WO2015151577A1 - アスタキサンチンの生産方法 - Google Patents

アスタキサンチンの生産方法 Download PDF

Info

Publication number
WO2015151577A1
WO2015151577A1 PCT/JP2015/053220 JP2015053220W WO2015151577A1 WO 2015151577 A1 WO2015151577 A1 WO 2015151577A1 JP 2015053220 W JP2015053220 W JP 2015053220W WO 2015151577 A1 WO2015151577 A1 WO 2015151577A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
astaxanthin
culture
light led
peak wavelength
led
Prior art date
Application number
PCT/JP2015/053220
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
泉田　仁
英治 大橋
徹 沼沢
Original Assignee
日本水産株式会社
バイオジェニック株式会社
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 日本水産株式会社, バイオジェニック株式会社 filed Critical 日本水産株式会社
Priority to CN201580017963.5A priority Critical patent/CN106133147A/zh
Priority to US15/128,907 priority patent/US20170107554A1/en
Priority to MYPI2016703525A priority patent/MY188535A/en
Priority to JP2016511421A priority patent/JP6158427B2/ja
Publication of WO2015151577A1 publication Critical patent/WO2015151577A1/ja

Links

Images

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P23/00—Preparation of compounds containing a cyclohexene ring having an unsaturated side chain containing at least ten carbon atoms bound by conjugated double bonds, e.g. carotenes
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/12—Unicellular algae; Culture media therefor
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/12—Unicellular algae; Culture media therefor
    • C12N1/125—Unicellular algae isolates
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N13/00—Treatment of microorganisms or enzymes with electrical or wave energy, e.g. magnetism, sonic waves
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/89—Algae ; Processes using algae

