JP2013537399A5

JP2013537399A5 -

Info

Publication number: JP2013537399A5
Application number: JP2013505162A
Authority: JP
Filing date: 2011-04-15
Publication date: 2016-03-10

Description

ポリメラーゼ活性を指標として非精製サンプル中の微生物の存在を検出する方法

関連出願に対する相互参照
本出願は非仮出願であり、部分的に、２０１０年４月１６日に出願された米国仮出願番号第６１／３２４，９３９号、２０１０年４月１６日に出願された米国仮出願番号第６１／３２４，９４９号および２０１０年４月１９日に出願された米国仮出願番号第６１／３２５，４１３号を出典明示により包含させ、これらの優先権の利益を主張する。

技術分野
本発明は、一般的に、微生物の検出の分野、さらに特に細菌の検出に関する。また、本発明により、細菌生存能力の指標としてリガーゼおよび／またはホスファターゼの存在に依存する、高感度で、非精製サンプルに適用することができ、多数の用途を有する改善された微生物検出方法が、アッセイキットと共に提供される。

発明の背景
細胞生存能力と関連する特定の分子の存在およびレベルを測定することは、多くの情況において重要である。例えば、ＡＴＰのレベルを測定することは、増殖分析および毒物学的目的のために哺乳動物細胞において有用である。

培養アプローチは、少数の細菌を検出するために使用することができるが、このような技術は、とりわけ少数の細菌を検出しようと試みるとき、およびまた、ゆっくりと増殖する微生物を検出するときに、完了するまでに数日必要である。

別法では、汚染細胞または生物体のサンプル中の存在と関連し得る分子の存在を測定することに基づいた試験を行ってもよい。最も一般的に検出される分子は、アデノシン三リン酸（ＡＴＰ）である。ＤＮＡおよびＲＮＡの検出もまた提案されているが、ＤＮＡおよびＲＮＡの存在と生存能力との間の相関関係は、死後の細胞中での核酸の変化しやすい残留量(variable persistence)のために明確でない（Keer & Birch, Journal of Microbiological Methods 53 (2003) 175-183）。生存能力の指標としてのアデニル酸キナーゼの検出もまた、提案されている（Squirrell DJ, Murphy MJ, Leslie RL, Green JCD: A comparison of ATP and adenylate kinase as bacterial cell markers: correlation with agar plate counts, in Bioluminescence and Chemiluminescence Progress and Current Application: Stanley RA, Kricka LJ. John WileyおよびSonsによって編集された; 2002およびＷＯ９６／０２６６５）。ＡＴＰレベルを決定するために日常的に使用される方法は、生物発光の使用を含む。該方法は、発光ルシフェラーゼがルシフェリンの酸化を触媒する反応のＡＴＰ依存性を使用する。該方法は、比較的低濃度のＡＴＰを測定するために使用され得る。生物発光を使用してＡＴＰを検出するために有用なキットは、Roche, New Horizons Diagnostics Corp, Celsisなどから市販されている。しかしながら、生物発光検出に関連して多くの問題が存在する。例えば、非微生物供給源由来のＡＴＰの存在下での微生物ＡＴＰのみの検出が問題であり得る。該問題は、ＡＴＰの非細菌供給源から細菌を分離し得るフィルターの使用により、ある程度解決され、したがってより精度が高いシグナルを提供することができる。

したがって、多くの問題が微生物検出の慣用の分野に対して存在することが分かる。このような問題にさらに対処するために、リガーゼの検出が提案されており、例えば、１９９６年２月１日に公開された公開特許出願ＷＯ／１９９６／００２６６５に記載されており、サンプル中のアデニル酸キナーゼの量が、アデニル酸キナーゼをアデノシン二リン酸（ＡＤＰ）と混合し、サンプルにより該ＡＤＰから生産されるアデノシン三リン酸（ＡＴＰ）の量を決定し、そうして生産されるＡＴＰの量をアデニル酸キナーゼの存在および／または量ならびに微生物および／またはそれらの細胞内物質と関連させることにより概算されることを特徴とする、サンプル中に存在する微生物および／またはそれらの細胞内物質の存在および／または量を決定するための方法であって、ＡＤＰのＡＴＰへの変換がマグネシウムイオンの存在下でＡＤＰのＡＴＰへの最大変換を可能にするために十分なモル濃度で行われる方法を記載している。存在するマグネシウムの量は、好ましくは、全ＡＤＰ分子が少なくとも１つのマグネシウムイオンと関係し得るように、１モルのＡＤＰに対して１モルのマグネシウムを提供するために十分な量である。

DETECTION OF MICRO-ORGANISMS BASED ON THEIR NAD-DEPENDENT DNA LIGASE ACTIVITYと題された２００９年１月１５日に公開された公開特許出願ＷＯ／２００９／００７７１９において、リガーゼ、特にＮＡＤ−依存性リガーゼは、サンプル中の（生存）微生物の存在の有用な指標として記載されている。リガーゼは、核酸分子のライゲーションを触媒する酵素である。該ライゲーション反応は、関連しているリガーゼに依存して補助因子として、ＡＴＰまたはＮＡＤ＋のいずれかを必要とする。該記載において、ＮＡＤ−依存性リガーゼ活性の使用は、サンプル中の（生存）微生物の存在の指標として利用される。ＮＡＤ−依存性リガーゼ活性と生存能力との間の関連は、該酵素の活性を、サンプル中の、特に細菌起源の生存能力のある微生物細胞の指標として使用することを可能にするので、ＮＡＤ−依存性リガーゼ活性と生存能力との間の関連は、この出願に記載されている発明の中心となる（Korycka-Machalaら Antimicrobials and Chemotherapy, Aug. 2007, p2888-2897）。しかしながら、本発明の開発をもたらす実験において、公開特許出願ＷＯ／２００９／００７７１９に記載されている技術および教示が、非精製サンプル、例えば、粗微生物溶解物、血液または血液培養物中の生存微生物の測定に適用することができないことが見出され、それにより該文献に記載されている技術の主な欠点を構成した。しかしながら、これらの方法論もまた問題を有することを見出した。例えば、一般的に、意図されるサンプル型（血液由来微生物粗細胞溶解物）に適用されるとき、上記特許出願に記載されているところの従来のリガーゼ基質アッセイ設計および結果として得られるその検出シグナルは、リガーゼ特異的ではないことを見出した。本発明は、これらの問題に対処し、解決しようとする。

発明の概要
上記慣用の方法と対照的に、１つの局面において、本発明は、サンプル、特に、例えば、粗微生物溶解物または非精製血液または血液培養物であるサンプル中の（生存能力のある）微生物または細菌の存在の有用な指標としての、酵素、例えば、ポリメラーゼ、好ましい態様において、ＤＮＡまたはＲＮＡポリメラーゼの検出に向けられる。本発明にしたがって見出された、酵素、例えばポリメラーゼ活性と微生物または細菌の生存能力との間の関連は、これらの酵素の活性の検出を、サンプル中の生存能力のある微生物細胞、特に細菌起源の指標として使用可能にする。

同様に、本発明は、好ましい態様において、サンプル中の微生物の存在の指標としてＤＮＡまたはＲＮＡポリメラーゼを検出するための方法を提供する。このような方法は、
（ａ）サンプルを、サンプル中でポリメラーゼ活性に対する基質として作用する核酸分子と接触させること；
（ｂ）このように接触されたサンプルをポリメラーゼ活性に適した条件下でインキュベートすること；および
（ｃ）基質核酸分子に対する微生物ポリメラーゼの作用から生じる核酸分子の存在および／または量を決定し、微生物の存在を示すこと
を含むことができる。

加えて、本発明は、前記方法において有用な試薬、および該方法を行うために有用な該試薬を含むアッセイキットを提供する。

別の局面において、本発明は、（生存能力のある）微生物または細菌の存在の有用な指標として、リガーゼ、特にＮＡＤ−依存性リガーゼを同定しているDETECTION OF MICRO-ORGANISMS BASED ON THEIR NAD-DEPENDENT DNA LIGASE ACTIVITYと題された２００９年１月１５日に公開された公開特許出願ＷＯ／２００９／００７７１９に記載されている方法、組成物およびキットに対する改良を提供する。

該ＷＯ／２００９／００７７１９において含まれている全記載を、出典明示により本明細書に包含させ、本出願の一部とする。

したがって、本発明は、サンプル中の微生物の存在の指標として、ＮＡＤ−依存性リガーゼまたはホスファターゼからなる群から選択される酵素、または前記の混合物を検出するＷＯ／２００９／００７７１９に記載されているものに基づく方法および組成物およびキットの改良であって、改善された方法は、
（ａ）サンプルと、ＤＮＡポリメラーゼ由来の干渉シグナルを許容しない一方、サンプル中で酵素活性に対する基質として作用する核酸分子とを接触させること、
（ｂ）このように接触されたサンプルを酵素活性に適した条件下でインキュベートすること；および
（ｃ）基質核酸分子に対する選択される酵素または混合物の作用から生じる酵素修飾核酸分子の存在および／または量を決定し、微生物の存在を示すこと
を含む方法を提供する。

したがって、本発明の改善された方法が、このような酵素またはそれらの混合物を発現する（または発現している）全ての微生物を同定するために有用であることが認識される。

本明細書に記載されているとおり、該方法における第１の工程は、サンプルと、ＤＮＡポリメラーゼ由来の干渉シグナルを許容しない一方、サンプル中で酵素活性に対する基質として作用する核酸分子とを接触させることを含む。したがって、ライゲーションされると、特異的に検出することができるあらゆる適当なライゲーション可能な分子が、本発明の方法において利用され得ることを認識するべきである。

図ＡからＤは、鋳型の略図および本明細書に記載されているとおりに本発明にしたがって行われた実験により得られた結果のグラフ表示を示す。図ＡからＤは、ライゲート不可能(Non-Ligate-able)でポリメラーゼに好都合な(favorable)基質が、微生物由来の粗細胞溶解物に感受性であり、特異的であることを示すグラフ表示である。図３は、ライゲート不可能でポリメラーゼに好都合な基質が、微生物添加血液培養物(Microbe Spiked Blood Culture)由来の粗細胞溶解物に感受性であり、特異的であることを示すグラフ表示である。

発明の詳細な説明
したがって、前記から、本発明の方法が、酵素、例えば、適当なポリメラーゼが発現される（または発現されている）全ての微生物を同定するために有用であることを認識することができる。１つの態様において、本発明の方法は、生存能力のある微生物の検出に適用され、したがって、サンプル中の生存能力のある微生物を検出するための方法として考えられ得る。特に、好ましい態様において、本発明の方法は、核酸ポリメラーゼ遺伝子およびその翻訳された活性タンパク質ポリメラーゼが生存能力のために必須である細菌または微生物を同定するために有用であり得る。しかしながら、（例えば、抗菌剤での処理により）最近生存不能にされた微生物、例えば、細菌は、酵素が分解されるまで、検出可能なポリメラーゼ活性を保持し得る。

本発明の開発において、機能性細胞生化学的成分のサンプル調製におけるパラダイムシフトが見出された。それは、本発明が、従来、しばしば極度の変性ベースの単離プロトコールによって加えられていた高価な複雑化要因なしに、穏やかに溶解された細胞由来のサンプル上で、アッセイを直接的に行うことを可能にするという点においてである。したがって、本発明が、サンプル、限定はしないが、全血および／または血液培養物由来の細胞画分を包含する粗臨床的溶解物のような、典型的には１０−２０ｍｌ、好ましくは０．１−１００ｍｌの範囲にある大量の該サンプルから、生存生物体の検出を可能にすることを見出した。本発明は、特に、敗血症と関連している全ての生物体、および、限定はしないが、菌血症、真菌血症ならびにウイルスおよび寄生状態を含む状態と関連している生物体の検出のために有用である。干渉プロテイナーゼおよびヌクレアーゼの存在だけでなく、サンプル由来のポリメラーゼ阻害が、このようなアッセイ方法を非精製サンプル中で行う場合の障害であるという慣用の技術の教示とは対照的に、本発明によって、このような生物体の検出が、上述したような非精製サンプルにおいて成し遂げることができることを予想外に見出した。

上記のとおり、リガーゼ、特にＮＡＤ−依存性リガーゼは、サンプル中の（生存能力のある）微生物の存在の推定に有用な指標として記載されている。しかしながら、対照的に、本発明は、生存能力のある細胞由来のその活性を、高感度シグナル発生器、例えばＰＣＲなどの技術による増幅と関連付けるために使用することができる、リガーゼよりもむしろ有用な他の生存能力のある微生物細胞由来の酵素を提供する。本発明の特徴はまた、細菌を真菌と区別することが潜在的に可能である。本発明の１つの態様の例において、以下のものがこの点において使用され得る：
ａ．キナーゼが、リガーゼを使用可能にするか、またはポリメラーゼを停止するために使用することができたＰＯ４を付加する
ｂ．リン酸は、ＰＯ４を除去し、ポリメラーゼを使用可能にするために使用することができる
ｃ．ＤＮＡ＆ＲＮＡポリメラーゼは、下流の従来のＰＣＲまたは等温増幅を可能にするように基質を伸長するために使用することができる
ｄ．等温増幅は、エンドヌクレアーゼ酵素活性から逃れることができる
ｅ．リボソーム
ｆ．ｍｉＲＮＡメカニズム
ｇ．ジャイレース
ｈ．ヘリカーゼ
ｉ．エキソヌクレアーゼ、５’−３’、３’−５’、すなわちブロッキング基、例えば、ＰＯ４、ＴａｇＭａｎなどを除去するもの
ｊ．エンドヌクレアーゼ
ｋ．プロテアーゼ
ｌ．ＤＮａｓｅ
ｍ．ＲＮａｓｅ
ｎ．ＵＤＧｌｙｃｏｓｏｌａｓｅ
ｏ．修復酵素

本発明の好ましい態様において、本発明にしたがってＤＮＡポリメラーゼ活性を測定することにより、微生物粗溶解物からの細胞生存能力の測定が可能になることを見出した。これは、非常に選択的な「ホットスタート(hot start)」（当分野でよく知られている）と組み合わせてさらに選択的な修飾オリゴ基質を使用し、ＲＴ、３７、６０Ｃ活性に関してコントロールして、実証され得る。

