WO2013136028A1 - Production d'acide docosahexaénoïque et d'astaxanthine en mode mixotrophe par schizochytrium. - Google Patents

Production d'acide docosahexaénoïque et d'astaxanthine en mode mixotrophe par schizochytrium. Download PDF

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WO2013136028A1
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culture
pmol
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astaxanthin
per hour
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PCT/FR2013/050547
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Khadidja Romari
Adeline LE MONNIER
Cyril ROLS
Cindy MERLET
Julien PAGLIARDINI
Pierre Calleja
Claude Gudin
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Fermentalg
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    • C12P7/6472—Glycerides containing polyunsaturated fatty acid [PUFA] residues, i.e. having two or more double bonds in their backbone
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    • C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/89—Algae ; Processes using algae

Definitions

  • the invention relates to a mixotrophic culture method, especially in the presence of discontinuous and / or variable light illumination, of a protist of the Labyrinthulomycete class, in particular of the genus Schizochytrium.
  • the process makes it possible to obtain a high yield of biomass and an enrichment of the protists thus cultivated with lipids and carotenoids and more particularly with docosahexaenoic acid (DHA) and astaxanthin.
  • DHA docosahexaenoic acid
  • the method thus makes it possible to select Schistochytrium strains of a mixotrophic nature, and having a high yield of lipids and / or carotenoids, and more particularly of polyunsaturated fatty acids and astaxanthin.
  • the invention also relates to a novel strain of protist belonging to the genus Schizochytrium, particularly suitable for the production of lipids and carotenoids.
  • This new strain of Schizochytrium is useful for producing docosahexaenoic acid (DHA) and astaxanthin in mixotrophic mode.
  • DHA docosahexaenoic acid
  • astaxanthin in mixotrophic mode.
  • Protists are microorganisms with simple cellular organization, that is to say they are generally unicellular and sometimes multicellular but without presenting specialized tissues. They can be autotrophic or heterotrophic.
  • Protists are currently the subject of many industrial projects because some species are able to accumulate or secrete significant amounts of lipids, including polyunsaturated fatty acids.
  • Schizochytrium is a protist of the family Thraustochytriaceae, a widespread group of marine fungus. Thraustochytrids are known to produce a wide range of lipids, particularly acids polyunsaturated fats, and some species are known to produce carotenoids.
  • certain highly unsaturated fatty acids (omega-3) (PUFA-u) 3), in particular eicosapentaenoic acid (EPA or C20: 5 ⁇ 3) and docosahexaenoic acid (DHA) or C22: 6 ⁇ 3), and of the omega-6 series (PUFA-u) 6), in particular, arachidonic acid (ARA or AA or eicosatetraenoic acid C20: 4 ⁇ 6) have a recognized nutritional importance and present high potential in terms of therapeutic applications.
  • PUFA-u highly unsaturated fatty acids
  • DHA is necessary for the normal and functional development of cells, and plays a crucial role in various biochemical processes and functions. Its polyunsaturated nature gives it a crucial importance vis-à-vis the properties of the cell membrane, in plants as in animals: fluidity, flexibility and selective permeability allowing for example an effective adaptation, and even survival, at low temperatures, especially in fish.
  • DHA is a major structural constituent of the human brain and is its main fatty acid. DHA represents 15-20% of the cerebral cortex (the brain of an adult contains at least 20 g of DHA) and 30-60% of the retina. It is essential for the development of the central nervous system and retinal function, by incorporation into cell membranes, and plays a vital role in the satisfactory acquisition and maintenance of the mechanisms of vision and memory.
  • New sources of these fatty acids such as ⁇ , DHA and
  • TARA must therefore be sought in order to meet, in the future, the growing market demand for this type of polyunsaturated fatty acids.
  • protists offer several advantages over fish oils: they are cultivable in vitro under controlled conditions, which allows the production of biomass of relatively constant biochemical composition and, d. On the other hand, unlike fish oils, they do not have an unpleasant smell and their lipids contain little or no cholesterol.
  • the lipids produced by protists have a simpler fatty acid profile than that of fish oils, which limits the separation steps of the fatty acids of interest.
  • carotenoids are also molecules of interest. They are generally used as pigments, but they also have an important role for human health as antioxidants. Finally, they have the ability to stimulate the immune system.
  • the cultures can be carried out in autotrophic, mixotrophic or heterotrophic conditions depending on the strain, the temperature, the light conditions and the size of the fermenters.
  • crops can also be grown in one-liter containers, in a laboratory, in photobioreactors, and in 100,000-liter containers or in open ponds (several hectares).
  • energy and other resources such as labor and ease of cultivation should be taken into account by developing ideal growing conditions.
  • the protists are grown under optimal conditions to increase the yield of (s) fatty acid (s) and carotenoid (s) to produce.
  • the highest possible yield for example a biomass above 80 g / l of dry matter, more than 25% of fatty acids by weight per relative to the total weight of the dry matter, and for example more than 0.2% by weight of carotenoids on the total weight of dry matter.
  • photoreceptors such as phytochrome are a typical example of a light sensor that controls the development of the organism that possesses it.
  • Various photoreceptors have been described to date, namely, among others, accessory pigments, cryptochromes and phototropins.
  • Schizochytrium is known to produce heterotrophic DHA as well as astaxanthin when grown in heterotrophy in the presence of continuous fluorescent light [R. Poontawe, et al. (2008); Optimization of DHA and astaxanthin production by Schizochytrium sp. isolated from mangrove forests in Thailand. JSPS-NRCT core university program on development of thermotolerant microbial resources and their applications, pp. 134-135].
  • an alternative to the culture in culture mode described above would be to practice cultures in mixotrophic mode, that is to say with a contribution of light of less intensity and in the presence of a contribution of organic substrate.
  • mixotroph is usually used with respect to strains having a chloroplast, capable of developing in the presence of light using two carbon sources (organic and inorganic). In the case of strains of the genus Schizochytrium, such a chloroplast has not been identified. However, since the strain is both heterotrophic and reactive with light, the term "mixotroph" will be broadened within the meaning of the invention to this category of strain.
  • the cultivation and selection process consisted more particularly in cultivating the protists under the conditions of mixotrophy, in the presence of a variable and / or discontinuous illumination, in particular in the form of flashes, with a range of variations in light intensity and a frequency specific.
  • Schizochytrium a high production of biomass, lipids and more particularly of polyunsaturated fatty acids and carotenoids.
  • This bet The use of the strains according to the invention opens up the prospect of an industrial production of polyunsaturated fatty acids, in particular DHA, and of carotenoids, in particular astaxanthin, in fermenters benefiting from a reduced light input, and therefore allow to save energy compared to the culture modes described above.
  • the subject of the present invention is therefore a process for the cultivation of protists of the Labyrinthulomycete class, in particular of the Thraustochytrid family, in particular of the genus Schizochytrium, in mixotrophic mode under discontinuous and / or variable illumination conditions over time.
  • the illumination has intensity variations whose amplitude is generally between 5 minutes. m “2 , s " 1 and 1000 pmol. m “2 , s " 1 , preferably between 30 and 400 pmol. m “2 , s " 1 . These variations generally can take place between 2 and 3600 times per hour, preferably between 2 and 200 times per hour.
  • These cultivation conditions make it possible to provide a defined quantity of light.
  • This luminous contribution may comprise phases of discontinuous and / or variable illumination, with variations in intensity that may have identical or different amplitudes.
  • the illumination can be in particular in the form of flashes.
  • This process has the advantage of increasing the yield of biomass obtained from the culture. It also has the advantage of enriching the protists thus cultivated in polyunsaturated fatty acids, more particularly in docosahexaenoic acid (DHA), and in carotenoids, more particularly in astaxanthin.
  • This method can also be used to select Labyrinthulomycete class strains, especially Thraustochytrid and Labyrinthulide families, in particular of the genus Schizochytrium, with a mixotrophic nature, and having a high fatty acid yield.
  • polyunsaturated, especially DHA, and carotenoids, especially astaxanthin especially astaxanthin.
  • the mixotrophic culture of this protist is preferably carried out in the presence of 100 mM to 1.5 M, preferably from 300 mM to 1.2 M, more preferably from 500 mM to 1 M, and even more preferably from 600 mM. 900 mM of an organic carbon substrate.
  • Substrate supply is ensured continuously during culture, to allow the cells to accumulate a high concentration of lipids and carotenoids. Additional substrate is added to the culture medium during the culture process to maintain a constant concentration.
  • This organic carbon substrate preferably comprises, in pure form or in a mixture: glucose, cellulose derivatives, sucrose and / or glycerol.
  • the organic carbon substrate contained in the culture medium may consist of complex molecules or a mixture of substrates.
  • Products resulting from the biotransformation of starch, for example from corn, wheat or potato, in particular starch hydrolysates, which consist of small molecules, constitute, for example, substrates organic carbon adapted to the mixotrophic culture of the protists according to the invention.
