi été utilisés avec succès pour remplacer une partie de la farine de poisson dans les formules de ces aliments. Cependant, les protéines végétales présentent certaines limites nutritionnelles pour les aliments aquacoles : présence de facteurs antinutritionnels, niveaux élevés de fibres et de polysaccharides non amylacés, acides gras inadéquats, profils déséquilibrés d'acides aminés essentiels, et digestibilité et appétence réduites. En outre, une substitution complète de la farine de poisson par des ingrédients végétaux peut entraîner des pressions supplémentaires sur les ressources agricoles essentielles et sur l’environnement (si l’on considère par exemple la déforestation liée à la culture du soja). Ainsi, des efforts de recherche ont été déployés pour trouver des ingrédients alternatifs plus performants, parmi lesquels les farines d’insecte constituent une alternative intéressante aux farines végétales et de poisson, souvent en substitution partielle.
Les larves de nombreuses espèces d'insectes, telles que le criquet, la sauterelle, la termite, le ténébrion meunier, le scarabée rhinocéros asiatique, le ver de farine géant, le ver à soie domestiqué, la mouche commune, le moustique commun et la mouche soldat noire ont été étudiées pour la production d'ingrédients à base d’insectes (Henry et al. 2015). Parmi ces espèces d'insectes, la mouche soldat noire (Hermetia illucens) est une espèce très prometteuse pour la production d'aliments aquacoles, car les techniques d'élevage de masse pour la production industrielle de farine d'insectes de haute qualité à partir de cette espèce sont bien plus avancées dans leur processus de développement.
Le profil en acides aminés des insectes de l'ordre des Diptères, dont fait partie la mouche soldat noire (Hermetia illucens), présente un plus grand niveau de similarité avec la farine de poisson que la farine de soja, mais également que la farine d'autres insectes (orthoptères et coléoptères) (Barroso et al. 2014). La farine d'insecte provenant de la mouche soldat noire présente également une teneur élevée en protéines (50 à 70 %), et ces dernières ont démontré leur haute digestibilité.
Il a également été démontré que la chitine présente dans la farine d’insecte modulait le système immunitaire des crevettes et des poissons, ce qui pourrait avoir des effets bénéfiques sur la santé et la résistance aux maladies (Mousavi et al 2020, Gasco et al 2018).
Toutefois l’art antérieur ne décrit pas de bénéfice particulier lié à l’usage de farine deHermetia illucens(HI) dans un élevage de décapodes.
En particulier, l’article de Cummins et al (2017) décrit des compositions comprenant de la farine de HI obtenue par extraction alcoolique, combinée à la farine de soja. Dans ces essais, le taux d’inclusion de la farine de HI est compris entre 7% et 36%. Aucune différence significative en termes de performance de croissance, ni de survie n’a été observée chez les crevettes dont le régime comprenait de la farine de HI.
L’article de Mastoraki et al. (2019) rapporte une étude comparative de deux régimes alimentaires comprenant de la farine d’insectes, notamment de HI, combinée soit à une farine végétale, soit à une farine de poisson. Dans ces essais, le taux d’inclusion de la farine de HI est de 7,8%. Cette étude montre une amélioration des performances de croissance des crevettes nourries avec les formulations contenant de la farine d’insecte HI ou deMusca domesticaet de la farine de poisson comparé à une alimentation comprenant de la farine deTenebrio molitor.
Les élevages de crevettes sont aussi affectés par les pathogènes tels que la bactérieVibrioresponsable du syndrome de la nécrose hépatopancréatique aiguë (AHPNS) et le virus responsable du syndrome des taches blanches (WSSV). Un sujet d’intérêt pour les éleveurs de crevettes est donc de disposer de solutions permettant de renforcer la résistance des crevettes vis-à-vis de ces pathogènes, cause d’épidémies affectant la production de crevettes dans le monde entier.