本発明の１つの態様において、本発明は、血液製剤スクリーニング、とりわけ血小板のスクリーニングに対する用途を有する。というのも、この用途では、いかなる微生物の増殖も血液製剤の廃棄の原因であり、細菌と真菌との区別は必要ではないからである。本発明のさらなる態様において、ホスファターゼが使用され得、おそらく、ポリメラーゼ活性を有効にするための別の優れた候補酵素である。というのも、ホスファターゼが５’または３’リン酸いずれかを除去し、−ＯＨ−を残し、したがって、含まれる設計された５’Ｔａｑの除去、またはリガーゼ（３’を除去する）により任意のポリメラーゼを使用可能にすることができるからである。加えて、ホスファターゼは強力であり、ｐＨの最適化を介して酵母菌と細菌とを区別するための手助けとなり得る。したがって、本明細書の教示により考えられるポリメラーゼを使用可能にするあらゆる適当な酵素が、本発明の実施において有用であり得ると認識される。

本発明の実施において、微生物の検出は、ＤＮＡポリメラーゼが分解される時点まで、適宜、最近まで生存能力のあった微生物を含み得る。生存能力のある微生物と最近まで生存能力のあった微生物間の区別が必要な場合、適切な条件下で、２つ以上の時点間でのポリメラーゼ活性の単純な経時変化または比較が、ポリメラーゼ活性が時間とともに増加、持続または減少しているかを決定するために十分であるはずである。好ましい態様において、ポリメラーゼ活性が長期間にわたって、または後の時点で（最初の測定と比較して）持続または増加していることが見出されるとき、これは、微生物に生存能力があることを示し得る。ポリメラーゼ活性が後の時点で減少しているとき、これは、検出された活性が最近まで生存能力のあった微生物由来であったことを示し得る。この経時変化測定アプローチは、抗生物質感受性試験（ＡＳＴ）ならびに他の適切な治療法の決定に対して適用されるとき、とりわけ有用であり得る。検出方法は、本明細書に詳細に記載されている。本発明の特定の好ましい態様において、微生物は本明細書に記載されているとおり細菌であり、本発明の方法は、さらに一般的に適用することができるであろう（Wilkinsonら, Molecular Microbiology (2001) 40(6), 1241-1248）。細菌は、同様に、例えば、中温性および／または好熱性細菌であり得る。

本発明の文脈において、「サンプル」は、微生物、特に細菌の存在を試験するために望ましいいかなるサンプルをも含むように定義される。したがって、該サンプルは、臨床的に提供される粗微生物溶解物からなり得るか、または血液または血液培養物の臨床サンプルを含み得るか、または、例えばインビトロアッセイ系のために適当なサンプルを含む。サンプルはまた、飲料もしくは食品サンプルまたはそれらの調製物、または医薬品もしくは化粧品、例えば、パーソナルケア製品、例えばシャンプー、コンディショナー、保湿剤などを含み得、これら全ては、いつものこととして、微生物汚染に対して試験される。サンプルは組織または細胞を含み得、唾液または血小板サンプルを含み得る。加えて、本発明の方法およびキットは、例えば食品が製造されている場所において、表面の汚染をモニタリングするために使用され得る。好ましい態様において、汚染はポリメラーゼ活性の存在により示される。汚染は、何らかの微生物供給源由来のもの、特に細菌汚染であり得る。さらに、本発明はまた、環境条件、例えば、水道、廃水、海洋環境などをモニタリングすることにおいて有用である。本発明はまた、発酵処理および空気サンプリングにおける細菌増殖をモニタリングすることにおいて有用であり、細菌または胞子含有量を病院、産業施設または生物防御(biodefense)用途において評価することができる。

本発明の方法は、１つ以上の（生存能力のある）微生物、特に細菌がサンプル中に存在するとき、酵素活性、好ましくはＤＮＡポリメラーゼ活性が存在するという事実に基づく。したがって、該酵素は、適切な条件下で、（次の工程において）新規の検出可能な核酸分子を産生するための反応を触媒することができる。該新規核酸分子は、任意の適した手段、例えば、下記の手段により検出することができ、それにより、試験下のサンプル中の微生物の存在を決定することが可能になる。

したがって、微生物がサンプル中に存在しないとき、該サンプル中の酵素（例えば、ポリメラーゼ）活性がなく、したがって、該新規の検出可能な核酸分子は産生されない。

本発明の方法は、主に、新規核酸分子が方法の一部として産生されるという事実によって、有意な技術的利点を提供する。本発明の方法において、未反応核酸分子はシグナルに寄与せず、結果として、該方法が行われるときに、偽陽性シグナルが生産されないはずである。

さらに、本発明により提供される方法は、高感度で、フェムトグラム、恐らくアットグラムレベルまでに至るまで、サンプル中に存在する酵素（例えば、ポリメラーゼ）の検出を提供し得る。該感受性は、全ての細菌細胞が何千もの酵素分子を含み、したがって、それぞれが、適した条件下で、複数の事象を触媒することができるという事実に由来する。細胞当たり１つの遺伝子の、１もしくは少数のコピーを標的化するか、または、リボソームＲＮＡもしくはメッセンジャーＲＮＡを検出するためにさらなる工程もしくは試薬を使用しなければならないダイレクトＰＣＲアプローチとは違って、本明細書に記載されているアプローチは、単純なアッセイフォーマットにおいて細胞当たり酵素の多数のコピーの検出を標的化する。

本明細書に記載されているとおり、本発明の方法における第１の工程は、サンプルを、サンプル中の酵素、例えばポリメラーゼ活性に対する基質として作用する核酸分子と接触させることを含む。

本発明における使用のための適した基質核酸分子は、以下でより詳細に記載されている。核酸分子は、適宜、合成ヌクレオチド類似体を組み込んでいてもよく、または、例えばＲＮＡまたはＤＮＡベースのもの、またはそれらの混合物であり得る。それらは、１つの態様において、検出を容易にするために、例えば、蛍光標識またはＦＲＥＴペアを使用して標識化され得る。適当な検出方法は、本明細書に記載されている。

「核酸」は、本明細書において、ポリメラーゼの作用により検出可能な核酸分子を産生することができるあらゆる天然核酸および天然または合成類似体を含むように定義される。適した核酸分子としては、例えば、二本鎖または一本鎖ＤＮＡおよび二本鎖または一本鎖ＲＮＡを含み得る。

核酸基質が平滑末端二本鎖ＤＮＡ分子を含み得るが、本発明の１つの態様において、ポリメラーゼに対する核酸基質は、相補的オーバーハングと、結合される末端に５’リン酸基とを有する２つの二本鎖ＤＮＡ分子を含む。１つの特定の態様において、相補的オーバーハングは、２から１０、例えば、３または５塩基対である。別の態様において、核酸基質は、５’リン酸を含有するニックを有するＤＮＡ分子を含む。合成核酸分子は市販されており、末端５^１リン酸基を付加するように注文することができる。これは、本発明の方法において使用される核酸分子の１００％が５’リン酸基で標識化されるという技術的利点を有する。

本発明のとりわけ好ましい態様において、ポリメラーゼがサンプル中に存在するとき、それは触媒作用を及ぼし、本明細書に詳細に記載されるように、次の工程（例えばＰＣＲ）により検出することができる新規核酸分子（全新規配列を含む）が形成される。

