WO2021235377A1 - 目的細胞の生産方法、目的細胞による生産物の生産方法、および無血清培地 - Google Patents

目的細胞の生産方法、目的細胞による生産物の生産方法、および無血清培地 Download PDF

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WO2021235377A1
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serum albumin
cells
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一成 南
逸郎 茂木
浩之 江藤
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株式会社マイオリッジ
株式会社京都製作所
国立大学法人京都大学
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    • C12N2506/45—Differentiation of animal cells from one lineage to another; Differentiation of pluripotent cells from artificially induced pluripotent stem cells

Definitions

  • the present invention relates to a cell culture technique using a serum substitute.
  • Serum contains proteins such as albumin and globin, as well as various components necessary for maintaining the function of the living body.
  • proteins such as albumin and globin, as well as various components necessary for maintaining the function of the living body.
  • fetal bovine serum is used for culturing animal cells including humans. Since serum is derived from animals, there are problems such as cost and lot difference, and in order to solve these problems, a serum-free medium containing a serum substitute instead of serum has been developed (for example, patent literature). See 1).
  • the present invention is a cell culture technique using a serum substitute, which can maintain the cell culture efficiency when using serum, and also has a problem of cost when using serum and the quality stability of cultured cells.
  • the purpose is to provide a cell culture technology that can solve the problem.
  • At least one culture factor selected from growth factors and differentiation-inducing factors With human serum albumin, Source cells in serum-free medium containing Src inhibitor, PKC activator, methyl cellulose, Essential 8 medium, recombinant human serum albumin, and at least one additive selected from the group consisting of non-human animal serum albumin.
  • a method for producing a target cell is provided, which comprises culturing to produce the target cell.
  • a method for producing a product by a target cell which comprises culturing the raw material cell according to the above method to produce the target cell and causing the target cell to produce the product.
  • At least one culture factor selected from growth factors and differentiation-inducing factors With human serum albumin, Product by target cell containing Src inhibitor, PKC activator, methylcellulose, Essential 8 medium, recombinant human serum albumin, and at least one additive selected from the group consisting of non-human animal serum albumin. Serum-free medium for use in production is provided.
  • the present invention is a cell culture technique using a serum substitute, and it is possible to maintain the cell culture efficiency when using serum, and also the problem of cost when using serum and the quality stability of cultured cells. It is possible to provide a cell culture technique that can solve the problem.
  • FIG. 1 is a graph showing the number of megakaryocytes differentiated in each medium.
  • FIG. 2 is a graph showing the number of megakaryocytes differentiated in each medium.
  • FIG. 3 is a graph showing the number of megakaryocytes differentiated in each medium.
  • FIG. 4A is a microscopic image showing megakaryocytes stained with a nuclear staining reagent.
  • FIG. 4B is a microscopic image showing megakaryocytes stained with a nuclear staining reagent.
  • FIG. 4C is a microscopic image showing megakaryocytes stained with a nuclear staining reagent.
  • FIG. 4D is a microscopic image showing megakaryocytes stained with a nuclear staining reagent.
  • FIG. 4A is a microscopic image showing megakaryocytes stained with a nuclear staining reagent.
  • FIG. 4B is a microscopic image showing megakaryocytes stained with a nuclear staining rea
  • FIG. 4E is a microscopic image showing megakaryocytes stained with a nuclear staining reagent.
  • FIG. 5 is a graph showing the positive cell rate of platelet markers (CD41 and CD42b).
  • FIG. 6 is a graph showing the positive cell rate of the platelet marker (PAC1).
  • FIG. 7 is a graph showing the number of iPS cells grown in each medium.
  • FIG. 8 is a graph showing the number of mesenchymal stem cells grown in each medium.
  • the present inventors screened for serum substitutes from various substances.
  • the present inventors have (a) human serum albumin and (b) Src inhibitors, PKC activators, methylcellulose, Essential 8 medium, recombinant human serum albumin, and non-human serum alternatives.
  • a combination with at least one additive selected from the group consisting of animal serum albumin can maintain the culture efficiency of cells during serum use, and have completed the present invention.
  • culture efficiency refers to differentiation efficiency in the case of differentiated culture, and refers to proliferation efficiency in the case of proliferation culture.
  • Production method of target cells > According to one aspect At least one culture factor selected from growth factors and differentiation-inducing factors, With human serum albumin, Source cells in serum-free medium containing Src inhibitor, PKC activator, methyl cellulose, Essential 8 medium, recombinant human serum albumin, and at least one additive selected from the group consisting of non-human animal serum albumin.
  • a method for producing a target cell is provided, which comprises culturing to produce the target cell.
  • the culture factor is at least one differentiation-inducing factor and the target cell is a differentiated cell.
  • Differentiation-inducing factors have an action of promoting the differentiation of raw material cells.
  • the above method is a "method for producing differentiated cells". That is, the "method for producing differentiated cells" is With at least one differentiation-inducing factor, With human serum albumin, Source cells in serum-free medium containing Src inhibitor, PKC activator, methyl cellulose, Essential 8 medium, recombinant human serum albumin, and at least one additive selected from the group consisting of non-human animal serum albumin. Includes culturing to produce differentiated cells.
  • the culture factor is at least one growth factor and the target cell is a growth cell.
  • Growth factors have the effect of promoting the proliferation of raw material cells.
  • the above method is a "method for producing proliferating cells". That is, the "method for producing proliferating cells" is With at least one growth factor, With human serum albumin, Source cells in serum-free medium containing Src inhibitor, PKC activator, methyl cellulose, Essential 8 medium, recombinant human serum albumin, and at least one additive selected from the group consisting of non-human animal serum albumin. Includes culturing to produce proliferating cells.
  • Differentiation cell production method (cell)
  • the raw material cells are cultured in the presence of a differentiation-inducing factor to produce differentiated cells.
  • the raw material cells can be selected from the group consisting of, for example, megakaryocyte progenitor cells, iPS cells, mesenchymal stem cells, and fibroblasts.
  • the raw material cells can preferably be selected from the group consisting of human megakaryocyte progenitor cells, human iPS cells, human mesenchymal stem cells, and human fibroblasts.
  • Differentiated cells can be selected from the group consisting of, for example, megakaryocytes, mesenchymal stem cells, fibroblasts, and cardiomyocytes. Differentiated cells can preferably be selected from the group consisting of human megakaryocytes, human mesenchymal stem cells, human fibroblasts, and human cardiomyocytes.
  • the source cell is a megakaryocyte progenitor cell and the differentiated cell is a megakaryocyte.
  • the source cell is a human megakaryocyte progenitor cell and the differentiated cell is a human megakaryocyte.
  • the source cell is an iPS cell and the differentiated cell is a mesenchymal stem cell.
  • the source cell is a human iPS cell and the differentiated cell is a human mesenchymal stem cell.
  • the source cell is an iPS cell and the differentiated cell is a fibroblast.
  • the raw material cell is a human iPS cell and the differentiated cell is a human fibroblast.
  • the raw material cell is an iPS cell and the differentiated cell is a cardiomyocyte.
  • the raw material cell is a human iPS cell and the differentiated cell is a human cardiomyocyte.
  • the source cell is a mesenchymal stem cell and the differentiated cell is a cardiomyocyte.
  • the source cell is a human mesenchymal stem cell and the differentiated cell is a human cardiomyocyte.
  • the source cell is a fibroblast and the differentiated cell is a cardiomyocyte.
  • the source cell is a human fibroblast and the differentiated cell is a human cardiomyocyte.
  • the method of producing differentiated cells is as a serum substitute.
  • A Human serum albumin and
  • B Use in combination with at least one additive selected from the group consisting of Src inhibitors, PKC activators, methylcellulose, Essential 8 medium, recombinant human serum albumin, and non-human animal serum albumin. It is characterized by.
  • Human serum albumin is prepared from human plasma or serum, not a recombinant. Human serum albumin is commercially available, for example from Sigma-Aldrich.
  • the additive is preferably an Src inhibitor. That is, the serum substitute is preferably a combination of human serum albumin and an Src inhibitor.
  • Src inhibitor means a substance that inhibits the tyrosine kinase Src or a signal transduction pathway downstream thereof. As the Src inhibitor, a known Src inhibitor can be used.
  • Src inhibitors include A419259, SU6656, PP1, 1-naphthyl PP1 (1-Naphthyl PP1), PP2, indirubin-3'-(2,3-dihydroxypropyl) -oxym ether (Indirubin-3'-( 2,3-dihydroxypropyl) -oximether), TX-1123, Src Kinase Inhibitor I (CAS179248-59-0), AZM475271, Bosutinib, Herbimycin A, KB SRC 4, MNS, PD166285, TC-S7003 and the like are exemplified.
  • the Src inhibitor is preferably A419259.
  • A419259 has the following structure, and the compound name of A419259 is 7- [4- (4-methylpiperazin-1-yl) cyclohexyl] -5- (4-phenoxyphenyl) pyrrolo [2,3-d] pyrimidine. -4-Amine.
  • A419259 may be added in the form of a salt.
  • A419259 is commercially available, for example, from Fujifilm Wako Pure Chemical Industries, Ltd.
  • the additive is preferably a PKC activator.
  • the serum substitute is preferably a combination of human serum albumin and a PKC activator.
  • PKC activator means a substance that activates protein kinase C (PKC) or a signaling pathway downstream thereof.
  • PKC activator a known PKC activator can be used. Examples of the PKC activator include Phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA), prostratin, briostatin 1 (Bryostatin 1), briostatin 2 (Bryostatin 2), FR236924.
  • the PKC activator is preferably prostratin.
  • Prostratin has the following structure, and the compound name of prostratin is (1aR, 1bS, 4aR, 7aS, 7bR, 8R, 9aS) -4a, 7b-dihydroxy-3- (hydroxymethyl) -1,1, 6,8-Tetramethyl-5-oxo-1,1a, 1b, 4,4a, 5,7a, 7b, 8,9-decahydro-9aH-cyclopropa [3,4] benzo [1,2-e] azulene -9a-Ilacetate.
  • Prostratin is commercially available, for example from Wako Pure Chemical Industries, Ltd.
  • the additive is preferably methyl cellulose.
  • the serum substitute is preferably a combination of human serum albumin and methylcellulose.
  • Methyl cellulose is commercially available, for example from R & D Systems.
  • the additive is preferably Essential 8 medium.
  • the serum substitute is preferably a combination of human serum albumin and Essential 8 medium.
  • Essential 8 medium is described in Article 1 (Chen G et al, Chemically defined conditions for human iPSC derivation and culture. Nat Methods. 2011 May; 8 (5): 424-9. Doi: 10.1038 / nmeth.1593. Epub 2011 Apr 10 According to.), It has the following composition: DMEM / F12, L-ascorbic acid-2-phosphate magnesium (64 mg / l), sodium selenium (14 ⁇ g / l), FGF2 (100 ⁇ g / l), insulin (19.4).
  • Essential 8 medium is commercially available, for example from Invitrogen.
  • the additive is preferably recombinant human serum albumin or non-human animal serum albumin.
  • the serum substitute is preferably a combination of human serum albumin and either recombinant human serum albumin or non-human animal serum albumin.
  • Recombinant human serum albumin is, for example, human serum albumin expressed in rice or human serum albumin expressed in yeast.
  • Non-human animal serum albumin is, for example, bovine serum albumin.
  • Recombinant human serum albumin and non-human animal serum albumin are commercially available, for example from Sigma-Aldrich or Wako Pure Chemical Industries, Ltd.
  • Serum substitutes can be used at the concentrations described below.
  • concentrations described below represent the final concentration in the medium.
  • concentration of human serum albumin in the serum-free medium is, for example, 0.01 to 2.0% by mass, preferably 0.05 to 1.5% by mass, and more preferably 0.075 to 0.75% by mass.
  • the concentration of the Src inhibitor in the serum-free medium is, for example, 0.001 to 10 ⁇ M, preferably 0.01 to 1.0 ⁇ M, and more preferably 0.03 to 0.03. It is 0.2 ⁇ M.
  • concentration of the PKC activator in the serum-free medium is, for example, 0.001 to 10 ⁇ M, preferably 0.01 to 1.0 ⁇ M, more preferably 0. It is .015 to 0.2 ⁇ M.
  • the concentration of methyl cellulose in the serum-free medium is, for example, 0.001 to 3.0% by mass, preferably 0.01 to 1.0% by mass, and more preferably 0.018 to 0. .3% by mass.
  • the concentration of the Essential 8 medium in the serum-free medium is, for example, 0.5 to 100% by mass, preferably 0.5 to 50% by mass, and more preferably 0.625 to 30%. It is mass%.
  • the concentration of recombinant human serum albumin in the serum-free medium is, for example, 0.001 to 1.0% by mass, preferably 0.01 to 0.5% by mass. More preferably, it is 0.015 to 0.3% by mass.
  • the concentration of non-human animal serum albumin in the serum-free medium is, for example, 0.01 to 2.0% by mass, preferably 0.05 to 1.5% by mass. %, More preferably 0.125 to 0.75% by mass.
  • Differentiated cells are produced by (a) human serum albumin, (b) Src inhibitor, PKC activator, methylcellulose, Essential 8 medium, recombinant human serum albumin, and non-human animal serum as serum alternatives. It can be carried out according to the same method as the conventional differentiation culture using serum, except that the combination with at least one additive selected from the group consisting of albumin is used. More specifically, methods for producing differentiated cells include basal media (eg, MEM, DMEM, IMDM, Ham's F-12, DMEM / F12, RPMI1640, etc.), differentiation-inducing factors, and serum substitutes described above. It can be carried out by culturing the raw material cells in serum medium.
  • basal media eg, MEM, DMEM, IMDM, Ham's F-12, DMEM / F12, RPMI1640, etc.
  • the differentiation-inducing factor a known factor can be used depending on the type of the raw material cell and the differentiated cell.
  • the differentiation-inducing factor may have an action of promoting cell proliferation in addition to an action of promoting the differentiation of the raw material cell.
  • the differentiation culture may consist of a single culture step using one or more specific differentiation-inducing factors, or a plurality of cultures using one or more differentiation-inducing factors different for each culture step. It may be composed of processes.
  • the raw material cells are differentiated to produce differentiated cells, but during culturing, cell proliferation may occur in addition to cell differentiation.
  • a serum-free medium is prepared by adding a megakaryocyte differentiation-inducing factor and the above-mentioned serum substitute to a basal medium, and the megakaryocytes in this serum-free medium. It can be carried out by culturing the precursor cells.
  • IMDM can be used, for example, as the basal medium, and SCF, TA-316, KP-457, GNF-351, and Y39983, for example, can be used as megakaryocyte differentiation-inducing factors.
  • SCF is a known protein called stem cell factor, which can be obtained from, for example, R & D Systems.
  • TA-316 has the following structure and can be obtained from, for example, Nissan Chemical Industries, Ltd.
  • KP-457 has the following structure and can be obtained from, for example, GLPBIO (https://www.glpbio.com/kp-457.html).
  • GNF-351 has the following structure and can be obtained from, for example, Santa Cruz Biotechnology (https://www.scbt.com/ja/p/ahr-antagonist-iii-gnf351).
  • Y39983 has the following structure and can be obtained from, for example, SEREC Biotech Co., Ltd. (https://www.selleck.co.jp/products/y-39983-hcl.html).
  • KP-457 also functions as a substance that retains the function of platelets produced by megakaryocytes, that is, as a platelet function retainer (see WO2012 / 157586).
  • GNF-351 and Y-39983 are also known to function as substances that promote platelet production of megakaryocytes, that is, platelet production promoters (see WO2016 / 204256).
  • the megakaryocyte differentiation-inducing factor is exemplified, but when the above-mentioned "method for producing differentiated cells" is carried out and cell differentiation occurs, the differentiation-inducing factor is contained in the serum-free medium. It is clear that it is not necessary to specify which component in the serum-free medium is the differentiation-inducing factor.
  • the above-mentioned method uses a serum substitute, it is excellent in that it can maintain the cell differentiation efficiency at the time of using serum.
  • the above-mentioned method can solve the problem of cost when using serum and the problem of quality stability of cultured cells by using a serum substitute.