Pour soutenir la croissance de l'industrie de production de décapodes, il est nécessaire de trouver des ingrédients alimentaires performants, qui peuvent être produits de manière durable et d’améliorer l'efficacité des systèmes de production afin de fournir des volumes plus importants tout en exerçant moins de pression sur les ressources naturelles. Protéger à la fois le potentiel à long terme de l'industrie et préserver les ressources naturelles est un défi croissant, non seulement dans le contexte de la production de décapodes tels que la crevetteL. vannamei, mais également dans tous les systèmes modernes de production alimentaire.
Compte tenu des enjeux que représente l’élevage de décapodes, un aliment permettant d’augmenter le rendement est recherché.
De manière inattendue, les inventeurs ont montré que la farine de larve de HI présente un intérêt particulier et spécifique pour améliorer le rendement d’un élevage de décapodes en aquaculture.
Ainsi, la présente invention concerne l’utilisation d’un aliment pour décapodes comprenant de 1% à 25 % en poids de farine de larve de HI, pour améliorer le rendement de l’élevage.
Avantages de l’invention
L’invention a pour objectif de proposer un aliment amélioré à destination des décapodes. Cet aliment comprend de la farine de HI dont il est rapporté pour la première fois qu’il présente des propriétés particulièrement intéressantes pour les décapodes, notamment pour la crevette.
L’ajout de farine de HI dans un aliment destiné à l’alimentation de décapodes permet d’améliorer de manière significative le rendement de l’élevage. Cette amélioration est observée sur plusieurs paramètres clés en aquaculture.
Tout d’abord, l’utilisation de cet aliment permet d’augmenter le gain de poids et la vitesse de croissance du décapode et ceci de façon linéaire jusqu’à un taux d’incorporation de la farine de Hermetia illucens d’environ 15%, et de manière globale sur une plage allant de 1% à 25% en poids par rapport à une alimentation contrôle sans farine d’insecte. Une amélioration de la vitesse de croissance implique que les décapodes atteignent un poids donné en un temps réduit, ce qui se traduit par une diminution des coûts fixes de production.
Cet aliment permet aussi d’améliorer le taux de conversion alimentaire de manière proportionnelle au taux d’incorporation de la farine de Hermetia illucens. Ce paramètre est économiquement essentiel pour maîtriser le coût de production en aquaculture, puisque grâce à cet aliment, les décapodes atteignent le même poids grâce à une quantité inférieure d’aliment.
Enfin, l’utilisation de cet aliment permet d’augmenter la résistance aux infections en cours d’élevage. Ceci se traduit par une baisse du taux de mortalité. En particulier, l’utilisation de cet aliment permet d’augmenter la résistance aux infections virales, notamment vis-à-vis du virus responsable du syndrome des taches blanches très répandu chez les crevettes, mais plus généralement présent chez les décapodes. L’utilisation de cet aliment permet également d’augmenter la résistance aux infections bactériennes, notamment vis-à-vis de la bactérie Vibrio responsable du syndrome de la nécrose hépatopancréatique aiguë.
DESCRIPTION DETAILLEE DE L’INVENTION
Un premier objet de l’invention concerne l’utilisation d’un aliment pour décapodes comprenant entre 1% et 25 % en poids de farine de larve deHermetia illucenspour améliorer le rendement de l’élevage.
Par « rendement amélioré », on entend une production plus élevée à savoir un gain de poids et une vitesse de croissance plus élevés, mais aussi une production plus rentable du fait d’un taux de conversion alimentaire amélioré. De plus, la notion de rendement couvre aussi le fait que l’aliment permet une meilleure résistance aux infections ; en minimisant la mortalité au sein de l’élevage, la production globale est améliorée.
Les inventeurs ont constaté que l’inclusion de farine de HI à un aliment pour décapode améliore significativement les propriétés nutritives de cet aliment, c’est-à-dire que les décapodes présentent un gain de poids plus rapide et plus élevé qu’en absence de farine de HI.
Dans un mode de réalisation préféré, la farine de HI est obtenue via un procédé de préparation mécanique, sans traitement chimique, sans extraction dans un solvant. Un tel procédé mécanique peut être une extraction mécanique de la partie solide des larves préalablement broyées et chauffées, suivie d’un séchage et d’un broyage de cette partie solide pour obtenir de la farine.
Les bénéfices de l’utilisation d’un aliment selon l’invention sont observés dès que l’aliment comprend 1% de farine de HI. Dans un mode de réalisation préféré, l’aliment comprend entre 3% et 25% de farine de HI, de manière encore plus préférée entre 5% et 25%, voire entre 10% et 25%. Dans un mode de réalisation particulier, l’aliment comprend entre 10% et 20% de farine de HI.
L’aliment comprend généralement un apport protéique complémentaire à celui de la farine de HI. Celui-ci est fourni par une farine animale, une farine végétale ou un mélange des deux. La farine végétale peut être choisie parmi la farine de blé, la farine de soja, ou toute autre farine appropriée, seule ou en mélange. De même, la farine animale peut être choisie parmi la farine de poisson, la farine de volaille ou toute autre farine appropriée, seule ou en mélange.
L’homme du métier sait préparer un aliment de base répondant aux besoins des décapodes en termes de protéines, acides aminés, vitamines et minéraux. La farine de HI peut donc être ajoutée à une formulation existante pour en améliorer les performances, ou venir se substituer partiellement ou totalement à l’un des composants d’un aliment pour décapode.
L’utilisation d’un aliment selon l’invention améliore le gain de poids et la vitesse de croissance des décapodes. En particulier, le gain de poids peut ainsi être doublé comme cela est illustré à l’Exemple 1.
L’utilisation d’un aliment selon l’invention améliore le taux de conversion alimentaire.
L’utilisation d’un aliment selon l’invention améliore la résistance aux infections du décapode.
Plus particulièrement, cet aliment améliore la résistance aux infections virales. Dans un mode de réalisation préféré, il améliore la résistance au virus responsable du syndrome des taches blanches chez les décapodes appelé WSSV (white spot syndrome virus). Dans ce mode de réalisation préféré, l’aliment comprend au moins 4,5 % de farine de HI.
Cet aliment permet également d’améliorer la résistance aux infections bactériennes. Dans un mode de réalisation préféré, il améliore la résistance au syndrome de nécrose pancréatique sévère causé par la soucheV. parahaemolyticusTW01 (AHPNS). Dans ce mode de réalisation préféré, l’aliment comprend de préférence au moins 10% de farine de HI.
Au sens de l’invention, le terme « décapode » couvre la crevette, la langoustine, l’écrevisse, la langouste, le homard et le crabe. Dans un mode de réalisation préféré, le décapode est une crevette. La crevette peut être choisie parmi les espèces suivantes :Litopenaeus vannamei,Litopenaeus stylirostrisetPenaeus monodon.
La présente invention sera mieux comprise à la lecture des exemples qui suivent, fournis à titre d’illustration et ne devant en aucun cas être considérés comme limitant la portée de la présente invention.
DESCRIPTION DES FIGURES
: Représentation graphique du gain de poids moyen (%) des crevettes en fonction du taux d’incorporation de la farine de Hermetia illucens. La ligne horizontale matérialise l’observation d’un gain de poids par rapport à l’aliment contrôle. La ligne oblique matérialise la tendance positive observée quant au gain de poids. Les valeurs associées à une même lettre ne présentent pas de différence significative entre elles (test de Fisher, p > 0,05).
: Représentation graphique du gain de poids moyen (g) des crevettes en fonction de l’aliment ingéré. CTRL correspond à l’aliment contrôle ne comprenant pas de farine de Hermetia illucens, tandis que A, B et C correspondent aux aliments comprenant respectivement 4,5%, 7,5% et 10,5% de farine de HI. Les valeurs associées à une même lettre ne présentent pas de différence significative entre elles (test de Fisher, p > 0,05).
