WO2019074091A1 - ｍｅｃＡ遺伝子増幅用プライマーペア、ｍｅｃＡ遺伝子検出キット及びｍｅｃＡ遺伝子検出方法 - Google Patents

ｍｅｃＡ遺伝子増幅用プライマーペア、ｍｅｃＡ遺伝子検出キット及びｍｅｃＡ遺伝子検出方法 Download PDF

Info

Publication number
WO2019074091A1
WO2019074091A1 PCT/JP2018/038072 JP2018038072W WO2019074091A1 WO 2019074091 A1 WO2019074091 A1 WO 2019074091A1 JP 2018038072 W JP2018038072 W JP 2018038072W WO 2019074091 A1 WO2019074091 A1 WO 2019074091A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
seq
primer pair
combination
primer
pcr
Prior art date
Application number
PCT/JP2018/038072
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
仰 天野
絢子 遠藤
久陽 矢内
健太郎 辻
森重　敬
Original Assignee
三井化学株式会社
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority to AU2018350052A priority Critical patent/AU2018350052B2/en
Priority to KR1020237028882A priority patent/KR20230128154A/ko
Priority to KR1020207010172A priority patent/KR20200046106A/ko
Priority to JP2019548253A priority patent/JP7199367B2/ja
Priority to US16/755,004 priority patent/US20200308628A1/en
Priority to CN201880065280.0A priority patent/CN111183223A/zh
Priority to CN202311819280.4A priority patent/CN117721228A/zh
Priority to EP18866008.8A priority patent/EP3696268A4/en
Application filed by 三井化学株式会社 filed Critical 三井化学株式会社
Priority to SG11202002860VA priority patent/SG11202002860VA/en
Priority to KR1020217034705A priority patent/KR102593021B1/ko
Publication of WO2019074091A1 publication Critical patent/WO2019074091A1/ja
Priority to PH12020550254A priority patent/PH12020550254A1/en
Priority to JP2021178657A priority patent/JP2022025117A/ja
Priority to US18/053,785 priority patent/US20230242978A1/en

Links

Images

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • C12Q1/6888—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms
    • C12Q1/689—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms for bacteria
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M1/00—Apparatus for enzymology or microbiology
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11—DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6844—Nucleic acid amplification reactions
    • C12Q1/686—Polymerase chain reaction [PCR]

