WO2020179435A1 - 希釈用菌体分散液及びその製造方法 - Google Patents

希釈用菌体分散液及びその製造方法 Download PDF

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大司 風見
愼市 池田
和巳 河野
牛澤　幸司
橋本　俊郎
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大司 風見
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Definitions

  • the present invention relates to a diluted bacterial cell dispersion and a method for producing the same, particularly a diluted bacterial cell dispersion that suppresses separation and sedimentation of bacterial cells in the diluted dispersion and a method for producing the same.
  • Patent Documents 1 and 2 there is a technique of blending with a polysaccharide or the like to suppress sedimentation by thickening / gelling (Patent Documents 1 and 2), but when dilutely added to drinking water, a concentrated bacterial cell dispersion is used. It must be added to a large amount of drinking water and dispersed again, and the redispersion state in drinking water must be maintained for a long time. For this reason, it is conceivable to constantly stir the drinking water to which the bacterial cells have been added, or to add it at the time of use. However, a stirrer, a pump for transporting the diluted bacterial cells to the water inlet, etc. are required, and the drinking water pipe extending over several tens of meters is required. Management is costly and impractical.
  • the present invention has been made in view of the above-mentioned problems of the prior art, and an object of the present invention is to provide a diluting bacterial cell dispersion having an extended floating time in water of bacterial cells added / dispersed in drinking water, and a method for producing the same. There is.
  • the diluted bacterial cell dispersion according to the present invention is an aqueous gel or an aqueous gel or thickening-forming coated bacterial cells in which a thickening-forming polysaccharide is coated around the bacterial cells, and the gel or the thickening-forming bacterial cells.
  • the aqueous gel of the dispersion or the thickening polysaccharide is agar, starch, processed starch, xanthan gum, pectin, guar gum, carrageenan, alginic acid, gellan gum, curdlan, pullulan, glucomannan, locust bean gum, tamarind gum. , CMC, cellulose nanofibers, etc. are preferred.
  • the bacterial cells are preferably lactic acid bacteria, bifidobacteria, Bacillus subtilis, butyrate-producing bacteria, yeast and the like, and may be live or dead.
  • the method for producing a diluting cell dispersion is to put the aggregated killed cell or the heat-resistant cell (heat-resistant blast) in an aqueous medium.
  • the method for producing a diluted bacterial cell dispersion solution when using viable cells is a primary crushing step of crushing the aggregated viable cells into individual cells by mechanical crushing force in an aqueous medium.
  • the aqueous gel dissolution temperature is 90 ° C. or higher and the aqueous gel formation temperature is 30 ° C. or lower. ..
  • lactic acid bacteria, bifidobacteria, Bacillus subtilis, butyric acid bacteria, yeasts and the like are preferable as the bacterial cells, and live cells and dead cells may be used.
  • the concentration of cells in the cell suspension for dilution is preferably 0.01 to 1.0% by mass, and the cell suspension for dilution is prepared by diluting cells with an aqueous medium 100 to 1,000,000 times. Drinking water having a body concentration of 0.01 to 10.0 ppm may be further sprayed on feed or the like.
  • the aqueous gel or thickening polysaccharides include agar, starch, processed starch, xanthan gum, pectin, guar gum, carrageenan, alginic acid, gellan gum, curdlan, purulan, glucomannan, locust bean gum, and tamarind gum.
  • CMC, cellulose nanofibers, and other polysaccharides that form an aqueous gel or thicken by heating, dissolving, and cooling are preferable, and agar is particularly preferable because the difference between the aqueous gel melting temperature and the aqueous gel forming temperature is large.
  • the concentration of the thickening polysaccharide in the aqueous gel or the diluting bacterial cell dispersion is 0.01 to 1% by mass, preferably 0.05 to 0.5% by mass.
  • the gelation concentration of the entire aqueous medium by the agar is about 1% by mass or more, but in the present invention, it is not necessary to gel the entire aqueous medium, and 0.05 to 0.5% by mass. Even so, an aqueous gel can be coated around the cells.
  • Agar which is particularly preferably used in the method for producing a bacterial cell dispersion for dilution according to the present invention, dissolves at about 90 ° C. and gels when cooled to about 30 ° C., so that it is subjected to secondary crushing with a mixer between individual particles. After loosening the loose gel bond, the mixture is heated to 70° C. again and filled in a container to improve storage stability. When heated to 80 to 90 ° C. again, the gel may be re-gelled at the time of cooling after filling the container, and the gel between the individual particles may be recombined and easily settled, which is not preferable. As described above, in the agar that is particularly preferably used, the heating temperature range (70 ° C.) at the time of filling the container for storage coincides with the upper limit temperature range in which the gel does not dissolve or regel.
  • the stirring speed of the crushing blade is preferably 1,000 rpm or more, which is much faster than the stirring speed at the time of general mixing (tens to hundreds of rpm). If it is 1,000 rpm or less, crushing is not sufficiently performed, and it is difficult to satisfy the effect of preventing cell sedimentation in diluted drinking water.
  • examples of other additives in the present invention include citric acid, malic acid, adipic acid, ascorbic acid, succinic acid, brewed vinegar, acetic acid, lactic acid, etc., and a container of killed cell dispersion at a temperature of 70 ° C.
  • a container of killed cell dispersion at a temperature of 70 ° C.
  • the viable cell dispersion liquid cannot be filled in a container when it reaches a temperature of 70° C., and is filled at room temperature.
  • the bacterial cell dispersion liquid according to the present invention can be used as a mixed feed for livestock and a drinking water for livestock, and can be used as a drink when provided to the human body.
  • dispersibility in an aqueous medium can be improved by coating bacterial cells such as dead cells and live cells with an aqueous gel or a thickening polysaccharide.
  • the blending amount is shown in% by mass.
  • the present inventors prepared the cell suspension for dilution shown in Tables 1 and 4 and conducted the sedimentation test.
  • Aqueous gel or thickening polysaccharide and citric acid are added to the cell dispersion, and after heating and cooling, they are crushed as they are (without secondary mixer crushing) or again at 3,000 rpm for 2 minutes (mixer secondary). Crushing), heating and filling 100 g of the container at 70°C.
  • the sedimentation test was performed as follows. The container was shaken lightly, then allowed to stand at room temperature by standing, and the appearance of bacterial cell precipitation was visually observed. In the lactic acid bacterium dispersion liquid (lactic acid bacterium 0.2%), no sedimentation was observed in the gellan gum section even after 4 days. The gelatin group was settled in 1 hour in the group without secondary crushing, and settled in 3 hours in the group with secondary crushing. In the other areas, about half of the subsidence was observed after 2 days. The results are shown in Table 2.
  • Test Example 3 The following test was further carried out on the agar plot that had the most effect of preventing sedimentation in [Test Example 2].
  • the manufacturing method of each test example is as follows. The formulations are shown in Table 4. Of 1-1 to 1-8, 1-5, 1-6, 1-7, 1-8 were first crushed with a mixer of 3,000 rpm for 2 minutes using only lactic acid bacteria HS-1 dead bacteria powder and water before heating. Then, the aggregated lactic acid bacteria were separated into individual pieces (mixer primary crushing). 1-1, 1-2, 1-3, 1-4 were used as they were without first crushing the mixer. Next, regardless of the addition of agar, the mixture was mixed and stirred in all sections, heated at 90 ° C.
  • agar melting temperature for 10 minutes, and then cooled to 30 ° C. (agar gel formation temperature).