Definitions

  • the present invention relates to an efficient production method of astaxanthin. More specifically, the present invention relates to light irradiation when culturing microalgae that produce astaxanthin.
  • Astaxanthin is a kind of red-orange carotenoid, and is a pigment mainly contained in marine organisms such as crustaceans such as shrimp and crab, salmon, salmon roe, coral and algae.
  • This astaxanthin is known to have a strong antioxidant action, and is used as a food coloring, cosmetics, health food, pharmaceuticals and the like.
  • Astaxanthin is produced by chemical synthesis or culture of bacteria, yeast, microalgae, and the like.
  • astaxanthin obtained by culturing the microalgae of the genus Haematococcus (hereinafter referred to as Haematococcus algae) has an astaxanthin content of 2% by weight or less per dry weight of bacteria and yeast.
  • Astaxanthin is produced by, for example, microalgae such as Haematococcus algae, Chlorella, Senedesmus.
  • Haematococcus algae are cysted by changes in the external environment and accumulate astaxanthin in the algae.
  • irradiation with sunlight or artificial light is required.
  • a light source for artificial light a fluorescent lamp, an LED (light emitting diode) or the like is used.
  • Patent Document 1 describes that in an example in which hematococcus algae was cultured by irradiating light with an illuminance of 40,000 lux made of artificial light, 2% by weight astaxanthin content per dry alga body weight was obtained.
  • Patent Document 2 includes astaxanthin per dry alga weight in 21 days by culturing Haematococcus algae under conditions of very strong light intensity of 25,000 ⁇ mol-photon / m 3 / s or more of photosynthetic effective photon flux input.
  • astaxanthin could be produced with a high efficiency of 6.8% by weight and astaxanthin production amount of 250 mg / L per culture solution, but astaxanthin production amount of 300 mg / L or more cannot be achieved. Not. In order to obtain such a very strong photosynthetic effective photon flux input using a fluorescent lamp, a large amount of electric power is required, and further, the electric energy required for the air conditioner for controlling the heat generated by the fluorescent lamp Also grows.
  • LEDs are known as light sources with low power and low calorific value, and production of astaxanthin using LEDs has been studied.
  • Patent Document 3 astaxanthin production from Haematococcus algae was examined using LEDs of various wavelengths, and as a result, only high-quality astaxanthin productivity was achieved by irradiating only blue light LED having a wavelength of 540 nm or less. ing. In particular, when a blue light LED having a central wavelength of 470 nm was used, astaxanthin could be produced about twice as much as a fluorescent lamp having the same photon flux density.
  • Patent Document 4 describes that an increase in the number of hematococcus algae cells is promoted by alternately irradiating a hematococcus algae colony on an agar plate with a blue light LED and a red light LED.
  • Astaxanthin production stage after cystation there is no mention of the astaxanthin production stage after cystation, and it is not described whether astaxanthin is produced. Since Haematococcus algae grows and then undergoes cystation due to stress and is known to accumulate a large amount of astaxanthin, it cannot be determined in this document whether astaxanthin production is increased.
  • a culture method that uses a low-power LED with a low calorific value to produce astaxanthin at a concentration of 100 mg / L or higher, with higher astaxanthin content than when cultivating microalgae using only blue light LEDs with a wavelength of 540 nm or less. was demanded.
  • An object of the present invention is to produce astaxanthin that is more efficient than a fluorescent lamp by using an LED that saves power and can suppress a temperature rise in a portion that transmits light.
  • astaxanthin is efficiently obtained by culturing microalgae while simultaneously irradiating both a blue light LED having a peak wavelength of 420 to 500 nm and a red light LED having a peak wavelength of 620 to 690 nm.
  • the gist of the present invention is the following astaxanthin production methods (1) to (6).
  • the photon flux density of a blue light LED having a peak wavelength of 420 to 500 nm and a red light LED having a peak wavelength of 620 to 690 nm is 20 ⁇ mol / m 2 / s or more, respectively (1) or (2) Astaxanthin production method.
  • the astaxanthin production method according to any one of (1) to (4), wherein the amount of astaxanthin produced per culture is 100 mg / L or more.
  • the astaxanthin production method according to (5), wherein the production amount of astaxanthin per culture solution is 300 mg / L or more.
  • astaxanthin can be produced efficiently without greatly changing the conventional astaxanthin production method and apparatus.
  • Example 2 It is a figure which shows the spectrum of blue light LED and red light LED which were used in Example 1.
  • FIG. It is a figure which shows the dry algal body weight per culture solution of Example 2.
  • FIG. It is a figure which shows the astaxanthin content per dry alga body of Example 2.
  • FIG. 3 is a graph showing the amount of astaxanthin produced per culture solution in Example 2.
  • the present invention relates to a method for producing astaxanthin using microalgae, and includes a step of irradiating a microalgae with a blue light LED having a peak wavelength of 420 to 500 nm and a red light LED having a peak wavelength of 620 to 690 nm.
  • microalgae capable of producing astaxanthin can be used.
  • the microalgae here is limited to those that carry out photosynthesis.
  • cyanobacteria, red algae, brown algae, green algae, diatoms, and true-eye algae are known, but the microalgae of the present invention is limited to microalgae capable of producing astaxanthin.
  • microalgae belonging to the genus Hematococcus are generally used.
  • Haematococcus lactis and Hematococcus prubiaris are preferably used.
  • microalgae that produce astaxanthin can be used.
  • Chlorella zone fin donation cis is Chlorella (Chlorella zofingiensis), mono Rafi Day um genus (Monoraphidium sp.)
  • Chlorella zone fin donation cis is Chlorella (Chlorella zofingiensis), mono Rafi Day um genus (Monoraphidium sp.)
  • Neochloris wimmeri be able to.
  • an autotrophic medium which does not contain a carbon source in order to prevent the contamination of a culture medium.
  • an autotrophic medium containing nitrogen necessary for growth, trace metal inorganic salts, vitamins and the like is used.
  • media such as VT media, C media, MC media, MBM media, MDM media (see Algae Research Method Mitsuo Chihara and Kazutoshi Nishizawa, Kyoritsu Shuppan (1979)), BG-11 media, and modified media thereof Etc. are used.
  • aerate air containing carbon dioxide when culturing microalgae in a medium, it is preferable to aerate air containing carbon dioxide. Cultivation can also be carried out by aeration with air that does not contain oxygen dioxide. However, since the growth of microalgae is slowed, the culture is carried out by aeration with air containing 0.1 to 5% carbon dioxide, preferably 0.5 to 3% carbon dioxide. Cultivation is possible without aeration, but for good growth, the aeration rate is 0.01 to 3.0 vvm, preferably 0.015 to 1 vvm, and the pH is 5 to 10, preferably 6 to 9.
  • the culture temperature is, for example, in the range of 10 to 45 ° C., preferably in the range of 18 to 38 ° C., taking the case of using Haematococcus lactoris and Haematococcus prubiaris as an example.
  • the pH of the medium is adjusted to a range of 5.0 to 9.5, preferably 6.0 to 9.0.
  • a microalgae For light irradiation for astaxanthin production, a microalgae is used in combination with a blue light LED having a peak wavelength of 420 to 500 nm and a red light LED having a peak wavelength of 620 to 690 nm. It is necessary to irradiate both the blue light LED and the red light LED for the whole period or for a certain period during the culture period of the microalgae. In particular, it is important to irradiate in combination with blue light LED and red light LED at the time of astaxanthin production culture (cyst cell time).
  • astaxanthin When irradiating both blue light LED and red light LED, astaxanthin can be produced most efficiently by irradiating simultaneously, but it is also possible to irradiate blue light LED and red light LED alternately within 24 hours. Astaxanthin can be produced efficiently. Or the irradiation method which blinks blue light LED and red light LED alternately may be used. As a light source in the light irradiation process, an LED, a light bulb, a fluorescent lamp, or the like can be used. However, the light source other than the LED needs to cut unnecessary light because the wavelength spectrum of the light source used is wide. As a result, the efficiency becomes worse.
  • an LED it is possible to irradiate light with a narrow wavelength range without requiring a special means such as cutting off a part of light, and astaxanthin can be efficiently produced with less irradiation energy.
  • organic EL lighting may be used.
  • a plurality of LED chips are provided so that efficient irradiation can be performed.
  • the light sources are arranged at equal intervals from each other in order to enable as uniform light irradiation as possible.
  • multiple blue and red LED chips may be used as independent panels for irradiation, or multiple blue and red LED chips are embedded in the same panel at a fixed rate. May be used for irradiation.
  • the wavelength of the blue light LED to be irradiated has a peak wavelength in the range of 420 to 500 nm, preferably 430 to 490 nm, and the wavelength of the red light LED is in the range of 620 to 690 nm, preferably 630 to 680 nm.
  • Two or more types of light having different peak wavelengths can be used for both the blue light LED and the red light LED.
  • irradiation can be performed using a blue light LED having peak wavelengths of 430 nm and 470 nm and a red light LED having peaks of 630 nm and 660 nm. It is preferable to use light with a narrow wavelength range of blue light LED and red light LED. This is because more efficient astaxanthin production can be achieved by selecting and irradiating only light in a wavelength region suitable for astaxanthin production.
