WO2017146127A1 - イムノクロマトグラフィーを利用した癌胎児性フィブロネクチンの検出方法 - Google Patents
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Abstract
イムノクロマト法において、検出対象物の類似抗原成分との交差反応を抑制し、類似抗原の検出を低減し、測定値の誤差や偽陽性反応を防止するとともに、検出対象物の検出感度を維持あるいは向上させて正確な判断ができるようにすることを課題とする。 緩衝液を特定のｐＨ領域で使用する条件下で、検出対象物と検出対象物に特異的に結合する抗体を反応させると、類似抗原が共存した場合でも前記抗体と類似抗原との交差反応性を抑え、正確に検出対象物を検出できる。
Description
本発明は、イムノクロマトグラフィーを利用した検出方法において、サンプル中に検出対象物質と類似した抗原性を有する物質が共存しうる場合の検出方法に関する。さらに詳しくは、イムノクロマトグラフィーを利用した癌胎児性フィブロネクチンの検出方法において、他のフィブロネクチンが共存しうる場合の検出方法に関する。
ポイントオブケア検査（ＰＯＣＴ）は、開業医や、病棟および外来患者向け診療室など、患者の周辺で行われることを意図した検査の総称で、簡便な操作によって得られた検査結果に基づき、迅速に診断、処置を行えるようになるため、診療の質の向上に貢献すると期待されている。
ＰＯＣＴに繁用される方法としてイムノクロマトグラフィーを利用した検出方法（以下、単にイムノクロマト法ということがある）があり、インフルエンザ感染などの感染症領域、妊娠や早産などの産科領域、糖尿病や心臓疾患などの生活習慣病領域ほかで多数実用化されている。
ＰＯＣＴに繁用される方法としてイムノクロマトグラフィーを利用した検出方法（以下、単にイムノクロマト法ということがある）があり、インフルエンザ感染などの感染症領域、妊娠や早産などの産科領域、糖尿病や心臓疾患などの生活習慣病領域ほかで多数実用化されている。
イムノクロマト法は、その操作工程中に、測定対象物に由来する抗原抗体複合物以外の試料中の成分を検出対象物の検出前に洗浄する工程（以下、単に洗浄工程ということがある）を含むヘテロジニアス法（以下、単にヘテロジニアス法ということがある）に対して、当該洗浄工程を含まない、ホモジニアス法（以下、単にホモジニアス法ということがある）に分類される。
サンプル（検体）中に検出対象物質と類似した抗原性を有する物質（以下、類似抗原ということがある）が存在する場合、ヘテロジニアス法では問題を生じない程度の量であっても、ホモジニアス法では、測定結果に誤差を与えことがある。
サンプル（検体）中に検出対象物質と類似した抗原性を有する物質（以下、類似抗原ということがある）が存在する場合、ヘテロジニアス法では問題を生じない程度の量であっても、ホモジニアス法では、測定結果に誤差を与えことがある。
血液などのサンプルへの混入により類似抗原が含まれうるような検出対象物としてフィブロネクチンが挙げられる。フィブロネクチンは単一遺伝子から発現されるタンパク質ファミリーを構成し、血漿、ならびに結合組織、皮膚、結腸、肝臓、脾臓および腎臓を含む生体組織に様々なイソ型が存在することが知られている(Matsuura and Hakomori, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 82:6517－6521 (1985))。胎児組織および数種の腫瘍細胞は、「胎児性」または「癌胎児性」フィブロネクチンと総称されるフィブロネクチンのイソ型を含む。癌胎児性フィブロネクチン（以下、単に「ｆＦＮ」ということがある）は妊娠していない婦人や妊娠２２週以上で卵膜に障害のない妊婦の膣分泌液中にはほとんど存在しないが、細菌感染や物理的要因による卵膜の損傷や脆弱があると膣分泌液中に漏出する。よって、妊娠２２～３３週の妊婦の膣分泌液中のｆＦＮ濃度は切迫早産傾向のマーカーとして有用である。なお、このような産科で検査する癌胎児性フィブロネクチンは、初期に「oncofetal fibronectin」と書かれており、日本語では「癌胎児性」フィブロネクチンと訳されて使用されてきた経緯があるが、現在では、「胎児性」フィブロネクチン（fetal fibronectin）という表現を使用する傾向にある。本発明では特段断りのない限り、「癌胎児性フィブロネクチン」という表現で統一する。
フィブロネクチンとは、上述のとおり単一遺伝子から発現されるタンパク質ファミリーであり、細胞外マトリックスを構成する分子量約５００ｋＤａの主要タンパク質である。ｆＦＮは血漿由来ＦＮ(以下、単に血漿ＦＮ、ＦＮと略することがある)と同一のアミノ酸配列を有し、糖鎖結合部位だけが異なるという関係にある。ｆＦＮの糖含量はおよそ９．５％、血漿フィブロネクチンの糖含量は５．８％である。このように血漿ＦＮとｆＦＮとはアミノ酸配列が同一であり、現在特定されているｆＦＮ特異的なエピトープが１箇所のみであることから、ｆＦＮに特異的に反応し、血漿ＦＮには完全に反応しないような抗体を２種以上取得するのは非常に困難である。
したがって、サンドイッチ複合体を形成するための２つの抗体としては、一方をｆＦＮに特異的に結合し他のフィブロネクチンには結合しない抗体が必要であり、もう一方には、両方のフィブロネクチンに結合してしまう抗体を組み合わせる必要性も生じうる。
実際、出願人が、ｆＦＮにのみ特異的に結合するモノクローナル抗体を取得すべく、ｆＦＮに特有の糖鎖部位を含むペプチドを免疫原としてモノクローナル抗体の取得を試みたところ、取得できたモノクローナル抗体は、ｆＦＮに特異的に反応するものの、血漿ＦＮにもわずかに交差反応を示す抗体であった。
フィブロネクチンとは、上述のとおり単一遺伝子から発現されるタンパク質ファミリーであり、細胞外マトリックスを構成する分子量約５００ｋＤａの主要タンパク質である。ｆＦＮは血漿由来ＦＮ(以下、単に血漿ＦＮ、ＦＮと略することがある)と同一のアミノ酸配列を有し、糖鎖結合部位だけが異なるという関係にある。ｆＦＮの糖含量はおよそ９．５％、血漿フィブロネクチンの糖含量は５．８％である。このように血漿ＦＮとｆＦＮとはアミノ酸配列が同一であり、現在特定されているｆＦＮ特異的なエピトープが１箇所のみであることから、ｆＦＮに特異的に反応し、血漿ＦＮには完全に反応しないような抗体を２種以上取得するのは非常に困難である。
したがって、サンドイッチ複合体を形成するための２つの抗体としては、一方をｆＦＮに特異的に結合し他のフィブロネクチンには結合しない抗体が必要であり、もう一方には、両方のフィブロネクチンに結合してしまう抗体を組み合わせる必要性も生じうる。
実際、出願人が、ｆＦＮにのみ特異的に結合するモノクローナル抗体を取得すべく、ｆＦＮに特有の糖鎖部位を含むペプチドを免疫原としてモノクローナル抗体の取得を試みたところ、取得できたモノクローナル抗体は、ｆＦＮに特異的に反応するものの、血漿ＦＮにもわずかに交差反応を示す抗体であった。
現在、ｆＦＮの体外診断用医薬品として既に流通している試薬としては、ＥＬＩＳＡ法を採用した試薬「イムノテスタ（登録商標）ｆＦＮ」（積水メディカル社製）が知られている（非特許文献１）。
前記イムノテスタは、イムノプレートを使用する２ステップサンドイッチＥＬＩＳＡ法であり、洗浄工程を有するヘテロジニアス法である。当該試薬では、切迫早産リスクの目安としてカットオフ値が５０ｎｇ／ｍＬであるが、検体に血液が混入しても洗浄工程があることから、偽陽性反応を生じにくく臨床上の問題は生じない。
一方、イムノクロマトグラフィーを利用する検出方法は、洗浄工程を有しないホモジニアス法であるため特に血液混入等の影響を受けやすいという問題がある。例えば、０．１％以上の血液混入検体は、色調で識別可能であるが、０．１％未満の血液混入では目視による見分けは難しい。したがって、０．１％未満の血液混入時であっても、偽陽性の生じないような試薬が望まれる。
イムノクロマトグラフィーを利用したヒトｆＦＮの検出方法としては、特許文献１、２が知られているものの、癌胎児性フィブロネクチンを特異的に測定するような試薬が実際に製品化されたものは存在しない。特許文献１は、一般的なイムノクロマトグラフィーを示す文献であり、検出対象として胎児性フィブロネクチンが挙げられているのみであり、特許文献２はｆＦＮに対する抗体とバックグラウンド物質の非特異結合を抑制するためにＢＳＡなどをサンプルに添加することが記載されている。
なお、上記特許文献１，２いずれにもｆＦＮと他のフィブロネクチンとの抗原類似性に伴う課題について記載も示唆もされていない。
前記イムノテスタは、イムノプレートを使用する２ステップサンドイッチＥＬＩＳＡ法であり、洗浄工程を有するヘテロジニアス法である。当該試薬では、切迫早産リスクの目安としてカットオフ値が５０ｎｇ／ｍＬであるが、検体に血液が混入しても洗浄工程があることから、偽陽性反応を生じにくく臨床上の問題は生じない。
一方、イムノクロマトグラフィーを利用する検出方法は、洗浄工程を有しないホモジニアス法であるため特に血液混入等の影響を受けやすいという問題がある。例えば、０．１％以上の血液混入検体は、色調で識別可能であるが、０．１％未満の血液混入では目視による見分けは難しい。したがって、０．１％未満の血液混入時であっても、偽陽性の生じないような試薬が望まれる。
イムノクロマトグラフィーを利用したヒトｆＦＮの検出方法としては、特許文献１、２が知られているものの、癌胎児性フィブロネクチンを特異的に測定するような試薬が実際に製品化されたものは存在しない。特許文献１は、一般的なイムノクロマトグラフィーを示す文献であり、検出対象として胎児性フィブロネクチンが挙げられているのみであり、特許文献２はｆＦＮに対する抗体とバックグラウンド物質の非特異結合を抑制するためにＢＳＡなどをサンプルに添加することが記載されている。
なお、上記特許文献１，２いずれにもｆＦＮと他のフィブロネクチンとの抗原類似性に伴う課題について記載も示唆もされていない。
「イムノテスタ（登録商標）ｆＦＮ」（積水メディカル株式会社）体外診断用医薬品の添付文書
類似抗原の混入可能性のあるサンプル中の検出対象物質をイムノクロマトグラフィーを利用して検出する場合には、類似抗原をも検出してしまい、測定値の誤差や偽陽性を示す結果が得られるという問題点がある。
特に、血液混入の可能性のあるサンプルのｆＦＮをイムノクロマトグラフィーを利用して検出する場合には、血漿由来のフィブロネクチンをも検出してしまい、測定値の誤差や偽陽性を示す結果が得られるという問題点がある。
本発明は、上記問題点を解決するためのものであり、イムノクロマトグラフィーを利用した検出方法において、検出対象物の類似抗原成分との交差反応を抑制し、類似抗原の検出を低減し、測定値の誤差や偽陽性反応を防止するとともに、検出対象物の検出感度を維持あるいは向上させて正確な判断ができるようにすることを課題とする。
特に、ｆＦＮをイムノクロマトグラフィーを利用して検出する方法において、血液が混入しても測定誤差や偽陽性反応を生じにくく、ｆＦＮの検出感度を維持あるいは向上させて正確な判断ができるようにすることも本発明の課題である。
特に、血液混入の可能性のあるサンプルのｆＦＮをイムノクロマトグラフィーを利用して検出する場合には、血漿由来のフィブロネクチンをも検出してしまい、測定値の誤差や偽陽性を示す結果が得られるという問題点がある。
本発明は、上記問題点を解決するためのものであり、イムノクロマトグラフィーを利用した検出方法において、検出対象物の類似抗原成分との交差反応を抑制し、類似抗原の検出を低減し、測定値の誤差や偽陽性反応を防止するとともに、検出対象物の検出感度を維持あるいは向上させて正確な判断ができるようにすることを課題とする。
特に、ｆＦＮをイムノクロマトグラフィーを利用して検出する方法において、血液が混入しても測定誤差や偽陽性反応を生じにくく、ｆＦＮの検出感度を維持あるいは向上させて正確な判断ができるようにすることも本発明の課題である。
本発明は上記課題を解決するために鋭意検討した結果、緩衝液を特定のｐＨ領域で使用する条件下で、検出対象物と検出対象物に特異的に結合する抗体を反応させると、類似抗原が共存した場合でも前記抗体と類似抗原との交差反応性を抑え、正確に検出対象物を検出できることを見出し本発明を完成するに至った。
具体的に、本発明は以下のとおりである。
＜１＞イムノクロマトグラフィーを利用した検出方法であって、（Ａ）～（Ｃ）の工程を含む検出方法。
（Ａ）下記テストストリップのサンプル供給部に検出対象物質と検出対象物質に類似する物質を含み得るサンプルを供給する工程
テストストリップ；
少なくともサンプル供給部、展開部および検出部とを備えた多孔質体からなるメンブレンを有し、展開部の一部には、標識物質で標識された第一の抗体を含むコンジュゲートが溶出可能に保持され、さらに展開部の一部であってコンジュゲート保持部分より下流側に第二の抗体が固定化されている検出部を有する
ここで、第一の抗体及び第二の抗体のいずれか一方が抗検出対象物質抗体であって、もう一方が検出対象物質に結合する抗体である
（Ｂ）サンプル中の検出対象物質をｐＨ５．０～６．７の緩衝液の存在下にコンジュゲートと接触させる工程
（Ｃ）サンプル中の検出対象物質とコンジュゲートの複合体を検出部において検出する工程
＜２＞検出対象物質が癌胎児性フィブロネクチンであり、検出対象物質に類似する物質が血漿フィブロネクチンである＜１＞に記載の検出方法。
＜３＞第一の抗体が抗フィブロネクチンモノクローナル抗体であり、第二の抗体が抗癌胎児性フィブロネクチンモノクローナル抗体である＜２＞に記載の検出方法。