  • Proliferating cell production method In the method for producing proliferating cells, raw material cells are cultured in the presence of growth factors to produce proliferating cells.
  • growth factor refers to any substance that contributes to cell growth, including substances that provide nutrients for cell growth and substances that promote cell growth.
  • the raw material cells and target cells can be selected from the group consisting of, for example, iPS cells and mesenchymal stem cells.
  • the source cell and the target cell can be preferably selected from the group consisting of human iPS cells and human mesenchymal stem cells.
  • Proliferating cell production methods include (a) human serum albumin, (b) Src inhibitors, PKC activators, methylcellulose, Essential 8 medium, recombinant human serum albumin, and non-human animal serum as serum alternatives. It is characterized by using a combination with at least one additive selected from the group consisting of albumin.
  • the serum substitute is described in ⁇ 1-1. As explained in the column of> Production method of differentiated cells>. In addition, the serum substitute is described in ⁇ 1-1. It can be used at the concentration described in the column of> Method for producing differentiated cells>.
  • Proliferating cell production methods include (a) human serum albumin, (b) Src inhibitors, PKC activators, methylcellulose, Essential 8 medium, recombinant human serum albumin, and non-human animal serum as serum alternatives. It can be carried out according to the same method as the conventional growth culture using serum, except that the combination with at least one additive selected from the group consisting of albumin is used. More specifically, the method for producing proliferating cells does not include basal medium containing growth factors (eg, MEM, DMEM, IMDM, Ham's F-12, DMEM / F12, RPMI1640, etc.) and the serum substitute described above. It can be carried out by culturing the raw material cells in serum medium.
  • basal medium containing growth factors eg, MEM, DMEM, IMDM, Ham's F-12, DMEM / F12, RPMI1640, etc.
  • the basal medium usually contains growth factors such as amino acids, vitamins and inorganic salts, but additional growth factors may be added to the basal medium in addition to the growth factors contained in the basal medium.
  • iPS cell growth culture is carried out by adding the above-mentioned serum substitute to a commercially available iPS cell growth medium to prepare a serum-free medium, and culturing the iPS cells in this serum-free medium.
  • DMEM / F12 can be used as the medium for iPS cell growth, and DMEM / F12 contains, for example, L-glutamine, vitamin B12 and the like as iPS cell growth factors.
  • the serum substitute preferably, a combination of human serum albumin and prostratin, or a combination of human serum albumin and recombinant human serum albumin can be used.
  • a serum-free medium is prepared by adding the above-mentioned serum substitute to a commercially available medium for mesenchymal stem cell proliferation, and the mesenchymal stem cells are cultured in this serum-free medium. It can be carried out by doing.
  • DMEM / F12 can be used as a medium for mesenchymal stem cell proliferation, and DMEM / F12 contains, for example, L-glutamine, vitamin B12 and the like as mesenchymal stem cell proliferation factors.
  • the serum substitute preferably, a combination of human serum albumin and A419259, or a combination of human serum albumin and recombinant human serum albumin can be used.
  • the above-mentioned method can be applied to megakaryocyte progenitor cells to proliferate and culture megakaryocyte progenitor cells, or the above-mentioned method can be applied to myocardial cells to proliferate and culture myocardial cells.
  • iPS cell growth factor and mesenchymal stem cell growth factor are exemplified, but when the above-mentioned "method for producing proliferating cells" is carried out and cell proliferation occurs, the cells proliferate in a serum-free medium. It is clear that the factors are included and it is not always necessary to specify which component in the serum-free medium is the growth factor.
  • the above-mentioned method uses a serum substitute, it is excellent in that it can maintain the cell proliferation efficiency when using serum.
  • the above-mentioned method can solve the problem of cost when using serum and the problem of quality stability of cultured cells by using a serum substitute.
  • a method for producing a product by a target cell which comprises culturing a raw material cell according to the method described above to produce a target cell and causing the target cell to produce a product. That is, At least one culture factor selected from growth factors and differentiation-inducing factors, With human serum albumin, Source cells in serum-free medium containing Src inhibitor, PKC activator, methyl cellulose, Essential 8 medium, recombinant human serum albumin, and at least one additive selected from the group consisting of non-human animal serum albumin.
  • a method for producing a product by a target cell which comprises culturing to produce the target cell and causing the target cell to produce the product.
  • the culture of the raw material cells is performed in the above-mentioned ⁇ 1-1. It can be carried out according to the same method as described in the column of> Method for producing differentiated cells>.
  • the method may further include the step of recovering the product produced by the cells of interest.
  • the raw material cell is a megakaryocyte progenitor cell
  • the target cell is a megakaryocyte
  • the product is a platelet. That is, according to one aspect, With at least one megakaryocyte differentiation inducing factor, With human serum albumin, Megakaryocyte precursor in serum-free medium containing Src inhibitor, PKC activator, methylcellulose, Essential 8 medium, recombinant human serum albumin, and at least one additive selected from the group consisting of non-human animal serum albumin.
  • a method for producing platelets by megakaryocytes is provided, which comprises culturing cells to produce megakaryocytes and causing the megakaryocytes to produce platelets.
  • a serum-free medium is prepared by adding a megakaryocyte differentiation-inducing factor and the above-mentioned serum substitute to a basal medium, and megakaryocyte precursor cells are cultured in this serum-free medium. It can be carried out by.
  • IMDM can be used, for example, as the basal medium, and SCF, TA-316, KP-457, GNF-351, and Y39983, for example, can be used as megakaryocyte differentiation-inducing factors.
  • SCF SCF
  • TA-316, KP-457, GNF-351, and Y39983 for example, can be used as megakaryocyte differentiation-inducing factors.
  • megakaryocyte progenitor cells are differentiated to produce megakaryocytes, and the produced megakaryocytes produce platelets.
  • KP-457 is known to function as a substance that retains the function of platelets produced by megakaryocytes, that is, as a platelet function retainer (see WO2012 / 157586).
  • GNF-351 and Y-39983 are also known to function as substances that promote platelet production of megakaryocytes, that is, platelet production promoters (see WO2016 / 204256).
  • iPS cells or mesenchymal stem cells can be proliferated and cultured to cause these cells to produce cytokines.
  • iPS cell growth factor With at least one iPS cell growth factor, With human serum albumin, IPS cells in serum-free medium containing Src inhibitors, PKC activators, methyl cellulose, Essential 8 medium, recombinant human serum albumin, and at least one additive selected from the group consisting of non-human animal serum albumin.
  • a method for producing cytokines by iPS cells which comprises culturing and causing iPS cells to produce cytokines.
  • iPS cell culture is performed in ⁇ 1-2. It can be carried out according to the same method as described for the proliferation culture of iPS cells in the column of Proliferating cell production method>. By culturing, iPS cells proliferate and cytokines are produced by iPS cells.
  • mesenchymal stem cell growth factor With at least one mesenchymal stem cell growth factor, With human serum albumin, Mesenchymal in a serum-free medium containing Src inhibitors, PKC activators, methylcellulose, Essential 8 medium, recombinant human serum albumin, and at least one additive selected from the group consisting of non-human animal serum albumin.
  • a method for producing cytokines by mesenchymal stem cells which comprises culturing stem cells to cause mesenchymal stem cells to produce cytokines.
  • the culture of mesenchymal stem cells is performed in ⁇ 1-2. It can be carried out according to the same method as described for the proliferation culture of mesenchymal stem cells in the column of Proliferating cell production method>. By culturing, mesenchymal stem cells proliferate and cytokines are produced by the mesenchymal stem cells.
  • the above-mentioned method uses a serum substitute, it is excellent in that it can maintain the cell culture efficiency and the production efficiency of the product by the cells at the time of using the serum.
  • the above-mentioned method can solve the problem of cost when using serum and the problem of quality stability of cultured cells by using a serum substitute.
  • Serum-free medium ⁇ 3-1.
  • Serum-free medium for use in the production of target cells At least one culture factor selected from growth factors and differentiation-inducing factors, With human serum albumin, Used in the production of cells of interest, including Src inhibitors, PKC activators, methylcellulose, Essential 8 medium, recombinant human serum albumin, and at least one additive selected from the group consisting of non-human animal serum albumin. Serum-free medium for use is provided.
  • This serum-free medium is used in the production of target cells, and specifically, the above-mentioned ⁇ 1. It can be used for the method described in the column of Production method of target cells>. That is, the serum-free medium can be used in the production of proliferating cells or differentiated cells. Therefore, for details of the serum-free medium, refer to ⁇ 1.
  • the description of the medium described in the column of> Method for producing target cells> can be referred to.
  • Serum-free medium is available as serum alternatives from (a) human serum albumin and (b) Src inhibitors, PKC activators, methylcellulose, Essential 8 medium, recombinant human serum albumin, and non-human animal serum albumin. It is characterized by comprising a combination with at least one additive selected from the group.
  • the serum substitute is described in ⁇ 1-1. As explained in the column of> Production method of differentiated cells>. In addition, the serum substitute is described in ⁇ 1-1. It can be contained in a serum-free medium at the concentration described in the column of> Method for producing differentiated cells.
  • the serum-free medium is a medium in which the serum contained in a known cell differentiation-inducing medium containing a differentiation-inducing factor is replaced with the above-mentioned serum substitute.
  • the serum-free medium includes basal medium (eg, MEM, DMEM, IMDM, Ham's F-12, DMEM / F12, RPMI1640, etc.), differentiation-inducing factors, and the serum substitute described above.
  • the serum-free medium is a medium in which serum contained in a known cell proliferation medium containing a growth factor is replaced with the above-mentioned serum substitute.
  • the serum-free medium comprises a basal medium containing growth factors (eg, MEM, DMEM, IMDM, Ham's F-12, DMEM / F12, RPMI1640, etc.) and the serum substitute described above.
  • the target cells are megakaryocytes and the culture factor is a megakaryocyte differentiation inducing factor.
  • the serum-free medium comprises a basal medium (eg, IMDM, etc.), a megakaryocyte differentiation-inducing factor, and the serum substitute described above.
  • the megakaryocyte differentiation-inducing factors are, for example, SCF, TA-316, KP-457, GNF-351, and Y39983.
  • the serum-free medium described above contains a serum substitute, but is excellent in that it can maintain cell culture efficiency (specifically, differentiation efficiency and proliferation efficiency) when a corresponding medium containing serum is used. ing.
  • the above-mentioned serum-free medium can solve the problem of cost when using serum and the problem of quality stability of cultured cells by using a serum substitute.
  • Serum-free medium for use in the production of products by target cells At least one culture factor selected from growth factors and differentiation-inducing factors, With human serum albumin, Product by target cell containing Src inhibitor, PKC activator, methylcellulose, Essential 8 medium, recombinant human serum albumin, and at least one additive selected from the group consisting of non-human animal serum albumin. Serum-free medium for use in production is provided.
  • This serum-free medium is used in the production of products by target cells, and specifically, the above-mentioned ⁇ 2. It can be used for the method described in the column of> Production method of product by target cell. Therefore, for details of the serum-free medium, refer to ⁇ 2.
  • the description of the medium described in the column of> Method for producing a product by target cells> can be referred to.
  • Serum-free medium is available as serum alternatives from (a) human serum albumin and (b) Src inhibitors, PKC activators, methylcellulose, Essential 8 medium, recombinant human serum albumin, and non-human animal serum albumin. It is characterized by comprising a combination with at least one additive selected from the group.
  • the serum substitute is described in ⁇ 1-1. As explained in the column of> Production method of differentiated cells>. In addition, the serum substitute is described in ⁇ 1-1. It can be contained in a serum-free medium at the concentration described in the column of> Method for producing differentiated cells.
  • the production of the product by the target cell is the production of platelets by megakaryocytes and the culture factor is a megakaryocyte differentiation-inducing factor.
  • the serum-free medium comprises a basal medium (eg, IMDM, etc.), a megakaryocyte differentiation-inducing factor, and the serum substitute described above.
  • the megakaryocyte differentiation-inducing factors are, for example, SCF, TA-316, KP-457, GNF-351, and Y39983.
  • KP-457 is known to function as a substance that retains the function of platelets produced by megakaryocytes, that is, as a platelet function retainer (see WO2012 / 157586).
  • GNF-351 and Y-39983 are also known to function as substances that promote platelet production of megakaryocytes, that is, platelet production promoters (see WO2016 / 204256).
  • the above-mentioned serum-free medium contains a serum substitute, but is excellent in that it can maintain the cell culture efficiency and the production efficiency of the product by the cells when the corresponding medium containing serum is used.
  • the above-mentioned serum-free medium can solve the problem of cost when using serum and the problem of quality stability of cultured cells by using a serum substitute.
  • a method for producing a target cell which comprises culturing to produce the target cell.
  • the culture factor is at least one differentiation-inducing factor and the target cell is a differentiated cell.
  • [A3] The method according to [A2], wherein the raw material cells are selected from the group consisting of megakaryocyte progenitor cells, iPS cells, mesenchymal stem cells, and fibroblasts.
  • [A4] The method according to [A2] or [A3], wherein the raw material cells are selected from the group consisting of human megakaryocyte progenitor cells, human iPS cells, human mesenchymal stem cells, and human fibroblasts.
  • [A5] The method according to any one of [A2] to [A4], wherein the target cell is selected from the group consisting of megakaryocytes, mesenchymal stem cells, fibroblasts, and cardiomyocytes.
  • [A6] The method according to any one of [A2] to [A5], wherein the target cell is selected from the group consisting of human megakaryocytes, human mesenchymal stem cells, human fibroblasts, and human cardiomyocytes.
  • [A7] The method according to any one of [A2], [A3] and [A5], wherein the raw material cell is a megakaryocyte progenitor cell and the target cell is a megakaryocyte.
  • [A8] The method according to any one of [A2] to [A7], wherein the raw material cell is a human megakaryocyte progenitor cell and the target cell is a human megakaryocyte.
  • [A11] The method according to any one of [A2], [A3] and [A5], wherein the raw material cell is an iPS cell and the target cell is a fibroblast.
  • [A12] The method according to any one of [A2] to [A6] and [A11], wherein the raw material cell is a human iPS cell and the target cell is a human fibroblast.
  • [A13] The method according to any one of [A2], [A3] and [A5], wherein the raw material cell is an iPS cell and the target cell is a cardiomyocyte.
  • [A14] The method according to any one of [A2] to [A6] and [A13], wherein the raw material cell is a human iPS cell and the target cell is a human cardiomyocyte.
  • [A15] The method according to any one of [A2], [A3] and [A5], wherein the raw material cell is a mesenchymal stem cell and the target cell is a cardiomyocyte.
  • [A16] The method according to any one of [A2] to [A6] and [A15], wherein the raw material cell is a human mesenchymal stem cell and the target cell is a human cardiomyocyte.
  • [A17] The method according to any one of [A2], [A3] and [A5], wherein the raw material cell is a fibroblast and the target cell is a cardiomyocyte.
  • [A18] The method according to any one of [A2] to [A6] and [A17], wherein the raw material cell is a human fibroblast and the target cell is a human cardiomyocyte.
  • [B1] The method according to [A1], wherein the culture factor is at least one growth factor and the target cell is a growth cell.
  • [B2] The method according to [B1], wherein the raw material cell and the target cell are selected from the group consisting of iPS cells and mesenchymal stem cells.
  • [B3] The method according to [B1] or [B2], wherein the raw material cell and the target cell are selected from the group consisting of human iPS cells and human mesenchymal stem cells.
  • [B4] The method according to [B1] or [B2], wherein the raw material cell and the target cell are iPS cells.
  • [B5] The method according to any one of [B1] to [B4], wherein the raw material cell and the target cell are human iPS cells.
  • [B6] The method according to [B1] or [B2], wherein the raw material cell and the target cell are mesenchymal stem cells.
  • [B7] The method according to any one of [B1] to [B3] and [B6], wherein the raw material cell and the target cell are human mesenchymal stem cells.
  • [B8] The method according to [B1], wherein the raw material cell and the target cell are megakaryocyte progenitor cells.
  • [B9] The method according to [B1] or [B8], wherein the raw material cell and the target cell are human megakaryocyte progenitor cells.
  • [B10] The method according to [B1], wherein the raw material cell and the target cell are cardiomyocytes.
  • [B11] The method according to [B1] or [B10], wherein the raw material cell and the target cell are human cardiomyocytes.
  • [C1] The method according to any one of [A1] to [A18] and [B1] to [B11], wherein the additive is an Src inhibitor, preferably A419259.
  • [C2] The method according to any one of [A1] to [A18] and [B1] to [B11], wherein the additive is a PKC activator, preferably prostratin.
  • [C3] The method according to any one of [A1] to [A18] and [B1] to [B11], wherein the additive is methyl cellulose.
  • [C4] The method according to any one of [A1] to [A18] and [B1] to [B11], wherein the additive is an Essential 8 medium.
  • [C5] The method according to any one of [A1] to [A18] and [B1] to [B11], wherein the additive is recombinant human serum albumin or non-human animal serum albumin.
  • the additive is recombinant human serum albumin, preferably recombinant human serum albumin expressed in rice or recombinant human serum albumin expressed in yeast [A1] to [A18], [B1]. ] To [B11] and [C5].
  • the concentration (final concentration) of human serum albumin in the serum-free medium is 0.01 to 2.0% by mass, preferably 0.05 to 1.5% by mass, and more preferably 0.075 to 0.
  • the additive is an Src inhibitor, preferably A419259, and the concentration (final concentration) of the Src inhibitor in the serum-free medium is 0.001 to 10 ⁇ M, preferably 0.01 to 1.0 ⁇ M.
  • the additive is a PKC activator, preferably prostratin, and the concentration (final concentration) of the PKC activator in the serum-free medium is 0.001 to 10 ⁇ M, preferably 0.01 to 0.01.
  • concentration (final concentration) of the PKC activator in the serum-free medium is 0.001 to 10 ⁇ M, preferably 0.01 to 0.01.
  • the method according to any one of [A1] to [A18], [B1] to [B11], [C2] and [C8], which is 1.0 ⁇ M, more preferably 0.015 to 0.2 ⁇ M.
  • the additive is methyl cellulose, and the concentration (final concentration) of methyl cellulose in the serum-free medium is 0.001 to 3.0% by mass, preferably 0.01 to 1.0% by mass.
  • the additive is Essential 8 medium, and the concentration (final concentration) of Essential 8 medium in the serum-free medium is 0.5 to 100% by mass, preferably 0.5 to 50% by mass.
  • the additive is recombinant human serum albumin, and the concentration (final concentration) of the recombinant human serum albumin in the serum-free medium is 0.001 to 1.0% by mass, preferably 0.01. Any of [A1] to [A18], [B1] to [B11], [C5], [C6], and [C8], which are ⁇ 0.5% by mass, more preferably 0.015 to 0.3% by mass.
  • the additive is non-human animal serum albumin, and the concentration (final concentration) of non-human animal serum albumin in the serum-free medium is 0.01 to 2.0% by mass, preferably 0. [A1] to [A18], [B1] to [B11], [C5], [C7] and [C8], which are 0.05 to 1.5% by mass, more preferably 0.125 to 0.75% by mass.
  • [D1] The raw material cells are cultured according to the method according to any one of [A1] to [A18], [B1] to [B11] and [C1] to [C14] to produce target cells and target cells.
  • a method of producing a product by a target cell which comprises producing the product in a cell.
  • [D2] The method according to [D1], wherein the raw material cell is a megakaryocyte progenitor cell, the target cell is a megakaryocyte, and the product is a platelet.
  • [D3] The method according to [D1] or [D2], wherein the raw material cell is a human megakaryocyte progenitor cell, the target cell is a human megakaryocyte, and the product is a human platelet.
  • [D4] The method according to [D1], wherein the raw material cell and the target cell are iPS cells, and the product is a cytokine.
  • [D5] The method according to [D1] or [D4], wherein the raw material cell and the target cell are human iPS cells, and the product is a human cytokine.
  • [D6] The method according to [D1], wherein the raw material cell and the target cell are mesenchymal stem cells, and the product is a cytokine.
  • [D7] The method according to [D1] or [D6], wherein the raw material cell and the target cell are human mesenchymal stem cells, and the product is a human cytokine.
  • Serum-free medium for use in production.
  • [E6] The serum-free medium according to [E4] or [E5], wherein the production of the product by the target cells is the production of human platelets by human megakaryocytes, and the culture factor is a megakaryocyte differentiation-inducing factor.
  • the additive is a PKC activator, preferably prostratin.
  • the additive is recombinant human serum albumin, preferably recombinant human serum albumin expressed in rice or recombinant human serum albumin expressed in yeast [E1]-[E6] and [E11].
  • the concentration (final concentration) of human serum albumin in the serum-free medium is 0.01 to 2.0% by mass, preferably 0.05 to 1.5% by mass, and more preferably 0.075 to 0.
  • the serum-free medium according to any one of [E1] to [E13], which is .75% by mass.
  • the additive is an Src inhibitor, preferably A419259, and the concentration (final concentration) of the Src inhibitor in the serum-free medium is 0.001 to 10 ⁇ M, preferably 0.01 to 1.0 ⁇ M. , More preferably 0.03 to 0.2 ⁇ M, the serum-free medium according to any one of [E1] to [E7] and [E14].
  • the additive is a PKC activator, preferably prostratin, and the concentration (final concentration) of the PKC activator in the serum-free medium is 0.001 to 10 ⁇ M, preferably 0.01 to 0.01.
  • the serum-free medium according to any one of [E1] to [E6], [E8] and [E14], which is 1.0 ⁇ M, more preferably 0.015 to 0.2 ⁇ M.
  • the additive is methyl cellulose, and the concentration (final concentration) of methyl cellulose in the serum-free medium is 0.001 to 3.0% by mass, preferably 0.01 to 1.0% by mass.
  • the serum-free medium according to any one of [E1] to [E6], [E9] and [E14], preferably 0.018 to 0.3% by mass.
  • the additive is Essential 8 medium, and the concentration (final concentration) of Essential 8 medium in the serum-free medium is 0.5 to 100% by mass, preferably 0.5 to 50% by mass.
  • the additive is recombinant human serum albumin, and the concentration (final concentration) of the recombinant human serum albumin in the serum-free medium is 0.001 to 1.0% by mass, preferably 0.01.
  • the serum-free medium according to any one of [E1] to [E6], [E11], [E12] and [E14], which is ⁇ 0.5% by mass, more preferably 0.015 to 0.3% by mass. .. [E20]
  • the additive is non-human animal serum albumin, and the concentration (final concentration) of the non-human animal serum albumin in the serum-free medium is 0.01 to 2.0% by mass, preferably 0. Not described in any one of [E1] to [E6], [E11], [E13] and [E14], which is 0.05 to 1.5% by mass, more preferably 0.125 to 0.75% by mass. Serum medium.
  • Example 1 Differentiation culture from megakaryocyte progenitor cells to megakaryocytes (1) Method In Example 1, differentiation culture from human iPS cell-derived megakaryocyte progenitor cells to megakaryocytes was performed. Differentiation culture was performed using the method described in Paper 2 (Ito et al., 2018, Cell 174, 636-648).
  • IMDM Iscove's Modified Dulbecco's Medium
  • 10U Heparin Sodium Yoshindo Inc., # (01) 14987476163428
  • 50ng / ml SCF Stem Cell Factor
  • 50ng / ml SCF Stetem Cell Factor
  • 200 ng / ml TA-316 (Nissan Chemical)
  • 15 ⁇ M KP-457 Kaken Pharmaceutical
  • 0.5 ⁇ M GNF-351 Calbiochem
  • 0.5 ⁇ M Y-39983 MedChemExpress
  • HSA human serum albumin
  • R rice-derived human recombinant albumin
  • Y yeast-derived human recombinant albumin
  • BSA bovine serum albumin
  • E Essential 8 Medium
  • A419259 Compound (A) (Wako), Prostratin (P) (Wako), Methyl Cellulin (M) (R & D Systems), or a combination thereof bottom.
  • Megakaryocytes were differentiated and cultured using these media. Specifically, human iPS cell-derived megakaryocyte progenitor cells were cultured in 96-well plates (Corning) in a medium volume of 100 ⁇ l per well for 7 days, 2 wells under each condition.
  • cells were analyzed using a confocal quantitative image cytometer CQ1 (Yokogawa Electric Corporation).
  • the cell nuclei were stained with the nuclear staining reagent DRAQ5 TM (Cosmo Bio), and the number of cells (that is, megakaryocytes) having a cell nucleus size of 20 ⁇ m or more was counted in each well.
  • FIGS. 1, 2, 3, 4A to 4E are graphs showing the number of megakaryocytes differentiated in each medium.
  • 4A-4E are photographs showing megakaryocytes stained with a nuclear staining reagent (DRAQ5).
  • FIG. 1 shows the results when the following media are used in order from the left.
  • Negative control NC medium Positive control: Medium containing 5% by mass of human plasma (HP)
  • Example 1A Medium containing 0.25% by mass of human serum albumin (HSA)
  • Example 1B Medium containing 0.75% by mass of human serum albumin (HSA)
  • Example 1C Medium containing 0.25% by mass of bovine serum albumin (BSA)
  • Example 1D Medium containing 0.75% by mass of bovine serum albumin (BSA)
  • Example 1E 0.03% by mass of rice-derived human recombinant albumin (R)
  • Example 1F Medium containing 0.1% by mass of rice-derived human recombinant albumin (R)
  • Example 1G Medium containing 0.25 ⁇ M A419259 compound (A)
  • Example 1H Medium containing 0.75 ⁇ M A419259 compound (A)
  • Example 1 I Medium containing 0.03 ⁇ M Prostratin (P)
  • Example 1 J Medium containing
  • Examples 1A to 1N HSA, BSA, R, A, P, M, and E were added alone as serum substitutes. In all of Examples 1A to 1N, the number of megakaryocytes increased with respect to the negative control (NC), but the number of megakaryocytes tended to be smaller than that of the positive control (HP 5%).
  • FIG. 2 shows the results when the following media are used in order from the left.
  • Negative control NC medium Positive control 1: Medium containing 0.5% by mass of human plasma (HP)
  • Positive control 2 Medium containing 5% by mass of human plasma (HP)
  • Example 2A 0.125% by mass of human serum albumin (HSA)
  • Example 2B Medium containing 0.125% by mass of human serum albumin (HSA) and 0.03% by mass of rice-derived human recombinant albumin (R)
  • Example 2C 0.125% by mass of human serum albumin (HSA) and 0.125% by mass %
  • 2D Medium containing 0.125% by mass of human serum albumin (HSA) derived from yeast
  • Example 2E Medium containing 0.125% by mass of bovine serum albumin (BSA)
  • Example 2E 0.125% by mass Medium containing human serum albumin (HSA) and 0.06 ⁇ M
  • Example 2F Medium containing 0.125 mass% human serum albumin (HSA) and
  • Example 2A 0.125% by mass of HSA was added alone as a serum substitute, and in Examples 2B to 2H, 0.125% by mass of HSA and each additive (R, Y, BSA, A, P) were added as a serum substitute. , M, and E) in combination.
  • Example 2B to 2H the number of megakaryocytes tended to increase as compared with the case of HSA alone (Example 2A), and the number of megakaryocytes equivalent to that of Positive Control 2 (HP 5%) was obtained.
  • FIG. 3 shows the results when the following media are used in order from the left.
  • Negative control NC medium Positive control 1: Medium containing 0.5% by mass of human plasma (HP)
  • Positive control 2 Medium containing 5% by mass of human plasma (HP)
  • Example 3A 0.25% by mass of human serum albumin (HSA)
  • Example 3B Medium containing 0.25% by mass of human serum albumin (HSA) and 0.03% by mass of rice-derived human recombinant albumin (R)
  • Example 3C 0.25% by mass of human serum albumin (HSA) and 0.125% by mass %
  • 3D Medium containing 0.25% by mass of human serum albumin (HSA) derived from yeast
  • Example 3E Medium containing 0.125% by mass of bovine serum albumin (BSA)
  • Example 3E 0.25% by mass Medium containing human serum albumin (HSA) and 0.06 ⁇ M
  • Example 3F Medium containing 0.25% by mass of human serum albumin (HSA
  • Example 3A 0.25% by mass of HSA was added alone as a serum substitute, and in Examples 3B to 3H, 0.25% by mass of HSA and each additive (R, Y, BSA, A, P) were added as a serum substitute. , M, and E) in combination.
  • the number of megakaryocytes tended to increase as compared with the case of HSA alone (Example 3A), and the number of megakaryocytes equivalent to that of Positive Control 2 (HP 5%) was obtained.
  • FIGs. 4A-4E show DRAQ5 stained images of Negative Control, Positive Control 2, Example 2A, Example 2B, and Example 2E, respectively.
  • Example 2A Megakaryocytes with large cell nuclei stained with DRAQ5 are compared to Negative Control and Example 2A (HSA0.125%) in Example 2B (HSA0.125% + R0.03%) and Example 2E (HSA0.125% + A0). It increased at .06 ⁇ M), which is close to positive control 2 (HP 5%).
  • megakaryocytes can be produced even when the following medium is used, with the same differentiation efficiency as when human plasma is used.
  • Medium containing 0.5% by mass of human serum albumin (HSA) and 0.015% by mass of rice-derived human recombinant albumin (R) Contains 0.5% by mass of human serum albumin (HSA) and 0.03 ⁇ M A419259 compound (A).
  • Example 2 Platelet production by megakaryocytes (1) Method A combination of human serum albumin (HSA) and rice-derived human recombinant albumin (R), which was effective for megakaryocyte differentiation in Example 1, and HSA and A419259. Using the combination of compound (A), platelet shaking culture was performed on a 25 ml scale in the same manner as in Example 1, thereby producing platelets derived from megakaryocytes.
  • HSA human serum albumin
  • R rice-derived human recombinant albumin
  • FACS fluorescence activated cell sorting
  • CD41 antibody staining and CD42b antibody staining were performed, and the CD41-positive cell rate and CD42b-positive cell rate in platelets were analyzed.
  • the PAC1-positive cell rate was increased by adding 0.2 ⁇ M PMA (phorbol 12-millistate 13-acetate), and PAC1 by adding 100 ⁇ M ADP (adenosine diphosphate). The increase in positive cell rate was analyzed.
  • FIG. 5 shows the positive cell rates of CD41 and CD42b.
  • FIG. 5 shows the results when the following media are used in order from the left.
  • Example 5A Medium containing 5% by mass of human plasma (HP)
  • Example 5B Medium containing 0.25% by mass of human serum albumin (HSA)
  • Example 5C Medium containing 0.25% by mass of human serum albumin (HSA) and 0.05% by mass of rice Derived medium containing human recombinant albumin (R)
  • Example 5D Medium containing 0.25% by mass of human serum albumin (HSA) and 0.05 ⁇ M
  • CD41-positive cell rate and CD42b-positive cell rate increased in Example 5C (HSA0.25% + R0.05%) and Example 5D (HSA0.25% + A0.05 ⁇ M) compared to Example 5B (HSA0.25%).
  • Example 5C HSA0.25% + R0.05%
  • Example 5D HSA0.25% + A0.05 ⁇ M
  • Example 5B HSA0.25%
  • the CD41-positive cell rate and the CD42b-positive cell rate equivalent to those of Example 5A (HP5%), which is a positive control were obtained.
  • FIG. 6 shows the PAC1-positive cell rate after PMA treatment and the PAC1-positive cell rate after ADP treatment.
  • FIG. 6 shows the results when the following media are used in order from the left.
  • Example 6A Medium containing 5% by mass of human plasma (HP)
  • Example 6B Medium containing 0.25% by mass of human serum albumin (HSA)
  • Example 6C Medium containing 0.25% by mass of human serum albumin (HSA) and 0.05% by mass of rice Derived medium containing human recombinant albumin (R)
  • Example 6D Medium containing 0.25% by mass of human serum albumin (HSA) and 0.05 ⁇ M
  • Pre_PAC1 indicates the PAC1 positive cell rate before treatment with PMA or ADP
  • PMA_PAC1 indicates the PAC1 positive cell rate after PMA treatment
  • ADP_PAC1 indicates the PAC1 positive cell rate after ADP treatment. Shows positive cell rate.
