FR3116178A1 - Aliment ameliore destine a l’elevage des crevettes comprenant de la farine de hermetia illucens - Google Patents

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Abstract

L’invention a trait au domaine de l’alimentation des décapodes comprenant de la farine animale. Elle concerne plus particulièrement, un aliment amélioré destiné à l’élevage des crevettes qui permet d’obtenir un meilleur rendement chez les crevettes et qui comprend de la farine de larve de mouche soldat noire de l’espèce Hermetia i llucens .

Description

ALIMENT AMELIORE DESTINE A L’ELEVAGE DES CREVETTES COMPRENANT DE LA FARINE DEHERMETIA ILLUCENS
L’invention a trait au domaine de l’alimentation des décapodes comprenant de la farine d’insecte. Elle concerne plus particulièrement, un aliment amélioré destiné à l’élevage des crevettes comprenant de la farine de larve de mouche soldat noire de l’espèceHermetia i llucens .Il permet d’améliorer le gain de poids, la vitesse de croissance et le taux de conversion alimentaire ainsi que la résistance aux infections des crevettes.
DOMAINE DE L’INVENTION
L’élevage de crevettes est une branche de l’aquaculture dont la production commerciale ne cesse d’augmenter, stimulé par une demande importante des territoires comme les Etats-Unis, le Japon et l’Europe occidentale. La grande majorité des crevettes d'élevage appartiennent à la famille des Penaeidae et deux espèces, la crevette à pattes blanches (Litopenaeus vannamei) et la crevette géante tigrée (Penaeus monodon), représentent près de 80 % de tous les élevages. Afin de répondre à l’augmentation de la demande mondiale, les industriels doivent produire des volumes accrus de crevettes, ce qui représente des coûts d’élevage importants, en particulier pour l’alimentation de ces animaux tout au long de leur cycle d’élevage. Les aliments destinés aux crevettes sont généralement composés de farine de poisson (« Fish meal »). En plus d’être coûteuse, la farine de poisson a une empreinte écologique importante, car elle est produite à partir de ressources épuisables et les volumes nécessaires à l’approvisionnement des filières pénéicoles et plus généralement aquacoles sont considérables. En effet, aujourd’hui, la consommation de volumes importants de farine de poisson par les crevettes est indispensable pour que ces dernières aient des mensurations optimales, propres à la consommation humaine.
Cette monoculture industrielle est très sensible aux maladies. Ces dernières ont provoqué plusieurs épidémies à grande échelle au sein de certaines populations de crevettes d'élevage. Parmi les maladies fréquentes, on retrouve le syndrome de nécrose hépato pancréatique sévère ou encore le syndrome des taches blanches.
La crevette blanche du Pacifique (Litopenaeus vannamei) est l'espèce de crevette la plus produite au monde, avec des volumes de production dépassant 4,1 millions de tonnes métriques en 2016 (FAO 2018). Pour soutenir la croissance de l'industrie de la crevette blanche du Pacifique, il est nécessaire de trouver des ingrédients alimentaires performants, qui peuvent être produits de manière durable et d’améliorer l'efficacité des systèmes de production afin de fournir des volumes plus importants tout en exerçant moins de pression sur les ressources naturelles.
Protéger à la fois le potentiel à long terme de l'industrie et préserver les ressources naturelles est un défi croissant, non seulement dans le contexte de la production deL. vannamei, mais également dans tous les systèmes modernes de production alimentaire.
Les ingrédients d'origine végétale sont donc devenus, au cours des dernières décennies, des ingrédients couramment utilisés dans la formulation des aliments aquacoles (Barrows et al. 2007, Gatlin et al. 2007, Oliva-Teles et al. 2015). Ils ont ainsi été utilisés avec succès pour remplacer une partie de la farine de poisson dans les formules de ces aliments. Cependant, les protéines végétales présentent certaines limites nutritionnelles pour les aliments aquacoles : présence de facteurs antinutritionnels, niveaux élevés de fibres et de polysaccharides non amylacés, acides gras inadéquats, profils déséquilibrés d'acides aminés essentiels, et digestibilité et appétence réduites. En outre, une substitution complète de la farine de poisson par des ingrédients végétaux peut entraîner des pressions supplémentaires sur les ressources agricoles essentielles et sur l’environnement (par exemple la déforestation liée à la culture du soja). Ainsi, des efforts de recherche ont été déployés pour trouver des ingrédients de substitution plus performants.
De ce fait, les industriels se tournent vers de nouvelles alternatives à la farine de poisson. De plus en plus d’aliments, notamment dans les élevages de poisson, intègrent de la farine d’insecte. En effet, la production de farine d’insecte est plus respectueuse de l’environnement et peut être issue d’un élevage reposant sur le modèle du vertical farming, ce qui se traduit par une surface au sol nécessaire moindre par rapport à d’autres élevages.
L’art antérieur rapporte des exemples d’utilisation de farine d’insecte comme substituant à la farine de poisson. Le brevet CN108576485 divulgue un aliment composé de farine d’insecteHermetia Illucenspour nourrir des poissons.