  • This method is more particularly intended for the implementation of new strains of the Labyrinthulomycete class, in particular of the genus Schizochytrium (Division: Myxomycota, Order: Saprolegniales, Family: Thraustochytriaceae) [ITIS Catalog of Life, 2010] selected for their mixotrophic character and having a high yield of polyunsaturated fatty acids, in particular DHA, and carotenoids, especially astaxanthin, and especially for their capacity to be cultivated with a light input of greater than 10 ⁇ l, in a medium rich in organic elements, for example modified Verduyn medium (marine salts 15 g / L, (NH 4 ) 2 SO 4 3 g / L, KH 2 PO 4 1 g / L, MgSO 4 -7H 2 O, 0.5 g / L, Na 2 EDTA 24 mg / L, ZnSO 4 -7H 2 O 3 mg / L, MnCl 2 -2H 2 O
  • strain is meant not only natural strains of the genus Schizochytrium, but also mutants of said natural strains.
  • a representative strain of the Schizochytrium strains according to the invention is the strain FCC 1104 isolated by the applicant and deposited at the CCAP under the number CCAP 4087/1.
  • Such strains are capable of producing significant amounts of biomass as well as lipids and carotenoids, and more particularly DHA and astaxanthin when they are cultivated in mixotrophic mode with a variable or discontinuous light supply, according to the invention. .
  • strain CCAP 4087/1 belongs to the genus Schizochytrium.
  • the invention relates to any strain of the Labyrinthulomycete class, in particular of the genus Schizochytrium, capable of growing under mixotrophic culture conditions as described in the present application, and capable of producing fatty acids, such as DHA, and / or carotenoids, such as astaxanthin.
  • the invention also relates to any species of protist of the genus Schizochytrium, capable of growing under conditions of mixotrophic culture as described in the present application, and capable of producing fatty acids, such as DHA, and carotenoids, such as astaxanthin.
  • the isolated Schizochytrium strains according to the invention make it possible to produce, under the conditions of mixotrophy, significant quantities of biomass, as well as lipids and carotenoids, the lipids being rich in DHA.
  • the said DHA may represent more than 40%, or more than 50%, or more than 60% of the total lipids contained in the protists, the carotenoids being astaxanthin-rich, and said astaxanthin may be greater than 0.1%, or more than 0.15%, or more than 0.2% by weight on the total weight of dry matter.
  • the strains may reach a level of productivity (amount of product of interest produced, per liter of culture, per hour) of 0.015 mg / L / h, or more than 0.020 mg / L / h, or more than 0.025 mg / L / h.
  • strains of Schizochytrium for example, strain FCC 1104, isolated by the applicant
  • strain FCC 1104 which are cultivated under mixotrophic conditions in the presence of a variable and / or discontinuous illumination, in particular in the form of flashes
  • no astaxanthin is detectable.
  • amounts of biomass obtained in the mixotrophic mode according to some embodiments of the invention are equal to or even higher (for example, approximately 10-18%) than the quantities obtained under heterotrophic conditions.
  • heterotrophic conditions is meant culture conditions with an identical culture medium, but in the absence of light.
  • the subject of the invention is thus a process for the cultivation of stem protists of the Labyrinthulomycete class, in particular Thraustochytrid families, in particular of the genus Schizochytrium, in particular of the species Schizochytrium sp. as deposited, in mixotrophic mode, in the presence of a variable or discontinuous illumination over time, for example in the form of flashes, in particular to produce polyunsaturated fatty acids and carotenoids, such as DHA and astaxanthin .
  • the subject of the invention is thus a process for the selection of protist strains of the Labyrinthulomycete class, in particular of the Thraustochytrid and Labyrinthulide families, in particular of the genus Schizochytrium, in particular of the species Schizochytrium sp. as deposited, of a mixotrophic character, and having a high yield of polyunsaturated fatty acids and carotenoids, such as DHA and astaxanthin, in the presence of a variable and / or discontinuous illumination over time.
  • the periods of darkness may occupy more than a quarter of the time, preferably half or more of the time, during which the algae are grown.
  • the illumination is discontinuous and more preferably in the form of flashes.
  • a flash within the meaning of the invention, is a short period of illumination, that is to say less than 30 minutes.
  • the duration may be less than 15 minutes, preferably less than 5 minutes or more preferably less than 1 minute.
  • the flash duration may be less than one second.
  • the flash duration can be 1/10 of a second, or 2/10 of a second, or 3/10 of a second, or 4/10 of a second or 5 / 10 of a second, or 6/10 of a second, or 7/10 of a second, or 8/10 of a second, or 9/10 of a second.
  • the illuminance, or flash is usually longer than 15 seconds. It is generally between 5 seconds and 10 minutes, preferably between 10 seconds and 2 minutes, more preferably between 20 seconds and 1 minute.
  • F frequency
  • T time period
  • the number of flashes per hour is chosen according to the intensity and duration of the flashes (see below). In general, the intensity of the light brought in the form of flashes is between 5 and 1000 ⁇ . m "2 , s " 1 , preferably between 5 and 500 pmol. m "2 , s " 1 , or 50 and 400 ⁇ .
  • m “2 , s “ 1 , and more preferably between 150 and 300 ⁇ . m “2 , s “ 1 . 1 pmol. m “2 , s “ 1 corresponds to 1 ⁇ m “2 , s “ 1 (Einstein), a unit often used in the literature.
  • the intensity of the light is between 50 and 200 pmol.
  • m “2 , s " 1 , the time period of the flash frequency is between 10 seconds and 60 minutes for a flash duration of between 1 second and 1 minute.
  • the illumination may be variable, which means that the illumination is not interrupted by dark phases, but that the light intensity varies over time. This variation in light intensity is regular and can be periodic or cyclic. According to the invention, it is also possible to carry out a light supply combining continuous and discontinuous illumination phases.
  • the light intensity provided to the algae in culture varies at least one times in one hour.
  • the amplitude of this variation light intensity is generally between 5 and 1000, or between 50 and 800, or between 100 and 600 ⁇ . m “2 , s " 1 .
  • the intensity of the light can also vary between 5 and 400 pmol. m “2 , s " 1 .
  • the magnitude of the light intensity variation is between 70 and 300 pmol. m “2 , s " 1 and more preferably between 100 and 200 pmol. m “2 , s “ 1 .
  • Said luminous intensity can successively reach, under conditions of variable illumination, for example, the values 50 ⁇ . m “2 , s “ 1 and 100 ⁇ . m “2 s “ 1 , or 5 and 400 ⁇ . m “2 s “ 1 , or 50 and 800 pmol. m “2 , s “ 1 several times each hour.
  • Said luminous intensity can successively reach, preferably, the values 50 and 200 pmol. m “2 , s " 1 .
  • said luminous intensity can successively, several times in the hour, for example, the values 0 and 50 pmol. m “2 , s “ 1 , the values 0 and 100 ⁇ .
  • the intensity of the light brought to the culture varies according to the cell density.
  • the denser the culture the more intense the light.
  • the cell density is the number of cells per ml and is measured according to the techniques known to those skilled in the art.
  • the light intensity can be between 5 and 15 ⁇ . m “2 , s “ 1 , preferably between 5 and 10 pmol. m “2 , s " 1 .
  • the light intensity can be increased to between 15 and 200 pmol. m “2 , s “ 1 , for example, preferably between 20 and 50 pmol. m “2 , s " 1 .
  • the culture, at the final stage reaches a density between 10 7 and 10 8 cells per ml, the light intensity can be increased to between 50 and 700 pmol.
  • the intensity of the light may be greater compared to the values mentioned above.
  • the light intensity may be between 5 and 200 pmol. m “2 , s “ 1 , preferably between 5 and 100 pmol. m “2 , s " 1 .
  • the light intensity can be increased to between 30 and 500 pmol. m “2 , s “ 1 , for example, preferably between 50 and 400 pmol. m “2 , s " 1 .
  • the culture, at the final stage reaches a density between 10 7 and 10 8 cells per ml
  • the light intensity can be increased to between 100 and 1000 pmol. m “2 , s “ 1 for example, preferably between 200 and 500 pmol. m “2 , s " 1 .
  • the quantity of light brought to the culture in the hour remains between certain values. It is between about 2000 and 600 000, preferably between 2000 and 300 000 pmol. m "2. It can be between about 4000 and 200 000 pmol. m" 2 per hour.
  • the culture is illuminated with 30 flashes per hour, each flash having a duration of 30 seconds and an intensity of 10 pmol. m “2 , s 1. This gives a total light input per hour of 9000 ⁇ . m " 2 .
  • the culture is illuminated with 20 flashes per hour, each flash having a duration of 30 seconds and an intensity of 20 M mol. m “2 , s 1. This gives a total light output per hour of 12,000 Mmol.m -2 .
  • the culture is illuminated with 45 flashes per hour, each flash having a duration of 15 seconds and an intensity of 5 pmol. m “2 , s " 1 , which gives a total light input per hour of 3375 pmol. m "2 .
  • the culture is illuminated with 120 flashes per hour, each flash having a duration of 10 seconds and an intensity of 200 pmol. m “2 , s " 1 , which gives a total light input per hour of 240,000 pmol. m “2 .
  • the amount of light brought to the crop per hour can vary according to the cell density.
  • the total light supply in the hour is generally between about 1500 and 8000, preferably 1500 and 6000 pmol. m "2 , more preferably between 2000 and 5000 ⁇ ⁇ ⁇ . m " 2 .