  • Example 6C HSA0.25% + R0.05%
  • Example 6D HSA0.25% + A0.05 ⁇ M
  • Example 6B HSA0.25%
  • the PAC1-positive cell rate increased, and a PAC1-positive cell rate equivalent to that of Example 6A (HP 5%), which was a positive control, was obtained.
  • Example 3 Proliferation culture of iPS cells and proliferation culture of mesenchymal stem cells (1) Method The combination of human serum albumin (HSA) and recombinant human serum albumin, which was effective for megakaryocyte differentiation in Example 1, and The proliferative capacity of iPS cells was investigated for the combination of HSA and prostratin. In addition, the proliferative ability of mesenchymal stem cells was investigated for the combination of human serum albumin (HSA) and recombinant human serum albumin and the combination of HSA and A419259 compound, which were effective for megakaryocyte differentiation in Example 1.
  • HSA human serum albumin
  • A419259 compound which were effective for megakaryocyte differentiation in Example 1.
  • iPS cells For iPS cells, iPS cells (253G1 strain) were seeded on a 96-well plate (Corning) coated with iMatrix-511 (0.1 ⁇ g / well) (Nippi Co., Ltd.) at 1.0x10e4 / well, 6 wells under each condition. Then, the cells were cultured in the following medium for 5 days.
  • Example 7A (HSA0.125): DMEM / F12 medium containing 0.125% by mass of human serum albumin (HSA)
  • Example 7B (HSA0.1 + R0.025): 0.1% by mass of human serum albumin (HSA) and 0.025% by mass of rice DMEM / F12 medium containing derived human recombinant albumin (R)
  • Example 7C (HSA0.075 + Y0.05): 0.075% by mass of human serum albumin (HSA) and 0.05% by mass of yeast-derived human recombinant albumin (Y) DMEM / F12 medium containing 0.125% by mass of human serum albumin (HSA)
  • Example 7D (HSA0.125 + P0.05): DMEM / F12 medium containing 0.05 ⁇ M prostratin (P)
  • Example 7E (R0.025): DMEM / F12 medium containing 0.025% by mass of rice-derived human recombinant albumin (R
  • the number of cells was measured by analyzing DAPI nuclear staining fluorescence with a confocal quantitative image cytometer CQ1 (Yokogawa Electric Corporation).
  • mesenchymal stem cells For mesenchymal stem cells, bone marrow-derived mesenchymal stem cells (JCRB1154 strain) were seeded on a 96-well plate (Corning) at 1.0x10e4 / well at 6 wells under each condition, and cultured in the following medium for 5 days.
  • Example 8A (HSA0.125): DMEM / F12 medium containing 0.125% by mass of human serum albumin (HSA)
  • Example 8B (HSA0.1 + R0.025): 0.1% by mass of human serum albumin (HSA) and 0.025% by mass of rice DMEM / F12 medium containing derived human recombinant albumin (R)
  • Example 8C (HSA0.075 + Y0.05): 0.075% by mass of human serum albumin (HSA) and 0.05% by mass of yeast-derived human recombinant albumin (Y) DMEM / F12 medium containing 0.125% by mass of human serum albumin (HSA)
  • Example 8D (HSA0.125 + A0.05): DMEM / F12 medium containing 0.05 ⁇ M A419259 compound (A)
  • Example 8E (R0.025): DMEM / F12 medium containing 0.025% by mass of rice-derived human recombinant albumin
  • the number of cells was measured by analyzing DAPI nuclear staining fluorescence with a confocal quantitative image cytometer CQ1 (Yokogawa Electric Corporation).
  • Results Figure 7 shows the number of iPS cells after culturing under each condition.
  • Examples 7B and 7C combination of HSA and recombinant human serum albumin
  • Example 7D combination of HSA and prostratin
  • Example 7E and Example 7F recombinant human serum albumin alone
  • Example 7G prostratin alone
  • FIG. 8 shows the number of MSC cells after culturing under each condition.
  • Examples 8B and 8C combination of HSA and recombinant human serum albumin
  • Example 8D combination of HSA and A419259
  • Example 8E and Example 8F recombinant human serum albumin alone
  • Example 8G A419259 alone
  • iPS cell proliferation culture and mesenchymal stem cells were used in the serum substitute (combination of human serum albumin and a specific additive) that was effective for megakaryocyte differentiation in Example 1. It was shown that high proliferation efficiency can be obtained by synergistic effect when proliferation culture of leaf stem cells is performed. Since the serum substitute does not require a blood component, it is possible to reduce the production cost of cells by proliferation culture and improve the lot stability of proliferation cells.

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Abstract

増殖因子および分化誘導因子から選択される少なくとも１つの培養因子と、ヒト血清アルブミンと、Ｓｒｃ阻害剤、ＰＫＣ活性化剤、メチルセルロース、Essential 8培地、組換えヒト血清アルブミン、およびヒト以外の動物血清アルブミンからなる群より選択される少なくとも１つの添加物とを含む無血清培地で原料細胞を培養して目的細胞を生産することを含む、目的細胞の生産方法。

Description

目的細胞の生産方法、目的細胞による生産物の生産方法、および無血清培地
　本特許出願は、2020年5月18日に出願された日本国特許出願第2020-086836号について優先権を主張するものであり、ここに参照することによって、その全体が本明細書中へ組み込まれるものとする。
　本発明は、血清代替物を使用した細胞培養技術に関する。
　従来より、ヒトを含む動物細胞の培養は、合成培地に血清を添加して行われている。血清は、アルブミン、グロビンなどのタンパク質に加えて、生体の機能維持に必要なさまざまな成分を含む。ヒトを含む動物細胞の培養には、例えば、ウシ胎仔血清が使用されている。血清は、動物由来であるため、コストやロット差などの問題があり、これらの問題を解決するために、血清の代わりに血清代替物を含む無血清培地が開発されている（例えば、特許文献１を参照）。
ＷＯ２０１４／１４４１９８
　上述のとおり、血清は、動物由来であるため、大量の細胞を培養する場合は特に、コストの問題やロット差による培養細胞の品質安定性の問題がある。一方、血清代替物は、血清と比べて細胞の培養効率を低下させる懸念がある。したがって、本発明は、血清代替物を使用した細胞培養技術であって、血清使用時の細胞の培養効率を維持することができるとともに、血清使用時のコストの問題や培養細胞の品質安定性の問題を解決することができる細胞培養技術を提供することを目的とする。
　一つの側面によれば、
　増殖因子および分化誘導因子から選択される少なくとも１つの培養因子と、
　ヒト血清アルブミンと、
　Ｓｒｃ阻害剤、ＰＫＣ活性化剤、メチルセルロース、Essential 8培地、組換えヒト血清アルブミン、およびヒト以外の動物血清アルブミンからなる群より選択される少なくとも１つの添加物と
を含む無血清培地で原料細胞を培養して目的細胞を生産することを含む、目的細胞の生産方法が提供される。
　別の側面によれば、上述の方法に従って原料細胞を培養して、目的細胞を生産するとともに目的細胞に生産物を生産させることを含む、目的細胞による生産物の生産方法が提供される。
　更に別の側面によれば、
　増殖因子および分化誘導因子から選択される少なくとも１つの培養因子と、
　ヒト血清アルブミンと、
　Ｓｒｃ阻害剤、ＰＫＣ活性化剤、メチルセルロース、Essential 8培地、組換えヒト血清アルブミン、およびヒト以外の動物血清アルブミンからなる群より選択される少なくとも１つの添加物と
を含む、目的細胞の生産において使用するための無血清培地が提供される。
　増殖因子および分化誘導因子から選択される少なくとも１つの培養因子と、
　ヒト血清アルブミンと、
　Ｓｒｃ阻害剤、ＰＫＣ活性化剤、メチルセルロース、Essential 8培地、組換えヒト血清アルブミン、およびヒト以外の動物血清アルブミンからなる群より選択される少なくとも１つの添加物と
を含む、目的細胞による生産物の生産において使用するための無血清培地が提供される。
　本発明によれば、血清代替物を使用した細胞培養技術であって、血清使用時の細胞の培養効率を維持することができるとともに、血清使用時のコストの問題や培養細胞の品質安定性の問題を解決することができる細胞培養技術を提供することができる。
図１は、各培地で分化した巨核球の数を示すグラフである。 図２は、各培地で分化した巨核球の数を示すグラフである。 図３は、各培地で分化した巨核球の数を示すグラフである。 図４Ａは、核染色試薬で染色された巨核球を示す顕微鏡画像である。 図４Ｂは、核染色試薬で染色された巨核球を示す顕微鏡画像である。 図４Ｃは、核染色試薬で染色された巨核球を示す顕微鏡画像である。 図４Ｄは、核染色試薬で染色された巨核球を示す顕微鏡画像である。 図４Ｅは、核染色試薬で染色された巨核球を示す顕微鏡画像である。 図５は、血小板マーカー（ＣＤ４１およびＣＤ４２ｂ）の陽性細胞率を示すグラフである。 図６は、血小板マーカー（ＰＡＣ１）の陽性細胞率を示すグラフである。 図７は、各培地で増殖したｉＰＳ細胞の数を示すグラフである。 図８は、各培地で増殖した間葉系幹細胞の数を示すグラフである。
　以下、本発明を詳細に説明するが、以下の説明は、本発明を詳説することを目的とし、本発明を限定することを意図していない。
　本発明者らは、種々の物質のなかから血清代替物のスクリーニングを実施した。その結果、本発明者らは、血清代替物として、（ａ）ヒト血清アルブミンと、（ｂ）Ｓｒｃ阻害剤、ＰＫＣ活性化剤、メチルセルロース、Essential 8培地、組換えヒト血清アルブミン、およびヒト以外の動物血清アルブミンからなる群より選択される少なくとも１つの添加物との組み合わせを使用すると、血清使用時の細胞の培養効率を維持することができることを見出し、本発明を完成させるに至った。本明細書において、「培養効率」は、分化培養の場合には分化効率を指し、増殖培養の場合には増殖効率を指す。
　＜１．目的細胞の生産方法＞
　１つの側面によれば、
　増殖因子および分化誘導因子から選択される少なくとも１つの培養因子と、
　ヒト血清アルブミンと、
　Ｓｒｃ阻害剤、ＰＫＣ活性化剤、メチルセルロース、Essential 8培地、組換えヒト血清アルブミン、およびヒト以外の動物血清アルブミンからなる群より選択される少なくとも１つの添加物と
を含む無血清培地で原料細胞を培養して目的細胞を生産することを含む、目的細胞の生産方法が提供される。
　１つの態様において、培養因子は、少なくとも１つの分化誘導因子であり、目的細胞は分化細胞である。分化誘導因子は、原料細胞の分化を促進する作用を有する。この態様において、上記方法は「分化細胞の生産方法」である。すなわち、「分化細胞の生産方法」は、
　少なくとも１つの分化誘導因子と、
　ヒト血清アルブミンと、
　Ｓｒｃ阻害剤、ＰＫＣ活性化剤、メチルセルロース、Essential 8培地、組換えヒト血清アルブミン、およびヒト以外の動物血清アルブミンからなる群より選択される少なくとも１つの添加物と
を含む無血清培地で原料細胞を培養して分化細胞を生産することを含む。
　別の態様において、培養因子は、少なくとも１つの増殖因子であり、目的細胞は増殖細胞である。増殖因子は、原料細胞の増殖を促進する作用を有する。この態様において、上記方法は「増殖細胞の生産方法」である。すなわち、「増殖細胞の生産方法」は、
　少なくとも１つの増殖因子と、