  • the ratio of blue light LED with peak wavelength of 420-500nm and red light LED with peak wavelength of 620-690nm that simultaneously irradiate microalgae is not limited as long as simultaneous irradiation is performed, but the ratio is the photon flux density 1:19 to 19: 1, preferably 1: 5 to 5: 1. A ratio of 1: 2.5 to 5: 1, more preferably 1: 2 to 4: 1 is particularly preferable.
  • the light irradiation method is also not particularly limited, and for example, irradiation can be performed continuously or intermittently with intervals.
  • “intermittent irradiation” includes irradiation with pulsed light. If light irradiation is performed intermittently, power consumption can be reduced.
  • Haematococcus algae such as Haematococcus laxtris and Haematococcus pluvialis are green floating cells that are motile and proliferate, and extreme environments such as temperature, strong light, salt, water content, nutritional status, etc.
  • cyst cell states that cyst due to the stress of change. When cysts are formed, astaxanthin accumulates in the algae and turns red.
  • Light irradiation using a blue light LED having a peak wavelength of 420 to 500 nm and a red light LED having a peak wavelength of 620 to 690 nm can be used in a floating cell state or a cyst cell state.
  • Suspension cells produce a little astaxane, but their production rate is slow, which is rather effective for obtaining good cell division and proliferation. Since the astaxanthin production rate is high and accumulates at a high concentration during the cyst cell period, astaxanthin can be produced efficiently.
  • a blue LED having a peak wavelength of 420 to 500 nm and a red LED having a peak wavelength of 620 to 690 nm are each 20 ⁇ mol / m 2 / s or more, preferably 50 ⁇ mol / m 2 / s or more, more preferably 100 ⁇ mol. Astaxanthin can be efficiently produced by irradiation at / m 2 / s or higher, 150 ⁇ mol / m 2 / s or higher. If the culture apparatus has a light transmission width larger than that, it may be further increased.
  • astaxanthin when culturing Haematococcus algae in a cyst cell state, astaxanthin can be efficiently produced by irradiating both the blue light LED and the red light LED.
  • the upper limit is not particularly photon flux density, is preferably from 3000 ⁇ mol / m 2 / s of the balance between energy cost and effectiveness, 1000 ⁇ mol / m 2 / s or less is particularly preferred.
  • the method for recovering astaxanthin from the culture solution is not particularly limited.
  • microalgae culture solution containing astaxanthin is separated by solid-liquid separation means such as filtration and centrifugation, and then microalgae cells are collected and then dried (natural drying, drum drying, hot air drying, spray drying, freeze drying, etc.) By doing so, a dried product of microalgae can be obtained.
  • the obtained dried microalga contains astaxanthin (as a free form) at a concentration of 1 to 10% by mass. Preferably, it is contained at a concentration of 4 to 10% by mass.
  • a component containing astaxanthin can be obtained by crushing, extracting and collecting the wet algal body containing astaxanthin or the dried product.
  • astaxanthin is extracted after mechanically destroying dried microalgae.
  • the extraction method include a chemical extraction method using an organic solvent such as chloroform, hexane, acetone, methanol, and ethanol, and an edible oil and fat, or a physical extraction method by pressing a dry product of green algae. Or you may extract and collect
  • the extraction solvent is distilled off to obtain an astaxanthin-containing oil.
  • the microalgae culture apparatus for producing astaxanthin can supply carbon dioxide and can irradiate the culture solution with a blue light LED having a peak wavelength of 420 to 500 nm and a red light LED having a peak wavelength of 620 to 690 nm.
  • a flat culture bottle having a thickness of about 10 to 50 mm and a glass tube having a diameter of about 20 to 70 mm are preferably used.
  • a large scale it is composed of a plastic bag, glass or plastic tube or transparent plate, and a culture tank equipped with an illuminator and a stirrer is used as necessary.
  • the light transmission width is preferably 400 mm or less, more preferably 70 mm or less.
  • a culture tank for example, a plate culture tank (flat panel culture algae), a tube type culture tank, an air dome type culture tank, a hollow cylindrical culture tank, a tank type internally lit culture tank, or the like is used.
  • a sealed container is preferably used.
  • a type in which a tube is wound around an LED as disclosed in JP 2012-29578 A or a hybrid type reactor as disclosed in JP 2014-39491 can be used.
  • Astaxanthin culture There are two types of astaxanthin culture: a type that is provided outdoors and uses sunlight, a type that is provided indoors and that uses artificial light, and a type that uses both. The method using sunlight does not incur energy costs and can be manufactured at a low cost.
  • the present invention can be used for any type. Even when using natural light, at least during the astaxanthin production culture period, the irradiation of the blue light LED of 420 to 500 nm and the red light LED having a peak wavelength of 620 to 690 nm is used in combination. An effect can be obtained. When culturing only with artificial light, at least astaxanthin production culture period, use 420-500nm blue light LED and red light LED with peak wavelength of 620-690nm in combination. Other light sources such as fluorescent lamps may be used during the growth culture period, but blue light and red light may be used in combination as in the astaxanthin production culture period.
  • the ratio of the photon flux density of blue light to red light is 1:19 to 19: 1, preferably 1: 5 to 5: 1. More preferably, it is 1: 2.5 to 5: 1, and 1: 2 to 4: 1 is particularly preferable.
  • Hematococcus culture growth culture
  • Hematococcus lactoris NIES144 strain National Institute for Environmental Microbiology Preservation Facility Storage
  • BG11 modified A medium Table 1
  • Culturing was performed with aeration and stirring of air containing 1% carbon dioxide at 25 ° C. under continuous light irradiation with a fluorescent lamp so that the photon flux density was 50 ⁇ mol / m 2 / s.
  • proliferation of floating cells was recognized at 450,000 cells / ml on the fifth day of culture.
  • Astaxanthin production culture Hematococcus culture using various light sources (Astaxanthin production culture) Next, after adding sodium chloride to the culture solution to a concentration of 2 g / L, each was irradiated with light using 7 types of light sources so that the photon flux density would be 300 ⁇ mol / m 2 / s, respectively, at 27 ° C. Astaxanthin was produced by culturing air containing 1% carbon dioxide with aeration and stirring.
  • the light source at this time is a fluorescent lamp, single irradiation of a blue light LED with a wavelength of 450 nm, single irradiation of a red light LED with a wavelength of 660 nm, simultaneous simultaneous irradiation of a blue light LED with a wavelength of 450 nm and a red light LED with a wavelength of 660 nm (with blue light and The ratio of red light is 1: 2, 1: 1, 2: 1, 4: 1.
  • the spectrum of the blue light LED and red light LED used in the experiment is shown in FIG. After 14 days of culture, dried alga bodies were obtained by filtration. The weight of the dry algal bodies was measured, and the dry algal body weight per culture broth was determined. Moreover, the astaxanthin content in the dry alga body and the astaxanthin production amount per culture solution were determined by reverse phase HPLC.
  • blue light LED and red light LED are irradiated at the same time, astaxanthin production is higher than that of fluorescent lamp at any of blue / red ratio of photon flux density 1: 2, 1: 1, 2: 1, 4: 1 Increased to 131 mg / L, 162 mg / L, 155 mg / L and 156 mg / L, respectively.
  • blue light and red light were used in combination, astaxanthin production was greatly improved in any case as compared with the case where fluorescent light, blue light alone, or red light alone was used. It has been found that the blue light: red light ratio is preferably 1: 2 to 4: 1.
  • the dry alga body weight is 3.3 g / L same as the fluorescent lamp, but the astaxanthin content is 4.9% by weight, and the astaxanthin concentration per culture solution is 162 mg / L It was twice that of L and fluorescent lamps, and 1.7 times that of blue light LED alone. From the above, astaxanthin production During the astaxanthin production culture period, by simultaneously irradiating blue light LED and red light LED, the content of astaxanthin in the alga body is increased. It was confirmed that it can be increased.
  • Hematococcus culture growth culture
  • Hematococcus lactoris NIES144 strain culture solution 15 ml containing 500,000 cells / ml floating cells and 750 ml of BG11 modified B medium (Table 3) were injected into a glass transparent culture vessel having an inner diameter of 50 mm and a height of 500 mm.
  • 450% blue light LED photon flux density 50 ⁇ mol / m 2 / s
  • red light 660nm wavelength photon flux density LED 30 ⁇ mol / m 2 / s
  • Hematococcus culture (astaxanthin production culture) Next, after adding sodium chloride to the culture solution to a concentration of 2 g / L, blue light with a wavelength of 450 nm (photon flux density LED 300 ⁇ mol / m 2 / s), red light LED with a wavelength of 660 nm (photon flux density 250 ⁇ mol) Astaxanthin was produced under agitation and aeration with air containing 1% carbon dioxide at 28 ° C. under simultaneous continuous light irradiation at / m 2 / s). The cells were cultured for 21 days, and changes with time were observed. A dry alga body was obtained by a filtration method, the weight was measured, and the dry alga body weight per culture broth was determined. Astaxanthin content and astaxanthin concentration per culture were determined by reverse phase HPLC.
  • the results of the number of culture days after addition of sodium chloride, the dry alga body weight per culture solution, the astaxanthin content (% by weight), and the astaxanthin production amount (mg / L) per culture solution are shown in FIGS.
  • the dry alga body weight was 5.8 g / L
  • the astaxanthin content in the dry alga body was 7.2% by weight
  • the astaxanthin production amount was 418 mg / L.
  • the amount of astaxanthin produced per culture broth can be increased with a low energy consumption.