  • the agar-added areas are 1-3, 1-4, 1-7, and 1-8.
  • the agar-free areas are 1-1, 1-2, 1-5 and 1-6.
  • citric acid was added in all plots. 1-1, 1-3, 1-5 and 1-7 were heated as they were to 70° C. and filled in a container at the temperature.
  • 1-2, 1-4, 1-6, 1-8 were crushed at 3,000 rpm for 2 minutes with a mixer (secondary crushing with a mixer), and then similarly heated to 70 ° C., and 100 g of the container was filled at that temperature.
  • the sedimentation test of the lactic acid bacterium dispersion liquid was performed as follows. Shake the lactic acid bacteria dispersion liquid containers 1-1 to 1-8 lightly, add 0.5% (2.5 g) to 500 ml of water in a transparent glass cylinder, stir well and let stand (lactic acid bacteria 0 0.001%), a penlight was applied to the cylinder in a dark room, and the floating state of the bacterial cells due to diffused reflection of light in the side portion and the sinking state of the bacterial cells in the bottom portion were determined by visual observation. The results are shown in Table 5.
  • Test Example 4 Furthermore, the present inventors examined the relationship between the average particle size of the bacterial cells and the bacterial cell aggregation/dispersion state.
  • the average particle size of each of Prototype Examples 1-1 to 1-8 was measured with a confocal laser scanning microscope (ZEISS LSM510). The results of 1-1 and 1-8 are shown in FIG.
  • 1-1 and 1-3 which were not subjected to the primary and secondary crushing of the mixer, had an average particle size of about 4.1 ⁇ m and many dead cell aggregates were observed (see the photograph of 1-1. ), 1-2, 1-4, 1-5, 1-6, 1-7, 1-8 that were subjected to primary crushing or secondary crushing with a mixer were found to have 1.8-2.0 ⁇ m dead cells. (1-8 photos).
  • the suppression of the sedimentation rate according to the present invention is not obtained simply by making the dispersed particles of the cells finer or increasing the viscosity by agar, and in particular, as in Test Example 1-8, the dead cells are individually formed during the manufacturing process. It is presumed that the gels on the surface of the particles were in a weakly bonded state, but the gels between the individual particles were separated by the secondary crushing of the mixer, and the gels covering the individual particles made it easier to float.
  • [Test Example 5] By using the embodiment 1-8 of [Test Example 3], it is possible to uniformly ingest the bacterial cells by using a simple drinking water distribution facility utilizing a water pressure difference without using power such as a stirrer and a pump. Become. For example, after lightly shaking a container containing 100 g of a lactic acid bacterium dispersion (Test Examples 3, 1-8, 0.2% lactic acid bacterium) in a 20 L tank using Dosatron (registered trademark: Iwatani Sangyo Co., Ltd.).
  • Dosatron registered trademark: Iwatani Sangyo Co., Ltd.
  • the serum IgG and IgA of 21-day, 50-day, 70-day, 90-day, and 150-day-old pigs in both groups were measured. 1. Reagent kit used Pig IgG ELISA Kit (Cat. No. E101-102) Bethyl Laboratories, Inc. was used for IgG measurement, and Pig IgA ELISA Kit (Cat. No. E101-104) Bethyl Laboratories, Inc. was used for IgA measurement.
  • measuring device The ELISA kit was measured using a multi-detection mode microplate reader Infinite 200 PRO. The measurement wavelength of absorbance is 450 nm.
  • a polynomial approximation formula of the dilution approximation curve (each is a quartic formula) was selected from the antigen series concentration and absorbance of each of IgG and IgA, and the order in which the correlation r2 was close to 1 was determined.
  • the IgG measurement results are shown in FIG. 2, and the IgA measurement results are shown in FIG.
  • Plasma samples were tested for IgG, IgA at 21 days, 50 days, 70 days, 90 days, and 150 days of age, and the plasma IgG level (mg/ml) was almost the same level as 50 days, 70 days, and 90 days. After that, it rose significantly in 150 days.
  • the IgA value (mg/ml) showed a gradual increase tendency from the 21st day, and showed a large increase on the 150th day.
  • the test results were higher in concentration in the test plot than in the control plot at all ages.