　ヒト血清アルブミンと、
　Ｓｒｃ阻害剤、ＰＫＣ活性化剤、メチルセルロース、Essential 8培地、組換えヒト血清アルブミン、およびヒト以外の動物血清アルブミンからなる群より選択される少なくとも１つの添加物と
を含む無血清培地で原料細胞を培養して増殖細胞を生産することを含む。
　以下、「分化細胞の生産方法」および「増殖細胞の生産方法」について具体的に説明する。
　＜１－１．分化細胞の生産方法＞
　（細胞）
　分化細胞の生産方法では、原料細胞を分化誘導因子の存在下で培養して、分化細胞を生産する。
　原料細胞は、例えば、巨核球前駆細胞、ｉＰＳ細胞、間葉系幹細胞、および線維芽細胞からなる群より選択され得る。原料細胞は、好ましくは、ヒト巨核球前駆細胞、ヒトｉＰＳ細胞、ヒト間葉系幹細胞、およびヒト線維芽細胞からなる群より選択され得る。
　分化細胞は、例えば、巨核球、間葉系幹細胞、線維芽細胞、および心筋細胞からなる群より選択され得る。分化細胞は、好ましくは、ヒト巨核球、ヒト間葉系幹細胞、ヒト線維芽細胞、およびヒト心筋細胞からなる群より選択され得る。
　一例によれば、原料細胞は巨核球前駆細胞であり、分化細胞は巨核球である。好ましくは、原料細胞はヒト巨核球前駆細胞であり、分化細胞はヒト巨核球である。
　別の例によれば、原料細胞はｉＰＳ細胞であり、分化細胞は間葉系幹細胞である。好ましくは、原料細胞はヒトｉＰＳ細胞であり、分化細胞はヒト間葉系幹細胞である。
　更に別の例によれば、原料細胞はｉＰＳ細胞であり、分化細胞は線維芽細胞である。好ましくは、原料細胞はヒトｉＰＳ細胞であり、分化細胞はヒト線維芽細胞である。
　更に別の例によれば、原料細胞はｉＰＳ細胞であり、分化細胞は心筋細胞である。好ましくは、原料細胞はヒトｉＰＳ細胞であり、分化細胞はヒト心筋細胞である。
　更に別の例によれば、原料細胞は間葉系幹細胞であり、分化細胞は心筋細胞である。好ましくは、原料細胞はヒト間葉系幹細胞であり、分化細胞はヒト心筋細胞である。
　更に別の例によれば、原料細胞は線維芽細胞であり、分化細胞は心筋細胞である。好ましくは、原料細胞はヒト線維芽細胞であり、分化細胞はヒト心筋細胞である。
　（血清代替物）
　分化細胞の生産方法は、血清代替物として、
　（ａ）ヒト血清アルブミンと、
　（ｂ）Ｓｒｃ阻害剤、ＰＫＣ活性化剤、メチルセルロース、Essential 8培地、組換えヒト血清アルブミン、およびヒト以外の動物血清アルブミンからなる群より選択される少なくとも１つの添加物と
の組み合わせを使用することを特徴とする。
　ヒト血清アルブミンは、ヒトの血漿または血清から調製されたもので、組換え体ではない。ヒト血清アルブミンは、商業的に入手可能であり、例えばSigma-Aldrichから入手可能である。
　添加物は、好ましくはＳｒｃ阻害剤である。すなわち、血清代替物は、好ましくは、ヒト血清アルブミンとＳｒｃ阻害剤との組み合わせである。「Ｓｒｃ阻害剤」は、チロシンキナーゼであるＳｒｃまたはその下流のシグナル伝達経路を阻害する物質を意味する。Ｓｒｃ阻害剤は、公知のＳｒｃ阻害剤を使用することができる。Ｓｒｃ阻害剤としては、例えば、Ａ４１９２５９、ＳＵ６６５６、ＰＰ１、１－ナフチルＰＰ１（1-Naphthyl PP1）、ＰＰ２、インジルビン－３’－（２，３－ジヒドロキシプロピル）－オキシムエーテル（Indirubin-3'-(2,3-dihydroxypropyl)-oximether）、ＴＸ－１１２３、Src Kinase Inhibitor I（CAS 179248-59-0）、ＡＺＭ４７５２７１、ボスチニブ（Bosutinib）、ハービマイシンＡ（Herbimycin A）、ＫＢ　ＳＲＣ　４、ＭＮＳ、ＰＤ１６６２８５、ＴＣ－Ｓ７００３などが例示される。
　Ｓｒｃ阻害剤は、好ましくはＡ４１９２５９である。Ａ４１９２５９は、下記構造を有し、Ａ４１９２５９の化合物名は、7-[4-(4-メチルピペラジン-1-イル)シクロヘキシル]-5-(4-フェノキシフェニル)ピロロ[2,3-d]ピリミジン-4-アミンである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
　Ａ４１９２５９は、塩の形態で添加されてもよい。Ａ４１９２５９は、商業的に入手可能であり、例えば富士フイルム和光純薬株式会社から入手可能である。
　あるいは、添加物は、好ましくはＰＫＣ活性化剤である。すなわち、血清代替物は、好ましくは、ヒト血清アルブミンとＰＫＣ活性化剤との組み合わせである。「ＰＫＣ活性化剤」は、プロテインキナーゼＣ（ＰＫＣ）またはその下流のシグナル伝達経路を活性化する物質を意味する。ＰＫＣ活性化剤は、公知のＰＫＣ活性化剤を使用することができる。ＰＫＣ活性化剤としては、例えば、ホルボール１２－ミリスタート１３－アセタート（Phorbol 12-myristate 13-acetate）（ＰＭＡ）、プロストラチン、ブリオスタチン１（Bryostatin 1）、ブリオスタチン２（Bryostatin 2）、ＦＲ２３６９２４、（－）－インドラクタムＶ（(-)-Indolactam V）、ＰＥＰ００５、ホルボール１２，１３－ジブチラート（Phorbol 12,13-dibutyrate）、ＳＣ－９、ＳＣ－１０、１－オレオイル－２－アセチル－ｓｎ－グリセロール（1-Oleoyl-2-acetyl-sn-glycerol）、１－Ｏ－ヘキサデシル－２－Ｏ－アラキドニル－ｓｎ－グリセロール（1-O-Hexadecyl-2-O-arachidonyl-sn-glycerol）、１，２－ジオクタノイル－ｓｎ－グリセロール（1,2-Dioctanoyl-sn-glycerol）、ＰＩＰ２、レシニフェラトキシン（Resiniferatoxin）、ホルボール１２，１３－ジヘキサノアート（Phorbol 12,13-Dihexanoate）、メゼレイン（Mezerein）、インゲノール３－アンゲラート（Ingenol 3-Angelate）、ＲＨＣ－８０２６７、ＤＣＰ－ＬＡ、リポキシンＡ４（Lipoxin A4）などが例示される。
　ＰＫＣ活性化剤は、好ましくはプロストラチンである。プロストラチンは、下記構造を有し、プロストラチンの化合物名は、(1aR,1bS,4aR,7aS,7bR,8R,9aS)-4a,7b-ジヒドロキシ-3-(ヒドロキシメチル)-1,1,6,8-テトラメチル-5-オキソ-1,1a,1b,4,4a,5,7a,7b,8,9-デカヒドロ-9aH-シクロプロパ[3,4]ベンゾ[1,2-e]アズレン-9a-イルアセテートである。プロストラチンは、商業的に入手可能であり、例えば富士フイルム和光純薬株式会社から入手可能である。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
　あるいは、添加物は、好ましくはメチルセルロースである。すなわち、血清代替物は、好ましくは、ヒト血清アルブミンとメチルセルロースとの組み合わせである。メチルセルロースは、商業的に入手可能であり、例えばR&D Systemsから入手可能である。
　あるいは、添加物は、好ましくはEssential 8培地である。すなわち、血清代替物は、好ましくは、ヒト血清アルブミンとEssential 8培地との組み合わせである。Essential 8培地は、論文１（Chen G et al, Chemically defined conditions for human iPSC derivation and culture. Nat Methods. 2011 May;8(5):424-9. doi: 10.1038/nmeth.1593. Epub 2011 Apr 10.）によれば、下記の組成を有する：DMEM/F12, L-ascorbic acid-2-phosphate magnesium (64 mg/l), sodium selenium (14μg/l), FGF2 (100μg/l), insulin (19.4 mg/l), NaHCO3 (543 mg/l), transferrin (10.7 mg/l), およびTGFβ1(2μg/l)またはNODAL (100μg/l)の何れか。Essential 8培地は、商業的に入手可能であり、例えばInvitrogenから入手可能である。
　あるいは、添加物は、好ましくは組換えヒト血清アルブミンまたはヒト以外の動物血清アルブミンである。すなわち、血清代替物は、好ましくは、ヒト血清アルブミンと、組換えヒト血清アルブミンまたはヒト以外の動物血清アルブミンの何れか一方との組み合わせである。組換えヒト血清アルブミンは、例えば、イネで発現させたヒト血清アルブミンまたは酵母で発現させたヒト血清アルブミンである。ヒト以外の動物血清アルブミンは、例えば、ウシ血清アルブミンである。組換えヒト血清アルブミンおよびヒト以外の動物血清アルブミンは、商業的に入手可能であり、例えばSigma-Aldrichまたは富士フイルム和光純薬株式会社から入手可能である。
　血清代替物は、以下に記載の濃度で使用することができる。以下に記載の濃度は、培地中の最終濃度を表す。
　無血清培地中のヒト血清アルブミンの濃度は、例えば０．０１～２．０質量％、好ましくは０．０５～１．５質量％、より好ましくは０．０７５～０．７５質量％である。
　添加物としてＳｒｃ阻害剤、例えばＡ４１９２５９を使用する場合、無血清培地中のＳｒｃ阻害剤の濃度は、例えば０．００１～１０μＭ、好ましくは０．０１～１．０μＭ、より好ましくは０．０３～０．２μＭである。
　添加物としてＰＫＣ活性化剤、例えばプロストラチンを使用する場合、無血清培地中のＰＫＣ活性化剤の濃度は、例えば０．００１～１０μＭ、好ましくは０．０１～１．０μＭ、より好ましくは０．０１５～０．２μＭである。
　添加物としてメチルセルロースを使用する場合、無血清培地中のメチルセルロースの濃度は、例えば０．００１～３．０質量％、好ましくは０．０１～１．０質量％、より好ましくは０．０１８～０．３質量％である。
　添加物としてEssential 8培地を使用する場合、無血清培地中のEssential 8培地の濃度は、例えば０．５～１００質量％、好ましくは０．５～５０質量％、より好ましくは０．６２５～３０質量％である。
　添加物として組換えヒト血清アルブミンを使用する場合、無血清培地中の組換えヒト血清アルブミンの濃度は、例えば０．００１～１．０質量％、好ましくは０．０１～０．５質量％、より好ましくは０．０１５～０．３質量％である。
　添加物としてヒト以外の動物血清アルブミンを使用する場合、無血清培地中のヒト以外の動物血清アルブミンの濃度は、例えば０．０１～２．０質量％、好ましくは０．０５～１．５質量％、より好ましくは０．１２５～０．７５質量％である。
　（培養）
　分化細胞の生産方法は、血清代替物として、（ａ）ヒト血清アルブミンと、（ｂ）Ｓｒｃ阻害剤、ＰＫＣ活性化剤、メチルセルロース、Essential 8培地、組換えヒト血清アルブミン、およびヒト以外の動物血清アルブミンからなる群より選択される少なくとも１つの添加物との組み合わせを使用すること以外は、血清を使用する従来の分化培養と同様の方法に従って実施することができる。より具体的には、分化細胞の生産方法は、基本培地（例えば、MEM、DMEM、IMDM、Ham’s F-12、DMEM/F12、RPMI1640など）と分化誘導因子と上述の血清代替物とを含む無血清培地で原料細胞を培養することにより実施することができる。
　分化誘導因子は、原料細胞および分化細胞の種類に応じて、公知の因子を使用することができる。分化誘導因子は、原料細胞の分化を促進する作用に加えて、細胞の増殖を促進する作用を有していてもよい。また、分化培養は、１または複数の特定の分化誘導因子を使用する単一の培養工程から構成されていてもよいし、培養工程ごとに異なる１または複数の分化誘導因子を使用する複数の培養工程から構成されていてもよい。
　培養により、原料細胞が分化して分化細胞が生産されるが、培養中、細胞の分化に加えて細胞の増殖が起こってもよい。
　例えば、巨核球前駆細胞から巨核球への分化培養は、基本培地に、巨核球分化誘導因子と上述の血清代替物とを添加して無血清培地を調製し、この無血清培地中で巨核球前駆細胞を培養することにより実施することができる。基本培地として、例えばIMDMを使用することができ、巨核球分化誘導因子として、例えば、SCF、TA-316、KP-457、GNF-351、およびY39983を使用することができる。
　SCFは、幹細胞因子と呼ばれる公知のタンパク質で、例えばR&D Systemsから入手可能である。TA-316は、下記構造を有し、例えば日産化学工業株式会社から入手可能である。KP-457は、下記構造を有し、例えばGLPBIO（https://www.glpbio.com/kp-457.html）から入手可能である。GNF-351は、下記構造を有し、例えばSanta Cruz Biotechnology（https://www.scbt.com/ja/p/ahr-antagonist-iii-gnf351）から入手可能である。Y39983は、下記構造を有し、例えばセレックバイオテック株式会社（https://www.selleck.co.jp/products/y-39983-hcl.html）から入手可能である。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000003
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000004
　なお、KP-457は、巨核球により生産された血小板の機能を保持する物質、すなわち血小板機能保持剤としても機能することが知られている（ＷＯ２０１２／１５７５８６を参照）。また、GNF-351およびY-39983は、巨核球の血小板産生を促進する物質、すなわち血小板産生促進剤としても機能することが知られている（ＷＯ２０１６／２０４２５６を参照）。
　上記説明では、巨核球分化誘導因子が例示されているが、上述の「分化細胞の生産方法」を実施して細胞の分化が起こっている場合、無血清培地中に分化誘導因子が含まれていることは明らかであり、無血清培地中のどの成分が分化誘導因子であるかを必ずしも特定する必要はない。
　（効果）
　上述の方法は、血清代替物を使用しているが、血清使用時の細胞の分化効率を維持することができる点で優れている。また、上述の方法は、血清代替物の使用により、血清使用時のコストの問題や培養細胞の品質安定性の問題を解決することができる。
　＜１－２．増殖細胞の生産方法＞
　増殖細胞の生産方法では、原料細胞を増殖因子の存在下で培養して、増殖細胞を生産する。本明細書において「増殖因子」は、細胞の増殖のための栄養源となる物質や細胞の増殖を促進する物質など、細胞の増殖に寄与するあらゆる物質を指す。
　原料細胞および目的細胞は、例えば、ｉＰＳ細胞および間葉系幹細胞からなる群より選択され得る。原料細胞および目的細胞は、好ましくは、ヒトｉＰＳ細胞およびヒト間葉系幹細胞からなる群より選択され得る。
　増殖細胞の生産方法は、血清代替物として、（ａ）ヒト血清アルブミンと、（ｂ）Ｓｒｃ阻害剤、ＰＫＣ活性化剤、メチルセルロース、Essential 8培地、組換えヒト血清アルブミン、およびヒト以外の動物血清アルブミンからなる群より選択される少なくとも１つの添加物との組み合わせを使用することを特徴とする。
　血清代替物は、上述の＜１－１．分化細胞の生産方法＞の欄で説明したとおりである。また、血清代替物は、上述の＜１－１．分化細胞の生産方法＞の欄に記載した濃度で使用することができる。
　増殖細胞の生産方法は、血清代替物として、（ａ）ヒト血清アルブミンと、（ｂ）Ｓｒｃ阻害剤、ＰＫＣ活性化剤、メチルセルロース、Essential 8培地、組換えヒト血清アルブミン、およびヒト以外の動物血清アルブミンからなる群より選択される少なくとも１つの添加物との組み合わせを使用すること以外は、血清を使用する従来の増殖培養と同様の方法に従って実施することができる。より具体的には、増殖細胞の生産方法は、増殖因子を含む基本培地（例えば、MEM、DMEM、IMDM、Ham’s F-12、DMEM/F12、RPMI1640など）と上述の血清代替物とを含む無血清培地で原料細胞を培養することにより実施することができる。
　基本培地は、通常、アミノ酸、ビタミン、無機塩類などの増殖因子を含んでいるが、基本培地に含まれる増殖因子に加えて、追加の増殖因子を基本培地に添加してもよい。
　例えば、ｉＰＳ細胞の増殖培養は、市販のｉＰＳ細胞増殖用培地に、上述の血清代替物を添加して無血清培地を調製し、この無血清培地中でｉＰＳ細胞を培養することにより実施することができる。ｉＰＳ細胞増殖用培地として、例えばDMEM/F12を使用することができ、DMEM/F12は、ｉＰＳ細胞増殖因子として、例えばL-グルタミン、ビタミンB12などを含む。血清代替物としては、好ましくは、ヒト血清アルブミンとプロストラチンとの組み合わせ、またはヒト血清アルブミンと組換えヒト血清アルブミンとの組み合わせを使用することができる。