  • the total light supply in the hour can be increased to between 6000 and 67 000 ⁇ . m '2 , preferably between 6000 and 50,000 and more preferably between 12,000 and 45,000 pmol. m "2, for example.
  • the total contribution of light in time can be increased to between 45 000 and 300 000, for example, preferably between 45,000 and 200,000 ⁇ m- 2 , and for example, more preferably between 50000 and 150000 pmol. m "2 .
  • the culture is illuminated with 30 flashes per hour, each flash having a duration of 30 seconds and a intensity between 5 and 10 pmol. m “2 , s " 1 , which gives a total light input per hour of 2250 pmol. m “2 to 4500 ⁇ . m " 2 .
  • the intermediate stage at the intermediate stage (at a cell density between 10 6 and 10 7 cells per ml), the culture is illuminated with 30 flashes per hour, each flash having a duration of 30 seconds and an intensity between 15 and 50 pmol.
  • m “2 , s " 1 which gives a total light input per hour of 13,500 to 45,000 ⁇ . m "2.
  • the culture is irradiated with 30 flashes per hour, each flash having a duration of 30 seconds and an intensity between 50 and 150 pmol m -2 , s -1 , giving a total light output per hour of 45,000 to 135,000 pmol m -2 .
  • the duration of the flashes is for example less than one minute, or less than one second
  • the culture is illuminated with 30 flashes per hour, each flash having a duration of 10 seconds and an intensity between 50 and 100 ⁇ ⁇ ⁇ . m “2 , s " 1 , which gives a total light input per hour of 15,000 ⁇ . m “2 to 30,000 ⁇ . m “ 2 .
  • the culture is illuminated with 50 flashes per hour, each flash having a duration of 10 seconds and an intensity between 200 and 300 pmol. m “2 , s " 1 , which gives a total light input per hour of 100,000 to 150,000 pmol. m "2.
  • the culture is illuminated with 120 flashes per hour, each flash having a duration of 10 seconds and an intensity between 350 and 450 ⁇ m- 2 , s -1 , which gives a total light output per hour of 420,000 to 540,000 pmol m- 2 .
  • the contribution of light in the cultures can be obtained by lamps distributed around the external wall of the fermenters.
  • a clock triggers these lamps for defined lighting times.
  • Fermentors are preferably located in an enclosure away from daylight, which can control the ambient temperature.
  • the culture method according to the invention thus makes it possible to select strains of the class Labyrinthulomycete, in particular Thraustochytrid families, in particular of the Schizochytrium genus, of a mixotrophic nature, similar to that isolated by the applicant and deposited at the CCAP under the number CCAP 4087/1, and having a high yield of polyunsaturated fatty acids and carotenoids.
  • This culture method is characterized in that it comprises the following steps:
  • recovery step is meant more particularly the isolation of the strain or strains whose cell number has grown the most during said generations.
  • various strains of the Labyrinthulomycete class in particular the Thraustochytrid family, in particular of the genus Schizochytrium, can be cultured, in parallel, on microplates in the same chamber, with precise monitoring of the conditions and conditions. evolution of different cultures. It is thus easy to know the response of the different strains to the discontinuous and / or variable illumination and, where appropriate, the addition of one or more organic carbon substrates in the culture medium.
  • Strains that respond favorably to discontinuous and / or variable illumination and organic carbon substrates generally provide better yield for carotenoid and lipid production qualitatively (polyunsaturated fatty acids more abundant in the lipid profile and more abundant astaxanthin among the carotenoids) and quantitative (the lipids contain a higher proportion of DHA and the dry matter has a higher proportion of astaxanthin).
  • the protists can be selected in a fermentor from a heterogeneous population and the preferred variants of which are to be selected by the selection method according to the invention, combining discontinuous and / or variable light, having a range of light intensity and a specific frequency, with mixotrophic culture conditions.
  • the culture is practiced by keeping the protists in cultures over many generations, then an isolation of the components that have become the majority in the culture medium is carried out at the end of the culture.
  • the culture method according to the invention also makes it possible to produce lipids and carotenoids.
  • the method according to the invention also comprises the following steps:
  • the hydrophobic material in fact comprises lipids and carotenoids.
  • the culture method according to the invention can also be applied to any species of the genus Schizochytrium, capable of growing under the mixotrophic conditions according to the invention, and capable of producing DHA and astaxanthin.
  • the culture method according to the invention makes it possible to optimize the production of the biomass obtained from the culture. It also makes it possible to enrich the protists thus cultivated with polyunsaturated fatty acids and carotenoids, more particularly docosahexaenoic acid (DHA) and astaxanthin.
  • DHA docosahexaenoic acid
  • the invention therefore also aims to optimize the production of biomass, as well as the production of lipids and carotenoids, in particular fatty acids, via the cultivation of Schistochytrium protists of a mixotrophic nature, preferably cultivated or selected according to the methods referred to above, then the recovery of the protists thus cultivated to extract the hydrophobic content, especially lipids including DHA, and carotenoids, including astaxanthin.
  • the invention also relates to stem protists of the class
  • Labyrinthulomycete in particular of the family Labyrinthulide and Thraustochytride, in particular of the genus Schizochytrium, capable of being obtained according to the method of the invention as previously described.
  • These protists are enriched in polyunsaturated fatty acids and carotenoids.
  • the total lipids of such protists generally comprise more than 40%, or more than 50%, or more than 60% DHA based on the total percentage of lipids.
  • the astaxanthin contained by such protists, according to a mode of the invention can represent more than more than 0.1%, or more than 0.15%, or more than 0.2% by weight on the total weight of dry matter.
  • the protists according to one embodiment of the invention can thus have a productivity (quantity of product of interest produced, per liter of culture, per hour) of astaxantin of 0.015 mg / L / h, or more than 0.020 mg / L / h, or more than 0.025 mg / L / h.
  • productivity quantitative of product of interest produced, per liter of culture, per hour
  • Schizochytrium cultures are carried out in fermentors (bioreactors) from 1 to 2L useful with dedicated automata and supervision by computer station.
  • the system is regulated in pH via addition of base (2N sodium hydroxide solution) and / or acid (1N sulfuric acid solution).
  • the culture temperature is set at 26 ° C.
  • Stirring is carried out by means of 3 stirring wheels placed on the shaft according to the Rushton configuration (three-blade propellers with downward pumping).
  • the dissolved oxygen pressure is regulated in the medium throughout the culture, by the stirring speed (250-600 rpm), the air flow (0.25-1 wm), or even the flow rate. oxygen (0.1-0.5 wm).
  • the control parameters, integrated in the supervisory automaton, make it possible to maintain a constant p0 2 at 15%.
  • the bioreactor is equipped with an external lighting system surrounding the transparent tank. The intensity as well as the light cycles are controlled by a dedicated automaton supervised by a computer station.
  • the reactors are inoculated with a pretreatment performed on a stirring table (140 rpm) in a thermostatically controlled enclosure (26 ° C.) and illuminated between 100 and 200 ⁇ .
  • the pre-cultures and cultures in bioreactors are carried out in the modified Verduyn medium (marine salts 15 g / L, (NH 4 ) 2 SO 4 3 g / L, KH 2 PO 4 1 g / L, MgSO 4 -7H 2 O, 0.5 g / L, Na 2 EDTA 24 mg / L, ZnSO 4 -7H 2 0 3 mg / L, MnCl 2 -2H 2 0 3 mg / L, Na 2 MoO 4 -2H 2 0 0.04 mg / L, FeS04-7H 2 0 10mg / L, pantothenate 3.2 mg / L Thiamine hydrochloride 9,5mg / L Vitamin B12 0.15 mg / L).
  • the total biomass concentration is monitored by measuring the dry mass (filtration on GF / F filter, Whatman, then drying in an oven, 105 ° C, for 24 hours minimum before weighing).
  • carotenoids including astaxanthin 10 8 cells / mL were extracted.
  • the methods of extraction and analysis of carotenoids, including astaxanthin, are known to those skilled in the art.
  • the crop is illuminated with 30 flashes per hour, each flash having a duration of 30 seconds and an intensity of 80 pmol. m “2 , s " 1 .
  • the light input into the bioreactor cultures was obtained by LED lamps (Electro Luminescent Diodes) distributed around the outer wall of the fermenter.
  • a clock triggers these LEDs for times of illumination orinstalles (for the cultivation in flash mixotrophy with discontinuous light).

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Abstract

L'invention se rapporte à de nouvelles souches de protistes appartenant au genre Schizochytrium permettant une production à haut rendement de lipides et de caroténoïdes, notamment d'acide docosahexaénoïque (DHA) et d'astaxanthine, en mode mixotrophe, ainsi qu'à un procédé de sélection et de culture de telles souches, utilisant un apport de lumière variable et/ou discontinu, notamment sous forme de flashs.