Abstract

本発明の目的は、飲料水に添加・分散された菌体の水中浮遊時間が延長された希釈用菌体分散液及びその製造方法を提供することにある。 水性ゲル又は増粘形成の多糖類がゲル状又は増粘状に菌体周囲に被覆されたゲル又は増粘被覆菌体と、該ゲル又は増粘被覆菌体が濃厚分散された水性媒体と、を含むことを特徴とする希釈用菌体分散液。

Description

希釈用菌体分散液及びその製造方法 関連出願
　本出願は、２０１９年３月６日付け出願の日本国特許出願２０１９－０４０２３７号の優先権を主張しており、ここに折り込まれるものである。
　本発明は希釈用菌体分散液及びその製造方法、特に希釈分散液中での菌体の分離・沈降を抑制する希釈用菌体分散液とその製造方法に関する。
　菌体を、人を含めた哺乳類、鳥類、魚類、甲殻類に摂取させると、単に栄養素の補給のみならず、免疫性の向上などの優れた効果が発揮され、特に死菌体は摂取のリスクが小さいため、各種食品、飲料等に配合されている。
　特に家畜に菌体を投与すると、免疫性の向上に依存して耐病性が高まることが知られているが、農場において濃厚菌体分散液を家畜用の飲料水に添加することも可能であり、菌体粉末を飼料に添加混合することに比べ、コスト、作業性の点から利便性が高い。
特開２００８－２５９５０２ 特開２０１４－１９
　しかしながら、菌体を飲料水に添加した場合、すぐに沈降をしてしまい、不均一な状態での摂取、配管・吸水口のつまりなどを生じる可能性がある。対策として、多糖類などと配合し、増粘・ゲル化により沈降を抑制する技術がある（特許文献１、特許文献２）が、飲料水に希薄添加する場合には、濃厚菌体分散液を大量の飲料水に添加し、再度分散させる必要があり、しかも飲料水中での再分散状態を長時間にわたり維持しなければならない。このため、菌体が添加された飲料水を常時撹拌する、或いは用時添加などが考えられるが、攪拌機、吸水口まで希釈菌体を運ぶポンプなどが必要となり、数十ｍに及ぶ飲料水配管の管理は費用が嵩み、実用的とは言えない。
　本発明は前記従来技術の課題に鑑みなされたものであり、その目的は飲料水に添加・分散された菌体の水中浮遊時間が延長された希釈用菌体分散液及びその製造方法を提供することにある。
　前記目的を達成するために本発明にかかる希釈用菌体分散液は、水性ゲル又は増粘形成の多糖類が菌体周囲に被覆された水性ゲル又は増粘形成被覆菌体と、該ゲル又は増粘被覆菌体が濃厚分散された水性媒体と、を含むことを特徴とする。
　また、前記分散液の水性ゲル又は増粘形成の多糖類は、寒天、でんぷん、加工デンプン、キサンタンガム、ペクチン、グアーガム、カラギーナン、アルギン酸、ジェランガム、カードラン、プルラン、グルコマンナン、ローカストビーンガム、タマリンドガム、CMC、セルロースナノファイバーなどからなる群より選択されることが好適である。
　また、前記菌体は、乳酸菌、ビフィズス菌、枯草菌、酪酸菌、酵母などが好適であり、生菌体、死菌体を問わない。
本発明において、死菌体ないし耐熱性菌体（耐熱芽胞）を用いる場合の希釈用菌体分散液の製造方法は、凝集した死菌体又は耐熱性菌体（耐熱芽胞）を水性媒体中にて機械的破砕力で個々の菌体にまで破砕する１次破砕工程と、該菌体分散液中に水性ゲル又は増粘形成の多糖類を分散させた多糖類・菌体分散液を、該多糖類の溶解温度以上にまで加熱・撹拌する溶解工程と、前記多糖類・菌体分散液を水性ゲル又は増粘形成温度以下にまで冷却する冷却工程と、前記冷却された多糖類・菌体分散液を機械的破砕力で再度破砕する２次破砕工程と、前記２次破砕された多糖類・菌体分散液を、水性ゲル又は増粘形成の多糖類が再溶解する手前の温度まで再加熱し、容器に充填する充填工程と、を備えたことを特徴とする。該容器は常温保管が可能である。
　本発明において、生菌体を用いる場合の希釈用菌体分散液の製造方法は、凝集した生菌体を水性媒体中にて機械的破砕力で個々の菌体にまで破砕する１次破砕工程と、水性ゲル又は増粘形成の多糖類を水性媒体に分散させた溶液を溶解温度以上にまで加熱・撹拌する溶解工程と、前記多糖類溶液を水性ゲル又は増粘形成の手前の温度まで冷却する工程と、前記１次破砕された菌体分散液と前記冷却された多糖類溶液を非加熱で混合し、機械的破砕力で再度破砕する２次破砕工程と、前記２次破砕された多糖類・菌体分散液を再加熱せず容器に３０℃以下で充填する充填工程と、を備えることを特徴とする。該容器は生菌であるので、冷蔵が望ましい。