Definitions

  • the present invention relates to a primer pair, a kit and a detection method for detecting mecA gene, which is a specific genetic element of methicillin resistance, conveniently, rapidly and sensitively.
  • Methicillin resistant Staphylococcus aureus (hereinafter referred to as "MRSA") has become a major cause of nosocomial infections worldwide and is regarded as the most clinically important drug resistant strain in many countries. It is done.
  • MecA a gene involved in methicillin resistance of MRSA, encodes PBP (Penicillin Binding Protein) -2 ′ (also called PBP-2a).
  • PBP Penicillin Binding Protein
  • S. aureus produces mainly four PBPs.
  • PBP is a protein involved in cell wall peptidoglycan synthesis and has transpeptidase activity.
  • ⁇ -lactam antibiotics act by binding to the active site of PBP, inhibiting transpeptidase activity and inhibiting peptidoglycan synthesis.
  • Non-patent Document 1 PBP-2 'avoids the peptidoglycan synthesis inhibitory effect by reducing the affinity to ⁇ -lactam antibiotics.
  • Staphylococcus aureus and coagulase-negative staphylococci the presence or absence of methicillin resistance is very important information in the diagnosis of infected patients and in the determination of the course of treatment.
  • Staphylococcus aureus is regarded as important in comparison with other coagulase-negative staphylococci because of its virulence, but infection with compromised host is also caused by methicillin-resistant Staphylococcus aureus and coagulase-negative staphylococci It is a big problem.
  • Non-patent Document 2 Drug susceptibility testing requires that blood collected from patients be cultured for more than a day to increase staphylococci.
  • the immuno assay also requires a step of culturing staphylococci, it takes more than a day to obtain the result of the methicillin resistance test.
  • nucleic acid amplification tests such as PCR are so sensitive that they do not require a culture process and can be tested directly from patient blood. Therefore, the test results can be submitted within hours after the arrival of the patient's blood sample (Patent Document 1).
  • Non-patent Document 2 discloses several methods for detecting the methicillin resistance gene.
  • the detection of the methicillin resistance gene greatly affects the diagnosis and treatment policy of patients, so the development of a method for rapid and accurate and reliable detection is a urgent clinical need. Therefore, it is an object of the present invention to detect methicillin resistant gene rapidly, accurately and reliably. It is an object of the present invention to provide a primer pair for realizing particularly sensitive methicillin resistance gene detection.
  • the present invention is a method for rapidly identifying a methicillin resistant gene directly from a patient sample by using a nucleic acid amplification method, and for reliably detecting with a higher detection sensitivity than conventional methods.
  • the present inventors focused on the PCR method with the aim of establishing a highly sensitive and rapid method for detecting a methicillin resistance gene.
  • the primers used in the PCR method were examined. The following conditions were used to design the primer.
  • the size of the DNA fragment to be amplified was increased as long as the amplification efficiency did not decrease. Specifically, the size of the DNA fragment was 150 bp or more and 700 bp or less.
  • the fluorescence intensity of the amplification curve during the PCR reaction was increased, and the height of the peak obtained by Melting analysis was also increased.
  • the sequences of mecA homologs are confirmed, and the nucleotide sequences of the primer pairs are designed only at highly conserved portions. Specifically, those containing a less conserved sequence within 5 bases from the 3 'end of the primer were excluded, and the base sequence was corrected to obtain a highly conserved sequence.
  • 32 specific Fwd and Rev primers are produced, and then they are combined to produce 313 primer pairs which are considered promising, and the optimum combination is examined from among them.
  • the primer pair according to the present invention is A primer pair for detecting mecA gene (methicillin resistant gene), which comprises:
  • the primer pair is characterized in that it is one primer pair selected from the group consisting of the following (a) to (c):
  • a combination of SEQ ID NO: 5 and SEQ ID NO: 12 a combination of SEQ ID NO: 6 and SEQ ID NO: 10
  • the mecA gene detection kit is characterized by comprising at least one primer pair selected from the group consisting of (a) to (c) above.
  • the method for detecting mecA in a sample according to the present invention A PCR step of performing PCR using DNA prepared from a sample and a primer pair for amplifying the DNA; Detecting the mecA gene in the sample by detecting the mecA gene in the amplification product obtained by the PCR step or by analyzing the amplification product; Have The primer pair used in the PCR step is characterized in that it is at least one primer pair selected from the group consisting of the above (a) to (c).
  • the present invention it is possible to provide a primer pair for PCR for detecting mecA gene with high sensitivity and a mecA gene detection kit, and a method for detecting the mecA gene. Therefore, according to the present invention, detection of a minute amount of mecA gene in a sample in the medical field, food field and the like can be carried out with higher sensitivity and higher accuracy than conventional test kits.
  • Fig. 1 (a) shows the results of measurement of amplification curves and Tm values when samples from methicillin resistant strains are used
  • Fig. 1 (b) shows the results of amplification curves and Tm values when samples from methicillin sensitive strains are used The measurement results are shown.
  • a primer refers to DNA that is a starting point during DNA replication in PCR.
  • a primer refers to a DNA primer.
  • the point of the present invention lies in a specific primer pair that can enjoy the effect of improving detection sensitivity.
  • the primer pair consisting of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 45 and the primer pair consisting of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 46 described in Patent Document 1 have a DNA sequence that hybridizes to the sequence in the structural gene of methicillin resistance gene (mecA).
  • SEQ ID NOs: 13 and 14 The base sequence of SEQ ID NOs: 45 and the base sequence of SEQ ID NO: 46 described in Patent Document 1 are referred to as SEQ ID NOs: 13 and 14 in the present specification, respectively.
  • the detection method using PCR did not have sufficient detection sensitivity and could not detect low concentrations of mecA (Example 5 and Table 2 described later). This may indicate false negatives due to lack of detection sensitivity when analyzing samples containing low concentrations of MRSA.
  • the structural gene of the mecA gene is approximately 2100 bp, and PCR is performed using each of the primer pairs included in the following a groups designed by the present inventors to hybridize within the structural gene: It turned out that it was possible to detect the mecA gene with higher sensitivity.
  • a modified primer comprising a modified base sequence obtained by converting a part of bases in the base sequence of the DNA fragment (oligonucleotide) constituting each of the above primers is also applicable.
  • a modified primer is considered equivalent to each primer if it can hybridize to the complementary DNA strand of each primer described above.
  • this modified primer regarded as equivalent has a function as a primer that hybridizes with the complementary DNA strand of the original primer, and one or two bases are added or deleted in the base sequence of the original primer. It is preferable that the primer has a modified or deleted base sequence. Therefore, the primer pair included in the following (b) group can also be used as a primer pair for detecting mecA gene.
  • B2-1 A primer pair consisting of a combination of a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 2 and a primer consisting of SEQ ID NO: 9.
  • B2-2 A primer pair consisting of a combination of a primer consisting of SEQ ID NO: 2 and a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 9.
  • B2-3) A primer pair comprising a combination of a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 2 and a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 9.
  • B3-1) A primer pair consisting of a combination of a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 1 and a primer consisting of the base sequence of SEQ ID NO: 8.
  • B3-2 A primer pair consisting of a combination of a primer consisting of SEQ ID NO: 1 and a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 8.
  • B3-3 A primer pair comprising a combination of a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 1 and a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 8.
  • B4-1 A primer pair consisting of a combination of a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 1 and a primer consisting of SEQ ID NO: 9.
  • B4-2) A primer pair consisting of a combination of a primer consisting of SEQ ID NO: 1 and a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 9.
  • B4-3 A primer pair comprising a combination of a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 1 and a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 9.
  • B5-1 A primer pair consisting of a combination of a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 4 and a primer consisting of SEQ ID NO: 11.
  • B5-2 A primer pair consisting of a combination of a primer consisting of SEQ ID NO: 4 and a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 11.
  • B5-3 A primer pair comprising a combination of a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 4 and a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 11.
  • B6-1 A primer pair consisting of a combination of a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 5 and a primer consisting of SEQ ID NO: 12.
  • B6-2 A primer pair consisting of a combination of a primer consisting of SEQ ID NO: 5 and a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 12.
  • B6-3 A primer pair comprising a combination of a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 5 and a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 12.
  • B7-1 A primer pair consisting of a combination of a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 6 and a primer consisting of SEQ ID NO: 10.
  • B7-2 A primer pair consisting of a combination of a primer consisting of SEQ ID NO: 6 and a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 10.
  • B7-3 A primer pair comprising a combination of a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 6 and a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 10.
  • B 8-1) A primer pair consisting of a combination of a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 6 and a primer consisting of SEQ ID NO: 12.
  • B 8-2 A primer pair consisting of a combination of a primer consisting of SEQ ID NO: 6 and a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 12.
  • B 8-3 A primer pair comprising a combination of a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 6 and a modified primer consisting of the modified base sequence of SEQ ID NO: 12.
  • a pair of complementary primers consisting of a complementary sequence of the primers constituting each of the above primer pairs can also be used as a primer pair for detecting mecA gene. That is, primer pairs included in the following (c) group can also be used as primer pairs for detecting mecA gene.
  • C1-2 A primer pair consisting of a combination of a modified primer consisting of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 3 and a primer consisting of the complementary sequence of SEQ ID NO: 7.
  • C1-3 A primer pair consisting of a combination of a primer consisting of the complementary sequence of SEQ ID NO: 3 and a modified primer consisting of the complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 7.
  • C1-4 A primer pair consisting of a combination of a modified primer consisting of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 3 and a modified primer consisting of the complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 7.
  • C2-1 A primer pair consisting of a combination of a primer consisting of a complementary sequence of SEQ ID NO: 2 and a primer consisting of a complementary sequence of SEQ ID NO: 9.
  • C2-2 A primer pair consisting of a combination of a modified primer consisting of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 2 and a primer consisting of a complementary sequence of SEQ ID NO: 9.
  • C2-3) A primer pair consisting of a combination of a primer consisting of a complementary sequence of SEQ ID NO: 2 and a modified primer consisting of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 9.
  • C2-4 A primer pair consisting of a combination of a modified primer consisting of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 2 and a modified primer consisting of the complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 9.
  • C3-1 A primer pair consisting of a combination of a primer consisting of a complementary sequence of SEQ ID NO: 1 and a primer consisting of a complementary sequence of SEQ ID NO: 8.
  • C3-2 A primer pair consisting of a combination of a modified primer consisting of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 1 and a primer consisting of a complementary sequence of the base sequence of SEQ ID NO: 8.
  • C3-3) A primer pair consisting of a combination of a primer consisting of a complementary sequence of SEQ ID NO: 1 and a modified primer consisting of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 8.
  • C3-4 A primer pair consisting of a combination of a modified primer consisting of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 1 and a modified primer consisting of the complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 8.
  • C4-1 A primer pair consisting of a combination of a primer consisting of a complementary sequence of SEQ ID NO: 1 and a primer consisting of a complementary sequence of SEQ ID NO: 9.
  • C4-2) A primer pair consisting of a combination of a modified primer consisting of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 1 and a primer consisting of a complementary sequence of SEQ ID NO: 9.
  • C4-3 A primer pair consisting of a combination of a primer consisting of a complementary sequence of SEQ ID NO: 1 and a modified primer consisting of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 9.
  • C4-4) A primer pair consisting of a combination of a modified primer consisting of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 1 and a modified primer consisting of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 9.
  • C5-1) A primer pair consisting of a combination of a primer consisting of a complementary sequence of SEQ ID NO: 4 and a primer consisting of a complementary sequence of SEQ ID NO: 11.
  • C5-2 A primer pair consisting of a combination of a modified primer consisting of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 4 and a primer consisting of a complementary sequence of SEQ ID NO: 11.
  • C5-3 A primer pair consisting of a combination of a primer consisting of the complementary sequence of SEQ ID NO: 4 and a modified primer consisting of the complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 11.
  • C5-4) A primer pair consisting of a combination of a modified primer consisting of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 4 and a modified primer consisting of the complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 11.
  • C6-1 A primer pair consisting of a combination of a primer consisting of a complementary sequence of SEQ ID NO: 5 and a primer consisting of a complementary sequence of SEQ ID NO: 12.
  • C6-2 A primer pair consisting of a combination of a modified primer consisting of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 5 and a primer consisting of a complementary sequence of SEQ ID NO: 12.
  • C6-3 A primer pair consisting of a combination of a primer consisting of a complementary sequence of SEQ ID NO: 5 and a modified primer consisting of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 12.
  • (C6-4) A primer pair consisting of a combination of a modified primer consisting of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 5 and a modified primer consisting of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 12.
  • (C7-1) A primer pair consisting of a combination of a primer consisting of a complementary sequence of SEQ ID NO: 6 and a primer consisting of a complementary sequence of SEQ ID NO: 10.
  • (C7-2) A primer pair consisting of a combination of a modified primer consisting of the complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 6 and a primer consisting of the complementary sequence of SEQ ID NO: 10.
  • C7-3 A primer pair consisting of a combination of a primer consisting of the complementary sequence of SEQ ID NO: 6 and a modified primer consisting of the complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 10.
  • C7-4 A primer pair comprising a combination of a modified primer consisting of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 6 and a modified primer consisting of the complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 10.
  • C8-1) A primer pair consisting of a combination of a primer consisting of a complementary sequence of SEQ ID NO: 6 and a primer consisting of a complementary sequence of SEQ ID NO: 12.
  • C 8-2 A primer pair consisting of a combination of a modified primer consisting of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 6 and a primer consisting of a complementary sequence of SEQ ID NO: 12.
  • C8-3 A primer pair consisting of a combination of a primer consisting of the complementary sequence of SEQ ID NO: 6 and a modified primer consisting of the complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 12.
  • C8-4) A primer pair consisting of a combination of a modified primer consisting of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 6 and a modified primer consisting of a complementary sequence of the modified base sequence of SEQ ID NO: 12.
  • primer pair (a7) and primer pairs (b7-1) to (b7-3) and (c7-1) to (c7-4) are preferable.
  • the respective primer pairs included in the above groups (a) to (c) are common in that they specifically hybridize within the structural gene of the mecA gene to amplify a DNA fragment specific to the mecA gene. Have the function of
  • the primer pair of the present invention was found for the first time after confirming the presence or absence of an effect based on the combination of a considerable amount of various primers, and it should be noted that it can not be achieved at a mere confirmation level of the effect.
  • the combination is a novel combination as a primer pair for detecting mecA gene.
  • the present invention does not prevent the combined use of multiple known primers for bacteria, fungi and viruses other than the primer pair of the present invention.
  • the primer concentration in PCR is not particularly limited, but generally set in the range of 0.05 ⁇ M to 1.0 ⁇ M according to the study.
  • the enzyme for PCR used in the present invention is preferably a thermostable DNA polymerase derived from a heat-resistant organism, and more preferably a methane bacterium, a thermophilic acid bacterium, a thermophilic bacterium, a super thermophilic bacterium etc. It is of prokaryotic origin.
  • thermostable DNA polymerase used in the present invention include Thermus aquaticus, Thermus thermophilus, Bacillus stearothermophilus, Thermococcus gogonalius Thermococcus gorgonarius), Thermococcus kodakaraensis KOD1 (Thermococcus kodakaraensis KOD1), Pyrococcus woasei (Pyrococcus woseii), Pyrococcus furiosis (Pyrococcus furiosus), Aeropyrum pernicus (Aeropyrum pernix), Click Ifekkusu-Aeorikasu (Aquifex aeolicus), mention may be made of Sulfolobus-Tokodaii (Sulfolobus tokodaii), Pairorobasu-Fumari (Pyrolobus fumarii), or Metanopairasu-Kandoreri (Methano
  • Reagents other than primer pairs used for PCR analysis in the present invention may be known ones in known combinations.
  • Reagents required for measurement include enzymes for PCR, pH buffer, dNTP, Mg 2+ source, sterile water and the like.
  • a labeling substance such as a fluorescent dye is required in addition to the above.
  • the pH buffer is used to adjust the pH to 7.0 to 10.0 (more preferably, pH 8.0 to 9.0) as a sample to be subjected to PCR analysis.
  • Tris hydrochloric acid buffer and the like can be mentioned. For example, in the case of Tris hydrochloric acid buffer, 5 mM to 100 mM is used.
  • dNTP is a nucleoside source for DNA amplification by PCR, and four types of dATP, dCTP, dGTP and dTTP are required. Also, dNTP is chemically modified for use in the hot start method, for example, TriLink BioTechnologies, Inc. Made in CleanAmp TM dNTP may be used. The amounts used are dATP, dCTP, dGTP and dTTP, each at a concentration of around 0.1 to 0.2 mM. Mg 2+ is required for DNA amplification by PCR. The Mg 2+ source includes MgCl 2 , MgSO 4 and the like.
  • the fluorescent dye is used for the purpose of detecting a DNA amplification product by real-time PCR and further for measuring the Tm value of the amplified DNA fragment, and examples include a method using an intercalator having a labeling function.
  • the intercalator include ethidium bromide, Cyber Green I (SYBR Green I), Resolight (manufactured by Roche), EvaGreen (manufactured by Biotium), BOXTO (manufactured by tataa biocenter) and the like.
  • Preferred intercalators are EvaGreen and Resolight.
  • the amount used is in accordance with the recommendations of the manufacturer of the fluorescent dye used.
  • Other kits may contain bacterial genomic DNA used as a positive control for PCR, and sterile water used as a negative control.
  • a container for PCR analysis measurement for example, a tube for analysis measurement
  • a container having a shape or a structure corresponding to a measurement device can be selected and used. If it is recommended by the source of the measuring instrument, it can be used for the measurement without any particular problems.
  • Other instruments necessary for practicing the present invention include instruments widely used in molecular biology experiments such as pipettes, tips for pipettes, 1.5 ml microtubes, etc.
  • Devices include PCR, clean benches Examples of such devices include centrifuges for tubes, and devices widely used in molecular biology experiments.
  • the mecA gene detection kit of the present invention is a kit for detecting the mecA gene by analyzing a DNA fragment amplified by the primer pair of the present invention.
  • the analysis of the DNA fragment as an amplification product can be performed by a known method.
  • analysis of a DNA fragment as an amplification product can be performed by molecular weight analysis of a DNA fragment, Tm value measurement (melting curve analysis) or the like. Two or more analysis methods may be combined. Preferably, it is the measurement of Tm values, for which purpose real-time PCR is preferably used.
  • the analysis of molecular weight can be performed by electrophoresis, a mass spectrometer, or the like.
  • the mecA gene detection kit comprises one or more of the primer pairs of groups (a) to (c) described above.
  • an enzyme for PCR pH buffer, MgCl 2, dNTPs (or CleanAmp TM dNTP) and reagents such as sterile water, PCR analysis measuring container (e.g. analytical measuring tube) Ya
  • PCR analysis measuring container e.g. analytical measuring tube
  • at least one reagent and / or part selected from parts such as necessary instruments can be included.
  • a fluorescent dye can be added as a component.
  • components necessary for the PCR method may be added to the kit in addition to these components.
  • Each of these reagents or parts may be packaged in any form, such as individually or in part or in whole. Specifically, for example, it is the following mode. 1) Separate each reagent to be used. 2) pH buffer, MgCl 2, dNTPs (or CleanAmp TM dNTP), divided pieces into three mixtures, enzymes for one primer pair and PCR were mixed fluorescent dye in advance in the analysis of real-time PCR, i.e. separate Divide into separate packaging. 3) pH buffer, MgCl 2, dNTPs (or CleanAmp TM dNTP), fluorescent dyes, one mixture primer pairs were premixed, and divided pieces into two enzymes for PCR in the analysis of real-time PCR, namely Separately package separately.
  • the mecA gene detection kit of the present invention can be used for mecA gene detection in various fields such as medical field, food field, environmental analysis and the like.
  • the sample to be subjected to the test is not particularly limited and can be applied to a wide range of samples.
  • blood, cerebrospinal fluid, tear fluid, aqueous humor, amniotic fluid, joint fluid, saliva, nasal swab fluid, urine, other body fluids, medical instruments such as catheters and the like may be mentioned in the medical field.
  • the food field the food itself, liquid during production, solid feed, equipment deposits in the manufacturing process, and the like can be mentioned.
  • ⁇ DNA extraction processing> When performing mecA gene detection in a sample using the mecA gene detection kit of the present invention, it is necessary to extract DNA in advance from bacteria which may be present in the sample. At present, alkaline lysis method, boiling method, phenol extraction method, bead disruption method and the like are known as DNA extraction methods, and various DNA extraction kits are also sold from manufacturers. Although the DNA extraction method in the present invention is not particularly limited, it is desirable to select a method corresponding to the target sample because the optimum method differs depending on the sample. ⁇ PCR analysis> The primer pair of the present invention is used in the PCR method. As a PCR method, various PCR methods can be used as long as they are PCR methods for target gene amplification for detecting the mecA gene.
  • a preferred analysis method is real time PCR, more preferably a combination of real time PCR and melting curve analysis for Tm measurement.
  • the real-time PCR device to be used is not particularly limited.
  • the Rotor Gene Q manufactured by Qiagen, Inc. used in the Examples of the present invention is an example of a real-time PCR device that can be suitably used.
  • PCR and real-time PCR generally known devices, techniques and the like may be used.
  • the conditions (temperature, time, temperature increase / decrease speed, number of cycles) of the temperature cycle in PCR are not particularly limited, and are appropriately determined according to the properties of the primers, PCR enzymes and templates used and the DNA detection method after PCR. It should be set. Many documents are already known about the setting of such conditions.
  • the step of heat denaturation of template double-stranded DNA, the step of annealing the primers, and the step of DNA extension by enzymes for PCR are repeated.
  • the heat denaturation step may be performed at a temperature and a time at which the template double-stranded DNA dissociates into a single strand, for example, set at 90 ° C. to 98 ° C. for several seconds to several minutes.
  • a process of heat denaturation of several minutes to 10 minutes is often added only to the first cycle.
  • the annealing step of the primer is set according to the base sequence of the primer and the number of bases, but is often set at 40 ° C. to 72 ° C.
  • the DNA elongation step for example, 58 ° C. to 76 ° C. is common depending on the temperature such as the optimum temperature of the enzyme for PCR, and the length of the DNA to be amplified and the DNA elongation step time for the DNA elongation step. Estimate and set the required time from the DNA synthesis rate of the enzyme for PCR.
  • the target DNA is amplified by repeating the steps of heat denaturation, annealing and extension, and the number of repetitions depends on the amount of template DNA, the amount of enzyme for PCR, and the sensitivity of the DNA detection method after PCR, Although it may be changed as appropriate, 10 to 50 times may be exemplified as a general example.
  • the temperature at which the fluorescence intensity is measured may be, for example, the temperature at the time of DNA elongation as in the case of using an intercalator, or the strand length of the target DNA to be amplified is relatively long, and its Tm value is relatively If the target DNA is high, non-target amplified non-target DNA (also referred to as non-specific amplified DNA) having relatively short chain length such as primer dimer etc. (also referred to as non-specific amplified DNA) is used to utilize target Tm value relatively low. It may be set to a temperature between them, including an intermediate value between the Tm value of and the Tm value of nonspecific amplified DNA.
  • the Tm value of the amplified DNA can be measured by melting curve analysis.
  • melting curve analysis the dissociation of double-stranded to single-stranded DNA is observed according to temperature change, but the temperature and detection conditions are not particularly limited. Generally, heat denaturation (90 ° C. to 98 ° C.), duplex formation (40 ° C.
  • melting from temperature of duplex formation to around 98 ° C. gradually
  • the temperature rise can be followed by monitoring the change in fluorescence intensity in the melting step to obtain a melting curve from which the Tm value can be obtained.
  • a method for detecting mecA gene in a sample As a method for detecting mecA gene in a sample according to the present invention, a method having the following steps can be used. (1) A step of performing PCR using PCR genomic DNAs of bacteria prepared from the sample, a primer pair for obtaining an amplification product containing the mecA gene, and a PCR reagent including thermostable DNA polymerase. (2) A step of detecting the mecA gene in the sample by detection of the mecA gene in the amplification product in the PCR, or analysis of the amplification product. When using a plurality of primer pairs, PCR step (1) is performed separately for each of a plurality of primer pairs.
  • one primer pair is added to one reaction solution for PCR, and a plurality of reaction solutions to which different primer pairs are added are individually used to perform the PCR step (1).
  • the primer pairs according to the present invention As a primer pair for obtaining an amplification product containing the mecA gene, highly sensitive detection of the methicillin resistance gene (mecA) can be performed.
  • mecA methicillin resistance gene
  • Hot start PCR can be used to suppress the amplification of this nontarget gene.
  • One example is the hot start method using an anti-DNA polymerase antibody.
  • thermostable DNA polymerase 1U it is preferable to use an excessive amount of anti-DNA polymerase antibody to thermostable DNA polymerase 1U.
  • a hot start method by subjecting DNA polymerase to reversible chemical modification can also be suitably used.
  • a hot start method using a chemically modified dNTP or a primer chemically modified as described in US Patent Publication No. 20070281308 (US 2007/0281308 A1) can also be suitably used.
  • a hot start method is achieved by physically separating a DNA polymerase and components essential for DNA amplification by the DNA polymerase (for example, a primer, dNTP, Mg 2+ salt, etc.) using a wax which is melted by heating. Can also be suitably used.
  • the detection of the target gene in the amplification product in the detection step of the amplification product can be carried out by measuring the Tm value by real time PCR using an intercalator having a fluorescent label for detection.
  • Preferred intercalators are Cyber Green I, EvaGreen, Resolight or BOXTO, more preferably EvaGreen or Resolight.
  • the detection step by Tm value measurement using real-time PCR the amplification product of the target gene can be detected, and the amplification products of other non-target genes can be performed as non-detection.
  • the amplification step and the detection step can be performed by real-time PCR using a display device that displays the amount of amplification product, and a method can be used in which the amplification product of the unintended gene is not displayed on the display device.
  • the analysis of the amplification product in the detection step can be performed by analysis of the amplification product, which develops and visualizes the amplification product by electrophoresis on a gel or the like. Also, analysis of the amplification product can be performed by analysis of the amplification product by decoding the base sequence of the amplification product. Furthermore, analysis of the amplification product can also be performed by a method of measuring and analyzing the molecular weight of the amplification product with a mass spectrometer.
  • Example 1 Primary screening Genomic DNA extracted from the culture solution of MRSA (RIKEN strain, JCM 31453) using High pure PCR template preparation kit (Roche) is used as a template and primers of SEQ ID NO: 15 and SEQ ID NO: 16 PCR was performed with the reaction solution composition shown in Table 1 to amplify the full length of the mecA ORF. Next, a dilution series of the amplification product of mecA was prepared, and PCR was carried out using the reaction primer composition shown in Table 1 using the comparative primer pair consisting of the forward primer consisting of SEQ ID NO: 13 and the reverse primer consisting of SEQ ID NO: 14. The concentration of the amplification product of mecA which gives rise to about 20 cycles was determined and used as a template.
  • JCM 31453 is the Microbial Materials Development Office ( ⁇ 305-0074, 3-1-1 Takanodai, Tsukuba City, Ibaraki Prefecture, RIKEN BioResource Center, BioResource Center, Microbial Materials Development Office (RIKEN BRC-JCM) It is more publicly available.
  • PCR was performed using the reaction solution composition shown in Table 1 for 313 primer pairs.
  • the real-time PCR apparatus used a rotagene Q MDx 5plex HRM (QIAGEN).
  • the reaction conditions for PCR were such that after heating at 95 ° C. for 5 minutes, 94 ° C. for 10 seconds, 65 ° C.
  • Example 2 Secondary screening A concentration of 50 ⁇ g / ml human genomic DNA solution (invirogen) was used for the concentration of genomic DNA extracted from the culture solution of MRSA (RIKEN strain JCM 31453) using the High pure PCR template preparation kit (Roche). The solution prepared to have approximately 20 cycles of rise cycles was used as a template. It evaluated by performing PCR by the reaction liquid composition shown in Table 1 about 88 primer pairs.
  • the real-time PCR apparatus used a rotagene Q MDx 5plex HRM (QIAGEN). The reaction conditions for PCR were such that after heating at 95 ° C. for 5 minutes, 94 ° C. for 10 seconds, 65 ° C. for 10 seconds, and 72 ° C. for 30 seconds were repeated 40 times.
  • Example 3 Tertiary screening
  • concentration of genomic DNA extracted from the culture solution of MRSA (RIKEN strain JCM 31453) using the High pure PCR template preparation kit (Roche) was 50 ⁇ g / ml human genomic DNA solution (invitrogen)
  • the solution was adjusted to be 10.4 molecules / reaction solution by using as a template. It evaluated by performing PCR by the triple measurement using reaction liquid composition shown in Table 1 about 57 primer pairs.
  • the real-time PCR apparatus used a rotagene Q MDx 5plex HRM (QIAGEN).
  • the reaction conditions for PCR were such that after heating at 95 ° C. for 5 minutes, 94 ° C. for 10 seconds, 65 ° C. for 10 seconds, 72 ° C. for 30 seconds were repeated 40 times.
  • Example 4 Final screening Genomic DNA extracted from the culture solution of MRSA (RIKEN strain JCM 31453) using the High pure PCR template preparation kit (Roche) at 50 ⁇ g / ml human genomic DNA solution (invirogen) at each concentration ( Copy number / reaction solution: In Table 2, a solution adjusted to be “copies / Reaction” was used as a template. With the reaction liquid composition shown in Table 1 about 9 primer pairs, it evaluated by performing PCR by triple measurement. The real-time PCR apparatus used a rotagene Q MDx 5plex HRM (QIAGEN). The reaction conditions for PCR were such that after heating at 95 ° C. for 5 minutes, 94 ° C. for 10 seconds, 65 ° C.
  • Example 5 Comparison between methicillin resistant strain and methicillin sensitive strain High pure PCR template preparation kit (Roche) from culture solution of Staphylococcus aureus (methicillin sensitive RIKEN strain, JCM2151) and MRSA (methicillin resistant RIKEN strain, JCM16555)
  • the genomic DNA solution extracted using was used as a template. It evaluated by performing PCR by the reaction liquid composition shown in Table 1 about the primer pair of sequence number 6 and sequence number 10.
  • the real-time PCR apparatus used a rotagene Q MDx 5plex HRM (QIAGEN).
  • the reaction conditions for PCR were such that after heating at 95 ° C. for 5 minutes, 94 ° C. for 10 seconds, 65 ° C. for 10 seconds, and 72 ° C.
  • the detection method of the present invention using the primer pair of the present invention can detect a very small amount of mecA gene, which is 10 copies or less in one reaction.
  • the detection method of the present invention has sufficient practicality and wide applicability since it can detect extremely dilute mecA gene in a very small amount of sample with high sensitivity, high accuracy, and quickly.
  • the primer pair, detection method and detection kit of the present invention can be used for detection of trace amount mecA gene in various samples generated in medical field, food field, environmental analysis.