: Représentation graphique de la mortalité cumulée des crevettes soumises à une infection au WSSV en fonction de l’aliment ingéré. « Mock » correspond au groupe contrôle négatif pour la maladie, et « CTRL » au groupe contrôle positif pour la maladie. Les crevettes de ces groupes ont été nourries avec l’aliment contrôle sans farine de Hermetia illucens. A, B et C correspondent aux aliments comprenant respectivement 4,5%, 7,5% et 10,5% de farine de HI
: Représentation graphique de la mortalité cumulée des crevettes soumises à une infection au AHPNS en fonction de l’aliment ingéré. « Mock » correspond au groupe contrôle négatif pour la maladie, et « CTRL » au groupe contrôle positif pour la maladie. Les crevettes de ces groupes ont été nourries avec l’aliment contrôle sans farine de Hermetia illucens. A, B et C correspondent aux aliments comprenant respectivement 4,5%, 7,5% et 10,5% de farine de HI
EXEMPLES
EXEMPLE 1 : Amélioration du rendement d’un élevage de crevettes L. stylirostris par l’apport d’un aliment enrichi en farine de Hermetia illucens
Matériel et méthodes
Conditions expérimentales: Cette expérience a été réalisée sur des crevettes de l’espèceL. stylirostris. La zone expérimentale est constituée de 40 bacs de 50L et leur cuve d’approvisionnement en eau. Un renouvellement en eau de mer de 100% par heure a été appliqué à l’ensemble des bacs. La qualité de l’approvisionnement en eau de mer est assurée par un système de filtration mécanique. De plus, une thermorégulation de l’eau a été réalisée par le biais d’un « groupe froid » et/ou de résistances dans les cuves. Seule la salinité (salinité naturelle avoisinant les 35‰) et la photopériode ne disposent pas de système de contrôle continu. Cette expérimentation a été effectuée avec des animaux provenant d’un bassin de soutien (Ifremer/LEAD-NC) d’un poids moyen initial 5,83±1,23g et à une densité de 7 individus/bac. Le transfert a été réalisé 7 jours avant le début de l’étude afin d’acclimater les animaux aux conditions expérimentales. Pendant cette période, une pesée individuelle des animaux et leur marquage ont été effectués afin d’établir les poids initiaux individuels et permettre leur identification tout au long de la période d’élevage. Au jour du marquage, la densité a été ramenée à 6 individus/bac. Ainsi, les poids individuels finaux et la survie ont pu être évalués en fin de période d’étude.
Plan de contrôle: La température (°C) a été suivie quotidiennement (07:30 et 16:00). Un siphonage des restes, une purge et un comptage du nombre de crevettes par bac (suivi de la survie) ont également été effectués 5 fois par semaine (hors week-end et jours fériés). Le cas échéant, des observations ont été consignées concernant les périodes de mues, le comportement des animaux ou tout autre paramètre d’intérêt.
Préparation de la farine de Hermetia illucens :
La farine est obtenue à partir des larvesH. Illucensqui sont chauffées, séparées mécaniquement en 3 phases (extraction mécanique, sans utilisation de solvant), séchées puis broyées.
Les larves sont abattues par immersion dans une eau chauffée à environ 70°C. Les larves dévitalisées sont broyées puis portées au minimum à 90°C. Le produit ainsi obtenu est séparé mécaniquement en 3 phases : la partie solide (gâteau), une partie liquide contenant des nutriments hydrosolubles (eau de colle) et l’huile. La farine, composée du gâteau, de l'eau de colle et d’antioxydant, est séchée. L’humidité en sortie de la farine est entre 5 et 10%. Enfin, la farine est broyée. La granulométrie de la farine en sortie de broyeur est inférieure à 2 mm.
Préparation et caractéristiques des aliments expérimentaux cibles:
La composition comprend en plus des farines animales et végétales, les ingrédients contenus classiquement dans les aliments pour décapodes à savoir : huile, acides aminés, vitamines et minéraux.