＜４＞緩衝液が、リン酸、ＡＤＡ、ＭＥＳ、ＡＣＥＳ、Ｂｉｓ－Ｔｒｉｓ、クエン酸、ＨＥＰＥＳ、ＭＯＰＳ、ＰＩＰＥＳ及びＴｒｉｓからなる群から選ばれるいずれか１種以上である＜１＞～＜３＞のいずれかに記載の検出方法。
＜５＞緩衝液の濃度が、２０ｍｍｏｌ／Ｌ～８０ｍｍｏｌ／Ｌである＜１＞～＜４＞のいずれかに記載の検出方法。
＜６＞標識物質が金コロイドである、＜１＞～＜５＞のいずれかに記載の検出方法。
＜７＞以下の構成（１）および（２）を含む、イムノクロマトグラフィー用テストストリップ。
（１）少なくともサンプル供給部、展開部および検出部とを備えた多孔質体からなるメンブレンを有し、展開部の一部には、標識物質で標識された第一の抗体を含むコンジュゲートが溶出可能に保持され、さらに展開部の一部であって前記コンジュゲート保持部分より下流側に、第二の抗体が固定化されている検出部を有する
ここで、第一の抗体及び第二の抗体のいずれか一方が抗検出対象物質抗体であって、もう一方が検出対象物質に結合する抗体である。
（２）サンプル供給部から、展開部の検出部までのすくなくとも一部にｐＨ５．０～６．７の緩衝液成分が含まれている
＜８＞サンプルパッド、コンジュゲートパッド、および抗体固定化メンブレンを上から順に配置し、サンプルパッドがサンプル供給部を含み、コンジュゲートパッドがコンジュゲート保持部分および緩衝液成分を含み、抗体固定化メンブレンが検出部を含む＜７＞に記載のテストストリップ。
＜９＞コンジュゲートパッドと抗体固定化メンブレンの間にさらにサードパッドを含む＜７＞または＜８＞に記載のテストストリップ。
＜１０＞検出対象物質が癌胎児性フィブロネクチンであり、検出対象物質に類似する物質が血漿フィブロネクチンであり、第一の抗体及び第二の抗体のいずれか一方が抗フィブロネクチンモノクローナル抗体であって、もう一方が抗癌胎児性フィブロネクチンモノクローナル抗体である＜７＞～＜９＞のいずれかに記載のテストストリップ。
＜１１＞第一の抗体が抗フィブロネクチンモノクローナル抗体であり、第二の抗体が抗癌胎児性フィブロネクチンモノクローナル抗体である＜１０＞に記載のテストストリップ。
＜１２＞緩衝液が、リン酸、ＡＤＡ、ＭＥＳ、ＡＣＥＳ、Ｂｉｓ－Ｔｒｉｓ、クエン酸、ＨＥＰＥＳ、ＭＯＰＳ、ＰＩＰＥＳ及びＴｒｉｓからなる群から選ばれるいずれか１種以上である＜７＞～＜１１＞のいずれかに記載のテストストリップ。
＜１３＞緩衝液の濃度が、２０ｍｍｏｌ／Ｌ～８０ｍｍｏｌ／Ｌである＜７＞～＜１２＞のいずれかに記載のテストストリップ。
＜１４＞標識物質が金コロイドである、＜７＞～＜１３＞のいずれかに記載のテストストリップ。
＜１５＞以下の構成（１）および（２）を含む、イムノクロマトグラフィー用検出キット。
（１）少なくともサンプル供給部、展開部および検出部とを備えた多孔質体からなるメンブレンを有し、展開部の一部には、標識物質で標識された第一の抗体を含むコンジュゲートが溶出可能に保持され、さらに展開部の一部であって前記コンジュゲート保持部分より下流側に、第二の抗体が固定化されている検出部を有するイムノクロマトグラフィー用テストストリップ
ここで、第一の抗体及び第二の抗体のいずれか一方が抗検出対象物質抗体であって、もう一方が検出対象物質に結合する抗体である。
（２）ｐＨ５．０～６．７の緩衝液
＜１６＞検出対象物質が癌胎児性フィブロネクチンであり、検出対象物質に類似する物質が血漿フィブロネクチンであり、第一の抗体及び第二の抗体のいずれか一方が抗フィブロネクチンモノクローナル抗体であって、もう一方が抗癌胎児性フィブロネクチンモノクローナル抗体である＜１５＞に記載の検出キット。
＜１７＞緩衝液を展開液又は検体抽出液として使用する＜１５＞又は＜１６＞に記載の検出キット。
＜１８＞緩衝液がリン酸、ＡＤＡ、ＭＥＳ、ＡＣＥＳ、Ｂｉｓ－Ｔｒｉｓ、クエン酸、ＨＥＰＥＳ、ＭＯＰＳ、ＰＩＰＥＳ及びＴｒｉｓからなる群から選ばれるいずれか１種以上である＜１５＞～＜１７＞のいずれか記載の検出キット。
＜１９＞緩衝液の濃度が、２０ｍｍｏｌ／Ｌ～８０ｍｍｏｌ／Ｌである＜１５＞～＜１８＞のいずれかに記載の検出キット。
＜２０＞イムノクロマトグラフィー用テストストリップを用いてサンプル中の検出対象物質を検出する方法における、検出対象物質と類似する物質の交差反応を低減化する方法であって、
以下の工程を有する前記方法。
（Ａ）下記テストストリップのサンプル供給部に検出対象物質と検出対象物質に類似する物質を含み得るサンプルを供給する工程
テストストリップ；
少なくともサンプル供給部、展開部および検出部とを備えた多孔質体からなるメンブレンを有し、展開部の一部には、標識物質で標識された第一の抗体を含むコンジュゲートが溶出可能に保持され、さらに展開部の一部であってコンジュゲート保持部分より下流側に第二の抗体が固定化されている検出部を有する
ここで、第一の抗体及び第二の抗体のいずれか一方が抗検出対象物質抗体であって、もう一方が検出対象物質に結合する抗体である
（Ｂ）サンプル中の検出対象物質をｐＨ５．０～ｐＨ６．７の緩衝液の存在下にコンジュゲートと接触させる工程
（Ｃ）サンプル中の検出対象物質とコンジュゲートの複合体を検出部において検出する工程
＜２１＞検出対象物質が癌胎児性フィブロネクチンであり、検出対象物質に類似する物質が血漿フィブロネクチンである＜２０＞に記載の方法。
＜２２＞第一の抗体が抗フィブロネクチンモノクローナル抗体であり、第二の抗体が抗癌胎児性フィブロネクチンモノクローナル抗体である＜２１＞に記載の方法。
＜２３＞緩衝液が、リン酸、ＡＤＡ、ＭＥＳ、ＡＣＥＳ、Ｂｉｓ－Ｔｒｉｓ、クエン酸、ＨＥＰＥＳ、ＭＯＰＳ、ＰＩＰＥＳ及びＴｒｉｓからなる群から選ばれるいずれか１種以上である＜２０＞～＜２２＞のいずれかに記載の方法。
＜２４＞緩衝液の濃度が、２０ｍｍｏｌ／Ｌ～８０ｍｍｏｌ／Ｌである＜２０＞～＜２３＞のいずれかに記載の方法。
＜２５＞標識物質が金コロイドである、＜２０＞～＜２４＞のいずれかに記載の方法。
＜２６＞
癌胎児性フィブロネクチン検出のためのイムノクロマトグラフィー用展開液であって、下記（１）及び（２）を含む前記展開液。
（１）ｐＨ５．０～ｐＨ６．７の緩衝液
（２）標識物質で標識された第一の抗体を含むコンジュゲート
＜２７＞緩衝液の濃度が、２０ｍｍｏｌ／Ｌ～８０ｍｍｏｌ／Ｌである＜２６＞に記載の展開液。
＜２８＞ｐＨ５．０～ｐＨ６．７の緩衝液を含有する癌胎児性フィブロネクチン検出用検体抽出液。
具体的に、本発明は以下のとおりである。
＜１＞イムノクロマトグラフィーを利用した検出方法であって、（Ａ）～（Ｃ）の工程を含む検出方法。
（Ａ）下記テストストリップのサンプル供給部に検出対象物質と検出対象物質に類似する物質を含み得るサンプルを供給する工程
テストストリップ；
少なくともサンプル供給部、展開部および検出部とを備えた多孔質体からなるメンブレンを有し、展開部の一部には、標識物質で標識された第一の抗体を含むコンジュゲートが溶出可能に保持され、さらに展開部の一部であってコンジュゲート保持部分より下流側に第二の抗体が固定化されている検出部を有する
ここで、第一の抗体及び第二の抗体のいずれか一方が抗検出対象物質抗体であって、もう一方が検出対象物質に結合する抗体である
（Ｂ）サンプル中の検出対象物質をｐＨ５．０～６．７の緩衝液の存在下にコンジュゲートと接触させる工程
（Ｃ）サンプル中の検出対象物質とコンジュゲートの複合体を検出部において検出する工程
＜２＞検出対象物質が癌胎児性フィブロネクチンであり、検出対象物質に類似する物質が血漿フィブロネクチンである＜１＞に記載の検出方法。
＜３＞第一の抗体が抗フィブロネクチンモノクローナル抗体であり、第二の抗体が抗癌胎児性フィブロネクチンモノクローナル抗体である＜２＞に記載の検出方法。
＜４＞緩衝液が、リン酸、ＡＤＡ、ＭＥＳ、ＡＣＥＳ、Ｂｉｓ－Ｔｒｉｓ、クエン酸、ＨＥＰＥＳ、ＭＯＰＳ、ＰＩＰＥＳ及びＴｒｉｓからなる群から選ばれるいずれか１種以上である＜１＞～＜３＞のいずれかに記載の検出方法。
＜５＞緩衝液の濃度が、２０ｍｍｏｌ／Ｌ～８０ｍｍｏｌ／Ｌである＜１＞～＜４＞のいずれかに記載の検出方法。
＜６＞標識物質が金コロイドである、＜１＞～＜５＞のいずれかに記載の検出方法。
＜７＞以下の構成（１）および（２）を含む、イムノクロマトグラフィー用テストストリップ。
（１）少なくともサンプル供給部、展開部および検出部とを備えた多孔質体からなるメンブレンを有し、展開部の一部には、標識物質で標識された第一の抗体を含むコンジュゲートが溶出可能に保持され、さらに展開部の一部であって前記コンジュゲート保持部分より下流側に、第二の抗体が固定化されている検出部を有する
ここで、第一の抗体及び第二の抗体のいずれか一方が抗検出対象物質抗体であって、もう一方が検出対象物質に結合する抗体である。
（２）サンプル供給部から、展開部の検出部までのすくなくとも一部にｐＨ５．０～６．７の緩衝液成分が含まれている
＜８＞サンプルパッド、コンジュゲートパッド、および抗体固定化メンブレンを上から順に配置し、サンプルパッドがサンプル供給部を含み、コンジュゲートパッドがコンジュゲート保持部分および緩衝液成分を含み、抗体固定化メンブレンが検出部を含む＜７＞に記載のテストストリップ。
＜９＞コンジュゲートパッドと抗体固定化メンブレンの間にさらにサードパッドを含む＜７＞または＜８＞に記載のテストストリップ。
＜１０＞検出対象物質が癌胎児性フィブロネクチンであり、検出対象物質に類似する物質が血漿フィブロネクチンであり、第一の抗体及び第二の抗体のいずれか一方が抗フィブロネクチンモノクローナル抗体であって、もう一方が抗癌胎児性フィブロネクチンモノクローナル抗体である＜７＞～＜９＞のいずれかに記載のテストストリップ。
＜１１＞第一の抗体が抗フィブロネクチンモノクローナル抗体であり、第二の抗体が抗癌胎児性フィブロネクチンモノクローナル抗体である＜１０＞に記載のテストストリップ。
＜１２＞緩衝液が、リン酸、ＡＤＡ、ＭＥＳ、ＡＣＥＳ、Ｂｉｓ－Ｔｒｉｓ、クエン酸、ＨＥＰＥＳ、ＭＯＰＳ、ＰＩＰＥＳ及びＴｒｉｓからなる群から選ばれるいずれか１種以上である＜７＞～＜１１＞のいずれかに記載のテストストリップ。
＜１３＞緩衝液の濃度が、２０ｍｍｏｌ／Ｌ～８０ｍｍｏｌ／Ｌである＜７＞～＜１２＞のいずれかに記載のテストストリップ。
＜１４＞標識物質が金コロイドである、＜７＞～＜１３＞のいずれかに記載のテストストリップ。
＜１５＞以下の構成（１）および（２）を含む、イムノクロマトグラフィー用検出キット。
（１）少なくともサンプル供給部、展開部および検出部とを備えた多孔質体からなるメンブレンを有し、展開部の一部には、標識物質で標識された第一の抗体を含むコンジュゲートが溶出可能に保持され、さらに展開部の一部であって前記コンジュゲート保持部分より下流側に、第二の抗体が固定化されている検出部を有するイムノクロマトグラフィー用テストストリップ
ここで、第一の抗体及び第二の抗体のいずれか一方が抗検出対象物質抗体であって、もう一方が検出対象物質に結合する抗体である。
（２）ｐＨ５．０～６．７の緩衝液
＜１６＞検出対象物質が癌胎児性フィブロネクチンであり、検出対象物質に類似する物質が血漿フィブロネクチンであり、第一の抗体及び第二の抗体のいずれか一方が抗フィブロネクチンモノクローナル抗体であって、もう一方が抗癌胎児性フィブロネクチンモノクローナル抗体である＜１５＞に記載の検出キット。
＜１７＞緩衝液を展開液又は検体抽出液として使用する＜１５＞又は＜１６＞に記載の検出キット。
＜１８＞緩衝液がリン酸、ＡＤＡ、ＭＥＳ、ＡＣＥＳ、Ｂｉｓ－Ｔｒｉｓ、クエン酸、ＨＥＰＥＳ、ＭＯＰＳ、ＰＩＰＥＳ及びＴｒｉｓからなる群から選ばれるいずれか１種以上である＜１５＞～＜１７＞のいずれか記載の検出キット。
＜１９＞緩衝液の濃度が、２０ｍｍｏｌ／Ｌ～８０ｍｍｏｌ／Ｌである＜１５＞～＜１８＞のいずれかに記載の検出キット。
＜２０＞イムノクロマトグラフィー用テストストリップを用いてサンプル中の検出対象物質を検出する方法における、検出対象物質と類似する物質の交差反応を低減化する方法であって、
以下の工程を有する前記方法。
（Ａ）下記テストストリップのサンプル供給部に検出対象物質と検出対象物質に類似する物質を含み得るサンプルを供給する工程
テストストリップ；
少なくともサンプル供給部、展開部および検出部とを備えた多孔質体からなるメンブレンを有し、展開部の一部には、標識物質で標識された第一の抗体を含むコンジュゲートが溶出可能に保持され、さらに展開部の一部であってコンジュゲート保持部分より下流側に第二の抗体が固定化されている検出部を有する
ここで、第一の抗体及び第二の抗体のいずれか一方が抗検出対象物質抗体であって、もう一方が検出対象物質に結合する抗体である
（Ｂ）サンプル中の検出対象物質をｐＨ５．０～ｐＨ６．７の緩衝液の存在下にコンジュゲートと接触させる工程
（Ｃ）サンプル中の検出対象物質とコンジュゲートの複合体を検出部において検出する工程
＜２１＞検出対象物質が癌胎児性フィブロネクチンであり、検出対象物質に類似する物質が血漿フィブロネクチンである＜２０＞に記載の方法。
＜２２＞第一の抗体が抗フィブロネクチンモノクローナル抗体であり、第二の抗体が抗癌胎児性フィブロネクチンモノクローナル抗体である＜２１＞に記載の方法。
＜２３＞緩衝液が、リン酸、ＡＤＡ、ＭＥＳ、ＡＣＥＳ、Ｂｉｓ－Ｔｒｉｓ、クエン酸、ＨＥＰＥＳ、ＭＯＰＳ、ＰＩＰＥＳ及びＴｒｉｓからなる群から選ばれるいずれか１種以上である＜２０＞～＜２２＞のいずれかに記載の方法。
＜２４＞緩衝液の濃度が、２０ｍｍｏｌ／Ｌ～８０ｍｍｏｌ／Ｌである＜２０＞～＜２３＞のいずれかに記載の方法。
＜２５＞標識物質が金コロイドである、＜２０＞～＜２４＞のいずれかに記載の方法。
＜２６＞
癌胎児性フィブロネクチン検出のためのイムノクロマトグラフィー用展開液であって、下記（１）及び（２）を含む前記展開液。
（１）ｐＨ５．０～ｐＨ６．７の緩衝液
（２）標識物質で標識された第一の抗体を含むコンジュゲート
＜２７＞緩衝液の濃度が、２０ｍｍｏｌ／Ｌ～８０ｍｍｏｌ／Ｌである＜２６＞に記載の展開液。
＜２８＞ｐＨ５．０～ｐＨ６．７の緩衝液を含有する癌胎児性フィブロネクチン検出用検体抽出液。
本発明によれば、イムノクロマト法において、類似抗原が存在した場合でも、検出対象物に対する抗体と類似抗原との交差反応を低減し、測定値の誤差や偽陽性反応を防止するとともに、分析対象物の検出感度を維持あるいは向上させて正確な判断ができるようになった。
特に、癌胎児性フィブロネクチン（ｆＦＮ）をイムノクロマトグラフィーを利用して検出する方法において、血液が混入しても測定誤差や偽陽性を生じにくく、ｆＦＮの検出感度を維持あるいは向上させて正確な判断ができるようになった。
特に、癌胎児性フィブロネクチン（ｆＦＮ）をイムノクロマトグラフィーを利用して検出する方法において、血液が混入しても測定誤差や偽陽性を生じにくく、ｆＦＮの検出感度を維持あるいは向上させて正確な判断ができるようになった。
本発明において「サンプル」とは、尿、リンパ、血液、血漿、血清、唾液、精漿、洗浄液、子宮頸分泌液、頸膣分泌液、膣分泌液、乳房分泌液、母乳、滑液、精液、精漿、便、痰、脳脊髄液、涙、粘液、間質液、卵胞液、羊水、眼房水、硝子体液、腹腔液、腹水、汗、リンパ液、および肺痰のいずれであってもよい。
そして、前記検体から遠心分離、ろ過、精製などの手段により分離・分画された成分、有機溶媒などにより抽出された成分、界面活性剤などにより可溶化された成分、緩衝液などにより希釈された成分、化学反応などにより修飾・改変された成分なども本発明の検体に含まれる。
本願明細書中、「検体」と「サンプル」とは同義で用いられ、本発明のイムノクロマトグラフィーの固相に添加、展開する時点で液体（流体）である。
そして、前記検体から遠心分離、ろ過、精製などの手段により分離・分画された成分、有機溶媒などにより抽出された成分、界面活性剤などにより可溶化された成分、緩衝液などにより希釈された成分、化学反応などにより修飾・改変された成分なども本発明の検体に含まれる。
本願明細書中、「検体」と「サンプル」とは同義で用いられ、本発明のイムノクロマトグラフィーの固相に添加、展開する時点で液体（流体）である。
本発明の検出対象物とは、上記「サンプル」に含まれる成分であって、例えば、フィブロネクチン、ｆＦＮ、フィブリン分解産物（例えばＤダイマー）、可溶性フィブリン、ＴＡＴ（トロンビン－アンチトロンビン複合体）、ＰＩＣ（プラスミン－プラスミンインヒビター複合体）などの凝固・線溶マーカー、酸化ＬＤＬ、ＢＮＰ（脳性ナトリウム利尿ペプチド）などの循環関連マーカー、アディポネクチンなどの代謝関連マーカー、ＣＥＡ（癌胎児性抗原）、ＡＦＰ（α－フェトプロテイン）、ＣＡ１９－９、ＣＡ１２５、ＰＳＡ（前立腺特異抗原）などの腫瘍マーカー、ＣＲＰ（Ｃ反応性蛋白）、ＩｇＡ、ＩｇＧ、ＩｇＭなどの炎症関係マーカー、インフルエンザ、ＨＩＶ（ヒト免疫不全ウイルス）、ＨＢＶ（Ｂ型肝炎ウイルス）、ＨＣＶ（Ｃ型肝炎ウイルス）、トキソプラズマ、クラミジア、梅毒などの感染症関連マーカー、アレルゲン特異ＩｇＥ（免疫グロブリンＥ）、ホルモン、薬物、ＳＮＰｓ（一塩基多型）に係わる核酸鎖及びその断片、該核酸鎖の相補鎖、などが例示される。
このうちでも、検出対象物質は、検出対象物質と類似する抗原がサンプル中に存在しうるような抗原が好ましく、検出対象物と類似する抗原のアミノ酸配列が同一あるいは同一性が極めて高い（８０％以上、望ましくは９０％以上、より望ましくは９５％以上などの）関係にある抗原が望ましい。このような抗原としてタンパク質ファミリーの存在するフィブロネクチンが好ましく、癌胎児性フィブロネクチン（ｆＦＮ）が本発明の最も好ましい検出対象である。
このうちでも、検出対象物質は、検出対象物質と類似する抗原がサンプル中に存在しうるような抗原が好ましく、検出対象物と類似する抗原のアミノ酸配列が同一あるいは同一性が極めて高い（８０％以上、望ましくは９０％以上、より望ましくは９５％以上などの）関係にある抗原が望ましい。このような抗原としてタンパク質ファミリーの存在するフィブロネクチンが好ましく、癌胎児性フィブロネクチン（ｆＦＮ）が本発明の最も好ましい検出対象である。
（特定の緩衝液）
本発明の緩衝液は、イムノクロマトグラフィーを利用して検出する方法において、分析対象物と類似する抗原が存在した場合でも、検出対象物に対する抗体と類似抗原との交差反応を低減する作用および分析対象物の検出感度を維持あるいは向上させる作用を有することを必要とする。
検出対象物をｆＦＮ、類似抗原を血漿ＦＮとした場合を例にとると、本発明の緩衝液は、サンプル中の血漿ＦＮと抗ｆＦＮ抗体との交差反応を抑制する作用およびｆＦＮの検出感度を維持あるいは向上させる作用を有する必要がある。
そのような作用を有する緩衝液としては、ｐＨが５．０～６．７の緩衝液が挙げられ、好ましくは、５．０～６．５の緩衝液、より好ましくは５．５～６．５の緩衝液、更により好ましくは５．５～６．０の緩衝液である。これらの緩衝液について、類似する抗原性を有する２種類の抗原の一方のみと特異的抗体が結合する反応を維持あるいは促進し、もう一方の抗原との交差反応性を抑制する方向に作用するという機能は知られていない。
上記緩衝液としては、リン酸、ＡＤＡ、ＭＥＳ、ＡＣＥＳ、Ｂｉｓ－Ｔｒｉｓ、クエン酸、ＭＯＰＳ、ＰＩＰＥＳ及びＴｒｉｓ緩衝液等が挙げられる。このうちでも好ましくは、リン酸、ＡＤＡ、ＭＥＳ、Ｂｉｓ－Ｔｒｉｓ、クエン酸である。
本発明の緩衝液は、イムノクロマトグラフィーを利用して検出する方法において、分析対象物と類似する抗原が存在した場合でも、検出対象物に対する抗体と類似抗原との交差反応を低減する作用および分析対象物の検出感度を維持あるいは向上させる作用を有することを必要とする。
検出対象物をｆＦＮ、類似抗原を血漿ＦＮとした場合を例にとると、本発明の緩衝液は、サンプル中の血漿ＦＮと抗ｆＦＮ抗体との交差反応を抑制する作用およびｆＦＮの検出感度を維持あるいは向上させる作用を有する必要がある。
そのような作用を有する緩衝液としては、ｐＨが５．０～６．７の緩衝液が挙げられ、好ましくは、５．０～６．５の緩衝液、より好ましくは５．５～６．５の緩衝液、更により好ましくは５．５～６．０の緩衝液である。これらの緩衝液について、類似する抗原性を有する２種類の抗原の一方のみと特異的抗体が結合する反応を維持あるいは促進し、もう一方の抗原との交差反応性を抑制する方向に作用するという機能は知られていない。
上記緩衝液としては、リン酸、ＡＤＡ、ＭＥＳ、ＡＣＥＳ、Ｂｉｓ－Ｔｒｉｓ、クエン酸、ＭＯＰＳ、ＰＩＰＥＳ及びＴｒｉｓ緩衝液等が挙げられる。このうちでも好ましくは、リン酸、ＡＤＡ、ＭＥＳ、Ｂｉｓ－Ｔｒｉｓ、クエン酸である。
これら緩衝液成分の緩衝液中の濃度は、検出対象物とこれに対する特異的抗体の反応以外の交差反応を抑えることができる量であればよく、例えばサンプルパッド、コンジュゲートパッドの片方、または両方について、パッドに浸み込ませる溶液中に１０ｍｍｏｌ／Ｌ以上、好適な範囲としては１０～１００ｍｍｏｌ／Ｌ、１０～９０ｍｍｏｌ／Ｌ、２０～８０ｍｍｏｌ／Ｌ、２０～７０ｍｍｏｌ／Ｌ、２０～６０ｍｍｏｌ／Ｌ、２０～５０ｍｍｏｌ／Ｌ、２０～４０ｍｍｏｌ／Ｌが挙げられる。
本発明の特定の緩衝液の使用態様としては、イムノクロマトグラフィー用のテストストリップにおいてサンプル供給部から、展開部であって検出部位まで、の少なくとも一部に検体成分と接触可能に含浸されていればよい。より好ましくは、サンプル供給部から、展開部であってコンジュゲート固定化部位まで、の少なくとも一部である。したがって、サンプル供給部のみでもよく、またサンプル供給部から展開部までの全ての部位であってもよい。緩衝液をサンプル供給部および／またはコンジュゲートパッドに含ませた態様には、液状の緩衝液がパッドに含まれている態様のほかに、緩衝液をパッドに含浸させた後、乾燥させて緩衝液成分が乾燥状態でパッドに付着している態様も含まれる。
また、本発明の特定の緩衝液は、検体抽出液として使用することもできる。この場合も緩衝液の濃度は、検体抽出液中に１０ｍｍｏｌ／Ｌ以上、好適には２０～８０ｍｍｏｌ／Ｌ含まれていることが望ましい。ｐＨは、検体抽出液中で５．０～６．７が有効であり、好ましくは、５．０～６．５、より好ましくは５．５～６．５、更により好ましくは５．５～６．０である。
本発明において、上述のとおり、緩衝液を特定のｐＨ領域で使用することが必要であるが、その他の目的で上記以外の他の緩衝液または上記以外の他の使用態様にて使用することを妨げるものではない。例えば、サンプル供給部から展開部のコンジュゲート固定化部位まで本発明の緩衝液を含浸させ、展開部の抗体固定化部位は上記以外の緩衝液を含浸させる態様とすることも本発明の範囲内に含まれることは言うまでもない。
本発明において、上述のとおり、緩衝液を特定のｐＨ領域で使用することが必要であるが、その他の目的で上記以外の他の緩衝液または上記以外の他の使用態様にて使用することを妨げるものではない。例えば、サンプル供給部から展開部のコンジュゲート固定化部位まで本発明の緩衝液を含浸させ、展開部の抗体固定化部位は上記以外の緩衝液を含浸させる態様とすることも本発明の範囲内に含まれることは言うまでもない。
（イムノクロマトグラフィー用テストストリップ）
本発明のイムノクロマトグラフィー用テストストリップは、少なくとも「サンプル供給部」、「展開部」、「検出部」とを備えた多孔質体からなるメンブレンであって、検出対象物に対する標識抗体が、サンプルとの接触後に展開部を通過して検出部に到達できるよう、展開部の展開開始部位に溶出可能に保持され、さらに固定化抗体が展開部の一部に固定化され検出部を構成する構造を有している。
これらを具現化する一例として、サンプル供給部を担うサンプルパッド、検出対象物に対する標識抗体が溶出可能に保持され、展開部を担うコンジュゲートパッド、固定化抗体が一部に固定化され、展開部および検出部を担う不溶性メンブレン、を含むテストストリップが挙げられる。すなわち、本発明の典型的なイムノクロマトグラフィー用テストストリップは以下の構成を有する。
（１）サンプルが供給されるサンプルパッド
（２）サンプルパッドの下流に配置され、金コロイド表面に第一の抗体が感作されたコンジュゲートが溶出可能に保持されたコンジュゲートパッド
（３）コンジュゲートパッドの下流に配置され、コンジュゲートと検出対象物との複合体と結合する第二の抗体が固定化された不溶性メンブレン
ここで、サンプルパッド、コンジュゲートパッド、不溶性メンブレンはそれぞれが別々の担体を構成する場合、あるいは２つが１つの担体を構成する場合もあり、サンプルの流れ方向の上流から下流に向かって、サンプルパッド、コンジュゲートパッド、不溶性メンブレンの順序で構成されるものであればいずれの態様も含まれる。
イムノクロマトグラフィー用テストストリップは、上記構成のほかに、吸収パッド、サードパッドのいずれか一以上をさらに配置装着されたものも含む。該テストストリップは、通常、プラスチック製粘着シートのような固相支持体上に配列させる。該固相支持体を、サンプルの毛管流を妨げない物質で構成することはもとより、接着剤の成分をサンプルの毛管流を妨げない物質とすることは明らかである。なお、抗体固定化メンブレンの機械的強度を上げ且つアッセイ中の水分の蒸発（乾燥）を防ぐ目的でポリエステルフィルムなどをラミネート加工することも可能である。
本発明のイムノクロマトグラフィー用テストストリップは、少なくとも「サンプル供給部」、「展開部」、「検出部」とを備えた多孔質体からなるメンブレンであって、検出対象物に対する標識抗体が、サンプルとの接触後に展開部を通過して検出部に到達できるよう、展開部の展開開始部位に溶出可能に保持され、さらに固定化抗体が展開部の一部に固定化され検出部を構成する構造を有している。
これらを具現化する一例として、サンプル供給部を担うサンプルパッド、検出対象物に対する標識抗体が溶出可能に保持され、展開部を担うコンジュゲートパッド、固定化抗体が一部に固定化され、展開部および検出部を担う不溶性メンブレン、を含むテストストリップが挙げられる。すなわち、本発明の典型的なイムノクロマトグラフィー用テストストリップは以下の構成を有する。
（１）サンプルが供給されるサンプルパッド
（２）サンプルパッドの下流に配置され、金コロイド表面に第一の抗体が感作されたコンジュゲートが溶出可能に保持されたコンジュゲートパッド
（３）コンジュゲートパッドの下流に配置され、コンジュゲートと検出対象物との複合体と結合する第二の抗体が固定化された不溶性メンブレン
ここで、サンプルパッド、コンジュゲートパッド、不溶性メンブレンはそれぞれが別々の担体を構成する場合、あるいは２つが１つの担体を構成する場合もあり、サンプルの流れ方向の上流から下流に向かって、サンプルパッド、コンジュゲートパッド、不溶性メンブレンの順序で構成されるものであればいずれの態様も含まれる。
イムノクロマトグラフィー用テストストリップは、上記構成のほかに、吸収パッド、サードパッドのいずれか一以上をさらに配置装着されたものも含む。該テストストリップは、通常、プラスチック製粘着シートのような固相支持体上に配列させる。該固相支持体を、サンプルの毛管流を妨げない物質で構成することはもとより、接着剤の成分をサンプルの毛管流を妨げない物質とすることは明らかである。なお、抗体固定化メンブレンの機械的強度を上げ且つアッセイ中の水分の蒸発（乾燥）を防ぐ目的でポリエステルフィルムなどをラミネート加工することも可能である。
