WO2013024527A1 - アルカンの製造方法及びアルカン合成能を有する組換え微生物 - Google Patents

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森昌昭
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    • C12P5/02—Preparation of hydrocarbons or halogenated hydrocarbons acyclic
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
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    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
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    • C12N15/80—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for fungi
    • C12N15/81—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for fungi for yeasts
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    • C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/0004—Oxidoreductases (1.)
    • C12N9/0071—Oxidoreductases (1.) acting on paired donors with incorporation of molecular oxygen (1.14)
    • C12N9/0077—Oxidoreductases (1.) acting on paired donors with incorporation of molecular oxygen (1.14) with a reduced iron-sulfur protein as one donor (1.14.15)
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    • C12N9/0004—Oxidoreductases (1.)
    • C12N9/0095—Oxidoreductases (1.) acting on iron-sulfur proteins as donor (1.18)

Definitions

  • the present invention relates to a method for producing alkane that can be used for, for example, biodiesel fuel and a recombinant microorganism having an alkane synthesis ability.
  • Patent Document 1 discloses an attempt to synthesize alkanes using recombinant Escherichia coli into which an alkane synthase gene derived from cyanobacteria and an acyl CoA reductase gene have been introduced.
  • Patent Document 2 discloses a microalgae (Pseudochoricystis ellipsoidea) that can produce hydrocarbons having 10 to 25 carbon atoms.
  • Patent Document 3 discloses a technique for synthesizing an alkane using a yeast having fatty acid aldehyde decarbonylase activity that catalyzes the conversion of an aldehyde into an alkane.
  • Non-Patent Document 1 discloses a method of synthesizing alkane from aldehyde using enzyme P450.
  • Patent Document 4 discloses that ⁇ , ⁇ are obtained by culturing recombinant Escherichia coli expressing CYP153-alkane-1-monooxygenase gene, ferredoxin gene and ferredoxin reductase gene in a medium containing alkane or alkanemonool. A method for biosynthesizing alkanediols is disclosed.
  • an object of the present invention is to provide an alkane production method and a recombinant microorganism excellent in alkane productivity in a reaction system for synthesizing alkane by alkane synthase activity.
  • the present invention includes the following.
  • the efficiency of alkane synthesis in the reaction system for synthesizing alkane with alkane synthase that is, the productivity of alkane can be improved. That is, the method for producing alkane according to the present invention can produce alkane with very excellent production efficiency, and can contribute to a reduction in production cost of alkane.
  • the recombinant microorganism according to the present invention is very useful for alkane production because it has an excellent ability to synthesize alkanes compared to a conventional microorganism having an ability to synthesize alkanes.
  • Efdr-pCOLA It is a figure which shows typically the structure of Efdr-pCOLA. It is a figure which shows typically the structure of EfdxEfdr-pCOLA. It is a characteristic figure which shows the synthetic amount of alkane (Tridecane) in the various transformants produced in the experiment example.
  • Tridecane alkane
  • the present invention improves alkane productivity by allowing ferredoxin to be present in a system in which alkane is synthesized by an alkane synthase.
  • the system for synthesizing alkane with alkane synthase in-vivo systems such as microorganisms having alkane synthesizing ability and recombinant microorganisms with alkane synthesizing ability, in reaction liquid containing substrate by alkane synthase It is meant to include introvitro systems that synthesize alkanes.
  • alkane productivity is improved in the presence of ferredoxin as compared to the absence of ferredoxin.
  • ferredoxin NADPH reductase (sometimes referred to as ferredoxin NADP + reductase) in addition to ferredoxin can further significantly improve alkane productivity. That is, the presence of ferredoxin and ferredoxin NADPH reductase in a system that synthesizes alkane with an alkane synthase improves alkane productivity significantly more than when ferredoxin is present alone.
  • Ferredoxin is an iron-sulfur protein containing iron-sulfur clusters (Fe-S clusters) inside and functions as an electron carrier.
  • Fe-S clusters iron-sulfur clusters
  • a gene encoding ferredoxin may be introduced into a microorganism having alkane synthesis ability or a recombinant microorganism having alkane synthesis ability.
  • the ferredoxin gene is not particularly limited, and any organism-derived gene may be used.
  • the gene can be isolated according to a standard method.
  • a ferredoxin gene derived from a predetermined organism may be fully synthesized based on the specified base sequence, or a primer is designed based on the specified base sequence, and PCR using the primer is performed using the predetermined organism genome as a template.
  • the ferredoxin gene can also be isolated by
  • the ferredoxin gene when a ferredoxin gene is introduced into a microorganism having alkane synthesizing ability or a recombinant microorganism imparted with alkane synthesizing ability, the ferredoxin gene is preferably a gene derived from the microorganism.
  • a ferredoxin gene derived from a yeast may be introduced into a recombinant yeast that has acquired alkane synthesis ability by introducing an alkane synthesis-related gene into a predetermined yeast.
  • ferredoxin gene derived from S. cerevisiae for a recombinant yeast (recombinant S. cerevisiae) that has acquired alkane synthesis ability.
  • the ferredoxin gene derived from S. cerevisiae is known as the YAH1 gene (or Yfdx gene).
  • the base sequence of the ferredoxin gene derived from S. cercerevisiae and the amino acid sequence of ferredoxin encoded by the gene are shown in SEQ ID NOs: 1 and 2, respectively.
  • the ferredoxin gene is not limited to the one encoding the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2, but more than 70% identity, preferably more than 80% identity to the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2, It may be a gene encoding a protein that consists of an amino acid sequence having preferably 90% or more identity, more preferably 95% identity, and most preferably 98% or more identity, and functions as ferredoxin.
  • the identity value can be calculated by a BLASTN or BLASTX program that implements the BLAST algorithm (default setting). The identity value is calculated as a ratio of the number of residues in all amino acid residues compared by calculating the amino acid residues that completely match when a pair of amino acid sequences are subjected to pairwise alignment analysis.
  • the ferredoxin gene is not limited to the one encoding the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2, but 1-20 amino acids, preferably 1-15 amino acids, relative to the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2, More preferably, it may be a gene encoding a protein that functions as a ferredoxin, comprising an amino acid sequence in which 1 to 10 amino acids, more preferably 1 to 5 amino acids are deleted, substituted, added or inserted.
  • the ferredoxin gene is not limited to the one consisting of the base acid sequence shown in SEQ ID NO: 1, but under stringent conditions with respect to all or part of the complementary strand of DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: It may be one that encodes a protein that hybridizes with and functions as ferredoxin.
  • stringent conditions means the conditions under which a so-called specific hybrid is formed and a non-specific hybrid is not formed, and is appropriately determined with reference to, for example, Molecular Cloning: A Laboratory Manual (Third Edition) can do.
  • the stringency can be set according to the temperature at the time of Southern hybridization and the salt concentration contained in the solution, and the temperature at the time of the washing step of Southern hybridization and the salt concentration contained in the solution.
  • a method for manufacturing is not particularly limited, and a conventionally known method can be appropriately used.
  • site-directed mutagenesis methods can be used to replace a given base.
  • T. ⁇ Kunkel's site-directed mutagenesis method Kunkel, T. A. Proc. Nati. Acad. Sci. U. S. A. 82, 488-492 (1985)
  • Gapped duplex method Gapped duplex method
  • mutagenesis kit for example, Mutan-K (Takara Shuzo) or Mutan-G (Takara Shuzo)
  • site-directed mutagenesis or LA PCR in (Takara Shuzo) