WO2015034052A1 - ヒトインテグリンａ６ｂ４と特異的に反応する抗体 - Google Patents

ヒトインテグリンａ６ｂ４と特異的に反応する抗体 Download PDF

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amino acid
seq
complementarity determining
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和広 森下
加珠子 兼田
良和 黒澤
仁 黒澤
克之 見供
克志 甲田
由範 鵜飼
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国立大学法人 宮崎大学
学校法人藤田学園
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    • C12N2510/00—Genetically modified cells
    • C12N2510/02—Cells for production

Definitions

  • the present invention relates to an antibody that specifically reacts with human integrin A6B4.
  • AML adult acute myeloid leukemia
  • This ITGA6 / B4 is found to be highly expressed not only in EVI1 high-expressing leukemia but also in leukemia recurrence patients after treatment, and is a phenomenon commonly seen in intractable leukemia. Furthermore, it has been identified that this high expression contributes to enhancement of adhesion to osteoblasts and laminin, which is an extracellular matrix, as well as acquisition of resistance to various anticancer agents (Non-patent Document 1).
  • LSC leukemia stem cells
  • HSC hematopoietic stem cells
  • CAM-DR cell adhesion-dependent chemotherapy resistance
  • LSC leukemia stem cells
  • HSC hematopoietic stem cells
  • the integrin family involved in the adhesion of the bone marrow niche of HSC is mainly VLA-4 (ITGA4 / B1) (Non-patent Document 2), but it was found that LSC depends on ITGA6 / B4.
  • Patent Document 1 a specific adhesion molecule related to CAM-DR that leads to refractory, is thought to lead to the development of effective therapies for refractory leukemia that had not been available before.
  • An antibody capable of reacting with anti-ITGA6B4 was produced by Biogen Idec MA INC and reported in 2007. This antibody is said to have the ability to inhibit cell proliferation and adhesion to laminin (Patent Document 2).
  • the present inventors searched for specific antigens (antibodies) for cancer cells by comprehensive isolation methods of human antibodies targeting many cancer cells based on the PhageDisplay method (Patent Document 3). ing. As a result, ITGA6 / B4 (antibody) was included in the obtained 29 types of targets, and the validity as an antibody drug target was proved from another viewpoint (Non-patent Document 3).
  • chemotherapeutic agents are not specific to cancer cells, and in order to show effects on cells in which cell division is activated, including normal cells, it is very important to control medication.
  • Met since a molecular target drug is a drug that is selectively designed for a specific target molecule, it is characterized in that side effects are reduced compared to a chemotherapeutic agent.
  • An antibody is also a molecular target drug, and its specificity for a target is further improved as compared with an enzyme inhibitor (kinase inhibitor) or the like. Accordingly, side effects are expected to be reduced, but characteristic side effects have been observed in individual antibody drugs.
  • ADCC antibody-dependent cytotoxicity
  • CDC complement-dependent cytotoxicity
  • the present invention specifically recognizes the integrin A6B4 (ITGA6B4) complex expressed on the cell membrane, inhibits the adhesion between the ITGA6B4 complex and laminin, thereby inhibiting the engraftment of cancer cells in the bone marrow niche, Furthermore, it was set as a problem to be solved to provide an anti-ITGA6 / B4 human antibody capable of remarkably enhancing the effect of an anticancer drug on an anticancer drug resistant strain. Furthermore, another object of the present invention is to provide a cancer cell cell adhesion inhibitor and a pharmaceutical composition using the above-mentioned anti-ITGA6 / B4 human antibody with few side effects in its use.
  • the present inventors have intensively studied in order to solve the above-mentioned problems, focusing on the fact that refractory leukemia stem cells have acquired anticancer drug resistance by engraftment in the bone marrow niche, and stable to the bone marrow niche. Anticipating that the effect of anticancer drugs can be improved by inhibiting natural engraftment, resulting in liberation or adhesion inhibition (this phenomenon is called "purge"), and kicking out of the niche Based on the idea that an antibody molecule is useful, the activity of recognizing human integrin A6B4 complex and increasing the sensitivity of cancer cells to anticancer agents by inhibiting the adhesion of cancer cells to the niche It was decided to search for an antibody having
  • the present inventors have established a method for isolating a fully human antibody against an intact protein on the cell surface based on the “display” display method.
  • This method uses a phage library that holds a huge repertoire, so the diversity of antibodies is high, and since cancer cells are directly screened, antibodies against complex proteins on the cell surface can be easily obtained. It is.
  • a plurality of antibodies against the ITGA6 / B4 complex expressed on the cancer cell membrane were obtained.
  • antibodies showing cancer specificity that react with many cancer cells such as kidney cancer and lung cancer including leukemia stem cells were selected.
  • a fully human IgG antibody was produced from the obtained antibody using recombinant DNA technology.
  • the present inventors have acquired anticancer drug resistance by engrafting the refractory leukemia stem cells in the bone marrow niche.
  • evacation treatment we devised “evacation treatment” with antibodies.
  • the main required drug effect is inhibition of engraftment in the bone marrow, and the other side effects may cause unexpected effects when considered on all cells expressing ITGA6B4. Therefore, in the present invention, an anti-ITGA6B4 antibody that does not affect cell proliferation was selected.
  • the anti-ITGA6 / B4 antibody of the present invention can inhibit the engraftment of leukemia stem cells in the bone marrow niche, and that the antibody having the engraftment inhibitory action reduces the resistance to anticancer agents.
  • the present invention has been completed.
  • an antibody against integrin A6B4 which specifically recognizes human integrin A6B4 complex and inhibits cell-cell adhesion.
  • an antibody against integrin A6B4 wherein the antibody specifically recognizes human integrin A6B4 complex, and the antibody comprises: (A) the ability to inhibit intercellular adhesion through integrin A6B4; (B) the ability to increase the sensitivity of cancer cells to anticancer agents; (C) a property that does not substantially affect cell growth; An antibody having at least two of them.
  • anticancer agent selected from the following (i) to (v): (i) ifosfamide, nimustine hydrochloride, procarbazine hydrochloride, cyclophosphamide, dacarbazine, and thioteba
  • An alkylating agent selected from: (Ii) an antimetabolite selected from cytarabine, enocitabine, gemcitabine hydrochloride, carmofur, tegafur and fluorouracil; (Iii) a plant alkaloid selected from etoposide, irinotecan, docetaxyl, paclitaxel, vincristine, vindesine and vinblastine; (Iv) an anticancer antibiotic selected from actinomycin D, idarubicin, doxorubicin, hydrorubicin, mitoxantrone and mitomycin C; (V) a platinum-based formulation selected from carbop
  • SEQ ID NOS: 1-3, 7 as heavy chain first complementarity determining region (VH CDR1), heavy chain second complementarity determining region (VH CDR2), and heavy chain third complementarity determining region (VH CDR3), respectively
  • VH CDR1 heavy chain first complementarity determining region
  • VH CDR2 heavy chain second complementarity determining region
  • VH CDR3 heavy chain third complementarity determining region
  • SEQ ID NOS: 1-3, 7 as heavy chain first complementarity determining region (VH CDR1), heavy chain second complementarity determining region (VH CDR2), and heavy chain third complementarity determining region (VH CDR3), respectively
  • a light chain first complementarity determining region (VL CDR1), light chain second complement comprising any amino acid sequence of any of -9, 13-15, 19-21, 25-27 or substantially the same amino acid sequence thereof
  • the amino acid sequence of any one of SEQ ID NOs: 4-6, 10-12, 16-18, 22-24, 28-30 as sex determining region (VL CDR2) and light chain third complementarity determining region (VL CDR3) respectively
  • the antibody according to any one of (1) to (7), which comprises an amino acid sequence substantially identical thereto.
  • a cell adhesion inhibitor for cancer cells comprising the antibody according to any one of (1) to (11).
  • the antibody according to any one of (1) to (11) which is used to improve the sensitivity of cancer cells to the anticancer agent when used in combination with another anticancer agent.
  • Cell adhesion inhibitor of cancer cells 18.
  • a pharmaceutical composition comprising the antibody according to any one of (1) to (11) and a pharmaceutically acceptable carrier.
  • a pharmaceutical composition comprising the antibody according to any one of (1) to (11), For patients who need it to increase drug sensitivity of cancer cells, inhibit growth of cancer cells and / or kill cancer cells, (A) the antibody according to any one of (1) to (11), and (b) an alkylating agent selected from ifosfamide, nimustine hydrochloride, procarbazine hydrochloride, cyclophosphamide, dacarbazine and thioteba; cytarabine, enocitabine, An antimetabolite selected from gemcitabine hydrochloride, carmofur, tegafur and fluorouracil; a plant alkaloid selected from etoposide, irinotecan, docetaxyl, paclitaxel, vincristine, vindesine and vinblastine; actinomycin D, idarubicin, doxorubicin, hydranthrubicin Anticancer antibiotic selected from mitomycin C; selected from platinum
  • the pharmaceutical composition according to (19), wherein the cancer cell is a cancer cell engrafted in a bone marrow niche (21), wherein the cancer is a solid cancer or a blood cancer (19) or ( 20) The pharmaceutical composition according to 20).
  • Solid cancer is lung cancer, colon cancer, stomach cancer, bladder cancer, pancreatic cancer, prostate cancer, liver cancer, cervical cancer, uterine cancer, ovarian cancer, breast cancer, head and neck cancer Or the pharmaceutical composition according to (21), wherein the composition is skin cancer.
  • the pharmaceutical composition according to (21), wherein the blood cancer is leukemia, lymphoma, or myeloma.
  • the present invention further provides a method for suppressing or treating cancer, comprising administering the above-described antibody of the present invention to a subject.
  • the present invention further provides a method for enhancing the effect of an anticancer agent, comprising administering the above-described antibody of the present invention to a subject.
  • the present invention further provides a method for inhibiting cell adhesion of cancer cells, comprising administering the above-described antibody of the present invention to a subject.
  • the present invention further provides use of the above-described antibody of the present invention for the production of a cell adhesion inhibitor or a pharmaceutical composition for cancer cells.
  • the antibody of the present invention can specifically recognize human ITGA6B4 complex and can specifically recognize refractory cancer cells expressing ITGA6B4 complex on the cell membrane.
  • the antibody of the present invention can also inhibit the engraftment of cancer cells to the bone marrow niche and enhance the effect of the anticancer agent against the anticancer drug resistant strain.
  • the antibody of the present invention can reduce unexpected effects, that is, side effects, because the antibody alone does not affect cell proliferation.
  • FIG. 1 shows two bands in the immunoprecipitation performed in Example 5.
  • FIG. It shows that ITGA6 was obtained as a result of antigen identification by the mass spectrometer performed in Example 6.
  • This data is an output diagram when mass data obtained with a mass spectrometer (Thermo LCQ) is analyzed with an analysis software Mascot search (MATRIX SCIENCE).
  • FIG. 3 shows that ITGB4 was obtained as a result of antigen identification by the mass spectrometer performed in Example 6.
  • This data is an output diagram when mass data obtained with a mass spectrometer (Thermo LCQ) is analyzed with an analysis software Mascot search (MATRIX SCIENCE).
  • FIG. 1 shows two bands in the immunoprecipitation performed in Example 5.
  • FIG. It shows that ITGA6 was obtained as a result of antigen identification by the mass spectrometer performed in Example 6.
  • This data is an output diagram when mass data obtained with a mass spectrometer (Thermo LCQ) is
  • FIG. 4 shows the results of examining the reactivity of antigen antibodies by ELISA using the purified soluble human ITGA6B4 antigen (Recombinant Human Integrin alpha 6 (X1) beta 4 R & D) for the IgG antibody prepared in Example 3.
  • FIG. 5 is a diagram showing that high expression of ⁇ 6-integrin (ITGA6) and ⁇ 4 (ITGB4) was identified from comprehensive gene expression analysis of refractory leukemia.
  • FIG. 6 shows that adhesion via ITGA6 / B4 is required to acquire anticancer drug resistance of leukemia cells. It shows that the anti-ITGA6 / B4 antibody of the present invention contributes to a decrease in adhesion ability.
  • FIG. 6 shows that adhesion via ITGA6 / B4 is required to acquire anticancer drug resistance of leukemia cells. It shows that the anti-ITGA6 / B4 antibody of the present invention contributes to a decrease in adhesion ability.
  • FIG. 7 shows the results of cell adhesion inhibition experiments performed on four strains of AML cell lines UCSD / AML1, Kasumi3, MOLM1, and HNT34. It is shown that administration of anti-ITGA6 / B4 antibody reduces adhesion.
  • FIG. 8 shows the effect of combined use with the anticancer drug [AraC (cytarabine), DXR (doxorubicin), VP16 (etoposide)]. It can be seen that the anti-ITGA6 / B4 antibody enhances the effect of the anticancer agent.
  • FIG. 9 shows the results of examining the expression level of ITGA6B4 in leukemia stem cells.
  • FIG. 10 shows the results of evaluation of antibody reactivity changes in gene expression suppression tests using shRNA-introduced cells of ITGA6 and ITGB4 genes.
  • FIG. 11 shows the results of verifying the invasion suppressing effect by antibody combination using a vein transplant model. It was shown that administration of anti-ITGA6B4 antibody significantly suppressed bone marrow infiltration in single agent and combined use.
  • FIG. 12-1 shows the results of verifying the in vitro growth inhibitory effect of ITGA6B4 antibody.
  • FIG. 12-2 shows the ratio of the degree of proliferation when the result is PBS of 100. It was shown that the anti-ITGA6B4 antibody is a single agent and has no cell growth inhibitory effect.
  • FIG. 13 shows in vivo anti-tumor effects using a vein transplant model. Survival was prolonged in combination with antibodies and anticancer drugs.
  • the integrin ⁇ 6 ⁇ 4 complex that is an antigen specifically recognized by the antibody of the present invention may be referred to as ITGA6 / B4, ITGA6B4, ITGA6B4 complex, A6B4 complex, or the like.
  • ITGA6 / B4 was found to be highly expressed not only in EVI1 high-expressing leukemia but also in patients with relapsed leukemia after treatment (Fig. 5). Effective effects can be expected in treatment.
  • the antibody of the present invention it is possible to increase the drug sensitivity of cancer that has shown resistance to an existing anticancer drug by inhibiting adhesion to the bone marrow niche via ITGA6B4, As a result, it is possible to restore or increase the effect of the anticancer agent and perform effective treatment. Since the antibody of the present invention is selected for an antibody having high specificity and affinity for cancer cells of a patient and retaining the effect of enhancing the sensitivity of the anticancer agent, it is a good treatment for cancer cells. Results are obtained.
  • the antibody of the present invention is an antibody against the ITGA6B4 complex, and is particularly capable of performing the above-described “purge treatment”, which can dramatically increase the sensitivity of existing anticancer agents to cancer cells. Has characteristics.
  • Patent Document 1 describes the effect of integrin A6 or integrin B4 alone, but the antibody of the present invention is an antibody against the integrin A6B4 complex. Since the antibody of the present invention recognizes the integrin A6B4 and is an antibody optimized for the “kick-out treatment” proposed in the present invention, a remarkable therapeutic effect can be expected for leukemia recurrence patients.
  • Itengulin A6B4 (ITGA6B4) It is known that it is a complex consisting of itengulin ⁇ 6 and integrin ⁇ 4 and is involved in many phenomena such as interaction with extracellular matrix, cell-cell adhesion, cell engraftment in cells, and signaling. Itegrin ⁇ 6 is also known to form a complex with ⁇ 1 in addition to ⁇ 4 and take a complex called VLA6. This antigen, known as CD49f, is present in platelets and megakaryocytes and is thought to be weakly expressed in T-cell subpopulations. On the other hand, the complex of this study is thought to be expressed mainly in bronchial epithelium in normal cells and in many cancers including colorectal cancer in cancer cells.
  • ITGA6B4 is not particularly limited in structure, but includes monomers, multimers, intact forms expressed in the cell membrane, solubilized forms, truncated forms formed in the extracellular region, gene mutations and deletions, etc. Means human ITGA6B4, including mutation forms and forms that have been post-translationally modified by phosphorylation.
  • React and Reactive mean the same unless otherwise indicated. That is, it means that the antibody recognizes the antigen.
  • This antigen may be intact ITGA6B4 expressed in the cell membrane, truncated form, or solubilized form. Further, ITGA6B4 having a three-dimensional structure may be used, or denatured ITGA6B4 may be used.
  • a flow cytometer FACS
  • ELISA enzyme-linked immunosorbent assay
  • FMAT fluorescence microassay technique
  • BIOAcore surface plasmon resonance
  • the antibody used in the flow cytometer may be a fluorescent substance such as FITC, an antibody labeled with biotin, or an unlabeled antibody.
  • a fluorescently labeled avidin, a fluorescently labeled anti-human immunoglobulin antibody, or the like is used depending on whether or not the antibody used is labeled.
  • Reactivity is evaluated by adding a sufficient amount of anti-ITGA6B4 antibody (usually 0.01 to 10 ⁇ g / mL final concentration) to the sample and comparing the reactivity with the negative control antibody and the positive control antibody. Can do.
  • H chain Heavy chain
  • L chain light chain
  • VH heavy chain variable region
  • VL light chain variable region
  • CDR complementarity determining region
  • antibody is synonymous with immunoglobulin and should be understood as commonly known in the art. Specifically, the term antibody is not limited by any particular method of making an antibody. For example, the term antibody includes, but is not limited to, recombinant antibodies, monoclonal antibodies, and polyclonal antibodies.
  • human antibody means any antibody in which the variable region and constant region sequences are human sequences.
  • the term has a sequence derived from a human gene, but has been altered, for example, to reduce possible immunogenicity, increase affinity, remove cysteines that can cause undesirable folding, etc.
  • the term also encompasses such antibodies produced recombinantly in non-human cells that can be glycosylated that are not characteristic of human cells. These antibodies can be prepared in various forms.
  • humanized antibody refers to an antibody derived from a non-human, in which amino acid residues characteristic of an antibody sequence of a non-human species are replaced with residues found at corresponding positions in the human antibody. Has been. This “humanization” process is thought to reduce the immunogenicity of the resulting antibody in humans. It will be appreciated that non-human derived antibodies can be humanized using techniques well known in the art. For example, Winter et al., Immunol. Today 14: 43-46 (1993). The antibodies of interest can be engineered by recombinant DNA technology that replaces CH1, CH2, CH3, the hinge domain, and / or the framework domain with the corresponding human sequences. For example, WO 92/02190, and US Pat. Nos.
  • humanized antibody includes within its meaning chimeric human antibodies and CDR-grafted antibodies.
  • the sequence of the framework region (FR) in the variable region of the antibody of the present invention is not particularly limited as long as it does not substantially affect the specific binding to the corresponding antigen.
  • the FR region of a human antibody is preferably used, the FR region of an animal species other than human (for example, mouse or rat) can also be used.
  • phage antibody means an scFv antibody produced by a phage. That is, an antibody fragment containing VH and VL amino acid sequences. This fragment may contain an amino acid sequence as a tag in addition to the amino acid as Linker.