Néanmoins, il est généralement connu de l’état de la technique que les aliments à base d’insecte, et notammentHermetia Illucens, lorsqu’ils sont substitués à la farine de poisson, ne permettent pas d’obtenir un gain de poids et un poids final convenables par rapport à la farine de poisson. A ce titre, l’article « Evaluation of Black Soldier Fly (Hermetia Illucens) larvae meal as partial or total replacement of marine fish meal in practicals diets for pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei) » (Cummins et al. 2017) décrit des compositions comprenant de la farine de HI obtenue par extraction alcoolique, combinée à la farine de soja. Dans ces essais, le taux d’inclusion de la farine de HI est compris entre 7% et 36%. Aucune différence significative en termes de performance de croissance, ni de survie n’a été observée chez les crevettes dont le régime comprenait de la farine de HI. Cet article conclut que la croissance des crevettes nourries avec un aliment comprenant de la farine de poisson et de la farine de HI est plus faible que celui de crevettes nourries avec de la farine de poisson.
Compte tenu des défis alimentaires actuels et futurs, l’aquaculture est une solution prometteuse à l’échelle mondiale ; les industriels sont à la recherche de solutions pour améliorer le rendement des élevages de crevettes.
Les inventeurs ont mis au point un aliment destiné à l’élevage de crevettes comprenant une part de farine deHermetia i llucensen association avec de la farine de poisson ; cet aliment permet une amélioration du rendement des élevages des crevettes par rapport à un aliment conventionnel équivalent à base de farine de poisson.
Ainsi, la présente invention concerne un aliment destiné à l’élevage de crevettes permettant une amélioration du rendement de l’élevage comprenant, au lieu des 5 à 30% de farine de poisson d’un aliment conventionnel, de 5 à 30% de farine animale constituée de farine de poisson et de farine de larve deHermetia illucens, caractérisé en ce que ladite farine de larve deHermetia illucensreprésente entre 30 et 60% de ladite farine animale.
La présente invention concerne également l’utilisation de cet aliment pour l’amélioration du gain de poids, de la vitesse de croissance et du taux de conversion alimentaire et la résistance aux infections des crevettes.
AVANTAGES DE L’INVENTION
Les inventeurs ont élaboré un aliment destiné à l’élevage de crevettes comprenant de la farine de larve deH ermetia i llucens(HI), et qui, de manière tout à fait surprenante, permet d’atteindre un rendement significativement supérieur à celui observé pour un aliment équivalent contenant de la farine de poisson au lieu de la farine de HI. Cette amélioration du rendement est observée sur plusieurs paramètres clés en aquaculture.
Tout d’abord, lorsque cet aliment est utilisé dans l’alimentation des crevettes, on observe une amélioration significative des performances de croissance. Les crevettes nourries avec cet aliment ont un gain de poids plus élevé et grossissent plus rapidement que celles nourries avec une alimentation classique à base de farine de poisson. Une amélioration de la vitesse de croissance implique que les décapodes atteignent un poids donné en un temps réduit, ce qui se traduit par une diminution des coûts fixes de production.
L’utilisation de cet aliment permet également d’améliorer le taux de conversion alimentaire. Ce paramètre est économiquement essentiel pour maîtriser le coût de production en aquaculture, puisque grâce à cet aliment, les crevettes atteignent le même poids à partir d’une quantité inférieure d’aliment.
Enfin, l’utilisation d’un aliment tel que décrit dans la présente demande permet d’améliorer la résistance des crevettes aux infections en cours d’élevage. Ceci se traduit par une baisse du taux de mortalité. En particulier, l’utilisation de cet aliment permet d’augmenter la résistance aux infections virales, notamment vis-à-vis du virus responsable du syndrome des taches blanches très répandu chez les crevettes, mais plus généralement présent chez les décapodes. L’utilisation de cet aliment permet également d’augmenter la résistance aux infections bactériennes, notamment vis-à-vis de la bactérieVibrioresponsable du syndrome de la nécrose hépatopancréatique aiguë.
DESCRIPTION DETAILLEE DE L’INVENTION
Un premier objet de la présente invention concerne un aliment destiné à l’élevage de crevettes permettant d’améliorer le rendement de l’élevage, comprenant de 5 à 30% de farine animale constituée de farine de poisson et de farine de larve deHermetia illucens, caractérisé en ce que ladite farine de larve deHermetia illucensreprésente entre 30 et 60% de ladite farine animale.
Par « aliment destiné à l’élevage de crevettes » on entend tout aliment utilisé en aquaculture, utilisé comme nourriture dans le régime alimentaire des crevettes d’élevages. Dans le cadre de l’invention, il s’agit d’un aliment comprenant entre 5% et 30% de farine animale constituée de farine de poisson et de farine de HI.
Par « farine animale » on entend une farine produite à partir d’animaux, notamment d’animaux marins tels que les poissons et crustacés, d’insectes ou d’autres animaux tels que les volailles, seule ou en mélange. Dans un mode de réalisation préféré, la farine animale comprend de la farine de poisson.
Dans un mode de réalisation préféré, la farine de larve de HI représente entre 40% et 60% de la farine animale. Dans un mode de réalisation encore plus préféré, la farine de HI représente entre 50 et 60% de la farine animale ; ce mode de réalisation est particulièrement adapté pour améliorer la résistance aux infections des crevettes.
Par « amélioration du rendement de l’élevage de crevettes » on entend l’amélioration du gain de poids, de la vitesse de croissance et du taux de conversion alimentaire par rapport aux performances des crevettes nourries avec un aliment équivalent classique (ou dit « conventionnel ») contenant de la farine de poisson au lieu de la farine de HI. De plus, la notion de rendement couvre aussi le fait que l’aliment permet une meilleure résistance aux infections ; en minimisant la mortalité au sein de l’élevage, la production globale est améliorée.
