WO2018194061A1 - 細胞分離用フィルター容器、細胞分離用フィルター装置 - Google Patents

細胞分離用フィルター容器、細胞分離用フィルター装置 Download PDF

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敬太 山下
真弘 小嶋
幸晋 牛崎
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株式会社カネカ
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    • C12N5/0645Macrophages, e.g. Kuepfer cells in the liver; Monocytes

Definitions

  • the present invention relates to a cell separation filter container, a cell separation filter device in which a filter member is accommodated in the cell separation filter container, and a method for obtaining a cell-containing liquid, including a step of using the cell separation filter device,
  • the present invention also relates to a method for producing a dendritic cell-containing liquid comprising a step of using the cell separation filter device.
  • An erythrocyte product is a blood product that is used when bleeding and erythrocytes are deficient, or when oxygen is deficient due to reduced function of erythrocytes.
  • Red blood cell preparations do not require leukocytes that induce side effects such as abnormal immune responses and graft-versus-host disease (GVHD). For this reason, in the erythrocyte preparation, it is necessary to remove leukocytes with a filter. In some cases, platelets may be removed in addition to leukocytes.
  • the platelet preparation is a blood preparation used for patients who are bleeding or tend to bleed due to lack of blood coagulation factors.
  • unnecessary cells and components other than platelets are removed by centrifugation, and only the necessary platelet components are collected.
  • hematopoietic stem cell transplantation for leukemia has been actively performed.
  • hematopoietic stem cell transplantation a method of separating and administering a leukocyte group containing hematopoietic stem cells necessary for treatment is employed.
  • umbilical cord blood has attracted attention in addition to bone marrow and peripheral blood because of its advantages such as low burden on donors and excellent proliferation ability.
  • stem cells are also abundant in menstrual blood. For this reason, menstrual blood that has been discarded may be used as a valuable stem cell source.
  • dendritic cell therapy is actively used for treatment of solid cancer. In dendritic cell therapy, there are cases where a group of cells containing monocytes, which is the basis of treatment, is separated from the blood or cell culture fluid of a patient.
  • leukocytes are separated and purified except unnecessary cells for administration.
  • leukocytes are separated and purified for the purpose of preventing erythrocyte hemolysis due to cryopreservation because of the necessity of cryopreservation until use.
  • an object of the present invention is to provide a cell separation filter container capable of recovering cells with high recovery efficiency by housing a filter member therein, and the inside of the cell separation filter container
  • a cell separation filter device in which a filter member is housed a method for obtaining a cell-containing solution including a step of using the cell separation filter device, and a production of a dendritic cell-containing solution including a step of using the cell separation filter device And to provide a method.
  • the present inventor has intensively studied to solve such problems.
  • the first filter holder Is made up of three or more first protrusions, a polygonal area formed by connecting the respective tips of the three or more first protrusions, and a cross section of the internal space of the filter member accommodating portion at the position of the first protrusions.
  • the gist of the present invention is as follows.
  • a cell separation filter container having a liquid inlet, a liquid outlet, a filter member housing, a first filter holder, and a second filter holder
  • the filter member accommodating portion is a cylindrical member having openings at both ends, A liquid inlet is provided on one opening end side of the filter member accommodating portion, A liquid outlet is provided on the other opening end side of the filter member accommodating portion;
  • the first filter holder is located at the liquid inlet side of the filter member housing portion from the inner wall surface or the vicinity of the inner wall surface of the filter member housing portion toward the center or substantially the center of the cross section of the internal space of the filter member housing portion.
  • the first filter holding portion is provided so as to contact the filter member while deforming the filter member when the filter member is accommodated in the filter member accommodating portion
  • the second filter presser is provided at a position on the liquid outlet port side of the filter member housing portion so that the filter member is sandwiched between the first filter presser and the second filter presser
  • the second filter holder is located at the center of the cross section of the inner space of the filter member housing portion or substantially from the inner wall surface of the filter member housing portion or the vicinity of the inner wall surface at the liquid outlet port side of the filter member housing portion.
  • a method for obtaining a cell-containing solution containing monocytes After supplying a crude cell-containing liquid containing monocytes and small cells having a smaller average size than monocytes into the cell separation filter device according to [8] or [9] from the liquid inlet. Allowing the filter member to capture monocytes by passing through the cell separation filter device; Supplying the collection liquid into the cell separation filter device to release the monocytes captured by the filter member into the collection liquid to produce a cell-containing liquid; Recovering the cell-containing liquid from the cell separation filter device; Including methods.
  • a method for producing a dendritic cell-containing solution used for dendritic cell therapy After supplying a crude cell-containing liquid containing monocytes and small cells having a smaller average size than monocytes into the cell separation filter device according to [8] or [9] from the liquid inlet. Allowing the filter member to capture monocytes by passing through the cell separation filter device; Supplying the collection liquid into the cell separation filter device to release the monocytes captured by the filter member into the collection liquid, thereby generating a cell-containing liquid; Recovering the cell-containing liquid from the cell separation filter device; Differentiating monocytes contained in the cell-containing fluid into dendritic cells; Including methods.
  • a cell separation filter container that provides a cell separation filter device capable of collecting cells with high collection efficiency by housing a filter member therein, and a cell in which the filter member is housed in the cell separation filter container
  • a separation filter device, a method for obtaining a cell-containing solution including a step of using the cell separation filter device, and a method of producing a dendritic cell-containing solution including a step of using the cell separation filter device can be provided. .
  • the cell container 2 for cell separation has a liquid inlet 9, a liquid outlet 10, a filter member container 3, a first filter holder 12, and a second filter holder 13.
  • the filter container for cell separation is also simply referred to as “container”.
  • the cell separation filter device 1 By accommodating a filter member 11 made of a nonwoven fabric or the like in the cell separation filter container 2, the cell separation filter device 1 is configured.
  • the filter device for cell separation is also simply referred to as “filter device”.
  • the configuration of the cell separation filter container 2 will be described below.
  • the filter member accommodating portion 3 is a cylindrical member having openings at both ends.
  • the filter member accommodating portion 3 accommodates a filter member 11 described later.
  • the filter member housing 3 is also referred to as a housing 3.
  • the shape of the accommodating portion 3 is a cylindrical shape having openings at both ends.
  • the shape of the cross section of radial direction may be circular, or shapes other than circular shapes, such as a polygon, may be sufficient.
  • Preferable specific examples of the shape of the accommodating portion 3 include, for example, a cylindrical shape having a capacity of about 0.1 to 400 mL, an inner diameter of about 0.1 to 15 cm, and a thickness of about 0.1 to 5 cm, or a length of 0.1 mm. Examples thereof include a square or rectangle of about 1 to 20 cm and a square column shape of about 0.1 to 5 cm.
  • the cylindrical container 2 includes a cylindrical accommodating portion 3 and openings at the upper and lower portions thereof.
  • the inner lid 4 with nozzle and the inner lid 5 with nozzle are provided with a liquid inlet 9 for introducing liquid into the container 2 and a liquid outlet 10 for discharging the liquid from the container 2, respectively.
  • the liquid inlet 9 and the liquid outlet 10 are constituted by nozzles in order to easily connect a tube for feeding a liquid.
  • the shape and size of the nozzle are not particularly limited.
  • the liquid inlet 9 and the liquid outlet 10 are referred to. However, when the filter device 1 is used, the liquid may be discharged from the liquid inlet 9 or the liquid may be introduced from the liquid outlet 10.
  • the inner lid 4 with nozzle and the inner lid 5 with nozzle are plug-type.
  • the inner lid 4 with nozzle and the inner lid 5 with nozzle are each pushed into the inner cavity of the housing portion 3. By doing so, the inner lid 4 with nozzle and the inner lid 5 with nozzle are fixed in contact with the inner surface of the accommodating portion 3.
  • a seal 8 is provided on a contact surface between each of the inner lid with nozzle 4 and the inner lid with nozzle 5 and the accommodating portion 3.
  • the seal 8 can ensure the airtightness between the inner lid 4 with nozzle and the inner lid 5 with nozzle and the accommodating portion 3 and prevent the entry of microorganisms and the like from the outside.
  • a resin-made resin is provided around the grooves provided on the surfaces of the inner lid 4 with nozzle and the inner lid 5 with nozzle. Packing (O-ring) is mentioned. There is no particular limitation on the arrangement and configuration of the seal 8.
  • the inner lid 4 with nozzle and the inner lid 5 with nozzle may be configured to be directly fixed to the accommodating portion 3 (not shown).
  • the inner lid 4 with nozzle, and the inner lid 4 with nozzle and the inner lid 5 with nozzle and the housing portion 3 are fixed by, for example, providing screws on the surface where the inner lid 4 with nozzle and the inner lid 5 with nozzle and the housing portion 3 come into contact. be able to.
  • the cell separating material 11 is stacked and filled.
  • the locations for capturing cells are dispersed, clogging is suppressed, and separation and collection of cells from the filter are also possible. Can be done efficiently. Note that a portion in which cell separation materials having the same fiber diameter are successively laminated is treated as one layer regardless of the number of laminated cell separation materials.
  • the container 2 may be provided with a cleaning liquid inlet (not shown) for cleaning non-adherent cells remaining in the cell separation material 11 independently on the liquid inlet 9 side. Further, the container 2 has a cell recovery liquid inlet for recovering the cells captured by the cell separation material 11 on the liquid outlet 10 side (the cell recovery liquid is allowed to flow in the direction opposite to the flow of the cell-containing liquid and the cleaning liquid. May be provided independently (not shown).
  • the container 2 can be manufactured using any structural material.
  • the structural material include non-reactive polymers, biocompatible metals, alloys, and glasses.
  • Non-reactive polymers include acrylonitrile polymers such as acrylonitrile butadiene styrene terpolymer (ABS); polytetrafluoroethylene, polychlorotrifluoroethylene, copolymers of tetrafluoroethylene and hexafluoropropylene, and halogenations such as polyvinyl chloride.
  • Polymers Polyamide, polyimide, polysulfone, polycarbonate, polyethylene, polypropylene, polyvinyl chloride acrylic copolymer, polycarbonate acrylonitrile butadiene styrene, polystyrene, polymethylpentene, and the like.
  • metal materials biocompatible metals and alloys
  • container materials include stainless steel, titanium, platinum, tantalum, gold, and alloys thereof, gold-plated alloy iron, platinum-plated alloy iron, cobalt-chromium alloy, And titanium nitride-coated stainless steel.
  • Particularly preferred is a material having sterilization resistance.
  • Specific examples of the material having sterilization resistance include polypropylene, polyvinyl chloride, polyethylene, polyimide, polycardinate, polysulfone, and polymethylpentene.