Tableau 1: Composition des aliments en % (ingrédients principaux)
Formules de calcul des paramètres étudiés dans cette étude :
- Gain de poids (GP ; %) = [(Pfinal-Pinitial) * 100] / Pinitialoù P est le poids individuel ;
- Quantité ingérée (Ing. ; g/individu) = Qingéré/Nb où Q est la quantité d’aliment ingéré et Nb le nombre d’individus ;
- Indice de conversion (IC) = Ing. / GP, qui correspond au taux de conversion alimentaire
Résultats
Tableau 2: Valeurs moyennes obtenues en gain de poids, quantité d’aliment ingéré et indice de conversion accompagnées de leurs écarts-types en fonction des différents aliments expérimentaux. Les valeurs associées à une même lettre ne présentent pas de différence significative entre elles (test de Fisher, p > 0,05).
Concernant le gain de poids, les résultats sont présentés au Tableau 2, ainsi qu’à la . On observe des gains de poids supérieurs à celui de l’aliment contrôle pour les aliments 1 à 6. Même si les gains de poids associés à des taux d’incorporation de farine de HI plus faibles ne présentent pas de différence significative par rapport à l’aliment contrôle, une tendance linéaire est clairement observée, avec des valeurs qui augmentent proportionnellement jusqu’à un taux d’incorporation de farine de HI d’environ 15%. Par ailleurs, les gains de poids pour les aliments 2 à 5, correspondant à un taux d’incorporation de farine de HI de 6,6% à 19,8%, sont significativement plus élevés que celui associé à l’aliment contrôle. En particulier, on observe que les aliments 4 et 5, comprenant respectivement 13,2% et 19,8% de farine de HI présentent des gains de poids près de deux fois supérieurs au groupe contrôle.
En ce qui concerne la prise alimentaire, on observe à nouveau des quantités ingérées plus élevées que celle observée pour l’aliment contrôle, ce qui traduit une appétence supérieure. Les résultats indiquent par ailleurs une tendance numérique entre la quantité d’aliment ingéré et le taux d’incorporation de farine de HI entre 3,3% et 9,9%. En particulier, la quantité ingérée pour l’aliment 3, qui correspond à un taux d’incorporation de farine de HI de 9,9%, est significativement plus élevée que celle associée à l’aliment contrôle.
L’indice de conversion permet d’obtenir une mesure objective couplant à la fois les données d’ingérés et de croissance. L’IC permet donc d’informer sur la capacité de transformation de l’aliment en biomasse des animaux. Dans cette expérimentation, les résultats montrent que l’IC des aliments avec de la farine de Hermetia illucens tend à être numériquement plus faible qu’avec l’aliment contrôle, ce qui implique que pour une même quantité, voire une quantité inférieure d’aliment ingéré, les crevettes nourries avec un aliment comprenant de la farine de HI présentent un gain de poids plus élevé.
Conclusion : Ces résultats montrent l’effet bénéfique de l’inclusion de farine de Hermetia illucens dans le régime alimentaire de crevettes, en particulier sur le gain de poids, la prise alimentaire et l’indice de conversion.
EXEMPLE 2 : Amélioration du rendement d’un élevage de crevettes Litopenaeus vannamei par l’apport d’un aliment enrichi en farine de Hermetia illucens
Matériels et méthodes
Conditions expérimentales :
Ces expériences ont été réalisées sur des crevettes de l’espèceLitopenaeus vannamei.