Dans un mode de réalisation particulier, les crevettes sont choisies parmi les espècesLitopenaeus vannamei , Litopenaeus s tylirostrisetPenaeus monodon .
Dans un mode de réalisation particulier de l’invention, la farine de HI est obtenue via un procédé de préparation mécanique, sans traitement chimique, sans extraction dans un solvant. Un tel procédé mécanique peut être une extraction mécanique de la partie solide des larves préalablement broyées et chauffées, suivie d’un séchage et d’un broyage de cette partie solide pour obtenir de la farine.
Quel que soit le procédé, les larves deH. illucensutilisées pour la fabrication de la farine sont de préférence entières.
Dans un second objet de l’invention, l’aliment destiné à l’élevage de crevettes, est utilisé pour améliorer le rendement dudit élevage de crevettes.
Le rendement comprend les performances de croissance de la crevette qui sont évaluées sur le gain de poids, la vitesse de croissance et le taux de conversion alimentaire, et la résistance aux infections.
L’utilisation d’un aliment selon l’invention améliore le gain de poids et la vitesse de croissance desdites crevettes. Les crevettes nourries avec l’aliment comprenant 5 à 30% de farine animale constituée de farine de poisson et de farine de HI, caractérisé en ce que la farine de larveHermetia i llucens(HI) représente 30 à 60% de ladite farine animale, grandissent et grossissent plus vite et davantage que des crevettes nourries avec un aliment équivalent contenant de la farine de poisson au lieu de la farine de HI.
L’utilisation d’un aliment selon l’invention améliore aussi le taux de conversion alimentaire des desdites crevettes. Les crevettes nourries avec l’aliment comprenant 5 à 30% de farine animale constituée de farine de poisson et de farine de HI, caractérisé en ce que la farine de larveHermetia i llucens(HI) représente 30 à 60% de ladite farine animale, ont une capacité de transformation de l’aliment en biomasse plus important que les crevettes nourries avec un aliment équivalent contenant de la farine de poisson au lieu de la farine de HI.
Enfin, l’utilisation d’un aliment selon l’invention améliore la résistance aux infections desdites crevettes. Les crevettes nourries avec l’aliment comprenant 5 à 30% de farine animale constituée de farine de poisson et de farine de HI, caractérisé en ce que la farine de larveHermetia i llucens(HI) représente 30 à 60% de ladite farine animale, résistent mieux aux infections que les crevettes nourries avec un aliment contenant de la farine de poisson au lieu de la farine de HI. On remarque notamment une résistance plus importante aux infections virales telles que celle causée par le virus responsable du syndrome des taches blanches. Les crevettes résistent également mieux aux infections bactériennes telles que le syndrome de nécrose hépato pancréatique sévère.
La présente invention sera mieux comprise à la lecture des exemples qui suivent, fournis à titre d’illustration et ne devant en aucun cas être considérés comme limitant la portée de la présente invention.
DESCRIPTION DES FIGURES
: Représentation graphique du gain de poids moyen (%) en fonction de l’aliment ingéré. La ligne horizontale matérialise l’observation d’un gain de poids par rapport à l’aliment contrôle dont la farine animale est entièrement composée de farine de poisson à hauteur de 30% (aliment sans farine de HI). La ligne oblique matérialise la tendance positive observée sur le gain de poids. Les valeurs associées à une même lettre ne présentent pas de différence significative entre elles (test de Fisher, p > 0,05).
: Représentation graphique du gain de poids moyen (%) en fonction de l’aliment ingéré. La ligne horizontale matérialise l’observation d’un gain de poids par rapport à l’aliment contrôle dont la farine animale est entièrement composée de farine de poisson à hauteur de 30% (aliment sans farine de HI). La ligne en pointillés matérialise la tendance positive observée sur le gain de poids. Les valeurs associées à une même lettre ne présentent pas de différence significative entre elles (test de Fisher, p > 0,05).
: Représentation graphique de l’indice de conversion moyen en fonction de l’aliment ingéré. La ligne horizontale matérialise l’observation d’un indice de conversion par rapport à l’aliment contrôle dont la farine animale est entièrement composée de farine de poisson à hauteur de 30% (aliment sans farine de HI). La ligne en pointillés matérialise la tendance observée sur l’indice de conversion par rapport à l’aliment contrôle. Les valeurs associées à une même lettre ne présentent pas de différence significative entre elles (test de Fisher, p > 0,05).
: Représentation graphique du gain de poids (g), du taux de croissance spécifique (%/jour) et du taux de conversion alimentaire moyens en fonction de l’aliment ingéré. CTRL correspond à l’aliment contrôle dont la farine animale est entièrement composée de farine de poisson à hauteur de 15%. A, B et C correspondent aux aliments améliorés dans lesquels la farine de HI représente respectivement 30%, 50% et 70% de la farine animale constituée de farine de poisson et de farine de HI. Les valeurs associées à une même lettre ne présentent pas de différence significative entre elles (test de Fisher, p > 0,05).
