WO2014045962A1 - 微生物培養用乳化物、これを用いた微生物の培養方法、及び、微生物代謝産物の製造方法 - Google Patents

微生物培養用乳化物、これを用いた微生物の培養方法、及び、微生物代謝産物の製造方法 Download PDF

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emulsion
microorganisms
culture
lipids
microbial
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俊輔 佐藤
友伸 竹村
松本　圭司
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株式会社カネカ
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00—Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/62—Carboxylic acid esters
    • C12P7/625—Polyesters of hydroxy carboxylic acids

Definitions

  • the present invention belongs to the technical field of emulsions for culturing microorganisms. Moreover, it belongs to the technical field of the cultivation method of microorganisms using the emulsion for microorganism cultivation. Moreover, it belongs to the technical field of the manufacturing method of microbial metabolites.
  • a carbon source that is suitably assimilated by microorganisms for culture, fermentation, etc. is required.
  • the carbon source include carbohydrates, fats and oils (for example, animal and vegetable fats and oils), fatty acids (for example, fatty acids derived from animals and plants), and the like.
  • carbohydrates such as glucose and sucrose, which are carbon sources with high water solubility
  • these carbon sources are used for culturing microorganisms under normal operating conditions. It is dissolved in the culture medium and is easy to use as a carbon source.
  • Fatty acids and fats and oils derived from animals and plants, which are renewable resources, are also useful carbon sources for the production of microorganisms and the production of substances such as PHA (polyhydroxyalkanoic acid) by microorganisms.
  • PHA polyhydroxyalkanoic acid
  • palm oil which is solid at room temperature
  • the number of fatty acids produced as a by-product during the refining of fats and oils is increasing year by year. It is desired to use oils and fatty acids having low solubility in a medium as a carbon source for microorganisms.
  • the solubility in water is extremely low. If the solubility in water is low, a decrease in the rate of assimilation by microorganisms is expected by forming droplets or solid particles in the culture solution. Furthermore, when the melting point of fats and oils and / or fatty acids is higher than the culture temperature, the solid particles are considered to be larger than droplets and cause a further decrease in utilization rate. For example, palm oil is a solid fat at around 36 ° C.
  • the solubility of fatty acids such as lauric acid, myristic acid, palmitic acid and stearic acid in water is 0.1 g / L or less even for lauric acid having the highest solubility, and concentrations of palmitic acid and stearic acid are 1 ⁇ M or less.
  • Non-patent Document 1 These properties are a cause of reducing the utilization by microorganisms.
  • PHA is produced by culturing Aeromonas hydrophila using lauric acid alone as a carbon source (Non-patent Document 2), but the dry cell weight is suitably used as about 8 g / L.
  • lauric acid is solid at the culture temperature, increasing the difficulty of the culture.
  • PHA productivity is 1 g / L or less. It is low and cannot be said to be used suitably.
  • Non-patent Document 3 There is an example of producing PHA by culturing Escherichia coli using a fatty acid metal salt such as sodium laurate alone as a carbon source (Non-patent Document 3), but the amount of sodium laurate used is about 2 g / L. there were.
  • Non-patent Document 4 palm oil having a melting point higher than the culture temperature (30 ° C.) is used, and the dry cell weight is as low as 4.1 g / L in 72 hours of culture, so it cannot be said that it is suitably used.
  • Patent Document 2 An example of improving the fermentation productivity of L-threonine and L-lysine from the fatty acid by emulsifying lauric acid, myristic acid, palmitic acid, stearic acid, oleic acid, and linoleic acid (Patent Document 2) is there.
  • This document describes a culture method using lauric acid, myristic acid, palmitic acid and stearic acid having a melting point higher than the culture temperature.
  • the productivity of amino acids is improved, there is an example in which the number of viable bacteria is reduced, which is not suitable for a technique for accumulating PHA in cells.
  • the application range is limited.
  • the fatty acid content in the fatty acid emulsion is as low as 20 g / L, making it difficult to apply to industrial production.
  • nonpatent literature 6 which shortens lag time at the time of a culture
  • GA gum arabic
  • fatty acid-based emulsifier SDS and Triton X-100 inhibit the growth of microorganisms.
  • emulsification using GA is difficult to apply to industrial production from the viewpoint of economy. It is described.
  • Patent Document 3 There is also an example (Patent Document 3) in which an emulsion of vegetable oil or fatty acid methyl ester is used in the microbial fermentation process.
  • a technique for producing an emulsified composition using palm oil or rapeseed oil is disclosed, but it is necessary to add ethoxylated fatty acid or fatty acid alcohol as an emulsifier in an amount of 1% by weight or more based on fat or oil. This suggests economic difficulties.
  • ethoxylated fatty acid or fatty acid alcohol as an emulsifier in an amount of 1% by weight or more based on fat or oil.
  • Patent Document 4 As a culture technique for controlling the melting point of the carbon source, there is an example of efficient production of PHA using a fat, fatty acid, or a mixture thereof as a raw material (Patent Document 4).
  • This document describes a method for reducing the melting point of a carbon source by using a mixture of a plurality of fatty acids and fats and oils. If the melting point of the carbon source is higher than the culture temperature, the melting point of the carbon source and the temperature of the culture temperature are described. The greater the difference, the lower the assimilation by microorganisms, and the usable carbon sources were limited. Thus, there remains a problem in industrially efficient production of microorganisms and substances using microorganisms by suitably using fatty acids and / or fats and oils having low solubility in a medium as a carbon source. It was.
  • An object of the present invention is to provide a method for industrially efficient production of substances by microorganisms by using lipids having a high rising melting point and low solubility in a medium at the culture temperature of microorganisms as a carbon source.
  • Another object of the present invention is to provide a method for industrially efficiently producing a microbial metabolite using the lipids as a carbon source.
  • the present inventors examined a method for industrially efficiently producing substances by microorganisms using lipids having low solubility in a medium as a carbon source. As a result, it was found that an emulsion containing lipids, phosphates, and proteins is extremely stable. Furthermore, it has been found that by using the emulsion, the microorganism can assimilate lipids having a high rising melting point and low solubility in the medium at the culture temperature of the microorganism. Furthermore, it was discovered that the culturing of microorganisms and the production of microbial metabolites can be industrially efficiently performed using the emulsion, and the present invention was completed.
  • the present invention relates to an emulsion for culturing microorganisms, comprising lipids, phosphates, and proteins.
  • the protein is milk protein.
  • the solubility of the lipids in water at 25 ° C. is preferably 10 g / L or less.
  • the lipids preferably contain 5% or more of free fatty acids.
  • the lipid content in the microorganism culture emulsion is preferably 3 to 70%.
  • the present invention also relates to a method for culturing microorganisms, which comprises adding the emulsion for microbial culture to a medium.
  • the rising melting point of lipids contained in the emulsion for culturing microorganisms is preferably 2 ° C. or more higher than the culturing temperature of microorganisms.
  • the microorganism is preferably a bacterium.
  • the bacterium is preferably a bacterium belonging to the genus Cupriavidus.
  • the bacterium belonging to the genus Cupriavidus is preferably Cupriavidus necator or a gene recombinant thereof.
  • the present invention also relates to a method for producing a microbial metabolite, wherein the microorganism is cultured by the above method.
  • the microbial metabolite is a polyhydroxyalkanoic acid.
  • the polyhydroxyalkanoic acid is preferably poly (3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyhexanoate).
  • the emulsion for microbial culture of the present invention contains lipids, phosphates, and proteins.
  • the emulsification in the present invention refers to a state in which one or more substances that do not dissolve in each other are dispersed in the other by stirring or the like. Examples of the substance include water and fats and oils, water and fatty acids, and a mixture of water, fats and fats and fatty acids.
  • the emulsification in the present invention does not require that two or more substances have the same phase. For example, the emulsification is defined even when the continuous phase is liquid and the dispersed phase is solid.
  • the lipids in the present invention refer to fatty acids, fats and oils, and / or mixtures thereof. Lipids vary depending on the type of microorganism used, the type of microbial metabolite produced by the microorganism, and various culture conditions (medium components, pH, culture temperature, etc.). Low solubility is sufficient.
  • fatty acids examples include fatty acid salts and fatty acid esters in addition to free fatty acids, and these may be used alone or in a mixture. If the microorganism to be used is a fatty acid having a metabolic pathway, it can be suitably used in the present invention.
  • the fats and oils include fatty acid glycerin esters such as triglyceride, diglyceride, and monoglyceride, and these may be used alone or as a mixture. If the microorganisms used are fats and oils having a metabolic pathway, they can be suitably used in the present invention.
  • the lipids are preferably derived from non-petroleum in consideration of environmental load, and are generally preferably derived from animal and vegetable oils and animal and vegetable oils. Considering the influence on food problems, it is more preferable to use non-edible fats and oils and fatty acids.
  • animal and vegetable oils include beef tallow, lard, milk fat, fish oil, soybean oil, rapeseed oil, sunflower oil, olive oil, sesame oil, canola oil, cottonseed oil, peanut oil, tung oil, rice bran oil, rice oil, safflower oil, coconut oil , Palm oil, palm kernel oil, shea fat, monkey fat, iripe fat, cacao butter, Jatropha oil, oils derived from algae, roughly refined oils of these fats, fractionated oil, hardened oil, transesterified oil, and its composition
  • the component fatty acid, fatty acid salt, fatty acid ester and the like can be mentioned, and these fats and oils can be used alone or in combination of two or more.
  • a component generated as a by-product in the process of refining the fats and oils in order to avoid competition with food.
  • by-products in the purification treatment include fatty acid salts produced in the alkaline deoxidation step, distillation residues produced in the distillation deoxidation step, and distillation residues produced in the deodorization step.
  • fatty acid salts include fatty acid sodium, fatty acid potassium, fatty acid calcium, and fatty acid magnesium.
  • the distillation residue include monoglyceride and diglyceride in addition to the main fatty acid.
  • the solubility of lipids in water is preferably 10 g / L or less at 25 ° C. Even lipids having a solubility in water at 25 ° C. of 1 g / L or less can be suitably used. Furthermore, even lipids having a solubility in water at 25 ° C. of 0.1 g / L or less can be suitably used.