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Sustainable Development (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)

Abstract

感度の高いメチシリン耐性遺伝子検出を実現するためのメチシリン耐性遺伝子検出用のプライマーとして、配列番号３と配列番号７の組み合わせ、配列番号２と配列番号９の組み合わせ、配列番号１と配列番号８の組み合わせ、配列番号１と配列番号９の組み合わせ、配列番号４と配列番号１１の組み合わせ、配列番号５と配列番号１２の組み合わせ、配列番号６と配列番号１０の組み合わせ又は配列番号６と配列番号１２の組み合わせからなるプライマーペアを提供する。

Description

ｍｅｃＡ遺伝子増幅用プライマーペア、ｍｅｃＡ遺伝子検出キット及びｍｅｃＡ遺伝子検出方法
　本発明は、メチシリン耐性の特異的な遺伝要素である、ｍｅｃＡ遺伝子を簡便、迅速かつ高感度に検出するためのプライマーペア、キット及び検出方法に関する。
　メチシリン耐性黄色ブドウ球菌（ｍｅｔｈｉｃｉｌｌｉｎ　ｒｅｓｉｓｔａｎｔ　Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ　ａｕｒｅｕｓ、以下「ＭＲＳＡ」と略称する）は世界中で院内感染の主要な原因菌となっており、多くの国で臨床上最も重要な薬剤耐性菌として重要視されている。ＭＲＳＡのメチシリン耐性に関わる遺伝子であるｍｅｃＡはＰＢＰ（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｎ　Ｂｉｎｄｉｎｇ　Ｐｒｏｔｅｉｎ）－２’をコードしている（ＰＢＰ－２ａとも呼ばれる）。通常、黄色ブドウ球菌は主に４つのＰＢＰを産生する。ＰＢＰは細胞壁のペプチドグリカン合成に関与しているタンパク質であり、トランスペプチダーゼ活性を有している。β－ラクタム系抗生物質はＰＢＰの活性部位に結合しトランスペプチダーゼ活性を阻害、ペプチドグリカン合成を阻害することで作用する。しかし、ＰＢＰ－２’はβ－ラクタム系抗生物質との親和性を低下させることでペプチドグリカン合成阻害効果を回避している（非特許文献１）。
　黄色ブドウ球菌及びコアグラーゼ陰性ブドウ球菌において、メチシリン耐性の有無は感染患者の診断と治療方針の決定において非常に重要な情報である。黄色ブドウ球菌は病原性が強いため、他のコアグラーゼ陰性ブドウ球菌と比較して重要視されているが、メチシリン耐性を獲得した黄色ブドウ球菌及びコアグラーゼ陰性ブドウ球菌についてもコンプロマイズドホストへの感染が大きな問題となっている。そのためメチシリン耐性ブドウ球菌の院内感染への対策として、迅速な診断、治療のためにメチシリン耐性の迅速な検出が望まれてきた。
　メチシリン耐性を試験する方法としては、薬剤感受性試験、イミュノアッセイ、ＰＣＲ（polymerase chain reaction）による検出といった方法が実施されている（非特許文献２）。
　薬剤感受性試験では、患者から採取された血液を一日以上培養しブドウ球菌を増やす必要がある。また、イミュノアッセイもブドウ球菌を培養する工程が必要であるため、メチシリン耐性試験の結果が得られるまでに一日以上を要する。
　これらと比較して、ＰＣＲなどの核酸増幅検査は感度が非常に高いため培養の過程を必要とせず、患者血液から直接試験を行うことが可能である。そのため、患者血液検体が到着後数時間で試験結果を提出することが出来る（特許文献１）。
国際公開第2007/097323号
Journal of Bacteriology, May 1980 p.275 Journal of Clinical Microbiology, July 1992, p.1685
　既にＰＣＲなどの核酸増幅によるメチシリン耐性遺伝子の検出方法は幾つか報告されているが、具体的な検出感度が明記されていない報告が多い。検出感度が明記されていても臨床の現場で使用するに十分な検出感度を達成していないとする報告しかない（非特許文献２）。
　一方で、メチシリン耐性遺伝子の検出は、患者の診断、治療方針に大きく影響するため、迅速に正確かつ確実に検出する方法の開発は臨床上の急務である。そのため本発明では迅速に正確かつ確実にメチシリン耐性遺伝子を検出することを課題とする。特に感度の高いメチシリン耐性遺伝子検出を実現するためのプライマーペアを提供することを課題とする。
　本発明は、核酸増幅法を用いることで患者検体から直接メチシリン耐性遺伝子を迅速に同定するとともに、従来法よりも高い検出感度にて確実に検出する方法である。本発明者は、高感度かつ迅速なメチシリン耐性遺伝子の検出方法の確立を目指して、ＰＣＲ法に着目した。特に高感度にメチシリン耐性遺伝子を検出するためにＰＣＲ法で使用するプライマーの検討を行った。
　プライマーの設計に当たっては以下のような条件とした。
　増幅効率が低下しない範囲で増幅されるＤＮＡ断片のサイズを大きくした。具体的にはＤＮＡ断片のサイズを１５０ｂｐ以上７００ｂｐ以下とした。増幅されるＤＮＡ断片のサイズを大きくすることにより、PCR反応時の増幅曲線の蛍光強度を高くし、Melting analysisで得られるピークのheightについても高くなるようにした。
　ｍｅｃＡホモログの配列を確認し、保存性が高い部分でのみプライマーペアの塩基配列を設計する。具体的には、プライマーの３’末端から５塩基以内に保存性の低い配列を含むものを除外し、塩基配列を修正して保存性の高い配列とした。
　以上のようなコンセプトに基づき、特定のＦｗｄ、及びＲｅｖプライマーをそれぞれ３２本作製し、それらを組み合わせて有望と考えられる３１３のプライマーペアを作製し、その中から最適の組み合わせを検討することで、先願である特許文献１と比較して高い検出感度を達成し得るプライマーペアを選抜した。
　すなわち本発明にかかるプライマーペアは、
　ｍｅｃＡ遺伝子（メチシリン耐性遺伝子）を検出するためのプライマーペアであって、
　前記プライマーペアが、以下の（ａ）～（ｃ）からなる群から選択された１つのプライマーペアであることを特徴とする。
（ａ）配列番号３と配列番号７の組み合わせ、配列番号２と配列番号９の組み合わせ、配列番号１と配列番号８の組み合わせ、配列番号１と配列番号９の組み合わせ、配列番号４と配列番号１１の組み合わせ、配列番号５と配列番号１２の組み合わせ、配列番号６と配列番号１０の組み合わせ又は配列番号６と配列番号１２の組み合わせからなるプライマーペア、
（ｂ）前記（ａ）において、一方又は両方のプライマーの塩基配列の一部をプライマーとしての機能を損なわない範囲で１～２の塩基が付加、欠失または置換したプライマーペア、
（ｃ）前記（ａ）又は（ｂ）の塩基配列に対応する相補的配列からなるプライマーペア。
　本発明にかかるｍｅｃＡ遺伝子検出キットは、上記の（ａ）～（ｃ）からなる群から選択された少なくとも１つのプライマーペアを含むことを特徴とする。
　本発明にかかる検体中のｍｅｃＡの検出方法は、
　検体中から調製したＤＮＡと、ＤＮＡを増幅するためのプライマーペアとを用いてＰＣＲを行うＰＣＲ工程と、
　前記ＰＣＲ工程により得られる増幅産物中でのｍｅｃＡ遺伝子の検出により、または、該増幅産物の分析により、前記検体中におけるｍｅｃＡ遺伝子の検出を行う工程と、
を有し、
　前記ＰＣＲ工程において用いられるプライマーペアが、上記の（ａ）～（ｃ）からなる群から選択された少なくとも一つのプライマーペアである
ことを特徴とする。
　本発明によれば、高感度でのｍｅｃＡ遺伝子検出のためのＰＣＲ用のプライマーペア及びｍｅｃＡ遺伝子検出キット、並びにｍｅｃＡ遺伝子の検出方法を提供することができる。従って、本発明によれば、医療分野、食品分野等における検体中の微量なｍｅｃＡ遺伝子を検出することを従来の検査キットよりも高感度、高精度に実施することができる。
メチシリン耐性株とメチシリン感受性株での測定結果の比較を示す図である。図１（ａ）はメチシリン耐性株からのサンプルを用いた場合の増幅曲線とＴｍ値の測定結果を、図１（ｂ）はメチシリン感受性株からのサンプルを用いた場合の増幅曲線とＴｍ値の測定結果を示す。
　＜プライマー＞
　本発明においてプライマーとは、ＰＣＲ法におけるＤＮＡ複製時に起点となるＤＮＡを指す。本明細書においては、断わりのない限り、プライマーとはＤＮＡプライマーを指す。
　本発明のポイントは、検出感度向上という効果が享受できる特定のプライマーペアにある。
　特許文献１に記載の配列番号４５の塩基配列からなるプライマーと配列番号４６の塩基配列からなるプライマーのペアは、メチシリン耐性遺伝子（ｍｅｃＡ）の構造遺伝子内の配列にハイブリダイズするＤＮＡ配列を有する。なお、特許文献１に記載の配列番号４５の塩基配列及び配列番号４６の塩基配列を、本明細書では、それぞれ配列番号１３及び１４と表記する。
　しかし、上記のプライマーペアでもＰＣＲを用いた検出方法では、十分な検出感度を有しておらず、低濃度のｍｅｃＡを検出することができなかった（後述する実施例５及び表２）。これは低濃度のＭＲＳＡを含む検体を分析した際に、検出感度不足による偽陰性を示す可能性がある。
　ｍｅｃＡ遺伝子の構造遺伝子はおおよそ２１００ｂｐで構成されており、構造遺伝子内にハイブリダイズするように本発明者らにより設計された以下のａ群に含まれる各プライマーペアのそれぞれを用いてＰＣＲを行うことでさらに高感度にｍｅｃＡ遺伝子を検出可能であることが判明した。
（ａ）群：
（ａ１）配列番号３からなるプライマーと、配列番号７からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ａ２）配列番号２からなるプライマーと、配列番号９からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ａ３）配列番号１からなるプライマーと、配列番号８からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ａ４）配列番号１からなるプライマーと、配列番号９からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ａ５）配列番号４からなるプライマーと、配列番号１１からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ａ６）配列番号５からなるプライマーと、配列番号１２からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ａ７）配列番号６からなるプライマーと、配列番号１０からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ａ８）配列番号６からなるプライマーと、配列番号１２からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　本発明の効果を享受できる範囲であれば、上記の各プライマー構成するDNA断片（オリゴヌクレオチド）が有する塩基配列中の一部の塩基を変換して得られる改変塩基配列からなる改変プライマーも適用できる。原則、改変プライマーが、上記の各プライマーの相補ＤＮＡ鎖とハイブリダイズ可能であれば各プライマーと同等とみなされる。更に、この同等とみなされる改変プライマーは、元のプライマーの相補ＤＮＡ鎖とハイブリダイズするプライマーとしての機能を有し、かつ、元のプライマーの塩基配列に置いて１または２つの塩基が付加、欠失または置換した改変塩基配列を有するプライマーであることが好ましい。
　従って、以下の（ｂ）群に含まれるプライマーペアもｍｅｃＡ遺伝子検出用プライマーペアとして利用することができる。
（ｂ）群：
（ｂ１－１）配列番号３の改変塩基配列からなる改変プライマーと、配列番号７からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｂ１－２）配列番号３からなるプライマーと、配列番号７の改変塩基配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｂ１－３）配列番号３の改変塩基配列からなる改変プライマーと、配列番号７の改変塩基配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｂ２－１）配列番号２の改変塩基配列からなる改変プライマーと、配列番号９からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｂ２－２）配列番号２からなるプライマーと、配列番号９の改変塩基配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｂ２－３）配列番号２の改変塩基配列からなる改変プライマーと、配列番号９の改変塩基配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｂ３－１）配列番号１の改変塩基配列からなる改変プライマーと、配列番号８の塩基配列からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｂ３－２）配列番号１からなるプライマーと、配列番号８の改変塩基配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｂ３－３）配列番号１の改変塩基配列からなる改変プライマーと、配列番号８の改変塩基配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｂ４－１）配列番号１の改変塩基配列からなる改変プライマーと、配列番号９からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｂ４－２）配列番号１からなるプライマーと、配列番号９の改変塩基配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｂ４－３）配列番号１の改変塩基配列からなる改変プライマーと、配列番号９の改変塩基配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｂ５－１）配列番号４の改変塩基配列からなる改変プライマーと、配列番号１１からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｂ５－２）配列番号４からなるプライマーと、配列番号１１の改変塩基配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｂ５－３）配列番号４の改変塩基配列からなる改変プライマーと、配列番号１１の改変塩基配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｂ６－１）配列番号５の改変塩基配列からなる改変プライマーと、配列番号１２からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｂ６－２）配列番号５からなるプライマーと、配列番号１２の改変塩基配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｂ６－３）配列番号５の改変塩基配列からなる改変プライマーと、配列番号１２の改変塩基配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｂ７－１）配列番号６の改変塩基配列からなる改変プライマーと、配列番号１０からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｂ７－２）配列番号６からなるプライマーと、配列番号１０の改変塩基配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｂ７－３）配列番号６の改変塩基配列からなる改変プライマーと、配列番号１０の改変塩基配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｂ８－１）配列番号６の改変塩基配列からなる改変プライマーと、配列番号１２からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｂ８－２）配列番号６からなるプライマーと、配列番号１２の改変塩基配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｂ８－３）配列番号６の改変塩基配列からなる改変プライマーと、配列番号１２の改変塩基配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　更に、上記の各プライマーペアを構成するプライマーの相補配列からなる相補プライマーのペアも、ｍｅｃＡ遺伝子検出用プライマーペアとして利用することができる。すなわち、以下の（ｃ）群に含まれるプライマーペアもｍｅｃＡ遺伝子検出用プライマーペアとして利用することができる。