　例えば、間葉系幹細胞の増殖培養は、市販の間葉系幹細胞増殖用培地に、上述の血清代替物を添加して無血清培地を調製し、この無血清培地中で間葉系幹細胞を培養することにより実施することができる。間葉系幹細胞増殖用培地として、例えばDMEM/F12を使用することができ、DMEM/F12は、間葉系幹細胞増殖因子として、例えばL-グルタミン、ビタミンB12などを含む。血清代替物としては、好ましくは、ヒト血清アルブミンとＡ４１９２５９との組み合わせ、またはヒト血清アルブミンと組換えヒト血清アルブミンとの組み合わせを使用することができる。
　あるいは、上述の方法を巨核球前駆細胞に適用して巨核球前駆細胞を増殖培養することや、上述の方法を心筋細胞に適用して心筋細胞を増殖培養することも可能である。
　上記説明では、ｉＰＳ細胞増殖因子や間葉系幹細胞増殖因子が例示されているが、上述の「増殖細胞の生産方法」を実施して細胞の増殖が起こっている場合、無血清培地中に増殖因子が含まれていることは明らかであり、無血清培地中のどの成分が増殖因子であるかを必ずしも特定する必要はない。
　上述の方法は、血清代替物を使用しているが、血清使用時の細胞の増殖効率を維持することができる点で優れている。また、上述の方法は、血清代替物の使用により、血清使用時のコストの問題や培養細胞の品質安定性の問題を解決することができる。
　＜２．目的細胞による生産物の生産方法＞
　別の側面によれば、上述の方法に従って原料細胞を培養して、目的細胞を生産するとともに目的細胞に生産物を生産させることを含む、目的細胞による生産物の生産方法が提供される。すなわち、
　増殖因子および分化誘導因子から選択される少なくとも１つの培養因子と、
　ヒト血清アルブミンと、
　Ｓｒｃ阻害剤、ＰＫＣ活性化剤、メチルセルロース、Essential 8培地、組換えヒト血清アルブミン、およびヒト以外の動物血清アルブミンからなる群より選択される少なくとも１つの添加物と
を含む無血清培地で原料細胞を培養して、目的細胞を生産するとともに目的細胞に生産物を生産させることを含む、目的細胞による生産物の生産方法が提供される。
　この方法において、原料細胞の培養は、上述の＜１－１．分化細胞の生産方法＞の欄で説明したのと同じ方法に従って行うことができる。この方法は、目的細胞により生産された生産物を回収する工程を更に含んでいてもよい。
　一つの態様によれば、目的細胞による生産物の生産方法において、原料細胞は巨核球前駆細胞であり、目的細胞は巨核球であり、生産物は血小板である。すなわち、一つの態様によれば、
　少なくとも１つの巨核球分化誘導因子と、
　ヒト血清アルブミンと、
　Ｓｒｃ阻害剤、ＰＫＣ活性化剤、メチルセルロース、Essential 8培地、組換えヒト血清アルブミン、およびヒト以外の動物血清アルブミンからなる群より選択される少なくとも１つの添加物と
を含む無血清培地で巨核球前駆細胞を培養して、巨核球を生産するとともに巨核球に血小板を生産させることを含む、巨核球による血小板の生産方法が提供される。
　例えば、巨核球による血小板の生産は、基本培地に、巨核球分化誘導因子と上述の血清代替物とを添加して無血清培地を調製し、この無血清培地中で巨核球前駆細胞を培養することにより実施することができる。基本培地として、例えばIMDMを使用することができ、巨核球分化誘導因子として、例えば、SCF、TA-316、KP-457、GNF-351、およびY39983を使用することができる。培養により、巨核球前駆細胞が分化して巨核球が生産されるとともに、生産された巨核球により血小板が生産される。
　上述のとおり、KP-457は、巨核球により生産された血小板の機能を保持する物質、すなわち血小板機能保持剤としても機能することが知られている（ＷＯ２０１２／１５７５８６を参照）。また、GNF-351およびY-39983は、巨核球の血小板産生を促進する物質、すなわち血小板産生促進剤としても機能することが知られている（ＷＯ２０１６／２０４２５６を参照）。
　あるいは、別の態様によれば、iPS細胞または間葉系幹細胞を増殖培養して、これらの細胞にサイトカインを生産させることができる。
　すなわち、別の態様によれば、
　少なくとも１つのｉＰＳ細胞増殖因子と、
　ヒト血清アルブミンと、
　Ｓｒｃ阻害剤、ＰＫＣ活性化剤、メチルセルロース、Essential 8培地、組換えヒト血清アルブミン、およびヒト以外の動物血清アルブミンからなる群より選択される少なくとも１つの添加物と
を含む無血清培地でｉＰＳ細胞を培養して、ｉＰＳ細胞にサイトカインを生産させることを含む、ｉＰＳ細胞によるサイトカインの生産方法が提供される。
　この方法において、ｉＰＳ細胞の培養は、上述の＜１－２．増殖細胞の生産方法＞の欄でｉＰＳ細胞の増殖培養について説明したのと同じ方法に従って行うことができる。培養により、ｉＰＳ細胞が増殖するとともに、ｉＰＳ細胞によりサイトカインが生産される。
　更に別の態様によれば、
　少なくとも１つの間葉系幹細胞増殖因子と、
　ヒト血清アルブミンと、
　Ｓｒｃ阻害剤、ＰＫＣ活性化剤、メチルセルロース、Essential 8培地、組換えヒト血清アルブミン、およびヒト以外の動物血清アルブミンからなる群より選択される少なくとも１つの添加物と
を含む無血清培地で間葉系幹細胞を培養して、間葉系幹細胞にサイトカインを生産させることを含む、間葉系幹細胞によるサイトカインの生産方法が提供される。
　この方法において、間葉系幹細胞の培養は、上述の＜１－２．増殖細胞の生産方法＞の欄で間葉系幹細胞の増殖培養について説明したのと同じ方法に従って行うことができる。培養により、間葉系幹細胞が増殖するとともに、間葉系幹細胞によりサイトカインが生産される。
　上述の方法は、血清代替物を使用しているが、血清使用時の細胞の培養効率および細胞による生産物の生産効率を維持することができる点で優れている。また、上述の方法は、血清代替物の使用により、血清使用時のコストの問題や培養細胞の品質安定性の問題を解決することができる。
　＜３．無血清培地＞
　＜３－１．目的細胞の生産において使用するための無血清培地＞
　別の側面によれば、
　増殖因子および分化誘導因子から選択される少なくとも１つの培養因子と、
　ヒト血清アルブミンと、
　Ｓｒｃ阻害剤、ＰＫＣ活性化剤、メチルセルロース、Essential 8培地、組換えヒト血清アルブミン、およびヒト以外の動物血清アルブミンからなる群より選択される少なくとも１つの添加物と
を含む、目的細胞の生産において使用するための無血清培地が提供される。
　この無血清培地は、目的細胞の生産において使用されるものであり、具体的には、上述の＜１．目的細胞の生産方法＞の欄で説明した方法に使用することができる。すなわち、無血清培地は、増殖細胞の生産または分化細胞の生産において使用することができる。したがって、無血清培地の詳細については、上述の＜１．目的細胞の生産方法＞の欄に記載される培地の説明を参照することができる。
　無血清培地は、血清代替物として、（ａ）ヒト血清アルブミンと、（ｂ）Ｓｒｃ阻害剤、ＰＫＣ活性化剤、メチルセルロース、Essential 8培地、組換えヒト血清アルブミン、およびヒト以外の動物血清アルブミンからなる群より選択される少なくとも１つの添加物との組み合わせを含むことを特徴とする。血清代替物は、上述の＜１－１．分化細胞の生産方法＞の欄で説明したとおりである。また、血清代替物は、上述の＜１－１．分化細胞の生産方法＞の欄に記載した濃度で無血清培地に含まれ得る。
　一つの態様において、無血清培地は、分化誘導因子を含む公知の細胞分化誘導用培地に含まれる血清を、上述の血清代替物に置き換えた培地である。この態様において、無血清培地は、基本培地（例えば、MEM、DMEM、IMDM、Ham’s F-12、DMEM/F12、RPMI1640など）と分化誘導因子と上述の血清代替物とを含む。
　別の態様において、無血清培地は、増殖因子を含む公知の細胞増殖用培地に含まれる血清を、上述の血清代替物に置き換えた培地である。この態様において、無血清培地は、増殖因子を含む基本培地（例えば、MEM、DMEM、IMDM、Ham’s F-12、DMEM/F12、RPMI1640など）と上述の血清代替物とを含む。
　特定の態様によれば、目的細胞の生産において使用するための無血清培地において、目的細胞は巨核球であり、培養因子は巨核球分化誘導因子である。すなわち、この特定の態様において、無血清培地は、基本培地（例えば、IMDMなど）と巨核球分化誘導因子と上述の血清代替物とを含む。上述のとおり、巨核球分化誘導因子は、例えばSCF、TA-316、KP-457、GNF-351、およびY39983である。
　上述の無血清培地は、血清代替物を含むが、血清を含む対応する培地を使用した時の細胞の培養効率（具体的には、分化効率および増殖効率）を維持することができる点で優れている。また、上述の無血清培地は、血清代替物の使用により、血清使用時のコストの問題や培養細胞の品質安定性の問題を解決することができる。
　＜３－２．目的細胞による生産物の生産において使用するための無血清培地＞
　別の側面によれば、
　増殖因子および分化誘導因子から選択される少なくとも１つの培養因子と、
　ヒト血清アルブミンと、
　Ｓｒｃ阻害剤、ＰＫＣ活性化剤、メチルセルロース、Essential 8培地、組換えヒト血清アルブミン、およびヒト以外の動物血清アルブミンからなる群より選択される少なくとも１つの添加物と
を含む、目的細胞による生産物の生産において使用するための無血清培地が提供される。
　この無血清培地は、目的細胞による生産物の生産において使用されるものであり、具体的には、上述の＜２．目的細胞による生産物の生産方法＞の欄で説明した方法に使用することができる。したがって、無血清培地の詳細については、上述の＜２．目的細胞による生産物の生産方法＞の欄に記載される培地の説明を参照することができる。
　無血清培地は、血清代替物として、（ａ）ヒト血清アルブミンと、（ｂ）Ｓｒｃ阻害剤、ＰＫＣ活性化剤、メチルセルロース、Essential 8培地、組換えヒト血清アルブミン、およびヒト以外の動物血清アルブミンからなる群より選択される少なくとも１つの添加物との組み合わせを含むことを特徴とする。血清代替物は、上述の＜１－１．分化細胞の生産方法＞の欄で説明したとおりである。また、血清代替物は、上述の＜１－１．分化細胞の生産方法＞の欄に記載した濃度で無血清培地に含まれ得る。
　特定の態様によれば、目的細胞による生産物の生産において使用するための無血清培地において、目的細胞による生産物の生産は、巨核球による血小板の生産であり、培養因子は巨核球分化誘導因子である。すなわち、この特定の態様において、無血清培地は、基本培地（例えば、IMDMなど）と巨核球分化誘導因子と上述の血清代替物とを含む。上述のとおり、巨核球分化誘導因子は、例えばSCF、TA-316、KP-457、GNF-351、およびY39983である。
　上述のとおり、KP-457は、巨核球により生産された血小板の機能を保持する物質、すなわち血小板機能保持剤としても機能することが知られている（ＷＯ２０１２／１５７５８６を参照）。また、GNF-351およびY-39983は、巨核球の血小板産生を促進する物質、すなわち血小板産生促進剤としても機能することが知られている（ＷＯ２０１６／２０４２５６を参照）。
　上述の無血清培地は、血清代替物を含むが、血清を含む対応する培地を使用した時の細胞の培養効率および細胞による生産物の生産効率を維持することができる点で優れている。また、上述の無血清培地は、血清代替物の使用により、血清使用時のコストの問題や培養細胞の品質安定性の問題を解決することができる。
　＜４．好ましい実施形態＞
　以下に、本発明の好ましい実施形態をまとめて示す。
　［Ａ１］　増殖因子および分化誘導因子から選択される少なくとも１つの培養因子と、
　ヒト血清アルブミンと、
　Ｓｒｃ阻害剤、ＰＫＣ活性化剤、メチルセルロース、Essential 8培地、組換えヒト血清アルブミン、およびヒト以外の動物血清アルブミンからなる群より選択される少なくとも１つの添加物と
を含む無血清培地で原料細胞を培養して目的細胞を生産することを含む、目的細胞の生産方法。
　［Ａ２］　前記培養因子が、少なくとも一つの分化誘導因子であり、前記目的細胞が分化細胞である［Ａ１］に記載の方法。
　［Ａ３］　前記原料細胞が、巨核球前駆細胞、ｉＰＳ細胞、間葉系幹細胞、および線維芽細胞からなる群より選択される［Ａ２］に記載の方法。
　［Ａ４］　前記原料細胞が、ヒト巨核球前駆細胞、ヒトｉＰＳ細胞、ヒト間葉系幹細胞、およびヒト線維芽細胞からなる群より選択される［Ａ２］または［Ａ３］に記載の方法。
　［Ａ５］　前記目的細胞が、巨核球、間葉系幹細胞、線維芽細胞、および心筋細胞からなる群より選択される［Ａ２］～［Ａ４］の何れか１に記載の方法。
　［Ａ６］　前記目的細胞が、ヒト巨核球、ヒト間葉系幹細胞、ヒト線維芽細胞、およびヒト心筋細胞からなる群より選択される［Ａ２］～［Ａ５］の何れか１に記載の方法。
　［Ａ７］　前記原料細胞が巨核球前駆細胞であり、前記目的細胞が巨核球である［Ａ２］、［Ａ３］および［Ａ５］の何れか１に記載の方法。
　［Ａ８］　前記原料細胞がヒト巨核球前駆細胞であり、前記目的細胞がヒト巨核球である［Ａ２］～［Ａ７］の何れか１に記載の方法。
　［Ａ９］　前記原料細胞がｉＰＳ細胞であり、前記目的細胞が間葉系幹細胞である［Ａ２］、［Ａ３］および［Ａ５］の何れか１に記載の方法。
　［Ａ１０］　前記原料細胞がヒトｉＰＳ細胞であり、前記目的細胞がヒト間葉系幹細胞である［Ａ２］～［Ａ６］および［Ａ９］の何れか１に記載の方法。
　［Ａ１１］　前記原料細胞がｉＰＳ細胞であり、前記目的細胞が線維芽細胞である［Ａ２］、［Ａ３］および［Ａ５］の何れか１に記載の方法。
　［Ａ１２］　前記原料細胞がヒトｉＰＳ細胞であり、前記目的細胞がヒト線維芽細胞である［Ａ２］～［Ａ６］および［Ａ１１］の何れか１に記載の方法。
　［Ａ１３］　前記原料細胞がｉＰＳ細胞であり、前記目的細胞が心筋細胞である［Ａ２］、［Ａ３］および［Ａ５］の何れか１に記載の方法。
　［Ａ１４］　前記原料細胞がヒトｉＰＳ細胞であり、前記目的細胞がヒト心筋細胞である［Ａ２］～［Ａ６］および［Ａ１３］の何れか１に記載の方法。
　［Ａ１５］　前記原料細胞が間葉系幹細胞であり、前記目的細胞が心筋細胞である［Ａ２］、［Ａ３］および［Ａ５］の何れか１に記載の方法。
　［Ａ１６］　前記原料細胞がヒト間葉系幹細胞であり、前記目的細胞がヒト心筋細胞である［Ａ２］～［Ａ６］および［Ａ１５］の何れか１に記載の方法。
　［Ａ１７］　前記原料細胞が線維芽細胞であり、前記目的細胞が心筋細胞である［Ａ２］、［Ａ３］および［Ａ５］の何れか１に記載の方法。
　［Ａ１８］　前記原料細胞がヒト線維芽細胞であり、前記目的細胞がヒト心筋細胞である［Ａ２］～［Ａ６］および［Ａ１７］の何れか１に記載の方法。
　［Ｂ１］　前記培養因子が、少なくとも一つの増殖因子であり、前記目的細胞が増殖細胞である［Ａ１］に記載の方法。
　［Ｂ２］　前記原料細胞および前記目的細胞が、ｉＰＳ細胞および間葉系幹細胞からなる群より選択される［Ｂ１］に記載の方法。
　［Ｂ３］　前記原料細胞および前記目的細胞が、ヒトｉＰＳ細胞およびヒト間葉系幹細胞からなる群より選択される［Ｂ１］または［Ｂ２］に記載の方法。
　［Ｂ４］　前記原料細胞および前記目的細胞が、ｉＰＳ細胞である［Ｂ１］または［Ｂ２］に記載の方法。
　［Ｂ５］　前記原料細胞および前記目的細胞が、ヒトｉＰＳ細胞である［Ｂ１］～［Ｂ４］の何れか１に記載の方法。
　［Ｂ６］　前記原料細胞および前記目的細胞が、間葉系幹細胞である［Ｂ１］または［Ｂ２］に記載の方法。
　［Ｂ７］　前記原料細胞および前記目的細胞が、ヒト間葉系幹細胞である［Ｂ１］～［Ｂ３］および［Ｂ６］の何れか１に記載の方法。
　［Ｂ８］　前記原料細胞および前記目的細胞が、巨核球前駆細胞である［Ｂ１］に記載の方法。
　［Ｂ９］　前記原料細胞および前記目的細胞が、ヒト巨核球前駆細胞である［Ｂ１］または［Ｂ８］に記載の方法。
　［Ｂ１０］　前記原料細胞および前記目的細胞が、心筋細胞である［Ｂ１］に記載の方法。
　［Ｂ１１］　前記原料細胞および前記目的細胞が、ヒト心筋細胞である［Ｂ１］または［Ｂ１０］に記載の方法。
　［Ｃ１］　前記添加物が、Ｓｒｃ阻害剤、好ましくはＡ４１９２５９である［Ａ１］～［Ａ１８］および［Ｂ１］～［Ｂ１１］の何れか１に記載の方法。
　［Ｃ２］　前記添加物が、ＰＫＣ活性化剤、好ましくはプロストラチンである［Ａ１］～［Ａ１８］および［Ｂ１］～［Ｂ１１］の何れか１に記載の方法。
　［Ｃ３］　前記添加物が、メチルセルロースである［Ａ１］～［Ａ１８］および［Ｂ１］～［Ｂ１１］の何れか１に記載の方法。
　［Ｃ４］　前記添加物が、Essential 8培地である［Ａ１］～［Ａ１８］および［Ｂ１］～［Ｂ１１］の何れか１に記載の方法。
　［Ｃ５］　前記添加物が、組換えヒト血清アルブミンまたはヒト以外の動物血清アルブミンである［Ａ１］～［Ａ１８］および［Ｂ１］～［Ｂ１１］の何れか１に記載の方法。
　［Ｃ６］　前記添加物が、組換えヒト血清アルブミン、好ましくは、イネで発現させた組換えヒト血清アルブミンまたは酵母で発現させた組換えヒト血清アルブミンである［Ａ１］～［Ａ１８］、［Ｂ１］～［Ｂ１１］および［Ｃ５］の何れか１に記載の方法。
　［Ｃ７］　前記添加物が、ヒト以外の動物血清アルブミン、好ましくは、ウシ血清アルブミンである［Ａ１］～［Ａ１８］、［Ｂ１］～［Ｂ１１］および［Ｃ５］の何れか１に記載の方法。
　［Ｃ８］　前記無血清培地中のヒト血清アルブミンの濃度（最終濃度）が、０．０１～２．０質量％、好ましくは０．０５～１．５質量％、より好ましくは０．０７５～０．７５質量％である［Ａ１］～［Ａ１８］、［Ｂ１］～［Ｂ１１］および［Ｃ１］～［Ｃ７］の何れか１に記載の方法。
　［Ｃ９］　前記添加物が、Ｓｒｃ阻害剤、好ましくはＡ４１９２５９であり、前記無血清培地中のＳｒｃ阻害剤の濃度（最終濃度）が、０．００１～１０μＭ、好ましくは０．０１～１．０μＭ、より好ましくは０．０３～０．２μＭである［Ａ１］～［Ａ１８］、［Ｂ１］～［Ｂ１１］、［Ｃ１］および［Ｃ８］の何れか１に記載の方法。
　［Ｃ１０］　前記添加物が、ＰＫＣ活性化剤、好ましくはプロストラチンであり、前記無血清培地中のＰＫＣ活性化剤の濃度（最終濃度）が、０．００１～１０μＭ、好ましくは０．０１～１．０μＭ、より好ましくは０．０１５～０．２μＭである［Ａ１］～［Ａ１８］、［Ｂ１］～［Ｂ１１］、［Ｃ２］および［Ｃ８］の何れか１に記載の方法。
　［Ｃ１１］　前記添加物が、メチルセルロースであり、前記無血清培地中のメチルセルロースの濃度（最終濃度）が、０．００１～３．０質量％、好ましくは０．０１～１．０質量％、より好ましくは０．０１８～０．３質量％である［Ａ１］～［Ａ１８］、［Ｂ１］～［Ｂ１１］、［Ｃ３］および［Ｃ８］の何れか１に記載の方法。
　［Ｃ１２］　前記添加物が、Essential 8培地であり、前記無血清培地中のEssential 8培地の濃度（最終濃度）が、０．５～１００質量％、好ましくは０．５～５０質量％、より好ましくは０．６２５～３０質量％である［Ａ１］～［Ａ１８］、［Ｂ１］～［Ｂ１１］、［Ｃ４］および［Ｃ８］の何れか１に記載の方法。
　［Ｃ１３］　前記添加物が、組換えヒト血清アルブミンであり、前記無血清培地中の組換えヒト血清アルブミンの濃度（最終濃度）が、０．００１～１．０質量％、好ましくは０．０１～０．５質量％、より好ましくは０．０１５～０．３質量％である［Ａ１］～［Ａ１８］、［Ｂ１］～［Ｂ１１］、［Ｃ５］、［Ｃ６］および［Ｃ８］の何れか１に記載の方法。
　［Ｃ１４］　前記添加物が、ヒト以外の動物血清アルブミンであり、前記無血清培地中のヒト以外の動物血清アルブミンの濃度（最終濃度）が、０．０１～２．０質量％、好ましくは０．０５～１．５質量％、より好ましくは０．１２５～０．７５質量％である［Ａ１］～［Ａ１８］、［Ｂ１］～［Ｂ１１］、［Ｃ５］、［Ｃ７］および［Ｃ８］の何れか１に記載の方法。
　［Ｄ１］　［Ａ１］～［Ａ１８］、［Ｂ１］～［Ｂ１１］および［Ｃ１］～［Ｃ１４］の何れか１に記載の方法に従って原料細胞を培養して、目的細胞を生産するとともに目的細胞に生産物を生産させることを含む、目的細胞による生産物の生産方法。
　［Ｄ２］　前記原料細胞が巨核球前駆細胞であり、前記目的細胞が巨核球であり、前記生産物が血小板である［Ｄ１］に記載の方法。
　［Ｄ３］　前記原料細胞がヒト巨核球前駆細胞であり、前記目的細胞がヒト巨核球であり、前記生産物がヒト血小板である［Ｄ１］または［Ｄ２］に記載の方法。
　［Ｄ４］　前記原料細胞および前記目的細胞がｉＰＳ細胞であり、前記生産物がサイトカインである［Ｄ１］に記載の方法。
　［Ｄ５］　前記原料細胞および前記目的細胞がヒトｉＰＳ細胞であり、前記生産物がヒトサイトカインである［Ｄ１］または［Ｄ４］に記載の方法。
　［Ｄ６］　前記原料細胞および前記目的細胞が間葉系幹細胞であり、前記生産物がサイトカインである［Ｄ１］に記載の方法。
　［Ｄ７］　前記原料細胞および前記目的細胞がヒト間葉系幹細胞であり、前記生産物がヒトサイトカインである［Ｄ１］または［Ｄ６］に記載の方法。
　［Ｅ１］　増殖因子および分化誘導因子から選択される少なくとも１つの培養因子と、
　ヒト血清アルブミンと、
　Ｓｒｃ阻害剤、ＰＫＣ活性化剤、メチルセルロース、Essential 8培地、組換えヒト血清アルブミン、およびヒト以外の動物血清アルブミンからなる群より選択される少なくとも１つの添加物と
を含む、目的細胞の生産において使用するための無血清培地。
　［Ｅ２］　前記目的細胞が巨核球であり、前記培養因子が巨核球分化誘導因子である［Ｅ１］に記載の無血清培地。
　［Ｅ３］　前記目的細胞がヒト巨核球であり、前記培養因子が巨核球分化誘導因子である［Ｅ１］または［Ｅ２］に記載の無血清培地。
　［Ｅ４］　増殖因子および分化誘導因子から選択される少なくとも１つの培養因子と、
　ヒト血清アルブミンと、
　Ｓｒｃ阻害剤、ＰＫＣ活性化剤、メチルセルロース、Essential 8培地、組換えヒト血清アルブミン、およびヒト以外の動物血清アルブミンからなる群より選択される少なくとも１つの添加物と
を含む、目的細胞による生産物の生産において使用するための無血清培地。
　［Ｅ５］　前記目的細胞による前記生産物の生産が、巨核球による血小板の生産であり、前記培養因子が巨核球分化誘導因子である［Ｅ４］に記載の無血清培地。
　［Ｅ６］　前記目的細胞による前記生産物の生産が、ヒト巨核球によるヒト血小板の生産であり、前記培養因子が巨核球分化誘導因子である［Ｅ４］または［Ｅ５］に記載の無血清培地。
　［Ｅ７］　前記添加物が、Ｓｒｃ阻害剤、好ましくはＡ４１９２５９である［Ｅ１］～［Ｅ６］の何れか１に記載の無血清培地。
　［Ｅ８］　前記添加物が、ＰＫＣ活性化剤、好ましくはプロストラチンである［Ｅ１］～［Ｅ６］の何れか１に記載の無血清培地。
　［Ｅ９］　前記添加物が、メチルセルロースである［Ｅ１］～［Ｅ６］の何れか１に記載の無血清培地。
　［Ｅ１０］　前記添加物が、Essential 8培地である［Ｅ１］～［Ｅ６］の何れか１に記載の無血清培地。
　［Ｅ１１］　前記添加物が、組換えヒト血清アルブミンまたはヒト以外の動物血清アルブミンである［Ｅ１］～［Ｅ６］の何れか１に記載の無血清培地。
　［Ｅ１２］　前記添加物が、組換えヒト血清アルブミン、好ましくは、イネで発現させた組換えヒト血清アルブミンまたは酵母で発現させた組換えヒト血清アルブミンである［Ｅ１］～［Ｅ６］および［Ｅ１１］の何れか１に記載の無血清培地。
　［Ｅ１３］　前記添加物が、ヒト以外の動物血清アルブミン、好ましくは、ウシ血清アルブミンである［Ｅ１］～［Ｅ６］および［Ｅ１１］の何れか１に記載の無血清培地。
　［Ｅ１４］　前記無血清培地中のヒト血清アルブミンの濃度（最終濃度）が、０．０１～２．０質量％、好ましくは０．０５～１．５質量％、より好ましくは０．０７５～０．７５質量％である［Ｅ１］～［Ｅ１３］の何れか１に記載の無血清培地。
　［Ｅ１５］　前記添加物が、Ｓｒｃ阻害剤、好ましくはＡ４１９２５９であり、前記無血清培地中のＳｒｃ阻害剤の濃度（最終濃度）が、０．００１～１０μＭ、好ましくは０．０１～１．０μＭ、より好ましくは０．０３～０．２μＭである［Ｅ１］～［Ｅ７］および［Ｅ１４］の何れか１に記載の無血清培地。
　［Ｅ１６］　前記添加物が、ＰＫＣ活性化剤、好ましくはプロストラチンであり、前記無血清培地中のＰＫＣ活性化剤の濃度（最終濃度）が、０．００１～１０μＭ、好ましくは０．０１～１．０μＭ、より好ましくは０．０１５～０．２μＭである［Ｅ１］～［Ｅ６］、［Ｅ８］および［Ｅ１４］の何れか１に記載の無血清培地。
　［Ｅ１７］　前記添加物が、メチルセルロースであり、前記無血清培地中のメチルセルロースの濃度（最終濃度）が、０．００１～３．０質量％、好ましくは０．０１～１．０質量％、より好ましくは０．０１８～０．３質量％である［Ｅ１］～［Ｅ６］、［Ｅ９］および［Ｅ１４］の何れか１に記載の無血清培地。
　［Ｅ１８］　前記添加物が、Essential 8培地であり、前記無血清培地中のEssential 8培地の濃度（最終濃度）が、０．５～１００質量％、好ましくは０．５～５０質量％、より好ましくは０．６２５～３０質量％である［Ｅ１］～［Ｅ６］、［Ｅ１０］および［Ｅ１４］の何れか１に記載の無血清培地。
　［Ｅ１９］　前記添加物が、組換えヒト血清アルブミンであり、前記無血清培地中の組換えヒト血清アルブミンの濃度（最終濃度）が、０．００１～１．０質量％、好ましくは０．０１～０．５質量％、より好ましくは０．０１５～０．３質量％である［Ｅ１］～［Ｅ６］、［Ｅ１１］、［Ｅ１２］および［Ｅ１４］の何れか１に記載の無血清培地。
　［Ｅ２０］　前記添加物が、ヒト以外の動物血清アルブミンであり、前記無血清培地中のヒト以外の動物血清アルブミンの濃度（最終濃度）が、０．０１～２．０質量％、好ましくは０．０５～１．５質量％、より好ましくは０．１２５～０．７５質量％である［Ｅ１］～［Ｅ６］、［Ｅ１１］、［Ｅ１３］および［Ｅ１４］の何れか１に記載の無血清培地。
　［実施例１］　巨核球前駆細胞から巨核球への分化培養
　（１）方法
　実施例１では、ヒトiPS細胞由来巨核球前駆細胞から巨核球への分化培養を行った。分化培養は、論文２（Ito et al., 2018, Cell 174, 636-648）に記載された方法を用いて行った。
　IMDM（Iscove’s Modified Dulbecco’s Medium）(Sigma-Aldrich, #I3390）に、10U ヘパリンナトリウム（Yoshindo Inc., #(01)14987476163428）、50ng/ml SCF（Stem Cell Factor）（Wako, #193-15513）、200ng/ml TA-316（Nissan Chemical）、15μM KP-457（Kaken Pharmaceutical）、0.5μM GNF-351（Calbiochem）、0.5μM Y-39983（MedChemExpress）を加えた（濃度は最終濃度である）。得られた培地に、ヒト血漿（HP）（Cosmo Bio）を5質量％になるように添加して、ポジティブコントロール培地を調製し、ヒト血漿を加えなかった培地をネガティブコントロール（NC）培地とした。
　また、ヒト血漿の代わりに種々の血清代替物を添加して、培地を調製した。血清代替物として、ヒト血清アルブミン（HSA）（Sigma-Aldrich）、ライス由来ヒト組換えアルブミン（R）（Sigma-Aldrich）、酵母由来ヒト組換えアルブミン（Y）（Wako）、ウシ血清アルブミン（BSA）（Sigma-Aldrich）、Essential 8培地（E）（Invitrogen）、A419259化合物（A）（Wako）、プロストラチン（P）（Wako）、メチルセルロース（M）（R&D Systems）、またはこれらの組み合わせを使用した。
　これらの培地を用いて、巨核球の分化培養を行った。具体的には、ヒトiPS細胞由来巨核球前駆細胞を、96ウェルプレート（Corning）で、1ウェルあたり100μlの培地容量で、各条件2ウェルずつ、7日間培養した。
　分化培養後、細胞を、共焦点定量イメージサイトメーターCQ1（Yokogawa Electric Corporation）を用いて解析した。核染色試薬DRAQ5 TM（Cosmo Bio）で細胞核を染色し、細胞核の大きさが20μｍ以上の細胞（すなわち、巨核球）の数を各ウェルで数えた。
　（２）結果
　結果を図１、２、３、４Ａ～４Ｅに示す。図１～３は、各培地で分化した巨核球の数を示すグラフである。図４Ａ～４Ｅは、核染色試薬（DRAQ5）で染色された巨核球を示す写真である。
　（図１）
　図１は、左から順に、以下の培地を使用した場合の結果を示す。　
　ネガティブコントロール：NC培地
　ポジティブコントロール：5質量％のヒト血漿（HP）を含む培地
　例１Ａ：0.25質量％のヒト血清アルブミン（HSA）を含む培地
　例１Ｂ：0.75質量％のヒト血清アルブミン（HSA）を含む培地
　例１Ｃ：0.25質量％のウシ血清アルブミン（BSA）を含む培地
　例１Ｄ：0.75質量％のウシ血清アルブミン（BSA）を含む培地
　例１Ｅ：0.03質量％のライス由来ヒト組換えアルブミン（R）を含む培地
　例１Ｆ：0.1質量％のライス由来ヒト組換えアルブミン（R）を含む培地
　例１Ｇ：0.25μMのA419259化合物（A）を含む培地
　例１Ｈ：0.75μMのA419259化合物（A）を含む培地
　例１Ｉ：0.03μMのプロストラチン（P）を含む培地
　例１Ｊ：0.1μMのプロストラチン（P）を含む培地
　例１Ｋ：3質量％の３％メチルセルロース溶液（M）を含む培地（すなわち、0.09質量％のメチルセルロースを含む培地）
　例１Ｌ：10質量％の３％メチルセルロース溶液（M）を含む培地（すなわち、0.3質量％のメチルセルロースを含む培地）
　例１Ｍ：10質量％のEssential 8培地（E）を含む培地
　例１Ｎ：30質量％のEssential 8培地（E）を含む培地
　例１Ａ～１Ｎでは、血清代替物として、HSA、BSA、R、A、P、M、Eをそれぞれ単独で添加した。例１Ａ～１Ｎの全てにおいて、ネガティブコントロール（NC）に対して巨核球数が増加したが、ポジティブコントロール（HP5%）に比べると巨核球数は少ない傾向にあった。
　（図２）
　図２は、左から順に、以下の培地を使用した場合の結果を示す。　
　ネガティブコントロール：NC培地
　ポジティブコントロール１：0.5質量％のヒト血漿（HP）を含む培地
　ポジティブコントロール２：5質量％のヒト血漿（HP）を含む培地
　例２Ａ：0.125質量％のヒト血清アルブミン（HSA）を含む培地
　例２Ｂ：0.125質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.03質量％のライス由来ヒト組換えアルブミン（R）とを含む培地
　例２Ｃ：0.125質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.125質量％の酵母由来ヒト組換えアルブミン（Y）とを含む培地
　例２Ｄ：0.125質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.125質量％のウシ血清アルブミン（BSA）とを含む培地
　例２Ｅ：0.125質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.06μMのA419259化合物（A）とを含む培地
　例２Ｆ：0.125質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.03μMのプロストラチン（P）とを含む培地
　例２Ｇ：0.125質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と1.25質量％の３％メチルセルロース溶液（M）（すなわち、0.0375質量％のメチルセルロース）とを含む培地
　例２Ｈ：0.125質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と1.25質量％のEssential 8培地（E）とを含む培地
　例２Ａでは、血清代替物として、0.125質量％のHSAを単独で添加し、例２Ｂ～２Ｈでは、血清代替物として、0.125質量％のHSAと各添加物（R、Y、BSA、A、P、M、およびEの何れか）とを組み合わせて添加した。例２Ｂ～２Ｈでは、HSA単独の場合（例２Ａ）よりも巨核球数が増える傾向にあり、ポジティブコントロール２（HP5%）と同等の巨核球数が得られた。
　（図３）
　図３は、左から順に、以下の培地を使用した場合の結果を示す。　
　ネガティブコントロール：NC培地
　ポジティブコントロール１：0.5質量％のヒト血漿（HP）を含む培地
　ポジティブコントロール２：5質量％のヒト血漿（HP）を含む培地
　例３Ａ：0.25質量％のヒト血清アルブミン（HSA）を含む培地
　例３Ｂ：0.25質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.03質量％のライス由来ヒト組換えアルブミン（R）とを含む培地
　例３Ｃ：0.25質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.125質量％の酵母由来ヒト組換えアルブミン（Y）とを含む培地
　例３Ｄ：0.25質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.125質量％のウシ血清アルブミン（BSA）とを含む培地
　例３Ｅ：0.25質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.06μMのA419259化合物（A）とを含む培地
　例３Ｆ：0.25質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.03μMのプロストラチン（P）とを含む培地