Description

Production d'acide docosahexaénoïque et d'astaxanthine en mode mixotrophe par Schizochytrium
L'invention se rapporte à un procédé de culture en mode mixotrophe, notamment en présence d'un éclairement discontinu et/ou variable de lumière, d'un protiste de la classe Labyrinthulomycete, en particulier du genre Schizochytrium. Le procédé permet d'obtenir un haut rendement en biomasse et un enrichissement des protistes ainsi cultivés en lipides et en caroténoïdes et plus particulièrement en acide docosahexaénoïque (DHA) et en astaxanthine. Le procédé permet ainsi de sélectionner des souches de Schizochytrium à caractère mixotrophe, et ayant un haut rendement en lipides et/ou caroténoïdes, et plus particulièrement en acides gras polyinsaturés et en astaxanthine. L'invention se rapporte aussi à une nouvelle souche de protiste appartenant au genre Schizochytrium, particulièrement adaptée à la production de lipides et de caroténoïdes. Cette nouvelle souche de Schizochytrium est utile pour produire de l'acide docosahexaénoïque (DHA) et de l'astaxanthine en mode mixotrophe. Préambule
Les protistes sont des microorganismes à organisation cellulaire simple, c'est-à-dire qu'ils sont généralement unicellulaires et parfois multicellulaires mais sans présenter de tissus spécialisés. Ils peuvent être autotrophes ou hétérotrophes.
Les protistes font l'objet actuellement de nombreux projets industriels car certaines espèces sont capables d'accumuler ou de sécréter des quantités importantes de lipides, notamment d'acides gras polyinsaturés.
Schizochytrium est un protiste de la famille des Thraustochytriaceae, un groupe très répandu de champignon marin. Les Thraustochytrides sont connus pour produire une large gamme de lipides, en particulier des acides gras polyinsaturés, et quelques espèces sont connues pour produire des caroténoïdes.
Parmi les acides gras polyinsaturés, certains acides gras hautement insaturés (AGHI) de la série des oméga-3 (PUFA-u)3), en particulier l'acide éicosapentaénoïque (EPA ou C20:5 ω3) et l'acide docosahexaénoïque (DHA ou C22:6 ω3), et de la série des oméga-6 (PUFA-u)6), en particulier, l'acide arachidonique (ARA ou AA ou encore acide eicosatétraénoïque C20:4 ω6) ont une importance nutritionnelle reconnue et présentent de fortes potentialités en terme d'applications thérapeutiques.
Considéré comme nutriment essentiel, le DHA est nécessaire au développement normal et fonctionnel des cellules, et joue un rôle crucial dans divers processus et fonctions biochimiques. Sa nature polyinsaturée lui confère une importance cruciale vis-à-vis des propriétés de la membrane cellulaire, chez les végétaux comme chez les animaux : fluidité, flexibilité et perméabilité sélective permettant par exemple une adaptation effective, et même la survie, aux basses températures, en particulier chez les poissons.
Le DHA est un constituant structurel majeur du cerveau humain et il en est le principal acide gras. Le DHA représente 15-20 % du cortex cérébral (le cerveau d'un adulte contient au moins 20 g de DHA) et 30-60 % de la rétine. Il est indispensable au développement du système nerveux central et à la fonction rétinienne, par incorporation dans les membranes cellulaires, et joue un rôle capital dans l'acquisition et le maintien satisfaisant des mécanismes de la vision et de la mémoire.
Les huiles de poissons, issues de l'industrie de la pêche, sont actuellement la principale source commerciale de ce type d'acides gras. Toutefois, alors que ces huiles trouvent de nouvelles applications (complément alimentaire en aquaculture, intégration dans les margarines), les ressources halieutiques marines se raréfient du fait d'une activité de pêche intensive.
De nouvelles sources de ces acides gras tels que ΙΈΡΑ, le DHA et
TARA doivent donc être recherchées afin de répondre, dans le futur, à la demande croissante du marché pour ce type d'acides gras polyinsaturés. Outre leur capacité à synthétiser les acides gras de novo, les protistes offrent plusieurs avantages par rapport aux huiles de poisson : ils sont cultivables in vitro dans des conditions contrôlées, ce qui permet la production d'une biomasse de composition biochimique relativement constante et, d'autre part, contrairement aux huiles de poissons, ils ne présentent pas d'odeur désagréable et leurs lipides ne contiennent pas ou peu de cholestérol.
Enfin, les lipides produits par les protistes ont un profil d'acides gras plus simple que celui des huiles de poissons, ce qui limite les étapes de séparation des acides gras d'intérêt.
Par ailleurs, les caroténoïdes sont également des molécules d'intérêt. Ils sont généralement utilisés en tant que pigments, mais ils ont aussi un rôle important pour la santé de l'homme en tant qu'agents antioxydants. Enfin, ils présentent la capacité de stimuler le système immunitaire.
Pour mettre en œuvre la production des acides gras et de caroténoïdes par des protistes à l'échelle industrielle, plusieurs facteurs doivent être pris en compte. Par exemple, les cultures peuvent être réalisées en condition autotrophe, mixotrophe ou hétérotrophe selon la souche, la température, les conditions de lumière et la taille des fermenteurs. Par exemple, les cultures peuvent également être réalisées dans des conteneurs d'un litre, dans un laboratoire, dans des photobioréacteurs, et dans des conteneurs de 100 000 litres ou bien dans des bassins ouverts (plusieurs hectares). Toutefois, les dépenses énergétiques et autres ressources telles que la main d'oeuvre et la facilité de poursuivre la culture doivent être prises en compte en développant des conditions de culture idéales.
En tout état de cause, il est souhaitable que les protistes soient cultivés dans les conditions optimales pour augmenter le rendement de(s) l'acide(s) gras et du ou des caroténoïde(s) à produire. Ainsi, il est préférable d'avoir un rendement le plus élevé possible (par exemple une biomasse au- delà de 80 g/l de matière sèche, plus de 25 % d'acides gras en poids par rapport au poids total de la matière sèche, et par exemple plus de 0,2 % en poids de caroténoïdes sur le poids total de matière sèche).
L'effet de la lumière sur la croissance n'est pas réservé uniquement aux organismes photosynthétiques (plantes ; cyanobactérie, microalgues et macroalgues). Certains organismes non chlorophylliens possèdent des photorécepteurs qui leur permettent de capter les signaux lumineux essentiels pour leur développement. Les photorécepteurs comme le phytochrome représentent un exemple typique d'un capteur de lumière qui contrôle le développement de l'organisme qui le possède. Différents photorécepteurs ont été décrits à ce jour, à savoir, entre autres, les pigments accessoires, les cryptochromes et phototropines.
Schizochytrium est connue pour produire du DHA en mode hétérotrophe ainsi que de l'astaxanthine, lorsqu'il est cultivé en hétérotrophie, en présence d'une lumière fluorescente continue [R. Poontawe, et al. (2008) ; Optimization of DHA and astaxanthin production by Schizochytrium sp. isolated from mangrove forests in Thailand. JSPS-NRCT core university program on development of thermotolerant microbial resources and their applications, pp. 134-135].
Toutefois, dans la perspective d'une exploitation industrielle, un tel mode de culture s'avère inadapté. En effet, pour être rentable, la production de biomasse doit pouvoir être réalisée dans des photo-bioréacteurs fermés de grande dimension. Or, un tel mode de culture est difficile à réaliser, car lorsque la densité des cellules augmente dans le milieu de culture, les cellules ont de plus en plus de difficulté à capter la lumière provenant de l'extérieur du réacteur. Il est alors nécessaire de brasser activement le milieu de culture, ce qui nécessite une importante dépense énergétique.
Il serait souhaitable de pouvoir obtenir des rendements en DHA et astaxanthine plus importants que ce qui est décrit dans l'art antérieur pour une exploitation industrielle plus efficace et rentable.
Pour améliorer le rendement en DHA et en astaxanthine, une alternative à la culture au mode de culture décrit ci-avant serait de pratiquer les cultures en mode mixotrophe, c'est-à-dire avec un apport de lumière de moindre intensité et en présence d'un apport de substrat organique.
Il est entendu que le terme mixotrophe est usuellement employé à l'égard de souches présentant un chloroplaste, capable de se développer en présence de lumière en utilisant deux sources de carbone (organique et inorganique). Dans le cas des souches du genre Schizochytrium, un tel chloroplaste n'a pas été identifié. Toutefois, la souche étant à la fois hétérotrophe et réactive à la lumière, le terme mixotrophe sera élargi au sens de l'invention à cette catégorie de souche.
Ainsi, c'est au terme de nombreuses expérimentations dans des conditions de lumière inhabituelles et par l'adjonction de différents substrats que le demandeur est parvenu à isoler des souches de protiste de l'espèce Schizochytrium, cultivables en mode mixotrophe permettant, dans les conditions de la présente invention, une production à haut rendement d'acides gras polyinsaturés et de caroténoïdes, notamment de DHA et d'astaxanthine.
Une souche (FCC 1104) représentative des nouvelles souches de
Schizochytrium ainsi isolées et sélectionnées, a été déposée auprès de la
CCAP (Culture Collection of Algae and Protozoa, Scottish Association for Marine Science, Dunstaffnage Marine Laboratory, Oban, Argyll PA371QA,
Ecosse, Royaume-Uni) selon les dispositions du Traité de Budapest, sous le numéro d'accession CCAP 4087/1.