Landscapes

  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

　微細藻の培養によるアスタキサンチンの生産方法の効率を高める方法である。微細藻を培養して藻体内にアスタキサンチンを生産させるアスタキサンチンの生産方法において、培養期間中の少なくともアスタキサンチン生産培養期間の光照射をピーク波長が420～500nmの青色光LEDとピーク波長が620～690nmの赤色光LEDを併用して行うことを特徴とするアスタキサンチンの生産方法である。ピーク波長420～500nmの青色光LEDとピーク波長620～690nmの赤色光LED の比は、光量子束密度で1:19～19:1が好ましく、光量子束密度がそれぞれ20μmol/m2/s以上が好ましい。

Description

アスタキサンチンの生産方法
　本発明は、アスタキサンチンの効率的な生産方法に関する。さらに詳しくは、アスタキサンチンを生産する微細藻を培養する際の光照射に関する。
　アスタキサンチンは、赤橙色のカロテノイドの一種で、エビやカニなどの甲殻類や、鮭、イクラ、鯛、藻類など、主に海の生物に多く含まれる色素である。このアスタキサンチンは、強力な抗酸化作用を持つことが知られ、食品用色素、化粧品、健康食品、医薬品などとして使用される。
　アスタキサンチンは、化学合成、又は、細菌、酵母、微細藻などの培養により生産されている。微細藻の中でもヘマトコッカス属の微細藻（以降、ヘマトコッカス藻）を培養して得られるアスタキサンチンは、細菌、酵母の乾燥重量あたりのアスタキサンチン含有量が2重量%以下であるのに対して、2重量%以上の高含量で培養することができ、またその安全性から世界中で生産されている。ヘマトコッカス藻などの光合成をする微細藻を利用したアスタキサンチンの生産にはその生育に適した光照射が必要である。
　アスタキサンチンは、例えばヘマトコッカス藻、クロレラ、セネデスムスなどの微細藻によって生産される。特にヘマトコッカス藻は、外部環境の変化ストレスによってシスト化し、藻体内にアスタキサンチンを蓄積する。アスタキサンチンの蓄積のためには、太陽光または人工光の照射が必要となる。人工光の光源としては蛍光灯、LED（light emitting diode）等が利用されている。
　太陽光のみで培養した場合は、気温変動、日照時間変動に影響されるため、安定かつ効率的な生産が困難である。そのため、人工光の一つである蛍光灯を用いた培養が、古くから試みられている。
　特許文献１には、人工光からなる40000ルクスの照度で光を照射しヘマトコッカス藻を培養した実施例において、乾燥藻体重量あたりのアスタキサンチン含有量として2重量％を得たと記載されている。
　特許文献２には、光合成有効光量子束投入量25000μmol-photon/m3/s以上という非常に強い光強度の条件でヘマトコッカス藻を培養することで、21日間で乾燥藻体重量あたりのアスタキサンチン含有量6.8重量%、培養液あたりのアスタキサンチン生産量250mg/Lという高効率でアスタキサンチンが生産することができたと実施例に記載されているが、300mg/L以上のアスタキサンチン生産量を達成することはできていない。蛍光灯を用いてこのような非常に強い光合成有効光量子束投入量を得るためには、多くの電力量が必要であり、さらに蛍光灯により発生する熱を制御するための空調装置にかかる電力量も大きくなる。
　蛍光灯に代わり、低電力でかつ発熱量の少ない光源としてLEDが知られ、LEDを用いてアスタキサンチンを生産することが検討されている。
　特許文献３では、各種波長のLEDを用いてヘマトコッカス藻からのアスタキサンチン生産を検討した結果、540nm以下の波長をもつ青色光LEDのみを照射することで、高いアスタキサンチン生産性を得ることに成功している。特に、470nmを中心波長とする青色光LEDを用いた場合、同光量子束密度の蛍光灯と比較して約2倍のアスタキサンチンを生産することができた。しかしながら、その時の培養液あたりのアスタキサンチン濃度は培養12日後で25mg/Lと小さいものであり、商業生産的に実用的とされる培養濃度に達していなかった。
　特許文献４では、寒天プレート上のヘマトコッカス藻コロニーに青色光LEDと赤色光LEDを交互に照射することで、ヘマトコッカス藻の細胞数の増加が促進されることが記載されている。しかしながら、シスト化させた後のアスタキサンチン生産段階について言及されておらず、アスタキサンチンが生産されているかどうかも記載されていない。ヘマトコッカス藻は、生長したのちに、ストレスによりシスト化が起こり、アスタキサンチンを大量に蓄積することが知られているので、本文献ではアスタキサンチン生産がアップするかどうかは判断できない。
特開平3-83577号 特開2007-97584号 特開2004-147641号 国際公開公報WO2013-021675
　低電力でかつ発熱量の少ないLEDを用いて、540nm以下の波長をもつ青色光LEDのみで微細藻を培養した時よりもアスタキサンチン含有量が高く、かつアスタキサンチン濃度が100mg/L以上生産する培養方法が求められていた。
　本発明は、省電力であり光を透過する部分の温度上昇を抑えることができるLEDを用いて、蛍光灯よりも効率の良いアスタキサンチンの生産することを目的とする。
　上記目的を解決するために鋭意検討した結果、微細藻をピーク波長が420～500nmの青色光LEDとピーク波長が620～690nmの赤色光LEDの両方を同時に照射しながら培養することで効率よくアスタキサンチンを生産することを見出した。
　本発明は以下の（１）～（６）のアスタキサンチンの生産方法を要旨とする。
（１）微細藻を培養して藻体内にアスタキサンチンを生産させるアスタキサンチンの生産方法において、培養期間中の少なくともアスタキサンチン生産培養期間の光照射をピーク波長が420～500nmの青色光LEDとピーク波長が620～690nmの赤色光LEDを併用して行うことを特徴とするアスタキサンチンの生産方法。
（２）ピーク波長420～500nmの青色光LEDとピーク波長620～690nmの赤色光LED の比が光量子束密度で1:19～19:1である（１）のアスタキサンチン生産方法。
（３）ピーク波長420～500nmの青色光LEDとピーク波長620～690nmの赤色光LED の光量子束密度がそれぞれ20μmol/m2/s以上であることを特徴とする（１）又は（２）のアスタキサンチン生産方法。
（４）微細藻がヘマトコッカス属であること特徴とする（１）ないし（３）いずれかのアスタキサンチン生産方法。
（５）培養液あたりのアスタキサンチン生産量が100mg/L以上である（１）ないし（４）いずれかのアスタキサンチン生産方法。
（６）培養液あたりのアスタキサンチン生産量が300mg/L以上である（５）のアスタキサンチン生産方法。
（７）アスタキサンチン含有量が300mg/L以上である微細藻の培養液。
（８）アスタキサンチン含有量が7.0重量％以上（乾燥藻体中）である微細藻の培養藻体。
　本発明により、従来のアスタキサンチンの製造方法や装置を大きく変えることなく、アスタキサンチンを効率よく生産することができる。
実施例１で用いた青色光LEDと赤色光LEDのスペクトルを示す図である。 実施例２の培養液あたりの乾燥藻体重量を示す図である。 実施例２の乾燥藻体あたりのアスタキサンチン含有量を示す図である。 実施例２の培養液あたりのアスタキサンチン生産量を示す図である。
　本発明は微細藻を利用したアスタキサンチン生産方法に関し、ピーク波長が420～500nmの青色光LEDとピーク波長620～690nmの赤色光LEDを微細藻に照射する工程を含むことを特徴とする。
　本発明では、アスタキサンチンを生産することができる微細藻を用いることができる。ここでいう微細藻は光合成をするものに限定される。微細藻としては、シアノバクテリア、紅藻、褐藻、緑藻、ケイ藻, 真正眼点藻などが知られているが、本発明の微細藻はアスタキサンチンを生産することができる微細藻に限定される。アスタキサンチンを生産する微細藻としては、ヘマトコッカス属に属する微細藻(ヘマトコッカス藻)が一般的に用いられる。
　ヘマトコッカス藻では、ヘマトコッカス・ラクストリス（Haematococcus lacustris）、ヘマトコッカス・プルビアリス（H. pluvialis）、ヘマトコッカス・カペンシス（H. capensis）、ヘマトコッカス・ドロエバケンシ（H. droebakensi）、ヘマトコッカス・ジンバブエンシス（H. zimbabwiensis）などを用いることができる。中でも、ヘマトコッカス・ラクストリス及びヘマトコッカス・プルビアリスが好ましく用いられる。