（ｃ）群：
（ｃ１－１）配列番号３の相補配列からなるプライマーと、配列番号７の相補配列からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ１－２）配列番号３の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーと、配列番号７の相補配列からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ１－３）配列番号３の相補配列からなるプライマーと、配列番号７の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ１－４）配列番号３の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーと、配列番号７の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ２－１）配列番号２の相補配列からなるプライマーと、配列番号９の相補配列からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ２－２）配列番号２の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーと、配列番号９の相補配列からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ２－３）配列番号２の相補配列からなるプライマーと、配列番号９の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ２－４）配列番号２の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーと、配列番号９の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ３－１）配列番号１の相補配列からなるプライマーと、配列番号８の相補配列からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ３－２）配列番号１の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーと、配列番号８の塩基配列の相補配列からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ３－３）配列番号１の相補配列からなるプライマーと、配列番号８の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ３－４）配列番号１の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーと、配列番号８の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ４－１）配列番号１の相補配列からなるプライマーと、配列番号９の相補配列からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ４－２）配列番号１の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーと、配列番号９の相補配列からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ４－３）配列番号１の相補配列からなるプライマーと、配列番号９の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ４－４）配列番号１の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーと、配列番号９の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ５－１）配列番号４の相補配列からなるプライマーと、配列番号１１の相補配列からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ５－２）配列番号４の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーと、配列番号１１の相補配列からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ５－３）配列番号４の相補配列からなるプライマーと、配列番号１１の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ５－４）配列番号４の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーと、配列番号１１の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ６－１）配列番号５の相補配列からなるプライマーと、配列番号１２の相補配列からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ６－２）配列番号５の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーと、配列番号１２の相補配列からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ６－３）配列番号５の相補配列からなるプライマーと、配列番号１２の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ６－４）配列番号５の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーと、配列番号１２の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ７－１）配列番号６の相補配列からなるプライマーと、配列番号１０の相補配列からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ７－２）配列番号６の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーと、配列番号１０の相補配列からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ７－３）配列番号６の相補配列からなるプライマーと、配列番号１０の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ７－４）配列番号６の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーと、配列番号１０の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ８－１）配列番号６の相補配列からなるプライマーと、配列番号１２の相補配列からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ８－２）配列番号６の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーと、配列番号１２の相補配列からなるプライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ８－３）配列番号６の相補配列からなるプライマーと、配列番号１２の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
（ｃ８－４）配列番号６の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーと、配列番号１２の改変塩基配列の相補配列からなる改変プライマーの組み合わせからなるプライマーペア。
　これらのプライマーペアの中では、プライマーペア（ａ７）、並びに、プライマーペア（ｂ７－１）～（ｂ７－３）、（ｃ７－１）～（ｃ７－４）のプライマーペアが好ましい。
　なお、上記の（ａ）群～（ｃ）群に含まれる各プライマーペアは、ｍｅｃＡ遺伝子が有する構造遺伝子内に特異的にハイブリダイズしてｍｅｃＡ遺伝子に特異的なＤＮＡ断片を増幅する点において共通の機能を有する。
　本発明のプライマーペアは、種々のプライマーの相当量の組み合わせに基づき効果の有無を確認した上で初めて見出したものであり、単なる効果の追認のレベルではなし得ないものであることを付記する。また、配列検索の結果、ｍｅｃＡ遺伝子検出用プライマーペアとしては新規な組み合わせであることを確認していることを付記する。
　本発明は、本発明のプライマーペア以外に、細菌、真菌、ウイルスについての公知プライマーを複数併用することを妨げるものではない。
　ＰＣＲにおけるＰｒｉｍｅｒ濃度は特に限定されないが、一般的には０．０５μＭ～１．０μＭの範囲で、検討に応じて適宜設定する。
＜ＰＣＲ用の酵素＞
　本発明で使用されるＰＣＲ用の酵素は、好ましくは耐熱性を有する生物由来の耐熱性ＤＮＡポリメラーゼであり、より好ましくはメタン菌、好熱好酸菌、好熱菌、超好熱菌などの原核生物由来のものである。
　本発明に用いられる耐熱性ＤＮＡポリメラーゼの具体例としては、サーマス・アクアティカス（Ｔｈｅｒｍｕｓ　ａｑｕａｔｉｃｕｓ）、サーマス・サーモフィラス（Ｔｈｅｒｍｕｓ　ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ）、バチルス・ステアロサーモフィラス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ　ｓｔｅａｒｏｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ）、サーモコッカス・ゴルゴナリウス（Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ　ｇｏｒｇｏｎａｒｉｕｓ）、サーモコッカス・コダカラエンシスＫＯＤ１（Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ　ｋｏｄａｋａｒａｅｎｓｉｓ　ＫＯＤ１）、パイロコッカス・ウォエセイ（Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ　ｗｏｅｓｅｉ）、パイロコッカス・フリオシス（Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ　ｆｕｒｉｏｓｕｓ）、エアロパイラム・ペルニクス（Ａｅｒｏｐｙｒｕｍ　ｐｅｒｎｉｘ）、アクイフェックス・アエオリカス（Ａｑｕｉｆｅｘ　ａｅｏｌｉｃｕｓ）、スルホロブス・トコダイイ（Ｓｕｌｆｏｌｏｂｕｓ　ｔｏｋｏｄａｉｉ）、パイロロバス・フマリ（Ｐｙｒｏｌｏｂｕｓ　ｆｕｍａｒｉｉ）、またはメタノパイラス・カンドレリ（Ｍｅｔｈａｎｏｐｙｒｕｓ　ｋａｎｄｌｅｒｉ）由来の耐熱性ＤＮＡポリメラーゼを挙げることができる。
　また、耐熱性ＤＮＡポリメラーゼは遺伝子工学的に人工的に合成された耐熱性ＤＮＡポリメラーゼであってもよい。
＜その他試薬＞
　本発明でＰＣＲ分析のために使用されるプライマーペア以外の試薬は、公知のものを公知の組み合わせで使用することが出来る。測定に必要な試薬はＰＣＲ用の酵素、ｐＨ緩衝液、ｄＮＴＰ、Ｍｇ２＋源、滅菌水などがあげられる。また、リアルタイムＰＣＲ分析においては蛍光色素等の標識物質が上記に加えて必要となる。
　ｐＨ緩衝液は、ＰＣＲ分析に供する試料として、ｐＨ＝７．０～１０．０（より好ましくは、ｐＨ８．０～９．０）に調整するために用いられる。具体的には、Ｔｒｉｓ塩酸緩衝液などが挙げられる。例えば、Ｔｒｉｓ塩酸緩衝液の場合、５ｍＭ～１００ｍＭで使用する。
　ｄＮＴＰは、ＰＣＲによるＤＮＡ増幅のためのヌクレオシド源であり、ｄＡＴＰ，ｄＣＴＰ、ｄＧＴＰ、ｄＴＴＰの４種類が必要である。また、ｄＮＴＰはホットスタート法に用いるために化学修飾されたもの、例えばＴｒｉＬｉｎｋ　ＢｉｏＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｉｎｃ．製のＣｌｅａｎＡｍｐＴＭ　ｄＮＴＰを用いても良い。使用量は、ｄＡＴＰ、ｄＣＴＰ、ｄＧＴＰ、ｄＴＴＰを各々０．１～０．２ｍＭ前後の濃度で使用する。
　ＰＣＲによるＤＮＡ増幅においては、Ｍｇ２＋が必要である。Ｍｇ２＋源としてはＭｇＣｌ２、ＭｇＳＯ４などが挙げられる。好ましいのはＭｇＣｌ２であり、その使用量は０．５ｍＭ～５．０ｍＭの範囲で検討に応じて適宜使用する。
　蛍光色素は、リアルタイムＰＣＲによるＤＮＡ増幅産物の検出、さらには、増幅されたＤＮＡ断片のＴｍ値の測定目的で用いられ、例えば、標識機能を有するインターカレーターを用いる方法が挙げられる。インターカレーターとしては、エチジウムブロマイド、サイバー・グリーンＩ（ＳＹＢＲ　ＧｒｅｅｎＩ）やＲｅｓｏｌｉｇｈｔ（Ｒｏｃｈｅ社製）、ＥｖａＧｒｅｅｎ（Ｂｉｏｔｉｕｍ社製）、ＢＯＸＴＯ（ｔａｔａａ　ｂｉｏｃｅｎｔｅｒ製）などが挙げられる。好ましいインターカレーターとしては、ＥｖａＧｒｅｅｎやＲｅｓｏｌｉｇｈｔである。使用量は、使用する蛍光色素の製造販売メーカーの推奨に従う。
　その他キットには、ＰＣＲの陽性対照として使用する細菌のゲノムＤＮＡや、陰性対照として使用する滅菌水が含まれていても良い。
　本発明において用いられるＰＣＲ分析測定用容器（例えば分析測定用チューブ）としては、測定機器に応じた形状や構造を有するものを選択して用いることができる。測定機器の入手先によって推奨されたものを用いれば、特に問題なく測定に用いることができる。
　本発明を実施するに際してその他に必要な器具としては、ピペット、ピペット用チップ、１．５ｍｌマイクロチューブなど広く分子生物学の実験に使用される器具類が挙げられ、装置類としてはＰＣＲ、クリーンベンチ、チューブ用遠心機など広く分子生物学の実験に使用される機器が挙げられる。
＜キットの態様＞
　本発明のｍｅｃＡ遺伝子検出キットは、本発明のプライマーペアによって増幅されるＤＮＡ断片を解析することでｍｅｃＡ遺伝子を検出するキットである。増幅産物としてのＤＮＡ断片の解析は、公知の方法により行うことができる。例えば、ＤＮＡ断片の分子量解析、Ｔｍ値測定（融解曲線分析）などにより、増幅産物としてのＤＮＡ断片の解析を行うことができる。２種以上の解析方法を組み合わせてもよい。好ましくはＴｍ値の測定であり、この目的においてリアルタイムＰＣＲが好適に使用される。分子量の解析は、電気泳動や質量分析計などにより行うことができる。
　本発明にかかるｍｅｃＡ遺伝子検出キットは、上述した（ａ）群～（ｃ）群のプライマーペアの１つ以上を含んで構成される。このプライマーの他に、必要に応じて、ＰＣＲ用の酵素、ｐＨ緩衝液、ＭｇＣｌ２、ｄＮＴＰ(又はＣｌｅａｎＡｍｐＴＭ　ｄＮＴＰ)及び滅菌水等の試薬、ＰＣＲ分析測定用容器（例えば分析測定用チューブ）やその他に必要な器具などの部品から選択される少なくとも１種の試薬及び／または部品を含むことができる。更に、リアルタイムＰＣＲでの解析においては蛍光色素を成分として加えることができる。また、ＰＣＲ法の各種態様によっては、これらの成分の他に用いるＰＣＲ法に必要な成分をキットに加えてもよい。これらの各試薬または各部品は、個別に、またはその一部毎に、あるいは全部が一体など、いかなる形態で包装されていても良い。具体的には、例えば以下のような態様である。
１）用いる試薬毎に個分けする。
２）ｐＨ緩衝液、ＭｇＣｌ２、ｄＮＴＰ（又はＣｌｅａｎＡｍｐＴＭ　ｄＮＴＰ）、リアルタイムＰＣＲでの解析においては蛍光色素を予め混合した混合物、一つのプライマー対及びＰＣＲ用の酵素の３つに個分け、すなわち別々に分けて包装する。
３）ｐＨ緩衝液、ＭｇＣｌ２、ｄＮＴＰ（又はＣｌｅａｎＡｍｐＴＭ　ｄＮＴＰ）、リアルタイムＰＣＲでの解析においては蛍光色素、一つのプライマー対を予め混合した混合物、及びＰＣＲ用の酵素の２つに個分け、すなわち別々に分けて包装する。