La zone expérimentale est constituée de 12 bacs de 290L. Les larves de crevettes ont été élevées dans un système de recirculation d'eau contenant de l'eau de mer artificielle à une salinité de 20 g L-1. Un filtre biologique / mécanique complet et des changements d'eau réguliers ont permis de conserver la teneur en ammoniac total (NH3/ NH4 +) inférieure à 0,05 mg L-1 et la teneur en nitrites (NO2 -) inférieure ou égale à 0,8 mg L-1. La température de l’eau a été maintenue constante à 27°C ± 1°C au moyen d'un système de contrôle de la température automatique. Un total de 1200 crevettes d'un poids corporel moyen d'environ 0,1 g a été utilisé pour composer au hasard 12 groupes de 100 individus. Chaque groupe était logé dans une unité d'alimentation. Chaque régime expérimental a été attribué à 3 unités d’alimentation. Les poids totaux des groupes ont été mesurés au début de l’expérimentation et à 28 jours.
Préparation et caractéristiques des aliments expérimentaux :
De la farine de HI a été ajoutée aux autres ingrédients (farine de poisson, farines végétales, acides aminés, vitamines et minéraux…) et le tout a été homogénéisé soigneusement. Afin de granuler les mélanges résultants, un liant d'alimentation et de l'eau ont été ajoutés. La pâte résultante a été passée à travers une machine de granulation. La température pendant la procédure n’a pas dépassé 50°C. 2 kg de chaque aliment ont été produits.
Tableau 3: Composition des aliments en % (ingrédients principaux)

Pendant la période d'expérimentation, les aliments ont été distribués automatiquement 6 fois par jour. Les groupes de crevettes ont reçu leur régime respectif selon une ration quotidienne calculée à partir du poids moyen des crevettes (pourcentage standard du poids) et ajustée quotidiennement en fonction de la croissance attendue, de la mortalité observée et de la consommation d’aliment par groupe.
La performance a été évaluée selon les paramètres suivants :
  • Gain de poids
  • Taux de croissance spécifique (TCS ; %/jour) = [(ln Pfinal– ln Pinitial)*100] / t où t est la durée en jours
  • Taux de conversion d'alimentation
Résultats
Tableau 4: Valeurs moyennes obtenues en gain de poids, taux de croissance spécifique et taux de conversion alimentaire accompagnées de leurs écarts-types en fonction des différents aliments expérimentaux. Les valeurs associées à une même lettre ne présentent pas de différence significative entre elles (test de Fisher, p > 0,05).
Tous les groupes de crevettes nourries avec de la farine de Hermetia illucens ont présenté une performance significativement plus élevée par rapport au traitement témoin (CTRL) à la fois pour le gain de poids et pour le taux de croissance spécifique. Les résultats sont présentés au Tableau 4, ainsi qu’à la . On observe une amélioration globale significative du gain de poids et de la vitesse de croissance (mesurée par le taux de croissance spécifique) chez les crevettes nourries avec des régimes où de la farine de HI a été ajoutée par rapport au groupe contrôle (CTRL). Cette amélioration est proportionnelle au niveau d'inclusion de la farine de Hermetia illucens dans le régime.
Les résultats montrent également une tendance décroissante du taux de conversion alimentaire corrélée à l’augmentation du taux d’incorporation de farine de HI dans le régime alimentaire. En particulier, le taux de conversion d'alimentation est significativement plus bas pour les régimes B et C, qui correspondent à des taux d’incorporation de farine de HI de 7,5% et 10,5% respectivement, que pour le régime CTRL.
Conclusion :
Les résultats de cet Exemple montrent une amélioration significative du gain de poids, de la vitesse de croissance et du taux de conversion alimentaire lors de l'inclusion de farine deHermetia illucensentre 4,5% et 10,5% dans le régime alimentaire de crevettes.
De plus, ces résultats confirment ceux obtenus à l’Exemple 1. Ainsi, il ressort que la farine de HI est bénéfique chez différentes espèces de crevettes, en particulier chezL. stylirostriset chezL. vannamei.