（標識体）
本発明に用いる標識体としては、金属コロイド粒子（金コロイドなど）や着色粒子（着色ラテックスなど）などの可視化可能な微小粒子、磁性粒子、蛍光粒子、西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリ性ホスファターゼ、β－Ｄ－ガラクトシダーゼなどの酵素、ヨウ素１２５などの放射性同位元素、アクリジニウム化合物、ルミノールなどの発光物質、フルオレセインイソチオシアネートあるいはユーロピウム（III）キレートなどの蛍光物質などが知られており、好ましくは、金属コロイド、着色ラテックスである。抗体等への標識方法（標識物質の導入・結合方法）も公知の方法を制限なく使用することができる。
金コロイドは、抗体を感作（固定化）させてコンジュゲートを構成することができ、サンプルと接触させてサンプル中の対象物（抗原）を検出する方法において標識体としての役割を担うことができるような金コロイドであればいずれでもよい。
金コロイドとしては、金コロイドのほかに白金コロイドも本発明の金コロイドに含まれるものとする。
金コロイド粒子の粒径は、検出感度に大きく影響することが知られているが、たとえば、イムノクロマトグラフィー用テストストリップに保持させて使用する場合、金コロイド粒子の粒径としては、２０～６０ｎｍが好ましく、より好ましくは４０～６０ｎｍであり、特に４５～５５ｎｍが好ましい。上記の金コロイドは一般に知られている方法、例えば、加熱したテトラクロロ金（III）酸水溶液にクエン酸三ナトリウム水溶液やクエン酸三アンモニウム水溶液を滴下攪拌することによって製造することができる。
本発明に用いる標識体としては、金属コロイド粒子（金コロイドなど）や着色粒子（着色ラテックスなど）などの可視化可能な微小粒子、磁性粒子、蛍光粒子、西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリ性ホスファターゼ、β－Ｄ－ガラクトシダーゼなどの酵素、ヨウ素１２５などの放射性同位元素、アクリジニウム化合物、ルミノールなどの発光物質、フルオレセインイソチオシアネートあるいはユーロピウム（III）キレートなどの蛍光物質などが知られており、好ましくは、金属コロイド、着色ラテックスである。抗体等への標識方法（標識物質の導入・結合方法）も公知の方法を制限なく使用することができる。
金コロイドは、抗体を感作（固定化）させてコンジュゲートを構成することができ、サンプルと接触させてサンプル中の対象物（抗原）を検出する方法において標識体としての役割を担うことができるような金コロイドであればいずれでもよい。
金コロイドとしては、金コロイドのほかに白金コロイドも本発明の金コロイドに含まれるものとする。
金コロイド粒子の粒径は、検出感度に大きく影響することが知られているが、たとえば、イムノクロマトグラフィー用テストストリップに保持させて使用する場合、金コロイド粒子の粒径としては、２０～６０ｎｍが好ましく、より好ましくは４０～６０ｎｍであり、特に４５～５５ｎｍが好ましい。上記の金コロイドは一般に知られている方法、例えば、加熱したテトラクロロ金（III）酸水溶液にクエン酸三ナトリウム水溶液やクエン酸三アンモニウム水溶液を滴下攪拌することによって製造することができる。
（金コロイドへの抗体の感作）
検出対象物に対する抗体の金コロイドへの固定化は、通常、物理吸着によって行う。この際、抗体濃度は１～５μｇ／ｍＬ緩衝液の濃度に調製されるのが好ましい。緩衝液の種類とｐＨは、２～１０ｍｍｏｌ／Ｌ Ｔｒｉｓ緩衝液（ｐＨ７～９）等を用いるが、他の緩衝液の使用も含め、これに限定されるものではない。本明細書では、上記のような金コロイドに検出対象物に対する抗体、またはコントロール用抗体（あるいは抗原）が固定化されたものを「コンジュゲート」という。
検出対象物に対する抗体の金コロイドへの固定化は、通常、物理吸着によって行う。この際、抗体濃度は１～５μｇ／ｍＬ緩衝液の濃度に調製されるのが好ましい。緩衝液の種類とｐＨは、２～１０ｍｍｏｌ／Ｌ Ｔｒｉｓ緩衝液（ｐＨ７～９）等を用いるが、他の緩衝液の使用も含め、これに限定されるものではない。本明細書では、上記のような金コロイドに検出対象物に対する抗体、またはコントロール用抗体（あるいは抗原）が固定化されたものを「コンジュゲート」という。
（ブロッキング）
本発明のコンジュゲートは、金コロイド表面において抗体が結合していない領域をブロッキング剤によりブロッキングすることもできる。
金コロイドコンジュゲートのブロッキング剤としては、生物由来成分、非生物由来成分が用いられ、生物由来成分としては、生物に由来する成分であってブロッキング作用を有する成分であればいずれでもよく、たとえば動物性タンパクおよび動物性タンパク由来のペプチドが挙げられる。具体的には、牛血清アルブミンであるＢＳＡ、微生物由来であるＢｌｏｃｋｉｎｇ Ｐｅｐｔｉｄｅ Ｆｒａｇｍｅｎｔ（ＴＯＹＯＢＯ製）、絹タンパク質由来（セリシンの加水分解物）であるＮＥＯ ＰＲＯＴＥＩＮ ＳＡＶＥＲ（ＴＯＹＯＢＯ製）、ＳｔａｒｔｉｎｇＢｌｏｃｋTM（ＰＢＳ）Ｂｌｏｃｋｉｎｇ Ｂｕｆｆｅｒ（ＰＩＥＲＣＥ製）、Ｓｔａｂｉｌ ＣｏａｔTM（ＳｕｒＭｏｄｉｃｓ社製）、Ｃａｓｅｉｎが挙げられる。
生物由来成分の濃度としては、使用する成分により適宜決定すれば良い。例えば、１ＯＤ／ｍＬに調整した金コロイド溶液に抗体液を加えて混合した後、該混合液に前記の生物由来成分を、終濃度が０．１～１０％の範囲で添加することによりブロッキングするものであり、より好ましくは０．２～５％の範囲で使用する。
このほかに、非生物由来成分と生物由来成分の両者を混合したものを金コロイドのブロッキング剤として用いることもできる。
本発明のコンジュゲートは、金コロイド表面において抗体が結合していない領域をブロッキング剤によりブロッキングすることもできる。
金コロイドコンジュゲートのブロッキング剤としては、生物由来成分、非生物由来成分が用いられ、生物由来成分としては、生物に由来する成分であってブロッキング作用を有する成分であればいずれでもよく、たとえば動物性タンパクおよび動物性タンパク由来のペプチドが挙げられる。具体的には、牛血清アルブミンであるＢＳＡ、微生物由来であるＢｌｏｃｋｉｎｇ Ｐｅｐｔｉｄｅ Ｆｒａｇｍｅｎｔ（ＴＯＹＯＢＯ製）、絹タンパク質由来（セリシンの加水分解物）であるＮＥＯ ＰＲＯＴＥＩＮ ＳＡＶＥＲ（ＴＯＹＯＢＯ製）、ＳｔａｒｔｉｎｇＢｌｏｃｋTM（ＰＢＳ）Ｂｌｏｃｋｉｎｇ Ｂｕｆｆｅｒ（ＰＩＥＲＣＥ製）、Ｓｔａｂｉｌ ＣｏａｔTM（ＳｕｒＭｏｄｉｃｓ社製）、Ｃａｓｅｉｎが挙げられる。
生物由来成分の濃度としては、使用する成分により適宜決定すれば良い。例えば、１ＯＤ／ｍＬに調整した金コロイド溶液に抗体液を加えて混合した後、該混合液に前記の生物由来成分を、終濃度が０．１～１０％の範囲で添加することによりブロッキングするものであり、より好ましくは０．２～５％の範囲で使用する。
このほかに、非生物由来成分と生物由来成分の両者を混合したものを金コロイドのブロッキング剤として用いることもできる。
なお、本明細書において、「検出」又は「測定」という用語は、検出対象の存在の証明及び／又は定量などを含めて最も広義に解釈する必要があり、いかなる意味においても限定的に解釈してはならない。
（検体抽出液）
本発明において、サンプル中の検出対象物の濃度に応じて、サンプルの抽出が必要な場合は、検体抽出液を用いることがある。検体抽出液は、抗原抗体反応を著しく阻害したり、または反対に著しく反応を促進して標識体が過凝集するために毛細管現象における展開不良を起こしたり、抗原濃度に応じた抗原抗体反応のシグナル検出が不可能にさえならなければ、いずれの組成の抽出液を用いても良い。
このような作用を有する検体抽出液としては、例えば、精製水、生理食塩水、低濃度の緩衝液、例えば１０～２０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸緩衝液や１０～２０ｍｍｏｌ／Ｌ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液、１０～２０ｍｍｏｌ／Ｌ Ｂｉｓ－Ｔｒｉｓ緩衝液が挙げられる。また、サンプルのストリップでの展開速度を制御する目的で、これらの抽出液に界面活性剤を添加することも可能である。
また、本発明の検体抽出液には、前述のとおり、検出対象物とこれに対する特異的抗体の反応以外の交差反応を抑える能力を有する緩衝液を含ませておくこともできる。この場合、上記緩衝液に換えて本発明の特定の緩衝液を検体抽出液として用いる。
本発明において、サンプル中の検出対象物の濃度に応じて、サンプルの抽出が必要な場合は、検体抽出液を用いることがある。検体抽出液は、抗原抗体反応を著しく阻害したり、または反対に著しく反応を促進して標識体が過凝集するために毛細管現象における展開不良を起こしたり、抗原濃度に応じた抗原抗体反応のシグナル検出が不可能にさえならなければ、いずれの組成の抽出液を用いても良い。
このような作用を有する検体抽出液としては、例えば、精製水、生理食塩水、低濃度の緩衝液、例えば１０～２０ｍｍｏｌ／Ｌリン酸緩衝液や１０～２０ｍｍｏｌ／Ｌ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液、１０～２０ｍｍｏｌ／Ｌ Ｂｉｓ－Ｔｒｉｓ緩衝液が挙げられる。また、サンプルのストリップでの展開速度を制御する目的で、これらの抽出液に界面活性剤を添加することも可能である。
また、本発明の検体抽出液には、前述のとおり、検出対象物とこれに対する特異的抗体の反応以外の交差反応を抑える能力を有する緩衝液を含ませておくこともできる。この場合、上記緩衝液に換えて本発明の特定の緩衝液を検体抽出液として用いる。
（展開液）
本発明において、展開液とは、イムノクロマトグラフィー用テストストリップ上を展開する検体液及びコンジュゲートパッド成分の混合溶液をいう。テストストリップがサンプルパッドを備える場合には、サンプルパッド成分を含んでもよく、さらに、抗体固相化メンブレン成分を含んでもよい。
また、本発明の展開液には、上記本発明の特定の緩衝液を含ませることもできる。この場合、ｐＨおよび濃度は上述の特定の緩衝液と同じ範囲である。すなわち、ｐＨが５．０～６．７の緩衝液であり、好ましくは、５．０～６．５、より好ましくは５．５～６．５、更により好ましくは５．５～６．０である。展開液中の緩衝液中の濃度は、１０ｍｍｏｌ／Ｌ以上、好適には２０～８０ｍｍｏｌ／Ｌ含まれていることが望ましい。
本発明において、展開液とは、イムノクロマトグラフィー用テストストリップ上を展開する検体液及びコンジュゲートパッド成分の混合溶液をいう。テストストリップがサンプルパッドを備える場合には、サンプルパッド成分を含んでもよく、さらに、抗体固相化メンブレン成分を含んでもよい。
また、本発明の展開液には、上記本発明の特定の緩衝液を含ませることもできる。この場合、ｐＨおよび濃度は上述の特定の緩衝液と同じ範囲である。すなわち、ｐＨが５．０～６．７の緩衝液であり、好ましくは、５．０～６．５、より好ましくは５．５～６．５、更により好ましくは５．５～６．０である。展開液中の緩衝液中の濃度は、１０ｍｍｏｌ／Ｌ以上、好適には２０～８０ｍｍｏｌ／Ｌ含まれていることが望ましい。
（サンプルパッド）
本発明において、「サンプルパッド」とは、サンプルを受け入れるサンプル供給部を担う部位であり、パッドに成型された状態で液体のサンプルを吸収し、液体と検出対象物の成分とが通り抜けることができる物質及び形態であればいずれのものをも含む。
その場合、サンプルパッドの少なくとも一部に含まれていればよく、全部に含ませておくこともできる。
また、本発明のサンプルパッドには、前述のとおり、本発明の緩衝液を含ませておくこともできる。その場合、サンプルパッドの少なくとも一部に含まれていればよく、全部に含ませることもできる。
サンプルパッドに適した材料の具体例として、ガラス繊維（グラスファイバー）、アクリル繊維、親水性ポリエチレン材、乾燥紙、紙パルプ、織物等が含まれるが、これらに限定されない。好適には、グラスファイバー製パッドが用いられる。該サンプルパッドには、後述するコンジュゲートパッドの機能を併せ持たせることも出来る。また、サンプルパッドには、本発明の目的を逸脱せず、反応系に影響のない範囲において、必要に応じ通常使用されるブロッキング試薬を含ませることもできる。
本発明において、「サンプルパッド」とは、サンプルを受け入れるサンプル供給部を担う部位であり、パッドに成型された状態で液体のサンプルを吸収し、液体と検出対象物の成分とが通り抜けることができる物質及び形態であればいずれのものをも含む。
その場合、サンプルパッドの少なくとも一部に含まれていればよく、全部に含ませておくこともできる。
また、本発明のサンプルパッドには、前述のとおり、本発明の緩衝液を含ませておくこともできる。その場合、サンプルパッドの少なくとも一部に含まれていればよく、全部に含ませることもできる。
サンプルパッドに適した材料の具体例として、ガラス繊維（グラスファイバー）、アクリル繊維、親水性ポリエチレン材、乾燥紙、紙パルプ、織物等が含まれるが、これらに限定されない。好適には、グラスファイバー製パッドが用いられる。該サンプルパッドには、後述するコンジュゲートパッドの機能を併せ持たせることも出来る。また、サンプルパッドには、本発明の目的を逸脱せず、反応系に影響のない範囲において、必要に応じ通常使用されるブロッキング試薬を含ませることもできる。
