WO2019059279A1 - 細胞懸濁液を調製するためのデバイス、システム及び方法 - Google Patents

細胞懸濁液を調製するためのデバイス、システム及び方法 Download PDF

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WO2019059279A1
WO2019059279A1 PCT/JP2018/034816 JP2018034816W WO2019059279A1 WO 2019059279 A1 WO2019059279 A1 WO 2019059279A1 JP 2018034816 W JP2018034816 W JP 2018034816W WO 2019059279 A1 WO2019059279 A1 WO 2019059279A1
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cell suspension
space
liquid
discharge
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PCT/JP2018/034816
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Inventor
林 真司
Original Assignee
株式会社カネカ
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    • C12M1/00Apparatus for enzymology or microbiology
    • C12M1/26Inoculator or sampler
    • C12M1/28Inoculator or sampler being part of container
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M3/00Tissue, human, animal or plant cell, or virus culture apparatus
    • C12M3/02Tissue, human, animal or plant cell, or virus culture apparatus with means providing suspensions
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    • C12M3/00Tissue, human, animal or plant cell, or virus culture apparatus
    • C12M3/06Tissue, human, animal or plant cell, or virus culture apparatus with filtration, ultrafiltration, inverse osmosis or dialysis means
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
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    • C12M3/00Tissue, human, animal or plant cell, or virus culture apparatus
    • C12M3/08Apparatus for tissue disaggregation

Definitions

  • the present invention relates to a system suitable for preparing a cell suspension from a cell-containing sample, such as a biological tissue, and to a method of preparing a cell suspension from a cell-containing sample using the system.
  • the invention also relates to a device suitable for preparing a cell suspension from a cell-containing sample, such as a biological tissue.
  • concentration and washing operation using centrifugation are known.
  • a method is disclosed that uses centrifugation to separate and concentrate regenerative cells from human tissue (US Pat. No. 5,677,859).
  • the apparatus becomes large, the cell is loaded, and the available facilities are limited due to the increase in cost.
  • the supernatant of the cell suspension after precipitation of the cells by centrifugation is removed for washing the cells, the cells may be released to the atmosphere, which may cause problems such as contamination.
  • Patent Document 2 a method for separating a cell suspension using a hollow fiber separation membrane, which is a compact and simple device, and a filtration method have been proposed (Patent Document 2).
  • the applicant also uses a hollow fiber type separation membrane as a method for producing a cell concentrate, for example, for discharging a cell suspension inlet for receiving a cell suspension and a liquid substantially free of the cell component.
  • Hollow fiber type separation having a molecular weight cut off of 1000 kD or less disposed between the filtrate outlet of the cell suspension, the cell suspension outlet for discharging the cell suspension, and the cell suspension inlet and the cell suspension outlet
  • Patent Document 3 A method for concentrating a cell suspension (Patent Document 3) is proposed, which comprises a membrane and uses a cell suspension processor that is an internal pressure filtration system.
  • Example 1 of Patent Document 4 an adipose tissue and a collagenase solution are accommodated in a 50 mL centrifugal tube, shaken at 37 ° C., 120 times / min, for 1 hour to perform an enzyme reaction, and then a filter It is described that filtration and centrifugation are performed to obtain a precipitated cell population (SVF fraction) as sediment.
  • SVF fraction precipitated cell population
  • Patent Document 5 discloses a device for separating non-fat cells from a fat tissue sample, a material of a first sheet, a material of a second sheet bonded to the material of the first sheet, and a material of the first sheet
  • An apparatus comprising a plurality of chambers defined between a substance and the substance of the second sheet. And a sample dissociation chamber including an inlet and an outlet, a waste collection chamber including an inlet in fluid communication with the outlet of the sample dissociation chamber, and a flow in fluid communication with the sample dissociation chamber as the plurality of chambers.
  • a cell purification chamber is disclosed that includes an inlet and an outlet.
  • the sample dissociation chamber further includes a mesh filter therein, and the cell purification chamber further includes a mesh filter smaller in pore size than the mesh filter in the sample dissociation chamber.
  • a concentration washing method of cell suspension using a hollow fiber separation membrane module is preferable because the load on cells is small.
  • Patent Document 5 describes an apparatus for separating non-adipocytes from a fat tissue sample, but since a mesh filter is disposed in a sample dissociation chamber for performing an enzyme treatment of a fat tissue sample, a mesh is used. It is believed that the filter is clogged and not suitable for cell separation.
  • the present invention is carried out from preparation of cell suspension by enzyme treatment of cell-containing sample to concentration washing of cell suspension using hollow fiber membrane separation module, from cell-containing sample to cell suspension to cells.
  • the present invention also provides a system that can be efficiently prepared under low load conditions, and a method of preparing a cell suspension using the system.
  • the present invention also provides a device for preparing a cell suspension suitable for supply to a hollow fiber membrane separation module by enzymatic treatment of a cell-containing sample.
  • the present inventors have surprisingly found that by combining a cell suspension preparation device having the following features with a concentration washing device, the cell suspension can be efficiently loaded on cells from low load conditions. It has been found that it can be prepared in the following manner.
  • a cell suspension preparation system comprising: A cell suspension preparation device for preparing a cell suspension, and a concentration washing device for concentrating or washing the cell suspension prepared by the cell suspension preparation device;
  • the cell suspension preparation device comprises a first container and a second container,
  • the first container is A first container body containing the first space; And a first discharge portion formed with a discharge port for liquid from the first space
  • the second container is A second container body containing the second space;
  • a mesh sheet arranged to divide the second space into a first section and a second section;
  • a second input portion having an input port formed therein for inputting a liquid discharged from the first space of the first container through the discharge port of the first discharge section into the first compartment;
  • the concentration cleaning device includes a hollow fiber separation membrane and a storage container for storing the hollow fiber separation membrane, and the storage container is treated with the inlet for the liquid supplied to the hollow fiber separation membrane and the hollow fiber separation membrane.
  • a hollow fiber separation membrane module having a liquid outlet port and a filtrate outlet port for discharging the filtrate from the hollow fiber separation membrane;
  • a circulation channel for circulating the liquid from the outlet of the hollow fiber separation membrane module to the inlet;
  • a storage container disposed in the middle of the circulation channel;
  • a liquid sending unit for sending the liquid in the circulation channel from the outlet of the hollow fiber separation membrane module to the inlet.
  • the storage container is A storage container main body including a storage space for storing the liquid flowing in the circulation flow path; What is claimed is: 1.
  • a cell suspension preparation system comprising: a supply unit having a supply port formed therein for supplying a liquid treated with the cell suspension preparation device to a storage space.
  • the device for preparing a cell suspension further comprises a third container,
  • the third container is A third container body containing a third space;
  • the cell suspension preparation system according to (1) further comprising: a third input unit in which an input port for introducing a liquid discharged from the second compartment of the second container into the third space is formed.
  • (3) In the cell suspension preparation device, between the first discharge part of the first container and the second input part of the second container, and the second discharge part of the second container and the third of the third container.
  • the cell suspension preparation system according to any one of (1) to (6), wherein the pore size of the mesh sheet is 50 to 300 ⁇ m.
  • the second container body includes a first side wall and a second side wall opposite to each other with the mesh sheet interposed therebetween, The first side wall and the mesh sheet enclose the first section; A second side wall and a mesh sheet enclose a second compartment; The second insertion portion is disposed between the peripheral portion of the first side wall and the peripheral portion of the mesh sheet so as to communicate the first section with the outside through the second insertion port, The second discharge portion is disposed between the peripheral portion of the second side wall and the peripheral portion of the mesh sheet so as to communicate the second section with the outside through the second discharge port, The cell suspension preparation system according to any one of (1) to (7), wherein the first side wall, the second side wall and the mesh sheet are integrated at the peripheral portion to form a second container.
  • the second insertion portion and the second discharge portion are disposed at opposing positions of the second container body, A width W1 of an end of the second compartment on the side of the first section along the direction in which the first side wall and the second side wall oppose each other A width W2 of an end of the second discharge part on the side of the second section along the direction in which the first side wall and the second side wall face each other W, the average value of W1 and W2,
  • the distance between the end of the second compartment on the side of the first compartment and the end of the second compartment on the side of the second compartment is D
  • the cell suspension preparation system as described in (8) whose D / W is 13 or more.
  • the cell-containing sample is a biological sample
  • a layer separation step is performed in which the first container is allowed to stand until the enzyme-treated liquid in the first space of the first container generated in the step 1 is separated into two layers of an oil layer and an aqueous layer.
  • step 2 performed after the layer separation step, when the aqueous layer in the first space of the first container moves to the first compartment of the second container on the way, the enzyme between the first container and the second container Stop the transfer of the processing solution, add the washing solution to the first space of the first container, mix the oil layer and the washing solution remaining in the first space, and separate the mixture into two layers, the oil layer and the water layer.
  • the first container is allowed to stand until done, and after standing still, the washing step of moving the aqueous layer to the first compartment of the second container is performed one or more times, (11).
  • a device for preparing a cell suspension Comprising a first container and a second container,
  • the first container is A first container body containing the first space; And a first discharge portion formed with a discharge port for liquid from the first space
  • the second container is A second container body containing the second space;
  • a mesh sheet arranged to divide the second space into a first section and a second section;
  • a second input portion having an input port formed therein for inputting a liquid discharged from the first space of the first container through the discharge port of the first discharge section into the first compartment;
  • a device for preparing a cell suspension comprising: a second discharge part in which a discharge port of liquid from the second compartment is formed.
  • a third container is further provided,
  • the third container is A third container body containing a third space;
  • the present specification includes the disclosure content of Japanese Patent Application No. 2017-180564 on which the priority of the present application is based.
  • the systems, devices and methods of the present invention allow cell suspensions to be efficiently prepared from cell-containing samples.
  • FIG. 1 shows the cell suspension preparation device of the first embodiment as a cell suspension preparation device. It is a figure which shows the 1st container of the device for cell suspension preparation of 1st Embodiment which can be used for the cell suspension preparation system of this invention. It is a figure which can be used for the cell suspension preparation system of this invention, and is a figure which shows the 2nd container and 3rd container of the device for cell suspension preparation of 1st Embodiment.
  • FIG. 4 is a schematic view of a cross section taken along line II shown in FIG. 3; It is a schematic diagram of the cross section in the II-II line shown in FIG. FIG.
  • FIG. 6 is a view showing an embodiment of a concentration washing apparatus that can be used for the cell suspension preparation system of the present invention. It is a figure for demonstrating the washing
  • cell-containing samples include living tissues, and cell cultures prepared in vitro.
  • the biological tissue is typically a biological tissue collected from an animal, such as fat, skin, blood vessels, cornea, oral cavity, kidney, liver, pancreas, heart, nerve, muscle, prostate, intestine, amniotic membrane, placenta, umbilical cord, etc.
  • biological tissues derived from The methods disclosed herein are particularly useful for removing interstitial vascular fraction (SVF) cells from adipose tissue.
  • SVF interstitial vascular fraction
  • the adipose tissue is typically mammalian adipose tissue, such as subcutaneous fat of human origin, visceral fat, white fat and brown fat.
  • Adipose tissue may have any shape, for example, one obtained by crushing adipose tissue using a sharp instrument such as scissors, one obtained by mincing using a filter, etc., or one obtained by decomposition using liposuction.
  • the liposuction method is not particularly limited as long as it is a suction method performed in general cosmetic surgery, and for example, a method by ultrasonic liposuction, powered liposome suction using a cannula or the like, syringe suction, etc. It is.
  • a nucleated cell is a cell having a nucleus in the cell.
  • the cells contained in the cell suspension need to be collected for the purpose of cell therapy, experiments, etc.
  • living tissue stem cells white blood cells, monocytes, granulocytes, lymphocytes, vascular endothelial cells, vascular endothelial precursor cells, pericytes, etc.
  • the living tissue stem cells are preferably fat-derived mesenchymal stem cells, fat-derived stromal stem cells, and more preferably express at least one selected from CD34, 73, 90, 105, 106, 133, 166 on the cell surface Fat-derived mesenchymal cells, fat-derived stromal stem cells.
  • At least one degradation enzyme selected from collagenase, metalloprotease, dispase, trypsin, hyaluronidase, chymotrypsin, pepsin, aminopeptidase, lipase, amylase and their recombinants is used it can.
  • a living tissue in particular an adipose tissue
  • at least one selected from collagenase, metalloprotease, dispase, trypsin and hyaluronidase from the viewpoint of degradation in a short time and minimally invasive manner as an enzyme Species degrading enzymes are preferred.
  • Aqueous medium for dissolving enzyme to prepare enzyme solution Aqueous medium for carrying out enzyme treatment of cell-containing sample, Aqueous medium for suspending cells, Washing liquid for washing enzyme-treated cell-containing sample And / or as a washing solution for washing the cell suspension by the concentration washing device, water, physiological saline, phosphate buffer, glucose solution, Ringer solution, Hanks solution, injection solution, culture medium, isotonic solution, etc.
  • Aqueous media can be used.
  • a cell suspension preparation system 1 comprises a cell suspension preparation device 2 for preparing a cell suspension, and a concentration washing device 3 for concentrating or washing the cell suspension. Equipped with Hereinafter, the configuration of the cell suspension preparation device 2, the configuration of the concentration washing device 3, and the method of preparing a cell suspension using the cell suspension preparation system 1 will be described.
  • the cell suspension preparation device 2 includes a first container 100, a second container 200, and a third container 300. 1 to 3 show a first embodiment of the cell suspension preparation device 2.
  • the first container 100 includes a first container main body 110 including the first space 114 and inlets 121A, 121B, and 121C for the material into the first space 114.
  • a first discharge portion 130A and a first discharge portion 130B having a first input portion 120 formed of the input portions 120A, 120B and 120C, and discharge ports 131A and 131B of the liquid from the first space 114 formed therein. And a unit 130.
  • the first loading portion 120A protects the pipe portion 122A forming the loading port 121A of the material into the first space 114, the female luer lock 123A which closes the inlet of the tubular portion 122A in a manner that allows communication with each other, and the female luer lock 123A.
  • the first input portion 120B protects a pipe portion 122B forming an input port 121B of the material into the first space 114, a needleless port 123B that closes the inlet of the pipe portion 122B in a manner that allows communication with each other, and a needleless port 123B. And a detachable lid portion 124B.
  • the first input portion 120C protects a pipe portion 122C forming an input port 121C of the material into the first space 114, a needleless port 123C which seals the inlet of the pipe portion 122C in a manner that allows communication with each other, and a needleless port 123C. And a detachable lid portion 124C.
  • the first discharge part 130A protects the pipe part 132A which forms the discharge port 131A of the liquid from the first space 114, the needleless port 133A which closes the outlet of the pipe part 132A in a communicably manner, and the needleless port 133A. And a removable lid 134A.
  • the first discharge part 130B protects the pipe part 132B which forms the discharge port 131B of the liquid from the first space 114, the needleless port 133B which closes the outlet of the pipe part 132B in a communicably manner, and the needleless port 133B. And a removable lid 134B.
  • the first container 100 is provided with three first input portions 120, but may be provided with only one, only two, or four or more first input portions.
  • the first input unit 120 is a material (for example, a cell-containing sample, an enzyme, an enzyme solution, etc.) used for enzyme treatment of a cell-containing sample in the first space 114 of the first container 100 or a cell in the first space 114 It is used to introduce a cleaning solution for use in cleaning the contained sample into the first space 114.
  • the first container 100 includes two first discharge parts 130, but may include only one or three or more first discharge parts.
  • the first discharge unit 130 is used to discharge from the first space 114 at least a part of the enzyme treatment liquid containing free cells formed by enzyme treatment of the cell-containing sample.
  • the first container body 110 has the first resin sheet 111 and the second resin sheet 112 disposed opposite to each other, and the peripheral portions thereof are joined by heat fusion to form a bag.
  • a portion where the first resin sheet 111 and the second resin sheet 112 are joined by heat fusion is referred to as a fusion part 113.
  • a first space 114 is formed in the first container main body 110 between the first resin sheet 111 and the second resin sheet 112.
  • FIG. 2 is a schematic plan view of the first container 100 in which the first space 114 is empty, and although not shown, when the reaction mixture containing the cell-containing sample and the enzyme is contained in the first space 114.
  • the first container body 110 expands in a bag shape. Enzymatic treatment of the cell-containing sample is performed in the first space 114.
  • the tube portions 122A, 122B, 122C of the first input portions 120A, 120B, 120C have the first resin sheet 111 and the second resin sheet 111 with one end thereof on the side of one end of the first container body 110 in the longitudinal direction.
  • the first resin sheet 111 and the second resin sheet 112 which are disposed between the resin sheet 112 and the periphery thereof are joined by heat fusion to be integrated with the first container main body 110.
  • the tube portions 132A and 132B of the first discharge portions 130A and 130B have the first resin sheet 111 and the second resin sheet 111 on the side of the other end in the longitudinal direction of the first container main body 110 at one end thereof.
  • the first resin sheet 111 and the second resin sheet 112 which are disposed between the resin sheet 112 and the periphery thereof are joined by heat fusion to be integrated with the first container main body 110.
  • the through holes 115, 115 are formed on the outer side of the fusion bond portion 113 at both ends of the side of the first container main body 110 where the first input portion 120 is disposed.
  • the through hole 115 can be used to hook on a hook or the like.
  • first resin sheet 111 and the second resin sheet 112 and the respective pipe portions 122A, 122B, 122C, 132A, 132B and 132C be formed of a material having flexibility.
  • the material having flexibility include soft vinyl chloride, vinyl chloride, polyurethane, ethylene-vinyl acetate copolymer, polyolefin such as polyethylene and polypropylene, styrene-butadiene-styrene copolymer or hydrogenated product thereof
  • flexible resins such as thermoplastic elastomers such as styrene-isoprene-styrene copolymer or a hydrogenated product thereof and mixtures of thermoplastic elastomers and softeners such as polyolefin and ethylene-ethyl acrylate.
  • first resin sheet 111 and the second resin sheet 112 are at least partially made of a transparent or translucent material, it is preferable because the state of the cell suspension inside can be visually observed. It is preferable that the inner side surfaces of the first resin sheet 111 and the second resin sheet 112 be processed with a pear because the residual liquid can be reduced when the cell suspension is discharged.
  • the second container 200 in the cell suspension preparation device 2 includes a second container main body 210 containing a second space 214 and a second space 214.