４）ｐＨ緩衝液、ＭｇＣｌ２、ｄＮＴＰ（又はＣｌｅａｎＡｍｐＴＭ　ｄＮＴＰ）、リアルタイムＰＣＲでの解析においては蛍光色素、一つのプライマー対及びＰＣＲ用の酵素の全てを予め混合した混合物をパッケージする。
　なお、キットが複数のプライマー対を有する場合は、複数のプライマー対を別々に分けて包装する。異なるプライマー対を含む複数の混合物をキットの構成に用いる場合についても、各混合物を別々に分けて包装する。
＜用途分野・検体＞
　本発明のｍｅｃＡ遺伝子検出キットは、医療分野、食品分野、環境分析等、様々な分野においてｍｅｃＡ遺伝子検出のために使用できる。また、特許文献１にある感染症起因菌の迅速同定方法と組み合わせて使用し、起因菌同定とｍｅｃＡ遺伝子検出を同時かつ迅速に行うために使用できる。
　検査に供される検体としては、特に限定されずに広範囲な検体に適用可能である。具体的には、医療分野において血液、髄液、涙液、眼房水、羊水、関節液、唾液、鼻ぬぐい液、尿、その他体液、カテーテル等医療器具付着物などがあげられる。食品分野においては、食品自体、生産途中の液体、または固体飼料、製造工程内の機器付着物などが挙げられる。
＜ＤＮＡ抽出処理＞
　本発明のｍｅｃＡ遺伝子検出キットを用いて検体中のｍｅｃＡ遺伝子検出を実施する場合、検体中に存在するであろう細菌からあらかじめＤＮＡを抽出しておく必要がある。ＤＮＡ抽出方法としては、現在、アルカリ溶解法、ボイリング法、フェノール抽出法、ビーズ破砕法などが知られており、また、メーカー各社から様々なＤＮＡ抽出キットも販売されている。
　本発明におけるＤＮＡ抽出方法は特に限定されないが、検体により最適な方法は異なるため、対象検体に相応した方法を選択することが望ましい。
　＜ＰＣＲ分析＞
　本発明のプライマーペアは、ＰＣＲ法において使用される。ＰＣＲ法としては、ｍｅｃＡ遺伝子を検出するための目的遺伝子増幅のためのＰＣＲ法であれば種々のＰＣＲ法を利用できる。好ましい分析法としては、リアルタイムＰＣＲであり、より好ましくはリアルタイムＰＣＲとＴｍ値測定のための融解曲線分析の組み合わせである。この場合、使用するリアルタイムＰＣＲ機器は特に限定されない。なお、本願実施例において使用している株式会社キアゲン製Ｒｏｔｏｒ　Ｇｅｎｅ　Ｑは好適に使用可能なリアルタイムＰＣＲ機器の一例である。
　ＰＣＲおよびリアルタイムＰＣＲにおいては、装置、手法など通常知られたものを使用すればよい。
　ＰＣＲにおける温度サイクルの条件（温度、時間、昇降温速度、サイクル数）は特に限定されず、使用するプライマーやＰＣＲ用の酵素、鋳型などの性質やＰＣＲ後のＤＮＡ検出方法の感度に応じて適宜設定すればよい。こうした条件の設定については多くの文献が既に知られている。
　ＰＣＲにおいて、一般的には、鋳型二本鎖ＤＮＡの熱変性ステップ、プライマーのアニーリングステップ、ＰＣＲ用の酵素によるＤＮＡ伸長ステップを繰り返す。熱変性のステップは鋳型二本鎖ＤＮＡが一本鎖に解離する温度と時間であればよく、例えば９０℃～９８℃で数秒～数分を設定する。またＰＣＲ開始時にはその１回目のサイクルにのみ、数分～１０分の熱変性の過程を追加することも多い。プライマーのアニーリングステップはプライマーの塩基配列、塩基数に応じ設定するが、４０℃～７２℃で数秒～数十秒を設定することが多い。ＤＮＡ伸長ステップにおいては、温度についてはＰＣＲ用の酵素の最適温度などの性質に応じ、例えば、５８℃～７６℃が一般的であり、ＤＮＡ伸長ステップの時間については増幅させたいＤＮＡの鎖長とＰＣＲ用の酵素のＤＮＡ合成速度から必要時間を概算し設定する。熱変性、アニーリング、伸長のステップを繰り返すことで目的のＤＮＡを増幅させるが、この繰り返し回数は、鋳型ＤＮＡの量や、ＰＣＲ用の酵素の量、ＰＣＲ後のＤＮＡ検出方法の感度に応じて、適宜変更すればよいが、一般的な例として１０～５０回が例示される。また、アニーリングの温度とＤＮＡ伸長の温度が同程度である場合、両ステップを同時に行うことも可能である。
　リアルタイムＰＣＲにおいても、ＤＮＡ増幅に必要な熱変性、アニーリング、ＤＮＡ伸長についての条件設定、さらにはそれらのステップの繰り返し回数は、上記のＰＣＲについての記載と同様である。リアルタイムＰＣＲにおいては、ＤＮＡ伸長のステップの前後などに、インターカレーターに由来する蛍光強度を測定することで増幅されたＤＮＡ量を定量ないしは見積もることが可能である。蛍光強度を測定する温度は、例えばインターカレーターを用いての実施の場合は、ＤＮＡ伸長時の温度そのままでも良く、また、増幅される目的ＤＮＡの鎖長が比較的長く、そのＴｍ値が比較的高い場合には、プライマーダイマーなどの比較的鎖長が短い非特異的に増幅された目的外ＤＮＡ（非特異的増幅ＤＮＡともいう）はそのＴｍ値が比較的低いことを利用して、目的ＤＮＡのＴｍ値と非特異的増幅ＤＮＡのＴｍ値の中間値をはじめとする、これらの間の温度に設定しても良い。こうすることで、特にインターカレーターを用いての実施ではプライマーダイマーなどの非特異的増幅ＤＮＡのみが二本鎖から一本鎖に解離し、蛍光強度から定量ないしは見積もられるＤＮＡ量は目的ＤＮＡについてのものとすることが可能である。
　さらに、リアルタイムＰＣＲにおいてはＤＮＡ増幅工程の終了後、融解曲線解析により、増幅されたＤＮＡのＴｍ値を測定できる。融解曲線分析では、温度変化に応じたＤＮＡの二本鎖から一本鎖への解離を観察するが、その温度および検出条件は特に限定はない。一般的に、熱変性（Ｄｅｎａｔｕｒａｔｉｏｎ）（９０℃から９８℃）、二本鎖形成（Ａｎｎｅａｌｉｎｇ）（４０℃から８０℃）、融解（Ｍｅｌｔｉｎｇ）（二本鎖形成の温度から９８℃前後まで徐々に昇温）の段階をへて、融解のステップでの蛍光強度の変化をモニターすることで、融解曲線を得て、そこからＴｍ値を得ることができる。こうした測定はリアルタイムＰＣＲ装置の多くの機種で可能であり、機器の使用方法に準じて実施可能である。
　＜検出方法＞
　本発明にかかる検体中のｍｅｃＡ遺伝子検出方法としては、以下の工程を有する方法を用いることができる。
（１）前記検体から調製した細菌のゲノムＤＮＡと、ｍｅｃＡ遺伝子を含む増幅産物を得るためのプライマーペアと、耐熱性ＤＮＡポリメラーゼをはじめとするＰＣＲ用試薬を用いてＰＣＲを行う工程。
（２）前記ＰＣＲにおける増幅産物中でのｍｅｃＡ遺伝子の検出、または、該増幅産物の分析により、前記検体中におけるｍｅｃＡ遺伝子の検出を行う工程。
　なお、複数のプライマーペアを用いる場合は、ＰＣＲ工程（１）を複数のプライマーペア毎に別々に行う。すなわち、PCR用の１つの反応液中に１つのプライマーペアを添加して、異なるプライマーペアを添加した複数の反応液をそれぞれ個々に用いてPCR工程（１）を行う。
　ｍｅｃＡ遺伝子を含む増幅産物を得るためのプライマーペアとして本発明にかかるプライマーペアの少なくとも１種を用いることによって、高感度なメチシリン耐性遺伝子（ｍｅｃＡ）の検出を行うことができる。
　この検出方法では、増幅工程を、目的遺伝子としてのｍｅｃＡ遺伝子以外の遺伝子（目的外遺伝子）の増幅抑制下で行うことが好ましい。この目的外遺伝子の増幅抑制には、ホットスタート法ＰＣＲが利用できる。一例として、抗ＤＮＡポリメラーゼ抗体を用いるホットスタート法が挙げられる。その際、耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ１Ｕに対して、過剰量の抗ＤＮＡポリメラーゼ抗体を用いることが好ましい。また、特許文献１及び国際公開第２０１０／０８２６４０号明細書に開示されているようにＤＮＡポリメラーゼに対して、可逆的な化学修飾を施すことによるホットスタート法も好適に利用できる。さらには、化学修飾されたｄＮＴＰを用いたり、米国特許出願公開第20070281308号明細書（US2007/0281308A1）に記載のように化学修飾されたプライマーを用いたホットスタート法も好適に利用できる。また、加熱により溶融するワックスなどを用いて、ＤＮＡポリメラーゼと、ＤＮＡポリメラーゼによるＤＮＡ増幅に必要不可欠な構成成分（例えば、プライマーやｄＮＴＰやＭｇ２＋塩）とを物理的に隔離することによるホットスタート法も好適に利用できる。
　増幅産物の検出工程における増幅産物中での目的遺伝子の検出は、検出用の蛍光標識を有するインターカレーターを用いたリアルタイムＰＣＲによりＴｍ値を測定することで実施可能である。好ましいインターカレーターはサイバー・グリーンＩ、ＥｖａＧｒｅｅｎ、ＲｅｓｏｌｉｇｈｔやＢＯＸＴＯ、より好ましくはＥｖａＧｒｅｅｎやＲｅｓｏｌｉｇｈｔである。
　リアルタイムＰＣＲを用いたＴｍ値測定による検出工程では、目的遺伝子の増幅産物を検出可能とし、それ以外の目的外遺伝子の増幅産物は非検出として行うことができる。そのための方法としては、目的遺伝子の増幅産物を検出可能とし、それ以外の目的外遺伝子の増幅産物を非検出とする条件を、
（１）目的遺伝子増幅産物の融解温度（ＴｍＡ）が、目的外遺伝子の増幅産物の融解温度（ＴｍＢ）よりも高くなるプライマーを選択し、
（２）増幅産物の検出を、ＴｍＡとＴｍＢとの間の温度で行う
ことにより設定し、目的遺伝子の増幅産物のみを検出する方法が好ましい。
　更に、増幅工程と検出工程を、増幅産物の量を表示する表示装置を用いるリアルタイムＰＣＲにより行い、目的外遺伝子の増幅産物が前記表示装置において非表示となる方法を用いることができる。
　検出工程における増幅産物の分析は、増幅産物をゲル上などでの電気泳動により展開、可視化する増幅産物の解析により行うことができる。また、増幅産物の分析は、増幅産物の塩基配列を解読することによる増幅産物の解析により行うことも可能である。さらに、増幅産物の分析は増幅産物の分子量を質量分析計で測定して解析する方法によって行うことにもできる。
（実施例１）１次スクリーニング
　ＭＲＳＡ（理研分譲株，ＪＣＭ３１４５３）の培養液からＨｉｇｈ　ｐｕｒｅ　ＰＣＲ　ｔｅｍｐｌａｔｅ　ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ　ｋｉｔ　（Ｒｏｃｈｅ）を使って抽出したゲノムＤＮＡを鋳型に配列番号１５と配列番号１６のプライマーを用いて表１に示した反応液組成でＰＣＲを行いｍｅｃＡ　ＯＲＦ全長を増幅した。次に、ｍｅｃＡの増幅産物の希釈系列を作製し、配列番号１３からなるフォワードプライマーと配列番号１４からなるリバースプライマーからなる比較用プライマーペアを用いて表１に示した反応液組成でＰＣＲを行い、立ち上がりサイクル数がおおよそ２０サイクルになるｍｅｃＡの増幅産物の濃度を決定し、鋳型として用いた。なお、メチシリン耐性Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ　ａｕｒｅｕｓ，ＪＣＭ３１４５３は微生物材料開発室（〒３０５－００７４、茨城県つくば市高野台３－１－１、　国立研究開発法人　理化学研究所　バイオリソースセンター　微生物材料開発室（ＲＩＫＥＮ　ＢＲＣ－ＪＣＭ）より公的に入手可能である。
　次に、作製したプライマーの評価を行うために、３１３のプライマーペアについて表１に示した反応液組成でＰＣＲをおこなった。リアルタイムＰＣＲ装置はロータージーンＱ　ＭＤｘ　５ｐｌｅｘ　ＨＲＭ（ＱＩＡＧＥＮ）を用いた。ＰＣＲの反応条件は、９５℃　５分間加熱した後に、９４℃　１０秒、６５℃　１０秒、７２℃　３０秒を４０回繰り返した。評価は、立ち上がりサイクル数、Ｈｉｇｈ　ｒｅｓｏｌｕｔｉｏｎ　ｍｅｌｔｉｎｇ　ａｎａｌｙｓｉｓ（ＨＲＭ）でのピークの形状、電気泳動でのバンドの強度、電気泳動での非特異的産物の有無について、比較用プライマーペアでの結果と比較し改善が認められるもの、８８ペアを選抜した。
（実施例２）２次スクリーニング
　ＭＲＳＡ（理研分譲株，ＪＣＭ３１４５３）の培養液からＨｉｇｈ　ｐｕｒｅ　ＰＣＲ　ｔｅｍｐｌａｔｅ　ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ　ｋｉｔ　（Ｒｏｃｈｅ）を使って抽出したゲノムＤＮＡの濃度を、５０μｇ／ｍｌ　ｈｕｍａｎ　ｇｅｎｏｍｉｃ　ＤＮＡ溶液（ｉｎｖｉｒｏｇｅｎ）で立ち上がりサイクル数がおおよそ２０サイクルになるよう調整した溶液を鋳型として用いた。
　８８のプライマーペアについて表１に示した反応液組成でＰＣＲを行うことで評価した。リアルタイムＰＣＲ装置はロータージーンＱ　ＭＤｘ　５ｐｌｅｘ　ＨＲＭ（ＱＩＡＧＥＮ）を用いた。ＰＣＲの反応条件は、９５℃　５分間加熱した後に、９４℃　１０秒、６５℃　１０秒、７２℃　３０秒を４０回繰り返した。評価は、立ち上がりサイクル数、ＨＲＭでのピークの形状、電気泳動でのバンドの強度、電気泳動での非特異的産物の有無について、比較用プライマーペアでの結果と比較し改善が認められた５７ペアを選抜した。
（実施例３）３次スクリーニング
　ＭＲＳＡ（理研分譲株，ＪＣＭ３１４５３）の培養液からＨｉｇｈ　ｐｕｒｅ　ＰＣＲ　ｔｅｍｐｌａｔｅ　ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ　ｋｉｔ　（Ｒｏｃｈｅ）を使って抽出したゲノムＤＮＡの濃度を、５０μｇ／ｍｌ　ｈｕｍａｎ　ｇｅｎｏｍｉｃ　ＤＮＡ溶液（ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）で１０．４分子／反応液になるよう調整した溶液を鋳型として用いた。５７のプライマーペアについて表１に示した反応液組成を用いた３重測定でＰＣＲを行うことで評価した。リアルタイムＰＣＲ装置はロータージーンＱ　ＭＤｘ　５ｐｌｅｘ　ＨＲＭ（ＱＩＡＧＥＮ）を用いた。ＰＣＲの反応条件は、９５℃　５分間加熱した後に、９４℃　１０秒、６５℃　１０秒、７２℃　３０秒を４０回繰り返した。評価は、３重測定の全てで増幅が見られるか、ＨＲＭでのｄＦ／ｄＴのＨｅｉｇｈｔ（ｃｈａｎｎｅｌＡ）、プライマーダイマーの有無、非特異的産物のピークの有無について、比較用プライマーペアでの結果と比較し改善が認められた９ペアを選抜した。
（実施例４）最終スクリーニング
　ＭＲＳＡ（理研分譲株，ＪＣＭ３１４５３）の培養液からＨｉｇｈ　ｐｕｒｅ　ＰＣＲ　ｔｅｍｐｌａｔｅ　ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ　ｋｉｔ　（Ｒｏｃｈｅ）を使って抽出したゲノムＤＮＡを５０μｇ／ｍｌ　ｈｕｍａｎ　ｇｅｎｏｍｉｃ　ＤＮＡ溶液（ｉｎｖｉｒｏｇｅｎ）で各濃度（コピー数／反応液：表２ではCopies/Reactionと表示）になるよう調整した溶液を鋳型として用いた。９のプライマーペアについて表１に示した反応液組成で、３重測定でＰＣＲを行うことで評価した。リアルタイムＰＣＲ装置はロータージーンＱ　ＭＤｘ　５ｐｌｅｘ　ＨＲＭ（ＱＩＡＧＥＮ）を用いた。ＰＣＲの反応条件は、９５℃　５分間加熱した後に、９４℃　１０秒、６５℃　１０秒、７２℃　３０秒を４０回繰り返した。３重測定の全てで増幅が見られる最低濃度を検出限界とした。なお、目的とする増幅産物が得られたかどうかはＴｍ値の測定により確認した。
　その結果、先願である特許文献１で示された比較用プライマーペアを用いて検出を行った場合よりも検出限界の向上が見られた８ペアを選抜した。その結果を表２に示す。また、比較用のプライマーペアが有する配列番号１３、１４、選抜された８ペアが有する各塩基配列を表３に示す。
（実施例５）メチシリン耐性株、メチシリン感受性株での比較
　Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ　ａｕｒｅｕｓ（メチシリン感受性　理研分譲株，ＪＣＭ２１５１）及びＭＲＳＡ（メチシリン耐性　理研分譲株，ＪＣＭ１６５５５）の培養液からＨｉｇｈ　ｐｕｒｅ　ＰＣＲ　ｔｅｍｐｌａｔｅ　ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ　ｋｉｔ　（Ｒｏｃｈｅ）を使って抽出したゲノムＤＮＡ溶液を鋳型として用いた。配列番号６と配列番号１０のプライマーペアについて表１に示した反応液組成で、ＰＣＲを行うことで評価した。リアルタイムＰＣＲ装置はロータージーンＱ　ＭＤｘ　５ｐｌｅｘ　ＨＲＭ（ＱＩＡＧＥＮ）を用いた。ＰＣＲの反応条件は、９５℃　５分間加熱した後に、９４℃　１０秒、６５℃　１０秒、７２℃　３０秒を４０回繰り返した。なお、目的とする増幅産物が得られたかどうかはＴｍ値の測定により、８１℃付近でのピークの有無にて確認した。メチシリン耐性株の結果を図１（ａ）に、メチシリン感受性株の結果を図１（ｂ）に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
  