  • the first filter holder 12 is located at the liquid inlet 9 side of the storage unit 3 from the inner wall surface of the storage unit 3 or the vicinity of the inner wall surface in the center of the cross section (radial cross section) of the internal space of the storage unit 3 or It consists of three or more first protrusions 12a that protrude substantially toward the center.
  • the position in the vicinity of the inner wall surface is not particularly limited as long as a desired effect can be obtained by providing the first protrusion 12a that satisfies the predetermined condition.
  • the position in the vicinity of the inner wall surface is such that the distance from the inner wall surface in the cross section (radial cross section) of the internal space of the housing portion 3 is from the center in the radial cross section of the internal space of the housing portion 3.
  • the position is within 20% of the distance to the wall surface.
  • the first protrusion 12a has a cross-section (diameter direction) of the internal space of the housing portion 3 from a position inside the first annular support body 12b provided in the inner lid 4 with the nozzle with respect to the inner wall surface of the housing portion 3. It protrudes toward the center or substantially the center of the cross section. 2A and 3 illustrate the case where there are three first protrusions 12a.
  • the center of the cross section (radial cross section) of the internal space of the accommodating portion 3 means the position of the center of gravity in the shape of the cross section.
  • the center of the cross section (radial cross section) of the internal space of the accommodating portion 3 is the center of a circle if the shape of the cross section is circular, or the intersection of diagonal lines if the shape is square.
  • the approximate center of the cross section (radial cross section) of the internal space of the accommodating portion 3 is not particularly limited as long as it is a region near the above center. If the range of the substantially center is deliberately defined, it is a circular region centered on the center, and has an area of about 50% by area with respect to the area of the cross section (radial direction cross section) of the internal space of the accommodating portion 3. The range of the circle.
  • FIGS. 4 (a) to 4 (d) Specific examples of the protrusions of the first protrusions 12a are shown in FIGS. 4 (a) to 4 (d).
  • FIG. 4A shows a mode in which a plurality of first protrusions 12 a having the same length project straightly toward the center of the cross section (radial direction cross section) of the internal space of the accommodating portion 3.
  • FIG. 4B a plurality of first protrusions 12a having the same length are provided in the direction of the substantially central area of the cross section (radial direction cross section) of the internal space of the accommodating portion 3, but in a direction shifted from the center. A straight projecting manner is shown.
  • the first protrusion 12a may protrude while being bent.
  • the shape of the first protrusion 12a observed from the direction perpendicular to the radial cross section of the accommodating portion 3 may be, for example, an arc shape, an S shape, or a zigzag shape.
  • the plurality of first protrusions 12a may include a plurality of types of protrusions having different lengths.
  • the plurality of first protrusions 12 a are straight toward the center of the cross section (radial cross section) of the internal space of the housing portion 3.
  • a plurality of first protrusions 12a having the same length protrude straightly toward the center of the cross section (radial cross section) of the internal space of the accommodating portion 3, as shown in FIG. More preferably.
  • the number of the first protrusions 12a is not particularly limited as long as it is three or more.
  • the number of the first protrusions 12a is preferably 5 or more and 12 or less, and more preferably 6 or more and 10 or less, because the desired cell recovery rate can be easily increased.
  • the plurality of first protrusions 12a may be arranged at equal intervals or at non-uniform intervals. From the viewpoint that the liquid containing the cells can easily penetrate into the filter member 11, it is preferable that the plurality of first protrusions 12 a are arranged at equal intervals in the first filter pressing portion 12.
  • the first filter presser 12 is provided so as to contact the filter member 11 while deforming the filter member 11 when the filter member 11 described later is accommodated in the accommodating portion 3.
  • the shape of the cross section perpendicular to the direction in which the first protrusion 12a protrudes of the first protrusion 12a constituting the first filter pressing portion 12 is not particularly limited. Since the first protrusion and the filter member 11 can be easily brought into contact with each other over a wide surface, it is preferable that the first protrusion is typically a rectangle with which one side abuts the filter member 11.
  • the filter member 11 comes into contact with the first filter retainer portion 12 while being supported by a second filter retainer portion 13 described later.
  • the first protrusion 12a constituting the first filter pressing portion 12 pushes the surface of the filter member 11 in contact with the first protrusion 12a while being depressed.
  • the filter member 11 is compressed in the vicinity of the portion of the filter member 11 that contacts the first protrusion 12a.
  • the filter member 11 is loosened in the vicinity of the portion of the filter member 11 that does not contact the first protrusion 12a.
  • This phenomenon of looseness is caused by the elasticity (repulsive force) of the filter member 11, and the degree of looseness partially changes according to the distance from the contact portion on the surface layer. Then, in the region corresponding to the polygon formed by the tips of the plurality of first protrusions 12a in the surface layer of the filter member 11, the density near the surface layer of the filter member 11 becomes sparse. On the other hand, in the surface layer of the filter member 11, the surface layer vicinity of the filter member 11 is dense in the region in contact with the plurality of first protrusions 12 a and the region in the vicinity thereof.
  • the collection rate can be easily adjusted according to the size of the cells to be separated by forming the density on the surface layer of the filter member 11. Specifically, in the portion where the filter member 11 is sparse, the pores in the vicinity of the surface layer in the filter member 11 spread, while the pore size does not change near the center in the thickness direction of the filter member 11. . If it does so, the cell of small size can enter into the center part vicinity of the thickness direction of the filter member 11. FIG. On the other hand, in the vicinity of the surface layer of the filter member 11, it is easy to capture a large cell in a large hole.
  • the polygonal area formed at the tips of the plurality of first protrusions 12a is set to a predetermined ratio described later with respect to the area of the radial section of the internal space of the accommodating portion 3.
  • the recovery rate of cells having a desired size can be increased.
  • the polygonal area formed by connecting the tips of the three or more first protrusions 12a constituting the first filter presser part 12 is A1, and the accommodating part 3 at the position of the first protrusion 12a.
  • A2 the area of the cross section (radial cross section) of the internal space
  • R1 (%) A1 / A2 ⁇ 100
  • the first protrusions 12a are provided so that the area ratio R1 calculated in step 6 is 6 to 50%.
  • the area ratio R1 is more preferably 6 to 40%, still more preferably 6 to 30%, and particularly preferably 7 to 28%.
  • the filter member 11 is pushed in while being depressed by the first protrusion 12 a, so that the surface layer of the filter member 11 is densely formed.
  • the area ratio R1 is 6 to 50%, it is easy to capture large cells in the large pores in the vicinity of the surface layer of the filter member 11, and the filter member for small cells. It is possible to adjust the ease of confinement near the central portion in the thickness direction of 11 to an appropriate level.
  • the density of the surface layer is greatly related to securing a liquid flow path. Specifically, when R1 is less than 6%, the dense region is too wide on the surface layer of the filter member 11, and thus the liquid flow path is limited to some sparse regions. As a result, drift occurs and the filter effect cannot be obtained.
  • the first filter pressing portion 12 may be provided so as to protrude directly from the inner wall of the housing portion 3. Since the filter member 11 can be easily accommodated in the container 2, the first filter pressing portion 12 is shown in FIG. 3 on the front end surface of the inner cover 4 with the nozzle that is inserted into the internal space of the accommodating portion 3 of the container 2. Thus, it is preferable that the first annular support 12b and the first protrusion 12a are provided. As shown in FIG. 3, the first protrusion 12a is supported by the first annular support 12b.
  • a quadrangle X indicated by a dotted line in FIG. 4 (a) indicates the tip of each of the plurality of first protrusions 12a. It corresponds to a polygon formed by tying.
  • the area of the quadrangle X corresponds to the aforementioned A1.
  • the area of the circle corresponding to the outer periphery of the first annular support 12b is the area of the cross section (the cross section in the radial direction) of the internal space of the housing portion 3 at the position of the first protrusion 12a. Equal to A2.
  • the shape of the second filter pressing portion 13 is particularly limited as long as the filter member 11 can be supported in a state where liquid can be passed from one surface of the filter member 11 to the other surface when the filter member 11 is accommodated inside the container 2.
  • Specific examples of the second filter presser 13 that satisfies the above conditions include meshes and eye plates.
  • the two filter retainers 13 are arranged at the center of the cross section (radial cross section) from the inner wall surface of the container 3 or the vicinity of the inner wall surface at the position on the liquid outlet 10 side of the container 3. Or it is preferable to comprise three or more 2nd protrusions 13a which protrude toward the approximate center.
  • a typical example of the vicinity of the inner wall surface of the accommodating portion 3 is as described for the first filter pressing portion 12.
  • the filter apparatus 1 or the container 2 provided with the 2nd filter press part 13 comprised from said 3 or more 2nd protrusion 13a is shown.
  • the protrusion and shape of the second protrusion 13a are the same as the protrusion and shape described for the second protrusion 12a. Is preferred.
  • the polygonal area formed by connecting the tips of the three or more second protrusions 13a constituting the second filter pressing part 13 is A3, and the internal space of the accommodating part 3 at the position of the second protrusion 13a.
  • Area ratio R2 (%) A3 / A4 ⁇ 100
  • the second protrusions 13a are preferably provided so that the area ratio R2 calculated in step 6 is 6 to 50%.
  • the area ratio R2 is more preferably 6 to 40%, even more preferably 6 to 30%, and particularly preferably 7 to 28%.
  • R2 is less than 6% or more than 50%, depending on the value of R1, the same problem as that described for the case where R1 is less than 6% or more than 50% may occur. .
  • the cell separation filter container 1 described above is accommodated in the cell separation filter container 2 described above to constitute the cell separation filter device 1, whereby the target cells can be easily recovered with a high recovery rate.
  • the cell separation filter device 1 is configured by accommodating the filter member 11 in the cell separation filter container 2 described above.
  • FIG. 6 shows a cell in the case where the above-described cell separation filter container 2 is composed of the housing portion 3, the inner lid 4 with nozzle, the inner lid 5 with nozzle, the annular outer lid 6, and the annular outer lid 7.
  • a schematic exploded view of the separation filter device 1 is shown.
  • the filter member 11 will be described.
  • the form of the filter member 11 is not particularly limited, and examples thereof include a porous body having a communication hole structure, an aggregate of fibers, and a woven fabric.
  • a woven or non-woven fabric composed of fibers is preferable, and a non-woven fabric is more preferable.
  • Examples of the material of the filter member 11 include polyolefin (for example, polypropylene, polyethylene, high-density polyethylene, and low-density polyethylene), polyester, vinyl chloride, polyvinyl alcohol, vinylidene chloride, rayon, vinylon, polystyrene, acrylic resin (for example, polymethyl methacrylate, polyhydroxyethyl methacrylate, polyacrylonitrile, polyacrylic acid, polyacrylate, etc.), nylon (eg, aliphatic polyamide, aromatic polyamide (aramid)), polyurethane, polyimide, cupra, kevlar, carbon, Examples thereof include phenol resin, tetron, pulp, hemp, cellulose, kenaf, chitin, chitosan, glass, and cotton.