  • the melting point of lipids is preferably higher by 2 ° C. or higher than the culture temperature during microbial culture. This is because such lipids generally have poor dispersibility in a medium, and thus the dispersibility improvement effect of the present invention is high.
  • the melting point of lipids is more preferably 5 ° C. or higher, more preferably 10 ° C. or higher than the culture temperature.
  • lipids having a melting point of 32 ° C. or higher can be suitably used.
  • lipids having a melting point of 35 ° C. or higher can also be suitably used.
  • lipids at 36 ° C or higher, 39 ° C or higher, 40 ° C or higher, 42 ° C or higher, or 44 ° C or higher can be suitably used.
  • the lipid is not limited to the melting point as long as the lipid has low solubility in the medium, and the effect of improving dispersibility is exhibited.
  • lipids having a melting point lower than the culture temperature and lipids having solubility in water at 25 ° C. exceeding 10 g / L can be used in combination.
  • by emulsifying lipids to increase the specific surface area it is possible to favorably assimilate lipids having a melting point higher than the culture temperature and low solubility in the medium by microorganisms.
  • a high content of free fatty acids in lipids is preferable as a form that can be easily used by microorganisms.
  • the content of free fatty acids in lipids is more preferably 5% or more, further preferably 30% or more, still more preferably 50% or more, and preferably 70% or more. Particularly preferred.
  • proteins that can be used include milk proteins, soy proteins, and proteins such as gluten partial degradation products and salts thereof.
  • milk proteins include casein, casein Na, and whey.
  • the concentration of protein added is preferably 0.01 to 10% by weight, more preferably 0.05 to 5% by weight, and further preferably 0.1 to 1% by weight with respect to lipids. preferable.
  • glycerin fatty acid esters such as monoglyceride and diglyceride, acetic acid monoglyceride, lactic acid monoglyceride, citric acid monoglyceride, succinic acid monoglyceride, diacetyl monoglyceride; polyglycerin fatty acid Ester, polyglycerin condensed ricinoleic acid ester, sucrose fatty acid ester, sorbitan fatty acid ester, propylene glycol fatty acid ester, lecithin, fractionated lecithin, enzyme-treated lecithin, saponin, polysaccharides such as gum arabic and xanthan gum, sodium caseinate and soy protein, Proteins such as gluten partial degradation products are added.
  • the addition of the emulsifier is not effective, and it has been found that an extremely stable emulsified state is realized by a combination
  • phosphates examples include normal phosphates such as hydrogen phosphate 2Na and dihydrogen phosphate K, pyrophosphates such as sodium pyrophosphate, metaphosphates such as sodium hexametaphosphate, polyphosphates such as sodium polyphosphate, and the like. Can be suitably used.
  • normal phosphates such as hydrogen phosphate 2Na and dihydrogen phosphate K
  • pyrophosphates such as sodium pyrophosphate
  • metaphosphates such as sodium hexametaphosphate
  • polyphosphates such as sodium polyphosphate, and the like.
  • phosphates include normal phosphates such as hydrogen phosphate 2Na and dihydrogen phosphate K, pyrophosphates such as sodium pyrophosphate, metaphosphates such as sodium hexametaphosphate, polyphosphates such as sodium polyphosphate, and the like.
  • phosphates include normal phosphates such as hydrogen phosphate 2Na and di
  • the emulsion of the present invention is characterized in that the emulsion stability is greatly improved by using proteins and phosphates. Moreover, you may add another emulsifier to an emulsion as needed. Additional usable emulsifiers include monoglycerides, diglycerides, lecithins, saponins and the like.
  • the emulsion is preferably prepared as an oil-in-water emulsion before being subjected to culturing of the microorganism, whereby the dispersibility in the medium is improved and the microorganism is suitably assimilated by the microorganism.
  • the lipid content of the emulsion prepared in advance before culturing of the microorganism is preferably 3% to 70%.
  • lipids are often intermittently or continuously added to a culture tank during the culture period. At that time, if the concentration of lipids in the medium added additionally is low, the amount of the culture solution may increase and the productivity may be impaired. Therefore, the lipid content of the emulsion prepared in advance is more preferable. Is 10% to 65%, more preferably 20% to 65%, and particularly preferably 40% to 65%. Needless to say, if the lipid content of the emulsion is 60% or more, it can be used very effectively as a carbon source.
  • the manufacturing method of an emulsion is not specifically limited, A conventionally well-known manufacturing method of an emulsion can be utilized.
  • a method using an agitator using a propeller or the like, a method using an in-line mixer such as a static mixer, a method of emulsifying by combining a plurality of dispersers, a preliminary emulsification in advance, TK, an ultra mixer, a Clare mix A method using a homogenizer such as a colloid mill, a high-pressure homogenizer, a microfluidizer, an optimizer, a nanomizer, or an emulder can be used. Such a homogenization process may be performed twice or more. An ultrasonic emulsifier can also be used.
  • the method of using an oil-in-water emulsion containing lipids with low solubility in the medium as an oil phase part for culturing is not particularly limited, but after preparing the oil-in-water emulsion in advance and holding it in a tank or the like, the medium
  • the aqueous phase and the oil phase may be supplied to the same line from separately prepared raw material tanks, emulsified in-line, and then added to the medium.
  • microbial metabolites include alcohols such as PHA (polyhydroxyalkanoic acid), ethanol, butanol, propanol, and 1,4 butanediol, carboxylic acids such as lactic acid, succinic acid, and adipic acid, glutamine, and lysine. , Amino acids such as threonine, lipids such as docosahexaenoic acid and eicosapentaenoic acid, proteins, and antibiotics.
  • alcohols such as PHA (polyhydroxyalkanoic acid), ethanol, butanol, propanol, and 1,4 butanediol
  • carboxylic acids such as lactic acid, succinic acid, and adipic acid, glutamine, and lysine.
  • Amino acids such as threonine
  • lipids such as docosahexaenoic acid and eicosapentaenoic acid, proteins, and antibiotics.
  • PHA is a thermoplastic polyester produced and accumulated as an energy storage substance in cells of many microbial species, and has biodegradability.
  • non-petroleum-derived plastics are attracting attention due to the growing awareness of the environment.
  • PHA produced and accumulated by microorganisms in the fungus body has a negative impact on the ecosystem because it is incorporated into the natural carbon cycle process. Since it is expected to be small and its practical application is eagerly desired, it is a good example of a substance produced using the present invention.
  • microorganism used for the production of the microorganism of the present invention and the production of the microbial metabolite it is possible to assimilate lauric acid, myristic acid, palmitic acid, oleic acid, fats and oils and the like, and to produce a metabolite.
  • microorganisms isolated from nature, microorganisms that have been genetically manipulated, and the like can be suitably used.
  • microorganisms include bacteria, archaea, bacteria, yeasts, molds, actinomycetes, and the like.
  • Preferable microorganisms include, specifically, Escherichia such as Escherichia coli, Capyrididas such as Capriavidus necator, Alkagenes latus, Alcaligenes lanes, Alkagenes latus, and others.
  • Pudaudomonas putida Pseudomonas fluorescens, Pseudomonas aeruginosa, Pseudomonas renosonovoransrenosoronosorenosoleosorenosoleosorenosoleosorenosoleosorenosoleosorenosoleosorenosoleosorenosoleosorenosoleosorenosoleosorenosoleosorenosunosoresonorevenosoreosoronosorenosorenosoresunosoresono. ans), Bacillus megaterium, etc.
  • PHA as a microbial metabolite
  • a genetic engineering technique was used to introduce a PHA synthase gene and the like to artificially produce PHA.
  • a gene recombinant can also be used.
  • Escherichia in addition to the microorganisms belonging to the genus Capyrididas, Alkaligenes, Pseudomonas, Bacillus, Azotobacter, Nocardia, Aeromonas, Ralstonia, Wautersia, Comamonas, etc., Escherichia ( Preferably, Gram negative bacteria such as Escherichia genus, Gram positive bacteria such as Bacillus genus, yeasts such as Saccharomyces genus, Yarrowia genus, Candida genus and the like are preferably used. Then, cells modified so that PHA can be artificially produced can be obtained. Examples of the microorganism belonging to the genus Candida include Candida maltosa.
  • PHBH among PHA for example, a method using a microorganism that originally produces PHBH such as Aeromonas caviae or Aeromonas hydrophila, a PHA synthase gene using a genetic engineering technique for a microorganism that does not originally produce PHBH, etc. It is also possible to use biological cells that have been artificially modified to produce PHBH. As a host microorganism for introducing a gene, for example, Cupriavidus necator can be suitably used. Examples of PHA synthase genes include Aeromonas caviae, Aeromonas hydrophila and Chromobacterium sp.
  • PHA synthase genes derived from the genus Rhdococcus and their modified forms can be used.
  • a base sequence encoding a PHA synthase in which an amino acid group is deleted, added, inserted, or substituted can be used.
  • the type of PHA is not particularly limited as long as it is a PHA produced by a microorganism, but is preferably a polymer of a constituent selected from 3-hydroxyalkanoic acids having 4 to 16 carbon atoms or 3 having 4 to 16 carbon atoms. -A copolymer of two or more components selected from hydroxyalkanoic acids is preferred.
  • poly-3-hydroxybutyrate which is a homopolymer of 4-hydroxyalkanoic acid having 4 carbon atoms
  • poly (3-hydroxybutyrate-co-- which is a copolymer of 4-hydroxyalkanoic acids having 4 and 6 carbon atoms, 3-hydroxyhexanoate)
  • poly (3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyvalerate PHBV
  • PHBH poly-3-hydroxybutyrate
  • PHBV poly-3-hydroxybutyrate-co-3-hydroxyvalerate
  • the culture method is not limited to any medium composition, carbon source addition method, culture scale, aeration and agitation conditions, culture temperature, culture time, etc., as long as it is a microorganism culture method using a method of adding a carbon source to the medium.
  • a culture method in which a carbon source is added to the medium continuously or intermittently is more preferable.
  • the medium to be used needs to be in a state where it can be stirred in the culture tank. As long as this condition is satisfied, a liquid medium, a medium that separates into two phases, or a medium in a suspension state can be used.