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
  
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
  
　表２に記載の試験結果から、本発明のプライマーペアを用いる本発明の検出方法は、１反応中１０コピー以下という極めて微量なｍｅｃＡ遺伝子を検出可能であることがわかった。本発明の検出方法は、極少量の検体中の極めて希薄なｍｅｃＡ遺伝子を高感度、高精度、かつ迅速に検出可能であることから、十分な実用性と広い応用性を備えている。本発明のプライマーペア、検出方法及び検出キットは、医療分野、食品分野、環境分析において生じる、様々な検体中の微量のｍｅｃＡ遺伝子の検出に利用することが可能である。

Claims (7)

  1. 　ｍｅｃＡ遺伝子（メチシリン耐性遺伝子）を検出するためのプライマーペアであって、
    　前記プライマーペアが、以下の（ａ）～（ｃ）からなる群から選択された１つのプライマーペアであることを特徴とするｍｅｃＡ遺伝子を検出するためのプライマーペア。
    （ａ）配列番号３と配列番号７の組み合わせ、配列番号２と配列番号９の組み合わせ、配列番号１と配列番号８の組み合わせ、配列番号１と配列番号９の組み合わせ、配列番号４と配列番号１１の組み合わせ、配列番号５と配列番号１２の組み合わせ、配列番号６と配列番号１０の組み合わせ又は配列番号６と配列番号１２の組み合わせからなるプライマーペア、
    （ｂ）前記（ａ）において、一方又は両方のプライマーの塩基配列の一部をプライマーとしての機能を損なわない範囲で１または２の塩基が付加、欠失または置換したプライマーペア、
    （ｃ）前記（ａ）又は（ｂ）の塩基配列に対応する相補的配列からなるプライマーペア。
  2. 　前記プライマーペアが、配列番号６と配列番号１０の組み合わせからなるプライマーペア、または当該組み合わせの一方又は両方のプライマーの塩基配列の一部をプライマーとしての機能を損なわない範囲で１または２の塩基が付加、欠失または置換したプライマーペアである、請求項１に記載のプライマーペア。
  3. 　プライマーペアを含む、ｍｅｃＡ遺伝子検出キットであって、
    　前記プライマーペアが、以下の（ａ）～（ｃ）からなる群から選択されたすくなくとも１つのプライマーペアであることを特徴とするｍｅｃＡ遺伝子検出キット。
    （ａ）配列番号３と配列番号７の組み合わせ、配列番号２と配列番号９の組み合わせ、配列番号１と配列番号８の組み合わせ、配列番号１と配列番号９の組み合わせ、配列番号４と配列番号１１の組み合わせ、配列番号５と配列番号１２の組み合わせ、配列番号６と配列番号１０の組み合わせ又は配列番号６と配列番号１２の組み合わせからなるプライマーペア、
    （ｂ）前記（ａ）において、一方又は両方のプライマーの塩基配列の一部をプライマーとしての機能を損なわない範囲で１または２の塩基が付加、欠失または置換したプライマーペア、
    （ｃ）前記（ａ）又は（ｂ）の塩基配列に対応する相補的配列からなるプライマーペア。
  4. 　前記プライマーペアが、配列番号６と配列番号１０の組み合わせからなるプライマーペア、または当該組み合わせの一方又は両方のプライマーの塩基配列の一部をプライマーとしての機能を損なわない範囲で１または２の塩基が付加、欠失または置換したプライマーペアである、請求項３に記載のキット。
  5. 　ＰＣＲ用の酵素、ＰＣＲ用の試薬及びＰＣＲ用の器具の少なくとも１種を含む、請求項３または４に記載のキット。
  6. 　検体中のｍｅｃＡの検出方法であって、
    　検体中から調製したＤＮＡと、ＤＮＡを増幅するためのプライマーペアとを用いてＰＣＲを行うＰＣＲ工程と、
    　前記ＰＣＲ工程により得られる増幅産物中でのｍｅｃＡ遺伝子の検出により、または、該増幅産物の分析により、前記検体中におけるｍｅｃＡ遺伝子の検出を行う工程と、
    を有し、
    　前記ＰＣＲ工程において用いられるプライマーペアが、以下の（ａ）～（ｃ）からなる群から選択されたすくなくとも１つのプライマーペアであることを特徴とするｍｅｃＡ遺伝子の検出方法。
    （ａ）配列番号３と配列番号７の組み合わせ、配列番号２と配列番号９の組み合わせ、配列番号１と配列番号８の組み合わせ、配列番号１と配列番号９の組み合わせ、配列番号４と配列番号１１の組み合わせ、配列番号５と配列番号１２の組み合わせ、配列番号６と配列番号１０の組み合わせ又は配列番号６と配列番号１２の組み合わせからなるプライマーペア、
    （ｂ）前記（ａ）において、一方又は両方のプライマーの塩基配列の一部をプライマーとしての機能を損なわない範囲で１または２の塩基が付加、欠失または置換したプライマーペア、
    （ｃ）前記（ａ）又は（ｂ）の塩基配列に対応する相補的配列からなるプライマーペア。
  7. 　前記プライマーペアが、配列番号６と配列番号１０の組み合わせからなるプライマーペア、または当該組み合わせの一方又は両方のプライマーの塩基配列の一部をプライマーとしての機能を損なわない範囲で１または２の塩基が付加、欠失または置換したプライマーペアである、請求項６に記載の検出方法。
PCT/JP2018/038072 2017-10-12 2018-10-12 ｍｅｃＡ遺伝子増幅用プライマーペア、ｍｅｃＡ遺伝子検出キット及びｍｅｃＡ遺伝子検出方法 WO2019074091A1 (ja)