  • polyolefin for example, polypropylene, polyethylene, high-density polyethylene, and low-density polyethylene
  • polyester vinyl chloride, polyvinyl alcohol, vinylidene chloride, rayon, vinyl
  • the filter member 11 may be made of a single material among these materials, or may be made of a composite material obtained by combining a plurality of materials.
  • the average fiber diameter of the filter member 11 may be appropriately selected according to the type of the target cell, and is not particularly limited.
  • the filter member 11 may be subjected to a hydrophilic treatment.
  • Hydrophilic treatment gives effects such as suppression of non-specific capture in cells other than the necessary necessary cells, improvement in performance of allowing the cell-containing liquid to pass through the filter member 11 without bias, and improvement in recovery efficiency of necessary cells. Can be done.
  • a water-soluble polyhydric alcohol, a compound having a hydroxyl group, a cation group, or an anion group, or a copolymer thereof (for example, a copolymer of monomers including hydroxyethyl methacrylate, dimethylaminoethyl methacrylate, etc.) is adsorbed.
  • a method for adsorbing water-soluble polymers (polyethylene glycol, polyvinyl pyrrolidone, polyvinyl alcohol, etc.); A method of immobilizing a hydrophilic polymer on the hydrophobic membrane (for example, a method of chemically bonding a hydrophilic monomer to the surface); Electron beam irradiation method; A method of crosslinking and insolubilizing a hydrophilic polymer by irradiating a cell separation filter with water in a water-containing state; A method of insolubilizing and fixing the hydrophilic polymer by heat treatment in a dry state; A method of sulfonating the surface of a hydrophobic membrane; A method of forming a membrane from a mixture of a hydrophilic polymer and a hydrophobic polymer dope; A method of imparting a hydrophilic group to the membrane surface by treatment with an aqueous solution of alkali (NaOH, KOH, etc.); A method in which the hydropho
  • hydrophilic polymer examples include polyvinyl pyrrolidone, polyvinyl alcohol, polyethylene glycol, ethylene-vinyl alcohol copolymer, polyhydroxyethyl methacrylate, polysaccharides (cellulose, chitin, chitosan, etc.), and water-soluble polyhydric alcohol. .
  • hydrophobic polymer examples include polystyrene, polyvinyl chloride, polyolefin (polyethylene, polypropylene, etc.), acrylic, urethane, vinylon, nylon, polyester, and the like.
  • the cell adhesion protein or the antibody against the specific antigen expressed on the target stem cell may be immobilized on the filter member.
  • the cell adhesion protein include fibronectin, laminin, vitronectin, and collagen.
  • antibodies include, but are not limited to, CD73, CD90, CD105, CD166, CD140a, and CD271.
  • the immobilization method include arbitrary methods such as cyanogen bromide activation method, acid azide derivative method, condensation reagent method, diazo method, alkylation method, and crosslinking method, which are general protein immobilization methods. Can be used.
  • the thickness of the filter member 11 is not particularly limited.
  • the thickness of the filter member 11 is appropriately determined in consideration of the interval between the first filter pressing portion 12 and the second filter pressing portion 13 described above.
  • the thickness of the filter member 11 is preferably 3 to 20 mm, and more preferably 5 to 10 mm.
  • the opening diameter of the filter member 11 can be defined from the product (air permeability coefficient M) of air permeability (cc / cm 2 ⁇ sec) and thickness (mm).
  • the range is preferably 7.0 or higher and 14.2 or lower, and most preferably 9.2 or higher and 10.0 or lower.
  • the cells to be acquired are not particularly limited.
  • induced pluripotent stem cells iPS cells
  • ES cells embryonic stem cells
  • mesenchymal stem cells adipose-derived mesenchymal cells
  • adipose-derived stromal stem cells pluripotent adult stem cells
  • bone marrow stromal cells hematopoiesis
  • Biological stem cells having pluripotency such as stem cells; T cells, B cells, killer T cells (cytotoxic T cells), NK cells, NKT cells, lymphocyte cells such as regulatory T cells; macrophages, single cells Spheres, dendritic cells, granulocytes, erythrocytes, platelets, etc., somatic cells such as neurons, muscle cells, fibroblasts, hepatocytes and cardiomyocytes; and cells that have undergone treatment such as gene transfer or differentiation Is mentioned.
  • iPS cells induced pluripotent stem cells
  • ES cells embryonic stem cells
  • mesenchymal stem cells
  • leukocytes hematopoietic stem cells and / or mononuclear cells are preferred, and monocytes are more preferred because the effect of increasing the recovery rate is likely to appear remarkably.
  • leukocytes include granulocytes such as neutrophils, eosinophils, and basophils in peripheral blood, and mononuclear cells such as monocytes and lymphocytes.
  • granulocytes such as neutrophils, eosinophils, and basophils in peripheral blood
  • mononuclear cells such as monocytes and lymphocytes.
  • a suitable method for obtaining a cell-containing solution containing monocytes is: After supplying a crude cell-containing solution containing monocytes and small cells having a smaller average size than monocytes from the liquid inlet 9 into the cell separation filter device 1, the cell separation filter device 1. Allowing the filter member 11 to capture monocytes by passing Supplying the collection liquid into the cell separation filter device 1 to release the monocytes captured by the filter member 11 into the collection liquid to produce a cell-containing liquid; Recovering the cell-containing liquid from the cell separation filter device 1; It is a method including.
  • the crude cell-containing solution is not particularly limited as long as it is a suspension containing cells containing at least monocytes and small cells having a smaller average size than monocytes.
  • small cells include granulocytes (neutrophils, eosinophils, basophils), lymphocytes, erythrocytes, and platelets.
  • a biological tissue such as the umbilical cord is subjected to enzyme treatment, crushing treatment, extraction treatment, decomposition treatment, ultrasonic treatment, etc., suspension, blood and bone marrow fluid, body fluid such as cord blood, blood and bone marrow fluid, density gradient
  • the crude cell-containing liquid include cell suspensions prepared by pretreatment such as centrifugation, filtration, enzyme treatment, decomposition treatment, and ultrasonic treatment.
  • the crude cell-containing solution may be a suspension obtained by culturing or proliferating cells such as leukocytes described above in vitro using a culture solution or a stimulating factor.
  • the “crude cell-containing liquid” means a cell-containing liquid that is subjected to a process of acquiring cells by the cell separation filter device 1.
  • a differential pressure may be generated between the liquid inlet 9 and the liquid outlet 10.
  • the method for generating the differential pressure is not particularly limited.
  • a method of pressurizing the crude cell-containing liquid or introducing the crude cell-containing liquid into the cell separation filter device 1 by utilizing a difference in gravity, or reducing the pressure of the liquid outlet 10 side examples thereof include a method of inhaling a crude cell-containing solution into the cell separation filter device 1.
  • the crude cell-containing liquid is supplied into the cell separation filter device 1, the crude cell-containing liquid is brought into contact with the filter member 11, and monocytes are captured by the filter member 11.
  • the degree of the differential pressure is not particularly limited as long as the container 2 and the filter member 11 are not damaged or excessively crushing the cells contained in the crude cell-containing liquid.
  • the filter member 11 may be one that can capture monocytes.
  • the monocytes are released from the filter member 11 into the recovery liquid, and a cell-containing liquid containing monocytes is generated.
  • Leukocytes and the like can be collected by introducing the collected liquid containing the leukocytes and the like into the collection-only bag or the like from the liquid inlet 9.
  • the recovered liquid is introduced into the cell separation filter device 1 from the liquid outlet 10 or the liquid inlet 9.
  • the method for recovering the cell-containing solution containing monocytes from the cell separation filter device 1 is not particularly limited. Typically, the cell-containing liquid containing monocytes is collected from the liquid inlet 9.
  • the recovered liquid is passed through the filter member 11 from the liquid outlet 10 in the cell separation filter device 1. It is preferable to introduce into In this case, it is preferable to perform a so-called backwash operation.
  • the back washing operation is an operation for collecting the cell-containing liquid containing monocytes from the liquid inlet 9 as it is while introducing the recovered liquid from the liquid outlet 10.
  • the recovery solution is not particularly limited as long as it is a solution that is isotonic with cells.
  • Specific examples of the recovered solution include solutions that have been used as injection solvents such as physiological saline and Ringer's solution, buffer solutions, and cell culture media.
  • a medium that can be cultured as it is is preferable.
  • a recovered liquid whose safety is guaranteed, such as an isotonic liquid that has been used for infusions such as physiological saline.
  • the operation described above may be performed at room temperature or may be performed at a refrigeration temperature.
  • the operation performed at the refrigeration temperature includes treatment of the refrigerated crude cell-containing solution.
  • Examples of storage of the crude cell-containing solution include storage by a refrigerator set at a refrigeration temperature, storage by a water bath, storage by dry ice, and the like. Storage by a refrigerator is preferable because of versatility.
  • the refrigeration temperature is preferably 1 ° C or higher and 6 ° C or lower, more preferably 3 ° C or higher and 5 ° C or lower. If the refrigeration temperature is less than 1 ° C, the cells die, and if the storage temperature exceeds 6 ° C, the bacteria may propagate and cause contamination.
  • the liquid before supplying the crude cell-containing liquid into the cell separation filter device 1, the liquid is introduced from the liquid inlet 9 or the liquid outlet 10.
  • a saline solution or a buffer solution may be introduced into the cell separation filter device 1, and the filter member 11 may be brought into contact with the physiological saline solution or the buffer solution.
  • a physiological saline or buffer solution is introduced from the liquid inlet 9 and led out from the liquid outlet 10 to remove contaminant components in the filter. it can. Thereby, unnecessary components can be reduced in the collected cells (monocytes).
  • a dendritic cell-containing solution used for dendritic cell therapy can be suitably produced using the above-described cell separation filter device 1.
  • a cell-containing solution containing monocytes is obtained according to the method for obtaining a cell-containing solution containing monocytes as described above.
  • monocytes contained in the obtained cell-containing solution are differentiated into dendritic cells according to various known methods.
  • protein kits and media for inducing differentiation of dendritic cells are commercially available, and dendritic cells can be induced from monocytes using these.
  • Examples 1 to 6, Comparative Example 1 and Comparative Example 2 As shown in FIG. 5, the cylindrical housing 3 having the height (inner dimension 5 mm or 12 mm) and diameter (inner diameter 60 mm or 45 mm) shown in Table 1 is cut into a round shape having a diameter of 60 mm or 45 mm. 50 sheets or 105 sheets of the polyester non-woven fabric (weight per unit area: 35 g / m 2 , filter member 11) were filled. Next, an inner lid 4 with a nozzle provided with a first filter pressing portion and an inner lid 5 with a nozzle provided with a second filter pressing portion were inserted into the upper and lower openings of the accommodating portion 3.