したがって、基質核酸分子は、実際に、適宜、２つ以上の核酸分子を含み得る。これは、一般的に、本発明の方法およびキットに適用する。

１つの態様において、核酸基質は、一本鎖相補的オーバーハングを有する２つの二本鎖核酸分子を含む。

本発明の新規方法は、ポリメラーゼおよびリガーゼの両方を含むと疑われるサンプルを採取し、別々の反応容器中で並行して両方を試験し、シグナルを引き、このようにして、実際に、サンプル中で見出される真のリガーゼレベルを決定することにより、リガーゼをポリメラーゼと区別するために使用することができることを、認識すべきである。これは、以下の等式により示すことができる：
［ポリメラーゼシグナル − リガーゼシグナル（ポリメラーゼ＋リガーゼ）＝真のリガーゼシグナル］

本発明の任意の態様において、核酸に対するポリメラーゼの作用はよく知られており、したがって、核酸基質の多数の異なる型を使用のために選択することができ、本明細書に記載されているとおり、本発明の新規方法における利用の利点を有することが分かることができることもまた、認識すべきである。好ましくは、核酸基質は、サンプル中のポリメラーゼを越えて、過剰、特にモル大過剰に存在する。これは、先行技術方法を越える重要な技術的な違いである。新規重合核酸分子が検出されるため、サンプル中の該分子の存在のみが、有効に働く検出方法のために重要である。したがって、他の核酸分子が、例えば、検出される細菌、または、例えば、試験されるサンプル中で見いだされ得る哺乳動物または真菌供給源由来のサンプル中に存在するとき、本発明の方法にとって不利益でない。

本発明は、本発明にしたがって行われた以下の実施例を参照することにより、さらに十分に記載することができる。また、本発明の特定の好ましい態様が上記されており、具体的に例示されているが、本発明がこのような態様に限定されることは意図しない。

実施例１．リガーゼ非依存性メカニズムの発見：
３つの異なるＤＮＡ基質（Ａ）を大腸菌リガーゼと共に、またはリガーゼを用いないでインキュベートし、ＵＮＧの存在／非存在下で全長のＤＮＡリガーゼ基質に特異的なＰＣＲプライマーを含むＰＣＲに付した。ＰＣＲをＳＹＢＲグリーン（ｇＰＣＲ）を介してモニタリングし、得られた反応物をゲル分析に付した（Ｂ）。３つの異なるＤＮＡ基質（Ａ）を大腸菌リガーゼと共に、またはリガーゼを用いないでインキュベートし、ＵＮＧの存在／非存在下でＳ１−伸長検出プライマーを含むＰＣＲに付した。ＰＣＲを市販されているＺｅｕｓＰｒｏｂｅ（ｑＰＣＲ）方法論（Zeus Scientific, Inc., Raritan, NJ）を介してモニタリングし、得られた反応物をゲル分析に付した（Ｃ）。ライゲーション不可能なＤＮＡ基質（Ｓ１／ＡＳのみ）の量を徐々に減らして、市販されている３つの異なるＤＮＡポリメラーゼとインキュベートし、Ｚｅｕｓ−ＰｒｏｂｅｇＰＣＲ分析に付した（Ｄ）。これらの実験の結果は、図１においてグラフで説明される。

実施例２．ライゲート不可能でポリメラーゼに好都合な基質が、微生物由来の粗細胞溶解物に感受性であり、特異的であることを見出した：
複数の微生物が、量を徐々に減らしつつ、ビーズミル溶解され、３７℃で３０分間、ＤＮＡポリメラーゼバッファーおよびｄＮＴＰの存在下でＤＮＡ基質（Ｓ１／ＡＳのみ）とインキュベートされた（Ａ）。次に、溶解物をＳ１−伸長に特異的なプライマーを含むＺｅｕｓ−ＰｒｏｂｅｑＰＣＲに付した。該結果は、図２においてグラフで説明される。

実施例３．
ライゲート不可能でポリメラーゼに好都合な基質が、微生物添加血液培養物由来の粗細胞溶解物に感受性であり、特異的であることを見出した：
微生物の量を徐々に減らして、１０ｍｌの血液培養液中に加えた。次に、微生物を回収し、ビーズミル溶解に付し、３７℃で３０分間、ＤＮＡポリメラーゼバッファーおよびｄＮＴＰの存在下でＤＮＡ基質（Ｓ１／ＡＳのみ）とインキュベートした（Ａ）。次に、溶解物をＳ１−伸長特異的プライマーを含むＺｅｕｓ−ＰｒｏｂｅｑＰＣＲに付した。該結果は、図３においてグラフで説明される。

したがって、さらに別の局面において、本発明は、ＷＯ／２００９／００７７１９において記載および請求されている発明を改良する。本発明によれば、該ＷＯ／２００９／００７７１９の記載によりＤＮＡリガーゼ特異的であると推測された基質は、精製ＤＮＡポリメラーゼまたは精製ＤＮＡリガーゼのどちらからも強力なシグナルを生じ、その結果、ＷＯ／２００９／００７７１９に記載されている方法は、意図されるサンプル型、例えば、敗血症サンプルに適用されるとき、ＤＮＡリガーゼ特異性にならないことが発見された。例えば、本発明の開発において、ＷＯ／２００９／００７７１９により教示されるサンプル調製方法を使用する敗血症サンプルを、多量のＤＮＡポリメラーゼを含む粗微生物細胞溶解物として、そこに教示されているアッセイプロトコールに投入した。ＤＮＡポリメラーゼは、全ての生存細胞において豊富である。ＷＯ／２００９／００７７１９に記載されているアッセイは、実際的観点から、全ての臨床サンプル投入を含む非リガーゼ精製サンプルを投入するとき、任意のＤＮＡポリメラーゼ由来のシグナルとＤＮＡリガーゼ由来のシグナルとを区別することができないことを見出した。なぜならば、臨床サンプルからの結果を得ようとするとき、リガーゼの単離は、ＷＯ／２００９／００７７１９に記載されているところの、実際的処理でも日常的処理でもないからである。むしろ、該文献の教示にしたがって実施された実験によって、明らかに該文献で望ましい結果であるＤＮＡリガーゼ特異的シグナルではなく、ＤＮＡポリメラーゼにより汚染されたアッセイシグナルを生じることが見出された。

上記これらの知見は、ＷＯ／２００９／００７７１９の教示にしたがって生産されるシステムの能力、即ち生存能力のある細胞由来のＤＮＡリガーゼを特異的に検出する能力に反する。該文献に開示されているアッセイの意図される能力、即ち生存能力のある細胞由来のＮＡＤ依存性細菌リガーゼとＡＴＰ依存性真菌リガーゼとを区別する能力をさらに排除する。というのも、活性なポリメラーゼは、全ての生存能力のある細胞に共通であり、斯かるアッセイ系において任意のリガーゼと区別することができないからである。このように、該文献またはあらゆる他の既知の技術では明らかに予期し得ないこの重要な問題を特定したのち、本発明は、下記のとおり、ＤＮＡポリメラーゼ由来の干渉シグナルが検出されない代替的なＤＮＡ基質を提供することにより、特定のリガーゼシグナルを非精製リガーゼサンプル、例えば、粗微生物溶解物から検出可能にする改良を提供する。