Le procédé de culture et de sélection a consisté plus particulièrement à cultiver les protistes en conditions de mixotrophie, en présence d'un éclairement variable et/ou discontinu, notamment sous forme de flashs, avec une gamme de variations d'intensité lumineuse et une fréquence spécifique.
L'alternance rapprochée de phases éclairées et de phases obscures ou de moindre intensité lumineuse, perçue généralement comme stressante par les protistes, a permis, de façon surprenante, d'obtenir des souches de
Schizochytrium une production élevée de biomasse, de lipides et plus particulièrement d'acides gras polyinsaturés et de caroténoïdes. Cette mise en œuvre des souches selon l'invention ouvre la perspective d'une production industrielle d'acides gras polyinsaturés, en particulier de DHA, et de caroténoïdes, en particulier d'astaxanthine, dans des fermenteurs bénéficiant d'un apport lumineux réduit, et devrait donc permettre de réaliser des économies d'énergie par rapport aux modes de culture précédemment décrits.
Les différents aspects et avantages de l'invention sont détaillés ci- après. Description détaillée
La présente invention a donc pour objet un procédé de culture des protistes de la classe Labyrinthulomycete, notamment de la famille Thraustochytride, en particulier du genre Schizochytrium, en mode mixotrophe dans des conditions d'éclairement discontinu et/ou variable au cours du temps. L'éclairement présente des variations d'intensité dont l'amplitude est généralement comprise entre 5 prnol. m"2, s"1 et 1000 pmol. m"2, s"1, de préférence entre 30 et 400 pmol. m"2, s"1. Ces variations généralement peuvent avoir lieu entre 2 et 3600 fois par heure, de préférence entre 2 et 200 fois par heure. Ces conditions de culture permettent d'apporter une quantité définie de lumière. Cet apport lumineux peut comporter des phases d'éclairement discontinu et/ou variable, avec des variations d'intensité pouvant avoir des amplitudes identiques ou différentes. L'éclairement peut être notamment sous forme de flashs.
Ce procédé a pour avantage d'augmenter le rendement en biomasse obtenu de la culture. Il a aussi pour avantage d'enrichir les protistes ainsi cultivés en acides gras polyinsaturés, plus particulièrement en acide docosahexaénoïque (DHA), et en caroténoïdes, plus particulièrement en astaxanthine. Ce procédé peut être également utilisé pour sélectionner des souches de la classe Labyrinthulomycete, notamment des familles Thraustochytride et Labyrinthulide, en particulier du genre Schizochytrium, à caractère mixotrophe, et ayant un haut rendement en acides gras polyinsaturés, notamment en DHA, et en caroténoïdes, notamment en astaxanthine.
La culture en mode mixotrophe de ce protiste s'effectue préférentiellement en présence de 100 mM à 1 ,5 M, de préférence de 300 mM à 1 ,2 M, plus préférentiellement de 500 mM à 1 M, et encore plus préférentiellement de 600 mM à 900 mM d'un substrat carboné organique. L'apport du substrat est assuré continuellement pendant la culture, afin de permettre aux cellules d'accumuler une concentration importante de lipides et de caroténoïdes. Du substrat additionnel est ajouté au milieu de culture pendant le procédé de culture pour maintenir une concentration constante. Ce substrat carboné organique comprend préférentiellement, sous forme pure ou en mélange : du glucose, des dérivés de cellulose, du saccharose et/ou du glycérol.
Le substrat carboné organique contenu dans le milieu de culture peut consister en des molécules complexes ou en un mélange de substrats. Les produits issus de la biotransformation de l'amidon, par exemple à partir de maïs, de blé ou de pomme de terre, notamment les hydrolysats de l'amidon, qui sont constitués de molécules de petite taille, constituent, par exemple, des substrats carbonés organiques adaptés à la culture en mixotrophie des protistes selon l'invention.
Ce procédé est plus particulièrement destiné à la mise en œuvre de nouvelles souches de la classe Labyrinthulomycete, en particulier du genre Schizochytrium (Division: Myxomycota, Ordre : Saprolegniales, Famille: Thraustochytriaceae) [ITIS Catalogue of Life, 2010] sélectionnées pour leur caractère mixotrophe, et ayant un haut rendement en acides gras polyinsaturés, notamment en DHA, et en caroténoïdes, notamment en astaxanthine, et notamment pour leur capacité à être cultivées avec un apport lumineux supérieur à 10 μΕ, dans un milieu riche en éléments organiques, par exemple le milieu Verduyn modifié (sels marins 15 g/L, (NH4)2SO4 3g/L , KH2PO4 1 g/L, MgSO4-7H20 , 0,5 g/L, Na2EDTA 24 mg/L, ZnSO4-7H2O 3 mg/L, MnCI2-2H2O 3 mg/L, Na2MoO4-2H2O 0,04 mg/L, FeSO4-7H2O 10mg/L, pantothenate 3,2mg/L, Thiamine hydrochloride 9,5mg/L, Vitamine B12 0,15mg/l_, Antimousse 0,1 mL/L) dans lequel est ajouté un substrat carboné organique. De préférence, le substrat carboné organique comprend du glucose, du glycérol, dans une concentration équivalente ou supérieure à 300 mM.
Par « souche », on entend non seulement les souches naturelles du genre Schizochytrium, mais également les mutants desdites souches naturelles.
Ces nouvelles souches de Schizochytrium peuvent être isolées et sélectionnées selon le procédé de sélection et de culture selon l'invention décrit plus loin.
Une souche représentative des souches de Schizochytrium selon l'invention est la souche FCC 1104 isolée par le demandeur et déposée à la CCAP sous le numéro CCAP 4087/1. De telles souches sont capables de produire des quantités significatives de biomasse ainsi que des lipides et des caroténoïdes, et plus particulièrement du DHA et de l'astaxanthine quand elles sont cultivées en mode mixotrophe avec un apport en lumière variable ou discontinu, selon l'invention.
Selon les analyses taxonomiques en cours, la souche CCAP 4087/1 appartient au genre Schizochytrium. L'invention porte sur toute souche de la classe Labyrinthulomycete, en particulier du genre Schizochytrium, capable de croître en conditions de culture mixotrophe telles que décrites dans la présente demande, et capable de produire des acides gras, tels que le DHA, et/ou des caroténoïdes, tels que l'astaxanthine. L'invention porte aussi sur toute espèce de protiste du genre Schizochytrium, capable de croître en conditions de culture mixotrophe telle que décrite dans la présente demande, et capable de produire des acides gras, tels que le DHA, et des caroténoïdes, tels que l'astaxanthine.
Les souches de Schizochytrium isolées selon l'invention permettent de produire, en condition de mixotrophie, des quantités significatives de biomasse, ainsi que de lipides et de caroténoïdes, les lipides étant riches en DHA. Ledit DHA peut représenter plus de 40 %, ou plus de 50 %, ou plus de 60 % des lipides totaux contenus dans les protistes, les caroténoïdes étant riches en astaxanthine, et ladite astaxanthine peut représenter plus de 0,1 %, ou plus de 0,15 %, ou plus de 0,2 % en poids sur le poids total de matière sèche.. Les souches peuvent atteindre un niveau de productivité (quantité de produit d'intérêt produit, par litre de culture, par heure) de 0,015 mg/L/h, ou plus de 0,020mg/L/h, ou plus de 0,025 mg/L/h.
Dans la présente invention, les souches de Schizochytrium (par exemple, la souche FCC 1104, isolée par le demandeur) qui sont cultivées en conditions mixotrophes en présence d'un éclairement variable et/ou discontinu, notamment sous forme de flashs, permettent de produire de l'astaxanthine. Par contre, en conditions d'hétérotrophie, aucune astaxanthine n'est détectable. De plus, des quantités de biomasse obtenues en mode mixotrophe selon certains mode de réalisation de l'invention sont égales ou même supérieures (par exemple, approximativement 10-18%) aux quantitiés obtenues en conditions d'hétérotrophie. Par, conditions d'hétérotrophie on entend des conditions de culture avec un milieu de culture identique, mais en l'absence de lumière.
L'invention a ainsi pour objet un procédé de culture de protistes souches de la classe Labyrinthulomycete, notamment des familles Thraustochytride, en particulier du genre Schizochytrium, notamment de l'espèce Schizochytrium sp. telle que déposée, en mode mixotrophe, en présence d'un éclairement variable ou discontinu au cours du temps, par exemple sous forme de flashs, notamment en vue de produire des acides gras polyinsaturés et des caroténoïdes, tels que le DHA et l'astaxanthine.
L'invention a ainsi pour objet un procédé de sélection des protistes souches de la classe Labyrinthulomycete, notamment des familles Thraustochytride et Labyrinthulide, en particulier, du genre Schizochytrium, notamment de l'espèce Schizochytrium sp. telle que déposée, à caractère mixotrophe, et ayant un haut rendement en acides gras polyinsaturés et en caroténoïdes, tels que le DHA et l'astaxanthine, en présence d'un éclairement variable et/ou discontinu au cours du temps.