: Représentation graphique des résultats recueillis lors de l’expérimentation avec le pathogène AHPNS. « Mock » correspond au groupe contrôle négatif pour la maladie, « CTRL » au groupe contrôle positif pour la maladie. Les crevettes de ces deux groupes ont été nourries avec l’aliment contrôle dont la farine animale est entièrement composée de farine de poisson à hauteur de 15%. A, B et C correspondent aux aliments améliorés dans lesquels la farine de HI représente respectivement 30%, 50% et 70% de la farine animale constituée de farine de poisson et de farine de HI. Les valeurs associées à une même lettre ne présentent pas de différence significative entre elles (test de Fisher, p > 0,05).
: Représentation graphique des résultats recueillis lors de l’expérimentation avec le pathogène WSSV. « Mock » correspond au groupe contrôle négatif pour la maladie, « CTRL » au groupe contrôle positif pour la maladie. Les crevettes de ces deux groupes ont été nourries avec l’aliment contrôle dont la farine animale est entièrement composée de farine de poisson à hauteur de 15%. A, B et C correspondent aux aliments améliorés dans lesquels la farine de HI représente respectivement 30%, 50% et 70% de la farine animale constituée de farine de poisson et de farine de HI. Les valeurs associées à une même lettre ne présentent pas de différence significative entre elles (test de Fisher, p > 0,05).
EXEMPLES
EXEMPLE 1 : Amélioration du rendement d’un élevage de crevettes L. stylirostris par l’apport d’un aliment amélioré comprenant de la farine de Hermetia illucens
Matériel et méthodes
Conditions expérimentales : Cette expérience a été réalisée sur des crevettes de l’espèceL. stylirostris.La zone expérimentale est constituée de 40 bacs de 50L et leur cuve d’approvisionnement en eau. Un renouvellement en eau de mer de 100% par heure a été appliqué à l’ensemble des bacs. La qualité de l’approvisionnement en eau de mer est assurée par un système de filtration mécanique. De plus, une thermorégulation de l’eau a été réalisée par le biais d’un « groupe froid » et/ou de résistances dans les cuves. Seule la salinité (salinité naturelle avoisinant les 35‰) et la photopériode ne disposent pas de système de contrôle continu. Cette expérimentation a été effectuée avec des animaux provenant d’un bassin de soutien (Ifremer/LEAD-NC) d’un poids moyen initial 5,83±1,23g et à une densité de 7 individus/bac. Le transfert a été réalisé 7 jours avant le début de l’étude afin d’acclimater les animaux aux conditions expérimentales. Pendant cette période, une pesée individuelle des animaux et leur marquage ont été effectués afin d’établir les poids initiaux individuels et permettre leur identification tout au long de la période d’élevage. Au jour du marquage, la densité a été ramenée à 6 individus/bac. Ainsi, les poids individuels finaux et la survie pourront être évalués en fin de période d’étude.
Plan de contrôle: La température (°C) a été suivie quotidiennement (07:30 et 16:00). Un siphonage des restes, une purge et un comptage du nombre de crevette par bac (suivi de la survie) ont également été effectués 5 fois par semaine (hors week-end et jours fériés). Le cas échéant, des observations ont été consignées concernant les périodes de mues, le comportement des animaux ou tout autre paramètre d’intérêt.
Préparation de la farine d e Hermetia illucens
La farine est obtenue à partir des larvesH. Illucensqui sont chauffées, séparées mécaniquement en 3 phases (extraction mécanique, sans utilisation de solvant), séchées puis broyées.
Les larves sont abattues par immersion dans une eau chauffée à environ 70°C. Les larves dévitalisées sont broyées puis portées au minimum à 90°C. Le produit ainsi obtenu est séparé mécaniquement en 3 phases : la partie solide (gâteau), une partie liquide contenant des nutriments hydrosolubles (eau de colle) et l’huile. La farine, composée du gâteau, de l'eau de colle et d’antioxydant, est séchée. L’humidité en sortie de la farine est entre 5 et 10%. Enfin, la farine est broyée. La granulométrie de la farine en sortie de broyeur est inférieure à 2 mm.
Préparation et caractéristiques des aliments expérimentaux cibles:
Les compositions comprennent en plus des farines animales et végétales, les ingrédients contenus classiquement dans les aliments pour crevettes à savoir : huile, acides aminés, vitamines et minéraux. Les aliments 1 à 7, dont la composition est décrite dans le Tableau 1, sont obtenus en substituant dans un ratio 1:1 une part croissante de farine de poisson contenue dans l’aliment contrôle par de la farine de HI. Cela permet d’obtenir des aliments qui comprennent environ 30% en poids de farine animale constituée de farine de poisson et de farine de HI, et qui présentent différentes teneurs en farine de HI de cette farine animale, égales au taux de remplacement de la farine de poisson de l’aliment contrôle par de la farine de HI (Tableau 2). Pour chacun des aliments 1 à 7, l’aliment contrôle représente un aliment équivalent contenant de la farine de poisson au lieu de la farine de HI.
Tableau 1: Composition des aliments en % (ingrédients principaux)
Formules de calcul des paramètres étudiés dans cette étude :
- Gain de poids (GP ; %) = [(Pfinal-Pinitial) * 100] / Pinitialoù P est le poids individuel ;
- Quantité ingérée (Ing. ; g/individu) = Qingéré/Nb où Q est la quantité d’aliment ingéré et Nb le nombre d’individus ;
- Indice de conversion (IC) = Ing. / GP, qui correspond au taux de conversion alimentaire
Résultats
Tableau 2: Valeurs moyennes obtenues en gain de poids, quantité d’aliment ingéré et indice de conversion accompagnées de leurs écarts-types en fonction des différents aliments expérimentaux. Les valeurs associées à une même lettre ne présentent pas de différence significative entre elles (test de Fisher, p > 0,05). (* farine animale = farine de poisson + farine de HI)
Concernant le gain de poids, les résultats sont présentés au Tableau 2, ainsi qu’à la . On observe que les aliments 2 à 5, qui correspondent à une teneur en farine de HI allant de 20 à 61% des 30% de farine animale (farine de poisson + farine de HI), présentent des gains de poids significativement plus élevés que celui observé pour l’aliment contrôle. En particulier, on observe que les aliments 4 et 5, caractérisés en ce que la farine de HI représente respectivement 39% et 61% de la farine animale, montrent des gains de poids près de deux fois supérieurs au groupe contrôle.
En ce qui concerne la prise alimentaire, on observe des quantités ingérées plus élevées que celle observée pour l’aliment contrôle, ce qui traduit une appétence supérieure. Les résultats indiquent par ailleurs une tendance numérique entre la quantité d’aliment ingéré et la teneur en HI de la farine animale entre 10% et 29%. En particulier, la quantité ingérée pour l’aliment 3, qui correspond à une teneur en farine de HI dans la farine animale de 29%, est significativement plus élevée que celle associée à l’aliment contrôle.
L’indice de conversion permet d’obtenir une mesure objective couplant à la fois les données d’ingérés et de croissance. L’IC permet donc d’informer sur la capacité de transformation de l’aliment en biomasse des animaux. Dans cette expérimentation, les résultats montrent que l’IC des aliments avec de la farine deHermetia illucenstend à être numériquement plus faible qu’avec l’aliment contrôle, ce qui implique que pour une même quantité, voire une quantité inférieure d’aliment ingéré, les crevettes nourries avec un aliment comprenant de la farine de HI présentent un gain de poids plus élevé que celles nourries avec un aliment équivalent contenant de la farine de poisson au lieu de la farine de HI.
Conclusion :Ces expériences, qui ont consisté à substituer dans un ratio 1:1 de la farine de poisson par de la farine de HI (en prenant pour référence un aliment classique à base de farine de poisson), démontrent de meilleures performances de croissance avec des aliments dont la farine animale comporte de la farine de HI par rapport à un aliment équivalent contenant de la farine de poisson au lieu de la farine de HI.
EXEMPLE 2 : Amélioration du rendement d’un élevage de crevettes L. stylirostris par l’apport d’un aliment amélioré comprenant de la farine de Hermetia illucens
Matériels et méthodes
Conditions expérimentales :Cette expérience a été réalisée sur des crevettes de l’espèceL. stylirostris.La zone expérimentale est constituée de 40 bacs de 50L et leur cuve d’approvisionnement en eau. Un renouvellement en eau de mer de 100% par heure a été appliqué à l’ensemble des bacs. La qualité de l’approvisionnement en eau de mer est assurée par un système de filtration mécanique. De plus, une thermorégulation de l’eau a été réalisée par le biais d’un « groupe froid » et/ou de résistance dans les cuves. Seule la salinité (salinité naturelle avoisinant les 35‰) et la photopériode ne disposent pas de système de contrôle continu. Cette expérimentation a été effectuée avec des animaux provenant d’un bassin de soutien (Ifremer/LEAD-NC) d’un poids moyen initial 5,83±1,23g et à une densité de 7 individus/bac. Le transfert a été réalisé 7 jours avant le début de l’étude afin d’acclimater les animaux aux conditions expérimentales. Pendant cette période, une pesée individuelle des animaux et leur marquage ont été effectués afin d’établir les poids initiaux individuels et permettre leur identification tout au long de la période d’élevage. Au jour du marquage, la densité a été ramenée à 6 individus/bac. Ainsi, les poids individuels finaux et la survie ont pu être évalués en fin de période d’étude.
Plan de contrôle :La température (°C) a été suivie quotidiennement (07:30 et 16:00). Un siphonage des restes, une purge et un comptage du nombre de crevette par bac (suivi de la survie) ont également été effectués 5 fois par semaine (hors week-end et jours fériés). Le cas échéant, des observations ont été consignées concernant les périodes de mues, le comportement des animaux ou tout autre paramètre d’intérêt.
Préparation et caractéristiques des aliments expérimentaux cibles :
Les compositions comprennent en plus des farines animales et végétales, les ingrédients contenus classiquement dans les aliments pour crevettes à savoir : huile, acides aminés, vitamines et minéraux. Les aliments 1 à 7, dont la composition est décrite dans le Tableau 3, sont obtenus en substituant dans un ratio 1:1 une part croissante de farine de poisson contenue dans l’aliment contrôle par de la farine de HI. Cela permet d’obtenir des aliments qui comprennent 30% en poids de farine animale constituée de farine de poisson et de farine de HI, et qui présentent différentes teneurs en farine de HI de cette farine animale, égales au taux de remplacement de la farine de poisson de l’aliment contrôle par de la farine de HI (Tableau 4). Pour chacun des aliments 1 à 7, l’aliment contrôle représente un aliment équivalent contenant de la farine de poisson au lieu de la farine de HI.
Tableau 3: Composition des aliments en % (ingrédients principaux)
Formules de calcul des paramètres étudiés dans cette étude:
Les paramètres étudiés dans les mêmes que dans l’Exemple 1.
Résultats
Tableau 4: Valeurs moyennes obtenues en gain de poids, quantité d’aliment ingéré et indice de conversion accompagnées de leurs écarts-types en fonction des différents aliments expérimentaux. Les valeurs associées à une même lettre ne présentent pas de différence significative entre elles (test de Fisher, p > 0,05). (* farine animale = farine de poisson + farine de HI)
Concernant le gain de poids, les résultats sont présentés au Tableau 4, ainsi qu’à la . On observe des gains de poids supérieurs à celui de l’aliment contrôle pour les aliments 2 à 7. Même si les gains de poids ne présentent pas de différence significative par rapport à l’aliment contrôle, une tendance linéaire peut être observée. Par ailleurs, l’aliment 7, qui correspond à une teneur en farine de HI de 40% des 30% de farine animale (farine de poisson + farine de HI), présente un gain de poids significativement plus élevé que celui observé pour l’aliment contrôle.
En ce qui concerne la prise alimentaire, aucune différence significative n’est observée, ce qui traduit une appétence équivalente.
Enfin, concernant l’indice de conversion, une représentation graphique des résultats est présentée à la . Les résultats montrent que l’indice de conversion des aliments avec de la farine de Hermetia illucens tend à être numériquement plus faible qu’avec l’aliment contrôle, ce qui implique que pour une même quantité, voire une quantité inférieure d’aliment ingéré, les crevettes nourries avec un aliment comprenant de la farine de HI présentent un gain de poids plus élevé que celles nourries avec un aliment équivalent contenant de la farine de poisson au lieu de la farine de HI.
Conclusion :Ces expériences, qui ont consisté à substituer dans un ratio 1:1 de la farine de poisson par de la farine de HI (en prenant pour référence un aliment classique à base de farine de poisson), démontrent un gain de poids amélioré avec un aliment dont la farine animale comporte 40% de farine de HI par rapport à un aliment équivalent sans farine de HI. Les résultats relatifs à l’indice de conservation font apparaître une diminution, comparé à l’indice de conversion de l’aliment contrôle.
EXEMPLE 3 : Amélioration du rendement d ’un élevage de crevettes Litop enaeus vannamei par l’apport d’un aliment amélioré comprenant de la farine de Hermetia illucens
Matériels et méthodes
Conditions expérimentales :Ces expériences ont été réalisées sur des crevettes de l’espèceLitop enaeus vannamei .
La zone expérimentale est constituée de 12 bacs de 290L. Les larves de crevettes ont été élevées dans un système de recirculation d'eau contenant de l'eau de mer artificielle à une salinité de 20 g L-1. Un filtre biologique / mécanique complet et des changements d'eau réguliers ont permis de conserver la teneur en ammoniac total (NH3/ NH4 +) inférieure à 0,05 mg L-1 et la teneur en nitrites (NO2 -) inférieure ou égale à 0,8 mg L-1. La température de l’eau a été maintenue constante à 27°C ± 1°C au moyen d'un système de contrôle de la température automatique. Un total de 1200 crevettes d'un poids corporel moyen d'environ 0,1 g a été utilisé pour composer au hasard 12 groupes de 100 individus. Chaque groupe était logé dans une unité d'alimentation. Chaque régime expérimental a été attribué à 3 unités d’alimentation. Les poids totaux des groupes ont été mesurés au début de l’expérimentation et à 28 jours.
Préparation et caractéristiques des aliments expérimentaux :
De la farine de HI a été ajoutée aux autres ingrédients (farine de poisson, farines végétales, acides aminés, vitamines et minéraux…) et le tout a été homogénéisé soigneusement. Afin de granuler les mélanges résultants, un liant d'alimentation et de l'eau ont été ajoutés. La pâte résultante a été passée à travers une machine de granulation. La température pendant la procédure n’a pas dépassé 50°C. 2 kg de chaque aliment ont été produits.
Les aliments A, B et C, dont la composition est décrite dans le Tableau 5, sont obtenus en substituant dans un ratio 1:1 une part croissante de farine de poisson contenue dans l’aliment contrôle par de la farine de HI. Cela permet d’obtenir des aliments qui comprennent 15% en poids de farine animale constituée de farine de poisson et de farine de HI, et qui présentent différentes teneurs en farine de HI de cette farine animale, égales au taux de remplacement de la farine de poisson de l’aliment contrôle par de la farine de HI (Tableau 6). Pour chacun des aliments ainsi obtenus, l’aliment contrôle représente un aliment équivalent contenant de la farine de poisson au lieu de la farine de HI.
Tableau 5: Composition des aliments en % (ingrédients principaux)
Pendant la période d'expérimentation, les aliments ont été distribués automatiquement 6 fois par jour. Les groupes de crevettes ont reçu leur régime respectif selon une ration quotidienne calculée à partir du poids moyen des crevettes (pourcentage standard du poids) et ajustée quotidiennement en fonction de la croissance attendue, de la mortalité observée et de la consommation d’aliment par groupe.