（コンジュゲートパッド）
本発明において、「コンジュゲートパッド」とは、検出対象物と特異的に反応する検出試薬を後述のコンジュゲートパッドに適した材料に含浸させて乾燥させたものである。コンジュゲートパッドは、サンプルが該コンジュゲートパッドを通過する際、検出試薬と検出対象物とが複合体を形成する機能を有する。該コンジュゲートパッドは、それ単独で抗体固定化メンブレンに接するように配置されていてもよい。あるいは、前記サンプルパッドと接触して配置され、毛細管流によってサンプルパッドを通過したサンプルを受入れ、引き続き該サンプルを毛細管流によって前記サンプルパッドとの接触面とは異なる面で接触する別のパッド（以下、「３ｒｄ Ｐａｄ」ということがある）に移送するように配置してもよい。なお、サンプルパッド、コンジュゲートパッドの一種以上の部位の選択や、選択された部位を抗体固定化メンブレンにどのように配置するかは、適宜に変更可能である。
また、本発明のコンジュゲートパッドには、前述のとおり、緩衝液を含ませておくこともできる。その場合、コンジュゲートパッドの少なくともコンジュゲートが固定化されている部位の上流を含む一部に含まれていればよく、全部に含ませることもできる。
該コンジュゲートパッドに適した材料として、紙、セルロース混合物、ニトロセルロース、ポリエステル、アクリロニトリルコポリマー、ガラス繊維またはレーヨンのような不織繊維が挙げられるが、これらに限定されない。好適には、グラスファイバー製パッドが用いられる。
該コンジュゲートパッドには、必要に応じて、イムノクロマトグラフィーの信頼性を担保するための「コントロール試薬」、例えば、標識体で標識されたサンプル成分とは反応しない抗体や標識体で標識されたＫＬＨ（スカシ貝ヘモシアニン）などの高抗原性タンパク質などを含み得る。これらのコントロール試薬は、サンプル中に存在する可能性が考えられない成分（物質）であり、適宜に選択可能である。
本発明において、「コンジュゲートパッド」とは、検出対象物と特異的に反応する検出試薬を後述のコンジュゲートパッドに適した材料に含浸させて乾燥させたものである。コンジュゲートパッドは、サンプルが該コンジュゲートパッドを通過する際、検出試薬と検出対象物とが複合体を形成する機能を有する。該コンジュゲートパッドは、それ単独で抗体固定化メンブレンに接するように配置されていてもよい。あるいは、前記サンプルパッドと接触して配置され、毛細管流によってサンプルパッドを通過したサンプルを受入れ、引き続き該サンプルを毛細管流によって前記サンプルパッドとの接触面とは異なる面で接触する別のパッド（以下、「３ｒｄ Ｐａｄ」ということがある）に移送するように配置してもよい。なお、サンプルパッド、コンジュゲートパッドの一種以上の部位の選択や、選択された部位を抗体固定化メンブレンにどのように配置するかは、適宜に変更可能である。
また、本発明のコンジュゲートパッドには、前述のとおり、緩衝液を含ませておくこともできる。その場合、コンジュゲートパッドの少なくともコンジュゲートが固定化されている部位の上流を含む一部に含まれていればよく、全部に含ませることもできる。
該コンジュゲートパッドに適した材料として、紙、セルロース混合物、ニトロセルロース、ポリエステル、アクリロニトリルコポリマー、ガラス繊維またはレーヨンのような不織繊維が挙げられるが、これらに限定されない。好適には、グラスファイバー製パッドが用いられる。
該コンジュゲートパッドには、必要に応じて、イムノクロマトグラフィーの信頼性を担保するための「コントロール試薬」、例えば、標識体で標識されたサンプル成分とは反応しない抗体や標識体で標識されたＫＬＨ（スカシ貝ヘモシアニン）などの高抗原性タンパク質などを含み得る。これらのコントロール試薬は、サンプル中に存在する可能性が考えられない成分（物質）であり、適宜に選択可能である。
（サードパッド）
本発明において、サードパッドとは、サンプルと検出試薬との反応成分のうち、検出対象物の検出に不要な成分を除去し、反応に必要な成分が、抗体が固定化された不溶性メンブレンをスムーズに展開できるようにすることを目的として配置させることができる。
例えば、血球や不溶性の血球破砕物などは、検出に不要な成分として除去されることが望ましい。また、このサードパッドには、抗原抗体反応により生成する凝集体のうち、抗体固定化メンブレンに移動し、スムーズに展開できない位に大きくなった凝集体をあらかじめ除去するという付加的な効果を併せ持たせることも可能である。サードパッドとしては、液体と検出対象の成分とが通り抜けることができるどんな物質及び形態をも含む。
具体例として、ガラス繊維（グラスファイバー）、アクリル繊維、親水性ポリエチレン材、乾燥紙、紙パルプ、織物等が含まれるが、これらに限定されない。
また、本発明のサードパッドには、前述のとおり、緩衝液を含ませておくこともできる。その場合、サードパッドの少なくとも一部に含まれていればよく、全部に含ませることもできる。
本発明において、サードパッドとは、サンプルと検出試薬との反応成分のうち、検出対象物の検出に不要な成分を除去し、反応に必要な成分が、抗体が固定化された不溶性メンブレンをスムーズに展開できるようにすることを目的として配置させることができる。
例えば、血球や不溶性の血球破砕物などは、検出に不要な成分として除去されることが望ましい。また、このサードパッドには、抗原抗体反応により生成する凝集体のうち、抗体固定化メンブレンに移動し、スムーズに展開できない位に大きくなった凝集体をあらかじめ除去するという付加的な効果を併せ持たせることも可能である。サードパッドとしては、液体と検出対象の成分とが通り抜けることができるどんな物質及び形態をも含む。
具体例として、ガラス繊維（グラスファイバー）、アクリル繊維、親水性ポリエチレン材、乾燥紙、紙パルプ、織物等が含まれるが、これらに限定されない。
また、本発明のサードパッドには、前述のとおり、緩衝液を含ませておくこともできる。その場合、サードパッドの少なくとも一部に含まれていればよく、全部に含ませることもできる。
（抗体の不溶性メンブレンへの固定化）
本発明のイムノクロマト試薬における検出対象物に対する抗体の不溶性メンブレンへの固定化は、一般に周知の方法で実施することができる。例えば、フロースルー式の場合、上記の抗体を所定の濃度に調製し、その液を一定量、点あるいは＋など特定のシンボル状に、不溶性メンブレンに塗布する。またこの際、イムノクロマトグラフィーの信頼性を担保するため、コンジュゲートと結合できるタンパク質あるいは化合物を、検出対象物に対する抗体とは異なる位置に固定化して「コントロールライン」とすることが一般的である。また、前記のコントロール試薬に対する抗体を検出対象物に対する抗体とは異なる位置に固定化して「コントロールライン」とすることもできる。
本発明のイムノクロマト試薬における検出対象物に対する抗体の不溶性メンブレンへの固定化は、一般に周知の方法で実施することができる。例えば、フロースルー式の場合、上記の抗体を所定の濃度に調製し、その液を一定量、点あるいは＋など特定のシンボル状に、不溶性メンブレンに塗布する。またこの際、イムノクロマトグラフィーの信頼性を担保するため、コンジュゲートと結合できるタンパク質あるいは化合物を、検出対象物に対する抗体とは異なる位置に固定化して「コントロールライン」とすることが一般的である。また、前記のコントロール試薬に対する抗体を検出対象物に対する抗体とは異なる位置に固定化して「コントロールライン」とすることもできる。
ラテラルフロー式の場合には、上記の抗体を所定の濃度に調製しその液をノズルから一定の速度で吐出しながら水平方向に移動させることのできる機構を有する装置などを用いて、ライン状に不溶性メンブレンに塗布することにより行われる。この際、抗体の濃度は０．１～５ｍｇ／ｍＬが好ましく、０．５～３ｍｇ／ｍＬがさらに好適である。また、抗体の不溶性メンブレンの固定化量は、フロースルー式の場合には不溶性メンブレンに滴下する塗付量を調節することによって最適化でき、ラテラルフロー式の場合には上記の装置のノズルからの吐出速度を調節することによって最適化できる。特に、ラテラルフロー式の場合、０．５～２μＬ／ｃｍが好適である。なお、本発明において、「フロースルー式メンブレンアッセイ」という場合は、サンプル液等が不溶性メンブレンに対して垂直に通過するように展開する方式を指し、「ラテラルフロー式メンブレンアッセイ」という場合は、サンプル液等が不溶性メンブレンに対して並行方向に移動するように展開する方式を指す。
また、本発明において、対象物に対する抗体の不溶性メンブレンへの塗付位置については、ラテラルフロー式の場合、コンジュゲートパッドから、上記検出試薬が毛細管現象によって展開し、それぞれの抗体が塗付されたラインを順に通過するように配置されれば良い。好ましくは検出対象物に対する抗体の塗付されたラインが上流にあり、コントロール抗体の塗付されたラインはその下流に位置するように配置するのが好ましい。この際、それぞれのライン間の距離は標識体のシグナル検出が可能であるように十分の距離をとることが望ましい。フロースルー式の場合にも、対象物に対する抗体の塗付位置は標識体のシグナル検出が可能であるように配置されていれば良い。
上記の不溶性メンブレンへ塗付する抗体液は、通常所定の緩衝液を用いて調製することができる。その緩衝液の種類としては、リン酸緩衝液、Ｔｒｉｓ緩衝液、グッド緩衝液など通常使用される緩衝液を挙げることができる。緩衝液のｐＨは、６．０～１１の範囲が好ましく、使用する抗体の性質に応じ適宜設定すれば良い。例えば、後述の抗ｆＦＮモノクローナル抗体ではｐＨ７．２の緩衝液が使用できる。
緩衝液には、さらにＮａＣｌなどの塩類、スクロースなどの安定剤や保存剤、プロクリンなどの防腐剤等を含んでもよい。塩類はＮａＣｌなどのようにイオン強度の調整のために含ませるもののほか、水酸化ナトリウムなど緩衝液のｐＨを調整する工程で添加するようになるものも含まれる。不溶性メンブレンに抗体を固定化した後、さらに、通常使用されるブロッキング剤を溶液あるいは蒸気状にして抗体固定化部位以外を被覆し、ブロッキングを行うこともできる。本明細書では、上記のように抗体が固定化された不溶性メンブレンを「抗体固定化メンブレン」ということがある。
緩衝液には、さらにＮａＣｌなどの塩類、スクロースなどの安定剤や保存剤、プロクリンなどの防腐剤等を含んでもよい。塩類はＮａＣｌなどのようにイオン強度の調整のために含ませるもののほか、水酸化ナトリウムなど緩衝液のｐＨを調整する工程で添加するようになるものも含まれる。不溶性メンブレンに抗体を固定化した後、さらに、通常使用されるブロッキング剤を溶液あるいは蒸気状にして抗体固定化部位以外を被覆し、ブロッキングを行うこともできる。本明細書では、上記のように抗体が固定化された不溶性メンブレンを「抗体固定化メンブレン」ということがある。
（不溶性メンブレン）
本発明において、不溶性メンブレン（以下、単にメンブレンと記載することがある）としては、任意の材質のものが使用できる。例えば、ポリエチレン、ポリエチレンテレフタレート、ナイロン類、ガラス、セルロースやセルロース誘導体などの多糖類あるいはセラミックス等が挙げられるがこれらに限定されない。具体的には、メルク社、東洋濾紙社、ワットマン社などより販売されているガラス繊維ろ紙やセルロースろ紙などをあげることができる。また、この不溶性メンブレンの孔径と構造を適宜選択することにより、金コロイド標識抗体と対象物との免疫複合体がメンブレン中を流れる速度を制御することが可能である。メンブレン中を流れる速度の制御により、メンブレンに固定化された上記抗体に結合する標識抗体量を調節することができるため、メンブレンの孔径と構造は、本発明のイムノクロマトグラフィー用テストストリップのほかの構成材料との組み合わせを考慮して最適化することが望ましい。
また、本発明の不溶性メンブレンには、前述のとおり、緩衝液を含ませておくこともできる。その場合、不溶性メンブレンのうち抗体が固定化された検出部位より上流の少なくとも一部に含まれていればよく、全部に含ませることもできる。
本発明において、不溶性メンブレン（以下、単にメンブレンと記載することがある）としては、任意の材質のものが使用できる。例えば、ポリエチレン、ポリエチレンテレフタレート、ナイロン類、ガラス、セルロースやセルロース誘導体などの多糖類あるいはセラミックス等が挙げられるがこれらに限定されない。具体的には、メルク社、東洋濾紙社、ワットマン社などより販売されているガラス繊維ろ紙やセルロースろ紙などをあげることができる。また、この不溶性メンブレンの孔径と構造を適宜選択することにより、金コロイド標識抗体と対象物との免疫複合体がメンブレン中を流れる速度を制御することが可能である。メンブレン中を流れる速度の制御により、メンブレンに固定化された上記抗体に結合する標識抗体量を調節することができるため、メンブレンの孔径と構造は、本発明のイムノクロマトグラフィー用テストストリップのほかの構成材料との組み合わせを考慮して最適化することが望ましい。
また、本発明の不溶性メンブレンには、前述のとおり、緩衝液を含ませておくこともできる。その場合、不溶性メンブレンのうち抗体が固定化された検出部位より上流の少なくとも一部に含まれていればよく、全部に含ませることもできる。
（吸収パッド）