　また、前記死菌体又は生菌体のいずれを用いる方法において、寒天を用いる場合は水性ゲル溶解温度は９０℃以上であり、且つ水性ゲル形成温度は、３０℃以下であることが好適である。
　以下、本発明の具体的な構成について説明する。
　本発明において、菌体としては乳酸菌、ビフィズス菌、枯草菌、酪酸菌、酵母などが好適であり、生菌体、死菌体を問わない。
希釈用菌体分散液中の菌体濃度は、０．０１～１．０質量％が好適であり、該希釈用菌体分散液は、水性媒体による１００～１，０００，０００倍希釈により菌体濃度が０．０１～１０．０ｐｐｍとなる飲料水とされ、さらに飼料等に散布されてもよい。
　また、本発明において水性ゲル又は増粘形成の多糖類としては、寒天、でんぷん、加工デンプン、キサンタンガム、ペクチン、グアーガム、カラギーナン、アルギン酸、ジェランガム、カードラン、プルラン、グルコマンナン、ローカストビーンガム、タマリンドガム、CMC、セルロースナノファイバーなど、加熱溶解、冷却により水性ゲル又は増粘形成の多糖類が好適であり、特に水性ゲル溶解温度と水性ゲル形成温度の差が大きいことから寒天であることが好ましい。
　水性ゲル又は増粘形成の多糖類の希釈用菌体分散液中での濃度は０．０１～１質量％、好ましくは０．０５～０．５質量％である。寒天を用いた場合、寒天による水媒体全体のゲル化濃度は、おおよそ１質量％以上であるが、本発明においては水性媒体全体をゲル化させる必要はなく、０．０５～０．５質量％であっても菌体周囲に水性ゲルを被覆することができる。
　本発明にかかる希釈用菌体分散液の製造方法において、特に好適に用いられる寒天は、おおよそ９０℃で溶解し、おおよそ３０℃まで冷却するとゲル化するので、ミキサー２次破砕で、個別粒子間のゆるいゲル結合を切り離し、保存性向上のため、再度７０℃まで加熱し、容器に充填する。再度８０～９０℃まで加熱すると、容器充填後冷却時再度ゲル化して、個別粒子間のゲルが再度結合し、沈降しやすくなる可能性があり、好ましくない。このように、特に好適に用いられる寒天は、保存のための容器充填時加熱温度帯（７０℃）とゲルが再度溶解・再ゲル化しない上限温度帯が一致している。
　また、本発明において破砕工程では、破砕翼の撹拌速度は１，０００ｒｐｍ以上であることが好ましく、一般的な混合時の撹拌速度（数十～数百ｒｐｍ）と比較しはるかに速い。１，０００ｒｐｍ以下であると、破砕が十分に行われず、希釈飲料水中での菌体沈降防止効果が満足のいくものとはなり難い。
また、本発明においてその他の添加物としては、クエン酸、リンゴ酸、アジピン酸、アスコルビン酸、コハク酸、醸造酢、酢酸、乳酸などが挙げられ、死菌体分散液を７０℃達温で容器に充填し、常温で保存する場合にはｐＨ４．６以下となるように調整することが好ましい。生菌体分散液は７０℃達温による容器充填できず、常温充填となるため冷蔵保管が望ましい。
　また、本発明にかかる菌体分散液は、家畜用には混合飼料、家畜飲料水に用いられ、人体に提供する場合にはドリンク剤とすることができる。
　本発明によれば、死菌体・生菌体などの菌体を、水性ゲル又は増粘形成の多糖類により被覆することにより、水性媒体中での分散性を向上させることができる。
［試験例４］の１－１、１－８の菌体分散液の顕微鏡写真である。 ［試験例５］の豚飼育中の乳酸菌添加の有無によるIgGの濃度変化である。 ［試験例５］の豚飼育中の乳酸菌添加の有無によるIgAの濃度変化である。
　以下、本発明の好適な実施形態について説明する。なお、以下の実施形態において、配合量は質量％で示す。
　本発明者らは表１、表４に示す希釈用菌体分散液を調製し、その沈降テストを行った。
［試験例１］
複数の水性ゲル又は増粘形成の多糖類を用い、全ての区でミキサー１次破砕を実施後、ミキサー２次破砕実施の有無による、菌体沈降テストを実施した。
ミキサー１次破砕は、凝集した乳酸菌体を細かく個々に引き離すため、乳酸菌HS-1死菌体粉末(Lactobacillus sakeiHS-1)０．２％を水中に分散させ、ミキサー３，０００ｒｐｍ２分間破砕処理した。
前記菌体分散液に、各々水性ゲル又は増粘形成の多糖類、クエン酸を加え、加熱冷却後、そのまま（ミキサー２次破砕なし）、又は再度ミキサー３，０００ｒｐｍ２分間で破砕し（ミキサー２次破砕）、加温して７０℃で容器に１００ｇ充てんした。
 