  • PHA can be accumulated in microorganisms by the culture method described above, and then recovered from the cells using well-known methods. For example, it can be performed by the following method. After completion of the culture, the cells are separated from the culture solution with a centrifuge, and the cells are washed with distilled water, methanol, or the like and dried. PHA is extracted from the dried cells using an organic solvent such as chloroform. The bacterial cell component is removed from the solution containing PHA by filtration or the like, and a poor solvent such as methanol or hexane is added to the filtrate to precipitate PHA. Furthermore, a method of removing the supernatant liquid by filtration or centrifugation and drying it to recover PHA is exemplified.
  • the melting point refers to the rising melting point.
  • the rising melting point can be measured by the following method. (1) An inner diameter of 1 mm, an outer diameter of 2 mm or less, a length of 50 to 80 mm, one end of a capillary tube with both ends open is attached to a completely melted sample, the sample is viewed to a height of 10 mm, and quickly solidified with ice pieces or the like. (2) The sample is allowed to stand at 10 ° C. or lower for 24 hours or on ice for 1 hour and then subjected to the test. (3) A capillary tube is set in a rising melting point measuring instrument (EX-871A manufactured by ELEX SCIENTIFIC).
  • EX-871A manufactured by ELEX SCIENTIFIC
  • the capillary tube is immersed in a container filled with water having a temperature about 20 ° C. lower than the expected melting point, and the lower end of the thermometer is placed at a depth of 30 mm below the water surface.
  • the temperature at which the sample begins to rise in the capillary is defined as the rising melting point.
  • improvement in assimilation means that the consumption of carbon source per hour increases, and as a result, the production of microbial cells and the production of substances produced by microorganisms increase.
  • the carbon source in the present invention may be a mixture when added to the medium, or may be added separately and mixed in the medium.
  • the production amount of microbial cells can be measured by a known method such as an absorbance method or a dry cell weight measurement method.
  • the production amount of the substance produced by the microorganism can be measured by a known method such as GC method or HPLC method.
  • the content of PHA accumulated in the cells was determined according to the method of Kato et al. (Appl. MicroBiol. Biotechnol., 45, 363, (1996); Bull. Chem. Soc., 69, 515 (1996)). It can be measured by extracting from a cultured cell using an organic solvent such as chloroform and drying.
  • Carbon source Palm fat acid distilate (PFAD), Palm kernel fatty acid distilate (PKFAD), CLUde palmoil oil (CPO), Crude palmel oil (CPKOFat) is used in the examples. Obtained from. Table 1 shows the fats and oils (including TG, DG, and MG), free fatty acid (FFA) content, fatty acid composition and melting point of each carbon source.
  • PFAD Palm fat acid distilate
  • PFAD Palm kernel fatty acid distilate
  • CPO CLUde palmoil oil
  • CPKOFat Crude palmel oil
  • Emulsions were produced from the raw materials and blends shown in Table 2. The procedure for producing the emulsion is shown below. Lipids and water are weighed and heated to 60 ° C., and then phosphates and proteins are dissolved in water. After dissolution, it was mixed with lipids and pre-emulsified at a stirring speed of 2500 rpm using a homomixer (manufactured by SILVERSON, LABORATORY MIXER EMULSIFIER).
  • this preliminary emulsion was emulsified with a high-pressure homogenizer (PANDA 2K type, manufactured by Niro Soabi) at a pressure of 10 barr to obtain an emulsion.
  • PANDA 2K type manufactured by Niro Soabi
  • the emulsification stability of each emulsified product was obtained by stirring the emulsion at 60 ° C. for 10 minutes, stopping the stirring, and visually observing the separated state of the emulsification.
  • the o emulsion indicates no separation
  • the x emulsion indicates that the oil phase and the aqueous phase have been separated quickly.
  • the emulsion containing lipids, various phosphates, and protein showed high stability, but the emulsion stability was extremely poor with only phosphates or protein alone.
  • the addition amount of phosphates (g / kg) and the addition amount of proteins (g / kg) in Table 2 are both addition amounts per kg of lipids, and are prepared by dissolving in an aqueous phase. .
  • Example 14 to 15 Cultivation of Escherichia coli Microorganisms were cultured using the emulsion of Example 5 or 11 in Table 2 as a carbon source.
  • E. coli as a microorganism E. coli HB101 strain (Takara Bio Inc.) was used.
  • LB medium (10 g / L Bacto-tryptone, 5 g / L Bacto-yeast extract, 5 g / L NaCl) was used.
  • M9 medium (6 g / L Na 2 HPO 4 , 3 g / L KH 2 PO 4 , 0.5 g / L NaCl, 1 g / L NH 4 Cl, 1 mM MgSO 4 , 0.001 w / v% Thiamine, 0 .1 mM CaCl 2 ) was used.
  • E. A glycerol stock of E. coli strain HB101 was inoculated into the pre-culture medium and cultured at 37 ° C. for 12 hours to carry out pre-culture.
  • the preculture solution was inoculated at 2 v / v% into a 500 ml Sakaguchi flask containing 50 mL of M9 medium containing an emulsion, and cultured with shaking at 37 ° C. for 96 hours.
  • the emulsion prepared separately was added all at once to the Sakaguchi flask.
  • the carbon source concentration was 0.5 w / v%.
  • the cells were collected by centrifugation, washed with methanol, freeze-dried, and the dry cell weight was measured. The results are shown in Table 3.
  • Example 16 to 19 PHA production using Candida maltosa PHA was produced using the emulsion of Example 5, 11, 12, or 13 in Table 2 as a carbon source.
  • Candida maltosa AHU-71 pARR-149 / 171NSx2-phbB strain (see International Publication No. 2005/085415 pamphlet) was used as the microorganism.
  • the PHA production medium includes M2 medium (12.75 g / L (NH 4 ) 2 SO 4 , 1.56 g / L KH 2 PO 4 , 0.33 g / L K 2 HPO 4 .3H 2 O, 0.08 g / L KCl, 0.5 g / L NaCl, 0.41 g / L MgSO 4 .7H 2 O, 0.4 g / L Ca (NO 3 ) 2 .4H 2 O, 0.01 g / L FeCl 3 .4H 2 O) 0.45 ml / L trace metal salt solution (0.1 g hydrochloric acid 1 g / L FeSO 4 .7H 2 O, 8 g / L ZnSO 4 .7H 2 O, 6.4 g / L MnSO 4 .4H
  • Candida maltosa AHU-71 pARR-149 / 171NSx2-phbB glycerol stock was inoculated into 500 ⁇ l of a 500 ml Sakaguchi flask containing 50 ml of the previous medium. This was cultured at a culture temperature of 30 ° C. for 20 hours. Next, the culture solution was inoculated at 10 v / v% into a 2 L Sakaguchi flask containing 300 ml of PHA production medium, and cultured with shaking at 30 ° C. for 48 hours.
  • the solidified carbon source was prepared by dropping directly into the M9 medium. Further, separately prepared emulsions were added all at once to the Sakaguchi flask. The culture was performed at a carbon source concentration of 2.0 w / v%. After completion of the culture, the cells were collected by centrifugation, washed with methanol, lyophilized, and the weight of the obtained dry cells was measured.
  • the monomer composition analysis of the produced PHA was measured by gas chromatography as follows. To 20 mg of dry PHA, 2 ml of a sulfuric acid-methanol mixture (15:85) and 2 ml of chloroform were added and sealed, and heated at 100 ° C. for 140 minutes to obtain a methyl ester of a PHA decomposition product. After cooling, 1.5 g of sodium bicarbonate was added little by little to neutralize it, and the mixture was allowed to stand until the generation of carbon dioxide gas stopped. After adding 4 ml of diisopropyl ether and mixing well, the mixture was centrifuged and the monomer unit composition of the PHA degradation product in the supernatant was analyzed by capillary gas chromatography.
  • the GC-17A manufactured by Shimadzu Corporation was used for the gas chromatograph, and the NEUTRA BOND-1 (column length 25 m, column inner diameter 0.25 mm, liquid film thickness 0.4 ⁇ m) manufactured by GL Science was used for the capillary column. He was used as the carrier gas, the column inlet pressure was set to 100 kPa, and 1 ⁇ l of the sample was injected. As temperature conditions, the temperature was raised from the initial temperature of 100 to 200 ° C. at a rate of 8 ° C./min, and further from 200 to 290 ° C. at the rate of 30 ° C./min. As a result of the analysis under the above conditions, it was confirmed that the PHA (PHBH) was composed of 3-hydroxyalkanoic acid monomers having 4 and 6 carbon atoms.
  • Example 20 to 23 PHA production using Cupriavidus nector
  • the PHA production was carried out using the emulsion of Example 5, 11, 12, or 13 in Table 2 as a carbon source.
  • Cupriavidus nekator KNK-005 strain (see US Pat. No. 7,384,766) was used as the microorganism.
  • Tanehaha medium 1w / v% Meat-extract, 1w / v% Bacto-tryptone, 0.2w / v% Yeast extract, 0.9 w / v% Na 2 HPO 4 ⁇ 12H 2 O, 0.15 w / v% KH 2 PO 4 (pH 6.8).
  • the composition of the preculture medium is 1.1 w / v% Na 2 HPO 4 ⁇ 12H 2 O, 0.19 w / v% KH 2 PO 4 , 1.29 w / v% (NH 4 ) 2 SO 4 , 0.1 w / v% MgSO 4 ⁇ 7H 2 O, 2.5w / v% palm olein oil, 0.5 v / v% trace metal salt solution (1.6 w in 0.1N HCl / v% FeCl 3 ⁇ 6H 2 O, 1w / V% CaCl 2 ⁇ 2H 2 O, 0.02 w / v% CoCl 2 ⁇ 6H 2 O, 0.016 w / v% CuSO 4 ⁇ 5H 2 O, 0.012 w / v% NiCl 2 ⁇ 6H 2 O Was).
  • palm olein oil was added at a concentration of 10 g / L.