  • the inner lid 4 with nozzle and the inner lid 5 with nozzle are screwed with the annular outer lid 6 and the annular outer lid 7 from above, as shown in FIGS. 1, 2 (a), and 2 (b).
  • a cell separation filter device 1 having a simple structure was produced.
  • the inner lid 4 with nozzle and the inner lid 5 with nozzle were provided with a first filter pressing portion and a second filter pressing portion having the same shape.
  • the first protrusion 12a and the second protrusion 13a protrude straight from the first annular support body 12b and the second annular support body 13b toward the center of the radial section of the accommodating portion 3, respectively.
  • the plurality of first protrusions 12a and the plurality of second protrusions 13a are provided at equal intervals, respectively.
  • the shapes of the first filter holder 12 and the second filter holder 13 shown in FIGS. 2 (a), 3 and 5 are only examples, and the first filter holder 12 and the second filter holder 12 used in the embodiment are used.
  • the numbers, shapes, and lengths of the first protrusions 12a and the second protrusions 13a included in the filter pressing portion 13 are not limited to the shapes shown in FIG. 2 (a), FIG. 3, and FIG.
  • a tube 14 a is connected to the liquid inlet 9.
  • the tube 14a includes a tube 14b connected to a means 15 for storing a cell suspension and a means 16 for storing a priming physiological saline, a means (collection bag) 17 for storing a recovered liquid that has passed through a filter, and
  • the tube 14c connected to the means 18 for recovering the recovered liquid recovered in the recovery bag or the like was connected via the flow path switching means 19c.
  • the tube 14b was connected with a means 15 for containing a cell suspension and a means 16 for containing a physiological saline used for priming and column washing via a flow path switching means 19b.
  • the tube 14c was connected to the means 17 for storing the recovered liquid that passed through the filter and the means 18 for recovering the recovered liquid collected in the recovery bag or the like via the flow path switching means 19c.
  • a tube 14d is connected to the liquid outlet 10 and a means (waste liquid bag) 20 for storing the cell suspension that has passed through the filter and a means 21 for collecting the recovered liquid are provided via the flow path switching means 19d. Connected.
  • a cell (monocyte) separation operation was performed using the cell separation device 22.
  • operation of each flow path switching means was appropriately performed according to the type of liquid to be passed through the cell separation filter device 1 and the intended means for feeding.
  • the priming operation of the cell separation filter device 1 was performed using 50 mL to 150 mL of physiological saline in the means 16 for storing physiological saline. Thereafter, the physiological saline solution that passed through the cell separation filter device 1 in the waste liquid bag 20 was collected.
  • 100 mL of a leukocyte concentrate pig blood anticoagulated with CPD
  • the leukocyte concentrate used in the above operation was treated with a buffy coat obtained by centrifuging porcine blood anticoagulated with CPD at 3000 rpm for 30 minutes, and the number of leukocytes to be processed was 1.0 ⁇ 10 9 cells to 4.0 ⁇ 10 6. 9 cells were prepared. Thereafter, 100 mL of physiological saline of the means 16 for storing physiological saline was passed through the cell separation filter device 1 using gravity by using the flow path switching means 19b. Next, the passing liquid was collected in the waste liquid bag 20.
  • the recovery rate is simply high.
  • monocytes can only be recovered with low recovery and low purity.

Abstract

内部にフィルター部材を収容することにより、高い回収効率で細胞を回収できる細胞分離フィルター装置を与える細胞分離フィルター容器と、当該細胞分離フィルター容器内にフィルター部材が収容された細胞分離フィルター装置と、当該細胞分離用フィルター装置を用いる工程を含む細胞含有液の取得方法と、当該細胞分離用フィルター装置を用いる工程を含む樹状細胞含有液の製造方法とを提供する。 液体導入口と、液体導出口と、筒状のフィルター部材収容部と、第1フィルター押え部と、第2フィルター押え部と、を有する細胞分離用フィルター容器において、第1フィルター押え部を3本以上の第1突起から構成し、3本以上の第1突起のそれぞれの先端を結んで形成される多角形の面積と、第1突起の位置におけるフィルター部材収容部の内部空間の断面の面積との比率を所定の範囲内とする。

Description

細胞分離用フィルター容器、細胞分離用フィルター装置
 本発明は、細胞分離用フィルター容器と、当該細胞分離用フィルター容器内にフィルター部材が収容された細胞分離用フィルター装置と、当該細胞分離用フィルター装置を用いる工程を含む細胞含有液の取得方法と、当該細胞分離用フィルター装置を用いる工程を含む樹状細胞含有液の製造方法とに関する。
 近年、血液学や科学テクノロジーの急速な進歩に伴い、全血・骨髄・臍帯血・組織抽出物をはじめとする体液から必要な血液分画のみを分離して患者に投与することで治療効果を高め、さらに、治療に必要のない分画は投与しないことで副作用を抑制する、という治療スタイルが広く普及している。
 例えば、血液輸血もその1つである。赤血球製剤は、出血及び赤血球が不足する場合、又は赤血球の機能低下により酸素が欠乏している場合に使用される血液製剤である。赤血球製剤には、異常な免疫反応や移植片対宿主病(GVHD)等の副作用を誘導する白血球は不要である。このため、赤血球製剤では、フィルターで白血球が除去される必要がある。場合によっては白血球に加えて血小板も除去することもある。
 一方、血小板製剤は、血液凝固因子の欠乏による出血ないし出血傾向にある患者に使用される血液製剤である。血小板製剤の製造のためには、遠心分離により、血小板以外の不要な細胞や成分は除去され、必要とされる血小板成分のみが採取されている。
 加えて近年、白血病に向けた造血幹細胞移植が盛んに行われるようになっている。造血幹細胞移植では、治療に必要な、造血幹細胞を含む白血球群を分離し投与する方法がとられている。この造血幹細胞のソースとして、ドナーの負担が少ない、増殖能力が優れている、等の利点から、骨髄や末梢血に加えて臍帯血が注目を浴びている。また近年、月経血中にも幹細胞が豊富に存在することが示唆されている。このため、これまで廃棄されていた月経血も貴重な幹細胞ソースとして利用される可能性がある。
 また固形癌に治療に対しては樹状細胞療法が盛んに行われている。樹状細胞療法では、患者の血液や細胞培養液から治療のもととなる単球を含む細胞群を分離するケースがある。
 骨髄や末梢血等移植治療のソースに関して、不要な細胞を除き白血球を分離・純化して投与することが望まれている。また、使用時まで凍結保存する必要性から、凍結保存による赤血球溶血を防ぐことを目的に白血球は分離・純化されている。
 細胞分離方法として、最近では、赤血球と血小板は捕捉されず白血球のみを捕捉するフィルター材料を用いて白血球を回収する方法も報告されている(特許文献1、特許文献2、及び特許文献3を参照)。従来は遠心分離又は比重液を使用した密度勾配遠心法によって分離操作を行っていたが、フィルターを用いることで操作の簡略化や大型のセルプロセッシング施設が必要ない等の利点がある。
 しかしながら、実際に細胞の分離を行う際には、原因は不明ながら、フィルター材料に充填する細胞分離材(フィルター部材)内を血液がうまく通過しなかったり、十分に高い回収率で目的とする種類の細胞を回収できない場合がある。
特表2001-518792号公報 国際公開第98/32840号 特開平10-313855号公報
 上記のような事情に鑑み、本発明の目的は、内部にフィルター部材を収容することにより、高い回収効率で細胞を回収できる細胞分離フィルター装置を与える細胞分離フィルター容器と、当該細胞分離フィルター容器内にフィルター部材が収容された細胞分離フィルター装置と、当該細胞分離用フィルター装置を用いる工程を含む細胞含有液の取得方法と、当該細胞分離用フィルター装置を用いる工程を含む樹状細胞含有液の製造方法とを提供することを目的とする。
 本発明者は、かかる課題を解決すべく、鋭意検討を進めた。その結果、液体導入口と、液体導出口と、筒状のフィルター部材収容部と、第1フィルター押え部と、第2フィルター押え部と、を有する細胞分離用フィルター容器において、第1フィルター押え部を3本以上の第1突起から構成し、3本以上の第1突起のそれぞれの先端を結んで形成される多角形の面積と、第1突起の位置におけるフィルター部材収容部の内部空間の断面の面積との比率を所定の範囲内とすることによって上記の課題を解決できることを見出し、本発明を完成するに至った。
 すなわち、本発明の要旨は以下の通りである。
 〔1〕液体導入口と、液体導出口と、フィルター部材収容部と、第1フィルター押え部と、第2フィルター押え部と、を有する細胞分離用フィルター容器であって、
 フィルター部材収容部が、両端に開口を有する筒状の部材であって、
 液体導入口が、フィルター部材収容部の一方の開口端側に設けられ、
 液体導出口が、フィルター部材収容部の他方の開口端側に設けられ、
 第1フィルター押え部は、フィルター部材収容部の液体導入口側の位置において、フィルター部材収容部の内壁面又は内壁面の近傍から、フィルター部材収容部の内部空間の断面の中央又は略中央に向かって突出する、3本以上の第1突起からなり、
 第1フィルター押え部は、フィルター部材収容部内にフィルター部材が収容された際に、フィルター部材を変形させつつフィルター部材に当接するように設けられ、
 第2フィルター押え部は、第1フィルター押え部と、第2フィルター押え部とによってフィルター部材が挟み込まれるように、フィルター部材収容部の液体導出口側の位置に設けられ、
 第1フィルター押え部を構成する3本以上の第1突起のそれぞれの先端を結んで形成される多角形の面積をA1とし、第1突起の位置におけるフィルター部材収容部の内部空間の断面の面積をA2とする場合に、下記式:
面積比率R1(%)=A1/A2×100
で算出される面積比率R1が、6~50%である、細胞分離用フィルター容器。
 〔2〕第2フィルター押え部が、フィルター部材収容部の液体導出口側の位置において、フィルター部材収容部の内壁面又は内壁面の近傍より、フィルター部材収容部の内部空間の断面の中央又は略中央に向かって突出する、3本以上の第2突起からなる、〔1〕に記載の細胞分離用フィルター容器。
 〔3〕第2フィルター押え部を構成する3本以上の第2突起の先端を結んで形成される多角形の面積をA3とし、第2突起の位置におけるフィルター部材収容部の内部空間の断面の面積をA4とする場合に、下記式:
面積比率R2(%)=A3/A4×100
で算出される面積比率R2が、6~50%である、〔2〕に記載の細胞分離用フィルター容器。
 〔4〕面積比率R1が、6~40%である、〔1〕~〔3〕のいずれか1つに記載の細胞分離用フィルター容器。
 〔5〕面積比率がR2が、6~40%である、〔3〕に記載の細胞分離用フィルター容器。
 〔6〕第1突起の本数が、5本以上12本以下である、〔1〕~〔5〕のいずれか1つに記載の細胞分離用フィルター容器。
 〔7〕第2突起の本数が、5本以上12本以下である、〔3〕又は〔5〕に記載の細胞分離用フィルター容器。
 〔8〕〔1〕~〔7〕のいずれか1つに記載の細胞分離用フィルター容器と、フィルター部材とを有し、
 フィルター部材が、フィルター部材収容部に収容されている、細胞分離用フィルター装置。
 〔9〕フィルター部材が不織布からなる、〔8〕に記載の細胞分離用フィルター装置。
 〔10〕単球を含む細胞含有液を取得する方法であって、
 単球と、単球よりも平均サイズの小さな細胞である小細胞とを含む粗細胞含有液を、〔8〕又は〔9〕に記載の細胞分離用フィルター装置内に液体導入口から供給した後に前記細胞分離用フィルター装置を通過させることで、単球をフィルター部材に捕捉させることと、
 細胞分離用フィルター装置内に回収液を供給することで、フィルター部材に捕捉された単球を回収液中に遊離させて細胞含有液を生じさせることと、
 細胞含有液を細胞分離用フィルター装置内から回収することと、
を含む方法。
 〔11〕回収液を液体導出口から供給し、細胞含有液を液体導入口から回収する、〔10〕に記載の方法。
 〔12〕樹状細胞療法に用いられる樹状細胞含有液を製造する方法であって、
 単球と、単球よりも平均サイズの小さな細胞である小細胞とを含む粗細胞含有液を、〔8〕又は〔9〕に記載の細胞分離用フィルター装置内に液体導入口から供給した後に前記細胞分離用フィルター装置を通過させることで、単球を前記フィルター部材に捕捉させることと、
 細胞分離用フィルター装置内に回収液を供給することで、フィルター部材に捕捉された単球を前記回収液中に遊離させて、細胞含有液を生じさせることと、
 細胞含有液を細胞分離用フィルター装置内から回収することと、
 細胞含有液に含まれる単球を樹状細胞に分化させることと、
を含む方法。
 〔13〕回収液を液体導出口から供給し、細胞含有液を液体導入口から回収する、〔12〕に記載の方法。
 本発明によれば、内部にフィルター部材を収容することにより、高い回収効率で細胞を回収できる細胞分離フィルター装置を与える細胞分離フィルター容器と、当該細胞分離フィルター容器内にフィルター部材が収容された細胞分離フィルター装置と、当該細胞分離用フィルター装置を用いる工程を含む細胞含有液の取得方法と、当該細胞分離用フィルター装置を用いる工程を含む樹状細胞含有液の製造方法とを提供することができる。
細胞分離用フィルター容器の1例の概略を示す図である。 フィルター部材を収容した状態の細胞分離用フィルター装置の1例についての断面を示す図である。 ノズル付内蓋の1例の概略を示す図である。 第1フィルター押え部における、第1突起の突出の態様のバリエーションを模式的に示す図である。 実施例及び比較例で用いた細胞分離用フィルター装置が分解された状態の概略を示す図である。 実施例及び比較例で用いた細胞分離用デバイスの回路の概略を示す図である。
 以下、本発明の実施形態について、図面を参照しつつ説明する。
≪細胞分離用フィルター容器≫
 細胞分離用フィルター容器2は、液体導入口9と、液体導出口10と、フィルター部材収容部3と、第1フィルター押え部12と、第2フィルター押え部13と、を有する。
 以下、細胞分離用フィルター容器について、単に「容器」とも記す。
 かかる細胞分離用フィルター容器2内に、不織布等からなるフィルター部材11を収容することにより、細胞分離用フィルター装置1が構成される。
 以下、細胞分離用フィルター装置について単に「フィルター装置」とも記す。
 上記の細胞分離用フィルター容器2の構成について以下説明する。
<フィルター部材収容部>
 フィルター部材収容部3は、両端に開口を有する筒状の部材である。フィルター部材収容部3は、後述するフィルター部材11を収容する。
 以下、フィルター部材収容部3について、収容部3とも記す。
 収容部3の形状は、両端に開口を有する筒状である。筒状について、径方向の断面の形状は円形であっても、多角形のような円形以外の形状であってもよい。
 収容部3の形状の好ましい具体例としては、例えば、容量約0.1~400mL程度、内径0.1~15cm程度、厚さ0.1~5cm程度の円筒状や、一片の長さ0.1~20cm程度の正方形又は長方形で、厚さが0.1~5cm程度の四角柱状等が挙げられる。
 例えば、図1、図2(a)、及び図2(b)に示される、容器2の好ましい態様では、円筒形状の容器2が、円筒状の収容部3と、その上部及び下部にある開口部に蓋をすることができるノズル付内蓋4、及びノズル付内蓋5と、収容部3とノズル付内蓋4、及びノズル付内蓋5とを固定するための環状外蓋6、及び環状外蓋7とで構成される。
 ノズル付内蓋4、及びノズル付内蓋5には、容器2内部に液体を導入するための液体導入口9と、容器2から液体を排出するための液体導出口10とがそれぞれ設けられている。
 液体導入口9及び液体導出口10は液体を送液するためのチューブを接続しやすくするために、ノズルで構成されている。前記ノズルの形状や大きさについては特に限定はない。
 なお、便宜上、液体導入口9、液体導出口10と称するが、フィルター装置1の使用時には、液体導入口9から液体が排出されてもよく、液体導出口10から液体が導入されてもよい。
 ノズル付内蓋4、及びノズル付内蓋5は栓型になっている。ノズル付内蓋4、及びノズル付内蓋5は、それぞれ、収容部3の内腔に押し込まれる。そうすることで、ノズル付内蓋4、及びノズル付内蓋5が、収容部3の内面と接して固定される。
 ノズル付内蓋4、及びノズル付内蓋5のそれぞれと、収容部3との接触面にはシール8が設けられるのが好ましい。このシール8により、ノズル付内蓋4、及びノズル付内蓋5と収容部3との気密性を確実にして外部からの微生物等の侵入を防ぐことができる。シール8の好ましい一例としては、例えば、図2(b)に示されるように、ノズル付内蓋4、及びノズル付内蓋5それぞれの表面に設けられた溝の周囲に設けられた樹脂製のパッキン(Oリング)が挙げられる。シール8の配置や構成については特に限定はない。
 ノズル付内蓋4、及びノズル付内蓋5は、それぞれ、収容部3に直接固定できるようにされてもよい(図示せず)。ノズル付内蓋4、及びノズル付内蓋5と収容部3とが接触する面に、例えば、ネジを設けることでノズル付内蓋4、及びノズル付内蓋5と収容部3とを固定することができる。この場合、図2(b)に示される環状外蓋6、及び環状外蓋7は不要となる。
 容器2内では、前記細胞分離材11が積層されて充填される。例えば、繊維径の異なる細胞分離材11を2層以上積層したフィルターとすることにより、細胞を捕捉する箇所が分散され、目詰まりの発生が抑制されるとともに、フィルターからの細胞の分離・回収も効率的に行うことができる。なお、繊維径が同じ細胞分離材が連続して積層された部分は、積層された細胞分離材の枚数によらず1層として扱う。
 また、容器2には、液体導入口9側に独立して細胞分離材11内に留まっている非付着細胞を洗浄するための洗浄液導入口(図示せず)が設けられてもよい。また、容器2は、液体導出口10側に、細胞分離材11に捕捉された細胞を回収するための細胞回収液導入口(細胞含有液及び洗浄液の流れとは逆方向から細胞回収液を流すため)を、独立して、備えていてもよい(図示せず)。