La performance a été évaluée selon les paramètres suivants :
  • Gain de poids
  • Taux de croissance spécifique (TCS ; %/jour) = [(ln Pfinal– ln Pinitial)*100] / t où t est la durée en jours
  • Taux de conversion d'alimentation
  • Taux de survie
Les crevettes utilisées dans cette expérimentation sont certifiées exemptes de pathogènes spécifiques (SPF) pour les agents pathogènes suivants : IMNV, EHP, WSSV, TSV, YHV, NHP-B, IHHNV, CMNV, PvNV, MBV, HPV, AHPND / EMS, BP. Des groupes en triplicata de crevettes ont été nourris avec les aliments décrits dans le Tableau 5 pendant 28 jours. Cette procédure a permis d’évaluer l'effet de ces aliments sur les performances de croissance des crevettes. Trois jours avant le début du test de résistance aux pathogènes, les crevettes ont été transférées dans des unités d’infection de 10L remplies d’eau de mer artificielle (1 crevette par unité) pour permettre leur acclimatation. Pour le test de résistance au virus responsable du syndrome des taches blanches, 3 blocs de 10 individus chacun ont été formés à partir des crevettes de chacun des groupes A, B et C. 1 bloc pour le contrôle négatif (Mock) et 3 pour le contrôle positif ont été constitués à partir des crevettes du groupe CTRL. Les crevettes ont été inoculées par voie orale avec la préparation virale. Après l’inoculation, les crevettes ont été nourries deux fois par jour avec leur régime respectif. Les signes cliniques de maladie et de mortalité ont été suivis deux fois par jour. Le même protocole a été mis en œuvre pour le test de résistance à la bactérie responsable du syndrome de nécrose pancréatique sévère, à l’exception du pathogène qui est une bactérie et qui a été inoculé par immersion.
Préparation virale
La souche WSSV Thai-1 (Escobedo-Bonilla et al., 2005) a été utilisée dans cette expérience. Un stock de ce virus est conservé à -70°C. Cette souche a été précédemment isolée en Thaïlande à partir de Penaeus monodon infecté naturellement et passée une fois dans l'écrevisse Pacifastacus leniusculus (Jiravanichpaisal et al., 2001) comme suit. Un stock congelé de suspension branchiale d'écrevisses (certifié exempt d'autres agents pathogènes majeurs de la crevette) a été injecté dans Litopenaeus vannamei sans pathogène spécifique (SPF) pour amplifier le virus.
Les carcasses de crevettes infectées résultantes ont été utilisées pour préparer une suspension de WSSV et immédiatement congelées. Le niveau d’infection a ensuite été déterminé selon la procédure décrite par Escobedo Bonilla et al. (2005). Cet inoculum a été utilisé pour infecter les crevettes par voie intramusculaire. Les carcasses infectées résultantes ont été utilisées pour préparer l'inoculum solide de WSSV, qui a été utilisé dans l'expérience d'infection orale. Des carcasses non infectées de crevettes soumises à la même procédure mais inoculées avec une suspension sans virus ont été utilisées pour préparer un inoculum solide à blanc (Mock).
Préparation bactérienne
La bactérie utilisée dans cette expérience est unVibrio parahaemolyticusisolé à partir de crevettes infectées par AHPNS / EMS. De manière plus spécifique, c’est la souche TW01 spécifique AHPND / EMS qui a été utilisée dans cette expérimentation. Cette bactérie a été isolée de bassins de crevettes infectés en Thailande. Un stock de cette bactérie est conservé à -70°C. Après décongélation, le stock a été inoculé de manière aseptique dans un milieu de culture et cultivé dans des conditions standard. Des suspensions quantifiées de TW01 ont été utilisées pour inoculer les crevettes par immersion.
Résultats
Résultats sur les performances de croissance
Les résultats sur les performances de croissance sont présentés au Tableau 6.
Tableau 6: Valeurs moyennes obtenues en gain de poids, taux de croissance spécifique et taux de conversion alimentaire accompagnées de leurs écarts-types en fonction des différents aliments expérimentaux. Les valeurs associées à une même lettre ne présentent pas de différence significative entre elles (test de Fisher, p > 0,05). (* farine animale = farine de poisson + farine de HI)
Tous les groupes de crevettes nourries avec de la farine de Hermetia illucens ont présenté une performance significativement plus élevée par rapport au groupe contrôle à la fois pour le gain de poids et pour le taux de croissance spécifique. Les résultats sont présentés au Tableau 6, ainsi qu’à la . On observe une amélioration globale significative du gain de poids et de la vitesse de croissance (mesurée par le taux de croissance spécifique) chez les crevettes nourries avec les aliments A, B et C par rapport aux crevettes nourries avec un aliment équivalent sans farine de HI (CTRL). Cette amélioration est proportionnelle à la teneur en farine de Hermetia illucens dans la farine animale.
Les résultats montrent également une tendance décroissante du taux de conversion alimentaire corrélée à l’augmentation de la teneur en farine de HI dans la farine animale. En particulier, le taux de conversion d'alimentation est significativement plus bas pour les régimes B et C, qui correspondent à des teneurs en farine de HI de 50% et 70% respectivement des 15% de farine animale, que pour le régime CTRL.
Résultat s sur le pathogène AHPN S :
Tableau 7: Valeurs moyennes obtenues en mortalité finale dans le test de résistance au AHPNS accompagnées de leurs écarts-types en fonction des différents aliments expérimentaux. Les valeurs associées à une même lettre ne présentent pas de différence significative entre elles (test de Fisher, p > 0,05). (* farine animale = farine de poisson + farine de HI)
Les résultats sont présentés au Tableau 7, ainsi qu’à la .