Il est apparu qu'un éclairement variable et/ou discontinu des cultures, en particulier dans la mise en œuvre d'une culture en mode mixotrophe, avait un impact favorable sur le développement des protistes et permettait d'accroître la productivité de ceux-ci, notamment en ce qui concerne leur production de lipides et de caroténoïdes. Sans être lié par la théorie, l'inventeur estime qu'un apport discontinu et/ou variable de lumière aux protistes a pour effet de provoquer un « stress » favorable à la croissance et à la synthèse des lipides, ainsi qu'à la synthèse des caroténoïdes. Ce phénomène pourrait s'expliquer, en partie, par le fait que dans la nature, les protistes ont tendance à accumuler des réserves lipidiques et en caroténoïdes pour résister aux contraintes de leur environnement.
Par éclairement discontinu, il faut entendre un éclairement ponctué par des périodes d'obscurité. Les périodes d'obscurité peuvent occuper plus d'un quart du temps, de préférence la moitié du temps ou plus, durant lequel les algues sont cultivées.
Selon un aspect préféré de l'invention, l'éclairement est discontinu et plus préférentiellement sous forme de flashs. Un flash, au sens de l'invention, est un éclairement lumineux de courte durée, c'est-à-dire de moins de 30 minutes. La durée peut être de moins de 15 minutes, de préférence de moins de 5 minutes ou plus préférentiellement encore de moins de 1 minute. Selon certains modes de réalisation de l'invention, la durée du flash peut être de moins d'une seconde. Par exemple, le durée du flash peut être de 1/10 d'une seconde, ou de 2/10 d'une seconde, ou de 3/10 d'une seconde, ou de 4/10 d'une seconde ou de 5/10 d'une seconde, ou de 6/10 d'une seconde, ou de 7/10 d'une seconde, ou de 8/10 d'une seconde, ou de 9/10 d'une seconde. L'éclairement lumineux, ou le flash, est généralement d'une durée supérieure à 15 secondes. Elle est généralement comprise entre 5 secondes et 10 minutes, de préférence entre 10 secondes et 2 minutes, plus préférentiellement entre 20 secondes et 1 minute.
En général, le nombre de flashs est compris entre environ 2 et 3600 par heure. Il peut être, par exemple, compris entre 100 et 3600 flashs par heure. Il peut être également compris entre 120 et 3000, ou entre 400 et 2500, ou entre 600 et 2000, ou entre 800 et 1500 flashs par heure. Il peut être également compris entre 2 et 200, préférentiellement entre 10 et 150, plus préférentiellement entre 15 et 100, et plus préférentiellement encore entre 20 et 50 par heure. Les flashs peuvent être émis à intervalle régulier ou non dans le temps. En cas d'émission à intervalle régulier, le nombre de flashs par heure correspond alors à une fréquence (F) ayant une période temporelle (T), étant considéré que F = 1 T. Cette période temporelle peut être comprise entre 1 seconde et 30 minutes, ou entre 1 seconde et 36 secondes, ou encore entre 1 ,2 seconde et 30 secondes, ou entre 1 ,44 seconde et 9 secondes, ou entre 1 ,8 seconde et 6 secondes, ou entre 2,4 secondes et 4,5 secondes. Cette fréquence peut être également comprise entre 18 secondes et 30 minutes, préférentiellement entre 24 secondes et 6 minutes, plus préférentiellement entre 36 secondes et 4 minutes, et plus préférentiellement encore entre 72 secondes et 3 minutes. Le nombre de flashs par heure est choisi en fonction de l'intensité et de la durée des flashs (voir ci-dessous). En général, l'intensité de la lumière apportée sous forme de flashs est entre 5 et 1000 μητιοΙ. m"2, s"1, de préférence entre 5 et 500 pmol. m"2, s"1, ou 50 et 400 μητιοΙ. m"2, s"1, et plus préférentiellement entre 150 et 300 μιτιοΙ. m"2, s"1. 1 pmol. m"2, s"1 correspond à 1 μΕ m"2, s"1 (Einstein), unité souvent utilisée dans la littérature.
Selon un mode particulier de l'invention, l'intensité de la lumière est comprise entre 50 et 200 pmol. m"2, s"1, la période temporelle de la fréquence des flashs est comprise entre 10 secondes et 60 minutes pour une durée de flash comprise entre 1 seconde et 1 minute.
Selon un autre mode de l'invention, l'éclairement peut être variable, ce qui signifie que l'éclairement n'est pas interrompu par des phases d'obscurité, mais que l'intensité lumineuse varie au cours du temps. Cette variation de l'intensité de lumière est régulière et peut être périodique ou cyclique. Selon l'invention, on peut aussi procéder à un apport lumineux alliant des phases d'éclairement continues et discontinues.
Selon l'invention, quelles que soient les conditions d'éclairement, l'intensité lumineuse apportée aux algues en culture, exprimée en micromoles de photons par seconde par mètre carré (μητιοΙ. m"2, s"1), varie au moins une fois dans une même heure. L'amplitude de cette variation d'intensité de lumière est généralement comprise entre 5 et 1000, ou entre 50 et 800, ou entre 100 et 600 μιτιοΙ. m"2, s"1. L'intensité de la lumière peut également varier entre 5 et 400 pmol. m"2, s"1. De préférence, l'amplitude de la variation d'intensité de lumière est entre 70 et 300 pmol. m"2, s"1 et plus préférentiellement entre 100 et 200 pmol. m"2, s"1.
Ladite intensité lumineuse peut atteindre successivement, en conditions d'éclairement variable, par exemple, les valeurs 50 μητιοΙ. m"2, s"1 et 100 μιτιοΙ. m"2s"1, ou 5 et 400 μητιοΙ. m"2 s"1, ou 50 et 800 pmol. m"2, s"1 plusieurs fois chaque heure. Ladite intensité lumineuse peut atteindre successivement, de préférence, les valeurs 50 et 200 pmol. m"2, s"1. Alternativement, en conditions d'éclairement discontinu, ladite intensité lumineuse peut atteindre successivement, plusieurs fois dans l'heure, par exemple, les valeurs 0 et 50 pmol. m"2, s"1, les valeurs 0 et 100 μητιοΙ. m"2, s"1 ou préférentiellement encore les valeurs 0 et 200 μιηοΙ. m"2, s"1. Elle peut également atteindre successivement, plusieurs fois dans l'heure, par exemple, les valeurs 0 et 300 μηηοΙ. m"2, s"1, les valeurs 0 et 600 μιτιοΙ. m"2, s"1, les valeurs 0 et 800 pmol. m"2, s"1 ou encore les valeurs 0 et 1000 μητιοΙ. m"2, s"1.
Selon un mode de l'invention et quelles que soient les conditions d'éclairement, l'intensité de la lumière apportée à la culture varie en fonction de la densité cellulaire. Plus la culture devient dense, plus la lumière peut être intense. La densité cellulaire est le nombre de cellule par ml et est mesurée selon les techniques connues de l'homme de l'art.
Au stade initial de la culture quand la densité cellulaire est entre environ 105 et 5 x 105 cellules par ml, l'intensité lumineuse peut être entre 5 et 15 μητιοΙ. m"2, s"1, de préférence, entre 5 et 10 pmol. m"2, s"1. Quand la culture atteint une densité entre 106 et 107 cellules par ml, l'intensité lumineuse peut être augmentée jusqu'à entre 15 et 200 pmol. m"2, s"1, par exemple, de préférence, entre 20 et 50 pmol. m"2, s"1. Quand la culture, au stade final, atteint une densité entre 107 et 108 cellules par ml, l'intensité lumineuse peut être augmentée jusqu'à entre 50 et 700 pmol. m"2, s"1, par exemple, de préférence, entre 50 et 150 pmol. m"2, s"1. Selon certains modes de réalisation, par exemple, quand la durée des flashs est par exemple de moins d'une minute, ou moins d'une seconde, l'intensité de la lumière peut être plus importante par rapport aux valeurs citées ci-dessus. Au stade initial de la culture, quand la densité cellulaire est entre environ 105 et 5 x 105 cellules par ml, l'intensité lumineuse peut être entre 5 et 200 pmol. m"2, s"1, de préférence, entre 5 et 100 pmol. m"2, s"1. Quand la culture atteint une densité entre 106 et 107 cellules par ml, l'intensité lumineuse peut être augmentée jusqu'à entre 30 et 500 pmol. m"2, s"1, par exemple, de préférence, entre 50 et 400 pmol. m"2, s"1. Quand la culture, au stade final, atteint une densité entre 107 et 108 cellules par ml, l'intensité lumineuse peut être augmentée jusqu'à entre 100 et 1000 pmol. m"2, s"1 par exemple, de préférence, entre 200 et 500 pmol. m"2, s"1.
Selon un mode de l'invention, la quantité de lumière apportée à la culture dans l'heure reste entre certaines valeurs. Elle est comprise entre environ 2000 et 600 000, de préférence entre 2000 et 300 000 pmol. m"2. Elle peut être comprise entre environ 4000 et 200 000 pmol. m"2, par heure.