乳酸菌分散液の配合（乳酸菌０．２％）
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
沈降テストは以下のとおり行った。
該容器を軽く振とうし、その後静置にて室温放置し、菌体沈降の様子を目視観察した。
該乳酸菌分散液（乳酸菌０．２％）において、ジェランガム区は４日後も沈降は見られなかった。ゼラチン区は２次破砕なし区では１時間で沈降し、２次破砕有区でも３時間で沈降した。それ以外の区は２日後に半分程度沈降が見られた。結果を表２に示す。
乳酸菌分散液の沈降確認テスト（乳酸菌０．２％）
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
 菌体浮遊:○　菌体半分程度沈降:△　菌体全部沈降：×
 
［試験例２］
　表１の乳酸菌分散液（乳酸菌０．２％）を透明なガラスシリンダー中の水５００mlに０．５％（２．５ｇ）添加し、よく撹拌後静置し（乳酸菌０．００１％）、暗室にてシリンダーにペンライトをあて、側面部分では光の乱反射による菌体の浮遊状況と、底面部分では菌体の沈降状況を、それぞれ目視観察により判定した。結果を表３に示す。
　２次破砕をした寒天区では３日間、カラギーナン区、ジェランガム区、ペクチン区、キサンタンガム区、グアーガム区では２日間、菌体は沈降せず、水中を浮遊していることが分かった。
乳酸菌分散液の沈降確認テスト（乳酸菌０．００１％）
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
 菌体浮遊:○　菌体半分程度沈降:△　菌体全部沈降：×
 
［試験例３］
［試験例２］で一番沈降防止効果のあった寒天区について、さらに以下の試験を実施した。各試験例の製造方法は、以下の通りである。配合を表４に示す。
 　１－１～１－８のうち、１－５、１－６、１－７、１－８で、加熱前最初に乳酸菌HS-1死菌粉末と水のみでミキサー３，０００ｒｐｍ２分間破砕処理して、凝集した乳酸菌体を細かく個々に引き離した（ミキサー１次破砕）。１－１、１－２、１－３、１－４はミキサー１次破砕せずそのまま使用した。
次に寒天添加の有無によらず、すべての区で混合撹拌して９０℃（寒天溶解温度）１０分加熱し、その後３０℃（寒天ゲル形成温度）まで冷却した。寒天添加区は１－３、１－４、１－７、１－８である。寒天無添加区は１－１、１－２、１－５、１－６である。
　その後すべての区でクエン酸を添加した。
１－１、１－３、１－５、１－７はそのまま７０℃まで加温し、該温度で容器に充填した。１－２、１－４、１－６、１－８はミキサー３，０００ｒｐｍ２分間破砕処理後（ミキサー２次破砕）、同様に７０℃まで加温し、該温度で容器に１００ｇ充填した。
該乳酸菌分散液（乳酸菌０．２％）の沈降テストは、以下の通りに行った。
　１－１～１－８までの該乳酸菌分散液容器を軽く振とうし、透明なガラスシリンダー中の水５００mlに０．５％（２．５ｇ）添加し、よく撹拌後静置し（乳酸菌０．００１％）、暗室にてシリンダーにペンライトをあて、側面部分では光の乱反射による菌体の浮遊状況と、底面部分では菌体の沈降状況を、それぞれ目視観察により判定した。結果を表５に示す。
　寒天使用区の内、１次破砕・２次破砕をした１－８は３日間、２次破砕のみの１－４は２日間、１次破砕のみの１－７は１日間、それぞれ菌体は沈降せず水中を浮遊することが分かった。以上から、寒天を添加し、ミキサー１次破砕のみより２次破砕のみほうが良く、さらに１次・２次破砕を合わせることで、特に長時間沈降防止を可能にすることを見出した。
　該容器入りの高濃度の乳酸菌溶液（原液、乳酸菌０．２％）では菌体が短時間で沈降すること自体は問題なく、ただし、該容器を軽く振とうし、原液０．５％（２００倍希釈）を飲料水希釈タンクに添加混合し、その後は撹拌混合なく長時間飲料水中を菌体成分が沈降せず浮遊することが重要であり、その試験例が１－８である。
乳酸菌分散液の配合（０．２％）
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
乳酸菌分散液の沈降確認テスト（乳酸菌０．００１％）
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
 菌体浮遊:○　菌体半分程度沈降:△　菌体全部沈降：×
 