 容器2は、任意の構造材料を使用して作製することができる。構造材料としては、具体的には、非反応性ポリマー、生体親和性金属、合金、及びガラス等が挙げられる。非反応性ポリマーとしては、アクリロニトリルブタジエンスチレンターポリマー(ABS)等のアクリルニトリルポリマー;ポリテトラフルオロエチレン、ポリクロロトリフルオロエチレン、テトラフルオロエチレンとヘキサフルオロプロピレンのコポリマー、及びポリ塩化ビニル等のハロゲン化ポリマー;ポリアミド、ポリイミド、ポリスルホン、ポリカードネート、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリビニルクロリドアクリルコポリマー、ポリカーボネートアクリロニトリルブタジエンスチレン、ポリスチレン、及びポリメチルペンテン等が上げられる。容器の材料として有用な金属材料(生体親和性金属、合金)としては、ステンレス鋼や、チタン、白金、タンタル、金、及びそれらの合金や、金メッキ合金鉄、白金メッキ合金鉄、コバルトクロミウム合金、及び窒化チタン被覆ステンレス鋼等が挙げられる。特に好ましくは、耐滅菌製を有する素材である。耐滅菌性を有する素材としては、具体的には、ポリプロピレン、ポリ塩化ビニル、ポリエチレン、ポリイミド、ポリカードネート、ポリスルホン、ポリメチルペンテン等が挙げられる。
<第1フィルター押え部>
 第1フィルター押え部12は、収容部3の液体導入口9側の位置において、収容部3の内壁面又は内壁面の近傍から、収容部3の内部空間の断面(径方向断面)の中央又は略中央に向かって突出する、3本以上の第1突起12aからなる。
 ここで、内壁面の近傍の位置は、所定の条件を満たす第1突起12aを設けることによる、所望する効果が得られる限り特に限定されない。内壁面の近傍の位置は、典型的には、収容部3の内部空間の断面(径方向断面)において、内壁面からの距離が、収容部3の内部空間についての径方向断面における中央から内壁面までの距離の20%以内である位置である。
 収容部3の内壁面の近傍から第1突起12aが突出する場合の具体例としては、例えば、図3に示されるノズル付内蓋4を収容部3にはめ込んで、第1突起12aからなる第1フィルター押え部12を設ける場合が挙げられる。この場合、収容部3の内壁面よりも、ノズル付内蓋4が備える第1環状支持体12bの厚さ分内側の位置から、第1突起12aが収容部3の内部空間の断面(径方向断面)の中央又は略中央に向かって突出する。
 なお、図2(a)、及び図3には、第1突起12aが3本である場合について図示される。
 収容部3の内部空間の断面(径方向断面)の中央とは、断面の形状における重心の位置を意味する。収容部3の内部空間の断面(径方向断面)の中央は、断面の形状が円形であれば、円の中心であるし、正方形であれば、対角線の交点である。
 収容部3の内部空間の断面(径方向断面)の略中央は、上記の中央の近傍の領域であれば特に限定されない。略中央の範囲をあえて定義すれば、上記の中央を中心とする円形の領域であって、収容部3の内部空間の断面(径方向断面)の面積に対して50面積%程度の面積を有する円の範囲である。
 第1突起12aの突出の態様の具体例について、図4(a)~図4(d)に示す。
 図4(a)には、収容部3の内部空間の断面(径方向断面)の中央に向かって、同じ長さの複数の第1突起12aが真っ直ぐに突出する態様が示される。
 図4(b)には、収容部3の内部空間の断面(径方向断面)の略中央の領域に向かうが、中央からずれた方向に向かって、同じ長さの複数の第1突起12aが真っ直ぐに突出する態様が示される。
 また、図4(c)に示されるように、第1突起12aは屈曲しつつ突出してもよい。この場合、第1突起12aを、収容部3の径方向断面に対して垂直な方向から観察した形状は、例えば、円弧状でもよく、S字状でもよく、ジグザグ状でもよい。
 さらに、図4(d)に示されるように、複数の第1突起12aは、長さの異なる複数種の突起を含んでいてもよい。
 これらの中では、図4(a)、及び図4(b)に示されるように、収容部3の内部空間の断面(径方向断面)の中央に向かって、複数の第1突起12aが真っ直ぐ突出するのが好ましく、図4(a)に示されるように、収容部3の内部空間の断面(径方向断面)の中央に向かって、同じ長さの複数の第1突起12aが真っ直ぐに突出するのがより好ましい。
 第1突起12aの本数は、3本以上であれば特に限定されない。所望する細胞の回収率をより高めやすいことからは、第1突起12aの本数は5本以上12本以下であるのが好ましく、6本以上10本以下であるのがより好ましい。
 第1フィルター押え部12において、複数の第1突起12aは、等間隔で配置されてもよいし、不均一な間隔で配置されてもよい。フィルター部材11にむらなく細胞を含む液体を浸透させやすい点からは、第1フィルター押え部12において、複数の第1突起12aが、等間隔で配置されるのが好ましい。
 第1フィルター押え部12は、収容部3内に後述するフィルター部材11が収容された際に、フィルター部材11を変形させつつフィルター部材11に当接するように設けられる。
 第1フィルター押え部12を構成する第1突起12aの、第1突起12aが突出する方向に対して垂直な断面の形状は、特に限定されない。第1突起と、フィルター部材11とを広い面で接触させやすいことから、典型的には、一辺がフィルター部材11と当接する矩形であるのが好ましい。
 収容部3内にフィルター部材11が収容される場合、フィルター部材11は、後述する第2フィルター押え部13により支持された状態で、第1フィルター押え部12と当接する。その結果、第1フィルター押え部12を構成する第1突起12aは、フィルター部材11の第1突起12aと当接する表面を、陥没させつつ押し込む。
 その結果、フィルター部材11の第1突起12aと当接する部分の付近では、フィルター部材11が圧縮される。その一方で、フィルター部材11の第1突起12aと当接しない部分の付近ではフィルター部材11がゆるむ。このゆるみの現象は、フィルター部材11の弾性(反発力)により生じるものであり、表層における当接部からの距離に応じてゆるみの度合いが部分的に変化する。
 そうすると、フィルター部材11の表層における、複数の第1突起12aの先端で形成される多角形に相当する領域では、フィルター部材11の表層付近の密度が疎になる。他方、フィルター部材11の表層における、複数の第1突起12aに当接する領域やその近傍の領域ではフィルター部材11の表層付近が密になる。
 このように、フィルター部材11の表層に疎密が形成されることにより、分離対象の細胞のサイズに応じた、回収率の調整を行いやすくなると考えられる。
 具体的には、フィルター部材11が疎である部分では、フィルター部材11内の表層付近での空孔が広がる一方で、フィルター部材11の厚さ方向の中心部付近では空孔のサイズが変化しない。そうすると、サイズの小さな細胞を、フィルター部材11の厚さ方向の中心部付近まで入り込ませることができる。一方で、フィルター部材11の表層付近では、サイズの大きな空孔にサイズの大きな細胞を捕捉しやすい。
 その結果、細胞の捕捉後に、細胞分離用フィルター装置1内に回収液を導入した際に、フィルター部材11の表層付近の大きな細胞は回収液内に容易に遊離する一方で、フィルター部材11の厚さ方向中心部付近の小さな細胞は回収液内に遊離しにくい。
 上記の理由から、複数の第1突起12aの先端で形成される多角形の面積を、収容部3の内部空間の径方向の断面の面積に対して、後述する所定の比率であるようにすることにより、所望するサイズの細胞の回収率を高められると推測される。
 具体的には、第1フィルター押え部12を構成する3本以上の第1突起12aのそれぞれの先端を結んで形成される多角形の面積をA1とし、第1突起12aの位置における収容部3の内部空間の断面(径方向の断面)の面積をA2とする場合に、下記式:
面積比率R1(%)=A1/A2×100
で算出される面積比率R1が、6~50%であるように、第1突起12aが設けられる。
 上記面積比率R1としては、6~40%がより好ましく、6~30%がさらにより好ましく、7~28%が特に好ましい。
 前述の通り、第1突起12aによりフィルター部材11が陥没させつつ押し込まれることにより、フィルター部材11の表層に疎密が形成される。そして、上記の面積比率R1が6~50%であることにより、フィルター部材11の表層付近での、サイズの大きな空孔へのサイズの大きな細胞の捕捉しやすさと、サイズの小さな細胞のフィルター部材11の厚さ方向の中心部付近への閉じ込めやすさとを、適切な程度に調整することができる。また、表層の疎密は液体の流路確保にも大きく関わっている。
 具体的には、R1が6%未満であると、フィルター部材11の表層において、密である領域が広すぎるため、一部の疎な領域に液体の流路が限定される。その結果、偏流を起こしフィルター効果が得られない。他方で、R1が50%超であると、フィルター部材11の表層において、疎密のコントラストが小さく、また疎である領域が広すぎる。このため、フィルター部材11内の表層付近で広がった空孔をサイズの大きな細胞が通過する。その結果、サイズの大小に関わらず細胞が厚さ方向のより奥部に閉じ込められ、細胞回収できない、もしくは分離対象の細胞のサイズに応じた回収率の調整が困難となる。
 第1フィルター押え部12は、収容部3の内壁から直接突出するように設けられてもよい。容器2へのフィルター部材11の収容が容易であることから、第1フィルター押え部12は、ノズル付内蓋4における容器2の収容部3の内部空間に差し込む先端面に、図3に示されるように、第1環状支持体12bと、第1突起12aとから構成されるように設けられるのが好ましい。
 第1突起12aは、図3に示される通り、第1環状支持体12bにより支持される。
 上記のように、第1フィルター押え部12がノズル付内蓋4に設けられる場合、例えば、図4(a)中に点線で示される四角形Xが、複数の第1突起12aのそれぞれの先端を結んで形成される多角形に相当する。この四角形Xの面積が、前述のA1に相当する。
 他方、図4(a)中、第1環状支持体12bの外周に相当する円の面積は、第1突起12aの位置における収容部3の内部空間の断面(径方向の断面)の面積であるA2に等しい。
<第2フィルター押え部>
 第2フィルター押え部13の形状は、容器2の内部にフィルター部材11を収容した際に、フィルター部材11の片面から他方の面に向けて通液可能な状態でフィルター部材11を支持できれば特に限定されない。
 上記の条件を満たす第2フィルター押え部13の具体例としては、メッシュや目皿等が挙げられる。
 フィルター装置1に、細胞を含有する液体を通液させる際に、液体導入口9から液体導出口10へ、又は液体導出口10から液体導入口9へ液体を良好に流通させやすいことから、第2フィルター押え部13は、第1フィルター押え部12と同様に、収容部3の液体導出口10側の位置において、収容部3の内壁面又は内壁面の近傍より断面(径方向断面)の中央又は略中央に向かって突出する、3本以上の第2突起13aから構成されるのが好ましい。
 収容部3の内壁面の近傍についての典型的な例は、第1フィルター押え部12について説明した通りである。
 図5では、上記の3本以上の第2突起13aから構成される第2フィルター押え部13を備えるフィルター装置1又は容器2が示される。
 第2フィルター押え部が、3本以上の第2突起13aから構成される場合、第2突起13aの突出のしかたや形状は、第2突起12aについて説明した突出のしかたや形状と同様であるのが好ましい。
 また、第2フィルター押え部13を構成する3本以上の第2突起13aのそれぞれの先端を結んで形成される多角形の面積をA3とし、第2突起13aの位置における収容部3の内部空間の断面(径方向の断面)の面積をA4とする場合に、下記式:
面積比率R2(%)=A3/A4×100
で算出される面積比率R2が、6~50%であるように、第2突起13aが設けられるのが好ましい。
 上記面積比率R2としては、6~40%がより好ましく、6~30%がさらにより好ましく、7~28%が特に好ましい。
 R2が6%未満、又は50%超である場合には、前述のR1の値によっては、R1が6%未満、又は50%超である場合について説明した不具合と同様の不具合が生じる場合がある。
 以上説明した、細胞分離用フィルター容器2に、後述するフィルター部材11を収容して細胞分離用フィルター装置1を構成することにより、高い回収率で目的とする細胞を回収しやすい。
≪細胞分離用フィルター装置≫
 細胞分離用フィルター装置1は、上記の通り、前述の細胞分離用フィルター容器2に、フィルター部材11を収容して構成されている。
 図6には、前述の細胞分離用フィルター容器2が、収容部3、ノズル付内蓋4、ノズル付内蓋5と、環状外蓋6、及び環状外蓋7から構成される場合の、細胞分離用フィルター装置1の概略分解図が示される。
 以下、フィルター部材11について説明する。
<フィルター部材>
 フィルター部材11の形態は、特に限定されず、連通孔構造の多孔質体、繊維の集合体、織物等が挙げられる。好ましくは繊維で構成される織布又は不織布であり、より好ましくは不織布である。
 フィルター部材11の材質としては、例えば、ポリオレフィン(例えば、ポリプロピレン、ポリエチレン、高密度ポリエチレン、及び低密度ポリエチレン等)、ポリエステル、塩化ビニル、ポリビニルアルコール、塩化ビニリデン、レーヨン、ビニロン、ポリスチレン、アクリル系樹脂(例えば、ポリメチルメタクリレート、ポリヒドロキシエチルメタクリレート、ポリアクロニトリル、ポリアクリル酸、ポリアクリレート等)、ナイロン(例えば、脂肪族ポリアミド、芳香族ポリアミド(アラミド))、ポリウレタン、ポリイミド、キュプラ、ケブラー、カーボン、フェノール樹脂、テトロン、パルプ、麻、セルロース、ケナフ、キチン、キトサン、ガラス、及び綿等を挙げることができる。中でも、ポリエステル、ポリプロピレン、アクリル、レーヨン、ナイロン、ポリブチレンテレフタラート、及びポリエチレンテレフタラート等の高分子を好適に用いることができる。フィルター部材11は、これらの材質のうち、単一の材質からなってもよいし、複数の材質を組み合わせた複合材からなってもよい。
 フィルター部材11の平均繊維径としては、目的の細胞の種類に合わせて適宜選択すればよく特に限定はない。
 フィルター部材11の性能をより向上させるために、フィルター部材11に親水化処理を行ってもよい。
 親水化処理により、目的とする必要細胞以外の細胞における非特異的な捕捉の抑制、細胞含有液を偏り無くフィルター部材11中に通過させる性能の向上、必要細胞の回収効率向上等の効果が付与され得る。
 親水化処理方法としては、
水溶性多価アルコール、水酸基、カチオン基、又はアニオン基を有する化合物、あるいはその共重合体(例えば、ヒドロキシエチルメタクリレート、及びジメチルアミノエチルメタクリレート等を含む単量体の共重合体等)を吸着させる方法;
水溶性高分子(ポリエチレングリコール、ポリビニルピロリドン、ポリビニルアルコール等)を吸着させる方法;
疎水性膜に親水性高分子を固定する方法(例えば、表面に親水性モノマーを化学的に結合させる方法等);
電子線照射する方法;
含水状態で細胞分離フィルターに放射線を照射することで親水性高分子を架橋不溶化する方法;
乾燥状態で熱処理することにより親水性高分子を不溶化し固定する方法;
疎水性膜の表面をスルホン化する方法;
親水性高分子と疎水性ポリマードープとの混合物から膜をつくる方法;
アルカリ(NaOH、KOH等)の水溶液による処理により膜表面に親水基を付与する方法;
疎水性多孔質膜をアルコールに浸漬した後、水溶性ポリマー水溶液で処理乾燥後、熱処理や放射線等で不溶化処理する方法;又は、
界面活性作用を有する物質を吸着させる方法等が挙げられる。
 親水性高分子としては、ポリビニルピロリドン、ポリビニルアルコール、ポリエチレングリコール、エチレン-ビニルアルコール共重合体、ポリヒドロキシエチルメタクリレート、多糖類(セルロース、キチン、キトサン等)、及び水溶性多価アルコール等が挙げられる。
 疎水性ポリマーとしては、ポリスチレン、ポリ塩化ビニル、ポリオレフィン(ポリエチレン、ポリプロピレン等)、アクリル、ウレタン、ビニロン、ナイロン、及びポリエステル等が挙げられる。
 回収目的とする細胞のフィルター部材への付着性を向上させるために、細胞付着性のタンパク質や、目的とする幹細胞上の発現されている特異的抗原に対する抗体を、フィルター部材上に固定化してもよい。細胞付着性のタンパク質としては、フィブロネクチン、ラミニン、ビトロネクチン、及びコラーゲン等が挙げられる。抗体としては、CD73、CD90、CD105、CD166、CD140a、及びCD271等が挙げられるが、これらに限定されない。固定化方法としては、例えば、一般的なタンパク質の固定化方法である、臭化シアン活性化法、酸アジド誘導体法、縮合試薬法、ジアゾ法、アルキル化法、及び架橋法等の方法を任意に用いることができる。
 フィルター部材11の厚さは特に限定されない。フィルター部材11の厚さは、前述の第1フィルター押え部12と第2フィルター押え部13との間隔を考慮して適宜決定される。典型的には、フィルター部材11の厚さは、3~20mmが好ましく、5~10mmがより好ましい。
 フィルター部材11の開口径としては、通気度(cc/cm・sec)と厚み(mm)の積(通気度係数M)から定義することができる。範囲としては7.0以上14.2以下が好ましく、9.2以上10.0以下が最も好ましい。
≪所望する細胞を含む細胞含有液を取得する方法≫
 以上説明した細胞分離用フィルター装置を用いる処理により、所望する細胞を含む細胞含有液を取得することができる。
<細胞>
 取得対象の細胞は、特に限定されない。例えば、人工多能性幹細胞(iPS細胞)、胚性幹細胞(ES細胞)、間葉系幹細胞、脂肪由来間葉系細胞、脂肪由来間質幹細胞、多能性成体幹細胞、骨髄ストローマ細胞、及び造血幹細胞等の多分化能を有する生体幹細胞;T細胞、B細胞、キラーT細胞(細胞障害性T細胞)、NK細胞、NKT細胞、及び制御性T細胞等のリンパ球系の細胞;マクロファージ、単球、樹状細胞、顆粒球、赤血球、血小板等、神経細胞、筋細胞、線維芽細胞、肝細胞、及び心筋細胞等の体細胞;、及び、遺伝子の導入や分化等の処理を行った細胞が挙げられる。
 このような細胞の中では、回収率を高める効果が顕著に表れやすいことから白血球、造血幹細胞及び/又は単核球が好ましく、単球がより好ましい。
 なお、白血球としては、末梢血中の好中球、好酸球、及び好塩基球等の顆粒球、並びに単球、及びリンパ球等の単核球が挙げられる。
 以下、単球を含む細胞含有液を取得する方法を代表例として説明する。
<単球を含む細胞含有液を取得する方法>
 単球を含む細胞含有液を取得する好適な方法は、
 単球と、単球よりも平均サイズの小さな細胞である小細胞とを含む粗細胞含有液を、前述の細胞分離用フィルター装置1内に液体導入口9から供給した後に細胞分離用フィルター装置1を通過させることで、単球をフィルター部材11に捕捉させることと、
 細胞分離用フィルター装置1内に回収液を供給することで、フィルター部材11に捕捉された単球を回収液中に遊離させて記細胞含有液を生じさせることと、
 細胞含有液を細胞分離用フィルター装置1内から回収することと、
を含む方法である。
 粗細胞含有液としては、少なくとも単球と、単球よりも平均サイズの小さな細胞である小細胞とを含む細胞を含む懸濁液であれば特に限定されず用いることができる。かかる小細胞の好適な具体例としては、顆粒球(好中球、好酸球、好塩基球)、リンパ球、赤血球、及び血小板等が挙げられる。例えば、臍帯等の生体組織を酵素処理や破砕処理や抽出処理や分解処理や超音波処理等をした後の懸濁液、血液や骨髄液、臍帯血等の体液、血液や骨髄液を密度勾配遠心処理やろ過処理や酵素処理や分解処理や超音波処理等の前処理をして調製された細胞懸濁液等が粗細胞含有液として例示される。
 また、粗細胞含有液は、上記した白血球等の細胞を生体外で培養液や刺激因子等を用いて培養や増殖等をした後の懸濁液であってもよい。
 ここで、「粗細胞含有液」とは、細胞分離用フィルター装置1による細胞を取得する処理に供される細胞含有液を意味する。
 細胞分離用フィルター装置1の液体導入口9から粗細胞含有液を導入する際には、液体導入口9と液体導出口10との間に差圧を生じさせればよい。差圧を生じさせる方法は、特に限定されない。かかる方法としては、粗細胞含有液を加圧させる、又は重力差を利用することで細胞分離用フィルター装置1内へ粗細胞含有液の導入させる方法や、液体導出口10側を減圧して、細胞分離用フィルター装置1内へ粗細胞含有液を吸入する方法等が挙げられる。
 このようにして、細胞分離用フィルター装置1内に粗細胞含有液を供給し、粗細胞含有液をフィルター部材11と接触させて、単球をフィルター部材11に捕捉させる。
 差圧の程度としては、容器2や、フィルター部材11に破損が生じたり、粗細胞含有液に含まれる細胞の過度の破砕が生じたりしない程度であれば、特に限定されない。
 フィルター部材11は、単球を捕捉できるものを使用すればよい。
 次いで、単球を捕捉したフィルター部材11に回収液を供給することで、フィルター部材11から単球を回収液中に遊離させ、単球を含む細胞含有液を生成させる。この白血球等を含む回収液を液体導入口9から回収専用のバッグ等に導入することで白血球等を回収することができる。
 回収液は、液体導出口10又は液体導入口9から細胞分離用フィルター装置1内に導入される。また、単球を含む細胞含有液を、細胞分離用フィルター装置1内から回収する方法は特に限定されない。典型的には、液体導入口9から単球を含む細胞含有液が回収される。
 回収液の流れによって、フィルター部材11に捕捉された単球を回収液中に遊離させやすいことから、回収液を、液体導出口10からフィルター部材11を通過するように細胞分離用フィルター装置1内に導入するのが好ましい。この場合、所謂逆洗操作を行うのが好ましい。逆洗操作は、液体導出口10から回収液を導入しつつ、単球を含む細胞含有液をそのまま液体導入口9から回収する操作である。
 回収液は、細胞と等張である溶液であれば特に限定はない。回収液の具体例としては、生理食塩液やリンゲル液等の注射溶剤として使用実績のある液や、緩衝液、及び細胞培養用の培地等が挙げられる。特に、細胞含有液の使用が培養工程を経る際は、そのまま培養が行える培地が好ましい。細胞含有液が培養工程を経ずそのまま治療に用いられる際は、生理食塩液等の点滴等に使用実績のある等張液等、安全性が保証されている回収液を使用することが好ましい。
 以上説明した操作は、室温下で行われてもよいし、冷蔵温度下で行われてもよい。冷蔵温度下で行われる操作としては、冷蔵された粗細胞含有液の処理が挙げられる。粗細胞含有液の保管としては、冷蔵温度に設定した冷蔵庫による保管、ウォーターバスによる保管、及びドライアイスによる保管等が挙げられる。汎用性から冷蔵庫による保管が好ましい。冷蔵温度としては、1℃以上6℃以下が好ましく、より好ましくは3℃以上5℃以下が好ましい。冷蔵温度が1℃未満では細胞は死滅し、6℃を超えて保存すると細菌が繁殖しコンタミネーションを起こす可能性がある。
 また、フィルター部材11の状態を整えて、単球を捕捉しやすくする観点から、細胞分離用フィルター装置1内に粗細胞含有液を供給する前に、液体導入口9又は液体導出口10から生理食塩水又は緩衝液を細胞分離用フィルター装置1内に導入し、フィルター部材11と生理食塩水又は緩衝液とを接触させてもよい。