  • the composition of the PHA production medium is 0.385 w / v% Na 2 HPO 4 ⁇ 12H 2 O, 0.067 w / v% KH 2 PO 4 , 0.291 w / v% (NH 4 ) 2 SO 4 , 0.1 w / v% MgSO 4 ⁇ 7H 2 O , 0.5v / v% trace metal salt solution (1.6 w in 0.1N HCl / v% FeCl 3 ⁇ 6H 2 O, 1w / v% CaCl 2 ⁇ 2H 2 O, 0 0.02 w / v% CoCl 2 .6H 2 O, 0.016 w / v% CuSO 4 .5H 2 O, 0.012 w / v% NiCl 2 .6H 2 O).
  • the glycerol stock (50 ⁇ l) of the KNK-005 strain was inoculated into a seed medium (10 ml) and cultured for 24 hours to perform seed culture.
  • 1.0 v / v% of the seed mother culture solution was inoculated into a 3 L jar fermenter (MDL-300 type, manufactured by Maruhishi Bioengine) containing 1.8 L of preculture medium.
  • the operating conditions were a culture temperature of 28 ° C., a stirring speed of 500 rpm, an aeration rate of 1.8 L / min, and a culture was performed for 28 hours while controlling the pH between 6.7 and 6.8, followed by preculture.
  • a 14% aqueous ammonium hydroxide solution was used for pH control.
  • the preculture solution was inoculated at 5.0 v / v% into a 5 L jar fermenter (MDS-U50 type, manufactured by Maruhishi Bioengine) containing 2.5 L of PHA production medium.
  • the operating conditions were a culture temperature of 28 ° C., a stirring speed of 400 rpm, an aeration rate of 2.1 L / min, and a pH controlled between 6.7 and 6.8.
  • a 14% aqueous ammonium hydroxide solution was used for pH control.
  • the emulsion was added intermittently. Culturing was performed for 64 hours, and after completion of the cultivation, the cells were collected by centrifugation, washed with methanol, freeze-dried, and the weight of the dried cells was measured.
  • the monomer composition of the produced PHA was analyzed in the same manner as in Examples 16 to 19 and Comparative Examples 5 to 8. As a result, it was confirmed to be PHA (PHBH) composed of 3-hydroxyalkanoic acid monomers having 4 and 6 carbon atoms.

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Abstract

本発明は、培地への溶解度の低い脂肪酸類、及び油脂類、またはそれらの混合物などを炭素源として利用して、微生物の生産や微生物による微生物代謝産物の製造を、工業的に効率よく行う方法を提供することを課題とする。また、前記炭素源を用いて、工業的に効率よくＰＨＡを製造する方法を提供することを課題とする。 タンパク質類、及びリン酸塩類を用いる脂質類の乳化方法を見出した。また、該乳化物を用いることで脂質類が微生物に極めて良好に資化されることを見出した。すなわち、乳化物、及び該乳化物を用いた微生物の培養方法を提供する。また、微生物の培養による、微生物代謝産物の製造方法を提供する。

Description

微生物培養用乳化物、これを用いた微生物の培養方法、及び、微生物代謝産物の製造方法
本発明は、微生物培養用乳化物の技術分野に属する。また、微生物培養用乳化物を用いた微生物の培養方法の技術分野に属する。また、微生物代謝産物の製造方法の技術分野に属する。
環境問題、食糧問題、健康・安全に対する意識の高まり、天然／自然志向の高まりなどを背景に、微生物の生産や微生物による物質製造（発酵生産、バイオ変換など）の意義・重要性が益々高まっている。
微生物の生産や微生物による物質の製造においては、微生物によって好適に資化される、培養、発酵などのための炭素源が必要である。その炭素源の代表的なものとして、糖質、油脂（例えば、動植物油脂）、脂肪酸（例えば、動植物由来の脂肪酸）などが挙げられる。
微生物の生産や、微生物を用いた物質生産において、水への溶解度が高い炭素源であるグルコースやシュークロースなどの糖質を用いる場合、通常の操作条件においてこれらの炭素源は微生物の培養に用いる培養液に溶解しており、炭素源として利用しやすい。
再生可能資源である動植物由来の脂肪酸類や油脂類も、微生物の生産や、微生物によるＰＨＡ（ポリヒドロキシアルカン酸）等の物質生産に有用な炭素源である。例えば、近年、常温で固体であるパーム油は、安定性が高く、価格競争力もあることから年々生産量が増加している。それに伴い、油脂の精製時に副産物として生成する脂肪酸類も年々増加している。これらの、培地に対する溶解度の低い油脂類、脂肪酸類を微生物の炭素源として利用することが望まれている。
しかし、油脂、又は油脂構成成分である脂肪酸類を用いた微生物の培養における最大の課題として、水への溶解度が極めて低いことが挙げられる。水への溶解度が低いと、培養液中で液滴、又は固体粒子を形成することによって、微生物による資化速度の低下が予想される。さらに、油脂、及び／又は脂肪酸の融点が培養温度よりも高い場合、前記固体粒子は液滴よりも大きな塊となり、資化速度のさらなる低下を引き起こすと考えられる。例えばパーム油は３６℃程度では固体油脂である。
ラウリン酸、ミリスチン酸、パルミチン酸、ステアリン酸などの脂肪酸の水への溶解度は、最も溶解度の高いラウリン酸でも０．１ｇ／Ｌ以下であり、また、パルミチン酸、ステアリン酸などは１μＭ以下の濃度で凝集してしまう（非特許文献１）。これらの性質は、微生物による資化性を低下させてしまう原因である。その他にも、例えば、ラウリン酸を単独で炭素源として用いてＡｅｒｏｍｏｎａｓ　ｈｙｄｒｏｐｈｉｌａを培養し、ＰＨＡを生産した例（非特許文献２）があるが、乾燥菌体重量は約８ｇ／Ｌと好適に利用されているとは言えず、また、ラウリン酸は培養温度で固体であることが、培養の難易度を高めていると記載されている。
Ｒａｌｓｔｏｎｉａ　ｅｕｔｒｏｐｈａ（現在の分類でＣｕｐｒｉａｖｉｄｕｓ　ｎｅｃａｔｏｒ）をラウリン酸やミリスチン酸を単独で炭素源として用いて培養し、ＰＨＡを生産した例（特許文献１）があるが、ＰＨＡ生産性は１ｇ／Ｌ以下と低く、好適に利用されているとは言えない。
Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ　ｃｏｌｉを、ラウリン酸ナトリウムなどの脂肪酸金属塩を単独で炭素源として用いて培養し、ＰＨＡを生産した例（非特許文献３）があるが、ラウリン酸ナトリウムの使用量は２ｇ／Ｌ程度であった。
Ａｅｒｏｍｏｎａｓ　ｃａｖｉａｅのＰＨＢＨ合成酵素遺伝子を導入したＲａｌｓｔｏｎｉａ　ｅｕｔｒｏｐｈａ（現在の分類でＣｕｐｒｉａｖｉｄｕｓ　ｎｅｃａｔｏｒ）を用い、低溶解度の油脂を用いたＰＨＡの生産例（非特許文献４）がある。この文献では、培養温度（３０℃）よりも融点の高いパーム油を用いており、乾燥菌体重量は培養７２時間で４．１ｇ／Ｌと低く、好適に利用されているとは言えない。
溶解度が低い炭素源を効率的に利用する技術として、サンフラワー油をセラミック製の膜を通しながら、培養液中に供すことで、溶解度の低い油を培地中で微分散させる例（非特許文献５）がある。この文献では、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ属細菌を用いた、界面活性剤やＰＨＡの製造例が記載されている。この技術は膜を使用するという特徴を有するため、融点が高く培養温度で液体状態である炭素源に適用範囲が限られるといった課題があり、また、乳化状態ではないため、分散後に粒子が融合することで微分散状態が維持されないことが予想される。