Selon un mode de l'invention, la culture est illuminée avec 30 flashs par heure, chaque flash ayant une durée de 30 secondes et une intensité de 10 pmol. m"2, s 1. Ce dernier donne un apport total de lumière par heure de 9000 μητιοΙ. m"2. Selon un autre mode de l'invention, la culture est illuminée avec 20 flashs par heure, chaque flash ayant une durée de 30 secondes et une intensité de 20 Mmol. m"2, s 1. Ce dernier donne un apport total de lumière par heure de 12 000 Mmol. m"2. Selon un autre mode de l'invention, la culture est illuminée avec 45 flashs par heure, chaque flash ayant une durée de 15 secondes et une intensité de 5 pmol. m"2, s"1, ce qui donne un apport total de lumière par heure de 3375 pmol. m"2.
Selon un autre mode de l'invention, la culture est illuminée avec 120 flashs par heure, chaque flash ayant une durée de 10 secondes et une intensité de 200 pmol. m"2, s"1, ce qui donne un apport total de lumière par heure de 240 000 pmol. m"2.
Comme décrit pour l'intensité lumineuse ci-dessus, et selon un mode de l'invention, la quantité de lumière apportée à la culture par heure peut varier en fonction de la densité cellulaire. Au stade initial de la culture quand la densité cellulaire est 105 et 5 x 105 cellules par ml, l'apport total de lumière dans l'heure est généralement compris entre environ 1500 et 8000, de préférence 1500 et 6000 pmol. m"2, de préférence encore entre 2000 et 5000 μιηοΙ. m"2. Quand la culture atteint une densité entre 106 et 107 cellules par ml, l'apport total de lumière dans l'heure peut être augmenté jusqu'à entre 6000 et 67 000 μιτιοΙ. m'2, de préférence, entre 6000 et 50 000 et de préférence encore entre 12 000 et 45 000 pmol. m"2, par exemple. Au stade final de la culture, à une densité cellulaire entre 107 et 108 cellules par ml, l'apport total de lumière dans l'heure peut être augmenté jusqu'à entre 45000 et 300 000, par exemple de préférence entre 45 000 et 200 000 μιηοΙ. m"2, et par exemple, de préférence encore, entre 50000 et 150000 pmol. m"2.
Selon un mode de l'invention au stade initial de la culture (à une densité cellulaire entre 105 et 5 x105 cellules par ml), la culture est illuminée avec 30 flashs par heure, chaque flash ayant une durée de 30 secondes et une intensité entre 5 et 10 pmol. m"2, s"1, ce qui donne un apport total de lumière par heure de 2250 pmol. m"2 à 4500 μηιοΙ. m"2. Puis, au stade intermédiaire (à une densité cellulaire entre 106 et 107 cellules par ml), la culture est illuminée avec 30 flashs par heure, chaque flash ayant une durée de 30 secondes et une intensité entre 15 et 50 pmol. m"2, s"1, ce qui donne un apport total de lumière par heure de 13 500 à 45 000 μιτιοΙ. m"2. Puis, au stade final de la culture (à une densité cellulaire entre 107 et 108 cellules par ml), la culture est illuminée avec 30 flashs par heure, chaque flash ayant une durée de 30 secondes et une intensité entre 50 et 150 pmol. m"2, s"1, ce qui donne un apport total de lumière par heure de 45 000 à 135 000 pmol. m"2.
Selon un mode de l'invention, par exemple, quand la durée des flashs est par exemple de moins d'une minute, ou de moins d'une seconde, au stade initial de la culture (à une densité cellulaire entre 105 et 5 x 105 cellules par ml), la culture est illuminée avec 30 flashs par heure, chaque flash ayant une durée de 10 secondes et une intensité entre 50 et 100 μηηοΙ. m"2, s"1, ce qui donne un apport total de lumière par heure de 15 000 μιτιοΙ. m"2 à 30 000 μιηοΙ. m"2. Puis au stade intermédiaire (à une densité cellulaire entre 106 et 107 cellules par ml), la culture est illuminée avec 50 flashs par heure, chaque flash ayant une durée de 10 secondes et une intensité entre 200 et 300 pmol. m"2, s"1, ce qui donne un apport total de lumière par heure de 100 000 à 150 000 pmol. m"2. Puis, au stade final de la culture (à une densité cellulaire entre 107 et 108 cellules par ml), la culture est illuminée avec 120 flashs par heure, chaque flash ayant une durée de 10 secondes et une intensité entre 350 et 450 μητιοΙ. m"2, s"1, ce qui donne un apport total de lumière par heure de 420 000 à 540 000 pmol. m"2.
L'apport de lumière dans les cultures peut être obtenu par des lampes réparties autour de la paroi externe des fermenteurs. Une horloge déclenche ces lampes pour des temps d'éclairement définis. Les fermenteurs se situent préférentiellement dans une enceinte à l'abri de la lumière du jour, dont on peut contrôler la température ambiante.
Ainsi qu'a pu le constater le déposant, le fait que les souches ainsi sélectionnées présentent de bonnes aptitudes à croître en mode mixotrophe, en présence d'une lumière discontinue et/ou variable, prédispose lesdites souches à une production plus élevée d'acides gras polyinsaturés et en caroténoïdes, notamment de DHA et d'astaxanthine.
Le procédé de culture selon l'invention permet ainsi de sélectionner des souches de la classe Labyrinthulomycete, notamment des familles Thraustochytride, en particulier du genre Schizochytrium, à caractère mixotrophe, similaire à celle isolée par le demandeur et déposée à la CCAP sous le numéro CCAP 4087/1 , et ayant un haut rendement en acides gras polyinsaturés et en caroténoïdes. Ce procédé de culture est caractérisé en ce qu'il comprend des étapes suivantes :
a) la culture en mode mixotrophe d'une ou plusieurs souches souches de la classe Labyrinthulomycete, en particulier, du genre Schizochytrium dans des conditions d'éclairement discontinu et/ou variable au cours du temps, l'éclairement présentant des variations d'intensité dont l'amplitude est comprise entre 5 μιηοΙ. m"2, s"1 et 1000, de préférence entre 5 et 400 pmol. m"2, s"1, ces variations ayant lieu entre 2 et 3600, de préférence 5-400 fois par heure, b) une étape de maintien de ladite culture sur plusieurs générations, en présence d'un substrat carboné organique dans le milieu de culture, et éventuellement
c) une étape de récupération des protistes ainsi cultivés.
Par étape de récupération, on entend plus particulièrement l'isolement de la ou des souches dont le nombre de cellules s'est accru le plus au cours desdites générations.
Pour réaliser la sélection des souches, différentes souches de la classe Labyrinthulomycete, notamment la famille Thraustochytride, en particulier, du genre Schizochytrium, peuvent être cultivées, en parallèle, sur des microplaques dans une même enceinte, avec un suivi précis des conditions et de l'évolution des différentes cultures. Il est ainsi aisé de connaître la réponse des différentes souches à l'éclairement discontinu et/ou variable et, le cas échéant, à l'adjonction d'un ou plusieurs substrats carbonés organiques dans le milieu de culture. Les souches qui répondent favorablement à l'éclairement discontinu et/ou variable et aux substrats carbonés organiques offrent généralement un meilleur rendement pour la production de caroténoïdes et de lipides sur le plan qualitatif (acides gras polyinsaturés plus abondants dans le profil lipidique et astaxanthine plus abondant parmi les caroténoïdes) et quantitatif (les lipides contiennent une proportion plus élevée de DHA et la matière sèche comporte une proportion plus élevée d'astaxanthine).
Les protistes peuvent être sélectionnés dans un fermenteur à partir d'une population hétérogène et dont on cherche à sélectionner les variants avantagés par le mode de sélection selon l'invention, alliant lumière discontinue et/ou variable, présentant une gamme d'intensité lumineuse et une fréquence spécifiques, avec des conditions de culture mixotrophes. Dans ce cas, la culture est pratiquée en maintenant les protistes en cultures sur de nombreuses générations, puis un isolement des composantes devenues majoritaires dans le milieu de culture est effectué au terme de la culture. Le procédé de culture selon l'invention permet également de produire des lipides et des caroténoïdes.
Dans ce cas, le procédé selon l'invention comporte en outre les étapes suivantes :
d) une étape de récupération de la matière hydrophobe des protistes, et éventuellement
e) l'extraction du DHA (acide docosahexaénoïque) et de l'astanxanthine de la matière hydrophobe récupérée.
La matière hydrophobe comporte en effet les lipides et les caroténoïdes.
Le procédé de culture selon l'invention peut s'appliquer également à toute espèce du genre Schizochytrium, capable de croître dans les conditions mixotrophes selon l'invention, et capable de produire du DHA et de l'astaxanthine.
Le procédé de culture selon l'invention permet d'optimiser la production de la biomasse obtenue de la culture. Il permet également d'enrichir les protistes ainsi cultivés en acides gras polyinsaturés et en caroténoïdes, plus particulièrement en acide docosahexaénoïque (DHA) et en astaxanthine.
L'invention a donc également pour but l'optimisation de la production de biomasse, ainsi que la production de lipides et de caroténoïdes, notamment d'acides gras, via la culture de protistes du genre Schizochytrium à caractère mixotrophe, de préférence cultivés ou sélectionnés selon les procédés visés précédemment, puis la récupération des protistes ainsi cultivés pour en extraire le contenu hydrophobe, en particulier les lipides dont le DHA, et les caroténoïdes, dont l'astaxanthine.