EXEMPLE 3 : Amélioration de la résistance au virus responsable du syndrome des taches blanches dans un élevage de crevettes par l’apport d’un aliment enrichi en farine de Hermetia illucens
Matériel et méthodes
Conditions expérimentales :
Les conditions expérimentales d’élevage mises en œuvre sont identiques à celles décrites à l’Exemple 2. Les crevettesLitopenaeus vannamei utilisées sont certifiées sans agent pathogène spécifique (SPF) pour les agents pathogènes suivants : IMNV, EHP, WSSV, TSV, YHV, NHP-B, IHHNV, CMNV, PvNV, MBV, HPV, AHPND / EMS, BP. Des groupes en triplicata de crevettes ont été nourris avec les aliments décrits précédemment (Exemple 2) pendant 28 jours. Cette procédure a permis d’évaluer l'effet de ces aliments sur les performances de croissance des crevettes. Trois jours avant le début du test de résistance aux pathogènes, les crevettes ont été transférées dans des unités d’infection de 10L remplies d’eau de mer artificielle (1 crevette par unité) pour permettre leur acclimatation. Pour le test de résistance au virus responsable du syndrome des taches blanches, 3 blocs de 10 individus chacun ont été formés à partir des crevettes de chacun des groupes A, B et C. 1 bloc pour le contrôle négatif (Mock) et 3 pour le contrôle positif ont été constitués à partir des crevettes du groupe CTRL. Les crevettes ont été inoculées par voie orale avec la préparation virale. Après l’inoculation, les crevettes ont été nourries deux fois par jour avec leur régime respectif. Les signes cliniques de maladie et de mortalité ont été suivis deux fois par jour.
Préparation virale
La souche WSSV Thai-1 (Escobedo-Bonilla et al., 2005) a été utilisée dans cette expérience. Un stock de ce virus est conservé à -70°C. Cette souche a été précédemment isolée en Thaïlande à partir de Penaeus monodon infecté naturellement et passée une fois dans l'écrevisse Pacifastacus leniusculus (Jiravanichpaisal et al., 2001) comme suit. Un stock congelé de suspension branchiale d'écrevisses (certifié exempt d'autres agents pathogènes majeurs de la crevette) a été injecté dans Litopenaeus vannamei sans pathogène spécifique (SPF) pour amplifier le virus.
Les carcasses de crevettes infectées résultantes ont été utilisées pour préparer une suspension de WSSV et immédiatement congelées. Le niveau d’infection a ensuite été déterminé selon la procédure décrite par Escobedo Bonilla et al. (2005). Cet inoculum a été utilisé pour infecter les crevettes par voie intramusculaire. Les carcasses infectées résultantes ont été utilisées pour préparer l'inoculum solide de WSSV, qui a été utilisé dans l'expérience d'infection orale. Des carcasses non infectées de crevettes soumises à la même procédure mais inoculées avec une suspension sans virus ont été utilisées pour préparer un inoculum solide à blanc (Mock).
Résultats
Tableau 5: Valeurs moyennes obtenues en mortalité finale dans le test de résistance au WSSV accompagnées de leurs écarts-types en fonction des différents aliments expérimentaux. Les valeurs associées à une même lettre ne présentent pas de différence significative entre elles (test de Fisher, p > 0,05).
Les résultats sont présentés au Tableau 5, ainsi qu’à la .
Comme attendu, la mortalité du groupe contrôle CTRL (contrôle positif pour la maladie) est comprise entre 50 et 80% et celle du groupe contrôle Mock (contrôle négatif pour la maladie) est de 0%. Cela démontre la validité du protocole. On observe une tendance générale montrant une survie plus élevée des crevettes nourries avec un aliment contenant de la farine de HI que dans le groupe contrôle positif. D’un point de vue statistique, cette amélioration est significative pour le groupe nourri avec l’aliment A. Ces résultats suggèrent que l’inclusion de farine HI dans le régime alimentaire des crevettes peut améliorer leur résistance au WSSV de manière significative à un taux d’incorporation de 4,5%. La réduction de mortalité observée avec les aliments B et C suggère qu'il existe en général une amélioration de la résistance des crevettes à une infection au WSSV par apport de farine de HI dans un élevage de crevettes pendant la phase de croissance.