Priority Applications (13)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202311819280.4A CN117721228A (zh) 2017-10-12 2018-10-12 mecA基因扩增用引物对、mecA基因检测试剂盒及mecA基因检测方法
KR1020207010172A KR20200046106A (ko) 2017-10-12 2018-10-12 mecA 유전자 증폭용 프라이머 페어, mecA 유전자 검출 키트 및 mecA 유전자 검출 방법
JP2019548253A JP7199367B2 (ja) 2017-10-12 2018-10-12 ｍｅｃＡ遺伝子増幅用プライマーペア、ｍｅｃＡ遺伝子検出キット及びｍｅｃＡ遺伝子検出方法
US16/755,004 US20200308628A1 (en) 2017-10-12 2018-10-12 mecA GENE AMPLIFICATION PRIMER PAIR, mecA GENE DETECTION KIT AND mecA GENE DETECTION METHOD
CN201880065280.0A CN111183223A (zh) 2017-10-12 2018-10-12 mecA基因扩增用引物对、mecA基因检测试剂盒及mecA基因检测方法
AU2018350052A AU2018350052B2 (en) 2017-10-12 2018-10-12 Meca gene amplification primer pair, meca gene detection kit and meca gene detection method
EP18866008.8A EP3696268A4 (en) 2017-10-12 2018-10-12 PAIR OF mecA GENE AMPLIFICATION PRIMERS, mecA GENE DETECTION KIT AND mecA GENE DETECTION PROCESS
KR1020237028882A KR20230128154A (ko) 2017-10-12 2018-10-12 mecA 유전자 증폭용 프라이머 페어, mecA 유전자 검출 키트 및 mecA 유전자 검출 방법
SG11202002860VA SG11202002860VA (en) 2017-10-12 2018-10-12 mecA GENE AMPLIFICATION PRIMER PAIR, mecA GENE DETECTION KIT AND mecA GENE DETECTION METHOD
KR1020217034705A KR102593021B1 (ko) 2017-10-12 2018-10-12 mecA 유전자 증폭용 프라이머 페어, mecA 유전자 검출 키트 및 mecA 유전자 검출 방법
PH12020550254A PH12020550254A1 (en) 2017-10-12 2020-04-10 Meca gene amplification primer pair, meca gene detection kit and meca gene detection method
JP2021178657A JP2022025117A (ja) 2017-10-12 2021-11-01 ｍｅｃＡ遺伝子増幅用プライマーペア、ｍｅｃＡ遺伝子検出キット及びｍｅｃＡ遺伝子検出方法
US18/053,785 US20230242978A1 (en) 2017-10-12 2022-11-09 mecA GENE AMPLIFICATION PRIMER PAIR, mecA GENE DETECTION KIT AND mecA GENE DETECTION METHOD

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2017-198576 2017-10-12
JP2017198576 2017-10-12

Related Child Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
US16/755,004 A-371-Of-International US20200308628A1 (en) 2017-10-12 2018-10-12 mecA GENE AMPLIFICATION PRIMER PAIR, mecA GENE DETECTION KIT AND mecA GENE DETECTION METHOD
US18/053,785 Division US20230242978A1 (en) 2017-10-12 2022-11-09 mecA GENE AMPLIFICATION PRIMER PAIR, mecA GENE DETECTION KIT AND mecA GENE DETECTION METHOD

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2019074091A1 true WO2019074091A1 (ja) 2019-04-18

Family

ID=66100676

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/JP2018/038072 WO2019074091A1 (ja) 2017-10-12 2018-10-12 ｍｅｃＡ遺伝子増幅用プライマーペア、ｍｅｃＡ遺伝子検出キット及びｍｅｃＡ遺伝子検出方法

Country Status (9)

Country Link
US (2) US20200308628A1 (ja)
EP (1) EP3696268A4 (ja)
JP (2) JP7199367B2 (ja)
KR (3) KR20230128154A (ja)
CN (2) CN111183223A (ja)
AU (1) AU2018350052B2 (ja)
PH (1) PH12020550254A1 (ja)
SG (1) SG11202002860VA (ja)
WO (1) WO2019074091A1 (ja)

Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1999016780A2 (en) * 1997-09-26 1999-04-08 Universite Catholique De Louvain Genetic sequences, diagnostic and/or quantification methods for the identification of staphylococci strains
JP2001353000A (ja) * 2000-06-09 2001-12-25 Tosoh Corp メシチリン耐性黄色ブドウ球菌のｍｅｃＡ遺伝子の検出法
JP2004534537A (ja) * 2001-06-04 2004-11-18 インフェクティオ ダイアグノスティク（アイ．ディー．アイ．）インコーポレイティド メチシリン耐性黄色ブドウ球菌の検出と同定のための配列
JP2007143495A (ja) * 2005-11-29 2007-06-14 Tosoh Corp 試料中の被破砕物の破砕方法
WO2007097323A1 (ja) 2006-02-21 2007-08-30 National University Corporation University Of Toyama 感染症起因菌の迅速同定方法
US20070281308A1 (en) 2006-06-01 2007-12-06 Gerald Zon Chemically modified oligonucleotide primers for nucleic acid amplification
WO2010082640A1 (ja) 2009-01-15 2010-07-22 北海道三井化学株式会社 耐熱性dnaポリメラーゼを含む酵素調製物およびその製造方法、並びに検出対象生物の検出方法
CN103421906A (zh) * 2013-08-23 2013-12-04 中国检验检疫科学研究院 检测金黄色葡萄球菌耐药性的组合物和方法

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7122364B1 (en) * 1998-03-24 2006-10-17 Third Wave Technologies, Inc. FEN endonucleases
US20070031850A1 (en) * 2003-06-05 2007-02-08 Mounts William M Nucleic acid arrays for detecting multiple strains of a non-viral species
RU2526497C2 (ru) * 2012-10-31 2014-08-20 Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова" Министерства здравоохарнения и социального развития Российской Федерации Способ определения генотипов золотистого стафилококка

Patent Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1999016780A2 (en) * 1997-09-26 1999-04-08 Universite Catholique De Louvain Genetic sequences, diagnostic and/or quantification methods for the identification of staphylococci strains
JP2001353000A (ja) * 2000-06-09 2001-12-25 Tosoh Corp メシチリン耐性黄色ブドウ球菌のｍｅｃＡ遺伝子の検出法
JP2004534537A (ja) * 2001-06-04 2004-11-18 インフェクティオ ダイアグノスティク（アイ．ディー．アイ．）インコーポレイティド メチシリン耐性黄色ブドウ球菌の検出と同定のための配列
JP2007143495A (ja) * 2005-11-29 2007-06-14 Tosoh Corp 試料中の被破砕物の破砕方法
WO2007097323A1 (ja) 2006-02-21 2007-08-30 National University Corporation University Of Toyama 感染症起因菌の迅速同定方法
US20070281308A1 (en) 2006-06-01 2007-12-06 Gerald Zon Chemically modified oligonucleotide primers for nucleic acid amplification
WO2010082640A1 (ja) 2009-01-15 2010-07-22 北海道三井化学株式会社 耐熱性dnaポリメラーゼを含む酵素調製物およびその製造方法、並びに検出対象生物の検出方法
CN103421906A (zh) * 2013-08-23 2013-12-04 中国检验检疫科学研究院 检测金黄色葡萄球菌耐药性的组合物和方法

Non-Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
JOURNAL OF BACTERIOLOGY, May 1980 (1980-05-01), pages 275
JOURNAL OF CLINICAL MICROBIOLOGY, July 1992 (1992-07-01)
KONDO, Y. ET AL.: "Combination of multiplex PCRs for Staphylococcal cassette chromosome mec type assignment: rapid identification system for mec, ccr, and major differences in junkyard regions", ANTIMICROB. AGENTS CHEMOTHER., vol. 51, no. 1, 2007, pages 264 - 274, XP055593370, ISSN: 0066-4804, DOI: 10.1128/AAC.00165-06 *
PISHVA, E. ET AL.: "Detection of methicillin- resistance gene in Staphylococcus epidermidis strains isolated from patients in Al-Zahra Hospital using polymerase chain reaction and minimum inhibitory concentration methods", ADV. BIOMED. RES., vol. 2, no. 1, 2013, pages 1 - 9, XP055593384 *
SADAKA, S. M. ET AL.: "Evaluation of different methods for the rapid diagnosis of methicillin- resistance in Staphylococcus aureus", AFRICAN J. MICROBIOL. RES., vol. 3, no. 2, 2009, pages 049 - 055, XP055593378 *
WONGBOOT, W. ET AL.: "Multiplex PCR for detection of superantigenic toxin genes in methicillin- sensitive and methicillin-resistant Staphylococcus aureus isolated from patients and carriers of a hospital in Northeast Thailand", SOUTHEAST ASIAN J. TROP. MED. PUBLIC HEALTH, vol. 44, no. 4, 2013, pages 660 - 671, XP055593387 *

Also Published As

Publication number Publication date
PH12020550254A1 (en) 2021-03-01
AU2018350052A1 (en) 2020-04-23
AU2018350052B2 (en) 2022-06-02
US20200308628A1 (en) 2020-10-01
JPWO2019074091A1 (ja) 2020-04-16
EP3696268A4 (en) 2021-06-30
CN111183223A (zh) 2020-05-19
CN117721228A (zh) 2024-03-19
JP2022025117A (ja) 2022-02-09
EP3696268A1 (en) 2020-08-19
JP7199367B2 (ja) 2023-01-05
KR20200046106A (ko) 2020-05-06
KR20230128154A (ko) 2023-09-01
SG11202002860VA (en) 2020-04-29
KR102593021B1 (ko) 2023-10-31
KR20210134421A (ko) 2021-11-09
US20230242978A1 (en) 2023-08-03

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Pestana et al. Early, rapid and sensitive veterinary molecular diagnostics-real time PCR applications
JP6603956B2 (ja) ポリメラーゼ活性を指標として非精製サンプル中の微生物の存在を検出する方法
Kurupati et al. Rapid detection of Klebsiella pneumoniae from blood culture bottles by real-time PCR
JP2013520186A (ja) 緑膿菌の血清型決定のためのアッセイ法およびキット、ならびにそのような方法およびキットにおいて有用なオリゴヌクレオチド配列
JP2013537399A5 (ja)
JP2013048620A (ja) メチシリン耐性黄色ブドウ球菌を検出するためのプライマーおよびプローブ、ならびに、それらを用いたメチシリン耐性黄色ブドウ球菌の検出方法
TW201247878A (en) Method, composition and system for amplifying and detecting target microorganism DNA
JP5286997B2 (ja) 抗酸菌属細菌の検出用オリゴヌクレオチドおよびその用途
JP2011155855A (ja) 内部コントロール組成物
JP7199367B2 (ja) ｍｅｃＡ遺伝子増幅用プライマーペア、ｍｅｃＡ遺伝子検出キット及びｍｅｃＡ遺伝子検出方法
JP2015513921A (ja) 任意のポリメラーゼ伸長活性の高感度定量的測定と生細胞存在の決定とに有用なポリメラーゼ活性測定方法
JP5626399B2 (ja) 抗酸菌属細菌の検出用オリゴヌクレオチドおよびその用途
Virolainen Detection of 16S ribosomal RNA in clinical samples
Point 16.1 Polymerase chain reaction (PCR)
JP2009039104A (ja) 抗酸菌属細菌の検出用オリゴヌクレオチドおよびその用途
IE20090470U1 (en) LepA/Guf1 gene sequences as a diagnostic target for the identification of bacterial species.

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 18866008

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2019548253

Country of ref document: JP

Kind code of ref document: A

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 20207010172

Country of ref document: KR

Kind code of ref document: A

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2018350052

Country of ref document: AU

Date of ref document: 20181012

Kind code of ref document: A

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2018866008

Country of ref document: EP

Effective date: 20200512