［試験例４］
　さらに本発明者らは、菌体の平均粒径と菌体凝集・分散状態の関係について検討を行った。
　前記の試作例１－１～１－８それぞれについて平均粒径を共焦点レーザー顕微鏡（ＺＥＩＳＳ　ＬＳＭ５１０）にて測定した。１－１、１－８の結果を図１に示す。
　顕微鏡観察の結果、ミキサー１次・２次破砕とも実施しない１－１と１－３は、平均粒度４．１μｍ前後で、死菌体凝集体が多くみられるのに対し（１－１の写真）、ミキサー１次破砕又は２次破砕をした１－２、１－４、１－５、１－６、１－７、１－８は死菌個体１．８～２．０μｍが多くみられた（１－８の写真）。
　以上のことから、本発明による沈降速度抑制は、単に菌体分散粒子の微細化、或いは寒天による粘度上昇により得られるものではなく、特に試験例１－８のごとく、製造工程中死菌体個別粒子表面のゲル同士が弱い結合状態にあったものを、ミキサー２次破砕により個別粒子間のゲルが切り離され、個別粒子を覆うゲルの作用により浮遊しやすくなったものと推察される。
［試験例５］
　［試験例３］の１－８の実施形態を用いれば、攪拌機、ポンプなどの動力を使用せず、水圧差を利用した簡易な飲料水配給設備で均一に菌体を摂取させることが可能となる。例えば、ドサトロン（登録商標：岩谷産業株式会社製　投薬配合器）を利用した２０Ｌタンクに、乳酸菌体分散液（試験例３、１－８、乳酸菌０．２％）１００ｇ入容器を軽く振とう後に添加し、最初に撹拌・混合するのみで、投薬配合器（乳酸菌０．００１％）からさらに５００倍に希釈された菌体分散液の状態（乳酸菌０．０２ｐｐｍ）で吸引され、均一に飲料水に添加・希釈・混合されて吸水口まで運ばれ、飼育動物は飲水時一定の濃度で菌体を摂取することができる。
　上記条件にて、２０１８年秋から２０１９年まで日本国内の養豚場にてフィールド試験を実施した。
該乳酸菌体分散液（乳酸菌０．２％）１００ｇをドサトロン２０Lに添加した試験区、無添加の対照区とも、各区１０頭とし、離乳直後の２１日齢から１５０日齢まで、同じ飼料で飼育試験を行い、飲料水は自由供与とした。
　なお、前記乳酸菌の濃度は、兵庫県畜産センター設楽修氏の論文に基づき、乳酸菌HS-１(死菌体粉末)を豚の飼料に添加して増体・下痢の抑制等に効果のあった同濃度（０．０２ｐｐｍ）を、試験区の飲料水に添加した。兵庫農技総セ（畜産）Bull.Hyogo.Pre.Tech.Cent.Agri.Forest.Fish.(Animal Husbandry)48,17-22(2012)〔論文〕
両区の２１日齢、５０日齢、７０日齢、９０日齢、１５０日齢の豚血清中IgG、IgAの測定をした。
１．使用試薬キット
IgG測定は、Piｇ　IgG　ELISA　Kit　（Cat. No.E101-102）　Bethyl Laboratories,Inc.　を、IgA測定は、Piｇ　IgA　ELISA　Kit　（Cat. No.E101-104）　Bethyl Laboratories,Inc.を用いた。
２．測定サンプル
HS-1死菌体を含む乳酸菌死菌体分散液を給水して飼育した21日、50日、70日、90日齢および150日齢の豚（試験区とする）より採取した血漿サンプルを試薬キットに付属の希釈液を用いて、測定に必要な倍数に希釈したものを被験サンプルとして測定した。IgGは、500,000倍、IgAは、30,000倍に希釈した。なお、HS-1死菌体を含まない飲料水を給水して飼育した21日、50日、70日、90日齢および150日齢の豚を対照区として、上記と同様に測定した。血漿は、日齢ごと異なる豚n=10から溶血検体を除きピックアップしたn=6の血漿検体にて測定した。
３．測定装置
ELISAキットは、マルチ検出モード マイクロプレートリーダーInfinite 200 PROを用いて測定した。吸光度の測定波長は、450nm。 検量線は、IgG及びIgAそれぞれの抗原系列濃度と吸光度より、希釈近似曲線の多項式近似式（いずれも4次式）を選択し、相関r2が１に近い次数を決定した。
４．測定結果
IgGの測定結果を図２に、IgAの測定結果を図３に示す。　
21日、50日、70日、90日、150日齢の血漿検体IgG、IgA測定を実施したところ、血漿中IgG値（mg/ml）は50日、70日、90日とほぼ同等なレベルで推移した後、150日では大きく上昇した。
一方、IgA値(mg/ml)は、21日より徐々に増加傾向を示し、150日には大きな増加が見られた。
またIgG及びIgAとも、全ての日齢において試験区は対照区よりも濃度の高い測定結果が得られた。