Comme attendu, la mortalité du groupe contrôle CTRL (contrôle positif de la maladie) est comprise entre 50 et 80% alors que celle du groupe contrôle Mock (contrôle négatif pour la maladie) était de 0%. Cela démontre la validité du protocole. Aucune différence significative de mortalité n’a été observées entre les groupes nourris avec les aliments A et B et le groupe CTRL. Cela démontre que le remplacement de la farine de poisson par de la farine de HI n’entraîne pas d’augmentation de la mortalité face à la bactérie responsable du syndrome de la nécrose hépatopancréatique aiguë. Une réduction significative de la mortalité est observée avec l’aliment C, qui correspond à une teneur en HI de la farine animale de 70%.
Ces résultats suggèrent qu'il existe une protection partielle des crevettes à une infection au AHPNS lors du remplacement de la farine de poisson par de la farine de HI dans les régimes de croissance des crevettes. Une teneur en farine de HI de la farine animale (ou de manière équivalente, un taux de remplacement de la farine de poisson par de la farine de HI) de 55 à 60% pourrait être intéressante pour cette application.
Résultats sur le pathogène WSSV :
Tableau 8: Valeurs moyennes obtenues en mortalité finale dans le test de résistance au WSSV accompagnées de leurs écarts-types en fonction des différents aliments expérimentaux. Les valeurs associées à une même lettre ne présentent pas de différence significative entre elles (test de Fisher, p > 0,05). (* farine animale = farine de poisson + farine de HI)
Les résultats sont présentés à la .
Comme attendu, la mortalité du groupe contrôle CTRL (contrôle positif pour la maladie) est comprise entre 50 et 80% et celle du groupe contrôle Mock (contrôle négatif pour la maladie) est de 0%. Cela démontre la validité du protocole. On observe une tendance générale montrant une survie plus élevée des crevettes nourries avec les aliments A, B et C que dans le groupe contrôle positif. D’un point de vue statistique, cette amélioration est significative pour le groupe nourri avec l’aliment A. Ces résultats suggèrent que l’inclusion de farine HI dans le régime alimentaire des crevettes peut améliorer leur résistance au WSSV de manière significative à une teneur en farine de HI de la farine animale (ou de manière équivalente, un taux de remplacement de la farine de poisson par de la farine de HI) de 30%. La réduction de mortalité observée avec les aliments B et C suggère qu'il existe en général une protection partielle des crevettes à une infection au WSSV lors du remplacement de la farine de poisson par de la farine de HI dans les régimes de croissance des crevettes. Un taux de remplacement de 40 à 60% de farine de poisson par de la farine de HI pourrait être intéressant pour cette application.
Conclusion: Ces expériences, qui ont consisté à substituer dans un ratio 1:1 de la farine de poisson par de la farine de HI (en prenant pour référence un aliment classique à base de farine de poisson), montrent de meilleures performances de croissance des crevettes nourries avec des aliments dont la farine animale comporte de la farine de HI par rapport à un aliment équivalent contenant de la farine de poisson au lieu de la farine de HI.
De plus, on observe une protection partielle des crevettes à une infection au AHPNS et au WSSV lors du remplacement de la farine de poisson par de la farine de HI dans les régimes de croissance des crevettes. La farine de HI pourrait aider à améliorer la survie des crevettes à une infection aux pathogènes AHPNS et WSSV lorsqu'elle est utilisée pour remplacer la farine de poisson dans l'alimentation des crevettes.

Claims (10)

  1. Aliment destiné à l’élevage de crevettes permettant d’améliorer le rendement de l’élevage, comprenant de 5 à 30% de farine animale constituée de farine de poisson et de farine de larve deHermetia illucens, caractérisé en ce que ladite farine de larve deHermetia illucensreprésente entre 30 et 60% de ladite farine animale.
  2. Utilisation d’un aliment tel que défini à la revendication 1, pour améliorer le gain de poids desdites crevettes.
  3. Utilisation d’un aliment tel que défini à la revendication 1, pour améliorer la vitesse de croissance desdites crevettes.
  4. Utilisation d’un aliment tel que défini à la revendication 1, pour améliorer le taux de conversion alimentaire.
  5. Utilisation selon l’une des revendications 2 à 4, dans laquelle lesdites crevettes sont choisies parmi les espècesLitopenaeus vannamei , Litopenaeus st ylirostrisetPenaeus monodon .
  6. Aliment tel que défini à la revendication 1, pour son utilisation pour améliorer la résistance desdites crevettes aux infections.
  7. Aliment selon la revendication 6 pour son utilisation selon la revendication 6, pour améliorer la résistance aux infections virales.
  8. Aliment selon la revendication 7 pour son utilisation selon la revendication 7, pour améliorer la résistance au virus responsable du syndrome des taches blanches.
  9. Aliment selon la revendication 6 pour son utilisation selon la revendication 6, pour améliorer la résistance au syndrome de nécrose hépato-pancréatique sévère.
  10. Aliment selon l’une des revendications 6 à 9 pour son utilisation selon l’une des revendications 6 à 9, dans laquelle lesdites crevettes sont choisies parmi les espècesLitopenaeus vannamei , Litopenaeus st ylirostrisetPenaeus monodon .
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