  • the antibody of the present invention contains a constant region in addition to a variable region (for example, an IgG type antibody).
  • the sequence of the constant region is not particularly limited.
  • a known human antibody constant region can be used.
  • the heavy chain constant region (CH) of the human antibody may be any as long as it belongs to human immunoglobulin (hereinafter referred to as hIg), but is preferably of the hIgG class, and more preferably hIgG1, which belongs to the hIgG class, Any of the subclasses such as hIgG2, hIgG3, and hIgG4 can be used.
  • the light chain constant region (CL) may be any as long as it belongs to hIg, and those of ⁇ class or ⁇ class can be used.
  • the constant region of animal species other than humans for example, mouse and rat
  • animal species other than humans for example, mouse and rat
  • the amino acid sequence of the variable region (CDR sequence and / or FR sequence) or constant region in the antibody of the present invention may be the original FR or constant region amino acid sequence from which it is derived, or human ITGA6B4 specifically As long as it can be recognized, one or several (for example 1 to 8, preferably 1 to 5, more preferably 1 to 3, particularly preferably 1 or 2) amino acids are deleted, added, substituted and / or Or you may insert and use it as a different amino acid sequence.
  • the antibody of the present invention preferably has SEQ ID NOs as heavy chain first complementarity determining region (VH CDR1), heavy chain second complementarity determining region (VH CDR2), and heavy chain third complementarity determining region (VH CDR3), respectively.
  • VH CDR1 heavy chain first complementarity determining region
  • VH CDR2 heavy chain second complementarity determining region
  • VH CDR3 heavy chain third complementarity determining region
  • VLVCDR1 light chain first complementarity determining region
  • VL CDR2 light chain second complementarity determining region
  • VL CDR3 light chain third complementarity determining region
  • the antibody of the present invention has SEQ ID NO: 1 as a heavy chain first complementarity determining region (VH CDR1), a heavy chain second complementarity determining region (VH CDR2), and a heavy chain third complementarity determining region (VH CDR3), respectively.
  • VH CDR1 heavy chain first complementarity determining region
  • VH CDR2 heavy chain second complementarity determining region
  • VH CDR3 heavy chain third complementarity determining region
  • VL CDR1 light chain first complementarity determining region
  • VL CDR2 light chain second complementarity determining region
  • VL CDR3 light chain third complementarity determining region
  • SEQ ID NOs: 4-6, 10-12, 16-18, 22-24, 28- It may include an amino acid sequence substantially identical to any 30 amino acid sequences.
  • ITGA6B4 means to have an activity specifically reacting with human integrin A6B4 as in the case of the antibody before modification.
  • This antigen may be intact ITGA6B4 expressed in the cell membrane, truncated form, or solubilized form.
  • ITGA6B4 having a three-dimensional structure may be used, or denatured ITGA6B4 may be used.
  • a flow cytometer FACS
  • ELISA enzyme-linked immunosorbent assay
  • FMAT fluorescence microassay technique
  • BIOAcore surface plasmon resonance
  • “similar to the antibody before modification” does not necessarily have the same level of activity, and the activity may be enhanced or the activity may be decreased as long as the activity is maintained.
  • Examples of antibodies with decreased activity include, for example, 30% or more activity, preferably 50% or more activity, more preferably 80% or more activity, and still more preferably 90% or more activity compared to the original antibody.
  • Particularly preferred is an antibody having an activity of 95% or more.
  • one or more amino acids are substituted, deleted, added and / or substituted in the amino acid sequence of the variable region (CDR sequence and / or FR sequence). It may be inserted.
  • amino acid sequence one or several (for example, 1 to 8, preferably 1 to 5, more preferably 1 to 3, particularly preferably 1 or 2) amino acids are deleted, added, substituted and / or Alternatively, as a method well known to those skilled in the art for preparing an amino acid sequence of an antibody that is inserted and specifically reacts with human integrin A6B4, a method of introducing a mutation into a protein is known.
  • a person skilled in the art can perform site-directed mutagenesis (Hashimoto-Gotoh, T, Mizuno, T, Ogasahara, Y, anDNAkagawa, M. (1995) An oligodeoxyribonucleotide-directed dual amber method for site-directed mutagenesis. Gene 152, 271-275, Zoller, MJ, and Smith, M. (1998) Oligonucleotide-directed mutagenesis of DNA fragments cloned into M13 vectors. Methods Enzymol.
  • Antibodies that react specifically with human integrin A6B4 By introducing an appropriate mutation in the amino acid sequence, it is possible to prepare the antibodies functionally equivalent variant. As described above, an antibody in which one or several amino acids are mutated in the variable region and specifically react with human integrin A6B4 is also included in the antibody of the present invention.
  • the antibody of the present invention is not limited by its origin, and may be an antibody derived from any animal such as a human antibody, a mouse antibody, or a rat antibody. Moreover, a chimerized antibody, a humanized antibody, etc. may be sufficient.
  • the antibody of the present invention may differ in amino acid sequence, molecular weight, isoelectric point, presence / absence of sugar chain, form, etc., depending on the antibody-producing cell, host or purification method described below. As long as the obtained antibody has an activity equivalent to that of the antibody of the present invention, it is included in the present invention.
  • the present invention includes a case where the amino acid sequence described in the present invention is modified after translation.
  • post-translational modifications to sites other than known post-translational modifications are also included in the present invention as long as they have an activity equivalent to that of the antibody of the present invention.
  • the antibody of the present invention is expressed in prokaryotic cells such as E.
  • the antibody of the present invention also includes such an antibody.
  • Post-translational modifications to sites other than known post-translational modifications are also included in the present invention as long as they have an activity equivalent to that of the antibody of the present invention.
  • scFv reacting with antigen by phage display library Obtaining the antibodies of the invention can be prepared according to several methods known in the art. For example, phage display technology can be used to provide a library containing a repertoire of antibodies with varying affinities for ITGA6B4. These libraries can then be screened to identify and isolate antibodies against ITGA6B4.
  • the phage library is a scFv phage display library generated using human VL and VH cDNA prepared from mRNA isolated from human B cells. Methods for preparing and screening such libraries are known in the art. Genetic material is recovered from a phage clone showing reactivity that was screened using human ITGA6B4 as an antigen.
  • a human antibody can be obtained by converting the scFv into IgG using this scFv sequence.
  • H chain or L chain expression vector is prepared and expressed in a host cell, and a human antibody is obtained by collecting and purifying the secreted supernatant.
  • human antibodies can be obtained by expressing VH and VL in the same vector (tandem type). These methods are well known and can be referred to WO92 / 01047, WO92 / 20791, WO93 / 06213, WO93 / 11236, W093 / 19172, WO95 / 01438, WO95 / 15388, WO97 / 10354, and the like.
  • a full-length heavy chain gene can be obtained by ligating DNA encoding VH with other DNA molecules encoding heavy chain constant regions (CH1, CH2 and CH3).
  • the sequence of the human heavy chain constant region gene is known in the art (eg, Kabat, EA, et al. (1991) Sequences of Proteins of Immunological Interest, 5th edition, US Department of Health and Human. Services, NIH Publication No. 91-3242), DNA fragments encompassing these regions can be obtained by standard PCR amplification.
  • the heavy chain constant region may be an IgG1, IgG2, IgG3, IgG4, IgA, IgE, IgM or IgD constant region, but most preferably is an IgG1 or IgG2 constant region.
  • the IgG1 constant region sequence may be any of a variety of alleles or allotypes known to occur between different individuals, such as Gm (1), Gm (2), Gm (3), and Gm (17). These allotypes correspond to naturally occurring amino acid substitutions in the IgG1 constant region.
  • a full-length L chain gene (and Fab light chain gene) can be obtained by ligating DNA encoding VL with another DNA molecule encoding light chain constant region CL.
  • the sequence of the human light chain constant region gene is known in the art (eg, Kabat, EA, et al. (1991) Sequences of Proteins of Immunological Interest, 5th edition, US Department of Health and. Human Services, NIH Publication No. 91-3242), DNA fragments encompassing these regions can be obtained by standard PCR amplification.
  • the light chain constant region may be a kappa or lambda constant region.
  • the kappa constant region can be any of a variety of alleles known to occur between different individuals, such as Inv (1), Inv (2), and Inv (3).
  • the ⁇ constant region may be derived from any of the three ⁇ genes.
  • an expression vector By inserting the DNA encoding the H chain or L chain obtained as described above into an expression vector, an expression vector is prepared, expressed in a host cell, and a human antibody is obtained by collecting and purifying the secreted supernatant.
  • Expression vectors include plasmids, retroviruses, adenoviruses, adeno-associated viruses (AAV), plant viruses such as cauliflower mosaic virus and tobacco mosaic virus, cosmids, YACs, EBV-derived episomes, and the like.
  • the expression vector and expression control sequences are chosen to be compatible with the expression host cell used.
  • the antibody light chain gene and the antibody heavy chain gene can be inserted into separate vectors, or both genes can be inserted into the same expression vector.
  • the antibody gene is inserted into the expression vector by standard methods (eg, ligation of complementary restriction sites on the antibody gene fragment and vector, or blunt end ligation if no restriction sites are present).
  • a suitable vector is a functionally complete human CH or CL with appropriate restriction sites engineered to allow easy insertion and expression of any VH or VL sequence as described above. It encodes an immunoglobulin sequence.
  • splicing usually occurs between the splice donor site in the inserted J region and the splice acceptor site preceding the human C domain, and also in the splice region present in the human CH exon. Polyadenylation and transcription termination occur at natural chromosomal sites downstream of the coding region.
  • the recombinant expression vector can also encode a signal peptide that facilitates secretion of the antibody chain from a host cell.
  • the antibody chain gene can be cloned into the vector such that the signal peptide is linked in-frame to the amino terminus of the immunoglobulin chain.
  • the signal peptide may be an immunoglobulin signal peptide or a heterologous signal peptide (ie, a signal peptide derived from a non-immunoglobulin protein).
  • the antibody expression vector of the present invention may have an additional sequence such as a sequence that controls replication of the vector in a host cell (for example, an origin of replication) and a selection marker gene, in addition to the antibody gene and control sequence.
  • the selectable marker gene facilitates selection of host cells into which the vector has been introduced.
  • a selectable marker gene confers resistance to drugs such as G418, hygromycin and methotrexate on a host cell into which the vector has been introduced.
  • Preferred selectable marker genes include the dehydrofolate reductase (DHFR) gene (for use in dhfr-host cells with methotrexate selection / amplification), the neomycin phosphotransferase gene (for G418 selection), and the glutamate synthase gene.
  • DHFR dehydrofolate reductase
  • a host cell is transformed with the antibody gene expression vector prepared by the above method.
  • the host cell may be any cell capable of producing the antibody of the present invention, such as bacteria, yeast, animal cells, insect cells, plant cells, etc., but animal cells are preferred.
  • animal cells Chinese hamster ovary cells CHO / dhfrf ( ⁇ ) cells CHO / DG44 cells, monkey-derived cells COS cells (A. Wright & SL Morrison, J. Immunol. 160, 3393-3402 (1998)), SP2 / O cells (Mouse myeloma) (K. Motmans et al., Eur. J. Cancer Prev. 5, 512-5199 (1996), RP Junghons et 95al., Cancer Res.
  • the lipofectin method (RWMalone et al., Proc.NAML.Acad.Sci.USA 86,6007 (1989), PLFelgner et al., Proc.NAML.Acad.Sci.USA 84,7413 ( 1987), electroporation method, calcium phosphate method (FL GrahamGra & AJvan der Eb, Virology 52, 456-467 (1973)), DEAE-Dextran method and the like are preferably used.
  • human antibodies are separated from the cells of the transformant or the culture solution.
  • methods such as centrifugation, ammonium sulfate fractionation, salting out, ultrafiltration, affinity chromatography, ion exchange chromatography, gel filtration chromatography and the like can be used in appropriate combination.
  • Antigen-binding fragment can be prepared based on the antibody of the present invention or based on the sequence information of the gene encoding the antibody of the present invention.
  • Antibody binding fragments include Fab, Fab ′, F (ab ′) 2 , single chain antibody (scFv), dimerized V region (Diabody), disulfide stabilized V region (dsFv), or complement derived from antibodies. Mention may be made of peptides comprising a sex determining region (CDR).
  • Fab is a fragment having a molecular weight of about 50,000, which is obtained by digesting IgG with papain in the presence of cysteine and consisting of an L chain, an H chain variable region, and an H chain fragment consisting of a part of the CH1 domain and hinge region. is there.
  • the antibody can be obtained by digesting with papain.
  • Fab can be prepared from a transformant obtained by incorporating a part of the H chain of the antibody and DNA encoding the L chain into an appropriate vector and transforming using the vector.
  • Fab ′ is a fragment having a molecular weight of about 50,000 obtained by cleaving a disulfide bond between the H chains of F (ab ′) 2 described later.
  • the antibody is obtained by digesting with pepsin and cleaving disulfide bonds using a reducing agent.
  • Fab it can also be prepared by genetic engineering using DNA encoding Fab ′.
  • F (ab ′) 2 is a fragment (Fab ′) that is obtained by pepsin digestion of IgG and is composed of an L chain, an H chain variable region, and an H chain fragment consisting of the CH1 domain and a part of the hinge part. Is a fragment having a molecular weight of about 100,000 linked by a disulfide bond.
  • the antibody is obtained by pepsin digestion.
  • Fab it can also be prepared by genetic engineering using DNA encoding F (ab ′) 2 .
  • scFv is an antibody fragment in which an Fv comprising an H chain variable region and an L chain variable region is made into a single chain by linking the C terminus of one chain and the other N terminus with an appropriate peptide linker.
  • the peptide linker for example, (GGGGGS) 3 having high flexibility can be used.
  • a DNA encoding the scFv antibody is constructed using DNA encoding the H chain variable region and L chain variable region of the above antibody and DNA encoding a peptide linker, and this is incorporated into an appropriate vector, and the vector is used.
  • ScFv can be prepared from the transformant transformed as described above.
  • a dimerization V region (Diabody) is a dimerization by linking two fragments (for example, scFv) in which a variable region and a variable region are linked by a linker or the like. And two VHs.
  • the bond between the fragments constituting the diabody may be a non-covalent bond or a covalent bond, but is preferably a non-covalent bond.
  • DsFv is an Fv fragment in which a Cys residue is introduced at an appropriate position in the H chain variable region and the L chain variable region, and the H chain variable region and the L chain variable region are stabilized by disulfide bonds.
  • the position of Cys residue introduction in each chain can be determined based on the three-dimensional structure predicted by molecular modeling.
  • the three-dimensional structure is predicted from the amino acid sequences of the H chain variable region and the L chain variable region of the above antibody, and DNAs encoding the H chain variable region and L chain variable region into which mutations are introduced are constructed based on the prediction. Then, this is incorporated into an appropriate vector, and dsFv can be prepared from a transformant transformed with the vector.
  • antibody fragments can be multimerized by linking scFv antibody, dcFv antibody, etc. using an appropriate linker, or by fusing streptavidin.
  • cell adhesion inhibitor of cancer cells containing the antibodies of the present invention and pharmaceutical compositions containing the antibodies of the present invention is provided.
  • One embodiment of the present invention is refractory leukemia, but is not limited thereto. Diseases other than refractory leukemia due to high expression of ITGA6B4 complex can also be treated using the antibody of the present invention.
  • refractory leukemia Preferably refractory leukemia, but solid cancers (eg lung cancer, colon cancer, stomach cancer, bladder cancer, pancreatic cancer, prostate cancer, liver cancer, cervical cancer, uterine cancer, ovary) Cancer, breast cancer, head and neck cancer, skin cancer, etc.) or blood cancer (eg, leukemia, lymphoma, myeloma, etc.) are also included in the treatment target.
  • solid cancers eg lung cancer, colon cancer, stomach cancer, bladder cancer, pancreatic cancer, prostate cancer, liver cancer, cervical cancer, uterine cancer, ovary
  • cancer eg, breast cancer, head and neck cancer, skin cancer, etc.
  • blood cancer eg, leukemia, lymphoma, myeloma, etc.
  • the cell adhesion inhibitor for cancer cells and the pharmaceutical composition containing the antibody of the present invention may appropriately contain a pharmaceutically acceptable carrier, excipient, diluent and the like.
  • the cell adhesion inhibitor and pharmaceutical composition for cancer cells of the present invention can be formulated, for example, as an injection.
  • the dosage of the cancer cell cell adhesion inhibitor and the pharmaceutical composition of the present invention depends on the symptom of the patient, age and body weight, administration method, etc., and the weight of the antibody as the active ingredient is usually per day. The range is from about 10 ng to about 100 mg / kg body weight.
  • the antibody of the present invention bound to cells can be detected by flow cytometry, ELISA, or a combination thereof.
  • a flow cytometer Fluorescence Activated Cell Sorter
  • CTC Circulating TumorCells
  • the cells to which the antibody of the present invention is bound can be measured by a flow cytometer.
  • the antibody of the present invention is preferably labeled with a fluorescent dye. After contacting a fluorescent label of the antibody of the present invention with blood cells obtained from a blood sample, analysis can be performed with a flow cytometer.
  • Example 1 Phage antibody screening using cancer cell lines (1) Screening of phage antibodies that bind to cancer cells (AML strain USCD-AML1) USCD-AML1 cells (Oval et al., Blood 76: 1369-1374 (1990); Taetle et al., Cancer Res. 53: 3386-3393 (1993); Hu et al., Leukemia 10: 1025-1040 (1996) )) was cultured by any method.
  • AML strain USCD-AML1 USCD-AML1 cells
  • the supernatant was discarded, and the cells that settled at the bottom of the tube were suspended in 0.7 mL of 1% BSA / MEM, and overlaid with 0.7 mL of an organic solvent. Similarly, the supernatant was discarded by centrifugation, and the cells were suspended in 0.3 mL of PBS and frozen in liquid nitrogen.
  • Frozen cells were thawed at 37 ° C. and infected with 20 mL of E. coli DH12S (OD0.5) in 1 hour.
  • Escherichia coli infected with the phage was placed in 600 mL of 2 ⁇ YTGA medium (2 ⁇ YT, 200 ⁇ g / mL amplisulfate, 1% Glucose) and cultured at 30 ° C. overnight. Thereafter, 10 mL was taken and placed in 200 mL 2 ⁇ YTA medium (2 ⁇ YT, 200 ⁇ g / mL ampiculate) and cultured at 37 ° C. for 1.5 hours.
  • 1 ⁇ 10 11 helper phage KO7 was added and further cultured at 37 ° C. for 1 hour.
  • 800 mL of 2 ⁇ YTGAK medium (2 ⁇ YT, 200 ⁇ g / mL amphisulfate, 0.05% Glucose, 50 ⁇ g / mL kanamylcin) was added and cultured at 30 ° C. overnight.
  • the supernatant was collected by centrifugation (8000 rpm) for 10 minutes.
  • 200 mL of PEG solution (20% polyethyleneglycol 6000, 2.5 M NaCl) was added to the collected supernatant and stirred well, and then phages were precipitated by centrifugation (8000 rpm) for 10 minutes. This was suspended in 10 mL of PBS, and this was used as the 1st screening phage.