したがって、本発明はまた、サンプル中の微生物の存在の指標として、ＮＡＤ−依存性リガーゼまたはホスファターゼからなる群から選択される酵素またはそれらの混合物を検出する改良された方法であって、
（ａ）ＤＮＡポリメラーゼ由来の干渉シグナルを許容しないがサンプル中で酵素活性に対する基質として作用する核酸分子とサンプルとを接触させること；
（ｂ）このように接触されたサンプルを酵素活性に適した条件下でインキュベートすること；および
（ｃ）基質核酸分子に対する選択された酵素または混合物の作用から生じる酵素修飾核酸分子の存在および／または量を決定し、微生物の存在を示すこと
を含む方法、ならびにその方法に基づく組成物およびキットを提供する。

したがって、本発明の改良された方法は、ＮＡＤ−依存性リガーゼまたはホスファターゼまたはそれらの混合物を発現する（または発現している）全ての微生物を同定するために有用である。

本発明の好ましい態様において、本明細書に記載されている改良された方法における第１の工程は、サンプルを、サンプル中でＮＡＤ−依存性リガーゼ活性に対する基質として作用するが、ＤＮＡポリメラーゼ由来の干渉シグナルを許容しない核酸分子と接触させることを含む。いったんライゲーションされると、特異的に検出することができるあらゆる適当な酵素修飾分子またはライゲート可能な分子が、本発明の方法において利用され得る。

本発明の方法における使用のための、および本発明のキット中に包含させるための基質核酸分子は、ＮＡＤ−依存性リガーゼが検出可能な酵素修飾またはライゲート（新規）核酸分子を生産するように分子上で作用することができるような、かつそれがＤＮＡポリメラーゼ由来の干渉シグナルを許容しないような、配列および構造のものでなければならない。

本発明の開発において、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）Ｔａｑ−ＤＮＡポリメラーゼ由来の背景の除去は、別々に扱われるべきであり、したがって本願発明の範囲外である別々の検出システムの問題であると決定されたため、ＷＯ／２００９／００７７１９に記載されている現行の基質設計において見出された特異性の欠如に対する実行可能な解決策でなかったことに注目したことが評価されるべきである。

したがって、本願の場合、本発明へと導く実験のために、具体的に、リガーゼを干渉しない阻害剤付加物で全てのＤＮＡポリメラーゼ活性をブロックすることを目標として設定した。これを成し遂げるために、ＤＮＡポリメラーゼが、中和／コントロールされる必要がある十分に立証された酵素機能：
（ａ）５’−３’ＤＮＡポリメラーゼ活性
（ｂ）３’−５’エキソヌクレアーゼ活性
（ｃ）５’−３’エキソヌクレアーゼ活性
（ｄ）固有のエステラーゼ活性
を有することに注目した。

ＷＯ／２００９／００７７１９の方法において使用されているような記載の基質分子の代わりとして適当な本発明の新規方法における使用のための適当な基質核酸分子戦略は、限定はしないが、以下のものを含み得ることが、本発明にしたがって決定された：
１．ポリメラーゼのいかなる活性をも阻害する修飾ヌクレオチド
２．最初の塩基付加でポリメラーゼを停止し、その活性を封鎖する−中和するが、リガーゼがｄＡＴＰを使用して生産反応を享有する、ジデオキシヌクレオチドｄｄＣＴＰ、ｄｄＧＴＰ
３．ＡＳオリゴの伸長を妨げるジデオキシオリゴヌクレオチド
４．ＤＮＡ基質における活性をブロックするように組み込まれるポリメラーゼ阻害修飾塩基を有するＳ１オリゴ
５．ＤＮＡポリメラーゼの活性を阻害するＤＮＡポリメラーゼ特異的抗体−これらは、ＰＣＲの分野でよく知られている
６．アプタマーオリゴ阻害性複合体
７．当分野で知られている真の「ホットスタート(Hot Start)」と組み合わせられた５’側のＡＳを短縮することにより、ポリメラーゼ伸長基質を下流の増幅、例えば、ＰＣＲにおいて検出されるものから除外するＤＮＡ基質ハイブリダイゼーション戦略
８．ポリメラーゼを３’側のＡＳの短縮により結合および伸長から除去するが、リガーゼに影響しないＤＮＡ基質ハイブリダイゼーション戦略
９．リガーゼに有利なようにバランスされたポリメラーゼ伸長の長さと組み合わせられた相対速度動力学
１０．Ｐｅｒ−ＰＣＲＳ１３’−ジデオキシ競合（全長、または、ＡＳの３’に相補的である１３ｍｅｒ）
１１．Ｐｒｅ−ＰＣＲＳ１３’リン酸競合
１２．最適ＵＮＧ（標準ＵＮＧ酵素）条件を使用するＡＳの完全除去
１３．熱安定性のＵＮＧ（ＮＥＢ）を使用するＡＳの完全除去。ＵＮＧの加熱処理により、夾雑リガーゼ／ポリメラーゼの除去を可能にし、ＰＣＲｍｍがｄＴＴＰを有するべきであること
１４．ＰＣＲ前に、ＵＮＧ／Ｒｎａｓｅ共処理を可能にするために、デオキシウリジン（ＵＮＧ除去）および残りのＲＮＡ塩基を有するＡＳを作製すること
１５．ジデオキシ３’ＡＳを得るための必要性
１６．より高い温度（すなわち６５℃）でのＴａｑドッキングを減少させるためのＡＳの３’末端の短縮
１７．ライゲーション／伸長工程中に固体支持体に共有的に結合されるＡＳ
１８．３’−ジデオキシＳ２リバース補体（全長、またはおそらく、Ｓ１Ｐｏｌ伸長に相補的であるちょうど１３ｍｅｒ）
１９．背景減少のために−当分野でよく知られている「ホットスタート」戦略−望ましくないオリゴまたは伸長オリゴハイブリダイゼーションの１００％除去

ａ．ＴｒｕｅＰｈｙｓｉｃａｌ−全ての接触物質が約９０℃の熱い温度でなければならず、約６５℃の域値温度以下に落としてはならないため、移動過程が温度低下を引き起こすという回避すべき問題があるので、真の物理的ホットスタートは容易ではない。
ｂ．非酵素ホットスタート、例えば、２ｍＭのＭｇＣｌ（．１ｍＭのＥＤＴＡ保護）、プライマー、ｄＮＴＰまたは他の重要な成分に投入
ｃ．Ｃｈｅｍ−プライマーホットスタート

本発明の改良は、ＷＯ／２００９／００７７１９に記載されている基質を本明細書に記載されている適当な基質核酸分子で置換することにより実現できることが示されたが、当然のことながら、本発明は、本明細書に記載されている特定の態様による範囲において限定されるべきではない。実際、本明細書に記載されているものに加えて、本発明の種々の修飾が前記から当業者に明らかになる。全てのこのような修飾は、本発明の範囲内に属すると意図される。さらに、本明細書に記載されている全ての態様は、適宜、広く適用することができ、他の任意の、および全ての一貫性のある態様と組み合わせることができると考えられる。

本発明の広範な基本原則および教示が、具体的に上記されている微生物または細菌だけではなく、種々の病原体、例えば、任意の細菌、真菌、ウイルス、寄生生物などに対しても、種々の生物学的組織サンプル（限定はしないが、血液、体液および軟組織を含む）の変性剤による粗溶解物（ビーズミルおよび超音波処理）直接−プローブ／ＳＹＢＲ−ＰＣＲ分析の全てのバリエーションを最適化させるように適用可能であることが当業者により理解される。