　例３Ｇ：0.25質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と1.25質量％の３％メチルセルロース溶液（M）（すなわち、0.0375質量％のメチルセルロース）とを含む培地
　例３Ｈ：0.25質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と1.25質量％のEssential 8培地（E）とを含む培地
　例３Ａでは、血清代替物として、0.25質量％のHSAを単独で添加し、例３Ｂ～３Ｈでは、血清代替物として、0.25質量％のHSAと各添加物（R、Y、BSA、A、P、M、およびEの何れか）とを組み合わせて添加した。例３Ｂ～３Ｈでは、HSA単独の場合（例３Ａ）よりも巨核球数が増える傾向にあり、ポジティブコントロール２（HP5%）と同等の巨核球数が得られた。
　（図４Ａ～４Ｅ）
　図４Ａ～４Ｅは、それぞれ、ネガティブコントロール、ポジティブコントロール２、例２Ａ、例２Ｂ、および例２ＥのDRAQ5染色画像を示す。
　DRAQ5で染色される大きな細胞核を持つ巨核球が、ネガティブコントロールや例２Ａ（HSA0.125%）と比較して、例２Ｂ（HSA0.125%＋R0.03%）および例２Ｅ（HSA0.125%＋A0.06μM）で増加しており、これは、ポジティブコントロール２（HP5%）に近い細胞数となっている。
　（３）考察
　図１、２、３、４Ａ～４Ｅの結果から、血清代替物として、ヒト血清アルブミンと特定の添加物との組み合わせを用いて巨核球前駆細胞を分化培養すると、ヒト血漿を使用した場合と同様の分化効率で、巨核球を生産できることが示された。血清代替物は、血液成分を必要としないため、巨核球の生産コストを削減することができるとともに、巨核球のロット安定性を向上させることができる。
　加えて、本発明者らは、下記の培地を使用した場合も、ヒト血漿を使用した場合と同様の分化効率で、巨核球を生産できることを実証している。
　0.5質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.015質量％のライス由来ヒト組換えアルブミン（R）とを含む培地
　0.5質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.03μMのA419259化合物（A）とを含む培地
　0.5質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.015μMのプロストラチン（P）とを含む培地
　0.5質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.625質量％の３％メチルセルロース溶液（M）（すなわち、0.01875質量％のメチルセルロース）とを含む培地
　0.5質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.625質量％のEssential 8培地（E）とを含む培地
　0.125質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.015質量％のライス由来ヒト組換えアルブミン（R）とを含む培地
　0.125質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.03μMのA419259化合物（A）とを含む培地
　0.125質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.015μMのプロストラチン（P）とを含む培地
　0.125質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.625質量％の３％メチルセルロース溶液（M）（すなわち、0.01875質量％のメチルセルロース）とを含む培地
　0.125質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.625質量％のEssential 8培地（E）とを含む培地
　［実施例２］　巨核球による血小板の生産
　（１）方法
　実施例１で巨核球分化に効果のあった、ヒト血清アルブミン（HSA）とライス由来ヒト組換えアルブミン（R）の組み合わせおよびHSAとA419259化合物（A）の組み合わせを用いて、実施例１と同様の方法で、25mlスケールでフラスコ振とう培養を行い、これにより巨核球由来の血小板を生産した。
　培養後、FACS（蛍光活性化セルソーティング）により血小板マーカーの発現を解析した。FACS解析は、フローサイトメーター（Sony SA3800）を使用して行った。
　具体的には、血小板を解析するため、CD41抗体染色およびCD42b抗体染色を行い、血小板におけるCD41陽性細胞率およびCD42b陽性細胞率を解析した。また、血小板の凝集機能を調べるため、0.2μM PMA（ホルボール12-ミリステート13-アセテート）を添加することによるPAC1陽性細胞率の上昇、および100μM ADP（アデノシン二リン酸）を添加することによるPAC1陽性細胞率の上昇を解析した。
　（２）結果
　結果を図５および６に示す。
　（図５）
　図５にCD41およびCD42bの陽性細胞率を示す。図５は、左から順に、以下の培地を使用した場合の結果を示す。　
　例５Ａ：5質量％のヒト血漿（HP）を含む培地
　例５Ｂ：0.25質量％のヒト血清アルブミン（HSA）を含む培地
　例５Ｃ：0.25質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.05質量％のライス由来ヒト組換えアルブミン（R）とを含む培地
　例５Ｄ：0.25質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.05μMのA419259化合物（A）とを含む培地
　例５Ｂ（HSA0.25%）と比較して、例５Ｃ（HSA0.25%＋R0.05％）および例５Ｄ（HSA0.25%＋A0.05μM）で、CD41陽性細胞率およびCD42b陽性細胞率が上昇し、ポジティブコントロールである例５Ａ（HP5%）と同等のCD41陽性細胞率およびCD42b陽性細胞率が得られた。
　（図６）
　図６にPMA処理後のPAC1陽性細胞率およびADP処理後のPAC1陽性細胞率を示す。図６は、左から順に、以下の培地を使用した場合の結果を示す。　
　例６Ａ：5質量％のヒト血漿（HP）を含む培地
　例６Ｂ：0.25質量％のヒト血清アルブミン（HSA）を含む培地
　例６Ｃ：0.25質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.05質量％のライス由来ヒト組換えアルブミン（R）とを含む培地
　例６Ｄ：0.25質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.05μMのA419259化合物（A）とを含む培地
　図６において、「Pre_PAC1」は、PMAやADPで処理する前のPAC1陽性細胞率を示し、「PMA_PAC1」は、PMA処理後のPAC1陽性細胞率を示し、「ADP_PAC1」は、ADP処理後のPAC1陽性細胞率を示す。
　例６Ｂ（HSA0.25%）と比較して、例６Ｃ（HSA0.25%＋R0.05％）および例６Ｄ（HSA0.25%＋A0.05μM）で、PMA処理後のPAC１陽性細胞率およびADP処理後のPAC１陽性細胞率が上昇し、ポジティブコントロールである例６Ａ（HP5%）と同等のPAC１陽性細胞率が得られた。
　（３）考察
　図５および図６の結果から、実施例１で巨核球分化に効果のあった血清代替物（ヒト血清アルブミンと特定の添加物の組み合わせ）を用いて巨核球前駆細胞を培養すると、ヒト血漿を使用した場合と同様、機能的な血小板を生産できることが示された。血清代替物は、血液成分を必要としないため、血小板の生産コストを削減することができるとともに、血小板のロット安定性を向上させることができる。
　［実施例３］　iPS細胞の増殖培養および間葉系幹細胞の増殖培養
　（１）方法
　実施例１で巨核球分化に効果のあった、ヒト血清アルブミン（HSA）と組換えヒト血清アルブミンの組み合わせおよびHSAとプロストラチンの組み合わせについて、iPS細胞の増殖能を調べた。また、実施例１で巨核球分化に効果のあった、ヒト血清アルブミン（HSA）と組換えヒト血清アルブミンの組み合わせおよびHSAとA419259化合物の組み合わせについて、間葉系幹細胞の増殖能を調べた。
　（ｉＰＳ細胞）
　iPS細胞については、iPS細胞（253G1株）を、iMatrix-511（0.1μg/well）（ニッピ株式会社）でコーティングした96ウェルプレート（Corning）に、1.0x10e4/wellで、各条件6ウェルずつ播種し、下記の培地で5日間培養した。
　コントロール：DMEM/F12培地（Sigma-Aldrich）
　例７Ａ（HSA0.125）：0.125質量％のヒト血清アルブミン（HSA）を含むDMEM/F12培地
　例７Ｂ（HSA0.1＋R0.025）：0.1質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.025質量％のライス由来ヒト組換えアルブミン（R）とを含むDMEM/F12培地
　例７Ｃ（HSA0.075＋Y0.05）：0.075質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.05質量％の酵母由来ヒト組換えアルブミン（Y）とを含むDMEM/F12培地
　例７Ｄ（HSA0.125＋P0.05）：0.125質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.05μMのプロストラチン（P）とを含むDMEM/F12培地
　例７Ｅ（R0.025）：0.025質量％のライス由来ヒト組換えアルブミン（R）を含むDMEM/F12培地
　例７Ｆ（Y0.05）：0.05質量％の酵母由来ヒト組換えアルブミン（Y）を含むDMEM/F12培地
　例７Ｇ（P0.05）：0.05μMのプロストラチン（P）を含むDMEM/F12培地
　培養後、細胞数は、DAPI核染色蛍光を共焦点定量イメージサイトメーターCQ1（Yokogawa Electric Corporation）で解析することにより測定した。
　（間葉系幹細胞）
　間葉系幹細胞については、骨髄由来間葉系幹細胞（JCRB1154株）を、96ウェルプレート（Corning）に、1.0x10e4/wellで、各条件6ウェルずつ播種し、下記の培地で5日間培養した。
　コントロール：DMEM/F12培地（Sigma-Aldrich）
　例８Ａ（HSA0.125）：0.125質量％のヒト血清アルブミン（HSA）を含むDMEM/F12培地
　例８Ｂ（HSA0.1＋R0.025）：0.1質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.025質量％のライス由来ヒト組換えアルブミン（R）とを含むDMEM/F12培地
　例８Ｃ（HSA0.075＋Y0.05）：0.075質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.05質量％の酵母由来ヒト組換えアルブミン（Y）とを含むDMEM/F12培地
　例８Ｄ（HSA0.125＋A0.05）：0.125質量％のヒト血清アルブミン（HSA）と0.05μMのA419259化合物（A）とを含むDMEM/F12培地
　例８Ｅ（R0.025）：0.025質量％のライス由来ヒト組換えアルブミン（R）を含むDMEM/F12培地
　例８Ｆ（Y0.05）：0.05質量％の酵母由来ヒト組換えアルブミン（Y）を含むDMEM/F12培地
　例８Ｇ（A0.05）：0.05μMのA419259化合物（A）を含むDMEM/F12培地
　培養後、細胞数は、DAPI核染色蛍光を共焦点定量イメージサイトメーターCQ1（Yokogawa Electric Corporation）で解析することにより測定した。
　（２）結果
　図７に、各条件で培養後のiPS細胞数を示す。コントロールや例７Ａ（HSA単独）に比べて、例７Ｂおよび７Ｃ（HSAと組換えヒト血清アルブミンの組み合わせ）、および例７Ｄ（HSAとプロストラチンの組み合わせ）は、iPS細胞数の有意な増加が見られた。一方、例７Ｅおよび例７Ｆ（組換えヒト血清アルブミン単独）および例７Ｇ（プロストラチン単独）は、iPS細胞数の有意な増加が見られなかった。
　図８に、各条件で培養後のMSC細胞数を示す。コントロールや例８Ａ（HSA単独）に比べて、例８Ｂおよび８Ｃ（HSAと組換えヒト血清アルブミンの組み合わせ、および例８Ｄ（HSAとA419259の組み合わせ）は、MSC細胞数の有意な増加が見られた。一方、例８Ｅおよび例８Ｆ（組換えヒト血清アルブミン単独）および例８Ｇ（A419259単独）は、MSC細胞数の有意な増加が見られなかった。
　（３）考察
　図７および図８の結果から、実施例１で巨核球分化に効果のあった血清代替物（ヒト血清アルブミンと特定の添加物の組み合わせ）を用いてiPS細胞の増殖培養および間葉系幹細胞の増殖培養を行うと、相乗効果により高い増殖効率が得られることが示された。血清代替物は、血液成分を必要としないため、増殖培養による細胞の生産コストを削減することができるとともに、増殖細胞のロット安定性を向上させることができる。

Claims (18)

  1. 　増殖因子および分化誘導因子から選択される少なくとも１つの培養因子と、
    　ヒト血清アルブミンと、
    　Ｓｒｃ阻害剤、ＰＫＣ活性化剤、メチルセルロース、Essential 8培地、組換えヒト血清アルブミン、およびヒト以外の動物血清アルブミンからなる群より選択される少なくとも１つの添加物と
    を含む無血清培地で原料細胞を培養して目的細胞を生産することを含む、目的細胞の生産方法。
  2. 　前記培養因子が、少なくとも一つの分化誘導因子であり、前記目的細胞が分化細胞である請求項１に記載の方法。
  3. 　前記原料細胞が、巨核球前駆細胞、ｉＰＳ細胞、間葉系幹細胞、および線維芽細胞からなる群より選択される請求項２に記載の方法。
  4. 　前記目的細胞が、巨核球、間葉系幹細胞、線維芽細胞、および心筋細胞からなる群より選択される請求項２または３に記載の方法。
  5. 　前記原料細胞が巨核球前駆細胞であり、前記目的細胞が巨核球である請求項２～４の何れか１項に記載の方法。
  6. 　前記培養因子が、少なくとも一つの増殖因子であり、前記目的細胞が増殖細胞である請求項１に記載の方法。
  7. 　前記原料細胞および前記目的細胞が、ｉＰＳ細胞および間葉系幹細胞からなる群より選択される請求項６に記載の方法。
  8. 　前記添加物が、Ａ４１９２５９である請求項１～７の何れか１項に記載の方法。
  9. 　前記添加物が、プロストラチンである請求項１～７の何れか１項に記載の方法。
  10. 　前記添加物が、メチルセルロースである請求項１～７の何れか１項に記載の方法。
  11. 　前記添加物が、Essential 8培地である請求項１～７の何れか１項に記載の方法。
  12. 　前記添加物が、組換えヒト血清アルブミンまたはヒト以外の動物血清アルブミンである請求項１～７の何れか１項に記載の方法。
  13. 　請求項１～１２の何れか１項に記載の方法に従って原料細胞を培養して、目的細胞を生産するとともに目的細胞に生産物を生産させることを含む、目的細胞による生産物の生産方法。
  14. 　前記原料細胞が巨核球前駆細胞であり、前記目的細胞が巨核球であり、前記生産物が血小板である請求項１３に記載の方法。
  15. 　増殖因子および分化誘導因子から選択される少なくとも１つの培養因子と、
    　ヒト血清アルブミンと、
    　Ｓｒｃ阻害剤、ＰＫＣ活性化剤、メチルセルロース、Essential 8培地、組換えヒト血清アルブミン、およびヒト以外の動物血清アルブミンからなる群より選択される少なくとも１つの添加物と
    を含む、目的細胞の生産において使用するための無血清培地。
  16. 　前記目的細胞が巨核球であり、前記培養因子が巨核球分化誘導因子である請求項１５に記載の無血清培地。
  17. 　増殖因子および分化誘導因子から選択される少なくとも１つの培養因子と、
    　ヒト血清アルブミンと、
    　Ｓｒｃ阻害剤、ＰＫＣ活性化剤、メチルセルロース、Essential 8培地、組換えヒト血清アルブミン、およびヒト以外の動物血清アルブミンからなる群より選択される少なくとも１つの添加物と
    を含む、目的細胞による生産物の生産において使用するための無血清培地。
  18. 　前記目的細胞による前記生産物の生産が、巨核球による血小板の生産であり、前記培養因子が巨核球分化誘導因子である請求項１７に記載の無血清培地。
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