  • 2nd screening was performed. 2 ⁇ 10 7 cultured cells and 1 ⁇ 10 10 1st screening phage were mixed, and the reaction solution (1% BSA, 0.1% NaN 3, MEM) was added to a final volume of 0.8 mL. Thereafter, the same method as the 1st screening was performed to obtain 2nd screening phage.
  • the 3rd screening was performed in the same manner as described above using 1 ⁇ 10 9 2nd screening phage.
  • Phage antibody analysis 3rd-screened phages are collected, DNA sequences are analyzed by existing methods, incomplete antibodies retaining defective regions and antibodies with overlapping sequences are excluded, and phages having independent antibody sequences Antibodies were obtained (see patent 4870348).
  • Example 2 Screening of positive phages by ELISA The reactivity of antigen antibodies by ELISA was examined using purified soluble human ITGA6B4 antigen (Recombinant Human Integrin alpha 6 (X1) beta 4 R & D). That is, soluble ITGA6B4 antigen was adjusted to 10 ⁇ g / mL with PBS, added to Immuno Module / Stripe Plates (NUNK) at 50 ⁇ L / well, and allowed to stand at 37 ° C. for 2 hours. Thereafter, the soluble ITGA6B4 antigen was discarded, Blocking solution (5% skim milk / 0.05% NaN3 / PBS) was added at 200 ⁇ L / well, and blocking was performed at 37 ° C. for 2 hours.
  • soluble ITGA6B4 antigen Recombinant Human Integrin alpha 6 (X1) beta 4 R & D. That is, soluble ITGA6B4 antigen was adjusted to 10 ⁇ g / mL with PBS, added to Immuno
  • the blocking solution was removed, the plate was washed with PBS, 100 ⁇ L / well of the 2nd screening phage culture supernatant was added, and the mixture was reacted at 37 ° C. for 1 hour. After washing 5 times with PBS, 100 ⁇ L / well of 1 ⁇ g / mL Rabbit anti-cp3 diluted with PBS / 0.05% Tween 20 was added and reacted at 37 ° C. for 1 hour. After washing 5 times with PBS, anti-Rabbit IgG (H + L) -HRP diluted 2000-fold with PBS / 0.05% Tween 20 was further added at 100 ⁇ L / well and reacted at 37 ° C. for 1 hour.
  • VH CDR1 heavy chain first complementarity determining region
  • VH CDR2 heavy chain second complementarity determining region
  • VH CDR3 heavy chain third complementarity determining region
  • VL ⁇ CDR1 light chain first complementarity determining region
  • VL CDR2 light chain second complementarity determining region
  • VL CDR3 light chain third complementarity determining region
  • Example 3 Preparation of IgG antibody of phage antibody (scFv) (1) Preparation of plasmid expressing ITGA6B4 IgG antibody IgG conversion of phage antibody is explained as follows by taking ITGA6B4 IgG as an example. ITGA6B4 phage antibody (scFv) genes are arranged in the order of VH-VL, and VH and VL have the structure of scFv connected by a sequence below the linker. ⁇ Linker sequence> Gly Gly Gly Gly Ser Gly Gly Gly Gly Ser Gly Gly Gly Gly Gly Ser (SEQ ID NO: 31)
  • ITGA6B4 VH was linked to the constant region of human IgG1.
  • the VL of ITGA6B4 was completely synthesized by GenScript with the H and L chain genes added with NheI on the 5 'side and EcoRI on the 3' side. .
  • the synthesized heavy and light chain genes were incorporated into separate expression vectors.
  • H chain expression vector and L chain expression vector were prepared. That is, the artificial synthetic genes of H chain and L chain were cleaved with NheI and EcoRI, and incorporated into the NheI and EcoRI sites of expression vector pCAGGS to obtain anti-ITGA6B4 antibody H chain expression vector and L chain expression vector. In the same manner, expression vectors for other antibodies were prepared.
  • IgG antibody protein contained in the culture supernatant expressed above was purified with an Ab-Capcher ExTra (Protenova) affinity column using AKTAprime.
  • the obtained peak fraction was further purified by gel filtration through a Sephacryl S-300 column equilibrated with Dulbecco's PBS as a solvent.
  • the quantification of the purified IgG antibody protein was calculated using the extinction coefficient.
  • the extinction coefficient of IgG antibody was calculated by using EXPASY's ProtParam (http://web.expasy.org/protparam/) using the total amino acid sequence of each antibody.
  • Block Ace was added at 200 ⁇ L / well and blocked for 1 hour at room temperature, and then the antibody of the sample was serially diluted and added to each well and incubated for 1 hour to react.
  • PBST 0.05% Tween 20, PBS
  • goat anti-human IgG (H + L) absorbed for mouse, rabbit, bovine, mouse IgG) -HRP (Cosmo Bio: AQI, Cat. A- 110 PD) was diluted 10,000 times with PBST, and a detection antibody solution was added at a rate of 100 ⁇ L / well. After incubation for 1 hour, the plate was washed 5 times with PBST, and then substrate buffer TMB was added at a rate of 100 ⁇ L / well.
  • reaction was stopped by adding a reaction stop solution at a rate of 100 ⁇ L / well, and the absorbance at 450 nm was measured.
  • a calibration curve was prepared using purified human IgG as a standard, and the concentration of human antibody was calculated using this.
  • Example 4 Reactivity of IgG-modified ITGA6B4 antibody to cell line Using the ITGA6B4-expressing cell line, AML strain USCD-AML1, the reactivity of IgG-modified anti-ITGA6B4 antibody was examined. USCD-AML1 cells were collected by centrifugation. The collected cells were washed once with PBS, and then suspended in 1 ⁇ 10 6 / mL with FACS Buffer (PBS containing 1% BSA, 2 mM EDTA, 0.1% NaN 3). 100 ⁇ L of the solution was dispensed into a 96-well V bottom plate (Costar 3897).
  • FACS Buffer PBS containing 1% BSA, 2 mM EDTA, 0.1% NaN 3
  • Each anti-ITGA6B4 IgG antibody was prepared at 0.02 to 2 ⁇ g / mL with FACS Buffer, 100 ⁇ L of the prepared antibody solution was added to the cells, and incubated at 4 ° C. for 1 hour. After the cells were washed twice with FACS Buffer, 100 ⁇ L of Alexa-anti-human IgG (invitrogen) solution diluted 750 times with FACS Buffer was added, and further incubated at 4 ° C. for 1 hour. After washing twice by centrifugation with FACS Buffer, it was set in HTS of FACS Calibur (BD) and the FL1 fluorescence intensity of each well was measured.
  • BD FACS Calibur
  • each antibody (a: 10 ng / mL; b: 100 ng / mL; c: 1 ⁇ g / mL) showed strong reactivity with USCD-AML1.
  • ELISA was performed in the same manner as in Example 2 to confirm the reactivity. An example is shown in FIG. As shown in FIG. 4, a clear positive reaction was obtained.
  • an anti-hub poison human IgG antibody prepared by the same procedure and a detection antibody alone (denoted as PBS) were used.
  • An antibody shown as an anti-ITGA6B4 antibody is PPMXITG-001 as a representative example.
  • Example 5 Immunoprecipitation using anti-ITGA6B4 antibody and high expression cell line (1) Preparation of immobilized antibody for immunoprecipitation First, the prepared anti-ITGA6B4 body solution was combined with a coupling buffer solution (0.1 M NaHCO3-NaOH). Dialyzed at pH 9). That is, the antibody solution is sealed in a dialysis membrane (Snake Skin Pleated Dialysis Tubing 10,000 MWCO), submerged in 1.5 L of a coupling buffer solution (0.1 M NaHCO3-NaOH pH9), and stirred with a stirrer at 4 ° C. for 2 to 3 hours. After that, the buffer solution was exchanged and dialyzed for another 2 to 3 hours. Thereafter, the buffer solution was changed once again and dialyzed overnight.
  • a coupling buffer solution 0.1 M NaHCO3-NaOH
  • activated CNBr-activated Sepharose 4B used for immobilization was prepared. That is, CNBr-activated Sepharose 4B manufactured by Amersham Biosciences was swollen with 1 mM HCl and then sucked with an aspirator. To this, 50 ml of coupling buffer solution was added and stirred, then sucked with an aspirator, and further coupling buffer solution was added while sucking. Immobilization of the antibody was performed as follows. That is, 1 ml of activated gel was added to 10 ml of 5 mg antibody solution and reacted at room temperature for 2 hours.
  • the gel was transferred to a column, washed 10 times with 1 ml of coupling buffer solution, and the presence of unreacted antibody was confirmed by OD measurement.
  • the solid-phased gel was replaced twice with 5 ml of 0.2 M Glycine-NaOH pH 8 solution, 5 ml of the same solution was further added, and the mixture was allowed to stand at room temperature for 2 hours.
  • -HCl pH3 5 ml was added for replacement, and 5 ml of the same solution was further added, and the mixture was allowed to stand for 5 minutes and then added dropwise.
  • the column was replaced with 20 ml of PBS, and then dropped spontaneously, and 1% NP40, protease inhibitor, 0.05% NaN 3 / PBS was added to collect the gel.
  • Biotin labeling of protein on cell membrane and preparation of cell lysate Biotin labeling of cultured hepatoma cell lines was performed as follows. That is, collagen cell I (manufactured by GIBCO) adjusted to a concentration of 5 mg / ml with cell dissociation buffer (manufactured by GIBCO) after washing the cultured cell PC14 cultured to about 10 7 to 10 8 cells twice with PBS. The reaction was carried out at 37 ° C in a CO 2 incubator to release the cells, and then the cells were collected in a medium, washed twice with PBS (-), and then the number of cells was counted with a hemocytometer.
  • Cell lysate for biotin-labeled cells was prepared as follows. That is, 4 ml of lysis buffer (1% NP40 / detergent base solution, composition of detergent base solution is 20 mM HEPES pH 8.0, 140 mM NaCl, protease inhibitor) is added to the above biotin-labeled cells, and the cells are suspended and cooled.
  • lysis buffer 1% NP40 / detergent base solution, composition of detergent base solution is 20 mM HEPES pH 8.0, 140 mM NaCl, protease inhibitor
  • antibody beads immobilized antibody (hereinafter referred to as a solution)
  • 1/10 volume about 15 ⁇ l
  • 4 mM biotin is placed there.
  • a mixture of 0.5 plate lysate (600 ⁇ l) and 60 ⁇ l of biotin solution was added and reacted for several hours with stirring at 4 ° C., and then the tube was centrifuged (5500 g, 1 min, 4 ° C. And the supernatant was removed.
  • Example 6 Mass spectrum analysis of immunoprecipitated band (1) In-gel trypsin digestion The portion corresponding to the membrane protein detected in Example 5 was trypsin-digested in the gel, and the peptide was recovered. SDS polyacrylamide gel electrophoresis was performed according to a conventional method, and a band obtained by staining with Coomassie brilliant blue was cut out. This was immersed in a 200 mM ammonium bicarbonate-50% acetonitrile solution, shaken at 37 ° C. for 45 minutes, discarded, and the same operation was repeated twice to remove Coomassie brilliant blue.
  • the gel was dried under reduced pressure, and 4 ⁇ l of trypsin (20 ⁇ g / ml) dissolved in 40 mM ammonium bicarbonate (pH 8.1) -10% acetonitrile was added per unit area (mm 2) of the gel slice and left at room temperature for 1 hour. Fully infiltrated. To this, 2.5 times the amount of trypsin solution added earlier was added and allowed to stand at 37 ° C. for 18 hours. This was filtered through a tube with a filter having a pore size of 0.22 ⁇ m, and the peptide produced by cleaving the antigen with trypsin was recovered.
  • the mass of limited degradation products of each peptide generated by collision with helium atoms placed in the flight path of those ions was analyzed.
  • one amino acid is removed by limited decomposition, ions that are smaller by the mass of the deviated amino acid are observed, so that the deviated amino acid type can be identified by the mass difference.
  • another amino acid is removed, ions that are smaller by the mass of the deviated amino acid are observed, and the deviated amino acid type can be similarly identified by the mass difference.
  • the internal amino acid sequence can be determined. Antigens were identified by searching the set of amino acid internal sequences obtained using a publicly available amino acid sequence database. As a result, it was shown that the two bands obtained in Example 5 were ITGA6 (FIG. 2) and ITGB4 (FIG. 3), respectively.
  • Example 7 Analysis of adhesion inhibition ability using anti-ITGA6 / B4 antibody
  • the ability of the anti-ITGA6 / B4 antibody of the present invention to inhibit adhesion to intractable leukemia cell lines was analyzed.
  • Matrigel (BD Bioscience), a basement membrane matrix, was coated on the plate to create an easy-adhesive environment similar to a bone marrow niche.
  • Example 8 Examination experiment of anti-cancer agent combined effect of antibody of present invention
  • Anti-ITGA6 / B4 antibody of the present invention was expected to enhance the effect of anti-cancer agent. Therefore, AraC (cytarabine), DXR (doxorubicin), VP16 (etoposide) are commonly used anti-cancer drugs for leukemia treatment using UCSD / AML1, Kasumi3, MOLM1, and HNT34, which are intractable leukemia cell lines. ) was examined for the effect of the combined use. For leukemia cell lines, the survival rate was compared under the combined use conditions of an anticancer agent alone and an antibody.
  • FIG. 8-1 is an example of a combined effect measurement test conducted with DXR (doxorubicin) and AML1 cells.
  • DXR doxorubicin
  • FIG. 8-1 is an example of a combined effect measurement test conducted with DXR (doxorubicin) and AML1 cells.
  • anticancer antibiotics actinomycin D, idarubicin, doxorubicin, hydrorubicin, mitoxantrone, mitomycin C, etc.
  • platin AraC cytarabine
  • DXR doxorubicin
  • VP16 etoposide
  • UCSD / AML1 A cell line with t (3; 3) karyotype established in Taetel UCSD. Originated from Westerners. Kasumi3: A cell line with t (3; 7) karyotype established at Hiroshima University. Japanese origin. MOLM1: A cell line with t (9; 22), inv (3) karyotype established at Hayashibara Laboratory. Japanese origin. HNT34: Cell line with t (3; 3) karyotype established at Musashino Hospital. Japanese origin.
  • Example 9 Analysis of Cell Adhesion Inhibitory Ability of AML1 Cell Line by Anti-ITGA6B4 Antibody Cell adhesion inhibition experiments were carried out on four AML cell lines UCSD / AML1, Kasumi3, MOLM1, and HNT34.
  • Matrigel (BD Bioscience), which is a basement membrane matrix, was coated on a plate to create an easily adhesive environment similar to a bone marrow niche, and the adhesion due to antibody treatment was compared. Specifically, for 10000 cells / 100 ⁇ L, the final concentration is 0-10 ⁇ g / mL using the anti-ITGA6B4 IgG antibody selected in Example 2 and prepared and evaluated in Example 3 and 4. In addition, the mixture was incubated at 4 ° C.
  • FIG. 7 is a graph showing the results of the cell adhesion assay described above. As shown in FIG. 7, it was shown that the cell adhesion ability of AML1 cells (ratio of the number of adherent cells to the total number of cells) was significantly decreased in PPMXITG-001, PPMXITG-004, and PPMXITG-005.
  • Example 10 Investigation of ITGA6B4 expression level in leukemia stem cells The expression pattern of ITGA6 / B4 mRNA in healthy human subjects and leukemia patients was analyzed according to the method described in Patent Document 1. Expression of ITGA4 / B1 (VLA4) and ITGA6 / B4 in hematopoietic stem cell and leukemia stem cell fractions was confirmed in blood provided by patients with intractable disease and volunteers. As a result, the data shown in FIG. 9 was obtained.
  • Healthy-derived HSC is CD34 + fraction from normal specimen (Hematopoietic Stem Cell: HSC), leukemia patient-derived HSC is leukemia patient specimen CD34 + fraction, and leukemia patient-derived LSC is leukemia patient specimen CD34 + CD38-minute (Leukemia Stem Cell: LSC).
  • HSC Hematopoietic Stem Cell
  • LSC Leukemia Stem Cell
  • Example 11 Evaluation of antibody reactivity by introduction of shRNA of ITGA6 and ITGB4 genes
  • shRNA short hairpin RNAs
  • Non-Patent Document 1 anti-human ITGA6 rat antibody (Santa Cruz) and anti-human ITGB4 mouse antibody (Millipore) described in Non-Patent Document 1 were also used as commercial positive control antibodies for ITGA6 and ITGB4.
  • the graph shown as untreated is the one not treated with shRNA
  • the graph shown as the control is a graph treated with only the detection antibody ⁇ anti-human IgG-Alexa647 (Invitrogen)>
  • shITGA6 is a graph of a sample in which the expression of each gene was suppressed with shRNA.
  • Example 12 Verification of antibody therapeutic effect (invasion suppression ability) in vein transplantation model Using immunodeficient mice (NOG mice), vein transplantation models of refractory leukemia cells UCSD / AML1, and HNT34 cell lines were prepared and administered with drugs. (AraC), antibody administration, and the bone marrow infiltration inhibitory effect by the combined use were verified. After injecting a leukemia cell line into the mouse vein, PPMXITG-005 was administered, and then the organ was removed from the experimental body and analyzed for the degree of human cell infiltration. Specifically, the removed organ is crushed with a cell strainer (BD 352340), and separated cells are obtained, and then red blood cells are hemolyzed with a hemolysis reagent (BD 555899).
  • BD 352340 cell strainer
  • red blood cells are hemolyzed with a hemolysis reagent (BD 555899).
  • Example 13 In vitro growth inhibitory effect of IgG-modified ITGA6B4 antibody ITGA6B4-expressing cells
  • AML1 and SW480 were prepared in a culture solution to a density of 1000 cells / well, and dispensed into a 96-well flat-bottom plate (NUNC 167008) at 100 ⁇ L / well. did. After culturing at 37 ° C., 5% CO 2, 95% air for 24 hours, 10 ⁇ g / mL ITGA6B4 antibody was prepared, and 100 ⁇ L thereof was added to the plate in culture, and further 37 ° C., 5% CO 2, 95% air For 96 hours.
  • Example 12 From the results of Example 12 (FIG. 11) in which the bone marrow invasiveness in the same mouse intravenous administration was analyzed, (1) the combined use of the antibody and the anticancer agent was the infiltration of leukemia cells administered into the vein into the bone marrow. Suppress. (2) As a result, recovery of the survival rate is observed in the mouse model. The effectiveness of the antibody in the present invention was demonstrated on the grounds.