ラウリン酸、ミリスチン酸、パルミチン酸、ステアリン酸、オレイン酸、リノール酸を乳化処理することによって、該脂肪酸からのＬ－スレオニン、Ｌ－リジンの発酵生産性を向上させた例（特許文献２）もある。この文献では、培養温度よりも融点の高いラウリン酸、ミリスチン酸、パルミチン酸、ステアリン酸を用いた培養方法が記載されている。しかしながら、アミノ酸の生産性は改善するものの、生菌数が減る例があり、細胞中にＰＨＡを蓄積させる技術には不適である。さらに、例えばパルミチン酸に対するオレイン酸の含有比が減少し、生産性の低下が引き起こされることから、適用範囲が限定される。また、脂肪酸乳化物中の脂肪酸含量は２０ｇ／Ｌと低濃度であり、工業的な生産への適用は困難である。
パーム油に乳化剤としてアラビアガム（ＧＡ）添加し、乳化することで、培養開始時のラグタイムを短縮する例（非特許文献６）がある。しかしながら、この文献におけるＧＡの効果は明確ではなく、また、脂肪酸系の乳化剤であるＳＤＳや、ＴｒｉｔｏｎＸ－１００は微生物の生育を阻害してしまうことが記載されている。また、この文献では、乳化した炭素源を用いることで微生物の生育速度が向上したとの記載はなく、さらに、ＧＡを用いた乳化は、経済性の観点から工業生産への適用は困難であると記載されている。
微生物発酵プロセスに植物油脂や脂肪酸メチルエステルの乳化物を利用する例（特許文献３）もある。この文献では、パーム油や菜種油を用いた乳化組成物の作製技術が開示されているが、乳化剤としてエトキシル化した脂肪酸、脂肪酸アルコールを、油脂に対して１重量％以上添加する必要があることから、経済面での困難性が示唆される。また、実際に微生物の原料として利用したとの記載はなく、さらには、前記エトキシル化した乳化剤を微生物が利用可能であるかに関する記載もない。
炭素源の融点を制御する培養技術としては、油脂や脂肪酸、またはそれらの混合物を原料に用いたＰＨＡの効率的生産例（特許文献４）がある。この文献では複数の脂肪酸、油脂混合物を用いることで炭素源の融点を低下させる方法が記載されているが、炭素源の融点が培養温度よりも高い場合は、炭素源の融点と培養温度の温度差が大きいほど微生物による資化性低下が認められることから、使用可能な炭素源が限定的であった。このように、培地への溶解度の低い脂肪酸類、及び／または油脂類などを炭素源として好適に利用し、微生物の生産や微生物による物質の生産を工業的に効率よく行うには課題が残されていた。
米国公開公報２００２００８６３７７Ａ１ 特開２００８－１６７７４６号公報 国際公開公報第２０００／０７１６７６号パンフレット 国際公開公報第２０１０／１１３４９７号パンフレット
Henrik Vorum., et.al., .Biochmicaet Biophysica Acta, 1126: 135-142 (1992) Lee S., et.al., Biotechnol. Bioeng., 67:240-244 (2000) Regina V., et.al., FEMS MICROBIOLOGY LETTERS, 111-117 (2000) T.Fukui., et.al., Appl. Microbiol. Biotechnol., 49:333-336 (1998) Anuj Dhariwal, et.al., Bioprocess Biosyst. Eng., 31:401-409 (2008) Charles F. Budde, et.al., Appl. Microbiol. Biotechnol., 89:1611-1619 (2011)
本発明は、上昇融点が高く、微生物の培養温度では培地への溶解度の低い脂質類を炭素源として利用して、微生物による物質生産を工業的に効率よく行う方法を提供することを課題とする。また、前記脂質類を炭素源として利用して、工業的に効率よく微生物代謝産物を製造する方法を提供することを課題とする。
本発明者らは、培地への溶解度の低い脂質類を炭素源として利用して、微生物による物質生産を工業的に効率よく行う方法を検討した。その結果、脂質類、リン酸塩類、及びタンパク質を含む乳化物が極めて安定であることを見出した。さらに該乳化物を用いることにより、上昇融点が高く、微生物の培養温度では培地への溶解度の低い脂質類を、微生物が好適に資化できることを見出した。さらに該乳化物を利用して、微生物の培養、及び微生物代謝産物の生産を工業的に効率よく行えることを発見し、本発明を完成させた。
本発明は、脂質類、リン酸塩類、及びタンパク質を含むことを特徴とする、微生物培養用乳化物に関する。
前記タンパク質が乳タンパク質であることが好ましい。
前記脂質類の２５℃での水への溶解度が１０ｇ／Ｌ以下であることが好ましい。
前記脂質類に遊離脂肪酸が５％以上含まれていることが好ましい。
前記微生物培養用乳化物中の前記脂質類の含量が３～７０％であることが好ましい。
また、本発明は、前記微生物培養用乳化物を培地中に添加することを特徴とする、微生物の培養方法に関する。
前記微生物培養用乳化物に含まれる脂質類の上昇融点が、微生物の培養温度より２℃以上高いことが好ましい。
前記微生物が細菌であることが好ましい。
前記細菌がＣｕｐｒｉａｖｉｄｕｓ属に属する細菌であることが好ましい。
前記Ｃｕｐｒｉａｖｉｄｕｓ属に属する細菌がＣｕｐｒｉａｖｉｄｕｓ　ｎｅｃａｔｏｒ、又は、その遺伝子組み換え体であることが好ましい。
また、本発明は、前記方法で微生物を培養することを特徴とする、微生物代謝産物の製造方法に関する。
前記微生物代謝産物がポリヒドロキシアルカン酸であることが好ましい。
前記ポリヒドロキシアルカン酸がポリ（３－ヒドロキシブチレート－ｃｏ－３－ヒドロキシヘキサノエート）であることが好ましい。
微生物の培養温度で水への溶解度が低い脂質類を、微生物が好適に資化できる炭素源として利用し、微生物の培養、及び微生物代謝産物の生産を工業的に効率よく行うことが可能となる。
以下、本発明を詳細に説明する。本発明の微生物培養用乳化物は、脂質類、リン酸塩類、及びタンパク質を含む。ここで、本発明における乳化とは、互いに溶け合わない２つ以上の物質を攪拌するなどして一方を他方の中へ分散させた状態を指す。例えば、水と油脂、水と脂肪酸、水と油脂と脂肪酸の混合物などが物質として挙げられる。また、本発明における乳化とは、２つ以上の物質が同相である必要はなく、例えば連続相が液体、分散相が固体などの状態においても乳化と定義する。
本発明における脂質類とは脂肪酸類、油脂類、及び／又はそれらの混合物を指す。脂質類は、使用する微生物の種類や、微生物によって製造する微生物代謝産物の種類、培養の諸条件（培地成分、ｐＨ、培養温度など）によって異なるが、微生物が資化可能であり、水への溶解度が低ければ良い。
脂肪酸類としては、遊離脂肪酸の他に、脂肪酸塩、脂肪酸エステル等が挙げられ、これらが単独又は混合物であっても良い。用いる微生物が代謝経路を持つ脂肪酸類であれば本発明で好適に用い得ることが可能である。
油脂類としては、トリグリセライド、ジグリセライド、モノグリセライド等の脂肪酸グリセリンエステル等が挙げられ、これらが単独又は混合物であっても良い。用いる微生物が代謝経路を持つ油脂類であれば本発明で好適に用い得る。
また、脂質類は、環境への負荷を考慮して非石油由来であることが好ましく、一般的に動植物油類ならびに動植物油由来であることが好ましい。食料問題への影響を考慮し、非可食用途の油脂類、脂肪酸類を用いることがより好ましい。
動植物油の例としては、牛脂、豚脂、乳脂、魚油、大豆油、菜種油、ひまわり油、オリーブ油、ゴマ油、キャノーラ油、綿実油、ピーナッツ油、桐油、こめ油、米油、サフラワー油、ヤシ油、パーム油、パーム核油、シア脂、サル脂、イリッペ脂、カカオ脂、ヤトロファ油、藻類由来の油脂類、これらの油脂の粗精製油、分別油、硬化油、エステル交換油や、その構成成分である脂肪酸、脂肪酸塩、脂肪酸エステルなどが挙げられ、これら油脂は単独又は２種類以上の組み合わせで用いることができる。
また、前記油脂を精製処理する過程で副産物として生成する成分を利用することは、食糧との競合を避ける上で好ましい。精製処理における副産物としては、アルカリ脱酸工程で生成する脂肪酸塩類、蒸留脱酸工程で生成する蒸留残渣、脱臭工程で生成する蒸留残渣などが挙げられる。脂肪酸塩類としては脂肪酸ナトリウムや脂肪酸カリウム、脂肪酸カルシウム、脂肪酸マグネシウム等が挙げられる。蒸留残渣としては、主成分である脂肪酸の他に、モノグリセライド、ジグリセライド等が挙げられる。
脂質類の水への溶解度は、２５℃で１０ｇ／Ｌ以下であることが好ましい。２５℃での水への溶解度が１ｇ／Ｌ以下の脂質類であっても好適に利用できる。さらに、２５℃での水への溶解度が０．１ｇ／Ｌ以下の脂質類であっても好適に利用できる。