  • a mesh sheet 215 arranged to divide into a section 214-1 and a second section 214-2, a second input part 220 formed with a liquid inlet 221 to the first section 214-1, and a second And a second discharge part 230 in which a discharge port 231 of the liquid from the section 214-2 is formed.
  • the second input part 220 is attached to the pipe part 222 forming the liquid inlet 221 to the first section 214-1 and the inlet of the pipe part 222, and the first discharge parts 130A and 130B of the first container 100.
  • the male connector 223 connectable to the needleless port 133A, 133B, the lid 224 for protecting the male connector 223, and the tube part 222 are attached to the outside to open and close the flow path of the inlet 221 in the tube part 222
  • the second discharge part 230 is constituted by a pipe part 232 which forms a discharge port 231 of the liquid from the second section 214-2.
  • the second container main body 210 can be made of any material and how it can be formed unless it can hold the mesh sheet 215 inside and affect the cells etc. held inside. It may be
  • the second container main body 210 and the mesh sheet 215 are opposed to each other with the mesh sheet 215 interposed therebetween, and a third resin sheet 211 which is an embodiment of the first side wall, and A second space 214 is formed between the third resin sheet (first side wall) 211 and the fourth resin sheet (second side wall) 212 including the fourth resin sheet 212 which is an embodiment of the side wall;
  • the resin sheet (first side wall) 211 and the mesh sheet 215 surround the first section 214-1 of the second space 214, and the fourth resin sheet (second side wall) 212 and the mesh sheet 215 form the second in the second space 214. It can be configured to enclose the two sections 214-2.
  • the third resin sheet (first side wall) 211, the fourth resin sheet (second side wall) 212, and the mesh sheet 215 have a substantially circular planar shape, and the third resin sheet (first side wall) 211 and the fourth resin sheet The dimensions are substantially the same as those of the (second side wall) 212, and the dimensions of the mesh sheet 215 are smaller than that.
  • the third resin sheet 211, the fourth resin sheet 212, and the mesh sheet 215 are the peripheral portion 211A of the third resin sheet 211, the peripheral portion 212A of the fourth resin sheet 212, and the mesh sheet 215A.
  • the peripheral portion 215A is integrated by heat fusion to form a fusion part 213.
  • FIGS. 4 and 5 are schematic cross-sectional views of the second container 200 in a state where the second space 214 is empty.
  • the third resin sheet 211 and the fourth resin sheet 212 are resin sheets having flexibility
  • the central portions of the third resin sheet 211 and the fourth resin sheet 212 are It bulges outward to change its shape, and the volume of the second space 214 increases.
  • the mesh sheet 215 described later.
  • the second container main body 210 is at least partially made of a transparent or translucent material, since the appearance of the cell suspension inside can be visually observed. If the materials of the third resin sheet 211 and the fourth resin sheet 212 constituting the second container main body 210 can be adhered by heat fusion without using an adhesive, the manufacturing process can be simplified. It is preferable because it does not have to consider the influence of the adhesive on cells.
  • the third resin sheet 211 and the fourth resin sheet 212 and the respective pipe portions 222 and 232 be formed of a flexible material.
  • a resin material that can be used for the first resin sheet 111 and the second resin sheet 112 of the first container 100 and each of the pipe sections 122A, 122B, 122C, 132A, 132B, 132C It is the same as illustrated.
  • the inner side surfaces of the third resin sheet 211 and the fourth resin sheet 212 be processed with a pear because the amount of residual liquid can be reduced when discharging the cell suspension.
  • the mesh sheet 215 is arranged to divide the second space 214 into a first section 214-1 and a second section 214-2.
  • the mesh sheet preferably has a pore diameter in the range of 50 to 300 ⁇ m. If the pore diameter is in such a range, contaminants such as undigested tissue lumps and debris contained in the enzyme-treated product of living tissue are removed without causing clogging of the mesh, and only necessary cells are removed. It can be passed. In order to further exhibit this effect, the pore size is preferably 50 ⁇ m or more, preferably 300 ⁇ m or less, more preferably 200 ⁇ m or less.
  • the mesh sheet 215 preferably has a hole area ratio of 40% or more, particularly 45% or more, so clogging is less likely to occur.
  • a “mesh” is a material having a planar spread, in which a plurality of pores penetrating from one surface to the other are two-dimensionally arranged to form a network structure.
  • Means Examples of the mesh include, but not limited to, those in which fibers are woven to form a network structure, and membranes in which a plurality of pores penetrated in the thickness direction are formed.
  • Meshes also include what are commonly referred to as "screens”. A sheet composed of mesh is called “mesh sheet”.
  • mesh is a material that does not have the network structure and has three-dimensional pores (for example, a fibrous porous medium or a sponge-like structure, and does not have the network structure and three-dimensional It is a concept different from the material having a pore).
  • the material of the mesh sheet 215 is a synthetic resin material such as nylon, polyester, rayon, polyolefin, polystyrene, acrylic resin, polycarbonate, polyacrylamide, polyurethane, vinyl chloride, etc. from the viewpoint of safety and stability of the material and availability.
  • synthetic polymers selected from at least one of the foregoing, hydroxyapatite, inorganic materials such as glass, alumina, and titania, and metals such as stainless steel, titanium, and aluminum.
  • the combination is not particularly limited, but polyolefin, polystyrene, acrylic resin, nylon, polyester, polycarbonate, polyacrylamide, polyurethane, synthetic polymers such as vinyl chloride, hydroxyapatite, glass,
  • a combination of two or more materials selected from the group consisting of inorganic materials such as alumina and titania, and metals such as stainless steel, titanium and aluminum is preferred.
  • the mesh sheet 215 is provided in the second container main body 210 so that the mesh sheet surface is substantially flat when liquid is introduced into at least the second space 214. Since the mesh sheet 215 can transmit the liquid, the liquid medium in the liquid charged through the inlet 221, the dissolved component, and the component having a size that can transmit the mesh sheet permeate the mesh sheet 215. The second section 214-2 also moves, and a component of a size that can not pass through the mesh sheet 215 remains in the first section 214-1.
  • the pore diameter of the mesh sheet is the maximum inscribed in the outline of the inner circumference of the pores, which is specified by observing the pores penetrating from one surface of the mesh sheet to the other surface along the penetration direction. Means the average value of the diameter of the inscribed circle. The average value is preferably calculated from, for example, a value obtained by observing 50 or more, preferably 100 or more pores. If the mesh sheet is such that the fibers are woven to form a network structure, the pore size is equal to the average opening of the mesh. The mean opening can be calculated based on the number of fibers per unit length (for example, 1 inch) measured using, for example, a luminometer.
  • the open area ratio of the mesh sheet refers to the ratio of the total area of open areas to the entire area of the mesh sheet in plan view.
  • the second input portion 220 and the second discharge portion 230 may be provided in any manner, for example, the configuration shown in FIGS. 4 and 5 as described above in the relative relationship between the second container main body 210 and the mesh sheet 215. That is, in the configuration in which the third resin sheet 211 and the fourth resin sheet 212 are disposed to face each other and the mesh sheet 215 is disposed therebetween, the pipe portion 222 of the second insertion portion 220 is the peripheral portion 211A of the third resin sheet 211 Between the first section 214-1 and the outside through the inlet 221 in the pipe section 222, and the pipe section 232 of the second discharge section 230 is Between the peripheral portion 212A of the fourth resin sheet 212 and the peripheral portion 215A of the mesh sheet 215, the second section 214-2 and the outside are connected via the discharge port 231 in the pipe portion 232.
  • the pipe portion 222 of the second input portion 220 can be disposed so as to be sandwiched between the peripheral portion 211A of the third resin sheet 211 and the peripheral portion 215A of the mesh sheet 215, and the second discharge
  • the pipe portion 232 of the portion 230 can be disposed so as to be sandwiched between the peripheral portion 212A of the fourth resin sheet 212 and the peripheral portion 215A of the mesh sheet 215.
  • the second input portion 220 and the second discharge portion 230 may be provided at any position of the second container main body 210 as long as the relative position to the mesh sheet 215 is as described above. However, when the second input portion 220 and the second discharge portion 230 are provided in the second container main body 210 so as to face each other, the enzyme treatment liquid from the first discharge portion 130 of the first container 100 to the second input portion 220 It is preferable because the processing from the input of the second to the discharge of the cell suspension from the second discharge unit 230 can be performed smoothly.
  • “provided at mutually opposing positions” means, for example, as shown in FIGS. 3 to 5, when the second container main body 210 has a circular planar shape, a pair facing each other with the center of the circle in between.
  • the second input portion 220 is provided at one of the positions, and the second discharge portion 230 is provided at the other position.
  • the third resin sheet 211 and the fourth resin sheet 212 at the end 222 ′ on the side of the first section 214-1 of the pipe section 222 of the second input part 220 have a width W1 along the direction in which the Let W2 be the width along the direction in which the sheet 212 faces, and (iii) the end 222 'of the pipe section 222 of the second input section 220 on the side of the first section 214-1 and the second discharge section 230 Assuming that the distance between the end 232 ′ of the pipe section 232 on the side of the second section 214-2 is D, and the average value of W1 and W2 is W, D / W is 13 or more.
  • the third container 300 has a third container main body 310 containing the third space 314 and a third insertion in which a liquid inlet 321 to the third space 314 is formed. And a third discharge part 330 in which a discharge port 331 of the liquid from the third space 314 is formed.
  • the third container body 310 has a substantially rectangular fifth resin sheet 311 and a sixth resin sheet 312 disposed opposite to each other, and peripheral portions thereof are joined by heat fusion to form a bag. A portion where the fifth resin sheet 311 and the sixth resin sheet 312 are joined by heat fusion is referred to as a fusion part 313.
  • a third space 314 is formed between the fifth resin sheet 311 and the sixth resin sheet 312.
  • FIG. 3 is a schematic plan view of the first container 100 in which the third space 314 is empty.
  • the third container body 310 expands in a bag shape. In the third space 314, the cell suspension discharged through the mesh sheet 215 in the second container 200 is stored.
  • the third input portion 320 is constituted by a pipe portion 322 forming an input port 321 of the liquid to the third space 314.
  • the upstream end of the pipe portion 322 of the third insertion portion 320 is connected to the downstream end of the pipe portion 232 of the second discharge portion 230 of the second container 200, and the pipe portion 232 of the second discharge portion 230,
  • the pipe portion 322 of the third input portion 320 integrally forms a flow path communicating the second section 214-2 of the second space 214 of the second container 200 to the third space 14 of the third container 300.
  • the pipe portion 322 of the third input portion 320 is disposed between the fifth resin sheet 311 and the sixth resin sheet 312 on the side of one end of the third container body 310 in the longitudinal direction, and the fifth resin around it
  • the sheet 311 and the sixth resin sheet 312 are joined by heat fusion to be integrated with the third container body 310.
  • the third discharge portion 330 includes a pipe portion 332 forming a discharge port 331 serving as a flow path of the liquid discharged from the third space 314, a needleless port 333 sealing the outlet of the pipe portion 332 communicably, and a needle It is comprised by the removable cover part 334 which protects the Lesport 333.
  • a pipe portion 332 forming a discharge port 331 serving as a flow path of the liquid discharged from the third space 314, a needleless port 333 sealing the outlet of the pipe portion 332 communicably, and a needle It is comprised by the removable cover part 334 which protects the Lesport 333.
  • the fifth resin sheet 311 and the sixth resin sheet 312 and the pipe portions 322 and 332 be formed of a flexible material.
  • a resin material that can be used for the first resin sheet 111 and the second resin sheet 112 of the first container 100 and each of the pipe sections 122A, 122B, 122C, 132A, 132B, 132C It is the same as illustrated.
  • the inner side surfaces of the fifth resin sheet 311 and the sixth resin sheet 312 are processed by nudge because residual liquid can be reduced when the cell suspension is discharged.
  • the first discharge part 130 of the first container 100 and the second input part 220 of the second container 200 are separated as described above,
  • the second discharge portion 230 of the second container 200 and the third input portion 320 of the third container 300 are configured to be able to connect a liquid so as to be able to flow, and the pipe portion 232 of the second discharge portion 230;
  • the pipe portion 322 of the third input portion 320 is integrally connected in advance so as to allow the liquid to flow.
  • the device 2 for cell suspension preparation of the first embodiment includes the first container 100 shown in FIG. 2 and the device in which the second container 200 and the third container 300 shown in FIG. 3 are connected in advance. It is a combination.
  • the form of connection of the first container, the second container, and the third container is not particularly limited.
  • the second embodiment (see FIG. 8) and the third embodiment (see FIG. 9) will be described later as other specific embodiments of the device for preparing a cell suspension of the present invention having different modes of connection between containers. .
  • one in which the first container, the second container, and the third container can all be separated is also an example of the cell suspension preparation device of the present invention.
  • the device for preparing a cell suspension comprising the first container, the second container, and the third container preferably comprises the first discharge part of the first container and the second container as shown in the first to third embodiments. At least one of the second container and the second container of the second container and the third container of the third container is connected in advance to the second container.
  • the cell suspension preparation device is composed of one or two parts, and is easy to handle as compared with the case of three parts.
  • the cell suspension preparation device comprising the first container, the second container, and the third container is more preferably the first discharge part and the second container of the first container as shown in the first or second embodiment. Only one of them is connected in advance with the second input part of the second container and between the second discharge part of the second container and the third input part of the third container, and the other is connectable.
  • the device for preparing a cell suspension is composed of two parts, which facilitates processing such as enzyme treatment using the first container and mesh filtration treatment using the second container.
  • the cell suspension preparation device comprising the first container, the second container, and the third container is more preferably, as shown in the first embodiment, the first discharge part of the first container and the second container of the second container.
  • the connection between the second container and the second container is separated in a connectable manner, and the second container of the second container and the third container of the third container are connected in advance. In this case, since the enzyme treatment can be performed in the first container separated from the second container and the third container, the enzyme treatment becomes easy.
  • the third container 300 in the cell suspension preparation device 2 is a container for storing the cell suspension generated through the processing by the first container 100 and the second container 200. It is. For this reason, when the second discharge part 230 of the second container 200 can be connected to the supply part 611 of the storage container 610 of the concentration cleaning device 3 described later, the third container is unnecessary.
  • the fourth embodiment (see FIG. 10) will be described later as a specific embodiment of the cell suspension preparation device not provided with the third container.
  • the device for preparing a cell suspension comprising the first container and the second container and not including the third container preferably has the first discharge part of the first container and the second of the second container as shown in the fourth embodiment. 2
  • the feeding unit is connected in advance. In this case, the cell suspension preparation device is composed of one part, which is easy to handle.
  • the concentration cleaning device 3 of the embodiment shown in FIG. 6 includes a hollow fiber separation membrane module 400, a circulation flow path 601 for circulating a liquid from the outlet port 412 of the hollow fiber separation membrane module 400 to the introduction port 411, and a circulation flow path 601. And a first pump 604, which is a liquid sending unit for sending the liquid in the circulation flow passage 601 from the outlet 412 of the hollow fiber separation membrane module 400 to the inlet 411.
  • the hollow fiber separation membrane module 400 includes a hollow fiber separation membrane 401 and a storage container 410 that stores the hollow fiber separation membrane 401.
  • the storage container 410 is formed with an upstream side head 414 in which an inlet 411 for introducing the liquid supplied to the hollow fiber separation membrane 401 is formed, and an outlet 412 for discharging the liquid treated with the hollow fiber separation membrane 401.
  • a filtrate discharge port 413 for discharging the filtrate in the hollow fiber separation membrane 401 is formed.
  • the upstream end of the trunk portion 416 is covered by the upstream head portion 414, and the downstream end of the trunk portion 416 is covered by the downstream head portion 415.
  • the inlet 411 and the outlet 412 are continuous through the space inside the hollow fiber separation membrane 401, and the filtrate outlet 413 and the inlet 411 and the outlet 412 are hollow fiber separation membranes. It is separated by the membrane wall which constitutes 401, and has a non-continuous structure.
  • the cell suspension supplied from the inlet 411 is introduced to the inside of the hollow fiber separation membrane 401 from the upstream open end 403.
  • the introduced cell suspension passes through the micropores provided on the membrane wall of the hollow fiber separation membrane 401 while filling the space inside the hollow fiber separation membrane 401 and contaminates the outside of the hollow fiber separation membrane 401
  • the filtrate containing the medium components is discharged, and the filtrate is discharged from the hollow fiber separation membrane module 400 from the filtrate outlet 413.
  • the concentrated cell suspension inside the hollow fiber separation membrane 401 is drawn out of the hollow fiber separation membrane module 400 from the downstream open end 404 through the outlet 412.
  • the bundle 402 of the hollow fiber separation membranes 401 is preferably a bundle of about 10 to 1000 hollow fiber separation membranes 401.
  • a synthetic polymer material can be preferably used as the resin material constituting the hollow fiber separation membrane 401 from the viewpoint of the safety and stability of the material.
  • polysulfone-based or cellulose-based hydrophilic polymer materials can be more preferably used.
  • polyether sulfone and cellulose ester can be most preferably used because of the safety, stability and availability of the material.
  • the pore size of the micropores provided in the membrane wall of the hollow fiber separation membrane 401 is preferably 0.1 ⁇ m or more and 1.5 ⁇ m or less.
  • the pore diameter of 0.1 ⁇ m or more is preferable because contaminants such as unnecessary proteins can be efficiently removed at the time of concentration of the cell suspension.
  • it is preferable that the pore diameter is 1.5 ⁇ m or less, since clogging of cells in micropores hardly occurs in the step of concentrating the cell suspension, and the cell recovery rate is improved.
  • the pore diameter is preferably 1.5 ⁇ m or less, more preferably 1.2 ⁇ m or less, and still more preferably 1.0 ⁇ m or less.
  • the pore size refers to the average pore size of the hollow fiber separation membrane, and is generally measured and calculated by a palm porometer.
  • Acrylonitrile polymers such as acrylonitrile butadiene styrene terpolymer as the material of the storage container 410; polytetrafluoroethylene, polychlorotrifluoroethylene, copolymer of tetrafluoroethylene and hexafluoropropylene, halogenated polymers such as polyvinyl chloride; polyamide, Polyimide, polysulfone, polycarbonate, polyethylene, polypropylene, polyvinyl chloride acrylic copolymer, acrylonitrile, butadiene styrene, polystyrene, polymethylpentene and the like can be used.