Les méthodes d'extraction sélective des lipides, dont le DHA, sont connues de l'homme du métier et sont, par exemple, décrites par [Bligh, E.G. et Dyer, W.J. (1959); A rapid method of total lipid extraction and purification, Can. J. Biochem. Physiol., 37:911-917].
Les méthodes d'extraction et d'analyse des caroténoïdes, dont la lutéine, sont connues de l'homme du métier et sont, par exemple, décrites par Wright et al. (1991) (S.W. Wright, S.W. Jeffrey, R.F.C. Mantoura, C.A. Llewellyn, T. Bjornland, D. Répéta, N. Welschmeyer : Improved HPLC method for the analysis of chlorophylle and carotenoids from marine phytoplankton. Marine ecology progress séries : Vol. 77 : 183-196, 1991).
L'invention porte également sur les protistes souches de la classe
Labyrinthulomycete, notamment de la famille Labyrinthulide et Thraustochytride, en particulier, du genre Schizochytrium, susceptibles d'être obtenus selon le procédé de l'invention tel que précédemment décrit. Ces protistes sont enrichis en acides gras polyinsaturés et en caroténoïdes. Les lipides totaux de tels protistes comprennent généralement plus de 40%, ou plus de 50%, ou plus de 60 % de DHA par rapport au pourcentage total de lipides. L'astaxanthine contenue par de tels protistes, selon une mode de l'invention, peut représenter plus de plus de 0,1%, ou plus de 0,15 %, ou plus de 0,2 % en poids sur le poids total de matière sèche. Les protistes selon une mode de réalisation de l'invention peuvent avoir ainsi une productivité (quantité de produit d'intérêt produit, par litre de culture, par heure) d'astaxantine de 0,015 mg/L/h, ou plus de 0,020mg/L/h, ou plus de 0,025 mg/L/h. Exemple 1
Les cultures de Schizochytrium sont réalisées dans des fermenteurs (bioréacteurs) de 1 à 2L utiles avec automates dédiés et supervision par station informatique. Le système est régulé en pH via l'ajout de base (solution d'hydroxyde de sodium à 2N) et/ou d'acide (solution d'acide sulfurique à 1 N). La température de culture est fixée à 26°C. L'agitation est réalisée grâce à 3 mobiles d'agitation placés sur l'arbre selon la configuration de Rushton (hélices tripales à pompage descendant). La pression d'oxygène dissout est régulée dans le milieu tout au long de la culture, par la vitesse d'agitation (250-600 rpm), le débit d'air (0,25- 1 wm), voire le débit d'oxygène (0,1-0,5 wm). Les paramètres de régulation, intégrés dans l'automate de supervision, permettent de maintenir une p02 constante à 15%. Le bioréacteur est équipé d'un système luminaire externe entourant la cuve transparente. L'intensité ainsi que les cycles de lumière sont contrôlés par un automate dédié et supervisé par station informatique.
Les réacteurs sont inoculés avec une pré-culture réalisée sur table d'agitation (140 rpm) en enceinte thermostatée (26°C) et éclairée entre 100 et 200 μΕ. Les pré-cultures et cultures en bioréacteurs sont réalisées dans le milieu Verduyn modifié (sels marins 15 g/L, (NH4)2S04 3g/L , KH2P04 1 g/L, MgSO4-7H20 , 0,5 g/L, Na2EDTA 24 mg/L, ZnS04-7H20 3 mg/L, MnCI2-2H20 3 mg/L, Na2Mo04-2H20 0,04 mg/L, FeS04-7H20 10mg/L, pantothenate 3,2 mg/L, Thiamine hydrochloride 9,5mg/L, Vitamine B12 0,15mg/L). Le substrat carboné utilisé pour la culture en mixotrophie classique, en hétérotrophie et en mixotrophie flash (lumière variable/discontinue) en bioréacteur est du glucose à des concentrations entre 300 mM et 1 M. Suivi des cultures :
La concentration en biomasse totale est suivie par mesure de la masse sèche (filtration sur filtre GF/F, Whatman, puis séchage en étuve, 105°C, pendant 24h minimum avant pesée).
Concernant la quantification des lipides totaux, 108 cellules/mL ont été extraites. Les méthodes d'extraction des lipides sont connues de l'homme du métier.
Pour la quantification des caroténoïdes et notamment l'astaxanthine 108 cellules/mL ont été extraites. Les méthodes d'extraction et d'analyse des caroténoïdes, dont l'astaxanthine, sont connues de l'homme du métier.
Eclairement (pour la culture en mixotrophie) :
La culture est illuminée avec 30 flashs par heure, chaque flash ayant une durée de 30 secondes et une intensité de 80 pmol. m"2, s"1.
L'apport de lumière dans les cultures en bioréacteur a été obtenu par des lampes LED (Diodes Electro Luminescentes) réparties autour de la paroi externe du fermenteur. Une horloge déclenche ces LED pour des temps d'éclairement ou des puises (pour la culture en mixotrophie flash avec lumière discontinue).
Résultats (n=3) :
Figure imgf000021_0001

Claims

REVENDICATIONS
1. Procédé comprenant l'étape suivante :
a) la culture en mode mixotrophe d'une ou plusieurs souches du genre Schizochytrium dans des conditions d'éclairement discontinu et/ou variable au cours du temps, l'éclairement présentant des variations d'intensité dont l'amplitude est comprise entre 5 pmol. m"2, s"1 et 1000 pmol. m"2, s"1, ces variations ayant lieu entre 2 et 3600 fois par heure.
2. Procédé selon la revendication 1 , caractérisé en ce que l'éclairement présente des variations d'intensité dont l'amplitude est comprise entre 5 μητιοΙ. m"2, s"1 et 400 pmol. m"2, ces variations ayant lieu entre 2 et 200 fois par heure.
3. Procédé selon la revendication 1 ou 2, caractérisé en ce que la culture s'effectue en présence d'un substrat carboné organique à une concentration de 100 mM à 1 ,5 M, de préférence de 300 mM à 1 ,2 M, plus préférentiellement de 500 mM à 1 M, et encore plus préférentiellement de 600 mM à 900 mM, le substrat carboné organique étant choisi parmi le saccharose, le glycérol, le glucose et les dérivés de cellulose et un mélange de ces molécules.
4. Procédé selon la revendication 3, caractérisé en ce que ledit substrat carboné organique présent dans le milieu de culture comprend au moins 300 mM de glucose et/ou glycérol.
5. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1-4, caractérisé en ce que l'amplitude des variations d'intensité est comprise entre 5 et 1000 pmol. m"2, s"1, de préférence entre 70 et 300 pmol. m"2, s"1, et plus préférentiellement entre 100 et 200 pmol. m"2, s"1.
6. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, caractérisé en ce que l'apport de lumière s'effectue sous forme de flashs.
7. Procédé selon la revendication 6, caractérisé en ce qu'un flash a une durée comprise entre 1/10 seconde et 10 minutes, de préférence 5 secondes et 10 minutes, de préférence encore entre 10 secondes et 2 minutes, plus préférentiellement entre 20 secondes et 1 minute.
8. Procédé selon la revendication 6 ou la revendication 7, caractérisé en ce que le nombre de flashs est entre 5 et 3600, de préférence entre 10 et 150, préférentiellement entre 15 et 100, et plus préférentiellement entre 20 et 50 fois par heure.
9. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, caractérisé en ce que l'apport total de lumière par heure en micromoles de photons est entre 2000 à 600 000, de préférence entre 2000 à 200 000 μιτιοΙ. m"2.
10. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 9, caractérisé en ce qu'il comprend en outre les étapes suivantes :
b) une étape de maintien de ladite culture sur plusieurs générations en présence d'un substrat carboné organique dans le milieu de culture, et éventuellement
c) une étape de récupération des protistes ainsi cultivés, et éventuellement
d) une étape de récupération de la matière hydrophobe, et éventuellement
e) l'extraction du DHA (acide docoahexaénoïque) et de l'astaxanthine de la matière hydrophobe récupérée.
11. rocédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 10, caractérisé en ce que ledit protiste du genre Schizochytrium correspond à la souche FCC 1104, déposée auprès de la CCAP (Culture Collection of Algae and Protozoa), sous le numéro CCAP 4087/1.
12. Protiste du genre Schizochytrium susceptible d'être obtenu par le procédé de l'une quelconque des revendications 1 à 11.
13. Protiste du genre Schizochytrium, selon la revendication 12, caractérisé en ce que ses lipides totaux comprennent plus de 40%, ou plus de 50%, ou plus de 60 % de DHA par rapport au % total de lipides et qu'il comporte plus de 0,1%, ou plus de 0,15 %, ou plus de 0,2 % en poids d'astaxanthine sur le poids total de matière sèche.
14. Protiste du genre Schizochytrium, selon la revendication 12 ou 13, ayant une productivité de 0,015 mg/L/h, ou plus de 0,020mg/L/h, ou plus de
0,025 mg/L/h.
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