 回収液を用いて単球を含む細胞含有液を生じさせる前に、生理食塩水又は緩衝液を液体導入口9から導入して液体導出口10から導出させることにより、フィルター内の夾雑成分を除去できる。これにより回収される細胞(単球)内へ不要成分を低減することができる。
≪樹状細胞療法に用いられる樹状細胞含有液を製造する方法≫
 前述の細胞分離用フィルター装置1を用いて、樹状細胞療法に用いられる樹状細胞含有液を好適に製造することができる。
 かかる方法では、まず、前述の単球を含む細胞含有液の取得方法に従って、単球を含む細胞含有液を取得する。
 次いで、得られた細胞含有液に含まれる単球を、周知の種々の方法に従って、樹状細胞に分化させる。典型的には、樹状細胞の分化誘導用のタンパク質キットや、培地が市販されており、これらを用いて、単球から樹状細胞を誘導することができる。
 以下、実施例において本発明に関して詳細に述べるが、本発明は以下の実施例のみに限定されるものではない。
(実施例1~6、比較例1、及び比較例2)
 図5に示されるように、表1に示す高さ(内寸5mm、又は12mm)と直径(内径60mm、又は45mm)の円筒状の収容部3に、直径60mm、又は45mmの丸型にカットされたポリエステル不織布(目付35g/m、フィルター部材11)を50枚、もしくは105枚充填した。次いで、収容部3の上下の開口部に、第1フィルター押え部を備えるノズル付内蓋4と、第2フィルター押え部を備えるノズル付内蓋5とを差し込んだ。ノズル付内蓋4、及びノズル付内蓋5を、これらの上から環状外蓋6、及び環状外蓋7でネジ止めし、図1、2(a)、及び2(b)に示されるような構造を有する細胞分離フィルター装置1を作製した。
 なお、ノズル付内蓋4、及びノズル付内蓋5には、互いに同一の形状の第1フィルター押え部と、第2フィルター押え部とが設けられた。そして、第1突起12aと、第2突起13aとは、それぞれ、第1環状支持体12bと、第2環状支持体13bとから、収容部3の径方向断面の中央に向かって真っすぐ突出するように設けられた。
 また、第1フィルター押え部と、第2フィルター押え部とにおいて、複数の第1突起12aと、複数の第2突起13aとを、それぞれ、等間隔であるように設けた。
 図2(a)、図3、及び図5に示される第1フィルター押え部12及び第2フィルター押え部13の形状は一例であって、実施例で用いた第1フィルター押え部12及び第2フィルター押え部13がそれぞれ有する、第1突起12a及び第2突起13aの本数、形状、及び長さは、図2(a)、図3、及び図5に示される形状に限定されない。
 次に、細胞分離用フィルター装置1の液体導入口9と液体導出口10とに、図6に示される回路を接続して細胞分離用デバイス22を作製した。
 図6に示される回路において、液体導入口9にはチューブ14aが接続された。このチューブ14aには、細胞懸濁液を収容する手段15及びプライミング用生理食塩水を収容する手段16に接続されたチューブ14bと、フィルターを通過した回収液を収容する手段(回収バッグ)17及び回収バッグ等に回収された回収液を回収する手段18に接続されたチューブ14cとを、流路切り替え手段19cを介して接続された。
 チューブ14bには流路切り替え手段19bを介して、細胞懸濁液を収容する手段15とプライミングやカラムの洗浄に用いる生理食塩水を収容する手段16とが接続された。
 チューブ14cには流路切り替え手段19cを介して、フィルターを通過した回収液を収容する手段17と回収バッグ等に回収された回収液を回収する手段18とが接続された。
 また、液体導出口10にはチューブ14dが接続され、且つ流路切り替え手段19dを介して、フィルターを通過した細胞懸濁液を収容する手段(廃液バッグ)20及び回収液を回収する手段21が接続された。
 細胞分離用デバイス22を用いて細胞(単球)分離操作を実施した。なお、各流路切り替え手段の操作は、細胞分離用フィルター装置1に通液する液体の種類、送液する目的の手段に応じて、適宜行われた。
 まず、生理食塩水を収容する手段16の生理食塩水50mL~150mLを用いて細胞分離用フィルター装置1のプライミング操作を行った。その後、廃液バッグ20に細胞分離用フィルター装置1を通過した生理食塩液を回収した。
 次に、細胞懸濁液を収容する手段15から白血球濃厚液(CPDで抗凝固したブタ血液)100mLを、細胞分離用フィルター装置1に重力を利用して通液した。その後、通過液を廃液バッグ20に回収した。
 上記操作で使用した白血球濃厚液は、CPDで抗凝固したブタ血液を3000rpm、30分遠心分離して得たバッフィーコートより、処理する白血球数が1.0×10cells~4.0×10cellsになるように調製した。
 その後、流路切り替え手段19bを用いて、生理食塩水を収容する手段16の生理食塩水100mLを細胞分離用フィルター装置1に重力を利用して通液した。次いで、通過液を廃液バッグ20に回収した。
 最後に、生理食塩水50mLを10~50mL/秒の流量で、回収液を回収する手段21としてシリンジを用いて手動で細胞分離用フィルター装置1の液体導出口10より導入した。次いで、回収液(細胞含有液)を、液体導入口9に接続した回収バッグ17に回収した。
 回収液(細胞含有液)、及び、処理前の細胞懸濁液(粗細胞含有液)の白血球濃度を、血球カウンター(K-4500、シスメックス社)により測定した。また、単球濃度に関しては、細胞表面マーカーであるCD14に対して蛍光標識し、上記血球カウンター及びフローサイトメーター(FACS canto、BD社)により測定した。その後、処理前の細胞懸濁液と回収液の体積より白血球数及び単球数を算出して、白血球回収率、単球回収率をそれぞれ求めた。結果は表1に示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
 表1によれば、所定の面積比率R1(A1/A2(面積%))が6~50%であるように構成された実施例の細胞分離用フィルター装置1を用いる場合、高い回収率で単球を回収できる(さらに純度高く単球を回収できる)一方で、所定の面積比率R1(A1/A2(面積%))が6~50%から外れるように構成された細胞分離用フィルター装置1を用いる場合、低い回収率及び低純度でしか単球を回収できないことが分かる。
 1 細胞分離用フィルター装置
 2 細胞分離用フィルター容器
 3 フィルター部材収容部
 4、5 ノズル付内蓋
 6、7 環状外蓋
 8 シール
 9 液体導入口
 10 液体導出口
 11 フィルター部材
 12 第1フィルター押え部
 12a 第1突起
 12b 第1環状支持体
 13 第2フィルター押え部
 13a 第2突起
 13b 第2環状支持体

Claims (13)

  1.  液体導入口と、液体導出口と、フィルター部材収容部と、第1フィルター押え部と、第2フィルター押え部と、を有する細胞分離用フィルター容器であって、
     前記フィルター部材収容部が、両端に開口を有する筒状の部材であって、
     前記液体導入口が、前記フィルター部材収容部の一方の開口端側に設けられ、
     前記液体導出口が、前記フィルター部材収容部の他方の開口端側に設けられ、
     前記第1フィルター押え部は、前記フィルター部材収容部の前記液体導入口側の位置において、前記フィルター部材収容部の内壁面又は内壁面の近傍から、前記フィルター部材収容部の内部空間の断面の中央又は略中央に向かって突出する、3本以上の第1突起からなり、
     前記第1フィルター押え部は、前記フィルター部材収容部内にフィルター部材が収容された際に、前記フィルター部材を変形させつつ前記フィルター部材に当接するように設けられ、
     前記第2フィルター押え部は、前記第1フィルター押え部と、前記第2フィルター押え部とによって前記フィルター部材が挟み込まれるように、前記フィルター部材収容部の前記液体導出口側の位置に設けられ、
     前記第1フィルター押え部を構成する3本以上の前記第1突起のそれぞれの先端を結んで形成される多角形の面積をA1とし、前記第1突起の位置における前記フィルター部材収容部の内部空間の断面の面積をA2とする場合に、下記式:
    面積比率R1(%)=A1/A2×100
    で算出される面積比率R1が、6~50%である、細胞分離用フィルター容器。
  2.  前記第2フィルター押え部が、前記フィルター部材収容部の前記液体導出口側の位置において、前記フィルター部材収容部の内壁面又は内壁面の近傍より、前記フィルター部材収容部の内部空間の断面の中央又は略中央に向かって突出する、3本以上の第2突起からなる、請求項1に記載の細胞分離用フィルター容器。
  3.  前記第2フィルター押え部を構成する3本以上の前記第2突起の先端を結んで形成される多角形の面積をA3とし、前記第2突起の位置における前記フィルター部材収容部の内部空間の断面の面積をA4とする場合に、下記式:
    面積比率R2(%)=A3/A4×100
    で算出される面積比率R2が、6~50%である、請求項2に記載の細胞分離用フィルター容器。
  4.  前記面積比率R1が、6~40%である、請求項1~3のいずれか1項に記載の細胞分離用フィルター容器。
  5.  前記面積比率がR2が、6~40%である、請求項3に記載の細胞分離用フィルター容器。
  6.  前記第1突起の本数が、5本以上12本以下である、請求項1~5のいずれか1項に記載の細胞分離用フィルター容器。
  7.  前記第2突起の本数が、5本以上12本以下である、請求項3又は5に記載の細胞分離用フィルター容器。
  8.  請求項1~7のいずれか1項に記載の細胞分離用フィルター容器と、フィルター部材とを有し、
     前記フィルター部材が、前記フィルター部材収容部に収容されている、細胞分離用フィルター装置。
  9.  前記フィルター部材が不織布からなる、請求項8に記載の細胞分離用フィルター装置。
  10.  単球を含む細胞含有液を取得する方法であって、
     前記単球と、前記単球よりも平均サイズの小さな細胞である小細胞とを含む粗細胞含有液を、請求項8又は9に記載の細胞分離用フィルター装置内に前記液体導入口から供給した後に前記細胞分離用フィルター装置を通過させることで、前記単球を前記フィルター部材に捕捉させることと、
     前記細胞分離用フィルター装置内に回収液を供給することで、前記フィルター部材に捕捉された前記単球を前記回収液中に遊離させて前記細胞含有液を生じさせることと、
     前記細胞含有液を前記細胞分離用フィルター装置内から回収することと、
    を含む方法。
  11.  前記回収液を前記液体導出口から供給し、前記細胞含有液を前記液体導入口から回収する、請求項10に記載の方法。
  12.  樹状細胞療法に用いられる樹状細胞含有液を製造する方法であって、
     単球と、単球よりも平均サイズの小さな細胞である小細胞とを含む粗細胞含有液を、請求項8又は9に記載の細胞分離用フィルター装置内に前記液体導入口から供給した後に前記細胞分離用フィルター装置を通過させることで、前記単球を前記フィルター部材に捕捉させることと、
     前記細胞分離用フィルター装置内に回収液を供給することで、前記フィルター部材に捕捉された前記単球を前記回収液中に遊離させて、細胞含有液を生じさせることと、
     前記細胞含有液を前記細胞分離用フィルター装置内から回収することと、
     前記細胞含有液に含まれる前記単球を前記樹状細胞に分化させることと、
    を含む方法。
  13.  前記回収液を前記液体導出口から供給し、前記細胞含有液を前記液体導入口から回収する、請求項12に記載の方法。
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