 ヘマトコッカス属以外でもアスタキサンチンを生産する微細藻を用いることができる。例えば、クロレラ属であるクロレラ・ゾフィンギエンシス(Chlorella zofingiensis)、モノラフィデイウム属(Monoraphidium sp.)の微細藻、その他にVischeria helvetica、Coelastrella、Scenedesmus、Chlamydomonas nivalis、Protosiphon botryoides、Neochloris wimmeriなどを挙げることができる。
　微細藻の培養に用いる培地としては特に制限がないが、培地の雑菌汚染を防止するために炭素源を含まない独立栄養培地を用いるのが好ましい。一般に、増殖に必要な窒素、微量金属の無機塩、ビタミン類などを含む独立栄養培地が用いられる。例えば、ＶＴ培地、Ｃ培地、ＭＣ培地、ＭＢＭ培地、ＭＤＭ培地などの培地（藻類研究法　千原光雄・西澤一俊編、共立出版（1979）を参照）、ＢＧ－１１培地、およびこれらの改変培地などが用いられる。
　また、培地中で微細藻を培養する際は、二酸化炭素を含む空気を通気することが好ましい。二酸化酸素を含まない空気を通気することでも培養できるが、微細藻の生育が遅くなるため、0.1～5%の二酸化炭素、好ましくは0.5～3%の二酸化炭素含む空気を通気し培養する。通気なしでも培養は可能であるが、良好な生育のためには通気量0.01～3.0vvm、好ましくは0.015～1vvm、またpHは5～10、好ましくは6～9である。
　培養温度としては、ヘマトコッカス・ラクストリス及びヘマトコッカス・プルビアリスを利用する場合を例に採れば、例えば10～45℃ の範囲であり、好ましくは18～38℃ の範囲である。また、培地のｐＨは、5.0～9.5の範囲、好ましくは6.0～9.0の範囲に調整される。
　アスタキサンチン生産のための光照射は、微細藻をピーク波長が420～500nmの青色光LEDとピーク波長が620～690nmの赤色光LEDを併用する。微細藻の培養期間中、全期間、あるいは、一定期間、青色光LEDと赤色光LEDの両方を照射することが必要である。特に、アスタキサンチン生産培養の時期（シスト細胞の時期）に青色光LEDと赤色光LEDを併用して照射することが重要である。青色光LEDと赤色光LEDの両方を照射する場合は、同時に照射することで最も効率よくアスタキサンチンを生産することができるが、24時間以内に青色光LEDと赤色光LEDを交互に照射する方法でも効率よくアスタキサンチンを生産できる。あるいは青色光LEDと赤色光LEDを交互に点滅させるような照射方法でもよい。
　光照射工程における光源としては、LED、電球、蛍光灯などを用いることができるが、LED以外の光源は、使用する光源の光の波長スペクトルが広域にわたるため、不要な光をカットすること必要があるため、効率が悪くなる。LEDを用いれば一部の光をカットするといった特別の手段を要することなく波長域を絞った光の照射が可能となるため、少ない照射エネルギーで効率よくアスタキサンチンを生産することが可能になる。LEDとして、有機EL照明を用いてもよい。
　LEDチップは効率的な照射が行えるように複数個備えられることが好ましい。光源を複数個使用する場合にはできるだけ均一な光の照射を可能にすべく、各光源が互いに均等な間隔をおいて配置されることが好ましい。また、青色光LEDと赤色光LEDの複数個のチップを独立したパネルにして照射をしても良いし、青色光LEDと赤色光LEDの複数個のチップを一定割合で同一パネルに埋め込んだパネルを用いて照射してもよい。
　照射する青色光LEDの波長は、ピーク波長が420～500nm範囲であり、好ましくは430～490nm、赤色光LEDの波長は 620～690nm範囲であり、好ましくは630～680nmである。
　青色光LED、赤色光LEDともピーク波長が異なる2種類以上の光を用いることもできる。例えばピーク波長が430nmと470nmの青色光LEDと630nmと660nmの赤色光LEDを用いて照射することもできる。
　青色光LED、赤色光LED波長幅の狭い光を用いることが好ましい。アスタキサンチン生産に適した波長領域の光のみを選択して照射することで、より効率的なアスタキサンチン生産ができるからである。
　微細藻を培養中に同時照射するピーク波長420～500nmの青色光LEDとピーク波長620～690nmの赤色光LED のそれぞれの比は、同時照射するのであれば限定されないが、その比は光量子束密度で1:19～19:1であり、好ましくは1:5～5:1である。1:2.5～5:1、さらに、1:2～4:1が特に好ましい。
　光の照射方法も特に限定されず、例えば連続的に照射したり、インターバルを設けて間欠的に照射したりすることができる。ここでの「間欠的に照射」にはパルス光による照射を含む。光の照射を間欠的に行なえば、消費電力を削減できる。
　ヘマトコッカス・ラクストリス及びヘマトコッカス・プルビアリスなどのヘマトコッカス藻は、運動性があり細胞増殖がさかんな緑色の浮遊細胞の状態と、温度、強光、塩、水分量、栄養状態などの極端な環境変化のストレスによりシスト化するシスト細胞の状態がある。シスト化すると藻体内にアスタキサンチンを蓄積し、赤色になる。
ピーク波長420～500nmの青色光LEDとピーク波長620～690nmの赤色光LEDを用いた光照射は、浮遊細胞の状態でもシスト細胞の状態でも使用することができる。浮遊細胞はアスタキサンをわずかに生産するが、その生産速度は遅いため、どちらかというと良好な細胞分裂及び増殖を得るために有効である。シスト細胞の期間はアスタキサンチン生産速度が早く高濃度に蓄積するため、アスタキサンチンを効率よく生産することができる。
　ヘマトコッカス藻の培養初期は運動性がある浮遊細胞が多く細胞密度も低いため光量子束密度が20μmol/m2/s以下でも良く増殖させることができる。浮遊細胞の状態で培養する際は、LED以外の光源を用いた場合でも良く増殖する。また、ピーク波長420～500nmの青色光LEDとピーク波長620～690nmの赤色光LEDの一方の波長のLEDのみでも培養することが可能である。
　温度、強光、塩などでストレスをかけてヘマトコッカス藻をシスト化させた場合の培養時の光量子束密度は特に限定されないが、例えば、光透過幅(直径、厚さ)が70mm以下の培養装置であれば、ピーク波長420～500nmの青色光LEDとピーク波長620～690nmの赤色光LEDそれぞれが20μmol/m2/s以上、好ましくはそれぞれが50μmol/m2/s以上、さらに好ましくは100μmol/m2/s以上、150μmol/m2/s以上照射することで効率よくアスタキサンチンを生産することができる。それ以上の光透過幅の培養装置であれば、更に大きくしてもよい。すなわち、シスト細胞の状態のヘマトコッカス藻を培養する場合、青色光LEDと赤色光LEDの両方を照射することで効率よくアスタキサンチンを生産することができる。光量子束密度の上限は特にないが、エネルギーコストと効果のバランスから3000μmol/m2/s以下が好ましく、1000μmol/m2/s以下が特に、好ましい。
　上記の培養により、培養液あたり、アスタキサンチン（フリー体として）を100mg/L以上の濃度で、好ましくは、300mg/L以上で、より好ましくは、400mg/L以上の濃度で含む培養液を得ることが可能になる。また、アスタキサンチン含有量が7.0重量％以上（乾燥藻体中）である微細藻の培養藻体を得ることができる。
　培養液からアスタキサンチンを回収する方法は特に限定されない。例えばアスタキサンチンを含む微細藻培養液をろ過、遠心処理などの固液分離手段により分離して微細藻細胞を集めたのち、乾燥（自然乾燥、ドラム乾燥、熱風式乾燥、噴霧乾燥、凍結乾燥など）することで微細藻の乾燥物を得ることができる。得られた微細藻の乾燥物は、アスタキサンチン（フリー体として）を1～10質量％の濃度で含む。好ましくは、4～10質量％の濃度で含む。
　アスタキサンチンを含む湿藻体または上記乾燥物を破砕処理、抽出、回収することでアスタキサンチンを含む成分を得ることができる。アスタキサンチンの抽出・回収方法に特に制限はなく、当業者が通常用いる方法が用いられる。例えば、微細藻の乾燥物を機械的に破壊した後に、アスタキサンチンが抽出される。抽出方法としては、クロロホルム、ヘキサン、アセトン、メタノール、エタノールなどの有機溶媒や食用油脂を用いて抽出する化学的抽出方法、あるいは緑藻の乾燥物の圧搾などによる物理的抽出方法が挙げられる。あるいは、超臨界抽出法を用いて抽出・回収してもよい。抽出溶媒を留去して、アスタキサンチン含有油が得られる。
培養液へのLED光照射方式としては、リアクターに含まれる培養液の外側から照射する外照式照射とリアクターに含まれる培養液中にLEDを投入する内照式照射があるが、その方式に特に制限されず、どちらを使用することも可能である。なお、外照式照射の場合の光量子束密度は、容器の外表面で測定し、内照式照射の場合は培養液と接した容器表面で測定した値を用いる。外照式照射と内照式照射を併用しても構わない。