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Abstract

　本発明の目的は、細胞膜上に発現するITGA6B4複合体を特異的に認識し、ITGA6B4複合体とラミニンとの接着を阻害することによってがん細胞の骨髄ニッチへの生着を阻害し、更に抗がん剤耐性株に対する抗がん剤の効果を著しく増強することができる抗ITGA6/B4ヒト抗体を提供することである。本発明によれば、インテグリンＡ６Ｂ４に対する抗体であって、ヒトインテグリンＡ６Ｂ４複合体を特異的に認識し、細胞間接着を阻害する抗体が提供される。

Description

ヒトインテグリンＡ６Ｂ４と特異的に反応する抗体
　本発明は、ヒトインテグリンＡ６Ｂ４と特異的に反応する抗体に関する。
　成人急性骨髄性白血病(AML)の半数以上は抗がん剤による化学療法に耐性を示し、難治性である。この難治性白血病は骨髄移植を行っても予後不良であり、新規治療法の開発は急務である。本発明者らは、これまで難治性白血病の発症機構解明のためゲノム解析及び発症因子の機能解析を行っており、数多くの発症関連因子群を単離してきた。特に転写因子EVI1高発現の難治性白血病の病態解析を行っており、網羅的遺伝子発現解析からα6-integrin(ITGA6)並びにβ4(ITGB4)の高発現を同定した。このITGA6/B4はEVI1高発現白血病のみならず、治療後の白血病再発患者群においても高発現があることがわかり、難治性白血病全般に見られる現象である。さらにこの高発現は、骨芽細胞並びに細胞外マトリックスであるラミニンへの接着性の亢進、さらには各種抗がん剤耐性の獲得に寄与することを同定した(非特許文献１)。
　この白血病細胞の細胞接着能の亢進は、細胞接着依存性化学療法耐性(CAM-DR)としてよく知られた現象であり、白血病幹細胞(以後LSCと表記)が造血幹細胞(以後HSCと表記)の骨髄ニッチ(以後、骨芽細胞と表記)をのっとり（骨髄ニッチ環境を利用した生着）、抗がん剤耐性を獲得する機構が近年明らかになって来た。HSCの骨髄ニッチの接着に関わるインテグリンファミリーはVLA-4(ITGA4/B1)が主体であるが（非特許文献２）、LSCではITGA6/B4に依存していることがわかった。従って難治性に繋がるCAM-DRに関わる特異的な接着分子ITGA6/B4を標的とした治療法の開発は、これまで治療法がなかった難治性白血病の効果的治療法の開発に繋がると考えられる（特許文献１）。
　抗ITGA6B4に反応できる抗体としては、バイオジェンアイデック　MA　INCによって作製され２００７年に報告されている。この抗体は、細胞の増殖を阻害し、ラミニンとの接着を阻害する能力を有するとされている（特許文献２）。
　本発明者らは、PhageDisplay法を基盤に多くのがん細胞を標的としたヒト抗体の網羅的な単離方法により（特許文献３）、がん細胞に特異的抗原（抗体）の探索をしている。その結果、得られた２９種類の標的にはITGA6/B4（抗体）が含まれており、抗体医薬標的としての妥当性が別の観点からも証明されている(非特許文献３)。
　医薬品の副作用と言う観点から、化学療法剤はがん細胞特異的ではなく、正常細胞も含め、細胞分裂が活性化している細胞に対して効果を示すために従来より投薬のコントロールが非常に重要であった。一方、分子標的薬剤は特定の標的分子に対して選択的に設計された薬剤であるため、化学療法剤に比べて副作用が軽減されることが特徴である。抗体も分子標的薬剤であり、酵素阻害剤（キナーゼ阻害剤）等に比べるとさらに標的への特異性は向上している。その分、副作用も軽減されることが期待されているが、個別の抗体医薬においてはそれぞれ特徴的な副作用が観察されている。それは抗体分子の特性に由来するＡＤＣＣ（抗体依存性細胞傷害）やＣＤＣ（補体依存性細胞傷害）などの免疫反応を誘導するために起こるものや、標的分子に作用して誘起されるアゴニスト、アンタゴニスト活性に由来するものが考えられる。また近年では免疫反応を増強したり、薬剤修飾などで強力な効果を示すことが出来る一方でより副作用に関しては繊細な注意が必要である。
ＷＯ２０１０／０９８１６６号 ＷＯ２００８／１２７６５５号 特許４８７０３４８号
The Increased Expression of Integrin α6 (ITGA6)  Enhances Drug Resistance in EVI1high Leukemia, Yamakawa, N., et al.  ProsOne Vol.7 Issue1 e30706 (2012) Interaction between leukemic-cell VLA-4 and stromal fibronectin is a decisive factor for minimal residual disease of acute myelogenous leukemia. Matsunaga, T., et al. Nat Med; 9: 1158-65. (2003) Comprehensive screening for antigens overexpressed on carcinomas via isolation of human mAbs that may be therapeutic, Kurosawa G et al., Proc Nat Acad Sci USA 105, 7287-7292<2008>
　本発明は、細胞膜上に発現するインテグリンA6B4（ITGA6B4）複合体を特異的に認識し、ITGA6B4複合体とラミニンとの接着を阻害することによってがん細胞の骨髄ニッチへの生着を阻害し、更に抗がん剤耐性株に対する抗がん剤の効果を著しく増強することができる抗ITGA6/B4ヒト抗体を提供することを解決すべき課題とした。更に本発明は、その利用にあたり副作用の少ない上記抗ITGA6/B4ヒト抗体を用いたがん細胞の細胞接着阻害剤並びに医薬組成物を提供することを解決すべき課題とした。
　本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意検討し、難治性白血病幹細胞は骨髄ニッチに生着することにより抗がん剤耐性を取得していることに着目し、骨髄ニッチへの安定的生着を阻害し、結果的に遊離させたり接着阻害させたりすることにより（この現象を、「追い出し」と呼ぶ）、抗がん剤の効果を改善できることを予想し、そしてニッチからの追い出しには抗体分子が有用であるという考えに基づいて、ヒトインテグリンＡ６Ｂ４複合体を認識し、がん細胞のニッチへの接着を阻害することによってがん細胞の抗がん剤に対する感受性を上昇させる活性を有する抗体を探索することにした。
　本発明者らは、 phage display 法を基盤にした細胞表面上のintactな蛋白に対する完全ヒト抗体を単離する方法を樹立している。この方法は、巨大なレパートリーを保持するファージライブラリーを用いるため抗体の多様性が高く、また、がん細胞を直接スクリーニングすることから、細胞表面上にある複合蛋白質に対する抗体も容易に取得できる方法である。本発明では、この方法を用いて、がん細胞膜上に発現しているITGA6/B4複合体に対する抗体を複数取得した。そして、白血病幹細胞を含め、腎臓がん、肺がん等、数多くのがん細胞に反応するがん特異性を示す抗体が選別された。さらに、得られた抗体から、組み換えDNA技術を用いて完全ヒトIgG抗体を作製した。
　次に、本発明者らは、難治性白血病幹細胞は、骨髄ニッチに生着することにより抗がん剤耐性を獲得しているから、骨髄ニッチから「追い出し」することにより、抗がん剤の効果を改善でき、ニッチからの「追い出し」には抗体が有用であるという考えから、抗体による「追い出し治療」を考案した。この治療の場合、主に必要な薬効は骨髄への生着阻害であり、それ以外の副効果はITGA6B4を発現するすべての細胞に対して考えると、予期せぬ作用を示す懸念がある。そのため、本発明においては細胞の増殖に影響を及ぼさない抗ITGA6B4抗体を選択した。前述の考えの上に立ちヒト抗体を用いて、「追い出し治療」に関する基礎的な検討を行った。その結果、本発明の抗ITGA6/B4抗体が、白血病幹細胞の骨髄ニッチへの生着を阻害できること、そして生着阻害作用を有する抗体は抗がん剤耐性を低下させることをモデル系で確認することに成功し、本発明を完成するに至った。
　即ち、本発明によれば、以下の発明が提供される。
（１）　インテグリンＡ６Ｂ４に対する抗体であって、ヒトインテグリンＡ６Ｂ４複合体を特異的に認識し、細胞間接着を阻害する抗体。
（２）　インテグリンＡ６Ｂ４に対する抗体であって、ヒトインテグリンＡ６Ｂ４複合体を特異的に認識し、標的抗原を発現するがん細胞の抗がん剤への感受性を上昇させる抗体。
（３）　実質的に細胞の増殖に影響を及ぼさない（１）又は（２）に記載の抗体
（４）　インテグリンＡ６Ｂ４に対する抗体であって、前記抗体はヒトインテグリンＡ６Ｂ４複合体を特異的に認識し、かつ前記抗体は、
（ａ） インテグリンＡ６Ｂ４を介した細胞間接着を阻害する能力；
（ｂ） がん細胞の抗がん剤への感受性を上昇させる能力；
（ｃ） 実質的に細胞の増殖に影響を及ぼさない特性；
のうち少なくとも２つ以上を有する抗体。
（５）　抗がん剤が下記（ｉ）から（ｖ）から選択される（２）又は（４）に記載の抗体
（ｉ）イホスファミド、塩酸ニムスチン、塩酸プロカルバジン、シクロホスファミド、ダカルバジンおよびチオテバから選択されるアルキル化剤；
（ｉｉ）シタラビン、エノシタビン、塩酸ゲムシタビン、カルモフール、テガフールおよびフルオロウラシルから選択される代謝拮抗剤；
（ｉｉｉ）エトポシド、イリノテカン、ドセタキシル、パクリタキセル、ビンクリスチン、ビンデシンおよびビンブラスチンから選択される植物アルカロイド；
（ｉｖ）アクチノマイシンＤ、イダルビシン、ドキソルビシン、ヒドラルビシン、ミトキサントロンおよびマイトマイシンＣから選択される抗がん性抗生物質；
（ｖ）カルボプラチン、シスプラチン、ネダプラチンおよびオキサリプラチンから選択される白金系製剤：
（６）　ヒト抗体あるいはヒト化抗体である（１）から（５）の何れかに記載の抗体。
（７）　重鎖第１相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ１）、重鎖第２相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ２）、重鎖第３相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ３）としてそれぞれ配列番号１～３、７～９、１３～１５、１９～２１、２５～２７の何れかのアミノ酸配列又はそれと実質的に同一のアミノ酸配列を含む、（１）から（６）の何れかに記載の抗体。
（８）　重鎖第１相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ１）、重鎖第２相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ２）、重鎖第３相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ３）としてそれぞれ配列番号１～３、７～９、１３～１５、１９～２１、２５～２７の何れかのアミノ酸配列又はそれと実質的に同一のアミノ酸配列を含み、軽鎖第１相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ１）、軽鎖第２相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ２）、軽鎖第３相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ３）としてそれぞれ配列番号４～６、１０～１２、１６～１８、２２～２４、２８～３０の何れかのアミノ酸配列又はそれと実質的に同一のアミノ酸配列を含む、（１）から（７）の何れかに記載の抗体。
（９）　下記（ｉ）から（ｖ）から選択される（１）から（８）の何れかに記載の抗体
（ｉ）配列番号１のアミノ酸配列からなる重鎖第１相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ１）、配列番号２のアミノ酸配列からなる重鎖第２相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ２）、配列番号３のアミノ酸配列からなる重鎖第３相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ３）、配列番号４のアミノ酸配列からなる軽鎖第１相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ１）、配列番号５のアミノ酸配列からなる軽鎖第２相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ２）、配列番号６のアミノ酸配列からなる軽鎖第３相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ３）を含む抗体；
（ｉｉ）配列番号７のアミノ酸配列からなる重鎖第１相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ１）、配列番号８のアミノ酸配列からなる重鎖第２相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ２）、配列番号９のアミノ酸配列からなる重鎖第３相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ３）、配列番号１０のアミノ酸配列からなる軽鎖第１相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ１）、配列番号１１のアミノ酸配列からなる軽鎖第２相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ２）、配列番号１２のアミノ酸配列からなる軽鎖第３相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ３）を含む抗体；
（ｉｉｉ）配列番号１３のアミノ酸配列からなる重鎖第１相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ１）、配列番号１４のアミノ酸配列からなる重鎖第２相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ２）、配列番号１５のアミノ酸配列からなる重鎖第３相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ３）、配列番号１６のアミノ酸配列からなる軽鎖第１相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ１）、配列番号１７のアミノ酸配列からなる軽鎖第２相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ２）、配列番号１８のアミノ酸配列からなる軽鎖第３相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ３）を含む抗体；
（ｉｖ）配列番号１９のアミノ酸配列からなる重鎖第１相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ１）、配列番号２０のアミノ酸配列からなる重鎖第２相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ２）、配列番号２１のアミノ酸配列からなる重鎖第３相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ３）、配列番号２２のアミノ酸配列からなる軽鎖第１相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ１）、配列番号２３のアミノ酸配列からなる軽鎖第２相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ２）、配列番号２４のアミノ酸配列からなる軽鎖第３相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ３）を含む抗体；
（ｖ）配列番号２５のアミノ酸配列からなる重鎖第１相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ１）、配列番号２６のアミノ酸配列からなる重鎖第２相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ２）、配列番号２７のアミノ酸配列からなる重鎖第３相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ３）、配列番号２８のアミノ酸配列からなる軽鎖第１相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ１）、配列番号２９のアミノ酸配列からなる軽鎖第２相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ２）、配列番号３０のアミノ酸配列からなる軽鎖第３相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ３）を含む抗体；
（１０）　配列番号１～３、７～９、１３～１５、１９～２１、２５～２７、４～６、１０～１２、１６～１８、２２～２４、２８～３０の何れかのアミノ酸配列において、１または数個のアミノ酸が欠失、付加、置換及び／または挿入されていて、ヒトＩＴＧＡ６Ｂ４と特異的に反応する活性を有する、（７）又は（８）に記載の抗体。
（１１）　抗体が、Ｆａｂ、Ｆａｂ'、F(ab')２、一本鎖抗体（ｓｃＦｖ）、二量体化V領域（Ｄｉａｂｏｄｙ）、ジスルフィド安定化V領域（ｄｓＦｖ）およびＣＤＲを含むペプチドからなる群から選ばれる抗体断片である、（１）から（１０）のいずれかに記載の抗体。
（１２）　（７）から（１０）のいずれかに記載の抗体をコードするＤＮＡ。
（１３）　（１２）に記載のＤＮＡを含有する組換えベクター。
（１４）　（１２）に記載の組換えベクターを宿主細胞に導入して得られる形質転換株。
（１５）　（１４）に記載の形質転換株を培地に培養し、培養物中に（１）から（１１）の何れかに記載の抗体を生成蓄積させ、培養物から抗体を採取することを含む、（１）から（１１）の何れかに記載の抗体の製造方法。
（１６）　（１）から（１１）の何れかに記載の抗体を含有する、がん細胞の細胞接着阻害剤。
（１７）　他の抗がん剤と併用された際、がん細胞の前記抗がん剤に対する感受性を向上させるのに用いられる、（１）から（１１）のいずれかに記載の抗体を含有するがん細胞の細胞接着阻害剤。
（１８）　（１）から（１１）の何れかに記載の抗体と医薬上許容される担体とを含む医薬組成物。
（１９）　（１）から（１１）の何れかに記載の抗体を含有する医薬組成物であって、
がん細胞の薬剤感受性を上昇させ、がん細胞の増殖阻害および／またはがん細胞を死滅させるために、それを必要とする患者に、
（ａ）（１）から（１１）のいずれかに記載の抗体、および
（ｂ）イホスファミド、塩酸ニムスチン、塩酸プロカルバジン、シクロホスファミド、ダカルバジンおよびチオテバから選択されるアルキル化剤；シタラビン、エノシタビン、塩酸ゲムシタビン、カルモフール、テガフールおよびフルオロウラシルから選択される代謝拮抗剤；エトポシド、イリノテカン、ドセタキシル、パクリタキセル、ビンクリスチン、ビンデシンおよびビンブラスチンから選択される植物アルカロイド；アクチノマイシンＤ、イダルビシン、ドキソルビシン、ヒドラルビシン、ミトキサントロンおよびマイトマイシンＣから選択される抗がん性抗生物質；カルボプラチン、シスプラチン、ネダプラチンおよびオキサリプラチンから選択される白金系製剤から選択される抗がん剤を、前記抗体が、がん細胞に結合するための条件下および十分な量で提供し、それによりがん細胞の増殖阻害および／またはがん細胞の死滅を引き起こす、前記医薬組成物。
（２０）　がん細胞が、骨髄ニッチに生着したがん細胞である、（１９）に記載の医薬組成物
（２１）　がんが、固形がんまた血液がんである、（１９）又は（２０）に記載の医薬組成物。
（２２）　固形がんが肺がん、大腸がん、胃がん、膀胱がん、膵臓がん、前立腺がん、肝がん、子宮頸がん、子宮がん、卵巣がん、乳がん、頭頸部がん、又は皮膚がんである、（２１）に記載の医薬組成物。
（２３）　血液がんが白血病、リンパ腫、又は骨髄腫である、（２１）に記載の医薬組成物。
　本発明によればさらに、上記した本発明の抗体を対象者に投与することを含む、がんを抑制又は治療する方法が提供される。
　本発明によればさらに、上記した本発明の抗体を対象者に投与することを含む、抗がん剤の効果を高める方法が提供される。
　本発明によればさらに、上記した本発明の抗体を対象者に投与することを含む、がん細胞の細胞接着を阻害する方法が提供される。
　本発明によればさらに、がん細胞の細胞接着阻害剤又は医薬組成物の製造のための、上記した本発明の抗体の使用が提供される。
　本発明の抗体は、ヒトITGA6B4複合体を特異的に認識し、ITGA6B4複合体を細胞膜上に発現している難治性がん細胞を特異的に認識することができる。本発明の抗体はまた、がん細胞の骨髄ニッチへの生着を阻害し、抗がん剤耐性株に対する抗がん剤の効果を増強することができる。さらに本発明の抗体は、抗体単独では細胞増殖に影響を及ぼさない性質から、予期しない効果、つまり副作用を軽減することができる。
図１は、実施例５で行った免疫沈降における２本のバンドを示す。 図２は。実施例６で行った質量分析計による抗原同定の結果、ITGA6が得られたことを示す。本データは質量分析計（Thermo社LCQ）にて得られたマスデータを解析ソフトMascot search（MATRIX　SCIENCE  社）で解析させた時のアウトプット図である。 図３は、実施例６で行った質量分析計による抗原同定の結果、ITGB4が得られたことを示す。本データは質量分析計（Thermo社LCQ）にて得られたマスデータを解析ソフトMascot search（MATRIX　SCIENCE  社）で解析させた時のアウトプット図である。 図４は、実施例３で作製したIgG抗体について、精製可溶性ヒトITGA6B4抗原（Recombinant Human Integrin alpha 6 (X1) beta 4　R＆D社）を用いてＥＬＩＳＡによる抗原抗体の反応性を検討した結果を示す。 図５は、難治性白血病の網羅的遺伝子発現解析からα6-integrin(ITGA6)並びにβ4(ITGB4)の高発現を同定したことを示す図である。 図６は、白血病細胞の抗がん剤耐性の獲得には、ITGA6/B4を介した接着が必要であるということを示した図である。本発明の抗ITGA6/B4抗体は接着能の減弱に寄与することを示す。 図７は、AML細胞株UCSD/AML1、 Kasumi3、MOLM1そしてHNT34の４株に対して細胞接着阻害実験を行った結果を示す。抗ITGA6/B4抗体の投与により、接着性が低下することが示される。 図８は、抗がん剤 [AraC（シタラビン）、DXR（ドキソルビシン）、VP16（エトポシド）]との併用による影響を示す。抗ITGA6/B4抗体が抗がん剤の効果を増強していることが分かる。 図９は、白血病幹細胞におけるITGA6B4の発現量を調べた結果を示す。 図１０は、ITGA6及びITGB4遺伝子のshRNA導入した細胞による、遺伝子発現抑制試験における抗体の反応性変化の評価を行った結果を示す。 図１１は、静脈移植モデルを用いて抗体併用による浸潤抑制効果を検証した結果を示す。抗ITGA6B4抗体の投与により単剤、併用において骨髄への浸潤が有意に抑制されていることが示された。 図１２－１はITGA6B4抗体のｉｎ　ｖｉｔｒｏ増殖抑制効果を検証した結果を示す。また図１２－２は結果をＰＢＳを１００とした増殖度合の割合を示し、抗ITGA6B4抗体は単剤で細胞増殖抑制効果はないことが示された。 図１３は、静脈移植モデルを用いたｉｎ　ｖｉｖｏ抗腫瘍効果を示す。抗体、抗がん剤併用において生存率の延長が認められた。
　以下、本発明について更に詳細に説明する。なお、本明細書においては、本発明の抗体が特異的に認識する抗原であるインテグリンα6β4複合体を、ITGA6/B4、ITGA6B4、ITGA6B4複合体、A6B4複合体などと記す場合がある。
　本発明者らは難治性白血病の病態解析を行っており、網羅的遺伝子発現解析からα6-integrin(ITGA6)並びにβ4(ITGB4)の高発現を同定した。更にこのITGA6/B4はEVI1高発現白血病のみならず、治療後の白血病再発患者群においても高発現があることがわかり（図５）、難治性白血病全般に見られる現象であることから、特に白血病治療において有効な効果が期待できる。本発明の抗体によれば、ITGA6B4を介した骨髄ニッチへの接着を阻害することにより既存の抗がん剤に対して抵抗性を示していたがんの薬剤感受性を増大させることができ、その結果、抗がん剤の効果を復活若しくは増大させ、効果的な治療を行うことが可能になる。本発明の抗体は、特に患者のがん細胞に対する特異性及び親和性が高いもので上記抗がん剤の感受性を高める効果を保持する抗体を選抜しているため、がん細胞について良好な治療結果が得られる。本発明の抗体は、ITGA6B4複合体に対する抗体であり、特に上記した「追い出し治療」を行うことが可能であり、がん細胞の既存の抗がん剤の感受性を飛躍的に高めることができるという特徴を有する。特許文献１においてはインテグリンＡ６又はインテグリンＢ４の単独についての効果が記載されているが、本発明の抗体はインテグリンＡ６Ｂ４複合体に対する抗体である。本発明の抗体はインテグリンＡ６Ｂ４を認識し、本発明において提唱する「追い出し治療」に適正化された抗体であることから、白血病再発患者に対しても顕著な治療効果が期待できる。
　本明細書において別段定義しない限り、本発明に関して使用した科学技術用語は、当業者に通常理解されている意味を含むものとする。一般に、本明細書に記載の細胞および組織培養、分子生物学、免疫学、微生物学、遺伝学、タンパク質および核酸化学ならびにハイブリダイゼーションに関して使用した命名法およびその技術は、当技術分野で周知のものであり、通常使用されている。
　本発明の方法および技術は一般に、別段示さない限り、当技術分野で周知である従来の方法に従って、本明細書全体にわたって引用し論じた種々の一般的参照文献およびより具体的な参照文献に記載されているように実施する。
イテングリンＡ６Ｂ４（ITGA6B4）
　イテングリンα６とインテグリンβ４からなる複合体で細胞外マトリックスとの相互作用、細胞間接着、細胞の組織への生着、シグナリング等多くの現象に関与している事が知られている。イテングリンα６はβ４以外にもβ１と複合体を形成し、VLA6という複合体を取ることも知られている。なお本抗原はCD49ｆとして知られ、血小板や巨核球に存在し、　T細胞のサブポピュレーションに弱く発現すると考えられている。一方で本研究対象の複合体は主に正常細胞では気管支上皮とがん細胞では大腸がんを始め多くのがんで発現すると考えられている。
　ITGA6B4は、構造上特別に限定せず、単量体、多量体、細胞膜に発現しているｉｎｔａｃｔ　ｆｏｒｍ、細胞外領域に構成された可溶化ｆｏｒｍ、ｔｒｕｎｃｔｅｄ　ｆｏｒｍ、また、遺伝子の変異や、欠損などによりｍｕｔａｔｉｏｎ　ｆｏｒｍ、リン酸化などにより翻訳後修飾を受けたｆｏｒｍなども含め、すべてヒトITGA6B4を意味する。
反応する及び反応性
　本明細書において、「反応する」と「反応性」は特別に示さない限り、同じのことを意味する。すなわち、抗体が抗原を認識することを意味する。この抗原は、細胞膜に発現するｉｎｔａｃｔ　ITGA6B4でもよいし、ｔｒｕｎｃｔｅｄ　ｆｏｒｍや、可溶化ｆｏｒｍでも良い。また、立体構造を保ったITGA6B4でもよいし、変性したITGA6B4でもよい。反応性を検討する手段として、フローサイトメーター（ＦＡＣＳ）、酵素結合免疫吸着検定法（ＥＬＩＳＡ）、ｗｅｓｔｅｒｎ－ｂｌｏｔ、蛍光微量測定技術（ＦＭＡＴ）表面プラズモン共鳴（ＢＩＡｃｏｒｅ）、免疫染色、免疫沈降などが挙げられる。
　フローサイトメーターに用いる抗体としては、ＦＩＴＣなどの蛍光物質、ビオチンなどにより標識された抗体であっても、標識をされていない抗体であってもよい。用いた抗体の標識の有無、その種類により、蛍光標識アビジン、蛍光標識抗ヒト免疫グロブリン抗体などを使用する。反応性は、十分量の抗ITGA6B4抗体（通常最終濃度が０．０１～１０μｇ／ｍＬ）を検体に加えて行い、陰性対照抗体、陽性対照抗体の反応性との比較を行うことにより評価することができる。
抗体
　本明細書では必要に応じて、慣習に従い以下の略号（括弧内）を使用する。
重鎖（Ｈ鎖）、軽鎖（Ｌ鎖）、重鎖可変領域（ＶＨ）、軽鎖可変領域（ＶＬ）、相補性決定領域（ＣＤＲ）
　本明細書において、「抗体」という用語は、イムノグロブリンと同義であり、当技術分野で通常知られている通りに理解されるべきである。具体的には、抗体という用語は、抗体を作製する任意の特定の方法により限定されるものではない。例えば、抗体という用語には、それだけに限らないが、組換え抗体、モノクローナル抗体、およびポリクローナル抗体がある。
　本明細書において、「ヒト抗体」という用語は、可変領域および定常領域の配列がヒト配列である任意の抗体を意味する。その用語は、ヒト遺伝子に由来する配列を有するが、例えば、考えられる免疫原性の低下、親和性の増大、望ましくない折りたたみを引き起こす可能性があるシステインの除去などを行うように変化させている抗体を包含する。その用語はまた、ヒト細胞に特有でないグリコシル化を施すことができる、非ヒト細胞中で組換えにより作製されたそのような抗体をも包含する。これらの抗体は、様々な形で調製することができる。
　本明細書において、「ヒト化抗体」という用語は、非ヒト由来の抗体を指し、非ヒト種の抗体配列に特徴的なアミノ酸残基が、ヒト抗体の対応する位置で認められる残基と置換されている。この「ヒト化」の工程が、その結果得られる抗体のヒトでの免疫原性を低下させると考えられる。当技術分野で周知の技術を使用して、非ヒト由来の抗体をヒト化できることが理解されるであろう。例えば、Ｗｉｎｔｅｒら、Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｔｏｄａｙ１４：４３～４６（１９９３）を参照されたい。対象とする抗体は、ＣＨ１、ＣＨ２、ＣＨ３、ヒンジドメイン、および／またはフレームワークドメインを対応するヒト配列と置換する組換えＤＮＡ技術によって工学的に作製することができる。例えば、ＷＯ９２／０２１９０、ならびに米国特許第５，５３０，１０１号、第５，５８５，０８９号、第５，６９３，７６１号、第５，６９３，７９２号、第５，７１４，３５０号、および第５，７７７，０８５号を参照できる。本明細書において、「ヒト化抗体」という用語は、その意味の範囲内で、キメラヒト抗体およびＣＤＲ移植抗体を含む。
　本発明の抗体の可変領域においてフレームワーク領域（ＦＲ）の配列は、対応する抗原に対する特異的結合性に実質的な影響のない限り、特に限定されない。ヒト抗体のＦＲ領域を用いることが好ましいが、ヒト以外の動物種（例えばマウスやラット）のＦＲ領域を用いることもできる。
　本明細書において、「ファージ抗体」という用語は、ファージにより産生されたｓｃＦｖ抗体を意味する。つまり、ＶＨ及びＶＬアミノ酸配列を含む抗体断片である。この断片は、Ｌｉｎｋｅｒとしてのアミノ酸以外、タグとしてのアミノ酸配列を含むことでもよい。
　本発明の抗体の一態様においては、可変領域に加えて定常領域を含む（例えばIgG型抗体）。定常領域の配列は特に限定されない。例えば、公知のヒト抗体の定常領域を用いることができる。ヒト抗体の重鎖定常領域（ＣＨ）としては、ヒトイムノグロブリン（以下、ｈＩｇと表記する）に属すればいかなるものでもよいが、ｈＩｇＧクラスのものが好適であり、更にｈＩｇＧクラスに属するｈＩｇＧ１、ｈＩｇＧ２、ｈＩｇＧ３、ｈＩｇＧ４といったサブクラスのいずれも用いることができる。また、軽鎖定常領域（ＣＬ）としては、ｈＩｇに属すればいかなるものでもよく、κクラスあるいはλクラスのものを用いることができる。また、ヒト以外の動物種（例えばマウスやラット）の定常領域を用いることもできる。
　本発明の抗体における可変領域（ＣＤＲ配列および／またはＦＲ配列）または定常領域のアミノ酸配列は、由来となる元のＦＲまたは定常領域のアミノ酸配列をそのまま用いてもよいし、ヒトITGA6B4を特異的に認識できる限り、１または数個（例えば、１から８個、好ましくは１から５個、より好ましくは１から３個、特に好ましくは１または２個）のアミノ酸を欠失、付加、置換及び／または挿入して異なるアミノ酸配列にして用いてもよい。
　本発明の抗体は好ましくは、重鎖第１相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ１）、重鎖第２相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ２）、重鎖第３相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ３）としてそれぞれ配列番号１～３、７～９、１３～１５、１９～２１、２５～２７の何れかのアミノ酸配列を含み、さらに軽鎖第１相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ１）、軽鎖第２相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ２）、軽鎖第３相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ３）としてそれぞれ配列番号４～６、１０～１２、１６～１８、２２～２４、２８～３０の何れかのアミノ酸配列含むものである。
　さらに本発明の抗体は、重鎖第１相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ１）、重鎖第２相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ２）、重鎖第３相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ３）としてそれぞれ配列番号１～３、７～９、１３～１５、１９～２１、２５～２７の何れかのアミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列を含むものでもよいし、さらに軽鎖第１相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ１）、軽鎖第２相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ２）、軽鎖第３相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ３）としてそれぞれ配列番号４～６、１０～１２、１６～１８、２２～２４、２８～３０の何れかのアミノ酸配列と実質的に同一のアミノ酸配列を含むものでもよい。
　「ヒトITGA6B4を特異的に認識できる」とは、改変前の抗体と同様にヒトインテグリンＡ６Ｂ４と特異的に反応する活性を有するということである。この抗原は、細胞膜に発現するｉｎｔａｃｔ　ITGA6B4でもよいし、ｔｒｕｎｃｔｅｄ　ｆｏｒｍや、可溶化ｆｏｒｍでも良い。また、立体構造を保ったITGA6B4でもよいし、変性したITGA6B4でもよい。たとえば、結合活性を検討する手段として、フローサイトメーター（ＦＡＣＳ）、酵素結合免疫吸着検定法（ＥＬＩＳＡ）、ｗｅｓｔｅｒｎ－ｂｌｏｔ、蛍光微量測定技術（ＦＭＡＴ）表面プラズモン共鳴（ＢＩＡｃｏｒｅ）などが挙げられる。
　本発明において、「改変前の抗体と同様に」とは、必ずしも同程度の活性である必要はなく、活性が増強されていてもよいし、又、活性を有する限り活性が減少していてもよい。活性が減少している抗体としては、例えば、元の抗体と比較して３０％以上の活性、好ましくは５０％以上の活性、より好ましくは８０％以上の活性、さらに好ましくは９０％以上の活性、特に好ましくは９５％以上の活性を有する抗体を挙げることができる。
　本発明の抗体は、ヒトインテグリンＡ６Ｂ４と特異的に反応する活性を有する限り、可変領域（ＣＤＲ配列および／またはＦＲ配列）のアミノ酸配列に１または複数のアミノ酸が置換、欠失、付加及び／又は挿入されていてもよい。アミノ酸配列において、１または数個（例えば、１から８個、好ましくは１から５個、より好ましくは１から３個、特に好ましくは１または２個）のアミノ酸が欠失、付加、置換及び／または挿入されており、ヒトインテグリンＡ６Ｂ４と特異的に反応する抗体のアミノ酸配列を調製するための、当業者によく知られた方法としては、タンパク質に変異を導入する方法が知られている。例えば、当業者であれば、部位特異的変異誘発法（Hashimoto-Gotoh, T, Mizuno, T, Ogasahara, Y, anＤＮＡkagawa, M. (１995) An oligodeoxyribonucleotide-directed dual amber method for site-directed mutagenesis. Gene １5２, ２7１-２75、Zoller, MJ, and Smith, M.(１98３) Oligonucleotide-directed mutagenesis of ＤＮＡ fragments cloned into M１３ vectors.Methods Enzymol. １00, 468-500、Kramer,W, Drutsa,V,Jansen,HW, Kramer,B, Pflugfelder,M, and Fritz,HJ(１984) The gapped duplex ＤＮＡ approach to oligonucleotide-directed mutation construction. Nucleic Acids Res. １２,944１-9456、Kramer W, and Fritz HJ(１987) Oligonucleotide-directed construction of mutations via gapped duplex ＤＮＡ Methods. Enzymol. １54, ３50-３67、Kunkel,TA(１985) Rapid and efficient site-specific mutagenesis without phenotypic selection.Proc NAML Acad Sci U S A. 8２, 488-49２）などを用いて、ヒトインテグリンＡ６Ｂ４と特異的に反応する抗体のアミノ酸配列に適宜変異を導入することにより、上記抗体と機能的に同等な変異体を調製することができる。
　このように、可変領域において、１または数個のアミノ酸が変異しており、ヒトインテグリンＡ６Ｂ４と特異的に反応する抗体もまた本発明の抗体に含まれる。
　本発明の抗体は、その由来で限定されず、ヒト抗体、マウス抗体、ラット抗体など、如何なる動物由来の抗体でもよい。又、キメラ化抗体、ヒト化抗体などでもよい。
　本発明の抗体は、後述する抗体を産生する細胞や宿主あるいは精製方法により、アミノ酸配列、分子量、等電点又は糖鎖の有無や形態などが異なり得る。得られた抗体が、本発明の抗体と同等の活性を有している限り、本発明に含まれる。例えば、本発明で記載されているアミノ酸配列に翻訳後に修飾を受ける場合も本発明に含まれる。更に、既知の翻訳後修飾以外の部位に対する翻訳後修飾も、本発明の抗体と同等の活性を有している限り、本発明に含まれる。また、本発明の抗体を原核細胞、例えば大腸菌で発現させた場合、本来の抗体のアミノ酸配列のN末端にメチオニン残基が付加される。本発明の抗体はこのような抗体も包含する。既知の翻訳後修飾以外の部位に対する翻訳後修飾も、本発明の抗体と同等の活性を有している限り、本発明に含まれる。
抗体の作製
（１）ファージディスプレイライブラリーにより抗原と反応するｓｃＦｖ
　本発明の抗体の取得は、当技術分野で知られているいくつかの方法に従って調製することができる。例えば、ファージディスプレイ技術を使用して、ITGA6B4に対する親和性が様々である抗体のレパートリーを含むライブラリーを提供することができる。次いで、これらのライブラリーをスクリーニングして、ITGA6B4に対する抗体を同定し単離することができる。好ましくは、ファージライブラリーは、ヒトＢ細胞から単離されたｍＲＮＡから調製されたヒトＶＬおよびＶＨｃＤＮＡを使用して生成されるｓｃＦｖファージディスプレイライブラリーである。そのようなライブラリーを調製しスクリーニングする方法は当技術分野で知られている。ヒトITGA6B4を抗原としてスクリーニングした反応性を示すファージクローンから遺伝物質を回収する。選択されたファージの遺伝子を解析すれば、抗原に結合するヒト抗体の可変領域をコードするＶＨ及びＶＬのＤＮＡ配列を決定することができる。このｓｃＦｖの配列を用いて、ｓｃＦｖをＩｇＧ化すれば、ヒト抗体を取得することができる。
（２）ｓｃＦｖのＩｇＧ化（ヒト抗体の作製）
　Ｈ鎖またＬ鎖の発現ベクターを作製し、宿主細胞に発現させ、分泌した上清の回収・精製によりヒト抗体を取得する。また、ＶＨ及びＶＬを同一ベクターに発現すること（タンデム型）によりヒト抗体の取得もできる。これらの方法は周知であり、ＷＯ９２/０１０４７、ＷＯ９２/２０７９１、ＷＯ９３/０６２１３、ＷＯ９３/１１２３６、Ｗ０９３/１９１７２、ＷＯ９５/０１４３８、ＷＯ９５/１５３８８、ＷＯ９７/１０３５４などを参考にすることができる。
　具体的には、ＶＨをコードするＤＮＡを、重鎖定常領域（ＣＨ１、ＣＨ２およびＣＨ３）をコードする他のＤＮＡ分子と連結することによって、完全長重鎖遺伝子を取得することができる。ヒト重鎖定常領域遺伝子の配列は当技術分野で知られており（例えば、Ｋａｂａｔ，Ｅ．Ａ．ら、（１９９１）Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓｏｆ　Ｐｒｏｔｅｉｎｓ　ｏｆ　Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ　Ｉｎｔｅｒｅｓｔ、第５版、Ｕ．Ｓ．Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ　ｏｆ　Ｈｅａｌｔｈ　ａｎｄ　Ｈｕｍａｎ　Ｓｅｒｖｉｃｅｓ、ＮＩＨ　Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎ　Ｎｏ．９１－３２４２）、これらの領域を包含するＤＮＡ断片は標準的なＰＣＲ増幅によって得ることができる。重鎖定常領域は、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４、ＩｇＡ、ＩｇＥ、ＩｇＭまたはＩｇＤの定常領域でよいが、最も好ましくはＩｇＧ１またはＩｇＧ２の定常領域である。ＩｇＧ１定常領域配列は、Ｇｍ（１）、Ｇｍ（２）、Ｇｍ（３）やＧｍ（１７）など、異なる個人間で生じることが知られている任意の様々な対立遺伝子またはアロタイプでよい。これらのアロタイプは、ＩｇＧ１定常領域中の天然に存在するアミノ酸置換に相当する。
　ＶＬをコードするＤＮＡを、軽鎖定常領域ＣＬをコードする他のＤＮＡ分子と連結することによって、完全長Ｌ鎖遺伝子（ならびにＦａｂ軽鎖遺伝子）を取得することができる。ヒト軽鎖定常領域遺伝子の配列は当技術分野で知られており（例えば、Ｋａｂａｔ，Ｅ．Ａ．ら、（１９９１）Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ　ｏｆ　Ｐｒｏｔｅｉｎｓ　ｏｆ　Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ　Ｉｎｔｅｒｅｓｔ、第５版、Ｕ．Ｓ．Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ　ｏｆ　Ｈｅａｌｔｈ　ａｎｄ　Ｈｕｍａｎ　Ｓｅｒｖｉｃｅｓ、ＮＩＨ　Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎ　Ｎｏ．９１－３２４２）、これらの領域を包含するＤＮＡ断片は標準的なＰＣＲ増幅によって得ることができる。軽鎖定常領域は、κまたはλの定常領域でよい。κ定常領域は、Ｉｎｖ（１）、Ｉｎｖ（２）やＩｎｖ（３）など、異なる個人間で生じることが知られている任意の様々な対立遺伝子でよい。λ定常領域は、３つのλ遺伝子のいずれかに由来するものでよい。
　上記のように得られたＨ鎖またＬ鎖コードするＤＮＡを発現ベクター中に挿入することにより、発現ベクターを作製し、宿主細胞に発現させ、分泌した上清の回収・精製によりヒト抗体を取得する。発現ベクターには、プラスミド、レトロウイルス、アデノウイルス、アデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）、カリフラワーモザイクウイルスやタバコモザイクウイルスなどの植物ウイルス、コスミド、ＹＡＣ、ＥＢＶ由来エピソームなどが挙げられる。発現ベクターおよび発現調節配列は、使用する発現用宿主細胞と適合するように選択する。抗体軽鎖遺伝子および抗体重鎖遺伝子は、別々のベクター中に挿入することができるし、また両方の遺伝子を同じ発現ベクター中に挿入することもできる。抗体遺伝子を、標準的な方法（例えば、抗体遺伝子断片上の相補的な制限部位とベクターの連結、または制限部位が存在しない場合には平滑末端連結）によって発現ベクター中に挿入する。
　好適なベクターは、上記に記載のように任意のＶＨまたはＶＬ配列を容易に挿入し発現させることができるように工学的に作製された適当な制限部位を有する機能的に完全なヒトＣＨまたはＣＬイムノグロブリン配列をコードするものである。そのようなベクターでは、通常、挿入されたＪ領域中のスプライス供与部位とヒトＣドメインに先行するスプライス受容部位の間で、またヒトＣＨエキソン内に存在するスプライス領域でもスプライシングが起こる。ポリアデニル化および転写終結は、コード領域の下流にある天然の染色体部位で起こる。組換え発現ベクターはまた、宿主細胞由来の抗体鎖の分泌を促進するシグナルペプチドをコードすることもできる。抗体鎖遺伝子は、シグナルペプチドがインフレームでイムノグロブリン鎖のアミノ末端と連結するようにベクター中にクローン化することができる。シグナルペプチドは、イムノグロブリンシグナルペプチドでもよく、あるいは異種性シグナルペプチド（すなわち非イムノグロブリンタンパク質由来のシグナルペプチド）でもよい。
　本発明の抗体の発現ベクターは、抗体遺伝子および制御配列に加えて、宿主細胞中でのベクターの複製を制御する配列（例えば複製起点）や選択マーカー遺伝子などのさらなる配列を有してよい。選択マーカー遺伝子は、ベクターが導入されている宿主細胞の選択を促進する。例えば、通常、選択マーカー遺伝子は、ベクターが導入されている宿主細胞上に、Ｇ４１８、ハイグロマイシンやメトトレキセートなどの薬物に対する耐性を付与する。好ましい選択マーカー遺伝子には、デヒドロ葉酸レダクターゼ（ＤＨＦＲ）遺伝子（ｄｈｆｒ－宿主細胞でメトトレキセート選択／増幅とともに使用する）、ネオマイシンホスホトランスフェラーゼ遺伝子（Ｇ４１８選択用）、およびグルタミン酸合成酵素遺伝子がある。
　以上の方法で作製された抗体遺伝子発現ベクターにより宿主細胞を形質転換する。宿主細胞としては細菌、酵母、動物細胞、昆虫細胞、植物細胞など、本発明の抗体を産生させる可能であればいかなる細胞でもよいが、動物細胞が好ましい。動物細胞として、チャイニーズハムスター卵巣細胞ＣＨＯ/ｄｈｆｒ (－)細胞ＣＨＯ/ＤＧ４４細胞、サル由来細胞ＣＯＳ細胞(A.Wright& S.L.Morrison, J.Immunol.１60, ３３９３-３４０２ (１９９８))、ＳＰ２／Ｏ細胞(マウスミエローマ)(K.Motmans et al., Eur.J.Cancer Prev.５,５１２-５１９9(１９９６),R.P.Junghans et al.,Cancer Res.５０,１４９５-１５０２ (１９９０)) など挙げられる。また、形質転換にはリポフェクチン法(R.W.Malone et al., Proc.NAML.Acad.Sci.USA ８６,６００７ (１９８９), P.L.Felgner et al., Proc.NAML.Acad.Sci.USA  ８４,７４１３ (１９８７)、エレクトロポレーション法、リン酸カルシウム法(F.L.Graham & A.J.van der Eb,Virology ５２,４５６-４６７(１９７３))、ＤＥＡＥ-Ｄｅｘｔｒａｎ法等が好適に用いられる。
　形質転換体を培養した後、形質転換体の細胞内又は培養液よりヒト抗体を分離する。抗体の分離・精製には、遠心分離、硫安分画、塩析、限外濾過、アフィニティークロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、ゲル濾過クロマトグラフィーなどの方法を適宜組み合わせて利用することができる。
抗原結合フラグメント
　本発明の抗体を基にして又は本発明の抗体をコードする遺伝子の配列情報を基にして、抗体結合フラグメントを作製することができる。抗体結合フラグメントとしては、Ｆａｂ、Ｆａｂ'、F(ab')2、一本鎖抗体（ｓｃＦｖ）、二量体化V領域（Ｄｉａｂｏｄｙ）、ジスルフィド安定化V領域（ｄｓＦｖ）、又は抗体由来の相補性決定領域(CDR)を含むペプチドを挙げることができる。
　Ｆａｂは、ＩｇＧをシステイン存在下パパイン消化することにより得られる、Ｌ鎖とＨ鎖可変領域、並びにＣＨ１ドメイン及びヒンジ部の一部からなるＨ鎖フラグメントとから構成される分子量約５万の断片である。本発明では、上記抗体をパパイン消化することにより得ることができる。また、上記抗体のＨ鎖の一部及びＬ鎖をコードするＤＮＡを適当なベクターに組み込み、当該ベクターを用いて形質転換した形質転換体よりＦａｂを調製することもできる。
　Ｆａｂ'は、後述のF(ａｂ')2のＨ鎖間のジスルフィド結合を切断することにより得られる分子量が約５万の断片である。本発明では、上記抗体をペプシン消化し、還元剤を用いてジスルフィド結合を切断することにより得られる。また、Ｆａｂ同様に、Ｆａｂ'をコードするＤＮＡを用いて遺伝子工学的に調製することもできる。
　Ｆ(ａｂ')2は、ＩｇＧをペプシン消化することにより得られる、Ｌ鎖とＨ鎖可変領域、並びにＣＨ１ドメイン及びヒンジ部の一部からなるＨ鎖フラグメントとから構成される断片（Ｆａｂ'）がジスルフィド結合で結合した分子量約１０万の断片である。本発明では、上記抗体をペプシン消化することにより得られる。また、Ｆａｂ同様に、Ｆ(ａｂ')2をコードするＤＮＡを用いて遺伝子工学的に調製することもできる。
　ｓｃＦｖは、Ｈ鎖可変領域とＬ鎖可変領域とからなるＦｖを、片方の鎖のＣ末端と他方のＮ末端とを適当なペプチドリンカーで連結し一本鎖化した抗体断片である。ペプチドリンカーとしては例えば柔軟性の高い（ＧＧＧＧＳ）3などを用いることができる。例えば、上記抗体のＨ鎖可変領域及びＬ鎖可変領域をコードするＤＮＡとペプチドリンカーをコードするＤＮＡを用いてｓｃＦｖ抗体をコードするＤＮＡを構築し、これを適当なベクターに組み込み、当該ベクターを用いて形質転換した形質転換体よりｓｃＦｖを調製することができる。
　二量体化V領域（Ｄｉａｂｏｄｙ）は、可変領域と可変領域をリンカー等で結合したフラグメント（例えば、scFv等）を２つ結合させて二量体化させたものであり、通常、2つのVLと2つのVHを含む。Ｄｉａｂｏｄｙを構成するフラグメント間の結合は非共有結合でも、共有結合でもよいが、好ましくは非共有結合である。
　ｄｓＦｖは、Ｈ鎖可変領域及びＬ鎖可変領域の適切な位置にＣｙｓ残基を導入し、Ｈ鎖可変領域とＬ鎖可変領域とをジスルフィド結合により安定化させたＦｖ断片である。各鎖におけるＣｙｓ残基の導入位置は分子モデリングにより予測される立体構造に基づき決定することができる。本発明では例えば上記抗体のＨ鎖可変領域及びＬ鎖可変領域のアミノ酸配列から立体構造を予測し、かかる予測に基づき変異を導入したＨ鎖可変領域及びＬ鎖可変領域をそれぞれコードするＤＮＡを構築し、これを適当なベクターに組み込み、そして当該ベクターを用いて形質転換した形質転換体よりｄｓＦｖを調製することができる。
　尚、適当なリンカーを用いてｓｃＦｖ抗体、ｄｃＦｖ抗体などを連結させたり、ストレプトアビジンを融合させたりして抗体断片を多量体化することもできる。
医薬
　本発明によれば、本発明の抗体を含有するがん細胞の細胞接着阻害剤、並びに本発明の抗体を含有する医薬組成物が提供される。本発明一つの実施形態としては難治性白血病であるが、これに限らない。ITGA6B4複合体の高発現による難治性白血病以外の疾患についても、本発明の抗体を用いて治療することができる。好ましくは難治性白血病であるが、固形がん（例えば、肺がん、大腸がん、胃がん、膀胱がん、膵臓がん、前立腺がん、肝がん、子宮頸がん、子宮がん、卵巣がん、乳がん、頭頸部がん、皮膚がんなど）、または血液がん（例えば、白血病、リンパ腫、骨髄腫など）なども治療対象に含まれる。
　本発明の抗体を含有するがん細胞の細胞接着阻害剤及び医薬組成物には、薬学的に許容される担体、賦形剤、希釈剤などを適宜含有させることができる。本発明のがん細胞の細胞接着阻害剤及び医薬組成物は、例えば注射剤として製剤することができる。本発明のがん細胞の細胞接着阻害剤及び医薬組成物の投与量は、患者の症状の程度、年令及び体重、投与方法などに依存し、有効成分である抗体の重量としては通常１日当たり約１０ｎｇ～約１００ｍｇ／ｋｇ体重の範囲である。
細胞の検出
　細胞に結合した本発明の抗体の検出は、フローサイトメトリー法や、ELISA法等　およびその組み合わせによって行うことが可能である。本発明の抗体が結合した細胞を検出又は定量する装置としては、フローサイトメーター（FACS:Fluorescence Activagted Cell  Sorter）が好ましい。血中循環がん細胞（CTC:CirculatingTumorCells）の測定の可能な他の測定器を用いる方法も考えられる。最も好ましくは、本発明の抗体が結合した細胞をフローサイトメーターにより測定することができる。この場合、本発明の抗体は、蛍光色素により標識されていることが好ましい。血液検体より得られた、血球細胞に本発明の抗体の蛍光標識物を接触させた後、フローサイトメーターにより解析することができる。
　以下の実施例により本発明をさらに詳細に説明するが、本発明は実施例によって限定されるものではない。
実施例１：がん細胞株を使用したファージ抗体スクリーニング
（１）がん細胞に結合するファージ抗体のスクリーニング（AML株USCD-AML1）
　USCD-AML1細胞（Oval et al., Blood 76: 1369-1374 (1990)；Taetle et al.,Cancer Res. 53: 3386-3393 (1993)；Hu et al., Leukemia 10: 1025-1040 (1996)）を任意の方法で培養した。細胞を回収し、冷却したＰＢＳで洗浄した後、１×１０13ｃｆｕのヒト抗体ファージライブラリー（特開２００５－１８５２８１号公報、ＷＯ２００８／００７６４８号公報、ＷＯ２００６／０９０７５０号公報を参照）を混ぜ、最終容積１．６ｍＬになるように反応液（１％ＢＳＡ、０．１％ＮａＮ３、ＭＥＭ）を添加し、４℃にて４時間ゆっくり回転させて反応させた。反応終了後、反応液を二つに分け、それぞれ事前に用意した０．６ｍＬの有機溶液(ｄｉｂｕｔｙｌ　ｐｈｔａｌａｔｅ　ｃｙｃｌｏｈｅｘｉｍｉｄｅ９：１)に重層し、マイクロ遠心機により２分間遠心（３０００ｒｐｍ）した。上清を捨て、チューブの底に沈降した細胞を０．７ｍＬの１％ＢＳＡ/ＭＥＭで懸濁し、更に０．７ｍＬの有機溶媒に重層した。同じように遠心により上清を捨て、細胞を０．３ｍＬのＰＢＳで懸濁し、液体窒素で凍結した。
　凍結した細胞を３７℃で解凍し、２０ｍＬの大腸菌ＤＨ１２Ｓ（ＯＤ０．５）に１時間で感染させた。ファージに感染した大腸菌を６００ｍＬの２×ＹＴＧＡ培地（２×ＹＴ、２００μｇ/ｍＬ ａｍｐｉｃｉｓｕｌｆａｔｅ、１％　Ｇｌｕｃｏｓｅ）に入れ、３０℃で一晩培養した。その後１０ｍＬを取り、２００ｍＬ　２×ＹＴＡ培地（２×ＹＴ、２００μｇ/ｍＬ ａｍｐｉｃｉｓｕｌｆａｔｅ）に入れ、３７℃で１．５時間培養した。１×１０11ヘルパーファージＫＯ７を入れ、更に３７℃で１時間培養した。８００ｍＬの２×ＹＴＧＡＫ培地（２×ＹＴ、２００μｇ/ｍＬ ａｍｐｉｃｉｓｕｌｆａｔｅ、０．０５％　Ｇｌｕｃｏｓｅ、５０μｇ/ｍＬｋａｎａｍｙｃｉｎ）を添加し、３０℃で一晩培養した。１０分間の遠心（８０００ｒｐｍ）により上清を回収した。回収した上清に２００ｍＬのＰＥＧ液（２０％　ｐｏｌｙｅｔｙｌｅｎｅｇｌｙｃｏｌ６０００、２．５Ｍ　ＮａＣｌ）を入れよく攪拌した後、１０分間の遠心（８０００ｒｐｍ）によりファージを沈殿させた。これを１０ｍＬのＰＢＳに懸濁し、これが１ｓｔスクリーニングのファージとした。
　次は、２ｎｄスクリーニングを行った。２×１０7培養細胞と１×１０10１ｓｔスクリーニングのファージを混合し、最終容積０．８ｍＬになるように反応液を（１％ＢＳＡ、０．１％ＮａＮ３、ＭＥＭ）入れた。その後は上記１ｓｔスクリーニングと同様の手法を行い、２ｎｄスクリーニングのファージを取得した。
　３ｒｄスクリーニングは１×１０9の２ｎｄスクリーニングのファージを使用し、上記と同じように行った。
（２）ファージ抗体の解析
　３ｒｄスクリーニングしたファージを回収し、既存法によりＤＮＡ配列を解析し、欠損領域を保持する不完全な抗体や配列が重複する抗体を排除し、独立した抗体配列を持つファージ抗体を取得した（特許第４８７０３４８を参照）。
実施例２：ＥＬＩＳＡによる陽性ファージのスクリーニング
　精製可溶性ヒトITGA6B4抗原（Recombinant Human Integrin alpha 6 (X1) beta 4　R＆D社）を用いてＥＬＩＳＡによる抗原抗体の反応性を検討した。すなわち、可溶性ITGA6B4抗原をＰＢＳで１0μg/ｍＬになるように調整し、Ｉｍｍｕｎｏ　Ｍｏｄｕｌｅ／Ｓｔｒｉｐ　Ｐｌａｔｅｓ（ＮＵＮＫ）に50μＬ/ｗｅｌｌに添加し、３７℃で２時間静置した。その後、可溶性ITGA6B4抗原を捨て、Ｂｌｏｃｋｉｎｇ液（５％ スキムミルク / ０．０５％ ＮａＮ３/ ＰＢＳ)２００μＬ/ｗｅｌｌで添加し、３７℃で２時間ブロッキングを行った。ブロッキング溶液を除き、ＰＢＳにより洗浄し、上記２ｎｄスクリーニングのファージの培養上清を１00μＬ/ｗｅｌｌ添加し、３７℃で１時間反応させた。ＰＢＳで５回洗浄後、ＰＢＳ/０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０で希釈した１μｇ/ｍＬＲａｂｂｉｔ　ａｎｔｉ－ｃｐ３を１００μＬ/ｗｅｌｌ添加し、３７℃で１時間反応させた。ＰＢＳで５回洗浄後、更にＰＢＳ/０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０で２０００倍希釈したａｎｔｉ－Ｒａｂｂｉｔ　ＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）－ＨＲＰを１００μＬ/ｗｅｌｌ添加し、３７℃で１時間反応させた。ＰＢＳで５回洗浄後、ＯＰＤ　ｉｎ　０．１Ｍクエン酸リン酸バーファー（ｐＨ５．１）＋０．０１％Ｈ2Ｏ2 を１００μＬ/ｗｅｌｌ添加し室温で５分間反応させた。２ＮＨ2ＳＯ2を１００μＬ/ｗｅｌｌ加え、発色反応を停止した。その後、ＳＰＥＣＴＲＡｍａｘ３４０ＰＣ（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｄｅｖｉｃｅｓ）にて４９２ｎｍの吸光度を測定した。その結果、可溶性ITGA6B4抗原と顕著な陽性反応を示すファージクローンのＤＮＡ配列を解析し、それぞれのＣＤＲ配列を確認し、独立配列を有するものを分類した。その結果、特に反応性の強い５抗体を選別し、PPMXITG－００１～００５とした。
　PPMXITG－００１～００５の重鎖第１相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ１）、重鎖第２相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ２）、重鎖第３相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ３）、軽鎖第１相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ１）、軽鎖第２相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ２）、及び軽鎖第３相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ３）を以下に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
実施例３：ファージ抗体（ｓｃＦｖ）のIgG化抗体作製
（１）ITGA6B4ＩｇＧ抗体を発現するｐｌａｓｍｉｄの作製
　ファージ抗体のIgG化はITGA6B4のＩｇＧ化を例として下記のように説明する。
　ITGA6B4のファージ抗体（ｓｃＦｖ）の遺伝子はＶＨ-ＶＬの順で並んでおり、ＶＨとＶＬはリンカー以下の配列で接続したｓｃＦｖの構造をしている。
＜リンカー配列＞
Gly Gly Gly Gly Ser Gly Gly Gly Gly Ser Gly Gly Gly Gly Ser(配列番号３１)
　ITGA6B4のＶＨ,ＶＬで使用していると推定されるヒト生殖系列の遺伝子をＩＭＧＴ (*)で検索し(* ＩＭＧＴ : http://www.imgt.org)、　ＩＭＧＴの検索結果を参考にして、ファージ抗体のＩｇＧ化をおこなった。ITGA6B4のＶＨをヒトＩｇG１の定常領域と連結した。ITGA6B4のＶＬは5'側にＮｈｅＩ、3'側にＥｃｏＲＩを付加したH鎖、Ｌ鎖遺伝子をＧｅｎＳｃｒｉｐｔ社で全合成した。。合成した重鎖、軽鎖の遺伝子はそれぞれ別々の発現ベクターに組み込んだ。すなわちH鎖、L鎖それぞれの人工合成遺伝子をＮｈｅＩとＥｃｏＲＩで切断し、発現ベクターｐＣＡＧＧＳのＮｈｅＩとＥｃｏＲＩ部位に組み込み、抗ITGA6B4抗体Ｈ鎖発現ベクター、およびＬ鎖発現ベクターを得た。
　同様な方法で、他の抗体の発現ベクターを作製した。
（２）ＩｇＧ抗体の一過性発現
　ＩｇＧ抗体の一過性発現にはＦｒｅｅＳｔｙｌｅ　（ライフテクノロジーズ）を用いた。遺伝子導入用浮遊細胞である２９３-Ｆ　（ライフテクノロジーズ）　は前日に継代した。トランスフェクション当日、一種類の抗体発現には、１ｘ１０6細胞／ｍＬの細胞濃度に調整した４００ｍＬの細胞懸濁液を準備した。これに抗体重鎖発現ベクターを１００　μｇ、軽鎖発現ベクターを１００μｇ合計２００μｇのプラスミドをＯｐｔｉＰｒｏ　ＳＦＭに懸濁した溶液（Ｉ）を調整した。次に２００μＬのＭＡＸ　ｒｅａｇｅｎｔを８ｍＬのＯｐｔｉＰＲＯ　ＳＦＭに加えた（溶液ＩＩ）。　溶液（Ｉ）と（ＩＩ）を混合して室温で１０分から２０分静置した。この合計１６ｍＬの反応液を２９３-F細胞を懸濁した４００ｍＬの２９３発現培地に加え、６日から７日間３７°C、８％ＣＯ2で細胞培養震盪機のＴＡＩＴＥＣ　ＢｉｏＳｈａｋｅｒ　ＢＲ-４３ＦＬで培養した。６日から７日間後、それぞれの組換え抗体を含む培養上清を回収し、これを材料に精製をおこなった。
（３）ＩｇＧ抗体の精製
　上記で発現した培養上清に含まれるＩｇＧ抗体タンパク質は、ＡＫＴＡｐｒｉｍｅを用いたＡｂ-Ｃａｐｃｈｅｒ　ＥｘＴｒａ（プロテノバ）アフィニティーカラムで精製した。得られたピークフラクションは、溶媒としてダルベッコのＰＢＳで平衡化したセファクリルＳ-３００カラムによるゲルろ過をして、さらに精製した。精製したＩｇＧ抗体タンパク質の定量は、吸光係数を用いて算出した。ＩｇＧ抗体の吸光係数はＥＸＰＡＳＹのＰｒｏｔＰａｒａｍ（ｈｔｔｐ：／／ｗｅｂ．ｅｘｐａｓｙ．ｏｒｇ／ｐｒｏｔｐａｒａｍ／）に各抗体の全アミノ酸配列を用いて計算して求めた。
（４）酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）による抗ITGA6B4ＩｇＧ抗体の定量
　上記で発現させ、精製済みの抗ITGA6B4ＩｇＧ抗体生産細胞の培地上清に含まれる抗体や、精製した抗体の濃度は、吸光度による定量とともに、酵素免疫測定法（ELISA）による定量も行った。固相抗体としてプレートにヤギ抗ヒトＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）（マウス、ウサギ、ウシ、マウスＩｇＧに対して吸収済み）（コスモバイオ：Ａｍｅｒｉｃａｎ　Ｑｕａｌｅｘ　Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ，Ｉｎｃ．；ＡＱＩ，Ｃａｔ．Ｎｏ．Ａ-１１０ＵＤ）を１００μｌ／ｗｅｌｌ（５μｇ／ｍＬの濃度）で加えて４℃で一昼夜静置した。次にブロックエースを２００μＬ／ｗｅｌｌで加えて室温で１時間ブロックした後、試料の抗体を段階希釈し、各ｗｅｌｌに加えて１時間インキュベーションして反応させた。ＰＢＳＴ(０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０、ＰＢＳ)で５回洗浄後、ヤギ抗ヒトＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）（マウス、ウサギ、ウシ、マウスＩｇＧに対して吸収済み）-ＨＲＰ（コスモバイオ：ＡＱＩ，Ｃａｔ．Ａ-１１０ＰＤ）をＰＢＳＴで１００００倍希釈した検出抗体溶液を１００μＬ／ｗｅｌｌの割合で加えた。１時間インキュベーション後、ＰＢＳＴで5回洗浄してから基質緩衝液TMBを１００μL/ｗｅｌｌの割合で加えた。室温暗所で１5分間インキュベーションした後、反応停止液を１００μL/ｗｅｌｌの割合で加えて反応を停止してから、４５０ｎｍにおける吸光度を測定した。標準品として精製ヒトＩｇＧを用いて検量線を作成し、これを用いてヒト抗体の濃度を算出した。
実施例４：ＩｇＧ化したITGA6B4抗体の細胞株への反応性
　ITGA6B4発現細胞株、AML株USCD-AML1を用いて、ＩｇＧ化した抗ITGA6B4抗体の反応性を検討した。USCD-AML1細胞を遠心により回収した。回収した細胞をＰＢＳで１回洗浄し、その後、ＦＡＣＳ　Ｂｕｆｆｅｒ（１％ＢＳＡ，２ｍＭ　ＥＤＴＡ，０．１％ＮａＮ３　入りＰＢＳ）で細胞を１×１０6／ｍＬなるように懸濁し、この細胞懸濁液１００μＬを９６- ｗｅｌｌ Ｖ底プレート（Ｃｏｓｔａｒ　３８９７）に分注した。それぞれの抗ITGA6B4ＩｇＧ抗体をＦＡＣＳ　Ｂｕｆｆｅｒで０．０２～２μｇ／ｍＬに調製し、調製した抗体溶液１００μＬを細胞に添加し、４℃で１時間インキュベートした。細胞をＦＡＣS  Ｂｕｆｆｅｒにより回洗浄した後、ＦＡＣＳ　Ｂｕｆｆｅｒ　で７５０倍に希釈したＡｌｅｘａ－ａｎｔｉ－ｈｕｍａｎ　ＩｇＧ　（ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ　）溶液１００μＬを添加し、更に４℃で１時間インキュベートした。ＦＡＣＳ　Ｂｕｆｆｅｒ　で遠心により２回洗浄した後、ＦＡＣS  Ｃａｌｉｂｕｒ（ＢＤ）のＨＴＳにセットして各ｗｅｌｌのＦＬ１蛍光強度を測定した。その結果各抗体（a:１０ｎｇ/ｍＬ；ｂ：１００ｎｇ/ｍＬ；ｃ：１μｇ/ｍＬ）がUSCD-AML1と強い反応性を示した。また、精製ITGA6B4抗原への反応性の消失が無いかも検討する為、実施例２と同様の手順でELISAを行い、その反応性を確認した。その一例を図４に示す。図４に示される様に、明らかな陽性反応が得られた。なお、ネガティブコントロール抗体として、同様の手順で作製された抗ハブ毒ヒトIgG抗体と、検出用抗体のみ（PBSと表記）を用いた。なお抗ITGA6B4抗体で示される抗体は代表例としてPPMXITG－００１である。
実施例５：抗ITGA6B4抗体と高発現細胞株を使用した免疫沈降
（１）免疫沈降用固相化抗体の調製
　まず、上記作製された抗ITGA6B4体溶液をカップリング緩衝溶液（0.1M NaHCO3-NaOH pH9）にて透析した。すなわち、抗体溶液を透析膜（Snake Skin Pleated Dialysis Tubing 10,000 MWCO）に封入し、これをカップリング緩衝溶液（0.1M NaHCO3-NaOH pH9）1.5Lに沈め、4℃でスターラーにて2～3時間撹拌したのち、緩衝溶液を交換して更に2～3時間透析した。その後もう一度緩衝溶液を交換して一昼夜透析した。
　次に固相化に使用する活性化CNBr-activated Sepharose 4Bを調製した。即ち、Amersham Biosciences社製CNBr-activated Sepharose 4Bを1mM HClにて膨潤させた後、アスピレーターで吸引した。これにカップリング緩衝溶液50mlを添加し撹拌してからアスピレーターで吸引し、吸引したまま更にカップリング緩衝溶液を加えた。
　抗体の固相化は以下のようにして行った。即ち、5mgの抗体溶液10mlに対して活性化ゲル1mlを加え、室温にて2時間反応させた。反応終了後、ゲルをカラムに移し、カップリング緩衝溶液1mlにて10回洗浄し、未反応抗体の有無をO.D.測定により確認した。固相化ゲルは、0.2M Glycine-NaOH pH8溶液5mlにて2回置換し、さらに同液5mlを添加して室温にて2時間静置したのち、液を自然滴下し、これに0.2M Glycine-HCl pH3 5mlを添加して置換、さらに同液5ml添加し5分間静置したのち自然滴下した。最後にカラムをPBS 20mlにて置換したのち自然滴下し、1%NP40、プロテアーゼインヒビター、0.05%NaN3/PBSを添加してゲルを回収した。
（２）細胞膜上蛋白のビオチン標識およびcell lysateの作製
　培養肝がん細胞株のビオチン標識は以下のようにして行った。即ち、１０7～１０8程度の細胞数まで培養した培養細胞PC14をPBSにて2回洗浄したのち、cell dissociation buffer(GIBCO社製)にて5mg/ml濃度に調整したcollagenaseI(GIBCO社製)を加えて、CO2インキュベーターにて37℃で反応させ、細胞を遊離させたのち、培地にて回収し、これをPBS(-)にて2回洗浄したのち、血球計算盤にて細胞数を算出し、約5x107/mlになるようPBS(-)にて懸濁した。これにPBSにて1mg/mlになるように調整したEZ-Link Sulfo-NHS-LC-Biotinylation Kit（PIERCE社）を等量加え、室温にて30分静置したのち、PBSにて2回洗浄した。
　ビオチン標識細胞についてのcell lysateは以下のように調製した。即ち、上記のビオチン標識細胞に4mlのlysis buffer(1% NP40/detergent base solution, detergent base solutionの組成は20mM HEPES pH8.0, 140mM NaCl, プロテアーゼインヒビター)を加え、細胞を懸濁し、これを冷却しておいたダウンスホモジナイザーに入れてホモジナイズしたのち、溶液に1/2量(2ml)のdetergent mix solution（1%NP40, tritonX-100,b-D-Maltoside,n-Octyl b-D-Glucoside, ,n-Octyl b-D-Maltoside, ,n-Decyl b-D-Maltoside,デオキシコール酸各0.5%/detergent base solution）を加え4℃にて4時間回転混和した。この溶液を100,000rpmにて30分間遠心したのちMILLEX-GP 0.22μmフィルターにて濾過した。
（３）免疫沈降反応
　まず、固相化された抗体（以降、抗体ビーズと表記）約60μl分（溶液として約150μl）を2mlチューブに入れ、そこに4mM biotinを1/10 volume（15μl程）添加した。これに、培養皿0.5枚分のlysate (600μl)と60μlのbiotin液を混合したものを加え、4℃にて撹拌させながら数時間反応させた後、チューブを遠心（5500g,1分, 4℃）し、上清を除いた。これに洗浄用biotin/lysis-T buffer(0.5mM biotin, 0.1%Tween20/PBS)を800μl加え、転倒混和を２、３回行ったのち、チューブを遠心（5500g, 1分, 4℃）し、上清を除いた。この洗浄操作を再度行った後、抗体ビーズに溶出用クエン酸液（50mMクエン酸pH2.5）を30μl加え、撹拌したのち、チューブを遠心（5500g, 1min, 4℃）し、上清を回収した。残った抗体ビーズに再度溶出用クエン酸溶液を30μl加え、撹拌し、チューブを遠心（5500g, 1min, 4℃）し、上清を回収した。この溶出操作をさらに3回繰り返してサンプル溶液を回収し、それに3M Trisを加えて中和した。このサンプルをSDS-PAGEにて泳動し、銀染色にてバンドの確認を行った。このサンプルについては、同時にストレプトアビジン－HRP（Anti-Streptavidin, IgG Fraction, Conjugated to Peroxidase CORTEX biochem 社）を使用したウエスタンブロットを行いビオチン化された膜蛋白のバンドを検出した。その結果、図１に示される様に２本のバンドが検出された。図１に示される抗ITGA6B4抗体１，２，３抗体はそれぞれPPMXITG－００１、００４、００５である。
実施例６　免疫沈降されたバンドについてのマススペクトル解析
（１）ゲル内トリプシン消化
　上記実施例５にて検出された膜蛋白に対応する部分をゲル内でトリプシン消化し、ペプチドを回収した。ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動を常法に従い行い、クマシーブリリアントブルーで染色することで得られたバンドを切り出した。これを200mM重炭酸アンモニウム-50%アセトニトリル溶液に浸し、37℃で45分間振盪後、溶液を廃棄して、同じ操作を2回繰り返すことでクマシーブリリアントブルーを除いた。このゲルを減圧乾燥し、それに40mM重炭酸アンモニウム(pH8.1)-10%アセトニトリルに溶かしたトリプシン（20μg/ml）をゲルスライスの単位面積（mm2）あたり4μl加えて、室温で1時間置いて充分に浸潤させた。これに先に加えた量の2.5倍量のトリプシン溶液を加えて、37℃で18時間静置した。これをポアサイズが0.22μmのフィルター付きチューブで濾過して、トリプシンにより抗原が切断されて生じたペプチドを回収した。
（２）質量分析による抗原の同定
　ゲル内トリプシン消化により得られた試料を、エレクトロスプレーイオン化方式イオントラップ四重極型質量分析装置につないだHPLCにかけた。HPLCの逆相クロマトグラフィーカラムから、0.1%TFAを含む0%から80%のアセトニトリルの直線濃度勾配変化により、疎水性の違いで順次溶出される各ペプチドをエレクトロスプレー法でイオン化し、各ペプチドの質量を分析した。
　同時に、それらのイオンの飛行経路の途中に置いたヘリウム原子との衝突により生じる各ペプチドの限定分解産物の質量を分析した。限定分解によりひとつのアミノ酸がはずれると、はずれたアミノ酸の質量分だけ小さいイオンが観測されるので、その質量差によりはずれたアミノ酸の種類を同定できる。さらにもうひとつアミノ酸がはずれると、はずれたアミノ酸の質量分だけ小さいイオンが観測されるので、その質量差によりはずれたアミノ酸の種類を同様に同定できる。同様の実験データ解析を進めることで、内部アミノ酸配列を決定することができる。得られたアミノ酸内部配列のセットを、公開されているアミノ酸配列データベースを用いて検索することにより、抗原の同定を行った。その結果、実施例５で得られた２本のバンドはそれぞれITGA6（図２）及びITGB4（図３）であることが示された。
実施例７：抗ITGA6/B4抗体を用いた接着阻害能の解析
　本発明の抗ITGA6/B4抗体による難治性白血病細胞株に対する接着性の阻害能を解析した。解析対象の細胞株として難治性白血病のマーカー分子の一つであるEVI1を高発現している細胞株を3株選定した。（UCSD/AML1、Kasumi-3、MOLM1、HNT34）。
　基底膜マトリクスであるマトリゲル（BD Bioscience）をプレートにコートし、骨髄ニッチ類似の易接着性の環境下を作成した。この条件で抗体処理による接着性を比較し、その結果、抗ITGA6/B4抗体（PPMXITG－００１，００４，００５）の添加により、各抗体とも接着性が低下することが明らかとなった（図６）。
実施例８：本発明の抗体の抗がん剤併用効果の検討実験
　本発明の抗ITGA6/B4抗体は抗がん剤の効果を増強することが期待された。そこで難治性白血病細胞株であるUCSD/AML1、Kasumi3、MOLM1、HNT34を用い、白血病の治療に一般的に使われている抗がん剤であるAraC（シタラビン）、DXR（ドキソルビシン）、VP16（エトポシド）との併用による影響を検討した。
　白血病細胞株に対し、抗がん剤単剤及び抗体との併用条件において、生存率を比較した。その結果、抗体（PPMXITG－００１、００４、００５）添加によるIC50の明らかな低減が確認された（図８－１及び８－２）。なお、図８－１はDXR（ドキソルビシン）とAML1細胞で行った併用効果測定試験の１例である。
　このことより、抗ITGA6/B4抗体には、抗がん剤の効果を増強する働きがあると考えられ、より少量の抗がん剤で高い効果を上げられる事が示唆された。さらには抗がん剤の有効投与量を抑えることで副作用を低減させることも期待できた。
（参考）
（１）アルキル化剤
イホスファミド、塩酸ニムスチン、塩酸プロカルバジン、シクロホスファミド、ダカルバジン、チオテバなど
（２）代謝拮抗剤
シタラビン、エノシタビン、塩酸ゲムシタビン、カルモフール、テガフール、フルオロウラシルなど
（３）植物アルカロイド
エトポシド、イリノテカン、ドセタキシル、パクリタキセル、ビンクリスチン、ビンデシン、ビンブラスチンなど
（４）抗がん性抗生物質
アクチノマイシンＤ、イダルビシン、ドキソルビシン、ヒドラルビシン、ミトキサントロン、マイトマイシンＣなど
（５）白金系製剤
カルボプラチン、シスプラチン、ネダプラチン、オキサリプラチンなど
明細書内記載の製品名と略号の対応
　AraC（シタラビン）：血液がんを中心に使われる。急性骨髄性白血病では第一選択。
　DXR（ドキソルビシン）：リンパ腫に対して主に使われる。
　VP16（エトポシド）：悪性リンパ腫、急性白血病に対して使われる。
UCSD/AML1：Taetel UCSDにおいて樹立されたt(3;3)の核型を持つ細胞株。欧米人由来。
Kasumi3:広島大学において樹立されたt(3;7)の核型を持つ細胞株。日本人由来。
MOLM1: 林原研究所において樹立されたt(9;22), inv(3)の核型を持つ細胞株。日本人由来。
HNT34: 武蔵野病院において樹立されたt(3;3)の核型を持つ細胞株。日本人由来。
実施例９：抗ITGA6B4抗体によるＡＭＬ１細胞株の細胞接着阻害能の解析
　AML細胞株UCSD/AML1、 Kasumi3、MOLM1そしてHNT34の４株に対して細胞接着阻害実験を行った。基底膜マトリクスであるマトリゲル（BD Bioscience）をプレートにコートし、骨髄ニッチ類似の易接着性の環境下を作成し、抗体処理による接着性を比較した。
　具体的には、細胞１００００個／１００μＬに対して、実施例２で選抜され実施例３、及び４で作製され、評価された抗ITGA6B4IgG抗体を使用し最終濃度が0～10μｇ／ｍＬとなるように加え、４℃にて３０分間インキュベートした後、ＲＰＭＩ１６４０／１０％ＦＣＳで洗浄した。次いで、１００μＬのＲＰＭＩ１６４０／１０％ＦＣＳで懸濁し、マトリゲル（登録商標）がコートされてなる９６穴プレートのウェルに加え、３７℃にて２時間インキュベートした後、ＰＢＳにて３回洗浄を行なった。ＲＰＭＩ１６４０／１０％ＦＣＳを９０μＬ、Ｃｅｌｌ ｃｏｕｎｔｉｎｇ ｋｉｔ ８（同仁科学研究所製）を１０μＬずつ加え、３７℃にて３０分間インキュベートした後、分光光度計を用いて波長４５０ｎｍにて測定した。なお、コントロールとしては、未処理の細胞株を用いた。
　図７は、上述した細胞接着アッセイの結果を示すグラフである。図７に示すように、ＡＭＬ１細胞の細胞接着能（総細胞数に対する接着細胞数の比）は、PPMXITG－００１、PPMXITG－００４、PPMXITG－００５で優位に低下している事が示された。