本発明において、吸収パッドとは、不溶性メンブレンを移動・通過したサンプルを吸収することにより、サンプルの展開を制御する液体吸収性を有する部位である。ラテラルフロー式においては、ストリップ構成の最下流に設ければよく、フロースルー式においては、例えば抗体固定化メンブレンの下部に設ければよい。該吸収パッドとしては、例えば、ろ紙を用いることができるが、これに限定されない。
本発明において、吸収パッドとは、不溶性メンブレンを移動・通過したサンプルを吸収することにより、サンプルの展開を制御する液体吸収性を有する部位である。ラテラルフロー式においては、ストリップ構成の最下流に設ければよく、フロースルー式においては、例えば抗体固定化メンブレンの下部に設ければよい。該吸収パッドとしては、例えば、ろ紙を用いることができるが、これに限定されない。
（検出デバイス）
本発明のイムノクロマトグラフィー用テストストリップは、ストリップの大きさや、サンプルの添加方法・位置、抗体固定化メンブレンにおける抗体の固定化位置、シグナルの検出方法などを考慮した適当な容器（ハウジング）に格納・搭載して使用することができ、このように格納・搭載された状態を「デバイス」という。
本発明のイムノクロマトグラフィー用テストストリップは、ストリップの大きさや、サンプルの添加方法・位置、抗体固定化メンブレンにおける抗体の固定化位置、シグナルの検出方法などを考慮した適当な容器（ハウジング）に格納・搭載して使用することができ、このように格納・搭載された状態を「デバイス」という。
（その他）
本明細書において、「不溶性メンブレン」を「固相」、抗原や抗体を不溶性メンブレンに物理的あるいは化学的に担持させることあるいは担持させた状態を「固定」、「固定化」、「固相化」、「感作」、「吸着」と表現することがある。
本明細書において、「不溶性メンブレン」を「固相」、抗原や抗体を不溶性メンブレンに物理的あるいは化学的に担持させることあるいは担持させた状態を「固定」、「固定化」、「固相化」、「感作」、「吸着」と表現することがある。
（本発明で用いられる抗体）
本発明に用いられる検出対象物に対する抗体は、検出対象物に対して特異的に反応する抗体であれば、作製する方法によって何ら限定されるものではなく、ポリクローナル抗体であってもモノクローナル抗体であってもよい。一般的に当該抗体を産生するハイブリドーマは、ＫｏｈｌｅｒとＭｉｌｓｔｅｉｎの方法（Ｎａｔｕｒｅ、第２５６巻４９５頁（１９７５年）参照）に準じ、検出対象物を免疫原として免疫した動物の脾臓細胞と同種のミエローマ細胞（骨髄腫細胞）とを細胞融合して作製することができる。
ここで、いわゆるサンドイッチの形成により検出対象物を検出する測定法において用いられる抗体がモノクローナル抗体の場合、コンジュゲートに含まれる標識物質で標識される抗体（第一の抗体）と展開部に固定化される不溶性メンブレン固定化用抗体（第二の抗体）の関係は、第二の抗体のエピトープは第一の抗体と異なるものが用いられる。第一の抗体又は第二の抗体のいずれか一方が抗検出対象物質抗体であり、もう一方が検出対象物に結合する抗体であることが望ましく、さらに望ましくは第一の抗体が検出対象物に結合する抗体であり、第二の抗体が抗検出対象物抗体である。検出対象物に結合する抗体とは、検出対象物に結合する抗体であればよく、検体に混入する可能性のある検出対象物に類似する抗原に対して結合するものであってもよい。
後述する実施例１では検出対象のタンパク質としてｆＦＮ、これに類似する抗原として血漿ＦＮを想定し、ｆＦＮに特異的に結合し血漿ＦＮには結合しない抗ｆＦＮモノクローナル抗体（以下、抗ｆＦＮモノクローナル抗体という）および、ｆＦＮにも血漿ＦＮにも結合する抗フィブロネクチン抗体（以下、抗ＦＮ抗体という）を使用している。
ｆＦＮと血漿ＦＮは、同じアミノ酸配列を有し、糖鎖含有量のみが異なる糖タンパク質である。ここで、ｆＦＮを含む検体である妊婦の膣分泌物等の採取には、血液が混入する可能性があることから、検体に血漿ＦＮとｆＦＮの両方が含まれることになる。ｆＦＮに特異的な抗体は糖鎖部分の違いを認識する抗体のため、２種類得ることが難しくこのため、サンドイッチイムノクロマトに利用する場合には、片方が抗癌胎児性モノクローナル抗体であり、もう片方が抗ＦＮモノクローナル抗体の２種類の抗体で測定系を構築する必要がある場合がある。
本発明で使用した抗ｆＦＮモノクローナル抗体は、ｆＦＮ特有の糖鎖結合部位を含む糖鎖ペプチドを合成し、カルボジイミド法によりトランスフェリンまたはＯＶＡに結合したものを免疫原としてフットパッド免疫と皮下免疫により得られたｆＦＮに特異的に反応するモノクローナル抗体である。また、本発明で使用した抗ＦＮモノクローナル抗体は、血漿ＦＮの全長タンパク質を免疫原として同様に免疫することにより得られた癌胎児性ＦＮおよび血漿由来ＦＮのいずれにも反応するモノクローナル抗体である。
本発明はこれらに限らず、市販の抗ＦＮモノクローナル抗体および抗ｆＦＮモノクローナル抗体を用いてもよい。市販の抗ＦＮモノクローナル抗体の例としては、Anti-Human Fibronectin, Monoclonal (Clone FN12-8)、Anti-Human Fibronectin, Monoclonal (Clone FN30-8)（タカラバイオ社製）、が挙げられる（尚、モノクローナル抗体は便宜上それぞれを産生するハイブリドーマのクローン名で表すことがある。以下同じ）。
癌胎児性フィブロネクチンを検出する場合、第一の抗体又は第二の抗体のいずれか一方が抗ｆＦＮモノクローナル抗体であり、もう一方が抗ＦＮモノクローナル抗体であることが望ましく、さらに望ましくは第一の抗体が抗ＦＮモノクローナル抗体であり、第二の抗体が抗ｆＦＮモノクローナル抗体である。
本発明に用いられる検出対象物に対する抗体は、検出対象物に対して特異的に反応する抗体であれば、作製する方法によって何ら限定されるものではなく、ポリクローナル抗体であってもモノクローナル抗体であってもよい。一般的に当該抗体を産生するハイブリドーマは、ＫｏｈｌｅｒとＭｉｌｓｔｅｉｎの方法（Ｎａｔｕｒｅ、第２５６巻４９５頁（１９７５年）参照）に準じ、検出対象物を免疫原として免疫した動物の脾臓細胞と同種のミエローマ細胞（骨髄腫細胞）とを細胞融合して作製することができる。
ここで、いわゆるサンドイッチの形成により検出対象物を検出する測定法において用いられる抗体がモノクローナル抗体の場合、コンジュゲートに含まれる標識物質で標識される抗体（第一の抗体）と展開部に固定化される不溶性メンブレン固定化用抗体（第二の抗体）の関係は、第二の抗体のエピトープは第一の抗体と異なるものが用いられる。第一の抗体又は第二の抗体のいずれか一方が抗検出対象物質抗体であり、もう一方が検出対象物に結合する抗体であることが望ましく、さらに望ましくは第一の抗体が検出対象物に結合する抗体であり、第二の抗体が抗検出対象物抗体である。検出対象物に結合する抗体とは、検出対象物に結合する抗体であればよく、検体に混入する可能性のある検出対象物に類似する抗原に対して結合するものであってもよい。
後述する実施例１では検出対象のタンパク質としてｆＦＮ、これに類似する抗原として血漿ＦＮを想定し、ｆＦＮに特異的に結合し血漿ＦＮには結合しない抗ｆＦＮモノクローナル抗体（以下、抗ｆＦＮモノクローナル抗体という）および、ｆＦＮにも血漿ＦＮにも結合する抗フィブロネクチン抗体（以下、抗ＦＮ抗体という）を使用している。
ｆＦＮと血漿ＦＮは、同じアミノ酸配列を有し、糖鎖含有量のみが異なる糖タンパク質である。ここで、ｆＦＮを含む検体である妊婦の膣分泌物等の採取には、血液が混入する可能性があることから、検体に血漿ＦＮとｆＦＮの両方が含まれることになる。ｆＦＮに特異的な抗体は糖鎖部分の違いを認識する抗体のため、２種類得ることが難しくこのため、サンドイッチイムノクロマトに利用する場合には、片方が抗癌胎児性モノクローナル抗体であり、もう片方が抗ＦＮモノクローナル抗体の２種類の抗体で測定系を構築する必要がある場合がある。
本発明で使用した抗ｆＦＮモノクローナル抗体は、ｆＦＮ特有の糖鎖結合部位を含む糖鎖ペプチドを合成し、カルボジイミド法によりトランスフェリンまたはＯＶＡに結合したものを免疫原としてフットパッド免疫と皮下免疫により得られたｆＦＮに特異的に反応するモノクローナル抗体である。また、本発明で使用した抗ＦＮモノクローナル抗体は、血漿ＦＮの全長タンパク質を免疫原として同様に免疫することにより得られた癌胎児性ＦＮおよび血漿由来ＦＮのいずれにも反応するモノクローナル抗体である。
本発明はこれらに限らず、市販の抗ＦＮモノクローナル抗体および抗ｆＦＮモノクローナル抗体を用いてもよい。市販の抗ＦＮモノクローナル抗体の例としては、Anti-Human Fibronectin, Monoclonal (Clone FN12-8)、Anti-Human Fibronectin, Monoclonal (Clone FN30-8)（タカラバイオ社製）、が挙げられる（尚、モノクローナル抗体は便宜上それぞれを産生するハイブリドーマのクローン名で表すことがある。以下同じ）。
癌胎児性フィブロネクチンを検出する場合、第一の抗体又は第二の抗体のいずれか一方が抗ｆＦＮモノクローナル抗体であり、もう一方が抗ＦＮモノクローナル抗体であることが望ましく、さらに望ましくは第一の抗体が抗ＦＮモノクローナル抗体であり、第二の抗体が抗ｆＦＮモノクローナル抗体である。
（抗ｆＦＮモノクローナル抗体、抗ＦＮモノクローナル抗体の調製例）
以下の試験に用いた抗ｆＦＮモノクローナル抗体（Ｃｌｏｎｅ＃９０２０４）は、ｆＦＮペプチド断片結合ＯＶＡまたｆＦＮペプチド断片結合トランスフェリンをマウスに免疫することにより、また、抗ＦＮモノクローナル抗体（Ｃｌｏｎｅ＃９０４１２）は、血漿フィブロネクチンの全長タンパク質をマウスに免疫することにより、当業者がモノクローナル抗体を製造するために通常行う方法（ＫｏｈｌｅｒとＭｉｌｓｔｅｉｎの方法（Ｎａｔｕｒｅ、第２５６巻４９５頁（１９７５年）等）により得られた。
以下の試験に用いた抗ｆＦＮモノクローナル抗体（Ｃｌｏｎｅ＃９０２０４）は、ｆＦＮペプチド断片結合ＯＶＡまたｆＦＮペプチド断片結合トランスフェリンをマウスに免疫することにより、また、抗ＦＮモノクローナル抗体（Ｃｌｏｎｅ＃９０４１２）は、血漿フィブロネクチンの全長タンパク質をマウスに免疫することにより、当業者がモノクローナル抗体を製造するために通常行う方法（ＫｏｈｌｅｒとＭｉｌｓｔｅｉｎの方法（Ｎａｔｕｒｅ、第２５６巻４９５頁（１９７５年）等）により得られた。
（測定）
金コロイドに由来するシグナルを定量する方法としては、公知の方法に従って行えばよく、吸光度あるいは反射光強度を測定すればよい。この吸光度もしくは反射光強度の変化量を既知濃度のサンプルの検量線に外挿して、対象物の濃度を測定することもできる。
金コロイドに由来するシグナルを定量する方法としては、公知の方法に従って行えばよく、吸光度あるいは反射光強度を測定すればよい。この吸光度もしくは反射光強度の変化量を既知濃度のサンプルの検量線に外挿して、対象物の濃度を測定することもできる。
（キット）
イムノクロマトテストストリップと検体抽出液、使用説明書、などのいずれか一以上と組み合わせてキットとして使用することもできる。この場合、本発明の緩衝液成分は、イムノクロマトテストストリップのコンジュゲートパッド、サンプルパッド、検体抽出液のいずれか1以上にふくまれていればよい。
イムノクロマトテストストリップと検体抽出液、使用説明書、などのいずれか一以上と組み合わせてキットとして使用することもできる。この場合、本発明の緩衝液成分は、イムノクロマトテストストリップのコンジュゲートパッド、サンプルパッド、検体抽出液のいずれか1以上にふくまれていればよい。
（イムノクロマトグラフィーを利用した検出方法）
本発明のイムノクロマトグラフィーを利用した検出方法は、少なくとも以下の（Ａ）～（Ｃ）の工程を有する方法であるが、以下、検出対象物をｆＦＮ、類似抗原を血漿ＦＮとした場合を例に典型的な検出方法を説明する。
（Ａ）少なくともサンプル供給部、展開部および検出部とを備えた多孔質体からなるメンブレンを有し、
展開部の一部には、金コロイドで標識された抗ＦＮ抗体（コンジュゲート）が溶出可能に保持され、さらに展開部の一部であってコンジュゲート保持部分より下流側に、抗ｆＦＮ抗体が固定化されている検出部を有するテストストリップのサンプル供給部にサンプルを供給する工程
（Ｂ）サンプル（検体）を前記コンジュゲートと接触させる工程であって、サンプル中の血漿ＦＮと抗ｆＦＮ抗体との交差反応を抑制する能力を有する緩衝液の存在下に行う工程
（Ｃ）（Ｂ）の工程により得られた、サンプル成分中のｆＦＮと金コロイドで標識された抗ＦＮ抗体（コンジュゲート）の複合体、を抗ｆＦＮ抗体が固定化されている検出部において検出する工程
本発明のイムノクロマトグラフィーを利用した検出方法は、少なくとも以下の（Ａ）～（Ｃ）の工程を有する方法であるが、以下、検出対象物をｆＦＮ、類似抗原を血漿ＦＮとした場合を例に典型的な検出方法を説明する。
（Ａ）少なくともサンプル供給部、展開部および検出部とを備えた多孔質体からなるメンブレンを有し、
展開部の一部には、金コロイドで標識された抗ＦＮ抗体（コンジュゲート）が溶出可能に保持され、さらに展開部の一部であってコンジュゲート保持部分より下流側に、抗ｆＦＮ抗体が固定化されている検出部を有するテストストリップのサンプル供給部にサンプルを供給する工程
（Ｂ）サンプル（検体）を前記コンジュゲートと接触させる工程であって、サンプル中の血漿ＦＮと抗ｆＦＮ抗体との交差反応を抑制する能力を有する緩衝液の存在下に行う工程
（Ｃ）（Ｂ）の工程により得られた、サンプル成分中のｆＦＮと金コロイドで標識された抗ＦＮ抗体（コンジュゲート）の複合体、を抗ｆＦＮ抗体が固定化されている検出部において検出する工程