  • the upstream resin layer portion 421 and the downstream resin layer portion 422 As materials of the upstream resin layer portion 421 and the downstream resin layer portion 422, general adhesive materials such as polyurethane resin, epoxy resin, silicon resin and the like can be preferably used.
  • the concentration cleaning device 3 of the present embodiment further connects the outlet 412 and the inlet 411 of the hollow fiber separation membrane module 400, and circulates the liquid from the outlet 412 to the inlet 411, and a hollow fiber
  • the separation membrane module 400 includes a discharge flow path 602 connected to the filtrate discharge port 413 for discharging the filtrate, and a recovery flow path 603 branched at the branch portion 620 of the circulation flow path 601.
  • the storage container 610 of the embodiment shown in FIG. 6 is disposed in the middle of the circulation channel 601.
  • a portion on the upstream side of the storage container 610 that is, a distance from the outlet 412 of the hollow fiber separation membrane module 400 to the storage container 610 is the upstream circulation flow channel 601A.
  • a portion on the downstream side that is, a portion from the storage container 610 to the introduction port 411 of the hollow fiber separation membrane module 400 is a circulation flow path 601B on the downstream side.
  • the storage container 610 is connected to a storage container main body 616 including a storage space 615 storing the liquid flowing in the circulation flow channel 601 and the circulation flow channel 601A on the upstream side, and from the circulation flow channel 601A on the upstream side to the storage space 615 And a circulation inlet 612 connected to the downstream circulation channel 601B and having a liquid inlet from the storage space 615 to the downstream circulation channel 601B.
  • a supply portion 611 in which a supply port of a liquid processed by the cell suspension preparation device 2 (specifically, a cell suspension prepared using the cell suspension preparation device 2) is formed; And an air filter 614 for adjusting the pressure in the storage space 615.
  • FIG. 6 shows an example in which the upstream circulation channel 601A is connected to the circulation outlet 613 and the downstream circulation channel 601B is connected to the circulation inlet 612.
  • the liquid fed from the outlet port 412 of the hollow fiber separation membrane module 400 toward the inlet port 411 of the hollow fiber separation membrane module 400 passes through the storage space 615 of the storage container 610 along the way. Further, the component supplied to the storage space 615 of the storage container 610 flows in the circulation channel 601 toward the inlet 411 of the hollow fiber separation membrane module 400.
  • a first pump 604 for displacing the liquid in the circulation flow channel 601 from the outlet port 412 of the hollow fiber separation membrane module 400 to the inlet port 411 is disposed. It is done.
  • a first valve 607 is disposed between the branch portion 620 and the storage container 610 in the circulation flow passage 601.
  • the recovery channel 603 is connected to a recovery container (not shown) for recovering the cell suspension, and the second valve 608 is disposed in the middle of the recovery channel 603.
  • the discharge flow path 602 is connected to a waste liquid container 630 for storing the filtrate, and in the middle of the discharge flow path 602, a third valve 606 and a second pump 605 for sending the filtrate to the waste liquid container 630 are disposed. ing.
  • the cell suspension is circulated from the circulation inlet 612 when the first pump 604 is driven.
  • the solution is sent to the inlet 411 of the hollow fiber separation membrane module 400 via the flow path 601, passes through the hollow fiber separation membrane 401, is processed, is led out from the outlet 412, and the circulation flow path 601 from the circulation outlet 613 , And return to the storage container 610.
  • a cell suspension concentrated or washed to a desired cell concentration is generated.
  • a washing liquid container (washing liquid container 500 shown in FIG. 1) filled with the washing liquid is connected to the supply portion 611 of the storage container 610. Introduce to drive the first pump 604.
  • the first valve 607 is closed, the second valve is opened, and the first pump 604 is driven to Are recovered via the recovery channel 603.
  • An appropriate recovery container (not shown) can be connected to the end of the recovery channel 603 to recover the cell suspension.
  • the collection container does not have to be provided as a part of the concentration cleaning device 3, and a collection container separately prepared by the user may be used.
  • a needleless port is connected to the end of the recovery flow path 603, and a recovery container provided with a connectable male connector is connected, or the end of the recovery flow path 603 and a pipe extending from the side of the recovery container
  • the recovery container can be connected to the end of the recovery flow path 603 by connecting the end with a sterile bonding machine.
  • the filtrate which has passed through the membrane wall of the hollow fiber separation membrane 401 is pressure-fed from the filtrate discharge port 413 through the discharge flow path 602 to the waste liquid container 630 by the second pump 605. At this time, the flow of the filtrate can be adjusted by adjusting the third valve 606.
  • the supply unit 611 of the storage container 610 is configured to discharge the third container 300 of the cell suspension preparation device 2. It is preferable that the needleless port 333 of the portion 330 is formed so as to be able to connect and allow liquid flow through the flow path 701.
  • a branch flow channel 702 branched from a branch portion 710 in the middle is connected to the flow channel 701, and a cleaning liquid container 500 containing a cleaning liquid is connected to the end of the branch flow channel 702. ing.
  • a fourth valve 711 is provided in a portion of the flow path 701 between the branch portion 710 and the third discharge portion 330 of the third container 300, and a fifth valve 712 is provided in the branch flow path 702. ing.
  • the cell suspension or the washing solution is supplied from the circulation inlet 612 to the circulation channel 601, and the hollow fiber separation membrane module Concentration or washing of the cell suspension by 400 is performed.
  • a liquid feeding pump for feeding liquid in the flow path 701 and / or the branch flow path 702 may be further provided.
  • the device 2 for cell suspension preparation of the second embodiment will be described with reference to FIG.
  • symbol is attached
  • the pipe portion 132 forming the discharge port 131 of the first discharge portion 130 of the first container 100 and the second input portion of the second container 200
  • the tube portion 222 forming the input port 221 of 220 integrally forms the tube portion 801.
  • the first discharge portion 130 of the first container 100 and the second input portion 220 of the second container 200 are connected in advance by the pipe portion 801 so that the liquid can flow.
  • a roller clamp 225 for opening and closing the flow paths 131 and 221 in the pipe portion 801 is attached to the outside of the pipe portion 801.
  • the second discharge portion 230 of the second container 200 protects the pipe portion 232 forming the discharge port 231, the needleless port 233 sealingly closing the outlet of the pipe portion 232 in a communicable manner, and the needleless port 233.
  • the third input portion 320 of the third container 300 includes the pipe portion 322 forming the input port 321, the male connector 323 which closes the inlet of the pipe portion 322 in a manner that allows communication with each other, and the lid portion 324 which protects the male connector 323.
  • the needleless port 233 of the second discharge portion 230 of the second container 200 and the male connector 323 of the third insertion portion 320 of the third container 300 are configured to be connectable.
  • the first discharge part 130 of the first container 100 and the second input part 220 of the second container 200 can circulate liquid in advance.
  • the liquid can be connected in a flowable manner.
  • the third container 300 has a third discharge part 330.
  • the needleless port 333 of the third discharge unit 330 and the supply unit 611 of the storage container 610 shown in FIG. 6 are connected so as to be able to directly or indirectly flow through the flow path 701 as shown in FIG.
  • the third suspension 300 of the third container 300 and the supply portion 611 of the storage container 610 are configured to be able to directly or indirectly connect the cell suspension from the third container 300. It can be transferred to the storage container 610 for storage.
  • the first pump 604 of the concentration washing apparatus 3 is driven in a state where the cell suspension is stored in the storage container 610, the cell suspension is supplied from the circulation inlet 612 to the circulation channel 601, and the hollow fiber separation membrane It is processed by module 400.
  • the device 2 for cell suspension preparation of the third embodiment will be described with reference to FIG.
  • symbol is attached
  • the pipe portion 132 forming the discharge port 131 of the first discharge portion 130 of the first container 100 and the second input portion of the second container 200
  • the tube portion 222 forming the input port 221 of 220 integrally forms the tube portion 801.
  • the first discharge portion 130 of the first container 100 and the second input portion 220 of the second container 200 are connected in advance by the pipe portion 801 so that the liquid can flow.
  • a roller clamp 225 for opening and closing the flow paths 131 and 221 in the pipe portion 801 is attached to the outside of the pipe portion 801.
  • the pipe portion 232 forming the discharge port 231 of the second discharge portion 230 of the second container 200 and the third input portion of the third container 300 A tube portion 322 forming the inlet 321 of 320 is integrally formed with the tube portion 901.
  • the second discharge portion 230 of the second container 200 and the third input portion 320 of the third container 300 are connected in advance by the pipe portion 901 so that the liquid can flow.
  • the first discharge part 130 of the first container 100 and the second input part 220 of the second container 200 can circulate liquid in advance. It is connected, and the 2nd discharge part 230 of the 2nd container 200 and the 3rd injection part 320 of the 3rd container are connected beforehand so that distribution of a fluid is possible.
  • the first container 100 and the second container 200 connected to each other in the cell suspension preparation device 2 of the fourth embodiment shown in FIG. 10 are the device 2 for cell suspension preparation of the second embodiment shown in FIG. Are the same as the first container 100 and the second container 200 in FIG.
  • the concentration cleaning device 3 shown in FIG. 10 is the same as the concentration cleaning device 3 shown in FIG.
  • the needleless port 233 of the second discharge part 230 of the second container 200 in the cell suspension preparation device 2 of the present embodiment is directly connected to the supply part 611 of the storage container 610 of the concentration cleaning device 3 or FIG. It can be connected indirectly via the channel 701 as shown in FIG.
  • the storage container 610 in the present embodiment has a function of storing the liquid flowing through the circulation flow channel 601 and is prepared using the cell suspension preparation device 2, and the second container 214 of the second container 200 is It has a function of storing the cell suspension discharged from the section 214-2 through the discharge port 231 of the second discharge unit 230.
  • FIG. 10 in the same way as the embodiment shown in FIG.
  • the branch channel 702 branched from the branch portion 710 halfway is connected to the channel 701, and the end of the branch channel 702 is connected.
  • a cleaning solution container 500 containing a cleaning solution is connected.
  • a fourth valve 711 is provided in a portion of the flow path 701 between the branch portion 710 and the second discharge portion 230 of the second container 200, and a fifth valve 712 is provided in the branch flow path 702. ing.
  • the needleless port 233 of the second container 200 and the supply portion 611 of the storage container 610 are connected via the flow path 701, and the fourth valve 711 is opened and the fifth valve 712 is closed.
  • the generated cell suspension can be transferred from the second container 200 to the storage container 610 for storage.
  • the cleaning liquid can be transferred from the cleaning liquid container 500 to the storage container 610 and stored.
  • the first pump 604 is driven with the cell suspension or the washing solution stored in the storage container 610, the cell suspension containing the cell suspension or the washing solution is supplied from the circulation inlet 612 to the circulation channel 601.
  • the cell suspension is concentrated or washed by the hollow fiber separation membrane module 400.
  • a liquid feeding pump for feeding liquid in the flow path 701 and / or the branch flow path 702 may be further provided.
  • a reaction mixture containing a cell-containing sample and an enzyme is accommodated in the first space 114 of the first container 100, and the first input portion 120 and the first discharge portion 130 are closed. Then, at least a part of the enzyme-treated solution in the first space 114 of the first container 100 generated in the step 1 after the step 1 and the step 1 of performing the enzyme treatment of the cell-containing sample while shaking the first container 100 , Step 2 of moving the first section 214-1 of the second container 200 and passing the mesh sheet 215 to generate a cell suspension on the side of the second section 214-2 of the second container 200; Step 3 of supplying the cell suspension generated in the above to the storage space 615 of the storage container 610 of the concentration and washing apparatus 3 and the first pump 604 serving as a liquid transfer unit for the cell suspension supplied to the storage space 615 By the circulation channel 601 Then, the cell suspension is introduced into the inlet 411 of the hollow fiber separation membrane module 400 and treated with the hollow fiber separation membrane 401 while discharging the filtrate
  • Step 1 materials such as a cell-containing sample and an enzyme solution are supplied to the first space 114 of the first container 100 through any of the first input parts 120A, 120B, and 120C to form a reaction mixture liquid.
  • the first container 100 can be separated from the second container 200, so that reaction mixing in the first space 114 is possible.
  • the first container 100 containing the solution can be shaken alone and subjected to the enzyme treatment.
  • the process 1 is performed in a state where the first input parts 120A, 120B, 120C and the first discharge parts 130A, 130B are closed.
  • step 1 the first container 100 containing the reaction mixture is treated as a second container. It shakes in the form connected with the container 200. Also in this case, the first input portions 120A, 120B, and 120C are closed, and the first discharge portion 130 is shaken with the roller clamp 225 closed.
  • step 1 the first container 100 containing the reaction mixture is connected to the second container 200 and the third container 300. Shake in a fixed form. Also in this case, the first input portions 120A, 120B, and 120C are closed, and the first discharge portion 130 is shaken with the roller clamp 225 closed.
  • the first container 100 in which the enzyme treatment is performed and the second container 200 in which the filtration using the mesh sheet 215 is separate containers.
  • the cell-containing sample is a living tissue such as fat tissue
  • the enzyme-treated solution after the degradation reaction by the enzyme is allowed to stand in the first container 100
  • the layer is separated into oil layers containing various oil soluble components.
  • the oil-soluble component causes clogging of the mesh sheet 215. Since the first container 100 and the second container 200 are separate containers, after shaking in step 1, two layers are separated in the first container 100, and then useful cells are suspended in step 2. Only the turbid water layer can be supplied to the second container 200 to pass the mesh sheet 215, and clogging can be suppressed.
  • the first container 100 when the cell suspension preparation device 2 including the first container 100, the second container 200, and the third container 300 is used as in the first to third embodiments, the first container 100, prior to step 2.
  • the second container 200 and the third container 300 form a cell suspension preparation device 2 connected in this order.
  • the male connector 223 of the second container 200 is connected to any of the needleless ports 133A and 133B of the first container 100.
  • the first container 100, the second container 200, and the third container 300 are connected in this order.
  • the male connector 323 of the third container 300 is connected to the needleless port 233 of the second container 200 to make the first container 100.
  • the second container 200 and the third container 300 are connected in this order.
  • the connection operation is not necessary between Step 1 and Step 2.
  • FIG. 10 by connecting the needless port 233 of the second discharge part 230 of the second container 200 and the supply part 611 of the storage container 610 directly or indirectly via the channel 701, The first container 100, the second container 200, and the storage container 610 are connected in this order.
  • the cell suspension preparation device 2 to which the first container 100 and the second container 200 are connected is disposed in the order of the first container 100 and the second container 200 from above in the vertical direction, and the first discharge unit 130 and
  • the roller clamp 225 is operated to open the flow path formed by connecting with the second input part 220, the enzyme treatment liquid is released from the first space 114 of the first container 100 into the first container of the second container 200.
  • the fluid components, cells and the like that can flow into the compartment 214-1 and pass through the mesh sheet 215 reach the second compartment 214-2 and a cell suspension is generated.
  • step 2 When the cell suspension preparation device 2 including the first container 100 and the second container 200 and not the third container 300 is used as in the fourth embodiment, the cell suspension generated in step 2 is Subsequently, the fluid is stored from the second section 214-2 of the second space 214 of the second container 200 via the flow path connecting the second discharge part 230 of the second container and the supply part 611 of the storage container 610. It moves to the storage space 615 of the container 610 and is stored. That is, step 2 and step 3 can be performed as a series of steps.
  • the method of preparing a cell suspension by the method including the step 1 and the step 2 using the cell suspension preparation device 2 is preferable because the load on the cells is small because the operation such as centrifugation is not involved.
  • the cell suspension produced in the step 2 in the step 3 is In order to supply the storage space 615 of the storage container 610, as shown in FIG. 1, the supply portion 611 of the storage container 610 includes the third discharge portion 330 of the third container 300 of the cell suspension preparation device 2.
  • the needleless port 333 may be connected, and the cell suspension may be transferred from the third container 300 to the storage space 615 of the storage container 610 and stored.
  • the cell suspension preparation device 2 of the fourth embodiment is used as the cell suspension preparation device 2, as described above, the cell suspension generated in step 2 is the second cell of the second container 200.
  • Step 3 corresponds to movement from the second section 214-2 of the space 214 to the storage space 615 of the storage container 610 for storage.
  • the cell suspension is supplied to the storage space 615 of the storage container 610 of the concentration and washing apparatus 3 by driving the first pump 604 so that the cell suspension passes through the circulation channel 601.
  • the solution is introduced into the inlet 411 of the hollow fiber separation membrane module 400, and the filtrate is treated with the hollow fiber separation membrane 401 while discharging the filtrate from the filtrate outlet 413, and the treated cell suspension is discharged through the outlet It is led to the circulation channel 601 from 412 and circulated again to the inlet 411. If step 4 is continued for a certain period of time, the cell suspension will be repeatedly circulated between the circulation channel 601 and the hollow fiber separation membrane module 400.
  • liquid components, contaminants and the like contained in the cell suspension are discharged as a filtrate passing through the membrane wall of the hollow fiber separation membrane 401, and the cell suspension is concentrated or washed. Furthermore, the cell suspension can be washed by driving the first pump 604 in a state where the washing solution is supplied to the storage space 615 of the storage container 610.
  • the cell suspension prepared through Step 1 and Step 2 tends to be rich in contaminants since it is only filtered through the mesh sheet 215, but Step 3 and Step 4 Contaminants can be removed by this method, so that finally, a cell suspension with few contaminants and sufficiently washed can be obtained, and can be used for purposes such as regenerative medicine.
  • the method of the present embodiment can efficiently prepare a cell suspension.
  • the concentration washing apparatus supplies physiological saline to the storage container and drives the liquid transfer unit to use the physiological saline for the hollow fiber separation membrane module. It is generally necessary to meet the priming requirements.
  • the second section 214 of the second container 200 is used.
  • physiological saline is stored in the storage space 615 of the storage container 610 of the concentration washing apparatus 3 and the first pump 604 is driven to perform priming, and thereafter, using the cell suspension preparation device 2
  • Steps 2 and 3 are performed manually to supply the cell suspension to the storage space 615 of the storage container 610 of the concentration washing apparatus 3, and then the first pump 604 is driven again to perform processing by the hollow fiber separation membrane module 400 ( Degree 4) can be carried out.
  • step 3 priming of the concentration washing apparatus 3 is performed at an appropriate time before step 3 is performed. It can be carried out. Particularly preferably, the cell suspension generated in step 1, step 2, and step 2 is stored in the third container 300, and the third discharge part of the third container 300 via the flow path 701 shown in FIG. A series of manual steps up to the step of connecting 330 to the supply portion 611 of the storage container 610 of the concentration cleaning apparatus 3 (the fourth valve 711 is closed at the time of connection) is performed first.
  • the first pump 604 which is a liquid transfer unit of the concentration cleaning device 3 is driven to perform a priming step of sending the physiological saline stored in advance in the storage container 610 to the hollow fiber separation membrane module 400
  • the fourth valve 711 is opened to supply the cell suspension from the third space 314 of the third container 300 to the storage space 615 of the storage container 610 of the concentration and washing apparatus 3 (step 3).
  • the process is driven to perform processing (step 4) by the hollow fiber separation membrane module 400. That is, the priming step and the step 4 which are steps of automatically feeding liquid using the first pump 604 of the concentration washing apparatus 3 can be performed as a series of steps.
  • the manual operation using the device 2 for cell suspension preparation Since automated operations using the concentration cleaning device 3 can be performed as a series of operations, the operation is simple.
  • ⁇ Washing performed between step 1 and step 2> a further preferred embodiment where the cell-containing sample is a biological sample, in particular fat tissue, will be described with reference to FIG. In FIG. 7, only the portion of the first container 100 is shown for the sake of explanation.
  • the second container 200 connected to the first container 100 in step 2 is omitted in FIG.
  • the enzyme-treated solution A in the first space 114 of the first container 100 generated in step 1 is further formed into two layers, the oil layer B and the water layer C.
  • the layer separation step in which the first container 100 is allowed to stand until separation is included between Step 1 and Step 2, and in Step 2 performed after the layer separation step,
  • the water layer C in the first space 114 of the one container 100 moves to the first section 214-1 of the second container 200, the movement of the enzyme treatment liquid between the first container 100 and the second container 200 is stopped (See FIG.
  • the movement of the enzyme process liquid between the 1st container 100 and the 2nd container 200 operates the roller clamp 225 provided in the 2nd insertion part 220 of the 2nd container 200 shown in FIG. , And can be started by operating the roller clamp 225 to open the insertion port 221.
  • the enzyme treatment liquid in step 1 comprises an aqueous layer containing the target cells and a component containing lipid (especially fat) And the oil layer containing cells).
  • the aqueous layer and the oil layer are fractionated by centrifugation, the aqueous layer is recovered, and the oil layer is further washed and centrifuged to obtain an aqueous layer.
  • centrifugation has a problem of loading the cells.
  • the aqueous layer containing the target cells can be washed and recovered without applying a high load to the cells.
  • the cell-containing aqueous layer discharged from the first container 100 through the cleaning method of the present embodiment contains less oil soluble components, the mesh sheet 215 of the second container 200 and the concentration cleaning device 3 in step 2 and step 4 Clogging of the hollow fiber separation membrane 401 is suppressed, which helps to prepare a cell suspension efficiently.
  • Examples 1 to 3 The cell suspension preparation device 2 of the first embodiment was used as a cell suspension preparation device.
  • W defined above is 4.3 mm
  • D is 60 mm
  • D / W is 13.9
  • mesh The pore diameter of the sheet was 70 ⁇ m.
  • Cell suspensions were prepared from 10 mL of adipose tissue of 3 persons (donor 1, donor 2, donor 3) using the cell suspension preparation system 1 described herein.
  • 10 mL of adipose tissue and 10 mL of collagenase solution are placed in the first container 100 of the device 2 for preparing cell suspension.
  • the first container 100 was contained and shaken at 37 ° C. for 30 minutes to perform enzyme treatment.
  • the enzyme-treated cell suspension was passed through the second container 200, stored in the third container 300, and concentrated and washed by the concentration and washing apparatus 3 shown in FIG.
  • the number of nucleated cells and the number of adipose-derived stem cells contained in the cell suspension after treatment with the concentration washing device 3 were measured using a flow cytometer and BD TrucountTubes.
  • the number of nucleated cells was calculated from the sum of the number of CD34 positive cells and the number of CD45 positive cells.
  • the number of adipose-derived stem cells was calculated from the number of CD34 positive / CD45 negative / CD31 negative cells.
  • Examples 4 to 6 Cell suspension by using the cell suspension preparation system 1 described herein from 50 mL of adipose tissue of the same three persons (donor 1, donor 2, donor 3) as in Examples 1 to 3 was prepared.
  • the device 2 for cell suspension preparation and the concentration washing device 3 were the same as in Examples 1-3.
  • the flow path is connected by a flow path system including a flow path 701 and a branch flow path 702 branched from the branch portion 710 and having the cleaning liquid container 500 connected at its end.
  • adipose tissue and 50 mL of collagenase solution are placed in the first container 100 of the device 2 for preparing cell suspension.
  • the first container 100 was contained and shaken at 37 ° C. for 30 minutes to perform enzyme treatment.
  • the enzyme-treated cell suspension was passed through the second container 200, stored in the third container 300, and concentrated and washed by the concentration and washing apparatus 3 shown in FIG.
  • the number of nucleated cells and the number of adipose-derived stem cells contained in the cell suspension after treatment with the concentration washing device 3 were measured using a flow cytometer and BD TrucountTubes.
  • the number of nucleated cells was calculated from the sum of the number of CD34 positive cells and the number of CD45 positive cells.
  • the number of adipose-derived stem cells was calculated from the number of CD34 positive / CD45 negative / CD31 negative cells.
  • Example 7 A cell suspension was prepared from 10 mL of adipose tissue of one person (donor 4) using the cell suspension preparation system 1 described herein.
  • the device 2 for cell suspension preparation and the concentration washing device 3 were the same as in Examples 1-3.
  • the flow path is connected by a flow path system including a flow path 701 and a branch flow path 702 branched from the branch portion 710 and having the cleaning liquid container 500 connected at its end.
  • 10 mL of adipose tissue and 10 mL of collagenase solution are placed in the first container 100 of the device 2 for preparing cell suspension.
  • the first container 100 was contained and shaken at 37 ° C. for 30 minutes to perform enzyme treatment.
  • the enzyme-treated cell suspension was passed through the second container 200, stored in the third container 300, and concentrated and washed by the concentration and washing apparatus 3 shown in FIG.
  • the number of nucleated cells and the number of adipose-derived stem cells contained in the cell suspension after the concentration washing device treatment were measured using a flow cytometer and BD TrucountTubes.
  • the number of nucleated cells was calculated from the sum of the number of CD34 positive cells and the number of CD45 positive cells.
  • the number of adipose-derived stem cells was calculated from the number of CD34 positive / CD45 negative / CD31 negative cells.
  • centrifuge tube As a centrifuge tube, a 50 mL centrifuge tube made of polypropylene was used. 20 mL of adipose tissue and 20 mL of collagenase solution (prepared by dissolving collagenase with physiological saline so as to have a collagenase concentration of 0.1 w / v%) were placed in a centrifuge tube. The enzyme treatment was performed at 37 ° C. for 30 minutes, and the washing operation was performed by centrifuging and centrifuging at 800 G multiple times.
  • the number of nucleated cells and the number of adipose-derived stem cells contained in the cell suspension after washing were measured using a flow cytometer and BD TrucountTubes.
  • the number of nucleated cells was calculated from the sum of the number of CD34 positive cells and the number of CD45 positive cells.
  • the number of adipose-derived stem cells was calculated from the number of CD34 positive / CD45 negative / CD31 negative cells.
  • Example 4 A cell suspension was prepared from 10 mL of adipose tissue of the same person (donor 4) as in Example 7 using centrifugation.
  • centrifuge tube use a 50 mL centrifuge tube made of polypropylene, and prepare 10 mL of adipose tissue and 10 mL of collagenase solution (Dissolve collagenase with physiological saline so that collagenase concentration becomes 0.1 w / v%) And was housed in a centrifuge tube.
  • the enzyme treatment was performed at 37 ° C. for 30 minutes, and the washing operation was performed by centrifuging and centrifuging at 800 G multiple times.
  • the number of nucleated cells and the number of adipose-derived stem cells contained in the cell suspension after washing were measured using a flow cytometer and BD TrucountTubes.
  • the number of nucleated cells was calculated from the sum of the number of CD34 positive cells and the number of CD45 positive cells.
  • the number of adipose-derived stem cells was calculated from the number of CD34 positive / CD45 negative / CD31 negative cells.
  • Cell suspension preparation system 2 Device for cell suspension preparation 3: Concentrated washing apparatus 100: First container 114: First space 110: First container body 130: First discharge part 200: Second container 214 : Second space 214-1: first section 214-2: second section 215: mesh sheet 210: second container main body 220: second input portion 230: second discharge portion 300: third container 310: third container Main body 320: Third inlet 400: hollow fiber separation membrane module 401: hollow fiber separation membrane 410: storage container 411: inlet 412: outlet 413: filtrate outlet 601: circulation channel 604: liquid delivery section (first pump) 610: Storage container 611: Supply unit 616: Storage container body

Abstract

細胞含有試料から細胞懸濁液を、細胞に対し低負荷条件で効率的に調製することができるシステムを提供する。 本発明は、第1容器100、第2容器200及び第3容器300を備え、第2容器200の第2空間214にメッシュシート215を備える、細胞懸濁液を調製するための細胞懸濁液調製用デバイス2と、中空糸分離膜モジュール400を備える、細胞懸濁液を濃縮又は洗浄するための濃縮洗浄装置3とを備える、細胞含有試料から酵素処理により細胞懸濁液を調製するための、細胞懸濁液調製システム1を提供する。

Description

細胞懸濁液を調製するためのデバイス、システム及び方法
 本発明は、生体組織等の細胞含有試料から細胞懸濁液を調製するのに適したシステム、及び、該システムを用いて細胞含有試料から細胞懸濁液を調製する方法に関する。
 本発明はまた、生体組織等の細胞含有試料から細胞懸濁液を調製するのに適したデバイスに関する。
 細胞医療の分野では、生体から採取した細胞を直接、又は生体外で培養した後、患者に接種する方法が用いられている。これらの治療に用いる細胞は、治療に適した溶液に懸濁され、又は適切な濃度に調整され移植される。しかしながら、生体から細胞を採取した場合、治療に十分な細胞濃度でないことがあり、また、生体から採取した細胞を体外でさらに培養した場合、組織由来の夾雑物や培地成分などを含んでいることが多い。したがって、生体から採取又は培養した細胞を治療に用いるためには、夾雑物や培地成分を取り除き、治療に適した溶液などに懸濁された状態とし、治療に適した細胞濃度に濃縮される必要がある。
 前記目的を解決するため、遠心分離を用いた濃縮、洗浄操作が知られている。例えば、ヒト組織から再生細胞を分離して濃縮するために遠心分離を用いる方法が開示されている(特許文献1)。しかし、このように遠心分離を用いる方法は、装置が大型になること、細胞に負荷がかかること、及びコストが増大することにより利用できる施設が限定されてしまうことが懸念される。さらに遠心分離により細胞を沈殿させた後の細胞懸濁液の上清を、細胞の洗浄のために取り除く際に、細胞が大気に開放される可能性があり、汚染等の問題が挙げられる。
 これに対して、コンパクトで簡便な装置である中空糸分離膜を用いた細胞懸濁液の分離、ろ過方法が提案されている(特許文献2)。本出願人も、中空糸型分離膜を用いる細胞濃縮液の製造方法として、例えば、細胞懸濁液を受け入れるための細胞懸濁液入口と、該細胞成分を実質上含まない液体を排出するための濾液出口と、細胞懸濁液を排出するための細胞懸濁液出口と、前記細胞懸濁液入口と細胞懸濁液出口の間に配置された分画分子量が1000kD以下の中空糸型分離膜を備え、内圧ろ過方式である細胞懸濁液処理器を用いることを特徴とする細胞懸濁液の濃縮方法(特許文献3)などを提案している。
 一方、有用細胞を含む生体組織から有用細胞を分離する方法として、消化酵素で生体組織を分解して有用細胞を遊離させ、その後に遠心分離、濾過等の分離工程を経て有用細胞を回収する方法が知られている。
 例えば特許文献4の実施例1では、50mL容の遠心チューブに、脂肪組織とコラゲナーゼ液とを収容し、37℃、120回/minの条件で1時間振盪させて酵素反応を行い、その後にフィルターろ過及び遠心分離を行い、沈渣として沈降細胞集団(SVF画分)を取得することが記載されている。
 特許文献5には、脂肪組織試料から非脂肪細胞を分離するための装置として、第1シートの物質と、前記第1シートの物質に結合された第2シートの物質と、前記第1シートの物質と前記第2シートの物質との間で画成された複数のチャンバとを備える装置が開示されている。そして、複数のチャンバとして、流入口及び流出口を含む試料解離チャンバ、前記試料解離チャンバの前記流出口に流体連通する流入口を含む廃棄物収集チャンバ、及び、前記試料解離チャンバに流体連通する流入口と、流出口とを含む細胞精製チャンバが開示されている。そして、試料解離チャンバは、その内部にメッシュフィルタを更に含み、細胞精製チャンバは、その内部に、試料解離チャンバにおけるメッシュフィルタよりも細孔寸法の小さいメッシュフィルタを更に含む。そして、試料解離チャンバ内で脂肪組織試料を、コラゲナーゼ等の酵素を含む解離溶液により処理して、脂肪組織試料を解離することが開示されている。
特表2007-524396号公報 特許第2928913号公報 特開2012-210187号公報 国際公開第2008/018450号 特表2015-500031号公報
 中空糸分離膜モジュールを用いた細胞懸濁液の濃縮洗浄方法は、細胞への負荷が小さいため好ましい。
 一方、中空糸分離膜モジュールによる濃縮洗浄処理に供するための細胞懸濁液の調製方法として、その後に中空糸分離モジュールで処理するのに適した細胞懸濁液の調製方法は従来検討されていない。例えば、特許文献4に記載されているような、細胞含有試料の酵素処理後に遠心分離を行い細胞懸濁液を調製する方法は、細胞への負荷が大きいため、その後に中空糸分離膜モジュールを用いて細胞を低負荷で処理する利点を生かすことができないと考えられる。また、特許文献5では、脂肪組織試料から非脂肪細胞を分離するための装置が記載されているが、脂肪組織試料の酵素処理を行う試料解離チャンバ内にメッシュフィルタが配置されているため、メッシュフィルタが目詰まりし易く細胞の分離に適していないと考えられる。
 本発明は、細胞含有試料の酵素処理による細胞懸濁液の調製から、中空糸膜分離モジュールを用いた細胞懸濁液の濃縮洗浄までを行い、細胞含有試料から細胞懸濁液を、細胞に対し低負荷条件で効率的に調製することができるシステム、並びに、該システムを用いた細胞懸濁液の調製方法を提供する。本発明はまた、細胞含有試料の酵素処理により、中空糸膜分離モジュールに供給するのに適した細胞懸濁液を調製するためのデバイスを提供する。
 本発明者らは、驚くべきことに、以下の特徴を備える細胞懸濁液調製用デバイスと濃縮洗浄装置とを組み合わせることにより、細胞含有試料から細胞懸濁液を細胞に対し低負荷条件で効率的に調製することができることを見出し、以下の発明を完成するに至った。
(1)細胞懸濁液調製システムであって、
 細胞懸濁液を調製するための細胞懸濁液調製用デバイスと、細胞懸濁液調製用デバイスにより調製された細胞懸濁液を濃縮又は洗浄するための濃縮洗浄装置とを備え、
 細胞懸濁液調製用デバイスが、第1容器及び第2容器を備え、
 第1容器が、
 第1空間を内包する第1容器本体と、
 第1空間からの液体の排出口が形成された第1排出部と
を備え、
 第2容器が、
 第2空間を内包する第2容器本体と、
 第2空間を第1区画と第2区画とに区切るように配置されたメッシュシートと、
 第1容器の第1空間から第1排出部の排出口を通じて排出される液体を、第1区画へ投入するための投入口が形成された第2投入部と、
 第2区画からの液体の排出口が形成された第2排出部と
を備え、
 濃縮洗浄装置は
 中空糸分離膜と、中空糸分離膜を収容する収容容器とを備え、収容容器には、中空糸分離膜へ供給される液体の導入口と、中空糸分離膜で処理された液体の導出口と、中空糸分離膜での濾液を排出する濾液排出口とが形成されている、中空糸分離膜モジュールと、
 中空糸分離膜モジュールの導出口から導入口まで液体を循環させる循環流路と、
 循環流路の途中に配置される貯留容器と、
 循環流路中の液体を中空糸分離膜モジュールの導出口から導入口に送液する送液部と
を備え、
 貯留容器が、
 循環流路を流れる液体を貯留する貯留空間を内包する貯留容器本体と、
 細胞懸濁液調製用デバイスで処理した液体を貯留空間に供給するための供給口が形成された供給部と
を備えることを特徴とする、細胞懸濁液調製システム。
(2)細胞懸濁液調製用デバイスが、第3容器を更に備え、
 第3容器が、
 第3空間を内包する第3容器本体と、
 第2容器の第2区画から排出される液体を、第3空間へ投入するための投入口が形成された第3投入部と
を備える、(1)に記載の細胞懸濁液調製システム。
(3)細胞懸濁液調製用デバイスにおいて、第1容器の第1排出部と第2容器の第2投入部との間、及び、第2容器の第2排出部と第3容器の第3投入部との間の少なくとも一方が、予め接続されている、(2)に記載の細胞懸濁液調製システム。
(4)細胞懸濁液調製用デバイスにおいて、第1容器の第1排出部と第2容器の第2投入部との間、及び、第2容器の第2排出部と第3容器の第3投入部との間の一方のみが予め接続されており、他方が接続可能である、(3)に記載の細胞懸濁液調製システム。
(5)第1容器の第1排出部と第2容器の第2投入部との間が接続可能であり、第2容器の第2排出部と第3容器の第3投入部との間が予め接続されている、(4)に記載の細胞懸濁液調製システム。
(6)細胞懸濁液調製用デバイスにおいて、第1容器の第1排出部と、第2容器の第2投入部とが予め接続されている、(1)に記載の細胞懸濁液調製システム。
(7)メッシュシートの細孔径が50~300μmである、(1)~(6)のいずれかに記載の細胞懸濁液調製システム。
(8)第2容器本体が、メッシュシートを間に介して対向する第1側壁と第2側壁とを含み、
 第1側壁とメッシュシートとが第1区画を囲い、
 第2側壁とメッシュシートとが第2区画を囲い、
 第2投入部が、第1側壁の周縁部とメッシュシートの周縁部との間に、第2投入口を介して第1区画と外部とを連通するように配置されており、
 第2排出部が、第2側壁の周縁部とメッシュシートの周縁部との間に、第2排出口を介して第2区画と外部とを連通するように配置されており、
 第1側壁、第2側壁及びメッシュシートが周縁部において一体化されて第2容器を形成している、(1)~(7)のいずれかに記載の細胞懸濁液調製システム。
(9)第2投入部と、第2排出部とが、第2容器本体の対向する位置に配置されており、
 第2投入部の第1区画の側の端の、第1側壁と第2側壁とが対向する方向に沿った幅をW1、
 第2排出部の第2区画の側の端の、第1側壁と第2側壁とが対向する方向に沿った幅をW2、
 W1とW2との平均値をW、
 第2投入部の第1区画の側の端と、第2排出部の第2区画の側の端との間の距離をD
としたとき、
 D/Wが13以上である、(8)に記載の細胞懸濁液調製システム。
(10)第1容器が、洗浄液を第1空間に投入するための洗浄液投入部を備える、(1)~(9)のいずれかに記載の細胞懸濁液調製システム。
(11)(1)~(10)のいずれかに記載の細胞懸濁液調製システムを用いて、細胞含有試料から細胞懸濁液を調製する方法であって、
 第1容器の第1空間内に、細胞含有試料と酵素とを含む反応混合液を収容し、第1容器を振盪させながら細胞含有試料の酵素処理を行う工程1と、
 工程1後に、工程1で生成した第1容器の第1空間内の酵素処理液の少なくとも一部を、第2容器の第1区画に移動させ、第2容器のメッシュシートを通過させて第2容器の第2区画の側に細胞懸濁液を生成する工程2と、
 工程2で生成した細胞懸濁液を濃縮洗浄装置の貯留容器の貯留空間に供給する工程3と、
 貯留空間に供給された細胞懸濁液を、送液部により、循環流路を経由して送液して、中空糸分離膜モジュールの導入口に導入し、濾液を濾液排出口から排出しながら、中空糸分離膜により処理し、処理された細胞懸濁液を、導出部から循環流路に導出し、導入口まで循環させる工程4と
を含む方法。
(12)細胞含有試料が生体試料であり、
 工程1で生成した第1容器の第1空間内の酵素処理液が油層と水層との二層に分離するまで第1容器を静置する層分離工程を、工程1と工程2との間に含み、
 層分離工程の後に行う工程2では、その途中で、第1容器の第1空間内の水層が第2容器の第1区画に移動した時点で、第1容器と第2容器の間の酵素処理液の移動を停止し、第1容器の第1空間内に洗浄液を加えて、第1空間内に残留した油層と洗浄液とを混合し、混合液が油層と水層との二層に分離するまで第1容器を静置し、静置後に水層を第2容器の第1区画に移動させる洗浄工程を1回以上行う、
(11)に記載の方法。
(13)細胞懸濁液調製用デバイスであって、
 第1容器及び第2容器を備え、
 第1容器が、
 第1空間を内包する第1容器本体と、
 第1空間からの液体の排出口が形成された第1排出部と
を備え、
 第2容器が、
 第2空間を内包する第2容器本体と、
 第2空間を第1区画と第2区画とに区切るように配置されたメッシュシートと、
 第1容器の第1空間から第1排出部の排出口を通じて排出される液体を、第1区画へ投入するための投入口が形成された第2投入部と、
 第2区画からの液体の排出口が形成された第2排出部と
を備えることを特徴とする、細胞懸濁液調製用デバイス。
(14)第3容器を更に備え、
 第3容器が、
 第3空間を内包する第3容器本体と、
 第2容器の第2区画から排出される液体を、第3空間へ投入するための投入口が形成された第3投入部と
を備える、(13)に記載の細胞懸濁液調製用デバイス。
 本明細書は本願の優先権の基礎となる日本国特許出願番号2017-180564号の開示内容を包含する。
 本発明のシステム、デバイス及び方法により、細胞含有試料から細胞懸濁液を効率的に調製することができる。
本発明の細胞懸濁液調製システムの一実施形態の全体構成を示す模式図である。図1には細胞懸濁液調製用デバイスとして第1実施形態の細胞懸濁液調製用デバイスを示す。 本発明の細胞懸濁液調製システムに用いることができる、第1実施形態の細胞懸濁液調製用デバイスの第1容器を示す図である。 本発明の細胞懸濁液調製システムに用いることができる、第1実施形態の細胞懸濁液調製用デバイスの第2容器及び第3容器を示す図である。 図3に示すI-I線での断面の模式図である。 図3に示すII-II線での断面の模式図である。 本発明の細胞懸濁液調製システムに用いることができる濃縮洗浄装置の一実施形態を示す図である。 細胞懸濁液調製用デバイスの第1容器を用いた洗浄方法を説明するための図である。 第2実施形態の細胞懸濁液調製用デバイスを示す模式図である。 第3実施形態の細胞懸濁液調製用デバイスを示す模式図である。 第4実施形態の細胞懸濁液調製用デバイスと、濃縮洗浄装置とを備える、細胞懸濁液調製システムの全体構成を示す模式図である。
 以下、本発明を詳細に説明する。
<用語、材料>
 細胞含有試料としては生体組織、in vitroで調製した細胞培養物等が例示できる。生体組織は典型的には動物より採取した生体組織であり、例えば、脂肪、皮膚、血管、角膜、口腔、腎臓、肝臓、膵臓、心臓、神経、筋肉、前立腺、腸、羊膜、胎盤、臍帯などに由来する生体組織が挙げられる。本明細書で開示する方法は特に脂肪組織から間質血管画分(SVF)細胞を取り出すのに有用である。
 脂肪組織とは典型的には哺乳動物の脂肪組織であり、例えば、ヒト由来の皮下脂肪、内臓脂肪、白色脂肪、褐色脂肪である。脂肪組織は、任意の形状であってよく、例えば、脂肪組織をハサミ等の鋭利な器具を用いて破砕したもの、濾し器等を用いてミンチ状にしたもの、脂肪吸引法を用いて分解したものであってよい。ここで脂肪吸引法とは、一般的な美容成形外科で行なわれている吸引法であれば特に限定されず、例えば、超音波脂肪吸引、カニューレ等を用いたパワードリポサクション、シリンジ吸引等による方法である。
 有核細胞とは、細胞内に核を有する細胞である。
 細胞懸濁液に含まれる細胞としては、生体組織幹細胞、白血球、単球、顆粒球、リンパ球、血管内皮細胞、血管内皮前駆細胞、周細胞等、細胞治療や実験等の目的で採取が必要とされる有核細胞が例示できる。生体組織幹細胞は、好ましくは、脂肪由来間葉系幹細胞、脂肪由来間質幹細胞であり、より好ましくは細胞表面のCD34、73、90、105、106、133、166から選ばれる少なくとも一つを発現している脂肪由来間葉系細胞、脂肪由来間質幹細胞である。
 細胞含有試料から細胞を遊離させるための酵素としては、コラゲナーゼ、メタロプロテアーゼ、ディスパーゼ、トリプシン、ヒアルロニダーゼ、キモトリプシン、ペプシン、アミノペプチダーゼ、リパーゼ、アミラーゼ及びそれらのリコンビナントから選ばれる少なくとも1種の分解酵素が使用できる。細胞含有試料として生体組織、特に脂肪組織を用いる場合には、酵素としては、短時間に、かつ低侵襲で分解するという観点から、コラゲナーゼ、メタロプロテアーゼ、ディスパーゼ、トリプシン及びヒアルロニダーゼから選択される少なくとも1種の分解酵素が好ましい。
 酵素を溶解して酵素液を調製するための水系媒体、細胞含有試料の酵素処理を行うため水系媒体、細胞を懸濁するための水系媒体、酵素処理された細胞含有試料を洗浄するための洗浄液、及び/又は、濃縮洗浄装置により細胞懸濁液を洗浄するための洗浄液としては、水、生理食塩水、リン酸緩衝液、ブドウ糖液、リンゲル液、ハンクス液、注射溶液、培地、等張液等の水系媒体を用いることができる。
<細胞懸濁液調製システム>
 本発明の細胞懸濁液調製システムの一実施形態を図1~6を参照して以下に説明する。
 図1に示す通り、細胞懸濁液調製システム1は、細胞懸濁液を調製するための細胞懸濁液調製用デバイス2と、細胞懸濁液を濃縮又は洗浄するための濃縮洗浄装置3とを備える。
 以下に、細胞懸濁液調製用デバイス2の構成、濃縮洗浄装置3の構成、細胞懸濁液調製システム1を用いて細胞懸濁液を調製する方法について説明する。
<細胞懸濁液調製用デバイスの構成>
 細胞懸濁液調製用デバイス2は、第1容器100、第2容器200及び第3容器300を備える。図1~3には、細胞懸濁液調製用デバイス2の第1実施形態を示す。
 第1実施形態に係る細胞懸濁液調製用デバイス2における第1容器100の構造について説明する。
 第1容器100は、図2に示すように、第1空間114を内包する第1容器本体110と、第1空間114への材料の投入口121A、121B、121Cがそれぞれ形成された、第1投入部120A、120B、120Cからなる第1投入部120と、第1空間114からの液体の排出口131A、131Bが形成された、第1排出部130A、第1排出部130Bからなる第1排出部130とを備える。
 第1投入部120Aは、第1空間114への材料の投入口121Aを形成する管部122Aと、管部122Aの入口を連通可能に封鎖するメスルアーロック123Aと、メスルアーロック123Aを保護する着脱自在の蓋部124Aと、管部122Aを通る液体を濾過するフィルター部125Aとを備える。
 第1投入部120Bは、第1空間114への材料の投入口121Bを形成する管部122Bと、管部122Bの入口を連通可能に封鎖するニードルレスポート123Bと、ニードルレスポート123Bを保護する着脱自在の蓋部124Bとを備える。
 第1投入部120Cは、第1空間114への材料の投入口121Cを形成する管部122Cと、管部122Cの入口を連通可能に封鎖するニードルレスポート123Cと、ニードルレスポート123Cを保護する着脱自在の蓋部124Cとを備える。
 第1排出部130Aは、第1空間114からの液体の排出口131Aを形成する管部132Aと、管部132Aの出口を連通可能に封鎖するニードルレスポート133Aと、ニードルレスポート133Aを保護する着脱自在の蓋部134Aとを備える。
 第1排出部130Bは、第1空間114からの液体の排出口131Bを形成する管部132Bと、管部132Bの出口を連通可能に封鎖するニードルレスポート133Bと、ニードルレスポート133Bを保護する着脱自在の蓋部134Bとを備える。
 第1実施形態では、第1容器100は第1投入部120を3つ備えるが、1つのみ、2つのみまたは4つ以上の第1投入部を備えてもよい。第1投入部120は、第1容器100の第1空間114での細胞含有試料の酵素処理に用いる材料(例えば細胞含有試料、酵素、酵素液等)、或いは、第1空間114内での細胞含有試料の洗浄に用いるための洗浄液を第1空間114に投入するために用いられる。
 第1実施形態では、第1容器100は、第1排出部130を2つ備えるが、1つのみ又は3つ以上の第1排出部を備えてもよい。第1排出部130は、細胞含有試料を酵素処理して形成される遊離細胞を含む酵素処理液の少なくとも一部を第1空間114から排出するために用いられる。
 第1容器本体110は、第1樹脂シート111と第2樹脂シート112とを対向配置し、周縁部を熱融着により接合して袋体としたものである。第1樹脂シート111と第2樹脂シート112が熱融着により接合した部分を融着部113とする。第1容器本体110には、第1樹脂シート111と第2樹脂シート112との間に第1空間114が形成されている。なお、図2は、第1空間114が空の状態の第1容器100の平面模式図であり、図示しないが、第1空間114に細胞含有試料及び酵素を含む反応混合液が収容されると、第1容器本体110は袋状に膨張する。第1空間114において細胞含有試料の酵素処理が行われる。第1投入部120A、120B、120Cの管部122A、122B、122Cは、それらの一方の端部が、第1容器本体110の長手方向の一端の辺上の、第1樹脂シート111と第2樹脂シート112との間に配置され、その周りの第1樹脂シート111と第2樹脂シート112が熱融着により接合されて、第1容器本体110と一体化されている。同様に、第1排出部130A、130Bの管部132A、132Bは、それらの一方の端部が、第1容器本体110の長手方向の他端の辺上の、第1樹脂シート111と第2樹脂シート112との間に配置され、その周りの第1樹脂シート111と第2樹脂シート112が熱融着により接合されて、第1容器本体110と一体化されている。
 第1実施形態では第1容器本体110の第1投入部120が配置される側の辺の両端の、融着部113よりも外側の部分に、貫通孔115、115が形成されている。貫通孔115はフックなどに掛けるために用いることができる。
 第1樹脂シート111及び第2樹脂シート112並びに各管部122A、122B、122C、132A、132B、132Cは、柔軟性を有する材料により形成されることが好ましい。柔軟性を有する材料の具体例としては、軟質塩化ビニル、塩化ビニル、ポリウレタン、エチレン-酢酸ビニル共重合体、ポリエチレンやポリプロピレンのようなポリオレフィン、スチレン-ブタジエン-スチレン共重合体又はその水添物及びスチレン-イソプレン-スチレン共重合体またはその水添物等の熱可塑性エラストマー、ならびに、熱可塑性エラストマーとポリオレフィン及びエチレン-エチルアクリレート等の軟化剤との混合物等の、柔軟性を有する樹脂が挙げられる。第1樹脂シート111及び第2樹脂シート112は、少なくとも一部を透明または半透明の材料からなるものとすると、内部の細胞懸濁液の様子を目視で観察できるため好ましい。第1樹脂シート111及び第2樹脂シート112の内側面は、ナシジ加工されていると、細胞懸濁液の排出時に残液を少なくすることができるため好ましい。
 続いて第2容器200の構造について説明する。
 第1実施形態に係る細胞懸濁液調製用デバイス2における第2容器200は、図3~5に示す通り、第2空間214を内包する第2容器本体210と、第2空間214を第1区画214-1と第2区画214-2とに区切るように配置されたメッシュシート215と、第1区画214-1への液体の投入口221が形成された第2投入部220と、第2区画214-2からの液体の排出口231が形成された第2排出部230とを備える。
 第2投入部220は、第1区画214-1への液体の投入口221を形成する管部222と、管部222の入口に取り付けられ、第1容器100の第1排出部130A、130Bのニードルレスポート133A、133Bと接続可能なオスコネクター223と、オスコネクター223を保護する蓋部224と、管部222の外側に取り付けられ、管部222内の投入口221の流路を開閉するためのローラークランプ225とにより構成される。
 第2排出部230は、第2区画214-2からの液体の排出口231を形成する管部232により構成される。
 第2容器本体210は、内部にメッシュシート215を保持することができ、かつ内部に保持する細胞等に影響を与えるようなものでなければ、どのような材質のもので、どのように形成されていてもよい。
 第2容器本体210とメッシュシート215は、例えば、図4及び5に示すように、メッシュシート215を間に介して対向する、第1側壁の実施形態である第3樹脂シート211と、第2側壁の実施形態である第4樹脂シート212とを含み、第3樹脂シート(第1側壁)211と第4樹脂シート(第2側壁)212との間に第2空間214が形成され、第3樹脂シート(第1側壁)211とメッシュシート215とが第2空間214の第1区画214-1を囲い、第4樹脂シート(第2側壁)212とメッシュシート215とが第2空間214の第2区画214-2を囲うように構成することができる。第3樹脂シート(第1側壁)211、第4樹脂シート(第2側壁)212及びメッシュシート215は概ね円形の平面形状を有し、第3樹脂シート(第1側壁)211と第4樹脂シート(第2側壁)212とは寸法が略同じであり、メッシュシート215の寸法はそれよりも小さく形成されている。この実施態様では、第3樹脂シート211と、第4樹脂シート212と、メッシュシート215は、第3樹脂シート211の周縁部211A、第4樹脂シート212の周縁部212A、及び、メッシュシート215Aの周縁部215Aにおいて熱融着により一体化されて、融着部213を形成している。なお、図4及び5は、第2空間214が空の状態の第2容器200断面模式図である。第3樹脂シート211及び第4樹脂シート212が柔軟性を有する樹脂シートである場合、第2空間214内に液体を収容したときに、第3樹脂シート211及び第4樹脂シート212の中央部分が外方に向けに膨出して形状が変化し、第2空間214の容積が増す。容積が増した第2空間214内で後述するメッシュシート215による夾雑物の除去を行うことができる。
 第2容器本体210は、少なくとも一部を透明または半透明の材料からなるものとすると、内部の細胞懸濁液の様子を目視で観察できるため好ましい。第2容器本体210を構成する第3樹脂シート211及び第4樹脂シート212の材料は、接着剤を用いずに熱融着により接着可能なものであると、製造工程の簡素化を図ることができ、かつ接着剤の細胞への影響を考慮しなくてもよいため好ましい。
 第3樹脂シート211及び第4樹脂シート212並びに各管部222、232は、柔軟性を有する材料により形成されることが好ましい。柔軟性を有する材料の具体例としては、第1容器100の第1樹脂シート111及び第2樹脂シート112並びに各管部122A、122B、122C、132A、132B、132Cに用いることができる樹脂材料として例示したものと同じである。第3樹脂シート211及び第4樹脂シート212の内側面は、ナシジ加工されていると、細胞懸濁液の排出時に残液を少なくすることができるため好ましい。
 メッシュシート215は、第2空間214を第1区画214-1と第2区画214-2とに区切るように配置される。メッシュシートとしては、水等の液体を透過させることができ、好ましくは、必要な細胞を通過させることができるものを用いる。メッシュシート215は、細孔径が50~300μmの範囲であることが好ましい。細孔径がそのような範囲であれば、生体組織の酵素処理物に含まれる未消化の組織塊やデブリスなどの夾雑物を、メッシュの目詰まりを発生させずに除去し、必要な細胞のみを通過させることができる。この効果を一層発現させるためには細孔径は、好ましくは50μm以上、好ましくは300μm以下、より好ましくは200μm以下である。また、メッシュシート215は、開孔率が40%以上、特に45%以上であると、目詰まりが発生しづらく好ましい。
 なお、本明細書において「メッシュ」とは、面状に広がりを有し、一方の表面から他方の表面へと貫通する複数の細孔が二次元的に配置され網目構造が形成されている材料を意味する。メッシュの例としては、繊維が網目構造を形成するように織られてなるものや、厚さ方向に貫通した複数の細孔が形成されたメンブレン等が挙げられるがこれらには限らない。メッシュには、一般的に「スクリーン」と呼ばれるものも包含される。メッシュにより構成されたシートを「メッシュシート」と称する。本明細書において「メッシュ」は、前記網目構造を有さず且つ三次元細孔を有する材料(例えば、繊維状多孔性媒体やスポンジ状構造物であり、前記網目構造を有さず且つ三次元細孔を有する材料)とは異なる概念である。メッシュシート215の材質は、材料の安全性や安定性、入手容易性の観点から、合成樹脂材料、例えばナイロン、ポリエステル、レーヨン、ポリオレフィン、ポリスチレン、アクリル樹脂、ポリカーボネート、ポリアクリルアミド、ポリウレタン、塩化ビニル等の少なくとも1種より選択される合成高分子やヒドロキシアパタイト、ガラス、アルミナ、チタニア等の無機材料、ステンレス、チタン、アルミニウム等の金属が挙げられる。2種以上の材料を組み合わせる場合は、その組み合わせに特に限定はないが、ポリオレフィン、ポリスチレン、アクリル樹脂、ナイロン、ポリエステル、ポリカーボネート、ポリアクリルアミド、ポリウレタン、塩化ビニル等の合成高分子、ヒドロキシアパタイト、ガラス、アルミナ、チタニア等の無機材料、ステンレス、チタン、アルミニウム等の金属からなる群から選択される2種以上の材料の組み合わせが好ましい。メッシュシート215は、少なくとも第2空間214に液体を入れた際に、メッシュシート面がほぼ平坦となるよう第2容器本体210内に設けられている。メッシュシート215は液体を透過することができるものであるため、投入口221を通じて投入された液体中の液状媒体、溶解成分及びメッシュシートを透過できる大きさの成分は、メッシュシート215を透過して第2区画214-2も移動し、メッシュシート215を透過できない大きさの成分は第1区画214-1に留まる。
 メッシュシートの細孔径とは、メッシュシートの一方の表面から他方の表面へと貫通する細孔を、貫通方向に沿って観察することにより特定される、細孔の内周の輪郭に内接する最大内接円の直径の平均値を意味する。平均値は、例えば細孔を50個以上、好ましくは100個以上観察して得られた値から算出することが好ましい。メッシュシートが、繊維が網目構造を形成するように織られてなるものである場合、細孔径はメッシュの平均目開きと等しい。平均目開きは、例えばルノメーターを用いて測定した単位長(例えば1インチ)あたりの繊維数に基づいて算出することができる。
 メッシュシートの開孔率は、メッシュシートを平面視したときの、全体の面積に対する、開孔部分を合計した面積の割合を指す。
 第2投入部220と第2排出部230は、どのように設けてもよいが、例えば、第2容器本体210およびメッシュシート215の相対関係を前述したような図4及び5に示した構成、すなわち第3樹脂シート211と第4樹脂シート212とを対向配置し、その間にメッシュシート215を配置する構成の場合、第2投入部220の管部222は、第3樹脂シート211の周縁部211Aとメッシュシート215の周縁部215Aとの間に、管部222内の投入口221を通じて第1区画214-1と外部とが連通されるように配置し、第2排出部230の管部232は、第4樹脂シート212の周縁部212Aとメッシュシート215の周縁部215Aとの間に、管部232内の排出口231を介して第2区画214-2と外部とが連通されるように配置する。より具体的には、第2投入部220の管部222は、第3樹脂シート211の周縁部211Aとメッシュシート215の周縁部215Aとの間に挟み込むように配置することができ、第2排出部230の管部232は、第4樹脂シート212の周縁部212Aとメッシュシート215の周縁部215Aとの間に挟み込むように配置することができる。
 第2投入部220と第2排出部230は、メッシュシート215に対する相対的な位置が上記に説明したとおりであれば、第2容器本体210のいずれの位置に設けられていてもよい。しかしながら、第2容器本体210において第2投入部220と第2排出部230を互いに対向する位置に設けると、第1容器100の第1排出部130からの第2投入部220への酵素処理液の投入から、第2排出部230からの細胞懸濁液の排出までの処理をスムーズに行うことができるため好ましい。なお、「互いに対向する位置に設ける」とは、例えば図3~5に示したように第2容器本体210が円形の平面形状をしている場合、円の中心を間に介して対向する一対の位置の一方に第2投入部220を設け、他方に第2排出部230を設けることを指す。
 第2容器200の特に好ましい実施形態では、(i)第2投入部220の管部222の、第1区画214-1の側の端222’の、第3樹脂シート211と第4樹脂シート212とが対向する方向に沿った幅をW1とし、(ii)第2排出部230の管部232の、第2区画214-2の側の端232’の、第3樹脂シート211と第4樹脂シート212とが対向する方向に沿った幅をW2とし、かつ(iii)第2投入部220の管部222の、第1区画214-1の側の端222’と、第2排出部230の管部232の、第2区画214-2の側の端232’との間の距離をDとし、W1とW2との平均値をWとした場合、D/Wが13以上である。D/Wが大きいほど、第2容器200内での液体の流れる方向に対して、メッシュシート215の成す角度が小さくなり、メッシュシート215を通過しない成分の堆積によるメッシュシート215の目詰まりを抑制することができる。この効果はD/Wが13以上である場合に特に高い。この実施形態では、第2投入部220の管部222と、第2排出部230の管部232とが、同軸上に位置するように配置されていることが好ましい。
 続いて、第1実施形態に係る細胞懸濁液調製用デバイス2における第3容器300の構造を説明する。
 第1実施形態の第3容器300は、図3に示すように、第3空間314を内包する第3容器本体310と、第3空間314への液体の投入口321が形成された第3投入部320と、第3空間314からの液体の排出口331が形成された第3排出部330とを備える。
 第3容器本体310は、概ね長方形の第5樹脂シート311と第6樹脂シート312とを対向配置し、周縁部を熱融着により接合して袋体としたものである。第5樹脂シート311と第6樹脂シート312が熱融着により接合した部分を融着部313とする。第3容器本体310には、第5樹脂シート311と第6樹脂シート312との間に第3空間314が形成されている。なお、図3は、第3空間314が空の状態の第1容器100の平面模式図である。図示しないが、第3空間314に細胞懸濁液が収容されると、第3容器本体310は袋状に膨張する。第3空間314に、第2容器200でメッシュシート215を通過して排出された細胞懸濁液が貯留される。
 第3投入部320は、第3空間314への液体の投入口321を形成する管部322により構成される。第3投入部320の管部322の上流側端は、第2容器200の第2排出部230の管部232の下流側端と接続されており、第2排出部230の管部232と、第3投入部320の管部322とは、一体となって、第2容器200の第2空間214の第2区画214-2から第3容器300の第3空間14までを連通する流路を形成する。第3投入部320の管部322は、第3容器本体310の長手方向の一端の辺上の、第5樹脂シート311と第6樹脂シート312との間に配置され、その周りの第5樹脂シート311と第6樹脂シート312が熱融着により接合されて、第3容器本体310と一体化されている。
 第3排出部330は、第3空間314から排出される液体の流路となる排出口331を形成する管部332と、管部332の出口を連通可能に封鎖するニードルレスポート333と、ニードルレスポート333を保護する着脱自在の蓋部334とにより構成されている。管部332は、ニードルレスポート333が配置されていない側の端部が、第3容器本体310の長手方向の他端の辺上の、第5樹脂シート311と第6樹脂シート312との間に配置され、その周りの第5樹脂シート311と第6樹脂シート312が熱融着により接合されて、第3容器本体310と一体化されている。第5樹脂シート311及び第6樹脂シート312並びに各管部322、332は、柔軟性を有する材料により形成されることが好ましい。柔軟性を有する材料の具体例としては、第1容器100の第1樹脂シート111及び第2樹脂シート112並びに各管部122A、122B、122C、132A、132B、132Cに用いることができる樹脂材料として例示したものと同じである。第5樹脂シート311及び第6樹脂シート312の内側面は、ナシジ加工されていると、細胞懸濁液の排出時に残液を少なくすることができるため好ましい。
 第1実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2では、第1容器100の第1排出部130と、第2容器200の第2投入部220とは、上記の通り、分離されているが、液体を流通可能に接続可能なように構成されており、第2容器200の第2排出部230と第3容器300の第3投入部320とは、第2排出部230の管部232と、第3投入部320の管部322とが一体となって、液体を流通できるように予め接続されている。すなわち、第1実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2は、図2に示す第1容器100と、図3に示す、第2容器200と第3容器300とが予め接続されたものとの組み合わせである。なお、本発明の細胞懸濁液調製用デバイスでは、第1容器、第2容器及び第3容器の接続の形態は特に限定されない。容器間の接続の様式が異なる本発明の細胞懸濁液調製用デバイスの他の具体的な実施形態として、第2実施形態(図8参照)及び第3実施形態(図9参照)を後述する。また、図示しないが、第1容器、第2容器、第3容器が全て切り離し可能なものも、本発明の細胞懸濁液調製用デバイスの一例である。
 第1容器、第2容器、第3容器を備える細胞懸濁液調製用デバイスは、好ましくは、第1~第3実施形態に示すように、第1容器の第1排出部と第2容器の第2投入部との間、及び、第2容器の第2排出部と第3容器の第3投入部との間の少なくとも一方が、予め接続されている。この場合、細胞懸濁液調製用デバイスは1つ又は2つの部分により構成されていることになり、3つの部分により構成されている場合と比較して取扱いが容易である。
 第1容器、第2容器、第3容器を備える細胞懸濁液調製用デバイスは、更に好ましくは、第1又は第2実施形態に示すように、第1容器の第1排出部と第2容器の第2投入部との間、及び、第2容器の第2排出部と第3容器の第3投入部との間の一方のみが予め接続されており、他方が接続可能である。この場合、細胞懸濁液調製用デバイスは2つの部分により構成されていることになり、第1容器を用いた酵素処理、第2容器を用いたメッシュ濾過処理等の処理が容易となる。また、細胞懸濁液調製用デバイスをガス滅菌する際に処理後のガスが抜け易い点でも有利である。
 第1容器、第2容器、第3容器を備える細胞懸濁液調製用デバイスは、更に好ましくは、第1実施形態に示すように、第1容器の第1排出部と第2容器の第2投入部との間が接続可能に分離されており、第2容器の第2排出部と第3容器の第3投入部との間が予め接続されている。この場合、第2容器及び第3容器とは分離された状態の第1容器中で酵素処理を行うことができるため、酵素処理が容易となる。
 なお、第1~第3実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2における第3容器300は、第1容器100及び第2容器200による処理を経て生成した細胞懸濁液を貯留するための容器である。このため、第2容器200の第2排出部230が後述する濃縮洗浄装置3の貯留容器610の供給部611に接続可能である場合には、第3容器は不要である。第3容器を備えない細胞懸濁液調製用デバイスの具体的な実施形態として、第4実施形態(図10参照)を後述する。第1容器及び第2容器を備え第3容器を備えない細胞懸濁液調製用デバイスは、好ましくは、第4実施形態に示すように、第1容器の第1排出部と第2容器の第2投入部とが予め接続されている。この場合、細胞懸濁液調製用デバイスは1つの部分により構成されていることになり取扱いが容易である。
<濃縮洗浄装置の構成>
 図6に示す実施形態の濃縮洗浄装置3は、中空糸分離膜モジュール400と、中空糸分離膜モジュール400の導出口412から導入口411に液体を循環させる循環流路601と、循環流路601の途中に配置される貯留容器610と、循環流路601中の液体を中空糸分離膜モジュール400の導出口412から導入口411に送液する送液部である第1ポンプ604とを備える。
 中空糸分離膜モジュール400は、中空糸分離膜401と、それを収容する収容容器410とを備える。収容容器410は、中空糸分離膜401へ供給される液体を導入する導入口411が形成された上流側頭部414と、中空糸分離膜401で処理された液体を導出する導出口412が形成されている下流側頭部415と、上流側頭部414と下流側頭部415とを接続する胴部416とを含む。胴部416には、中空糸分離膜401での濾液を排出する濾液排出口413が形成されている。
 胴部416の内部には、多数の中空糸分離膜401の束402と、胴部416の上流側端において、中空糸分離膜401の束402を、中空糸分離膜401の上流側開口端403が上流側頭部414に向くように固定し、隣接する中空糸分離膜401の間及び束402と胴部416の内周面との隙間を埋める上流側樹脂層部421と、胴部416の下流側端において、中空糸分離膜401の束402を、中空糸分離膜401の下流側開口端404が下流側頭部415に向くように固定し、隣接する中空糸分離膜401の間及び束402と胴部416の内周面との隙間を埋める下流側樹脂層部422とが配置されている。胴部416の上流側端は上流側頭部414により被冠されており、胴部416の下流側端は下流側頭部415により被冠されている。この構成により、導入口411及び導出口412は、中空糸分離膜401の内側の空間を介して連続しており、濾液排出口413は、導入口411及び導出口412とは、中空糸分離膜401を構成する膜壁により隔てられ、連続しない構造となっている。
 中空糸分離膜モジュール400では、導入口411から供給された細胞懸濁液が上流側開口端403から中空糸分離膜401の内側に導入される。導入された細胞懸濁液は、中空糸分離膜401の内側の空間を満たしながら、中空糸分離膜401の膜壁に設けられた微細孔を通過して中空糸分離膜401の外側に夾雑物や培地成分を含む濾液が排出され、この濾液は濾液排出口413から中空糸分離膜モジュール400から排出される。一方、中空糸分離膜401の内側にある濃縮された細胞懸濁液は下流側開口端404から、導出口412を通って中空糸分離膜モジュール400の外に導出される。
 中空糸分離膜401の束402は、中空糸分離膜401を10~1000本程度束ねたものであることが好ましい。
 中空糸分離膜401を構成する樹脂材料は、材料の安全性、安定性などの点から合成高分子材料が好ましく用いることができる。この中でも、ポリスルホン系又はセルロース系の親水性の高分子材料がより好ましく用いることができる。さらに、ポリエーテルスルホン、セルロースエステルが材料の安全性、安定性、入手のしやすさから最も好適に用いることができる。
 また、中空糸分離膜401の膜壁に設けられた微細孔の孔径は0.1μm以上1.5μm以下が好ましい。前記孔径が0.1μm以上であることにより、細胞懸濁液の濃縮時に不要な蛋白質などの夾雑物を効率的に除去することができるため好ましい。一方、前記孔径が1.5μm以下であると、細胞懸濁液を濃縮する工程において微細孔への細胞の詰まりが生じ難く、細胞回収率が向上するため好ましい。前記孔径は、1.5μm以下が好ましく、1.2μm以下がより好ましく、1.0μm以下がさらに好ましい。前記孔径は、中空糸分離膜の平均孔径を指し、一般的にパームポロメーターにより測定、算出される。
 収容容器410の素材としては、アクリロニトリルブタジエンスチレンターポリマー等のアクリロニトリルポリマー;ポリテトラフルオロエチレン、ポリクロロトリフルオロエチレン、テトラフルオロエチレンとヘキサフルオロプロピレンのコポリマー、ポリ塩化ビニル等のハロゲン化ポリマー;ポリアミド、ポリイミド、ポリスルホン、ポリカーボネート、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリビニルクロリドアクリルコポリマー、アクリロニトリル、ブタジエンスチレン、ポリスチレン、ポリメチルペンテン等を使用できる。
 上流側樹脂層部421及び下流側樹脂層部422の素材としては、ポリウレタン樹脂、エポキシ樹脂、シリコン樹脂等一般的な接着材料が好ましく用いることができる。
 本実施形態の濃縮洗浄装置3は更に、中空糸分離膜モジュール400の導出口412と導入口411とを接続し、導出口412から導入口411に液体を循環させる循環流路601と、中空糸分離膜モジュール400の濾液排出口413に接続され、濾液を排出する排出流路602と、循環流路601の分岐部620において分岐した回収流路603とを備える。
 図6に示す実施形態の貯留容器610は、循環流路601の途中に配置されている。循環流路601のうち、貯留容器610よりも上流側の部分、すなわち中空糸分離膜モジュール400の導出口412から貯留容器610までの間を上流側の循環流路601Aとし、貯留容器610よりも下流側の部分、すなわち貯留容器610から中空糸分離膜モジュール400の導入口411までの間を下流側の循環流路601Bとする。
 貯留容器610は、循環流路601を流れる液体を貯留する貯留空間615を内包する貯留容器本体616と、上流側の循環流路601Aに接続され、上流側の循環流路601Aから貯留空間615への液体の出口が形成された循環出口部613と、下流側の循環流路601Bに接続され、貯留空間615から下流側の循環流路601Bへの液体の入口が形成された循環入口部612と、細胞懸濁液調製用デバイス2で処理された液体(具体的には細胞懸濁液調製用デバイス2を用いて調製された細胞懸濁液)の供給口が形成された供給部611と、貯留空間615内の圧力を調節するためのエアフィルター614と、を備える。図6では、上流側の循環流路601Aが循環出口部613に接続され、下流側の循環流路601Bが循環入口部612に接続された例を示す。循環流路601を、中空糸分離膜モジュール400の導出口412から導入口411に向けて送液される液体は、その途中で、貯留容器610の貯留空間615を経由する。また、貯留容器610の貯留空間615に供給された成分は、中空糸分離膜モジュール400の導入口411に向けて循環流路601中を流れる。
 循環流路601のうち下流側の循環流路601Bには、循環流路601中の液体を中空糸分離膜モジュール400の導出口412から導入口411へ送液するための第1ポンプ604が配置されている。循環流路601の、分岐部620と貯留容器610との間には第1バルブ607が配置されている。回収流路603は、細胞懸濁液を回収するための回収容器(図示せず)に接続されており、回収流路603の途中に第2バルブ608が配置されている。排出流路602は、濾液を貯留する廃液容器630に接続されており、排出流路602の途中には、第3バルブ606と、濾液を廃液容器630に送液する第2ポンプ605が配置されている。
 貯留容器610に細胞懸濁液を貯留した状態で、第1バルブ607を開き、第2バルブ608を閉じた状態で第1ポンプ604を駆動すると、細胞懸濁液は、循環入口部612から循環流路601を経由して中空糸分離膜モジュール400の導入口411に送液され、中空糸分離膜401を通過して処理され、導出口412から導出され、循環出口部613から循環流路601を経由して貯留容器610に戻る。このように循環流路601内で細胞懸濁液を循環させて濃縮又は洗浄を繰り返すことにより、所望の細胞濃度にまで濃縮又は洗浄された細胞懸濁液が生成される。
 本実施形態では、細胞懸濁液を洗浄する場合には、貯留容器610の供給部611に、洗浄液を充填した洗浄液容器(図1に示す洗浄液容器500)を接続し、洗浄液を貯留容器610に導入して第1ポンプ604を駆動する。こうして循環流路601内の細胞懸濁液の濃縮又は洗浄が所望の程度に達した後、第1バルブ607を閉じ、第2バルブを開き、第1ポンプ604を駆動して、細胞懸濁液を、回収流路603を経由して回収する。回収流路603の末端に、適当な回収容器(図示せず)を接続して細胞懸濁液を回収することができる。回収容器は濃縮洗浄装置3の一部として提供される必要はなく、ユーザーが別途用意した回収容器を用いてもよい。例えば、回収流路603の末端にニードルレスポートが接続されており、それと接続可能なオスコネクターを備える回収容器を接続することや、回収流路603の末端と、回収容器の側から延びる管の末端とを無菌接合機を用いて接続することにより、回収流路603の末端に回収容器を接続することができる。
 中空糸分離膜401の膜壁を通過した濾液は、第2ポンプ605により、濾液排出口413から排出流路602を通り廃液容器630まで圧送される。このとき、第3バルブ606を調節することにより濾液の流れを調節できる。
 第1実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2を用いる場合、図1に示すように、貯留容器610の供給部611は、細胞懸濁液調製用デバイス2の第3容器300の第3排出部330のニードルレスポート333と、流路701を介して接続し通液できるように形成されていることが好ましい。図1に示す実施形態では、流路701には更に途中の分岐部710から分岐した分岐流路702が接続されており、分岐流路702の末端には洗浄液を収容した洗浄液容器500が接続されている。そして、流路701の、分岐部710と、第3容器300の第3排出部330との間の部分には第4バルブ711が設けられ、分岐流路702には第5バルブ712が設けられている。細胞懸濁液を収容する第3容器300のニードルレスポート333と、貯留容器610の供給部611とを、流路701介して接続し、第4バルブ711を開放し第5バルブ712を閉じることで、細胞懸濁液を第3容器300から貯留容器610に移して貯留することができる。また、第4バルブ711を閉じ第5バルブ712を開放することで、洗浄液を洗浄液容器500から貯留容器610に移して貯留することができる。貯留容器610に細胞懸濁液又は洗浄液を貯留した状態で第1ポンプ604を駆動すると、細胞懸濁液又は洗浄液は、循環入口部612から、循環流路601に供給され、中空糸分離膜モジュール400による細胞懸濁液の濃縮又は洗浄が行われる。図1では図示しないが、流路701及び/又は分岐流路702内の液体を送液する送液ポンプが更に設けられていてもよい。
<第2実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス>
 次に、図8を参照して、第2実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2を説明する。なお、第1実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2の各部材と同じ機能を有する部材については同じ符号を付し、その説明を省略する。
 図8に示す第2実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2では、第1容器100の第1排出部130の排出口131を形成する管部132と、第2容器200の第2投入部220の投入口221を形成する管部222とが、一体となって管部801を形成している。管部801により、第1容器100の第1排出部130と、第2容器200の第2投入部220とが、液体を流通できるように予め接続されている。そして、管部801内の流路131、221を開閉するためのローラークランプ225が、管部801の外側に取り付けられている。一方で、第2容器200の第2排出部230は、排出口231を形成する管部232と、管部232の出口を連通可能に封鎖するニードルレスポート233と、ニードルレスポート233を保護する蓋部234とを備える。一方、第3容器300の第3投入部320は、投入口321を形成する管部322と、管部322の入口を連通可能に封鎖するオスコネクター323と、オスコネクター323を保護する蓋部324とを備える。本実施形態では第2容器200の第2排出部230のニードルレスポート233と、第3容器300の第3投入部320のオスコネクター323とが接続可能に構成されている。
 すなわち、図8に示す第2実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2では、第1容器100の第1排出部130と第2容器200の第2投入部220とが液体を流通可能に予め接続されており、且つ、第2容器200の第2排出部230と第3容器の第3投入部320とは分離されているが、液体を流通可能に接続することができる。
 図8に示す第2実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2において、第3容器300は、第3排出部330を有する。第3排出部330のニードルレスポート333と、図6に示す貯留容器610の供給部611とは、直接的に又は図1に示すような流路701を介して間接的に通液可能に接続できるように構成されており、第3容器300の第3排出部330と、貯留容器610の供給部611とを直接的又は間接的に接続した状態で、細胞懸濁液を第3容器300から貯留容器610に移して貯留することができる。貯留容器610に細胞懸濁液を貯留した状態で濃縮洗浄装置3の第1ポンプ604を駆動すると、細胞懸濁液は、循環入口部612から、循環流路601に供給され、中空糸分離膜モジュール400により処理される。
<第3実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス>
 次に、図9を参照して、第3実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2を説明する。なお、第1実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2の各部材と同じ機能を有する部材については同じ符号を付し、その説明を省略する。
 図9に示す第3実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2では、第1容器100の第1排出部130の排出口131を形成する管部132と、第2容器200の第2投入部220の投入口221を形成する管部222とが、一体となって管部801を形成している。管部801により、第1容器100の第1排出部130と、第2容器200の第2投入部220とが、液体を流通できるように予め接続されている。そして、管部801内の流路131、221を開閉するためのローラークランプ225が、管部801の外側に取り付けられている。
 図9に示す第3実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2では、第2容器200の第2排出部230の排出口231を形成する管部232と、第3容器300の第3投入部320の投入口321を形成する管部322とが、一体となって管部901を形成している。管部901により、第2容器200の第2排出部230と、第3容器300の第3投入部320とが、液体を流通できるように予め接続されている。
 すなわち、図9に示す第3実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2では、第1容器100の第1排出部130と第2容器200の第2投入部220とが液体を流通可能に予め接続されており、且つ、第2容器200の第2排出部230と第3容器の第3投入部320とが液体を流通可能に予め接続されている。
<第4実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス>
 次に、図10を参照して、第4実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2及びそれと組み合わせて用いる濃縮洗浄装置3の例を説明する。なお、第1実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2の各部材と同じ機能を有する部材については同じ符号を付し、その説明を省略する。
 図10に示す第4実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2における相互に接続した第1容器100及び第2容器200は、図8に示す第2実施形態に細胞懸濁液調製用デバイス2での第1容器100及び第2容器200と同じである。
 一方、図10に示す濃縮洗浄装置3は、図6に示す濃縮洗浄装置3と同じである。
 本実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2における第2容器200の第2排出部230のニードルレスポート233は、濃縮洗浄装置3の貯留容器610の供給部611と、直接的に又は図10に示すように流路701を介して間接的に、接続可能である。本実施形態における貯留容器610は、循環流路601を流れる液体を貯留する機能を有するとともに、細胞懸濁液調製用デバイス2を用いて調製され、第2容器200の第2空間214の第2区画214-2から第2排出部230の排出口231を通じて排出された細胞懸濁液を貯留する機能を有する。図10に示す実施形態では、図1に示す実施形態と同様に、流路701には更に途中の分岐部710から分岐した分岐流路702が接続されており、分岐流路702の末端には洗浄液を収容した洗浄液容器500が接続されている。そして、流路701の、分岐部710と、第2容器200の第2排出部230との間の部分には第4バルブ711が設けられ、分岐流路702には第5バルブ712が設けられている。第2容器200のニードルレスポート233と、貯留容器610の供給部611とを、流路701介して接続し、第4バルブ711を開放し第5バルブ712を閉じることで、第2容器200で生成した細胞懸濁液を第2容器200から貯留容器610に移して貯留することができる。また、第4バルブ711を閉じ第5バルブ712を開放することで、洗浄液を洗浄液容器500から貯留容器610に移して貯留することができる。貯留容器610に細胞懸濁液又は洗浄液を貯留した状態で第1ポンプ604を駆動すると、細胞懸濁液又は洗浄液を含む細胞懸濁液は、循環入口部612から、循環流路601に供給され、中空糸分離膜モジュール400による細胞懸濁液の濃縮又は洗浄が行われる。図10では図示しないが、流路701及び/又は分岐流路702内の液体を送液する送液ポンプが更に設けられていてもよい。
<細胞懸濁液の調製方法>
 細胞懸濁液調製システム1を用いて、細胞含有試料から細胞懸濁液を調製する方法の一実施形態について説明する。
 本実施形態に係る方法は、第1容器100の第1空間114内に、細胞含有試料と酵素とを含む反応混合液を収容し、第1投入部120及び第1排出部130を閉鎖した状態で、第1容器100を振盪させながら細胞含有試料の酵素処理を行う工程1と、工程1後に、工程1で生成した第1容器100の第1空間114内の酵素処理液の少なくとも一部を、第2容器200の第1区画214-1に移動させ、メッシュシート215を通過させて第2容器200の第2区画214-2の側に細胞懸濁液を生成する工程2と、工程2で生成した細胞懸濁液を、濃縮洗浄装置3の貯留容器610の貯留空間615に供給する工程3と、貯留空間615に供給された細胞懸濁液を、送液部である第1ポンプ604により循環流路601を経由して送液して、中空糸分離膜モジュール400の導入口411に導入し、濾液を濾液排出口413から排出しながら、中空糸分離膜401により処理し、処理された細胞懸濁液を、導出口412から循環流路601に導出し、導入口411まで循環流路601中を循環させる工程4とを少なくとも含む。
 以下、各工程をより具体的に説明する。
 工程1では、第1容器100の第1空間114に、第1投入部120A、120B、120Cのいずれかを通じて、細胞含有試料、酵素液等の材料を供給し、反応混合液を形成する。
 ここで図1~3に示す第1実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2を用いる場合、第1容器100は、第2容器200とは切り離し可能であるため、第1空間114に反応混合液を収容した第1容器100は、それ単独で、振盪させ酵素処理を行うことができる。当然ながら、工程1は、第1投入部120A、120B、120C及び第1排出部130A、130Bを閉鎖した状態で行う。
 また、図8に示す第2実施形態又は図10に示す第4実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2を用いる場合、工程1では、反応混合液を収容した第1容器100を、第2容器200と接続した形態で振盪させる。この場合もまた、第1投入部120A、120B、120Cを閉鎖し、第1排出部130をローラークランプ225により閉鎖した状態で振盪を行う。
 また、図9に示す第3実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2を用いる場合、工程1では、反応混合液を収容した第1容器100を、第2容器200及び第3容器300と接続した形態で振盪させる。この場合もまた、第1投入部120A、120B、120Cを閉鎖し、第1排出部130をローラークランプ225により閉鎖した状態で振盪を行う。
 第1~第4実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2において、酵素処理が行われる第1容器100と、メッシュシート215を用いた濾過を行う第2容器200とが別の容器であることにより次の利点がある。細胞含有試料が脂肪組織等の生体組織である場合、酵素による分解反応後の酵素処理液は、第1容器100内で静置すると、有用細胞が懸濁した水層と、脂肪細胞などの不要な油溶成分を含む油層とに層分離する。油溶成分はメッシュシート215の目詰まりの原因となる。第1容器100と第2容器200とが別の容器であることにより、工程1での振盪後、第1容器100内で二層に層分離させたのちに、工程2において、有用細胞が懸濁した水層のみを第2容器200に供給しメッシュシート215を通過させることができ、目詰まりを抑制することができる。
 第1~第3実施形態のように、第1容器100、第2容器200及び第3容器300を備える細胞懸濁液調製用デバイス2を用いる場合、工程2に先立って、第1容器100、第2容器200、第3容器300がこの順で接続した細胞懸濁液調製用デバイス2を形成する。図1~3に示す第1実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2を用いる場合は、第1容器100のニードレスポート133A、133Bのいずれかに、第2容器200のオスコネクター223を接続することで、第1容器100、第2容器200、第3容器300をこの順で接続する。図8に示す第2実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2を用いる場合は、第2容器200のニードレスポート233に、第3容器300のオスコネクター323を接続することで、第1容器100、第2容器200、第3容器300をこの順で接続する。図9に示す第3実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2を用いる場合は、工程1と工程2との間に接続操作は不要である。
 一方、第4実施形態のように、第1容器100及び第2容器200を備えるが第3容器300を備えない細胞懸濁液調製用デバイス2を用いる場合には、工程2に先立って、図10に示すように、第2容器200の第2排出部230のニードレスポート233と、貯留容器610の供給部611とを、直接的に又は流路701を介して間接的に接続することで、第1容器100、第2容器200、貯留容器610をこの順で接続する。
 第1容器100及び第2容器200を接続した細胞懸濁液調製用デバイス2を、鉛直方向上方から第1容器100、第2容器200の順となるように配置し、第1排出部130と第2投入部220とが接続して形成される流路を、ローラークランプ225を操作して開放すると、酵素処理液は、第1容器100の第1空間114から、第2容器200の第1区画214-1に流入し、メッシュシート215を通過できる液体成分、細胞等が第2区画214-2に至り細胞懸濁液が生成する。
 第1~第3実施形態のように、第1容器100、第2容器200及び第3容器300を備える細胞懸濁液調製用デバイス2を用いる場合には、工程2で生成した細胞懸濁液は、第2排出部230と第3投入部320とが接続して形成される流路を経由して、第2容器200の第2空間214の第2区画214-2から第3容器300の第3空間314に移動し貯留される。
 第4実施形態のように、第1容器100及び第2容器200を備え第3容器300を備えない細胞懸濁液調製用デバイス2を用いる場合には、工程2で生成した細胞懸濁液は、続いて、第2容器の第2排出部230と貯留容器610の供給部611とを接続した流路を経由して、第2容器200の第2空間214の第2区画214-2から貯留容器610の貯留空間615に移動し貯留される。すなわち工程2と工程3を一連の工程として行うことができる。
 細胞懸濁液調製用デバイス2を用いて工程1及び工程2を含む方法により細胞懸濁液を調製する方法は、遠心分離等の操作を伴わないため、細胞への負荷が小さく好ましい。
 細胞懸濁液調製用デバイス2として、第1~第3実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2を用いる場合は、工程3において、工程2で生成した細胞懸濁液を濃縮洗浄装置3の貯留容器610の貯留空間615に供給するためには、図1に示すように、貯留容器610の供給部611に、細胞懸濁液調製用デバイス2の第3容器300の第3排出部330のニードルレスポート333を接続し、細胞懸濁液を第3容器300から貯留容器610の貯留空間615に移して貯留すればよい。細胞懸濁液調製用デバイス2として、第4実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2を用いる場合は、上記の通り、工程2で生成した細胞懸濁液が、第2容器200の第2空間214の第2区画214-2から貯留容器610の貯留空間615に移動し貯留されることが工程3に該当する。
 工程4では、濃縮洗浄装置3の貯留容器610の貯留空間615に細胞懸濁液を供給した状態で、第1ポンプ604を駆動することで、細胞懸濁液を、循環流路601を経由して送液し、中空糸分離膜モジュール400の導入口411に導入し、濾液を濾液排出口413から排出しながら、中空糸分離膜401により処理し、処理された細胞懸濁液を、導出口412から循環流路601に導出し、再び導入口411まで循環させる。工程4を一定時間続けると、循環流路601と中空糸分離膜モジュール400との間を細胞懸濁液が繰り返し循環することになる。この工程4により、細胞懸濁液に含まれる液体成分や夾雑物等が中空糸分離膜401の膜壁を通過する濾液として排出され、細胞懸濁液が濃縮又は洗浄される。更に、貯留容器610の貯留空間615に洗浄液を供給した状態で第1ポンプ604を駆動することで、細胞懸濁液を洗浄することができる。
 本実施形態の方法において、工程1及び工程2を経て調製された細胞懸濁液は、メッシュシート215での濾過を経ているのみであるため夾雑物が多い傾向があるが、工程3及び工程4により夾雑物を除去することができるため、最終的には夾雑物が少なく十分に洗浄された細胞懸濁液を得ることができ、再生医療等の目的に利用することができる。また、工程1、2と同様に工程3及び工程4も細胞に対する負荷が小さいため、本実施形態の方法は、細胞懸濁液を効率的に調製することができる。
 なお、濃縮洗浄装置は、工程4での細胞懸濁液の処理を行う前に、貯留容器に生理食塩水を供給し、送液部を駆動させて、中空糸分離膜モジュールを生理食塩水で満たすプライミングが必要であることが一般的である。
 第4実施形態のように、第1容器100及び第2容器200を備えるが第3容器300を備えない細胞懸濁液調製用デバイス2を用いる場合には、第2容器200の第2区画214-2の側に細胞懸濁液を生成する工程2と、工程2に引き続き細胞懸濁液を第2容器200の第2区画214-2から貯留容器610の貯留空間615に供給する工程3とを行う前に、濃縮洗浄装置3の貯留容器610の貯留空間615に生理食塩水を収容し第1ポンプ604を駆動させてプライミングを行い、その後に、細胞懸濁液調製用デバイス2を用いて工程2及び工程3を手動で行って濃縮洗浄装置3の貯留容器610の貯留空間615に細胞懸濁液を供給し、その後に再び第1ポンプ604を駆動させて中空糸分離膜モジュール400による処理(工程4)を行うことができる。
 一方、第1~第3実施形態のように第3容器300を備える細胞懸濁液調製用デバイス2を用いる場合には、濃縮洗浄装置3のプライミングは、工程3を行う前の適当な時点で行うことができる。特に好ましくは、工程1、工程2、工程2で生成した細胞懸濁液を第3容器300に貯留する工程、並びに、図1に示す流路701を介して第3容器300の第3排出部330を濃縮洗浄装置3の貯留容器610の供給部611に接続する工程(接続の時点では第4バルブ711を閉じる)までの一連の手動の工程を先に行う。その後に、濃縮洗浄装置3の送液部である第1ポンプ604を駆動させて、貯留容器610に予め貯留しておいた生理食塩水を中空糸分離膜モジュール400に送るプライミング工程を行い、続いて、第4バルブ711を開放して細胞懸濁液を第3容器300の第3空間314から濃縮洗浄装置3の貯留容器610の貯留空間615に供給し(工程3)、第1ポンプ604を駆動させて中空糸分離膜モジュール400による処理(工程4)を行う。すなわち、濃縮洗浄装置3の第1ポンプ604を用い自動的に送液する工程であるプライミング工程及び工程4を一連の工程として行うことができる。このように、第1~第3実施形態のように第3容器300を備える細胞懸濁液調製用デバイス2を用いる場合には、細胞懸濁液調製用デバイス2を用いた手動の操作と、濃縮洗浄装置3を用いた自動化された操作をそれぞれ一連の操作として行うことができるため、操作が簡便である。
<工程1と工程2との間に行う洗浄>
 上記実施形態に係る方法において、細胞含有試料が、生体試料、特に脂肪組織である場合の更に好ましい実施形態を、図7を参照して説明する。図7では、説明のため、第1容器100の部分のみを示す。工程2において第1容器100に接続される第2容器200は図7中では省略する。
 上記実施形態に係る方法は更に、工程1で生成した第1容器100の第1空間114内の酵素処理液A(図7(A)参照)が、油層Bと水層Cとの二層に分離するまで第1容器100を静置する層分離工程(図7(B)参照)を、工程1と工程2との間に含み、層分離工程の後に行う工程2では、その途中で、第1容器100の第1空間114内の水層Cが第2容器200の第1区画214-1に移動した時点で、第1容器100と第2容器200の間の酵素処理液の移動を停止し(図7(C)参照)、次いで、第1容器100の第1空間114内に洗浄液を加えて、第1空間114内に残留した油層Bと洗浄液とを混合して混合液Dを形成し(図7(D)参照)、混合液Dが油層Eと水層Fとの二層に分離するまで第1容器を静置し(図7(E)参照)、静置後に水層Fを第2容器200の第1区画214-1に移動させる(図7(F)参照)ことを含む洗浄工程を1回以上行うことがより好ましい。ここで、水層Fを第2容器200の第1区画214-1に移動させた時点で、第1容器100と第2容器200の間の酵素処理液の移動を停止し、油層Eが第2容器200に流入しないようにすることがより好ましい。
 なお、第1容器100と第2容器200の間の酵素処理液の移動は、図3に示す、第2容器200の第2投入部220に設けられたローラークランプ225を操作して投入口221を閉じることにより停止させることができ、ローラークランプ225を操作して投入口221を開放することにより開始させることができる。
 本実施形態の洗浄方法は、細胞含有試料が生体試料(特に脂肪組織)である場合において、工程1での酵素処理液が、目的とする細胞を含む水層と、脂質を含む成分(特に脂肪細胞)を含む油層とに分離することを利用したものである。従来、このような酵素処理液から水層中の細胞を回収するためには、遠心分離により水層と油層を分画し、水層を回収し、更に油層を洗浄し遠心分離して水層を回収することが一般的であったが、遠心分離は細胞に負荷がかかる問題があった。本実施形態の洗浄方法によれば、細胞に高負荷をかけることなく、目的とする細胞を含む水層を洗浄し回収することができる。また、本実施形態の洗浄方法を経て第1容器100から排出された細胞含有水層は油溶成分が少ないため、工程2及び工程4での第2容器200のメッシュシート215及び濃縮洗浄装置3の中空糸分離膜401の目詰まりが抑制され、細胞懸濁液を効率的に調製するのに役立つ。
(実施例1~3)
 細胞懸濁液調製用デバイスとして第1実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2を使用した。用いた第1実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2が備える第2容器200において、上記で定義したWは4.3mm、Dは60mmであり、D/Wは13.9であり、メッシュシートの細孔径は70μmであった。
 3名の人(ドナー1、ドナー2、ドナー3)の脂肪組織10mLから、本明細書に記載の細胞懸濁液調製システム1を使用することで、細胞懸濁液を調製した。
 10mLの脂肪組織と10mLのコラゲナーゼ液(コラゲナーゼ濃度0.1w/v%となるようにコラゲナーゼを生理食塩液で溶解して調製)とを、細胞懸濁液調製用デバイス2の第1容器100に収容し、第1容器100を37℃で30分間振盪して酵素処理を行った。
 酵素処理後の細胞懸濁液を第2容器200に通液後、第3容器300に貯留し、図6に示す濃縮洗浄装置3にて、濃縮洗浄した。第1実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2の第3容器300の第3排出部330と、濃縮洗浄装置3の貯留容器610の供給部611との間は、図1に示すように、流路701及び、分岐部710から分岐し、末端に洗浄液容器500が接続された分岐流路702を含む流路系により接続した。
 濃縮洗浄装置3による処理後の細胞懸濁液中に含まれる有核細胞数及び脂肪由来幹細胞数をフローサイトメーターおよびBD TrucountTubesを用いて測定した。有核細胞数は、CD34陽性細胞数とCD45陽性細胞数の和から算出した。同様に、脂肪由来幹細胞数は、CD34陽性/CD45陰性/CD31陰性の細胞数から算出した。
(実施例4~6)
 実施例1~3と同じ3名の人(ドナー1、ドナー2、ドナー3)の脂肪組織50mLから、本明細書に記載の細胞懸濁液調製システム1を使用することで、細胞懸濁液を調製した。細胞懸濁液調製用デバイス2及び濃縮洗浄装置3は実施例1~3と同じものを用いた。第1実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2の第3容器300の第3排出部330と、濃縮洗浄装置3の貯留容器610の供給部611との間は、実施例1~3と同様に、図1に示すように、流路701及び、分岐部710から分岐し、末端に洗浄液容器500が接続された分岐流路702を含む流路系により接続した。
 50mLの脂肪組織と50mLのコラゲナーゼ液(コラゲナーゼ濃度0.1w/v%となるようにコラゲナーゼを生理食塩液で溶解して調製)とを、細胞懸濁液調製用デバイス2の第1容器100に収容し、第1容器100を37℃で30分間振盪して酵素処理を行った。
 酵素処理後の細胞懸濁液を第2容器200に通液後、第3容器300に貯留し、図6に示す濃縮洗浄装置3にて、濃縮洗浄した。
 濃縮洗浄装置3による処理後の細胞懸濁液中に含まれる有核細胞数及び脂肪由来幹細胞数をフローサイトメーターおよびBD TrucountTubesを用いて測定した。有核細胞数は、CD34陽性細胞数とCD45陽性細胞数の和から算出した。同様に、脂肪由来幹細胞数は、CD34陽性/CD45陰性/CD31陰性の細胞数から算出した。
(実施例7)
 1名の人(ドナー4)の脂肪組織10mLから、本明細書に記載の細胞懸濁液調製システム1を使用することで、細胞懸濁液を調製した。細胞懸濁液調製用デバイス2及び濃縮洗浄装置3は実施例1~3と同じものを用いた。第1実施形態の細胞懸濁液調製用デバイス2の第3容器300の第3排出部330と、濃縮洗浄装置3の貯留容器610の供給部611との間は、実施例1~3と同様に、図1に示すように、流路701及び、分岐部710から分岐し、末端に洗浄液容器500が接続された分岐流路702を含む流路系により接続した。
 10mLの脂肪組織と10mLのコラゲナーゼ液(コラゲナーゼ濃度0.1w/v%となるようにコラゲナーゼを生理食塩液で溶解して調製)とを、細胞懸濁液調製用デバイス2の第1容器100に収容し、第1容器100を37℃で30分間振盪して酵素処理を行った。
 酵素処理後の細胞懸濁液を第2容器200に通液後、第3容器300に貯留し、図6に示す濃縮洗浄装置3にて、濃縮洗浄した。
 濃縮洗浄装置処理後の細胞懸濁液中に含まれる有核細胞数及び脂肪由来幹細胞数をフローサイトメーターおよびBD TrucountTubesを用いて測定した。有核細胞数は、CD34陽性細胞数とCD45陽性細胞数の和から算出した。同様に、脂肪由来幹細胞数は、CD34陽性/CD45陰性/CD31陰性の細胞数から算出した。
(比較例1~3)
 実施例1~3と同じ3名の人(ドナー1、ドナー2、ドナー3)の脂肪組織20mLから、遠心分離を使用することで、細胞懸濁液を調製した。
 遠沈管として、ポリプロピレン製の内容量が50mLの遠沈管を用いた。20mLの脂肪組織と20mLのコラゲナーゼ液(コラゲナーゼ濃度0.1w/v%となるようにコラゲナーゼを生理食塩液で溶解して調製)とを遠沈管に収容した。37℃、30分間、酵素処理を実施し、遠心分離処理により800Gにて複数回遠心することにより洗浄操作を行った。
 洗浄後の細胞懸濁液中に含まれる有核細胞数及び脂肪由来幹細胞数をフローサイトメーターおよびBD TrucountTubesを用いて測定した。有核細胞数は、CD34陽性細胞数とCD45陽性細胞数の和から算出した。同様に、脂肪由来幹細胞数は、CD34陽性/CD45陰性/CD31陰性の細胞数から算出した。
(比較例4)
 実施例7と同じ人(ドナー4)の脂肪組織10mLから、遠心分離を使用することで、細胞懸濁液を調製した。
 遠沈管として、ポリプロピレン製の内容量が50mLの遠沈管を用い、10mLの脂肪組織と10mLのコラゲナーゼ液(コラゲナーゼ濃度0.1w/v%となるようにコラゲナーゼを生理食塩液で溶解して調製)とを遠沈管に収容した。37℃、30分間、酵素処理を実施し、遠心分離処理により800Gにて複数回遠心することにより洗浄操作を行った。
 洗浄後の細胞懸濁液中に含まれる有核細胞数及び脂肪由来幹細胞数をフローサイトメーターおよびBD TrucountTubesを用いて測定した。有核細胞数は、CD34陽性細胞数とCD45陽性細胞数の和から算出した。同様に、脂肪由来幹細胞数は、CD34陽性/CD45陰性/CD31陰性の細胞数から算出した。
 実施例1~7、比較例1~4の結果を表1に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
 本明細書で引用した全ての刊行物、特許及び特許出願はそのまま引用により本明細書に組み入れられるものとする。
1:細胞懸濁液調製システム
2:細胞懸濁液調製用デバイス
3:濃縮洗浄装置
100:第1容器
114:第1空間
110:第1容器本体
130:第1排出部
200:第2容器
214:第2空間
214-1:第1区画
214-2:第2区画
215:メッシュシート
210:第2容器本体
220:第2投入部
230:第2排出部
300:第3容器
310:第3容器本体
320:第3投入部
400:中空糸分離膜モジュール
401:中空糸分離膜
410:収容容器
411:導入口
412:導出口
413:濾液排出口
601:循環流路
604:送液部(第1ポンプ)
610:貯留容器
611:供給部
616:貯留容器本体

Claims (14)

  1.  細胞懸濁液調製システムであって、
     細胞懸濁液を調製するための細胞懸濁液調製用デバイスと、細胞懸濁液調製用デバイスにより調製された細胞懸濁液を濃縮又は洗浄するための濃縮洗浄装置とを備え、
     細胞懸濁液調製用デバイスが、第1容器及び第2容器を備え、
     第1容器が、
     第1空間を内包する第1容器本体と、
     第1空間からの液体の排出口が形成された第1排出部と
    を備え、
     第2容器が、
     第2空間を内包する第2容器本体と、
     第2空間を第1区画と第2区画とに区切るように配置されたメッシュシートと、
     第1容器の第1空間から第1排出部の排出口を通じて排出される液体を、第1区画へ投入するための投入口が形成された第2投入部と、
     第2区画からの液体の排出口が形成された第2排出部と
    を備え、
     濃縮洗浄装置は
     中空糸分離膜と、中空糸分離膜を収容する収容容器とを備え、収容容器には、中空糸分離膜へ供給される液体の導入口と、中空糸分離膜で処理された液体の導出口と、中空糸分離膜での濾液を排出する濾液排出口とが形成されている、中空糸分離膜モジュールと、
     中空糸分離膜モジュールの導出口から導入口まで液体を循環させる循環流路と、
     循環流路の途中に配置される貯留容器と、
     循環流路中の液体を中空糸分離膜モジュールの導出口から導入口に送液する送液部と
    を備え、
     貯留容器が、
     循環流路を流れる液体を貯留する貯留空間を内包する貯留容器本体と、
     細胞懸濁液調製用デバイスで処理した液体を貯留空間に供給するための供給口が形成された供給部と
    を備えることを特徴とする、細胞懸濁液調製システム。
  2.  細胞懸濁液調製用デバイスが、第3容器を更に備え、
     第3容器が、
     第3空間を内包する第3容器本体と、
     第2容器の第2区画から排出される液体を、第3空間へ投入するための投入口が形成された第3投入部と
    を備える、請求項1に記載の細胞懸濁液調製システム。
  3.  細胞懸濁液調製用デバイスにおいて、第1容器の第1排出部と第2容器の第2投入部との間、及び、第2容器の第2排出部と第3容器の第3投入部との間の少なくとも一方が、予め接続されている、請求項2に記載の細胞懸濁液調製システム。
  4.  細胞懸濁液調製用デバイスにおいて、第1容器の第1排出部と第2容器の第2投入部との間、及び、第2容器の第2排出部と第3容器の第3投入部との間の一方のみが予め接続されており、他方が接続可能である、請求項3に記載の細胞懸濁液調製システム。
  5.  第1容器の第1排出部と第2容器の第2投入部との間が接続可能であり、第2容器の第2排出部と第3容器の第3投入部との間が予め接続されている、請求項4に記載の細胞懸濁液調製システム。
  6.  細胞懸濁液調製用デバイスにおいて、第1容器の第1排出部と、第2容器の第2投入部とが予め接続されている、請求項1に記載の細胞懸濁液調製システム。
  7.  メッシュシートの細孔径が50~300μmである、請求項1~6のいずれか1項に記載の細胞懸濁液調製システム。
  8.  第2容器本体が、メッシュシートを間に介して対向する第1側壁と第2側壁とを含み、
     第1側壁とメッシュシートとが第1区画を囲い、
     第2側壁とメッシュシートとが第2区画を囲い、
     第2投入部が、第1側壁の周縁部とメッシュシートの周縁部との間に、第2投入口を介して第1区画と外部とを連通するように配置されており、
     第2排出部が、第2側壁の周縁部とメッシュシートの周縁部との間に、第2排出口を介して第2区画と外部とを連通するように配置されており、
     第1側壁、第2側壁及びメッシュシートが周縁部において一体化されて第2容器を形成している、請求項1~7のいずれか1項に記載の細胞懸濁液調製システム。
  9.  第2投入部と、第2排出部とが、第2容器本体の対向する位置に配置されており、
     第2投入部の第1区画の側の端の、第1側壁と第2側壁とが対向する方向に沿った幅をW1、
     第2排出部の第2区画の側の端の、第1側壁と第2側壁とが対向する方向に沿った幅をW2、
     W1とW2との平均値をW、
     第2投入部の第1区画の側の端と、第2排出部の第2区画の側の端との間の距離をD
    としたとき、
     D/Wが13以上である、請求項8に記載の細胞懸濁液調製システム。
  10.  第1容器が、洗浄液を第1空間に投入するための洗浄液投入部を備える、請求項1~9のいずれか1項に記載の細胞懸濁液調製システム。
  11.  請求項1~10のいずれか1項に記載の細胞懸濁液調製システムを用いて、細胞含有試料から細胞懸濁液を調製する方法であって、
     第1容器の第1空間内に、細胞含有試料と酵素とを含む反応混合液を収容し、第1容器を振盪させながら細胞含有試料の酵素処理を行う工程1と、
     工程1後に、工程1で生成した第1容器の第1空間内の酵素処理液の少なくとも一部を、第2容器の第1区画に移動させ、第2容器のメッシュシートを通過させて第2容器の第2区画の側に細胞懸濁液を生成する工程2と、
     工程2で生成した細胞懸濁液を濃縮洗浄装置の貯留容器の貯留空間に供給する工程3と、
     貯留空間に供給された細胞懸濁液を、送液部により、循環流路を経由して送液して、中空糸分離膜モジュールの導入口に導入し、濾液を濾液排出口から排出しながら、中空糸分離膜により処理し、処理された細胞懸濁液を、導出部から循環流路に導出し、導入口まで循環させる工程4と
    を含む方法。
  12.  細胞含有試料が生体試料であり、
     工程1で生成した第1容器の第1空間内の酵素処理液が油層と水層との二層に分離するまで第1容器を静置する層分離工程を、工程1と工程2との間に含み、
     層分離工程の後に行う工程2では、その途中で、第1容器の第1空間内の水層が第2容器の第1区画に移動した時点で、第1容器と第2容器の間の酵素処理液の移動を停止し、第1容器の第1空間内に洗浄液を加えて、第1空間内に残留した油層と洗浄液とを混合し、混合液が油層と水層との二層に分離するまで第1容器を静置し、静置後に水層を第2容器の第1区画に移動させる洗浄工程を1回以上行う、
    請求項11に記載の方法。
  13.  細胞懸濁液調製用デバイスであって、
     第1容器及び第2容器を備え、
     第1容器が、
     第1空間を内包する第1容器本体と、
     第1空間からの液体の排出口が形成された第1排出部と
    を備え、
     第2容器が、
     第2空間を内包する第2容器本体と、
     第2空間を第1区画と第2区画とに区切るように配置されたメッシュシートと、
     第1容器の第1空間から第1排出部の排出口を通じて排出される液体を、第1区画へ投入するための投入口が形成された第2投入部と、
     第2区画からの液体の排出口が形成された第2排出部と
    を備えることを特徴とする、細胞懸濁液調製用デバイス。
  14.  第3容器を更に備え、
     第3容器が、
     第3空間を内包する第3容器本体と、
     第2容器の第2区画から排出される液体を、第3空間へ投入するための投入口が形成された第3投入部と
    を備える、請求項13に記載の細胞懸濁液調製用デバイス。
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