実施例１０：白血病幹細胞におけるITGA6B4の発現量の調査
　ヒトの健常者並びに白血病患者におけるITGA6/B4のmRNAの発現パターンを、特許文献１に記載の方法に準じて解析した。難治性発決病の患者並びにボランティアより提供された血液において、造血幹細胞及び白血病幹細胞分画におけるITGA4/B1(VLA4)ならびにITGA6/B4の発現確認を実施した。その結果、図９に示されるデータが得られた。健常人由来 HSCは正常検体からのCD34+分画(Hematopoietic Stem Cell: HSC)、白血病患者由来 HSCは白血病患者検体からのCD34+分画、そして白血病患者由来 LSCは白血病患者検体からのCD34+CD38-分画(白血病幹細胞分画Leukemia Stem Cell: LSC)である。これにより、白血病患者においては、白血病幹細胞におけるITGA6とB4の発現が特に高く、治療標的として有用なことが改めて確認された。
実施例１１：ITGA6及びITGB4遺伝子のshRNA導入による、抗体の反応性評価
　本発明の抗体が、intactにがん細胞膜上に発現するITGA6B4複合体に反応していることを確認するため、ITGA6及びITGB4遺伝子のshRNA導入した細胞による、抗体の反応性評価を行った。具体的にはUCSD/AML1細胞株に対して、ITGA6及びITGB4遺伝子のmRNAを切断する活性を有するショートヘアピンRNA（shRNA）であるshITGA6及びshITGB4をトランスフェクションして各々の遺伝子の発現抑制を行った細胞株を用いて、FACSによる抗体の反応性の変化を評価した。shRNAを用いた遺伝子発現抑制細胞株作製の具体的手順並びにFACSによる抗体の反応性試験は、特許文献１及び非特許文献１に記載の方法に準じて行った。
　また、ITGA６、ITGB4の市販品ポジティブコントロール抗体も非特許文献１に記載されている、抗ヒトITGA6ラット抗体（サンタクルーズ社）、抗ヒトITGB4マウス抗体（Millipore社）を使用した。
　その結果、図１０に示される以下のデータが取得された。図に示される、未処理と示されるグラフはshRNA処理が行われていないもの、コントロールと示されているグラフはディテクション抗体＜anti-human IgG-Alexa647(Invitrogen)＞のみで処理したグラフそしてshITGA6並びにｓｈITGB4と示されるグラフはそれぞれの遺伝子に対しshRNAで発現抑制をしかけたサンプルのグラフを示す。
（１）shITGA6による遺伝子発現抑制の結果(UCSD/AML1;shITGA6)
ITGA6を発現抑制した結果、抗ITGB4ポジティブコントロールの反応性は変化せず（D.BL-ITGB4）、本発明の抗ITGA6B4抗体の反応性はほぼ消失した（A.PPMXIYG-001, B.PPMXITG-004, C.PPMXITG-005）。
（２）shITGB4による遺伝子発現抑制の結果(UCSD/AML1:shITGB4)
ITGB4を発現抑制した結果、抗ITGA6ポジティブコントロールの反応性は変化せず（D.BLITGA6）、本発明の抗ITGA6B4抗体の反応性はほぼ消失した（A.PPMXITG-001, B.PPMXITG-004, C.PPMXITG-005）。
（３）発現抑制試験における結論と複合体特異的認識に対する結論及び解説
　本実施例において、解析対象細胞であるAML1のITGA6及びB4の発現抑制は５０～６０％程度の効率で行われた。発現抑制導入が成功した細胞はGFPによってgatingする事によって発現抑制された細胞のみを対象に解析可能である。これらを踏まえ、上記（１）、（２）に示される様に、本発明抗体はITGA6、ITGB4いずれの発現抑制試験においても反応性を消失しており、実施例２、４そして５の結果と合わせて、ITGA6B4の複合体のみを認識し、ITGA6、ITGB4の単独認識は行っていないことが示された。
実施例１２：静脈移植モデルにおける抗体治療効果（浸潤抑制能）の検証
　免疫不全マウス（NOGマウス）を用い、難治性白血病細胞UCSD/AML1,およびHNT34細胞株の静脈移植モデルを作製し、薬剤投与（AraC）、抗体投与、またその併用による骨髄浸潤抑制効果を検証した。マウス静脈に白血病細胞株を注入した後にPPMXITG-005を投与、その後実験体より臓器を取り出してヒト細胞の浸潤度を解析した。具体的には取り出した臓器をセルストレーナー(BD 352340)ですりつぶし、分離した細胞を取得した後に溶血試薬(BD 555899)により赤血球を溶血させる。1x106細胞を100μLのMACS Buffer (2mM EDTA, 5% BSAを含むPBS (-))に懸濁し、ヒト細胞を同定する為にhuman CD45抗体(PEラベル BioLegend 304008)で反応させた。その後MACS Bufferで洗浄3回を行い、 フローサイトメーター (BD FACS Calibur)にて評価した。
　その結果、白血病細胞の骨髄への浸潤を指標として、開発抗体の併用または単剤による薬効を評価したところ、抗体の併用または単剤により、有意に骨髄への白血病細胞の浸潤が抑えられた。このことは、本抗体による骨髄ニッチへの生着阻害は細胞接着依存性の化学療法耐性獲得を阻害する上で有用であると考えられる（図１１）。
実施例１３：ＩｇＧ化したITGA6B4抗体のｉｎ　ｖｉｔｒｏ増殖抑制効果
　ITGA6B4発現細胞ＡＭＬ１およびＳＷ４８０、を１０００ｃｅｌｌ／ｗｅｌｌ密度になるよう培養液で調製し、９６ｗｅｌｌ平底プレート（ＮＵＮＣ　１６７００８）に１００μＬ／ｗｅｌｌずつ分注した。３７℃、５％ＣＯ2、９５％空気で２４時間培養した後、１０μｇ／ｍＬのITGA6B4抗体を作製し、その１００μＬを、培養中のプレートに添加し、さらに３７℃、５％ＣＯ2、 ９５％空気で９６時間培養した。培養終了後、Cell counting kit-8(DOJIN  CK04)を１０μL添加しさらに呈色を観察しながら数時間３７℃、５％ＣＯ2、 ９５％空気反応させる。その後プレートリーダーを用い、450 nmの吸光度を測定する
増殖率＝抗体添加したウェルの吸光度 / 抗体添加なしウェルの吸光度 Ｘ１００％
これらの解析結果から、各ITGA6B4抗体の細胞への増殖抑制効果は観察されなかった（図１２）。このことは抗体単独の作用では細胞に対して増殖を抑制するような薬効がないことを意味し、本発明の副作用の軽減に関して有効に働く事が示唆される。
実施例１４：静脈移植モデルによる抗体・抗がん剤併用試験
　in vivoにおける抗体・薬剤併用の効果を確認する為に静脈移植モデル実験を実施した。重度免疫不全マウス(NOGマウス: IL2RγKOマウス)に、白血病細胞株２種類（UCSD/AML1, HNT34）をそれぞれ静脈移植し、実験条件として無処理のコントロール、抗がん剤、抗体のそれぞれ単剤投与、抗体と抗がん剤併用、の４条件を検討した。投与条件は抗体を週１回3mg/kg、抗がん剤を週１回150mg/kgとし、各条件に付きn=5の生存率から薬効の検証を行った。その結果コントロールと抗体単剤投与群が同様の生存率に対し、薬剤単剤では生存率が上昇し、さらに抗体と併用した群においては抗がん剤単独に比べ有意に生存の延長が認められた（図１３）。
　同様のマウス静脈投与における骨髄浸潤性を解析した実施例１２（図１１）の結果から総合すると、（１）抗体と抗がん剤の併用は、静脈に投与された白血病細胞の骨髄への浸潤を抑制する。（２）その結果としてマウスモデルにおいて生存率の回復が認められる。　という薬効薬理効果が考察され、本発明における抗体の有用性が根拠をもって示された。

Claims (23)

  1. インテグリンＡ６Ｂ４に対する抗体であって、ヒトインテグリンＡ６Ｂ４複合体を特異的に認識し、細胞間接着を阻害する抗体。
  2. インテグリンＡ６Ｂ４に対する抗体であって、ヒトインテグリンＡ６Ｂ４複合体を特異的に認識し、標的抗原を発現するがん細胞の抗がん剤への感受性を上昇させる抗体。
  3. 実質的に細胞の増殖に影響を及ぼさない請求項１又は２に記載の抗体
  4. インテグリンＡ６Ｂ４に対する抗体であって、前記抗体はヒトインテグリンＡ６Ｂ４複合体を特異的に認識し、かつ前記抗体は、
    （ａ） インテグリンＡ６Ｂ４を介した細胞間接着を阻害する能力；
    （ｂ） がん細胞の抗がん剤への感受性を上昇させる能力；
    （ｃ） 実質的に細胞の増殖に影響を及ぼさない特性；
    のうち少なくとも２つ以上を有する抗体。
  5. 抗がん剤が下記（ｉ）から（ｖ）から選択される請求項２又は４に記載の抗体
    （ｉ）イホスファミド、塩酸ニムスチン、塩酸プロカルバジン、シクロホスファミド、ダカルバジンおよびチオテバから選択されるアルキル化剤；
    （ｉｉ）シタラビン、エノシタビン、塩酸ゲムシタビン、カルモフール、テガフールおよびフルオロウラシルから選択される代謝拮抗剤；
    （ｉｉｉ）エトポシド、イリノテカン、ドセタキシル、パクリタキセル、ビンクリスチン、ビンデシンおよびビンブラスチンから選択される植物アルカロイド；
    （ｉｖ）アクチノマイシンＤ、イダルビシン、ドキソルビシン、ヒドラルビシン、ミトキサントロンおよびマイトマイシンＣから選択される抗がん性抗生物質；
    （ｖ）カルボプラチン、シスプラチン、ネダプラチンおよびオキサリプラチンから選択される白金系製剤：
  6. ヒト抗体あるいはヒト化抗体である請求項１から５の何れか一項に記載の抗体。
  7. 重鎖第１相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ１）、重鎖第２相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ２）、重鎖第３相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ３）としてそれぞれ配列番号１～３、７～９、１３～１５、１９～２１、２５～２７の何れかのアミノ酸配列又はそれと実質的に同一のアミノ酸配列を含む、請求項１から６の何れか一項に記載の抗体。
  8. 重鎖第１相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ１）、重鎖第２相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ２）、重鎖第３相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ３）としてそれぞれ配列番号１～３、７～９、１３～１５、１９～２１、２５～２７の何れかのアミノ酸配列又はそれと実質的に同一のアミノ酸配列を含み、軽鎖第１相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ１）、軽鎖第２相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ２）、軽鎖第３相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ３）としてそれぞれ配列番号４～６、１０～１２、１６～１８、２２～２４、２８～３０の何れかのアミノ酸配列又はそれと実質的に同一のアミノ酸配列を含む、請求項１から７の何れか一項に記載の抗体。
  9. 下記（ｉ）から（ｖ）から選択される請求項１から８の何れか一項に記載の抗体
    （ｉ）配列番号１のアミノ酸配列からなる重鎖第１相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ１）、配列番号２のアミノ酸配列からなる重鎖第２相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ２）、配列番号３のアミノ酸配列からなる重鎖第３相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ３）、配列番号４のアミノ酸配列からなる軽鎖第１相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ１）、配列番号５のアミノ酸配列からなる軽鎖第２相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ２）、配列番号６のアミノ酸配列からなる軽鎖第３相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ３）を含む抗体；
    （ｉｉ）配列番号７のアミノ酸配列からなる重鎖第１相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ１）、配列番号８のアミノ酸配列からなる重鎖第２相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ２）、配列番号９のアミノ酸配列からなる重鎖第３相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ３）、配列番号１０のアミノ酸配列からなる軽鎖第１相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ１）、配列番号１１のアミノ酸配列からなる軽鎖第２相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ２）、配列番号１２のアミノ酸配列からなる軽鎖第３相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ３）を含む抗体；
    （ｉｉｉ）配列番号１３のアミノ酸配列からなる重鎖第１相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ１）、配列番号１４のアミノ酸配列からなる重鎖第２相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ２）、配列番号１５のアミノ酸配列からなる重鎖第３相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ３）、配列番号１６のアミノ酸配列からなる軽鎖第１相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ１）、配列番号１７のアミノ酸配列からなる軽鎖第２相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ２）、配列番号１８のアミノ酸配列からなる軽鎖第３相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ３）を含む抗体；
    （ｉｖ）配列番号１９のアミノ酸配列からなる重鎖第１相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ１）、配列番号２０のアミノ酸配列からなる重鎖第２相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ２）、配列番号２１のアミノ酸配列からなる重鎖第３相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ３）、配列番号２２のアミノ酸配列からなる軽鎖第１相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ１）、配列番号２３のアミノ酸配列からなる軽鎖第２相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ２）、配列番号２４のアミノ酸配列からなる軽鎖第３相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ３）を含む抗体；
    （ｖ）配列番号２５のアミノ酸配列からなる重鎖第１相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ１）、配列番号２６のアミノ酸配列からなる重鎖第２相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ２）、配列番号２７のアミノ酸配列からなる重鎖第３相補性決定領域（ＶＨ ＣＤＲ３）、配列番号２８のアミノ酸配列からなる軽鎖第１相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ１）、配列番号２９のアミノ酸配列からなる軽鎖第２相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ２）、配列番号３０のアミノ酸配列からなる軽鎖第３相補性決定領域（ＶＬ ＣＤＲ３）を含む抗体；
  10. 配列番号１～３、７～９、１３～１５、１９～２１、２５～２７、４～６、１０～１２、１６～１８、２２～２４、２８～３０の何れかのアミノ酸配列において、１または数個のアミノ酸が欠失、付加、置換及び／または挿入されていて、ヒトＩＴＧＡ６Ｂ４と特異的に反応する活性を有する、請求項７又は８に記載の抗体。
  11. 抗体が、Ｆａｂ、Ｆａｂ'、F(ab')２、一本鎖抗体（ｓｃＦｖ）、二量体化V領域（Ｄｉａｂｏｄｙ）、ジスルフィド安定化V領域（ｄｓＦｖ）およびＣＤＲを含むペプチドからなる群から選ばれる抗体断片である、請求項１から１０のいずれか一項に記載の抗体。
  12. 請求項７から１０のいずれか一項に記載の抗体をコードするＤＮＡ。
  13. 請求項１２に記載のＤＮＡを含有する組換えベクター。
  14. 請求項１２に記載の組換えベクターを宿主細胞に導入して得られる形質転換株。
  15. 請求項１４に記載の形質転換株を培地に培養し、培養物中に請求項１から１１の何れか一項に記載の抗体を生成蓄積させ、培養物から抗体を採取することを含む、請求項１から１１の何れか１項に記載の抗体の製造方法。
  16. 請求項１から１１の何れか１項に記載の抗体を含有する、がん細胞の細胞接着阻害剤。
  17. 他の抗がん剤と併用された際、がん細胞の前記抗がん剤に対する感受性を向上させるのに用いられる、請求項１から１１のいずれか１項に記載の抗体を含有するがん細胞の細胞接着阻害剤。
  18. 請求項１から１１の何れか１項に記載の抗体と医薬上許容される担体とを含む医薬組成物。
  19. 請求項１から１１の何れか１項に記載の抗体を含有する医薬組成物であって、
    がん細胞の薬剤感受性を上昇させ、がん細胞の増殖阻害および／またはがん細胞を死滅させるために、それを必要とする患者に、
    （ａ）請求項１から１１のいずれか１項に記載の抗体、および
    （ｂ）イホスファミド、塩酸ニムスチン、塩酸プロカルバジン、シクロホスファミド、ダカルバジンおよびチオテバから選択されるアルキル化剤；シタラビン、エノシタビン、塩酸ゲムシタビン、カルモフール、テガフールおよびフルオロウラシルから選択される代謝拮抗剤；エトポシド、イリノテカン、ドセタキシル、パクリタキセル、ビンクリスチン、ビンデシンおよびビンブラスチンから選択される植物アルカロイド；アクチノマイシンＤ、イダルビシン、ドキソルビシン、ヒドラルビシン、ミトキサントロンおよびマイトマイシンＣから選択される抗がん性抗生物質；カルボプラチン、シスプラチン、ネダプラチンおよびオキサリプラチンから選択される白金系製剤から選択される抗がん剤を、前記抗体が、がん細胞に結合するための条件下および十分な量で提供し、それによりがん細胞の増殖阻害および／またはがん細胞の死滅を引き起こす、前記医薬組成物。
  20. がん細胞が、骨髄ニッチに生着したがん細胞である、請求項１９に記載の医薬組成物
  21. がんが、固形がんまた血液がんである、請求項１９又は２０に記載の医薬組成物。
  22. 固形がんが肺がん、大腸がん、胃がん、膀胱がん、膵臓がん、前立腺がん、肝がん、子宮頸がん、子宮がん、卵巣がん、乳がん、頭頸部がん、又は皮膚がんである、請求項２１に記載の医薬組成物。
  23. 血液がんが白血病、リンパ腫、又は骨髄腫である、請求項２１に記載の医薬組成物。
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