本明細書において特にＰＣＲに言及するが、本発明の改良がＰＣＲまたは同様の方法論に限定されないことをさらに理解すべきである。本発明における使用のために考慮される増幅アッセイは、限定はしないが、他のよく知られている核酸ベースの技術、例えば、ＤＮＡ増幅アッセイ、熱安定性のポリメラーゼを含むＰＣＲアッセイ、および等温増幅方法を含む。当然のことながら、当業者は、本発明の実施において有用であろう種々の適当な増幅方法を思いつくことができるので、本願発明がそれにより限定されることは意図されない。

本発明はまた、ＤＮＡ診断を含むいずれかの、および全ての方法、手段および工程における用途を有することが理解されるべきである。このような用途の例は、限定はしないが、食物、水の安全性、バイオテロ、医学／医薬を含むもの、および／または病原体検出を含むすべてのものを含む。食品産業において、本発明は、防腐剤の有効性をモニタリングするために使用することができる。本発明の方法は、全ての細胞に適用される可能性を有する。細菌細胞が実施例において例示されているが、当業者は、本発明の方法が多数の他の細胞型に適用することができることを容易に理解することができる。本発明はまた、膜を破壊することができ、および／または細胞、例えば細菌細胞を殺すことができる物質の同定のために使用することができる。多剤耐性生物体が健康施設および患者において蔓延および拡散しているため、新規殺菌剤および／または抗生物質の同定は、現在、優先事項である。

本発明の方法は、ツールとして定量ＰＣＲと組み合わせて、細胞を培養し、増殖を待つ時間をかけることなく、殺菌剤および／または抗生物質の影響を迅速に、および成功裏に同定することができることがさらに理解される。いくつかの例では、生物体は、培養するために数日から数週間かかるので、候補物質が微生物のような細胞を殺すことができたかどうかを知るために、かなりの時間がかかる場合がある。他の例では、ある種の生物体は細胞培養において増殖しないので、物質が有効であるかどうかを決定することは困難である。したがって、本発明の新規方法を適用することは、新規殺菌剤および／または抗生物質の同定のための時間および資源を節約することができる。

本発明の新規方法のさらなる利点は、それらの使用の容易さである。例えば、これらの方法を使用して、多量のサンプルを生存能力のある細胞、例えば細菌の存在に関して容易に試験することができる。例えば、サンプルは、無傷な細胞膜を有する潜在的に生存している細菌の存在に関して試験され得る。別の態様において、環境サンプルは、生存能力のある細胞、例えば細菌の存在に関して試験され得る。これらのサンプルは、例えば、土壌から回収されるか、または植物の一部であり得る。本発明の方法はさらに、放出の前後の両方で、処理された廃水の試験のために使用することができる。

本発明の方法はさらに、医薬サンプル、例えば、糞便サンプル、血液培養物、唾液、組織サンプル（切片も）、創傷物質(wound material)、尿、および呼吸管、インプラントおよびカテーテル表面由来のサンプルを試験するために使用され得る。

本発明の方法の適用の別の分野は、食品のコントロールであり得る。他の態様において、食品サンプルは、ミルクまたは乳製品（ヨーグルト、チーズ、スィートチーズ、バターおよびバターミルク）、飲料水、飲料（レモネード、ビールおよびジュース）、ベーカリー製品または肉製品から得られる。本発明の方法は、食品中の防腐剤または食品の抗微生物処置（例えば、低温殺菌）が細胞増殖を防止しているか否かを決定することができる。本発明の方法の適用のさらなる分野は、医薬品および化粧品、例えば、軟膏、クリーム、チンキ剤、ジュース、溶液、ドロップなどの分析である。

加えて、本発明の方法は、生態学的試験に対する微生物集団の潜在的に生存能力のあるメンバー、農業および／または生態系に対する特定の土壌の状態を同定することができる。細菌集団の従来の同定は、培養ベースのアプローチまたはプレートカウントを使用して行われている。カウントされるコロニーが多ければ多いほど、より多くの細菌が元のサンプル中に依存すると概算される。しかしながら、時折、該方法を適時かつ正確な結果にとって不適当にする長期のインキュベーション時間（数日の範囲）から問題が生じる。これらの欠点は、本発明の方法を利用している。

本発明の方法を使用する分析または本発明の方法を使用するサンプル中の潜在的な生存能力の検出に付すことができる細菌の非限定的な例は、例えば：百日咳菌、レプトスピラ・ポモナ、パラチフス菌ＡおよびＢ、ジフテリア菌、破傷風菌、ボツリヌス菌、ウェルシュ菌、フェセリ菌(C.feseri)および他のガス壊疽菌、炭疽菌、ペスト菌、パスツレラ・ムルトシダ、髄膜炎菌、淋菌、インフルエンザ菌ｅ、アクチノミセス（例えば、ノカルジア）、アシネトバクター、バシラス（例えば、バシラス・アンスラシス）、バクテロイデス（例えば、バクテロイデス・フラジリス）、ブラストミセス、ボルデテラ、ボレリア（例えば、ボレリア・ブルグドルフェリ）、ブルセラ、カンピロバクター、クラミジア、コクシジオイデス、コリネバクテリウム（例えば、コリネバクテリウム・ジフテリア）、大腸菌（例えば、エンテロトキシン産生大腸菌および腸管出血性大腸菌）、エンテロバクター（例えば、エンテロバクター・エロゲネス）、エンテロバクター（クレブシエラ、サルモネラ（例えば、チフス菌、サルモネラ・エンテリティデス、セラチア、エルシニア、シゲラ）、エリジペロスリックス、ヘモフィラス（例えば、インフルエンザ菌Ｂ型）、ヘリコバクター、レジオネラ（例えば、レジオネラ・ニューモフィラ）、レプトスピラ、リステリア（例えば、リステリア・モノサイトゲネス）、Ｍｙｃｏ血漿、マイコバクテリウム（例えば、マイコバクテリウム・レプラエおよび結核菌）、ビブリオ（例えば、コレラ菌）、パスツレラ、プロテウス、シュードモナス（例えば、緑膿菌）、リケッチア、スピロヘータ（例えば、トレポネーマ属、レプトスピラ属、ボレリア属）、シゲラ属、髄膜炎菌(Meningiococcus)、肺炎球菌および全ての連鎖球菌（例えば、肺炎連鎖球菌およびＡ_３Ｂ、およびＣ群連鎖球菌）、ウレア血漿、梅毒トレポネーマ、黄色ブドウ球菌、パスツレラ・ヘモリチカ、コリネバクテリウムジフテリアトキソイド、髄膜炎菌多糖、百日咳菌、肺炎連鎖球菌、破傷風菌トキソイド、およびウシ型結核菌を含む。上記リストは、単に説明的であることを意図し、決して本発明を特定の細菌生物体に対する検出に限定する意味ではない。