　アスタキサンチン生産用微細藻培養装置は、二酸化炭素が供給でき、かつピーク波長が420～500nmの青色光LEDとピーク波長が620～690nmの赤色光LEDを併用し培養液に光照射ができる装置であれば、特に制限はない。例えば、小スケールの場合は、厚さ10～50mm程度の扁平培養瓶、直径20～70mm程度のガラスチューブが好ましく用いられる。大スケールの場合は、ビニール袋、ガラス製、プラスチック製などのチューブまたは透明板で構成され、必要に応じて照明器および撹拌機を備えた培養槽が用いられる。大スケールで培養する場合、好ましくは光透過幅(直径、厚さ)が400mm以下、さらに好ましくは70mm以下にすることが好ましい。このような培養槽としては、例えば、平板培養槽(フラットパネル培養藻)、チューブ型培養槽、エアドーム型培養槽、中空円筒型培養槽、タンク型内照式培養槽などが用いられる。また、いずれの場合も、密閉容器が好ましく用いられる。例えば、特開2012-29578に開示されているようなLEDの周囲にチューブを巻きつけるタイプや特開2014-39491に開示されているようなハイブリットタイプのリアクターを用いることができる。
　アスタキサンチンの培養は屋外に設けられ太陽光を利用するタイプと室内に設けられ人工光を用いるタイプと両方を併用するタイプがある。太陽光を利用する方法はエネルギーコストがかからず安価に製造できるが、設備が粗放である場合、混雑物、混入物などにより品質が低下することがある。いずれのタイプであっても、本発明を利用することができる。自然光を利用する場合であっても、培養期間中の少なくともアスタキサンチン生産培養期間に、420～500nmの青色光LEDとピーク波長が620～690nmの赤色光LEDによる照射を併用することにより、本発明の効果を得ることができる。
　人工光のみで培養する場合は、少なくともアスタキサンチン生産培養期間は420～500nmの青色光LEDとピーク波長が620～690nmの赤色光LEDを併用する。増殖培養の期間は蛍光灯等他の光源を用いてもよいが、アスタキサンチン生産培養期間と同様に青色光と赤色光を併用してもよい。
　青色光と赤色光の光量子束密度の比は1:19～19:1であり、好ましくは1:5～5:1である。さらに好ましくは、1:2.5～5:1であり、1:2～4:1が特に好ましい。
　以下、実施例を用いて本発明をより詳細に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
　本発明において、アスタキサンチン量は以下の方法で測定した。
Luna 3μm Silicaカラムを用いたHPLCによるアスタキサンチンの定量
　試料を一定量採取し、アセトンを加え破砕する。遠心分離により上清を回収する。上清に0.05M Tris-HCl バッファーとコレステロールエステラーゼ溶液を加え、37℃で45分間反応させ、アスタキサンチンをフリー体にする。アスタキサンチンを石油エーテルにて抽出し、溶媒留去、乾燥する。それをヘキサン：アセトン＝82:18に溶解しHPLC用試料溶液とする。下記のHPLC分析条件にて、測定する。アスタキサンチンは幾何異性体を有するので、それらのピークの面積から、アスタキサンチンの含有量を解析する。
　HPLC分析条件
使用カラム：Luna 3μm Silica(2) 100A 150*4.6mm（Phenomenex社）
使用移動相溶媒：Hexane:Acetone=82:18(v/v)
装置起動用メソッド：A-JUNSOU
A-JUNSOUメソッドの設定内容
　試料注入量：20μL
　移動相流量：1.2mL/min
　カラム温度：30℃
　DAD：455nm, 467nm, 475nm
　測定時間：13min
ヘマトコッカスの培養（増殖培養）
　細胞数50万個/mlの浮遊細胞を含むヘマトコッカス・ラクストリス　NIES144株（国立環境研究所微生物系統保存施設保存）培養液15mlとBG11改変A培地（表1）750mlを内径50mm、高さ500mmのガラス製透明培養容器４本にそれぞれ注入した。光量子束密度50μmol/m2/sになるように蛍光灯による連続光照射下、25℃ において1%二酸化炭素を含む空気を通気攪拌しつつ培養した。その結果、培養5日目でそれぞれ45万個/mlと浮遊細胞の増殖が認められた。
各種光源を用いたヘマトコッカスの培養（アスタキサンチン生産培養）
　次に、それぞれ培養液中に2g/L濃度になるように塩化ナトリウムを添加後、７種類の光源を用いてそれぞれ光量子束密度300μmol/m2/sになるように光照射し、27℃で1%二酸化炭素を含む空気を通気攪拌しつつ培養しアスタキサンチン生産を行った。この時の光源は、蛍光灯、波長450nmの青色光LEDの単独照射、波長660nmの赤色光LEDの単独照射、波長450nmの青色光LEDと波長660nmの赤色光LEDの同時連続照射（青色光と赤色光の比は、1:2、1:1、2:1、4:1の4とおり）である。実験に用いた青色光LEDと赤色光LEDのスペクトルを図１に示した。14日間の培養の後、濾過法により乾燥藻体を得た。乾燥藻体の重量を測定し、培養液あたりの乾燥藻体重量を求めた。また、逆相HPLCにより乾燥藻体中のアスタキサンチン含有量と培養液あたりのアスタキサンチン生産量を求めた。                                                                                                    
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　結果を表２に示す。
　青色光LEDのみの光照射の場合は、蛍光灯と比較して乾燥藻体重量は2.4g/Lと低かったが、アスタキサンチン含有量が3.9重量%、培養液あたりのアスタキサンチン生産量が94mg/Lと高くなった。赤色光LEDのみの光照射の場合は、蛍光灯と比較して乾燥藻体重量は3.3g/Lと高かったが、アスタキサンチン含有量が1.3重量%と低く、培養液あたりのアスタキサンチン生産量は43mg/Lであった。
　青色光LEDと赤色光LEDを同時照射した場合は、光量子束密度の青赤比1:2、1:1、2:1、4:1のいずれにおいても、蛍光灯と比較してアスタキサンチン生産量がそれぞれ131mg/L、162mg/L、155mg/L、156mg/Lと高くなった。青色光と赤色光を併用した場合、いずれにおても、蛍光灯、青色光単独、赤色光単独で用いた場合と比較して、アスタキサンチン生産量が大きく向上した。青色光：赤色光の比を１：２～４：１にするのが好ましいことが分かった。特に、1:1の比で同時連続照射した結果は、乾燥藻体重量は蛍光灯と同じ3.3g/Lであるがアスタキサンチン含有量が4.9重量%であり、培養液あたりのアスタキサンチン濃度は162mg/Lと蛍光灯の2倍であり、青色光LEDのみの場合と比較して1.7倍であった。
　以上より、培養期間中のうち、アスタキサンチン生産培養期間に青色光LEDと赤色光LEDを同時照射することにより、藻体中のアスタキサンチン含有量が高まり、その結果、培養液あたりのアスタキサンチンの生産量を高めることができることが確認された。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
ヘマトコッカスの培養（増殖培養）
　細胞数50万個/mlの浮遊細胞を含むヘマトコッカス・ラクストリス　NIES144株培養液15mlとBG11改変B培地（表３）750mlを内径50mm、高さ500mmのガラス製透明培養容器に注入した。波長450nmの青色光LED (光量子束密度50μmol/m2/s)、波長660nmの赤色光(光量子束密度LED 30μmol/m2/s)による同時連続光照射下、25℃ において1%二酸化炭素を含む空気を通気攪拌しつつ培養した。その結果、培養4日目で36万個/mlの浮遊細胞の増殖が認められた。
ヘマトコッカスの培養（アスタキサンチン生産培養）
　次に、培養液中に2g/L濃度になるように塩化ナトリウムを添加後、波長450nmの青色光(光量子束密度LED 300μmol/m2/s)、波長660nmの赤色光LED (光量子束密度250μmol/m2/s)による同時連続光照射下、28℃で1%二酸化炭素を含む空気を通気攪拌しつつアスタキサンチン生産を行った。21日間培養し、経時変化を観察した。濾過法により乾燥藻体を得、重量を測定し、培養液あたりの乾燥藻体重量を求めた。逆相HPLCによりアスタキサンチン含有量と培養液あたりのアスタキサンチン濃度を求めた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　塩化ナトリウムを添加後の培養日数と培養液あたりの乾燥藻体重量、アスタキサンチン含有量（重量％）、培養液あたりのアスタキサンチン生産量(mg/L)の結果を図２～図４に示した。培養21日目で乾燥藻体重量は5.8g/L、乾燥藻体中のアスタキサンチン含有量は7.2重量%、アスタキサンチン生産量は418mg/Lであった。
　本発明の方法により、低エネルギー使用量で、かつ、培養液あたりのアスタキサンチン生産量を高めることができる。