脂質類の融点は、微生物培養の際の培養温度よりも２℃以上高いことが好ましい。このような脂質類は、一般的には培地への分散性が悪いため、本発明による分散性向上効果が高いからである。脂質類の融点は、培養温度より５℃以上高いことがより好ましく、１０℃以上高いことがさらに好ましい。例えば融点が３２℃以上の脂質類を好適に利用できる。また、融点が３５℃以上の脂質類も好適に利用できる。さらには、３６℃以上、３９℃以上、４０℃以上、４２℃以上、或いは４４℃以上の脂質類も好適に利用できる。しかしながら、融点が培養温度よりも低い脂質類であっても、培地への溶解度が低い脂質類であれば、融点に限定されず分散性向上効果が発揮される。もちろん、培養温度よりも融点が低い脂質類や、２５℃での水への溶解度が１０ｇ／Ｌを超える脂質類を併用することもできる。本発明において、脂質類を乳化して比表面積を大きくすることにより、培養温度よりも融点が高く、かつ培地に低溶解性の脂質類を、微生物によって好適に資化させることが可能になる。
脂質類中の遊離脂肪酸の含有量が高いことが、微生物が利用しやすい形態として好ましい。脂質類中の遊離脂肪酸類の含有量は、５％以上であることがより好ましく、３０％以上であることがさらに好ましく、５０％以上であることがさらにより好ましく、７０％以上であることが特に好ましい。また、前記脂質類には必要に応じて他の成分を加えても良い。
タンパク質としては、例えば、乳タンパク質や大豆タンパク質、グルテン部分分解物のようなタンパク質やその塩類が利用できる。乳タンパク質としては、例えばカゼイン、カゼインＮａ、ホエーなどが挙げられる。
タンパク質の添加濃度は、脂質類に対して０．０１～１０重量％であることが好ましく、０．０５～５重量％であることがより好ましく、０．１～１重量％であることがさらに好ましい。
一般的に油脂類の乳化には乳化剤として、例えば、モノグリセライドやジグリセライドのようなグリセリン脂肪酸エステル、酢酸モノグリセライド、乳酸モノグリセライド、クエン酸モノグリセライド、コハク酸モノグリセライド、ジアセチルモノグリセライドのような有機酸モノグリセライド；ポリグリセリン脂肪酸エステル、ポリグリセリン縮合リシノール酸エステル、ショ糖脂肪酸エステル、ソルビタン脂肪酸エステル、プロピレングリコール脂肪酸エステル、レシチン、分別レシチン、酵素処理レシチン、サポニン、アラビアガムやキサンタンガムのような多糖類、カゼインナトリウムや大豆タンパク質、グルテン部分分解物のようなタンパク質等が添加される。しかし、本発明においては前記乳化剤の添加は効果的ではなく、タンパク質類、及びリン酸塩類の組み合わせによって極めて安定な乳化状態を実現することを見出した。
リン酸塩類としては、リン酸水素２Ｎａ、リン酸２水素Ｋなどの正リン酸塩類、ピロリン酸Ｎａなどのピロリン酸塩類、ヘキサメタリン酸Ｎａなどのメタリン酸塩類、ポリリン酸Ｎａなどのポリリン酸塩類などが好適に利用できる。リン酸塩とタンパク質を併用することによって、タンパク質の凝集抑制、及び、タンパク質のネットワーク構築が期待され、乳化を安定化できるという効果を奏する。
本発明の乳化物は、タンパク質、及びリン酸塩類を用いることで乳化安定性が大きく向上していることが特徴である。また、乳化物には、必要に応じてその他の乳化剤を添加しても良い。追加的に使用可能な乳化剤としては、モノグリセリド、ジグリセリド、レシチン、サポニンなどが挙げられる。
乳化物は、微生物の培養に供される前に、水中油型乳化物として調製することが好ましく、これにより培地中での分散性が良好になり微生物によって好適に資化される。
微生物の培養の前に予め作製される乳化物の脂質類の含量は、乳化物の安定性を考慮すると、３％～７０％であることが好ましい。一方、商業的な微生物生産、ならびに微生物を用いた物質生産においては、しばしば、培養期間中に脂質類を間欠、または連続的に培養槽に添加することが行われる。その際、追加で添加される培地中の脂質類の濃度が低いと、培養液量が増加し生産性が損なわれる恐れがあるため、予め作製される乳化物の脂質類の含量は、より好ましくは１０％～６５％、さらに好ましくは２０％～６５％、特に好ましくは４０％～６５％である。また、いうまでもなく、乳化物の脂質分が６０％以上であれば炭素源として極めて有効に利用可能である。
乳化物の製造方法は特に限定されず、従来公知の乳化物の製造方法が利用できる。例えば、プロペラ等を用いた攪拌機や、スタティックミキサーのようなインラインミキサーを用いた方法、複数の分散盤を組み合わせることで乳化する方法、予め予備乳化を行った後、ＴＫ、ウルトラミキサー、クレアミックス、コロイドミル、高圧ホモジナイザー、マイクロフルイダイザー、アルティマイザー、ナノマイザー、エマルダー等の均質化処理機を用いる方法等が利用できる。こういった均質化処理は２回以上行っても良い。また、超音波乳化機を用いることもできる。
培地に低溶解性の脂質類を油相部として含む水中油型乳化物を、培養に利用する方法は、特に限定されないが、予め水中油型乳化物を作製しタンク等に保持した後、培地に添加しても良いし、別々に用意した原料タンクから水相と油相を同一のラインに供給し、インラインで乳化を行った後に培地に添加しても良い。
前記の微生物培養用乳化物を含む培地を利用して、微生物を培養することが可能であり、さらに、微生物代謝産物を製造することが可能である。このような微生物代謝産物としては、例えば、ＰＨＡ（ポリヒドロキシアルカン酸）、エタノール、ブタノール、プロパノール、１，４ブタンジオールなどのアルコール類、乳酸、コハク酸、アジピン酸などのカルボン酸類、グルタミン、リジン、スレオニンなどのアミノ酸類、ドコサヘキサエン酸、エイコサペンタエン酸などの脂質類、タンパク質、抗生物質などが挙げられる。
ＰＨＡは、多くの微生物種の細胞にエネルギー蓄積物質として産生・蓄積される熱可塑性ポリエステルであり、生分解性を有している。現在、環境への意識の高まりから非石油由来のプラスチックが注目されるなか、特に、微生物が菌体内に産生・蓄積するＰＨＡは、自然界の炭素循環プロセスに取り込まれることから生態系への悪影響が小さいと予想されており、その実用化が切望されているため、本発明を用いて生産する物質の好例の一つである。
本発明の微生物の生産、また、微生物代謝産物の製造に用いられる微生物としては、ラウリン酸、ミリスチン酸、パルミチン酸、オレイン酸、及び、油脂などを資化可能で、かつ代謝産物を生産可能な微生物であれば特に限定はないが、天然から単離された微生物や、遺伝子操作された微生物等を好適に使用できる。微生物として、例えば、細菌、古細菌、バクテリア、酵母、カビ、放線菌などが挙げられる。
好ましい微生物としては、具体的には、大腸菌（エシェリヒア・コリ：Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ　ｃｏｌｉ）等のエシェリヒア属、カピリアビダス・ネケータ（Ｃｕｐｒｉａｖｉｄｕｓ　ｎｅｃａｔｏｒ）等のカピリアビダス属、アルカリゲネス・ラタス（Ａｌｃａｌｉｇｅｎｅｓ　ｌａｔａｓ）等のアルカリゲネス属、シュードモナス・プチダ（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ　ｐｕｔｉｄａ）、シュードモナス・フルオレッセンス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ　ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｓ）、シュードモナス・エルギノーサ（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ　ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）、シュードモナス・レジノボランス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ　ｒｅｓｉｎｏｖｏｒａｎｓ）、シュードモナス・オレオボランス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ　ｏｌｅｏｖｏｒａｎｓ）等のシュードモナス属、バチルス・メガテリウム（Ｂａｃｉｌｌｕｓ　ｍｅｇａｔｅｒｉｕｍ）等のバチルス属、アゾトバクター属、ノカルディア属、アエロモナス・キャビエ（Ａｅｒｏｍｏｎａｓ　ｃａｖｉａｅ）、アエロモナス・ハイドロフィラ（Ａｅｒｏｍｏｎａｓ　ｈｙｄｒｏｐｈｉｌａ）等のアエロモナス属、ラルストニア（Ｒａｌｓｔｏｎｉａ）属、ワウテルシア（Ｗａｕｔｅｒｓｉａ）属、コマモナス（Ｃｏｍａｍｏｎａｓ）属などが挙げられる（Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ　Ｒｅｖｉｅｗｓ，５４（４），４５０－４７２（１９９０））。
微生物代謝産物としてＰＨＡを製造する場合には、これら微生物等の他にも遺伝子工学的な手法を用いて、ＰＨＡ合成酵素遺伝子等を導入することにより、人為的にＰＨＡを生産させる改変を施した遺伝子組み換え体を用いることもできる。例えば、前記カピリアビダス属、アルカリゲネス属、シュードモナス属、バチルス属、アゾトバクター属、ノカルディア属、アエロモナス属、ラルストニア属、ワウテルシア（Ｗａｕｔｅｒｓｉａ）属、コマモナス（Ｃｏｍａｍｏｎａｓ）属などに属する微生物のほかにも、エシェリキア（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ）属等のグラム陰性の細菌、バチルス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）属等のグラム陽性の細菌、サッカロマイセス（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）属、ヤロウィア（Ｙａｒｒｏｗｉａ）属、キャンディダ（Ｃａｎｄｉｄａ）属等の酵母類などを好適に用いて、人為的にＰＨＡを生産できるよう改変を施した細胞を得ることができる。キャンディダ（Ｃａｎｄｉｄａ）属の微生物としては、キャンディダ・マルトーサ（Ｃａｎｄｉｄａ　ｍａｌｔｏｓａ）が挙げられる。
ＰＨＡの中でもＰＨＢＨの生産に関しては、例えばＡｅｒｏｍｏｎａｓ　ｃａｖｉａｅやＡｅｒｏｍｏｎａｓ　ｈｙｄｒｏｐｈｉｌａなど元来ＰＨＢＨを生産する微生物を用いる方法や、元来ＰＨＢＨを生産しない微生物に遺伝子工学的な手法を用いて、ＰＨＡ合成酵素遺伝子等を導入することにより、人為的にＰＨＢＨを生産させる改変を施した生物細胞を用いることもできる。遺伝子を導入するホスト微生物としては、たとえばＣｕｐｒｉａｖｉｄｕｓ　ｎｅｃａｔｏｒを好適に用いることができる。また、ＰＨＡ合成酵素遺伝子としてはＡｅｒｏｍｏｎａｓ　ｃａｖｉａｅ、Ａｅｒｏｍｏｎａｓ　ｈｙｄｒｏｐｈｉｌａやＣｈｒｏｍｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ　ｓｐ．、Ｒｈｄｏｃｏｃｃｕｓ属由来のＰＨＡ合成酵素遺伝子やそれらの改変体などを用いることができる。改変体としてはアミノ酸基が欠失、付加、挿入、若しくは置換されたＰＨＡ合成酵素をコードする塩基配列などを用いることができる。
ＰＨＡの種類としては、微生物が生産するＰＨＡであれば特に限定されないが、好ましくは、炭素数４～１６の３－ヒドロキシアルカン酸から選択される構成成分の重合体や炭素数４～１６の３－ヒドロキシアルカン酸から選択される２種以上の構成成分の共重合体が良い。例えば炭素数４の３－ヒドロキシアルカン酸のホモポリマーであるポリ３－ヒドロキシブチレート（ＰＨＢ）、炭素数４と６の３－ヒドロキシアルカン酸のコポリマーであるポリ（３－ヒドロキシブチレート‐ｃｏ‐３－ヒドロキシヘキサノエート）（ＰＨＢＨ）、炭素数４と５の３－ヒドロキシアルカン酸のコポリマーであるポリ（３－ヒドロキシブチレート‐ｃｏ‐３－ヒドロキシバレレート（ＰＨＢＶ）、炭素数４～１４の３－ヒドロキシアルカン酸の重合体などが挙げられる。
培養方法としては、培地に炭素源を添加する方法を用いる微生物の培養方法であれば、培地組成、炭素源の添加方法、培養スケール、通気攪拌条件や培養温度、培養時間などに一切限定されないが、連続的、または、間欠的に培地に炭素源を添加する培養方法がより好ましい。ただし、使用する培地は培養槽にて攪拌できる状態である必要がある。この条件を満たす限り、液体培地であっても、２相に分離する培地であっても、懸濁液状態の培地であっても、用いることができる。
ＰＨＡは、上述した培養方法によって微生物内に蓄積させ、その後、周知の方法を用いて菌体から回収することができる。例えば、次のような方法により行うことができる。培養終了後、培養液から遠心分離機等で菌体を分離し、その菌体を蒸留水およびメタノール等により洗浄し、乾燥させる。この乾燥菌体から、クロロホルム等の有機溶剤を用いてＰＨＡを抽出する。このＰＨＡを含んだ溶液から、濾過等によって菌体成分を除去し、そのろ液にメタノールやヘキサン等の貧溶媒を加えてＰＨＡを沈殿させる。さらに、濾過や遠心分離によって上澄み液を除去し、乾燥させてＰＨＡを回収する方法などが挙げられる。
なお、本発明における融点とは、上昇融点のことを指す。上昇融点は以下の方法で測定できる。
（１）内径１ｍｍ、外形２ｍｍ以下、長さ５０～８０ｍｍ、両端が開いている毛細管の一端を完全に融解した試料につけて１０ｍｍの高さまで試料をみたし、速やかに氷片等で固化させる。
（２）１０℃以下で２４時間、あるいは氷上で１時間放置した後試験に供する。
（３）上昇融点測定器（ＥＬＥＸ　ＳＣＩＥＮＴＩＦＩＣ社製　ＥＸ－８７１Ａ）に毛細管をセットする。
（４）予想される融点よりも約２０℃低い温度の水を満たした容器に毛細管を浸し、温度計の下端を水面下３０ｍｍの深さに置く。
（５）容器内の水を適当な方法でかき混ぜながら、最初は２℃／分ずつ水温が上昇するように加熱する。
（６）予想される融点の約１０℃低い温度に達した後は０．５℃／分ずつ水温が上昇するように加熱する。
（７）試料が毛細管中で上昇を始める温度を上昇融点とする。
本発明において、資化性の向上とは、時間当たりの炭素源の消費量が増加し、その結果、微生物菌体の生産量や、微生物が産生する物質の生産量が増加することを意味する。また、本発明における炭素源は、培地に添加する際にすでに混合物であって良いし、別々に添加して培地内で混合しても良い。
微生物菌体の生産量は、吸光度法や乾燥菌体重量測定法などの公知の方法で測定できる。微生物が産生する物質の生産量はＧＣ法、ＨＰＬＣ法などの公知の方法で測定できる。細胞中に蓄積されたＰＨＡの含量は、加藤らの方法（Ａｐｐｌ．ＭｉｃｒｏＢｉｏｌ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．，４５巻、３６３頁、（１９９６）；Ｂｕｌｌ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，６９巻、５１５頁（１９９６））に従い、培養細胞からクロロホルムなどの有機溶媒を用いて抽出し、乾燥することで測定できる。
以下、実施例により本発明をさらに具体的に説明する。ただし、本発明は、これら実施例に限定されるものではない。
実施例にて使用した炭素源Ｐａｌｍ　ｆａｔｔｙ　ａｃｉｄ　ｄｉｓｔｉｌｌａｔｅ（ＰＦＡＤ）、Ｐａｌｍ　ｋｅｒｎｅｌ　ｆａｔｔｙ　ａｃｉｄ　ｄｉｓｔｉｌｌａｔｅ（ＰＫＦＡＤ）、Ｃｒｕｄｅ　ｐａｌｍ　ｏｉｌ（ＣＰＯ）、Ｃｒｕｄｅ　ｐａｌｍ　ｋｅｒｎｅｌ　ｏｉｌ（ＣＰＫＯ）はＰａｌｍ　Ｆａｔｔｙ　Ａｃｉｄ　Ｄｉｓｔｉｌｌａｔｅ、ＭＡＬＡＹＳＩＡＮ　ＢＩＯＴＥＣＨＮＯＬＯＧＹ　ＣＯＲＰＯＲＡＴＩＯＮ　ＳＤＮ　ＢＤＨより入手した。各炭素源の油脂（ＴＧ、ＤＧ、ＭＧ含む）、及び遊離脂肪酸（ＦＦＡ）含量とその脂肪酸組成、融点を表１に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
（実施例１～１３、比較例１～２）各種炭素源の乳化物の製造
表２に示す原料、及び配合により、乳化物を製造した。以下に乳化物の製造手順を示す。脂質類及び水を量りとり、６０℃に加熱後、水にリン酸塩類、及びタンパク質類を溶解させる。溶解後、脂質類と混合し、ホモミキサー（ＳＩＬＶＥＲＳＯＮ社製、ＬＡＢＯＲＡＴＯＲＹ　ＭＩＸＥＲ　ＥＭＵＬＳＩＦＩＥＲ）を用いて攪拌数２５００ｒｐｍにて予備乳化を行った。
さらに、この予備乳化液を高圧ホモジナイザー（ＰＡＮＤＡ２Ｋ型、ニロ・ソアビ社製）にて圧力１０ｂａｒｒにて乳化操作を行い、乳化物を得た。各乳化物の乳化安定性は、乳化液を６０℃で１０分攪拌した後、攪拌を停止し、乳化の分離状態を目視した。表２中の○の乳化物は分離無し、×の乳化液は速やかに油相と水相に分離を開始したものを指す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
表２に示すように、脂質類、各種リン酸塩類、及びタンパク質を含有する乳化液は高い安定性を示すが、リン酸塩類のみ、又はタンパク質のみでは乳化安定性が極めて悪い結果となった。また、表２中のリン酸塩類の添加量（ｇ／ｋｇ）、及びタンパク質類の添加量（ｇ／ｋｇ）はどちらも脂質類１ｋｇ当たりの添加量であり、水相に溶解して調製する。
（実施例１４～１５）大腸菌の培養
表２の実施例５又は１１の乳化物を炭素源として使用し、微生物の培養を行った。微生物としてＥ．ｃｏｌｉ　ＨＢ１０１株（タカラバイオ社製）を使用した。
前培地はＬＢ培地（１０ｇ／Ｌ　Ｂａｃｔｏ－ｔｒｙｐｔｏｎｅ、５ｇ／Ｌ　Ｂａｃｔｏ－ｙｅａｓｔ　ｅｘｔｒａｃｔ、５ｇ／Ｌ　ＮａＣｌ）を用いた。生育試験にはＭ９培地（６ｇ／Ｌ　Ｎａ２ＨＰＯ４、３ｇ／Ｌ　ＫＨ２ＰＯ４、０．５ｇ／Ｌ　ＮａＣｌ、１ｇ／Ｌ　ＮＨ４Ｃｌ、１ｍＭ　ＭｇＳＯ４、０．００１ｗ／ｖ％　Ｔｈｉａｍｉｎｅ、０．１ｍＭ　ＣａＣｌ２）を用いた。
Ｅ．ｃｏｌｉ　ＨＢ１０１株のグリセロールストックを前培地に接種して３７℃にて１２時間培養し、前培養を行った。次に前培養液を、乳化物を含む５０ｍＬのＭ９培地を入れた５００ｍｌ用の坂口フラスコに２ｖ／ｖ％で接種し、３７℃で９６時間振とう培養した。乳化物は別途作製したものを坂口フラスコ内に一括添加した。炭素源濃度は０．５ｗ／ｖ％とした。培養終了後、遠心分離によって菌体を回収、メタノールで洗浄、凍結乾燥し、乾燥菌体重量を測定した。結果を表３に示す。
（比較例３～４）
炭素源として、微生物培養用乳化物に替えて乳化処理していないＰＦＡＤ又はＰＫＦＡＤを使用した以外は、実施例１４～１５と同様の操作を行った。結果を表３に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
（実施例１６～１９）Ｃａｎｄｉｄａ　ｍａｌｔｏｓａを用いたＰＨＡ生産
表２の実施例５、１１、１２、又は１３の乳化物を炭素源として使用し、ＰＨＡの生産を行った。微生物としてＣａｎｄｉｄａ　ｍａｌｔｏｓａ　ＡＨＵ－７１　ｐＡＲＲ－１４９／１７１ＮＳｘ２－ｐｈｂＢ株（国際公開公報第２００５／０８５４１５号パンフレット参照）を使用した。