本発明の特に好ましい態様は、ＰＣＲを利用する。ＰＣＲの一般的な手順は、米国特許第４，６８３，１９５号（Ｍｕｌｌｉｓら）および米国特許第４，６８３，２０２号（Ｍｕｌｌｉｓら）において教示されている。しかしながら、それぞれの増幅反応のために使用される最適なＰＣＲ条件は、一般的に、経験的に、当業者により一般的に使用されるコンピューターソフトウェアで決定または概算される。多くのパラメーターが、反応の成功に影響する。それらの中でも、アニーリング温度および時間、伸長時間、Ｍｇ^２＋、ｐＨ、およびプライマー、鋳型およびデオキシリボヌクレオチドの相対濃度がある。一般的に、鋳型核酸を、ポリメラーゼ反応前に１から１０分間、少なくとも約９５℃に加熱することにより変性させる。増幅の約２０−９９サイクルは、０．０５から１分間、９０℃から９６℃の範囲で変性、０．０５から２分間、４８℃から７２℃の範囲の温度でアニーリング、および最適の最終サイクルで少なくとも０．１分間、６８℃から７５℃で伸長を使用して達成される。１つの態様において、ＰＣＲ反応は、約１００ｎｇの鋳型核酸、２０ｕＭの上流および下流プライマー、および０．０５から０．５ｍｍのそれぞれの種類のｄＮＴＰ、および０．５から５ユニットの市販されている熱安定性ＤＮＡポリメラーゼを含み得る。

慣用のＰＣＲのバリエーションは、逆転写酵素が最初に、ＲＮＡ分子を一本鎖ｃＤＮＡ分子に変換し、次にそれをポリメラーゼ連鎖反応における次の増幅に対して鋳型として使用する逆転写ＰＣＲ反応（ＲＴ−ＰＣＲ）である。ＲＮＡの単離は当分野でよく知られている。ＲＴ−ＰＣＲの実施において、逆転写酵素は、一般的に、標的核酸が熱変性された後に、反応サンプルに加えられる。次に、増幅の計画的サイクルが行われる前に、反応を十分な時間量（１０−６０分）適当な温度（例えば３０−４５℃）で維持し、ｃＤＮＡ鋳型を生産させる。当業者は、定量結果が望ましいとき、増幅された核酸の相対的コピー数に対して維持またはコントロールする方法を使用することに留意すべきであることを理解している。「定量」増幅の方法は、当業者によく知られている。例えば、定量ＰＣＲは、同じプライマーを使用して既知の量のコントロール配列を同時に共増幅することを含むことができる。これは、ＰＣＲ反応を標準化するために使用され得る内部標準を提供する。

別の代替ＰＣＲは定量ＰＣＲ（ｑＰＣＲ）である。ｑＰＣＲは、わずかな挿入または欠失により標的とサイズにおいて異なる内部同種対照を使用する競合技術により行うことができる。しかしながら、非競合および動力学的定量ＰＣＲも使用され得る。リアルタイム、動力学的ＰＣＲ検出と、標的配列と共に同時に検出することができる内部同種対照との組合せが有利であり得る。

ＰＣＲ、ＲＴ−ＰＣＲおよび／またはｑＰＣＲのためのプライマーは、特定の生物体に対して選択されるＤＮＡ領域だけを増幅する領域または特定の細菌内で選択される。あるいは、プライマーは、全ての生物体に対して共通であるＤＮＡの部分にハイブリダイズし、増幅するプライマーが選択される。プライマー選択および構築は、一般的に、当分野で知られている。一般的に、一方のプライマーは、増幅される配列のそれぞれの末端に位置する。このようなプライマーは、通常、１０から３５ヌクレオチド長であり、１８から２２ヌクレオチドの好ましい長さを有する。増幅することができる最も短い配列は、約５０ヌクレオチド長である（例えば、ともに２０ヌクレオチド長であって、配列中の位置が少なくとも１０ヌクレオチド分だけ離間されたフォワードおよびリバースプライマー）。さらに長い配列を増幅することができる。一方のプライマーは「フォワードプライマー」と称され、増幅される領域の左末端に位置する。フォワードプライマーは、ＤＮＡの上段の鎖における領域と配列において同一である（二本鎖ＤＮＡが、上段の鎖が５’から３’方向における極性で示される慣例にしたがって描かれているとき）。フォワードプライマーの配列は、ＤＮＡの上段の鎖に相補的であるＤＮＡの鎖にハイブリダイズするような配列である。もう一方のプライマーは「リバースプライマー」と称され、増幅される領域の右末端に位置する。リバースプライマーの配列は、ＤＮＡの上段の鎖における領域と配列において相補的である、すなわち、配列の逆相補鎖であるような配列である。リバースプライマーは、ＤＮＡの上段の末端にハイブリダイズする。ＰＣＲプライマーはまた、多くの他の条件にしたがって選択されるべきである。ＰＣＲプライマーは、鋳型における１以上の領域へのハイブリダイゼーションを最小限にするのに、十分な長さであるべきである（好ましくは１０から３０ヌクレオチド長）。可能ならば、長い単一塩基を有するプライマーは回避するべきである。プライマーは、好ましくは、４０から６０％のＧ＋Ｃ含有率を有するべきである。可能ならば、３’末端のプライマーのＧ＋Ｃ含有率は、５’末端のプライマーのＧ＋Ｃ含有率よりも高くなるべきである。プライマーは、プライマー内の別の配列とハイブリダイズすることができる配列（すなわち、パリンドローム）を含むべきではない。同じＰＣＲ反応において使用される２つのプライマーは、お互いにハイブリダイズ可能であるべきではない。ＰＣＲプライマーは、好ましくは上記推奨にしたがって選択されるが、プライマーがこれらの条件に従う必要はない。他のプライマーが働き得るが、良い結果を得る可能性は低い。

所定の配列内のＤＮＡを増幅するために使用することができるＰＣＲプライマーは、利用できる多くのコンピュータープログラムの１つを使用して選択することができる。このようなプログラムは、所定の配列の増幅のために最適であるプライマーを選択する（すなわち、このようなプログラムは、上記条件、およびＰＣＲプライマーの機能性を最大化し得る他の条件にしたがってプライマーを選択する）。１つのコンピュータープログラムは、ＰＣＲプライマーの選択のために日常的に用いられるＧｅｎｅｔｉｃｓＣｏｍｐｕｔｅｒＧｒｏｕｐ（ＧＣＧは、最近Ａｃｃｅｌｒｙｓになった）分析パッケージである。

以下に記載されているオリゴヌクレオチドプライマーおよびプローブは、多くの方法において作製することができる。これらのオリゴヌクレオチドを作製するための１つの方法は、市販の核酸シンセサイザーを使用して合成することである。種々のこのようなシンセサイザーが存在し、当業者によく知られている。

核酸はまた、ハイブリダイゼーション方法により検出され得る。これらの方法において、標識核酸が、標識もしくは非標識核酸プローブを含有する基質に加えられ得る。あるいは、非標識核酸が、標識核酸プローブを含有する基質に加えられ得る。ハイブリダイゼーション方法は、例えば、Micro Array Analysis, Marc Schena, John Wiley and Sons, Hoboken N.J. 2003において記載されている。