 

Claims (7)

  1. 　水性ゲル又は増粘形成の多糖類がゲル状又は増粘状に菌体周囲に被覆されたゲル又は増粘被覆菌体と、該ゲル又は増粘被覆菌体が濃厚分散された水性媒体と、を含むことを特徴とする希釈用菌体分散液。
  2. 　請求項１記載の分散液において、水性ゲル又は増粘形成の多糖類は、寒天、でんぷん、加工デンプン、キサンタンガム、ペクチン、グアーガム、カラギーナン、アルギン酸、プルラン、ジェランガム、カードラン、グルコマンナン、ローカストビーンガム、タマリンドガム、CMC、セルロースナノファーバーなどから選択されることを特徴とする希釈用菌体分散液。
  3. 　請求項１又は２記載の分散液において、乳酸菌、ビフィズス菌、枯草菌、酪酸菌、酵母などの死菌体または生菌体を用い、分散液中の濃度は０．０１～１．０質量％であることを特徴とする希釈用菌体分散液。
  4. 　凝集した死菌体又は耐熱性菌体（耐熱芽胞）を水性媒体中にて機械的破砕力で個々の菌体にまで破砕する１次破砕工程と、該菌体分散液中に水性ゲル又は増粘形成の多糖類を分散させた多糖類・菌体分散液を、該多糖類の溶解温度以上にまで加熱・撹拌する溶解工程と、前記多糖類・菌体分散液を水性ゲル又は増粘形成温度以下にまで冷却する冷却工程と、前記冷却された多糖類・菌体分散液を機械的破砕力で再度破砕する２次破砕工程と、前記２次破砕された多糖類・菌体分散液を、水性ゲル又は増粘形成の多糖類が再溶解する手前の温度まで再加熱し、容器に充填する充填工程と、を備えたことを特徴とする希釈用菌体分散液の製造方法。
  5. 　凝集した生菌体を水性媒体中にて機械的破砕力で個々の菌体にまで破砕する１次破砕工程と、水性ゲル又は増粘形成の多糖類を水性媒体に分散させた溶液を溶解温度以上にまで加熱・撹拌する溶解工程と、前記多糖類溶液を水性ゲル又は増粘形成の手前の温度まで冷却する工程と、前記１次破砕された菌体分散液と前記冷却された多糖類溶液を非加熱で混合し、機械的破砕力で再度破砕する２次破砕工程と、前記２次破砕された多糖類・菌体分散液を再加熱せず容器に３０℃以下で充填する充填工程と、を備えることを特徴とする希釈用菌体分散液の製造方法。
  6. 　請求項４又は５記載の方法において、水性ゲル形成多糖類は寒天であり、菌体分散液中には０．０５～０．５質量％の濃度で添加されることを特徴とする希釈用菌体分散液の製造方法。
  7. 　請求項６に記載の方法において、水性ゲル溶解温度は９０℃以上であり、且つ水性ゲル形成温度は３０℃以下であることを特徴とする希釈用菌体分散液の製造方法。
     

     
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