前培地はＹＮＢ培地（０．６７ｗ／ｖ％　Ｙｅａｓｔ　Ｎｉｔｒｏｇｅｎ　ｂａｓｅ　ｗｉｔｈｏｕｔ　ａｍｉｎｏ　ａｃｉｄ、２ｗ／ｖ％　Ｇｌｕｃｏｓｅ）を用いた。ＰＨＡ生産培地にはＭ２培地（１２．７５ｇ／Ｌ　（ＮＨ４）２ＳＯ４、１．５６ｇ／Ｌ　ＫＨ２ＰＯ４、０．３３ｇ／Ｌ　Ｋ２ＨＰＯ４・３Ｈ２Ｏ、０．０８ｇ／Ｌ　ＫＣｌ、０．５ｇ／Ｌ　ＮａＣｌ、０．４１ｇ／Ｌ　ＭｇＳＯ４・７Ｈ２Ｏ、０．４　ｇ／Ｌ　Ｃａ（ＮＯ３）２・４Ｈ２Ｏ、０．０１ｇ／Ｌ　ＦｅＣｌ３・４Ｈ２Ｏ）に、０．４５ｍｌ／Ｌの微量金属塩溶液（０．１Ｎ塩酸に１ｇ／Ｌ　ＦｅＳＯ４・７Ｈ２Ｏ、８ｇ／Ｌ　ＺｎＳＯ４・７Ｈ２Ｏ、６．４ｇ／Ｌ　ＭｎＳＯ４・４Ｈ２Ｏ、０．８ｇ／Ｌ　ＣｕＳＯ４・５Ｈ２Ｏを溶かしたもの）を添加した培地を用いた。
Ｃａｎｄｉｄａ　ｍａｌｔｏｓａ　ＡＨＵ－７１　ｐＡＲＲ－１４９／１７１ＮＳｘ２－ｐｈｂＢ株のグリセロールストックを５０ｍｌの前培地を入れた５００ｍｌ用の坂口フラスコに５００μｌ接種した。これを培養温度３０℃で２０時間培養した。次に培養液を３００ｍｌのＰＨＡ生産培地を入れた２Ｌ用の坂口フラスコに１０ｖ／ｖ％で接種し、３０℃で４８時間振とう培養した。固化炭素源は前記Ｍ９培地に直接滴下し作製した。また、乳化物は別途作製したものを坂口フラスコ内に一括添加した。培養は炭素源濃度２．０ｗ／ｖ％にて行った。培養終了後、遠心分離によって菌体を回収し、メタノールで洗浄し、凍結乾燥し、得られた乾燥菌体重量を測定した。
得られた乾燥菌体約１ｇに１００ｍｌのクロロホルムを加え、室温で一昼夜攪拌して、菌体内のＰＨＡを抽出した。菌体残渣をろ別後、エバポレーターで総容量が約３０ｍｌになるまで濃縮し、その後、約９０ｍｌのヘキサンを徐々に加え、ゆっくり攪拌しながら、１時間放置した。析出したＰＨＡをろ別後、５０℃で３時間真空乾燥した。乾燥ＰＨＡの重量を測定し、菌体内のポリマー含量を算出した。乾燥菌体重量、及びＰＨＡ生産量を表４に示す。
（比較例５～８）
炭素源として、微生物培養用乳化物に替えて乳化処理していないＰＦＡＤ、ＰＫＦＡＤ、ＣＰＯ、又はＣＰＫＯを使用した以外は実施例１６～１９と同様の操作を行った。結果を表４に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
生産されたＰＨＡのモノマー組成分析は以下のようにガスクロマトグラフィーによって測定した。乾燥ＰＨＡの２０ｍｇに２ｍｌの硫酸－メタノール混液（１５：８５）と２ｍｌのクロロホルムを添加して密栓し、１００℃で１４０分間加熱することでＰＨＡ分解物のメチルエステルを得た。冷却後、これに１．５ｇの炭酸水素ナトリウムを少しずつ加えて中和し、炭酸ガスの発生がとまるまで放置した。４ｍｌのジイソプロピルエーテルを添加してよく混合した後、遠心して、上清中のＰＨＡ分解物のモノマーユニット組成をキャピラリーガスクロマトグラフィーにより分析した。ガスクロマトグラフは島津製作所社製ＧＣ－１７Ａ、キャピラリーカラムはＧＬサイエンス社製ＮＥＵＴＲＡ　ＢＯＮＤ－１（カラム長２５ｍ、カラム内径０．２５ｍｍ、液膜厚０．４μｍ）を用いた。キャリアガスとしてＨｅを用い、カラム入口圧１００ｋＰａとし、サンプルは１μｌを注入した。温度条件は、初発温度１００～２００℃まで８℃／分の速度で昇温、さらに２００～２９０℃まで３０℃／分の速度で昇温した。前記条件にて分析した結果、炭素数４及び６の３－ヒドロキシアルカン酸モノマーから構成されるＰＨＡ（ＰＨＢＨ）である事が確認された。
（実施例２０～２３）Ｃｕｐｒｉａｖｉｄｕｓ　ｎｅｃａｔｏｒを用いたＰＨＡ生産
表２の実施例５、１１、１２、又は１３の乳化物を炭素源として使用し、ＰＨＡの生産を行った。微生物としてＣｕｐｒｉａｖｉｄｕｓ　ｎｅｃａｔｏｒ　ＫＮＫ－００５株（米国特許７，３８４，７６６号公報参照）を使用した。
種母培地の組成は１ｗ／ｖ％　Ｍｅａｔ－ｅｘｔｒａｃｔ、１ｗ／ｖ％　Ｂａｃｔｏ－ｔｒｙｐｔｏｎｅ、０．２ｗ／ｖ％　Ｙｅａｓｔ　ｅｘｔｒａｃｔ、０．９　ｗ／ｖ％　Ｎａ２ＨＰＯ４・１２Ｈ２Ｏ、０．１５　ｗ／ｖ％　ＫＨ２ＰＯ４、（ｐＨ６．８）とした。
前培養培地の組成は１．１ｗ／ｖ％　Ｎａ２ＨＰＯ４・１２Ｈ２Ｏ、０．１９　ｗ／ｖ％　ＫＨ２ＰＯ４、１．２９ｗ／ｖ％　（ＮＨ４）２ＳＯ４、０．１ｗ／ｖ％　ＭｇＳＯ４・７Ｈ２Ｏ、２．５ｗ／ｖ％　パームオレインオイル、０．５ｖ／ｖ％　微量金属塩溶液（０．１Ｎ塩酸に１．６ｗ／ｖ％　ＦｅＣｌ３・６Ｈ２Ｏ、１ｗ／ｖ％　ＣａＣｌ２・２Ｈ２Ｏ、０．０２ｗ／ｖ％　ＣｏＣｌ２・６Ｈ２Ｏ、０．０１６ｗ／ｖ％　ＣｕＳＯ４・５Ｈ２Ｏ、０．０１２ｗ／ｖ％　ＮｉＣｌ２・６Ｈ２Ｏを溶かしたもの）とした。炭素源はパームオレインオイルを１０ｇ／Ｌの濃度で一括添加した。
ＰＨＡ生産培地の組成は０．３８５ｗ／ｖ％　Ｎａ２ＨＰＯ４・１２Ｈ２Ｏ、０．０６７ｗ／ｖ％　ＫＨ２ＰＯ４、０．２９１ｗ／ｖ％　（ＮＨ４）２ＳＯ４、０．１ｗ／ｖ％　ＭｇＳＯ４・７Ｈ２Ｏ、０．５ｖ／ｖ％　微量金属塩溶液（０．１Ｎ塩酸に１．６ｗ／ｖ％　ＦｅＣｌ３・６Ｈ２Ｏ、１ｗ／ｖ％　ＣａＣｌ２・２Ｈ２Ｏ、０．０２ｗ／ｖ％　ＣｏＣｌ２・６Ｈ２Ｏ、０．０１６ｗ／ｖ％　ＣｕＳＯ４・５Ｈ２Ｏ、０．０１２ｗ／ｖ％　ＮｉＣｌ２・６Ｈ２Ｏを溶かしたもの）とした。
まず、ＫＮＫ－００５株のグリセロールストック（５０μｌ）を種母培地（１０ｍｌ）に接種して２４時間培養し種母培養を行った。次に種母培養液を１．８Ｌの前培養培地を入れた３Ｌジャーファーメンター（丸菱バイオエンジ社製ＭＤＬ－３００型）に１．０ｖ／ｖ％接種した。運転条件は、培養温度２８℃、攪拌速度５００ｒｐｍ、通気量１．８Ｌ／分とし、ｐＨは６．７～６．８の間でコントロールしながら２８時間培養し、前培養を行った。ｐＨコントロールには１４％水酸化アンモニウム水溶液を使用した。
次に、前培養液を２．５ＬのＰＨＡ生産培地を入れた５Ｌジャーファーメンター（丸菱バイオエンジ社製ＭＤＳ－Ｕ５０型）に５．０ｖ／ｖ％接種した。運転条件は、培養温度２８℃、攪拌速度４００ｒｐｍ、通気量２．１Ｌ／分とし、ｐＨは６．７から６．８の間でコントロールした。ｐＨコントロールには１４％水酸化アンモニウム水溶液を使用した。乳化物は断続的に添加した。培養は６４時間行い、培養終了後、遠心分離によって菌体を回収、メタノールで洗浄、凍結乾燥し、乾燥菌体重量を測定した。
得られた乾燥菌体１ｇに１００ｍｌのクロロホルムを加え、室温で一昼夜攪拌して、菌体内のＰＨＡを抽出した。菌体残渣をろ別後、エバポレーターで総容量が３０ｍｌになるまで濃縮後、９０ｍｌのヘキサンを徐々に加え、ゆっくり攪拌しながら、１時間放置した。析出したＰＨＡをろ別後、５０℃で３時間真空乾燥した。乾燥ＰＨＡの重量を測定し、菌体内のポリマー含量を算出した。乾燥菌体重量、ＰＨＡ生産量を表５に示す。
（比較例９～１２）
炭素源として、微生物培養用乳化物に替えて乳化処理していないＰＦＡＤ、ＰＫＦＡＤ、ＣＰＯ、又はＣＰＫＯを使用した以外は実施例２０～２３と同様の操作を行った。結果を表５に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
生産されたＰＨＡのモノマー組成分析は実施例１６～１９及び比較例５～８と同様の方法にて分析した。その結果、炭素数４及び６の３－ヒドロキシアルカン酸モノマーから構成されるＰＨＡ（ＰＨＢＨ）である事が確認された。
以上の結果より、本発明の乳化物を使用すると、乳化処理をしていない脂質類を使用した場合と比較して良好な資化性を達成できることが明らかとなった。

Claims (13)

  1. 脂質類、リン酸塩類、及びタンパク質を含むことを特徴とする、微生物培養用乳化物。
  2. 前記タンパク質が乳タンパク質であることを特徴とする、請求項１に記載の微生物培養用乳化物。
  3. 前記脂質類の２５℃での水への溶解度が１０ｇ／Ｌ以下であることを特徴とする、請求項１又は２に記載の微生物培養用乳化物。
  4. 前記脂質類に遊離脂肪酸が５％以上含まれていることを特徴とする、請求項１から３のいずれかに記載の微生物培養用乳化物。
  5. 前記微生物培養用乳化物中の前記脂質類の含量が３～７０％であることを特徴とする、請求項１から４のいずれかに記載の微生物培養用乳化物。
  6. 請求項１から５のいずれかに記載の微生物培養用乳化物を培地中に添加することを特徴とする、微生物の培養方法。
  7. 前記微生物培養用乳化物に含まれる脂質類の上昇融点が、微生物の培養温度より２℃以上高いことを特徴とする、請求項６に記載の培養方法。
  8. 前記微生物が細菌であることを特徴とする、請求項６又は７に記載の培養方法。
  9. 前記細菌がＣｕｐｒｉａｖｉｄｕｓ属に属する細菌であることを特徴とする、請求項８に記載の培養方法。
  10. 前記Ｃｕｐｒｉａｖｉｄｕｓ属に属する細菌がＣｕｐｒｉａｖｉｄｕｓ　ｎｅｃａｔｏｒ、又は、その遺伝子組み換え体であることを特徴とする、請求項９に記載の培養方法。
  11. 請求項６から１０のいずれかに記載の方法で微生物を培養することを特徴とする、微生物代謝産物の製造方法。
  12. 前記微生物代謝産物がポリヒドロキシアルカン酸であることを特徴とする、請求項１１に記載の製造方法。
  13. 前記ポリヒドロキシアルカン酸がポリ（３－ヒドロキシブチレート－ｃｏ－３－ヒドロキシヘキサノエート）であることを特徴とする、請求項１２に記載の製造方法。
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