〔試験例１〕本発明のイムノクロマトグラフィー用テストストリップの作製
１．金コロイド標識抗ＦＮ抗体溶液調製
以下の手順で行った。
(i)５０ｎｍ金コロイド原液を精製水にて１．０ ＯＤとなるよう希釈し、０．２Ｍ炭酸カリウム水溶液でｐＨ８．５に調整した。
(ii)抗血漿ＦＮマウスモノクローナル抗体（ｃｌｏｎｅ＃９０４１２）を８０μｇ／ｍＬ、５ｍＭホウ酸となるように希釈した。
(iii)ＢＳＡを精製水にて１０％溶液となるよう溶解した。
(iv)２０ｍＬの(i)に、攪拌しながら１ｍＬの(ii)を添加し、１０分間攪拌した。
(v)(iv)に攪拌しながら２ｍＬの(iii)を添加し、５分間攪拌した。
(vi)（v）を１０°Ｃ、１０，０００ｒｐｍで４５分間遠心し、上清を吸引除去後１ｍＬのコンジュゲート希釈液（Buffer Conjugate Dilution、SCRIPPS社）で沈殿を懸濁し、金コロイド標識抗ＦＮ抗体溶液（抗ＦＮ抗体コンジュゲート）を得た。
(vii)(vi)を４５°Ｃで１８時間加温した。
１．金コロイド標識抗ＦＮ抗体溶液調製
以下の手順で行った。
(i)５０ｎｍ金コロイド原液を精製水にて１．０ ＯＤとなるよう希釈し、０．２Ｍ炭酸カリウム水溶液でｐＨ８．５に調整した。
(ii)抗血漿ＦＮマウスモノクローナル抗体（ｃｌｏｎｅ＃９０４１２）を８０μｇ／ｍＬ、５ｍＭホウ酸となるように希釈した。
(iii)ＢＳＡを精製水にて１０％溶液となるよう溶解した。
(iv)２０ｍＬの(i)に、攪拌しながら１ｍＬの(ii)を添加し、１０分間攪拌した。
(v)(iv)に攪拌しながら２ｍＬの(iii)を添加し、５分間攪拌した。
(vi)（v）を１０°Ｃ、１０，０００ｒｐｍで４５分間遠心し、上清を吸引除去後１ｍＬのコンジュゲート希釈液（Buffer Conjugate Dilution、SCRIPPS社）で沈殿を懸濁し、金コロイド標識抗ＦＮ抗体溶液（抗ＦＮ抗体コンジュゲート）を得た。
(vii)(vi)を４５°Ｃで１８時間加温した。
２．コンジュゲートパッド作製
上記１．で調製した金コロイド標識抗FN抗体溶液を３．７５ ＯＤ／ｍＬとなるように、それぞれ、２．０％ＢＳＡ、２．４％ラクトース溶液を含む２０ｍＭリン酸一ナトリウム水溶液と混合してコンジュゲート溶液（ｐＨ７）を作製し、クッキーシート上でグラスファイバー製パッドに６６．９３μＬ／ｃｍ２の割合で浸透させ、７０°Ｃのドライオーブンで４５分間乾燥したものをコンジュゲートパッドとして用いた。
上記１．で調製した金コロイド標識抗FN抗体溶液を３．７５ ＯＤ／ｍＬとなるように、それぞれ、２．０％ＢＳＡ、２．４％ラクトース溶液を含む２０ｍＭリン酸一ナトリウム水溶液と混合してコンジュゲート溶液（ｐＨ７）を作製し、クッキーシート上でグラスファイバー製パッドに６６．９３μＬ／ｃｍ２の割合で浸透させ、７０°Ｃのドライオーブンで４５分間乾燥したものをコンジュゲートパッドとして用いた。
３．サンプルパッド作製
２０ｍＭリン酸一ナトリウム水溶液（ｐＨ７）をクッキーシート上でグラスファイバー製パッドに６２．９９μＬ／ｃｍ２の割合で浸透させ、７０°Ｃのドライオーブンで４５分間乾燥したものをサンプルパッドとして用いた。
２０ｍＭリン酸一ナトリウム水溶液（ｐＨ７）をクッキーシート上でグラスファイバー製パッドに６２．９９μＬ／ｃｍ２の割合で浸透させ、７０°Ｃのドライオーブンで４５分間乾燥したものをサンプルパッドとして用いた。
４．抗ｆＦＮ抗体、抗マウスＩｇＧ抗体メンブレン塗布液調製
（ｉ）抗ｆＦＮ抗体メンブレン塗布液調製
抗ｆＦＮマウスモノクローナル抗体（ｃｌｏｎｅ＃９０２０４）を抗体濃度２．０ｍｇ／ｍＬとなるように２．５％ Ｓｕｃｒｏｓｅを含む１０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．２）で希釈し、抗ｆＦＮ抗体メンブレン塗布液とした。
（ｉｉ）抗マウスＩｇＧ抗体メンブレン塗布液調製
抗マウスＩｇＧヤギポリクローナル抗体(Jackson Immuno Research Laboratories) を上記（ｉ）と同様に、抗体濃度０．５ｍｇ／ｍＬとなるように２．５％Ｓｕｃｒｏｓｅを含む１０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．２）で希釈し、抗マウスＩｇＧヤギポリクローナル抗体メンブレン塗布液とした。
（ｉ）抗ｆＦＮ抗体メンブレン塗布液調製
抗ｆＦＮマウスモノクローナル抗体（ｃｌｏｎｅ＃９０２０４）を抗体濃度２．０ｍｇ／ｍＬとなるように２．５％ Ｓｕｃｒｏｓｅを含む１０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．２）で希釈し、抗ｆＦＮ抗体メンブレン塗布液とした。
（ｉｉ）抗マウスＩｇＧ抗体メンブレン塗布液調製
抗マウスＩｇＧヤギポリクローナル抗体(Jackson Immuno Research Laboratories) を上記（ｉ）と同様に、抗体濃度０．５ｍｇ／ｍＬとなるように２．５％Ｓｕｃｒｏｓｅを含む１０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．２）で希釈し、抗マウスＩｇＧヤギポリクローナル抗体メンブレン塗布液とした。
５．抗体固相化メンブレン作製
イムノクロマト用ディスペンサーＸＹＺ３０００(BIO DOT社) を用い、ニトロセルロースメンブレン（Hi-Flow Plus HF180 (Merck Millipore)）の下端より１１ｍｍの位置に抗ｆＦＮ抗体メンブレン塗布液、１５ｍｍの位置に抗マウスＩｇＧ抗体メンブレン塗布液を１．０μＬ／ｃｍで塗布し、７０°Ｃのドライオーブンで４５分間乾燥し抗体固定化メンブレンとした。
イムノクロマト用ディスペンサーＸＹＺ３０００(BIO DOT社) を用い、ニトロセルロースメンブレン（Hi-Flow Plus HF180 (Merck Millipore)）の下端より１１ｍｍの位置に抗ｆＦＮ抗体メンブレン塗布液、１５ｍｍの位置に抗マウスＩｇＧ抗体メンブレン塗布液を１．０μＬ／ｃｍで塗布し、７０°Ｃのドライオーブンで４５分間乾燥し抗体固定化メンブレンとした。
６．テストデバイス作製
プラスチック製粘着シート（ｇ）に上記抗体固定化メンブレン（ｄ）を貼り、展開上流部側に抗ｆＦＮ抗体（ｅ）、次いでコントロール試薬である抗マウスＩｇＧ抗体（ｊ）の順に塗布部を配置し、さらにサードパッド（ｃ）を装着した。次いで、上記で作製したコンジュゲートパッド（ｂ）を配置装着し、さらにこのコンジュゲートパッドに重なるように上記で作製したサンプルパッド（ａ）を配置装着し、反対側の端には吸収パッド（ｆ）を配置装着した。抗体固定化メンブレンと吸収パッド表面に透明のプラスチックフィルム（ｈ）を被覆し、各構成要素を重ね合わせた構造物を切断してイムノクロマトグラフィー用テストストリップを作製した。
該テストストリップは、アッセイの際、サンプル添加窓部及び検出窓部を有するプラスチック性の専用のハウジング（DKVIN (シン・コーポレイション) 、（図１中図示せず））に格納・搭載し、イムノクロマトテストデバイスの形態にした。図１にイムノクロマトグラフィー用テストストリップの模式構成図を示した。
プラスチック製粘着シート（ｇ）に上記抗体固定化メンブレン（ｄ）を貼り、展開上流部側に抗ｆＦＮ抗体（ｅ）、次いでコントロール試薬である抗マウスＩｇＧ抗体（ｊ）の順に塗布部を配置し、さらにサードパッド（ｃ）を装着した。次いで、上記で作製したコンジュゲートパッド（ｂ）を配置装着し、さらにこのコンジュゲートパッドに重なるように上記で作製したサンプルパッド（ａ）を配置装着し、反対側の端には吸収パッド（ｆ）を配置装着した。抗体固定化メンブレンと吸収パッド表面に透明のプラスチックフィルム（ｈ）を被覆し、各構成要素を重ね合わせた構造物を切断してイムノクロマトグラフィー用テストストリップを作製した。
該テストストリップは、アッセイの際、サンプル添加窓部及び検出窓部を有するプラスチック性の専用のハウジング（DKVIN (シン・コーポレイション) 、（図１中図示せず））に格納・搭載し、イムノクロマトテストデバイスの形態にした。図１にイムノクロマトグラフィー用テストストリップの模式構成図を示した。
[実施例１]コンジュゲートパッド塗布溶液のｐＨの検討
コンジュゲートパッド塗布溶液のバッファーのｐＨを変更し、感度と血漿ＦＮの交差反応への影響を確認した。
１．試験方法
（１）テストデバイスの作製
上記本発明の「イムノクロマトテストデバイスの作製」、「２．コンジュゲートパッド作製」および「３．サンプルパッド作製 」におけるリン酸－ナトリウム水溶液を終濃度で「２０ｍＭ リン酸（ｐＨ５．５）」、「２０ｍＭ リン酸（ｐＨ６．０）」、「２０ｍＭ リン酸（ｐＨ７．０）」、「２０ｍＭ リン酸（ｐＨ８．０）」となるように調整した以外は、同様の方法によりテストデバイスを作製した。
（２）検体の調製
（２－１）ｆＦＮ検出感度を測定するための試験
下記市販ヒト羊水についてイムノテスタでｆＦＮ濃度を算出し、ｆＦＮ検体抽出液に５０ｎｇ／ｍＬとなるように添加したものを検体として用いた。
材料；
・市販ヒト羊水 (Golden West Biologicals, Inc.)
・ｆＦＮ検体抽出液 (イムノテスタ用検体抽出液)
測定感度の評価基準は以下のとおりである。
記号 記号の意味
「－」検出不能
「＋」検出可能
「＋＋」検出可能かつ検出感度が高い
（２－２）血漿ＦＮの交差反応性を測定するための試験
健常人血漿プールをｆＦＮ検体抽出液で希釈して血漿０．１％、０．２％の検体を調整した。
（３）測定
テストデバイスに１２０μＬの各検体を滴下し、１０分後にラピッドピア（（登録商標）積水メディカル社製）およびソフトウェア（Ｃ１００６６）にてテストラインおよびコントロールラインの反射吸光度を測定した。
コンジュゲートパッド塗布溶液のバッファーのｐＨを変更し、感度と血漿ＦＮの交差反応への影響を確認した。
１．試験方法
（１）テストデバイスの作製
上記本発明の「イムノクロマトテストデバイスの作製」、「２．コンジュゲートパッド作製」および「３．サンプルパッド作製 」におけるリン酸－ナトリウム水溶液を終濃度で「２０ｍＭ リン酸（ｐＨ５．５）」、「２０ｍＭ リン酸（ｐＨ６．０）」、「２０ｍＭ リン酸（ｐＨ７．０）」、「２０ｍＭ リン酸（ｐＨ８．０）」となるように調整した以外は、同様の方法によりテストデバイスを作製した。
（２）検体の調製
（２－１）ｆＦＮ検出感度を測定するための試験
下記市販ヒト羊水についてイムノテスタでｆＦＮ濃度を算出し、ｆＦＮ検体抽出液に５０ｎｇ／ｍＬとなるように添加したものを検体として用いた。
材料；
・市販ヒト羊水 (Golden West Biologicals, Inc.)
・ｆＦＮ検体抽出液 (イムノテスタ用検体抽出液)
測定感度の評価基準は以下のとおりである。
記号 記号の意味
「－」検出不能
「＋」検出可能
「＋＋」検出可能かつ検出感度が高い
（２－２）血漿ＦＮの交差反応性を測定するための試験
健常人血漿プールをｆＦＮ検体抽出液で希釈して血漿０．１％、０．２％の検体を調整した。
（３）測定
テストデバイスに１２０μＬの各検体を滴下し、１０分後にラピッドピア（（登録商標）積水メディカル社製）およびソフトウェア（Ｃ１００６６）にてテストラインおよびコントロールラインの反射吸光度を測定した。
２．試験結果
結果を図２及び表１に示す。
コンジュゲートパッド塗布溶液のリン酸のｐＨを６．０に下げたテストデバイスにおいて、ｐＨ７．０に比べてｆＦＮの検出感度を維持しつつ血漿ＦＮに対する交差反応は小さくなった。
また、ｐＨを５．５に下げたデバイスでは、ｐＨ６．０のデバイスに比べてさらに、血漿ＦＮに対する交差反応が小さくなった。
結果を図２及び表１に示す。
コンジュゲートパッド塗布溶液のリン酸のｐＨを６．０に下げたテストデバイスにおいて、ｐＨ７．０に比べてｆＦＮの検出感度を維持しつつ血漿ＦＮに対する交差反応は小さくなった。
また、ｐＨを５．５に下げたデバイスでは、ｐＨ６．０のデバイスに比べてさらに、血漿ＦＮに対する交差反応が小さくなった。
[実施例２]特定ｐＨにおけるバッファー濃度の検討
コンジュゲートパッド塗布溶液のバッファーのｐＨを固定し、バッファー濃度を変更し血漿ＦＮの交差反応への影響を確認した。
１．試験方法
（１）テストデバイスの作製
上記本発明の「イムノクロマトテストデバイスの作製」、「２．コンジュゲートパッドの作製」および「３．サンプルパッド作製」におけるリン酸－ナトリウム水溶液を、終濃度で「２０ｍＭ リン酸（ｐＨ６．０）」、「４０ｍＭ リン酸（ｐＨ６．０）」「８０ｍＭ リン酸（ｐＨ６．０）」となるように調整した以外は、同様の方法によりテストデバイスを作製した。参照用に「２０ｍＭ リン酸（ｐＨ７．０）」のテストデバイスを用いた。
（２）検体の調製
実施例１（２－２）と同じ
（３）測定
実施例１と同じ
コンジュゲートパッド塗布溶液のバッファーのｐＨを固定し、バッファー濃度を変更し血漿ＦＮの交差反応への影響を確認した。
１．試験方法
（１）テストデバイスの作製
上記本発明の「イムノクロマトテストデバイスの作製」、「２．コンジュゲートパッドの作製」および「３．サンプルパッド作製」におけるリン酸－ナトリウム水溶液を、終濃度で「２０ｍＭ リン酸（ｐＨ６．０）」、「４０ｍＭ リン酸（ｐＨ６．０）」「８０ｍＭ リン酸（ｐＨ６．０）」となるように調整した以外は、同様の方法によりテストデバイスを作製した。参照用に「２０ｍＭ リン酸（ｐＨ７．０）」のテストデバイスを用いた。
（２）検体の調製
実施例１（２－２）と同じ
（３）測定
実施例１と同じ
２．試験結果
結果を表２、図３に示す。
コンジュゲートパッド塗布溶液として、リン酸（ｐＨ６．０）を使用した場合、バッファー濃度を上昇することによりｆＦＮの検出感度は検出可能な程度に維持しつつ血漿FNの交差反応性を低減できることがわかった。
結果を表２、図３に示す。
コンジュゲートパッド塗布溶液として、リン酸（ｐＨ６．０）を使用した場合、バッファー濃度を上昇することによりｆＦＮの検出感度は検出可能な程度に維持しつつ血漿FNの交差反応性を低減できることがわかった。
[実施例３]バッファー種類、濃度、ｐＨの検討
コンジュゲートパッド塗布溶液のバッファーの種類、濃度、ｐＨを変更し、感度と血漿ＦＮの交差反応への影響を確認した。
１．試験方法
（１）テストデバイスの作製
上記本発明の「イムノクロマトテストデバイスの作製」、「２．のコンジュゲートパッドの作製」および「３．サンプルパッド作製 」におけるリン酸－ナトリウム水溶液を終濃度で「２０ｍＭ リン酸（ｐＨ６．０）」、「４０ｍＭ リン酸（ｐＨ６．０）」、「４０ｍＭ リン酸（ｐＨ５．５）」、「２０ｍＭ ＡＤＡ（ｐＨ６．０）」、「４０ｍＭ ＡＤＡ（ｐＨ６．０）」、「４０ｍＭ ＡＤＡ（ｐＨ５．５）」、「２０ｍＭ ＭＥＳ（ｐＨ６．０）」、「４０ｍＭ ＭＥＳ（ｐＨ６．０）」、「４０ｍＭ ＭＥＳ（ｐＨ５．５）」となるように調整した以外は、同様の方法によりテストデバイスを作製した。
（２）検体の調製
実施例１と同じ
（３）測定
実施例１と同じ
コンジュゲートパッド塗布溶液のバッファーの種類、濃度、ｐＨを変更し、感度と血漿ＦＮの交差反応への影響を確認した。
１．試験方法
（１）テストデバイスの作製
上記本発明の「イムノクロマトテストデバイスの作製」、「２．のコンジュゲートパッドの作製」および「３．サンプルパッド作製 」におけるリン酸－ナトリウム水溶液を終濃度で「２０ｍＭ リン酸（ｐＨ６．０）」、「４０ｍＭ リン酸（ｐＨ６．０）」、「４０ｍＭ リン酸（ｐＨ５．５）」、「２０ｍＭ ＡＤＡ（ｐＨ６．０）」、「４０ｍＭ ＡＤＡ（ｐＨ６．０）」、「４０ｍＭ ＡＤＡ（ｐＨ５．５）」、「２０ｍＭ ＭＥＳ（ｐＨ６．０）」、「４０ｍＭ ＭＥＳ（ｐＨ６．０）」、「４０ｍＭ ＭＥＳ（ｐＨ５．５）」となるように調整した以外は、同様の方法によりテストデバイスを作製した。
（２）検体の調製
実施例１と同じ
（３）測定
実施例１と同じ
２．試験結果
結果を表３、図４、５、６に示す。
コンジュゲートパッド塗布溶液として、リン酸を使用した場合には、４０ｍＭ（ｐＨ６．０）、４０ｍＭ（ｐＨ５．５）ともに２０ｍＭ（ｐＨ６．０）と同様にｆＦＮの検出感度が得られ、かつ、血漿ＦＮに対する交差反応も同様に低かった。
また、ＡＤＡを使用したものは、２０ｍＭ（ｐＨ６．０）、４０ｍＭ（ｐＨ６．０）、４０ｍＭ（ｐＨ５．５）いずれもリン酸（ｐＨ６．０）と同様のｆＦＮの測定感度が得られ、かつ、血漿ＦＮに対する交差反応もリン酸と同様に低かった。
また、ＭＥＳを使用したものは、２０ｍＭ（ｐＨ６．０）、４０ｍＭ（ｐＨ６．０）、はリン酸（ｐＨ６．０）と同様のｆＦＮの検出感度が得られた。また、４０ｍＭ（ｐＨ５．５）の場合も、検出可能なｆＦＮの感度が得られ、血漿ＦＮに対する交差反応も低かった。
このように、ＡＤＡ、ＭＥＳ、リン酸ともｐＨの低減またはバッファー濃度の上昇によりｆＦＮの検出感度は維持しつつも、血漿ＦＮに対する交差反応が抑えられることがわかった。
結果を表３、図４、５、６に示す。
コンジュゲートパッド塗布溶液として、リン酸を使用した場合には、４０ｍＭ（ｐＨ６．０）、４０ｍＭ（ｐＨ５．５）ともに２０ｍＭ（ｐＨ６．０）と同様にｆＦＮの検出感度が得られ、かつ、血漿ＦＮに対する交差反応も同様に低かった。
また、ＡＤＡを使用したものは、２０ｍＭ（ｐＨ６．０）、４０ｍＭ（ｐＨ６．０）、４０ｍＭ（ｐＨ５．５）いずれもリン酸（ｐＨ６．０）と同様のｆＦＮの測定感度が得られ、かつ、血漿ＦＮに対する交差反応もリン酸と同様に低かった。
また、ＭＥＳを使用したものは、２０ｍＭ（ｐＨ６．０）、４０ｍＭ（ｐＨ６．０）、はリン酸（ｐＨ６．０）と同様のｆＦＮの検出感度が得られた。また、４０ｍＭ（ｐＨ５．５）の場合も、検出可能なｆＦＮの感度が得られ、血漿ＦＮに対する交差反応も低かった。
このように、ＡＤＡ、ＭＥＳ、リン酸ともｐＨの低減またはバッファー濃度の上昇によりｆＦＮの検出感度は維持しつつも、血漿ＦＮに対する交差反応が抑えられることがわかった。
イムノクロマトグラフィーを利用した検出方法において、類似抗原が存在した場合でも、検出対象物に対する抗体と類似抗原との交差反応を低減し、測定値の誤差や偽陽性反応を防止するとともに、分析対象物の検出感度を維持あるいは向上させて正確な判断ができる。
特に、癌胎児性フィブロネクチン（ｆＦＮ）をイムノクロマトグラフィーを利用して検出する方法において、血液が混入しても測定誤差や偽陽性を生じにくく、ｆＦＮの検出感度を維持あるいは向上させて正確な判断ができる。したがって、ＰＯＣＴに繁用されるイムノクロマトグラフィーを利用した切迫早産の検出試薬を提供することが可能となった。
特に、癌胎児性フィブロネクチン（ｆＦＮ）をイムノクロマトグラフィーを利用して検出する方法において、血液が混入しても測定誤差や偽陽性を生じにくく、ｆＦＮの検出感度を維持あるいは向上させて正確な判断ができる。したがって、ＰＯＣＴに繁用されるイムノクロマトグラフィーを利用した切迫早産の検出試薬を提供することが可能となった。
（ａ）サンプルパッド
（ｂ）コンジュゲートパッド
（ｃ）サードパッド
（ｄ）抗体固定化メンブレン
（ｅ）抗ｆＦＮ抗体
（ｆ）吸収パッド
（ｇ）プラスチック製粘着シート
（ｈ）プラスチックフィルム
（ｊ）コントロール抗体
（ｂ）コンジュゲートパッド
（ｃ）サードパッド
（ｄ）抗体固定化メンブレン
（ｅ）抗ｆＦＮ抗体
（ｆ）吸収パッド
（ｇ）プラスチック製粘着シート
（ｈ）プラスチックフィルム
（ｊ）コントロール抗体
Claims (28)
- イムノクロマトグラフィーを利用した検出方法であって、（Ａ）～（Ｃ）の工程を含む検出方法。
（Ａ）下記テストストリップのサンプル供給部に検出対象物質と検出対象物質に類似する物質を含み得るサンプルを供給する工程
テストストリップ；
少なくともサンプル供給部、展開部および検出部とを備えた多孔質体からなるメンブレンを有し、展開部の一部には、標識物質で標識された第一の抗体を含むコンジュゲートが溶出可能に保持され、さらに展開部の一部であってコンジュゲート保持部分より下流側に第二の抗体が固定化されている検出部を有する
ここで、第一の抗体及び第二の抗体のいずれか一方が抗検出対象物質抗体であって、もう一方が検出対象物質に結合する抗体である
（Ｂ）サンプル中の検出対象物質をｐＨ５．０～６．７の緩衝液の存在下にコンジュゲートと接触させる工程
（Ｃ）サンプル中の検出対象物質とコンジュゲートの複合体を検出部において検出する工程 - 検出対象物質が癌胎児性フィブロネクチンであり、検出対象物質に類似する物質が血漿フィブロネクチンである請求項１に記載の検出方法。
- 第一の抗体が抗フィブロネクチンモノクローナル抗体であり、第二の抗体が抗癌胎児性フィブロネクチンモノクローナル抗体である請求項２に記載の検出方法。
- 緩衝液が、リン酸、ＡＤＡ、ＭＥＳ、ＡＣＥＳ、Ｂｉｓ－Ｔｒｉｓ、クエン酸、ＨＥＰＥＳ、ＭＯＰＳ、ＰＩＰＥＳ及びＴｒｉｓからなる群から選ばれるいずれか１種以上である請求項１～３のいずれかに記載の検出方法。
- 緩衝液の濃度が、２０ｍｍｏｌ／Ｌ～８０ｍｍｏｌ／Ｌである請求項1～４のいずれかに記載の検出方法。
- 標識物質が金コロイドである、請求項１～５のいずれかに記載の検出方法。
- 以下の構成（１）および（２）を含む、イムノクロマトグラフィー用テストストリップ。
（１）少なくともサンプル供給部、展開部および検出部とを備えた多孔質体からなるメンブレンを有し、展開部の一部には、標識物質で標識された第一の抗体を含むコンジュゲートが溶出可能に保持され、さらに展開部の一部であって前記コンジュゲート保持部分より下流側に、第二の抗体が固定化されている検出部を有する
ここで、第一の抗体及び第二の抗体のいずれか一方が抗検出対象物質抗体であって、もう一方が検出対象物質に結合する抗体である。
（２）サンプル供給部から展開部の検出部までのすくなくとも一部にｐＨ５．０～６．７の緩衝液成分が含まれている - サンプルパッド、コンジュゲートパッド、および抗体固定化メンブレンを上から順に配置し、サンプルパッドがサンプル供給部を含み、コンジュゲートパッドがコンジュゲート保持部分および緩衝液成分を含み、抗体固定化メンブレンが検出部を含む請求項７に記載のテストストリップ。
- コンジュゲートパッドと抗体固定化メンブレンの間にさらにサードパッドを含む請求項７または８に記載のテストストリップ。
- 検出対象物質が癌胎児性フィブロネクチンであり、検出対象物質に類似する物質が血漿フィブロネクチンであり、第一の抗体及び第二の抗体のいずれか一方が抗フィブロネクチンモノクローナル抗体であって、もう一方が抗癌胎児性フィブロネクチンモノクローナル抗体である請求項７～９のいずれかに記載のテストストリップ。
- 第一の抗体が抗フィブロネクチンモノクローナル抗体であり、第二の抗体が抗癌胎児性フィブロネクチンモノクローナル抗体である請求項１０に記載のテストストリップ。
- 緩衝液が、リン酸、ＡＤＡ、ＭＥＳ、ＡＣＥＳ、Ｂｉｓ－Ｔｒｉｓ、クエン酸、ＨＥＰＥＳ、ＭＯＰＳ、ＰＩＰＥＳ及びＴｒｉｓからなる群から選ばれるいずれか１種以上である請求項７～１１のいずれかに記載のテストストリップ。
- 緩衝液の濃度が、２０ｍｍｏｌ／Ｌ～８０ｍｍｏｌ／Ｌである請求項７～１２のいずれかに記載のテストストリップ。
- 標識物質が金コロイドである、請求項７～１３のいずれかに記載のテストストリップ。
- 以下の構成（１）および（２）を含む、イムノクロマトグラフィー用検出キット。
（１）少なくともサンプル供給部、展開部および検出部とを備えた多孔質体からなるメンブレンを有し、展開部の一部には、標識物質で標識された第一の抗体を含むコンジュゲートが溶出可能に保持され、さらに展開部の一部であって前記コンジュゲート保持部分より下流側に、第二の抗体が固定化されている検出部を有するイムノクロマトグラフィー用テストストリップ
ここで、第一の抗体及び第二の抗体のいずれか一方が抗検出対象物質抗体であって、もう一方が検出対象物質に結合する抗体である。
（２）ｐＨ５．０～６．７の緩衝液 - 検出対象物質が癌胎児性フィブロネクチンであり、検出対象物質に類似する物質が血漿フィブロネクチンであり、第一の抗体及び第二の抗体のいずれか一方が抗フィブロネクチンモノクローナル抗体であって、もう一方が抗癌胎児性フィブロネクチンモノクローナル抗体である請求項１５に記載の検出キット。
- 緩衝液を展開液又は検体抽出液として使用する請求項１５又は１６に記載の検出キット。
- 緩衝液がリン酸、ＡＤＡ、ＭＥＳ、ＡＣＥＳ、Ｂｉｓ－Ｔｒｉｓ、クエン酸、ＨＥＰＥＳ、ＭＯＰＳ、ＰＩＰＥＳ及びＴｒｉｓからなる群から選ばれるいずれか１種以上である請求項１５～１７のいずれか記載の検出キット。
- 緩衝液の濃度が、２０ｍｍｏｌ／Ｌ～８０ｍｍｏｌ／Ｌである請求項１５～１８のいずれかに記載の検出キット。
- イムノクロマトグラフィー用テストストリップを用いてサンプル中の検出対象物質を検出する方法における、検出対象物質と類似する物質の交差反応を低減化する方法であって、
以下の工程を有する前記方法。
（Ａ）下記テストストリップのサンプル供給部に検出対象物質と検出対象物質に類似する物質を含み得るサンプルを供給する工程
テストストリップ；
少なくともサンプル供給部、展開部および検出部とを備えた多孔質体からなるメンブレンを有し、展開部の一部には、標識物質で標識された第一の抗体を含むコンジュゲートが溶出可能に保持され、さらに展開部の一部であってコンジュゲート保持部分より下流側に第二の抗体が固定化されている検出部を有する
ここで、第一の抗体及び第二の抗体のいずれか一方が抗検出対象物質抗体であって、もう一方が検出対象物質に結合する抗体である
（Ｂ）サンプル中の検出対象物質をｐＨ５．０～ｐＨ６．７の緩衝液の存在下にコンジュゲートと接触させる工程
（Ｃ）サンプル中の検出対象物質とコンジュゲートの複合体を検出部において検出する工程 - 検出対象物質が癌胎児性フィブロネクチンであり、検出対象物質に類似する物質が血漿フィブロネクチンである請求項２０に記載の方法。
- 第一の抗体が抗フィブロネクチンモノクローナル抗体であり、第二の抗体が抗癌胎児性フィブロネクチンモノクローナル抗体である請求項２１に記載の方法。
- 緩衝液が、リン酸、ＡＤＡ、ＭＥＳ、ＡＣＥＳ、Ｂｉｓ－Ｔｒｉｓ、クエン酸、ＨＥＰＥＳ、ＭＯＰＳ、ＰＩＰＥＳ及びＴｒｉｓからなる群から選ばれるいずれか１種以上である請求項２０～２２のいずれかに記載の方法。
- 緩衝液の濃度が、２０ｍｍｏｌ／Ｌ～８０ｍｍｏｌ／Ｌである請求項２０～２３のいずれかに記載の方法。
- 標識物質が金コロイドである、請求項２０～２４のいずれかに記載の方法。
- 癌胎児性フィブロネクチン検出のためのイムノクロマトグラフィー用展開液であって、下記（１）及び（２）を含む前記展開液。
（１）ｐＨ５．０～ｐＨ６．７の緩衝液
（２）標識物質で標識された第一の抗体を含むコンジュゲート - 緩衝液の濃度が、２０ｍｍｏｌ／Ｌ～８０ｍｍｏｌ／Ｌである請求項２６に記載の展開液。
- ｐＨ５．０～ｐＨ６．７の緩衝液を含有する癌胎児性フィブロネクチン検出用検体抽出液。
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