EXEMPLE 4 : Amélioration de la résistance au syndrome de nécrose pancréatique sévère causé par la souche V. parahaemolyticus dans un élevage de crevettes par l’apport d’un aliment enrichi en farine de Hermetia illucens
Le protocole expérimental mis en œuvre est équivalent à celui décrit à l’Exemple 3 à l’exception du pathogène qui est ici une bactérie et qui a été inoculé par immersion.
Préparation bactérienne
La bactérie utilisée dans cette expérience est unVibrio parahaemolyticusisolé à partir de crevettes infectées par AHPNS / EMS. De manière plus spécifique, c’est la souche TW01 spécifique AHPND / EMS qui a été utilisée dans cette expérimentation. Cette bactérie a été isolée de bassins de crevettes infectés en Thailande. Un stock de cette bactérie est conservé à -70°C. Après décongélation, le stock a été inoculé de manière aseptique dans un milieu de culture et cultivé dans des conditions standard. Des suspensions quantifiées de TW01 ont été utilisées pour inoculer les crevettes par immersion.
Résultats
Tableau 6: Valeurs moyennes obtenues en mortalité finale dans le test de résistance au AHPNS accompagnées de leurs écarts-types en fonction des différents aliments expérimentaux. Les valeurs associées à une même lettre ne présentent pas de différence significative entre elles (test de Fisher, p > 0,05).
Les résultats sont présentés au Tableau 6, ainsi qu’à la .
Comme attendu, la mortalité du groupe contrôle CTRL (contrôle positif de la maladie) est comprise entre 50 et 80% alors que celle du groupe contrôle Mock (contrôle négatif pour la maladie) était de 0%. Cela démontre la validité du protocole. Aucune différence significative de mortalité n’a été observées entre les groupes nourris avec les aliments A et B et le groupe CTRL. Cela montre que l’apport d’un aliment contenant de la farine de HI n’entraîne pas d’augmentation de la mortalité face à la bactérie responsable du syndrome de la nécrose hépatopancréatique aiguë. Une réduction significative de la mortalité est observée avec l’aliment C, qui correspond à un taux d’incorporation de la farine de HI de 10,5%.
Ces résultats suggèrent que l’inclusion de farine de HI dans une alimentation de croissance des crevettes peut améliorer la résistance de ces crevettes à l'AHPNS, en particulier à un taux d’incorporation de HI de 10,5%.

Claims (10)

  1. Utilisation d’un aliment pour décapodes comprenant entre 1% et 25 % en poids de farine de larve deHermetia illucenspour améliorer le rendement de l’élevage.
  2. Utilisation selon la revendication 1 pour améliorer le gain de poids dudit décapode.
  3. Utilisation selon la revendication 1 pour améliorer la vitesse de croissance dudit décapode.
  4. Utilisation selon la revendication 1 pour améliorer le taux de conversion alimentaire.
  5. Aliment pour décapodes comprenant entre 1% et 25 % en poids de farine de larve deHermetia illucenspour son utilisation pour améliorer la résistance aux infections dudit décapode.
  6. Aliment selon la revnedication 5 pour son utilisation selon la revendication 5, pour améliorer la résistance aux infections virales.
  7. Aliment selon la revendication 6 pour son utilisation selon la revendication 6, pour améliorer la résistance au virus responsable du syndrome des taches blanches.
  8. Aliment selon la revendication 5 pour son utilisation selon la revendication 5, pour améliorer la résistance au syndrome de nécrose hépato pancréatique sévère.
  9. Utilisation selon l’une des revendications 1 à 4 ou aliment selon l’une des revendications 5 à 8 pour son utilisation selon l’une des revendications 5 à 8, dans laquelle ledit décapode est choisi parmi la crevette, la langoustine, l’écrevisse, la langouste, le homard et le crabe.
  10. Utilisation selon la revendication 9 ou aliment selon la revendication 9 pour son utilisation selon la revendication 9, dans laquelle ledit décapode est une crevette.
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