核酸を検出する方法は、標識の使用を含むことができる。例えば、放射性標識は、（放射性リン酸取り込みを検出および定量するために）写真フィルムまたはホスフォイメージャーを使用して検出され得る。蛍光マーカーは、放射光を検出するために光検出器を使用して検出および定量され得る（典型的な装置に関して米国特許第５，１４３，８５４号参照）。酵素標識は、一般的に、基質と共に酵素を提供し、基質に対する酵素の作用により生産された反応産物を測定することにより検出される。比色標識は、着色標識(colored label)を単に可視化することにより検出される。１つの態様において、増幅された核酸分子は、核酸挿入色素で増幅産物を直接染色することにより可視化される。当業者に明白であるとおり、典型的な色素は、に限定はしないが、ＳＹＢＲグリーン、ＳＹＢＲブルー、ＤＡＰＩ、ヨウ素化プロピジウム、および臭化エチジウムを含む。増幅されたＤＮＡ分子中に挿入された発光色素の量は、製造業者の指示にしたがって、慣用の検出デバイスを使用して便利に定量することができる増幅産物の量に正に比例する。このようなアプローチのバリエーションは、増幅産物のゲル電気泳動、次に、選択された挿入色素の染色および視覚化である。あるいは、標識オリゴヌクレオチドハイブリダイゼーションプローブ（例えば、蛍光プローブ、例えば、蛍光共鳴エネルギー移動（ＦＲＥＴ）プローブおよび比色プローブ）が、増幅を検出するために使用され得る。所望により、試験されている生物学的存在物を表すゲノム配列の特異的増幅は、シーケンシングにより、または、増幅産物が予測されたサイズを有するか、予測される制限消化パターンを示すか、または正確なクローン化ヌクレオチド配列にハイブリダイズすることを明らかにすることにより立証され得る。

本発明はまた、キットを含む。例えば、キットは、（ＤＮＡポリメラーゼ由来の干渉シグナルを許容しない一方で）サンプル中で選択される酵素または混合物の活性のための核酸分子を含む基質、酵素活性に適した条件下でサンプルおよび基質をインキュベートするためのインキュベーション手段、および（微生物の存在を示すものとして）基質核酸分子に対する選択される酵素または混合物の作用から生じる核酸分子の存在および／または量を特異的に決定するための手段を含むことができる。このようなキットはまた、正常であれば滅菌されている体液をそこに微生物が存在するかしないかに関してスクリーニングするための、および診断、予後患者管理情報を提供するために、本発明の新規方法を行うのに適した他の試薬、ならびに特異的もしくは一般的に生物体に対応する核酸分子を増幅するために有用なプライマー、ＤＮＡを単離するためのバッファーおよび試薬、およびＰＣＲのための試薬を含み得る。キットは、興味ある生物体に対応するポリペプチドをコードする核酸配列にハイブリダイズする検出可能に標識されたオリゴヌクレオチドをさらに含み得る。キットはまた、アッセイし、含まれる試験サンプルと比較することができる対照サンプルまたは一連の対照サンプルを含み得る。キットのそれぞれの成分は、個々の容器内に封入することができ、種々の容器の全てが、キットを使用して行われたアッセイの結果を解釈するための指示書と共に、単一のパッケージ内に包含され得る。

また、本発明により提供される方法は、本明細書において提供される原理および教示を利用する完全または部分的微生物ゲノムおよび／またはトランスクリプトーム配列分析を行うことをさらに含み、該完全または部分的微生物ゲノムおよび／またはトランスクリプトーム配列分析は、本明細書に記載されている単一のサンプル調製を使用して同時に、一斉に、または並行して行うことができると理解されるべきである。また、本明細書における本発明の新規方法が、患者の管理において有用な抗−微生物および／または抗−ポリメラーゼ活性を有する薬剤の診断測定および検出のために提供することができると理解されるべきである。

本出願中で引用されている全ての文献、特許および公開特許出願の内容は、それぞれの個々の文献、特許または特許出願が具体的にかつ個々に出典明示により包含させることが示されているかのように、出典明示により同じ範囲まで本明細書に包含させる。

前記詳細な説明は、明瞭な理解のためだけに与えられており、変更が当業者に自明であるため、不必要な限定は該記載から推測されるべきではない。本明細書において提供されるいかなる情報も先行技術もしくは本願発明に関連している技術であるとは認めておらず、または具体的に、もしくは暗に引用されているいかなる文献も先行技術であるとは認めていない。

別段定義されていない限り、本明細書において使用される全ての専門および科学用語は、本発明が属する分野における通常の技術者により一般的に理解されるのと同じ意味を有する。

本発明は詳細に記載されているが、本明細書における具体例は、本発明の態様を具体的に説明する目的で、および明瞭に理解する目的のために提供される。本明細書に記載の本発明の教示に照らして、本発明の精神または範囲から逸脱することなく、記載されているこれらの態様に多数の変更を施すことができることは、当業者に容易に理解される。

本発明は具体的態様に関連して記載されているが、さらなる変更が可能であること、および、本出願は、一般的に、本発明の原理に従い、かつ、本発明が関係する分野内の既知のまたは慣習的な習慣内にあるような、上記重要な特徴に適用され得るような、および、特許請求の範囲に従うような、本記載からの逸脱を含む本発明のあらゆる変形、使用または適合を含むことが意図されることは、理解されよう。

Claims

サンプル中の微生物の存在を検出する方法であって、該サンプル中の前記微生物の存在の指標として、ポリメラーゼ活性が検出され、該方法は、
（ａ）サンプルを、サンプル中でポリメラーゼ活性に対する基質として作用するライゲート不可能な核酸分子と接触させること；
（ｂ）このように接触されたサンプルをポリメラーゼ活性に適した条件下でインキュベートすること；および
（ｃ）基質核酸分子に対する微生物ポリメラーゼの作用から生じる核酸分子の存在および／または量を特異的に決定し、それにより、微生物の存在を示すこと
を含む方法。
ポリメラーゼが、ＤＮＡまたはＲＮＡポリメラーゼのいずれかである、請求項１に記載の方法。
検出される微生物が、サンプル中の生存微生物である、請求項１又は請求項２に記載の方法。
検出される微生物が、サンプル中の無傷な微生物である、請求項１に記載の方法。
検出される無傷な微生物が、核酸ポリメラーゼ遺伝子およびその翻訳された活性タンパク質ポリメラーゼが、該微生物の生存能力に必須であるものである、請求項４に記載の方法。
ポリメラーゼ基質が固定されている、請求項１に記載の方法。
微生物が検出されるサンプルが、正常であれば滅菌されている体液である、請求項１に記載の方法。
サンプルを差示的な細胞溶解サンプル調製方法を使用して調製し、それにより、生存能力のある微生物由来のポリメラーゼ活性のみがポリメラーゼ特異的基質を修飾することができる、請求項１に記載の方法。
微生物が検出されるサンプルが、粗細胞溶解物または精製細胞画分から調製される、請求項１ないし請求項８のいずれかに記載の方法。
完全または部分的微生物ゲノムおよび／またはトランスクリプトーム配列分析を行うことをさらに含む、請求項１ないし請求項９のいずれかに記載の方法。
完全または部分的微生物ゲノムおよび／またはトランスクリプトーム配列分析が、単一のサンプル調製を使用して、同時に、一斉に、または並行して行うことができる、請求項１０に記載の方法。
微生物の完全または部分的微生物ゲノムおよび／またはトランスクリプトーム配列分析が、抗−微生物および／または抗−ポリメラーゼ活性を有する薬剤の選択のための方法をさらに含む、請求項１０に記載の方法。
前記サンプルが、血液又は血液培養サンプルを含む、請求項１ないし請求項１２のいずれかに記載の方法。
ポリメラーゼ活性に対する基質として作用するライゲート不可能な核酸分子と組み合わせた、サンプル中の微生物の存在の指標としてのポリメラーゼ活性の使用。