 
 

Claims (8)

  1. 　微細藻を培養して藻体内にアスタキサンチンを生産させるアスタキサンチンの生産方法において、培養期間中の少なくともアスタキサンチン生産培養期間の光照射をピーク波長が420～500nmの青色光LEDとピーク波長が620～690nmの赤色光LEDを併用して行うことを特徴とするアスタキサンチンの生産方法。
  2. 　ピーク波長420～500nmの青色光LEDとピーク波長620～690nmの赤色光LED の比が光量子束密度で1:19～19:1である請求項１のアスタキサンチン生産方法。
  3. 　ピーク波長420～500nmの青色光LEDとピーク波長620～690nmの赤色光LED の光量子束密度がそれぞれ20μmol/m2/s以上であることを特徴とする請求項１又は２のアスタキサンチン生産方法。
  4. 　微細藻がヘマトコッカス属であること特徴とする請求項１ないし３いずれかのアスタキサンチン生産方法。
  5. 　培養液あたりのアスタキサンチン生産量が100mg/L以上である請求項１ないし４いずれかのアスタキサンチン生産方法。
  6. 　培養液あたりのアスタキサンチン生産量が300mg/L以上である請求項５のアスタキサンチン生産方法。
  7. 　アスタキサンチン含有量が300mg/L以上である微細藻の培養液。
  8. 　アスタキサンチン含有量が7.0重量％以上（乾燥藻体中）である微細藻の培養藻体。
     
PCT/JP2015/053220 2014-04-03 2015-02-05 アスタキサンチンの生産方法 WO2015151577A1 (ja)

Priority Applications (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201580017963.5A CN106133147A (zh) 2014-04-03 2015-02-05 虾青素的生产方法
US15/128,907 US20170107554A1 (en) 2014-04-03 2015-02-05 Method for producing astaxanthin
MYPI2016703525A MY188535A (en) 2014-04-03 2015-02-05 Method for producing astaxanthin
JP2016511421A JP6158427B2 (ja) 2014-04-03 2015-02-05 アスタキサンチンの生産方法

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2014-077246 2014-04-03
JP2014077246 2014-04-03

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2015151577A1 true WO2015151577A1 (ja) 2015-10-08

Family

ID=54239918

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/JP2015/053220 WO2015151577A1 (ja) 2014-04-03 2015-02-05 アスタキサンチンの生産方法

Country Status (5)

Country Link
US (1) US20170107554A1 (ja)
JP (2) JP6158427B2 (ja)
CN (1) CN106133147A (ja)
MY (1) MY188535A (ja)
WO (1) WO2015151577A1 (ja)

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2016104487A1 (ja) * 2014-12-22 2016-06-30 国立大学法人東京大学 カロテノイドの大量生産方法
CN106501395A (zh) * 2016-10-19 2017-03-15 青岛森淼实业有限公司 一种雨生红球藻提取物中虾青素的分离检测方法
WO2018043147A1 (ja) 2016-09-01 2018-03-08 昭和電工株式会社 光合成微細藻類の培養方法
WO2018043146A1 (ja) 2016-09-01 2018-03-08 昭和電工株式会社 光合成微細藻類の培養方法
WO2018056160A1 (ja) * 2016-09-21 2018-03-29 日本水産株式会社 アスタキサンチンの生産方法

Families Citing this family (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN107384907A (zh) * 2017-07-13 2017-11-24 荆楚理工学院 一种富硒虾青素小球藻粉的制备方法
EP3686283A1 (en) * 2019-01-22 2020-07-29 Reliance Industries Limited A method for enhancement of productivity in microalgae
US11473051B2 (en) * 2019-02-27 2022-10-18 Nichia Corporation Method of cultivating algae and photobioreactor
CN114304021A (zh) * 2022-01-12 2022-04-12 宁波大学 一种通过调控环境因子促进拟穴青蟹幼蟹生长及蜕壳的方法
CN117604060A (zh) * 2024-01-24 2024-02-27 逢时(青岛)海洋科技有限公司 一种基于固定化胆固醇酯酶的游离虾青素及其制备方法

Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2003033683A1 (fr) * 2001-10-16 2003-04-24 National Institute Of Advanced Industrial Science And Technology Micro-organismes et production de composes de carotinoide
WO2005059087A1 (en) * 2003-12-16 2005-06-30 Inha-Industry Partnership Institute Multi-layered photobioreactor and method of culturing photosynthetic microorganisms using the same
CN102337215A (zh) * 2011-10-20 2012-02-01 烟台华融生物科技有限公司 培养雨生红球藻及生产虾青素的方法
WO2013021675A1 (ja) * 2011-08-05 2013-02-14 昭和電工株式会社 藻類培養方法及び藻類培養装置
WO2014119794A1 (ja) * 2013-02-04 2014-08-07 昭和電工株式会社 緑藻類生育促進方法
WO2014119792A1 (ja) * 2013-02-04 2014-08-07 昭和電工株式会社 緑藻類生育促進方法
WO2014119789A1 (ja) * 2013-02-04 2014-08-07 昭和電工株式会社 緑藻類生育促進方法

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP4045663B2 (ja) * 1998-08-27 2008-02-13 大日本インキ化学工業株式会社 アスタキサンチン含有ヘマトコッカスの製造方法
JP2007097584A (ja) * 2005-09-06 2007-04-19 Yamaha Motor Co Ltd アスタキサンチン含有量の高い緑藻およびその製造方法
CN103114121A (zh) * 2013-01-31 2013-05-22 宁波大学 一种雨生红球藻生产虾青素的方法

Patent Citations (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2003033683A1 (fr) * 2001-10-16 2003-04-24 National Institute Of Advanced Industrial Science And Technology Micro-organismes et production de composes de carotinoide
WO2005059087A1 (en) * 2003-12-16 2005-06-30 Inha-Industry Partnership Institute Multi-layered photobioreactor and method of culturing photosynthetic microorganisms using the same
WO2013021675A1 (ja) * 2011-08-05 2013-02-14 昭和電工株式会社 藻類培養方法及び藻類培養装置
CN102337215A (zh) * 2011-10-20 2012-02-01 烟台华融生物科技有限公司 培养雨生红球藻及生产虾青素的方法
CN102766578A (zh) * 2011-10-20 2012-11-07 烟台华融生物科技有限公司 雨生红球藻的培养生产方法
WO2014119794A1 (ja) * 2013-02-04 2014-08-07 昭和電工株式会社 緑藻類生育促進方法
WO2014119792A1 (ja) * 2013-02-04 2014-08-07 昭和電工株式会社 緑藻類生育促進方法
WO2014119789A1 (ja) * 2013-02-04 2014-08-07 昭和電工株式会社 緑藻類生育促進方法

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
KIM, M.K. ET AL.: "VARIATIONS OF BIOMASS AND ASTAXANTHIN OF MARINE CHLORELLA SPP. CULTURED UNDER THE DIFFERENT COMPOSITIONS OF RED AND BLUE WAVELENGTH BY LIGHT EMITTING DIODE", EUROPEAN JOURNAL OF PHYCOLOGY, vol. 46, no. Supplement 1, 26 September 2011 (2011-09-26), pages 141 *
KOBAYASHI, M. ET AL.: "Effects of light intensity, light quality, and illumination cycle on astaxanthin formation in a green alga, Haematococcus pluvialis", JOURNAL OF FERMENTATION AND BIOENGINEERING, vol. 74, no. 1, 1992, pages 61 - 63, XP023595543 *

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2016104487A1 (ja) * 2014-12-22 2016-06-30 国立大学法人東京大学 カロテノイドの大量生産方法
WO2018043147A1 (ja) 2016-09-01 2018-03-08 昭和電工株式会社 光合成微細藻類の培養方法
WO2018043146A1 (ja) 2016-09-01 2018-03-08 昭和電工株式会社 光合成微細藻類の培養方法
EP3508566A4 (en) * 2016-09-01 2020-01-22 Showa Denko K.K. METHOD FOR CULTURING PHOTOSYNTHETIC MICROALGAE
WO2018056160A1 (ja) * 2016-09-21 2018-03-29 日本水産株式会社 アスタキサンチンの生産方法
CN109642246A (zh) * 2016-09-21 2019-04-16 日本水产株式会社 虾青素的生产方法
CN106501395A (zh) * 2016-10-19 2017-03-15 青岛森淼实业有限公司 一种雨生红球藻提取物中虾青素的分离检测方法

Also Published As

Publication number Publication date
MY188535A (en) 2021-12-20
JP6158427B2 (ja) 2017-07-05
US20170107554A1 (en) 2017-04-20
CN106133147A (zh) 2016-11-16
JPWO2015151577A1 (ja) 2017-04-13
JP2017158587A (ja) 2017-09-14

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP6158427B2 (ja) アスタキサンチンの生産方法
Zhang et al. Attached cultivation of Haematococcus pluvialis for astaxanthin production
Wang et al. Combined effect of initial biomass density and nitrogen concentration on growth and astaxanthin production of Haematococcus pluvialis (Chlorophyta) in outdoor cultivation
Markou Effect of various colors of light-emitting diodes (LEDs) on the biomass composition of Arthrospira platensis cultivated in semi-continuous mode
Fábregas et al. Two-stage cultures for the production of astaxanthin from Haematococcus pluvialis
Nguyen Astaxanthin: a comparative case of synthetic vs. natural production
Celekli et al. Effect of pH, light intensity, salt and nitrogen concentrations on growth and β-carotene accumulation by a new isolate of Dunaliella sp
Suh et al. A novel double-layered photobioreactor for simultaneous Haematococcus pluvialis cell growth and astaxanthin accumulation
JP2007097584A (ja) アスタキサンチン含有量の高い緑藻およびその製造方法
Dragoş et al. ASTAXANTHIN PRODUCTION FROM A NEW STRAIN OF HAEMATOCOCCUS PLUVIALIS GROWN IN BATCH CULTURE.
WO2005116238A1 (ja) キサントフィルの製造方法
KR101545274B1 (ko) Led 조사를 이용한 아스타잔틴 함량이 증가된 미세조류의 제조방법 및 상기 제조방법에 의해 제조된 아스타잔틴 함량이 증가된 미세조류
WO2018043146A1 (ja) 光合成微細藻類の培養方法
Nwoba et al. Can solar control infrared blocking films be used to replace evaporative cooling for growth of Nannochloropsis sp. in plate photobioreactors?
WO2018056160A1 (ja) アスタキサンチンの生産方法
Powtongsook et al. Photoautotrophic cultivation of Chlorococcum humicola in stirred tank and airlift photobioreactors under different light settings and light supplying strategies for biomass and carotenoid production
RU2730670C2 (ru) Способ культивирования вида haematococcus для производства астаксантина
US20110104791A1 (en) Media and Process for Culturing Algae
Parveen et al. Enhancing the bio-prospective of microalgae by different light systems and photoperiods
Choi et al. Multistage operation of airlift photobioreactor for increased production of astaxanthin from Haematococcus pluvialis
Niangoran et al. Study of the LEDs spectrums influence on the Spirulina platensis growth in batch culture
JPWO2018043147A1 (ja) 光合成微細藻類の培養方法
JP4961550B2 (ja) アスタキサンチンの製造方法
Tran et al. New angled twin–layer porous substrate photobioreactors for cultivation of Nannochloropsis oculata
Bas et al. Determinants of astaxanthin industrial-scale production under stress caused by light photoperiod management of Haematococcus pluvialis cultivation

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 15773226

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

ENP Entry into the national phase

Ref document number: 2016511421

Country of ref document: JP

Kind code of ref document: A

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: IDP00201605304

Country of ref document: ID

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 15128907

Country of ref document: US

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

122 Ep: pct application non-entry in european phase

Ref document number: 15773226

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1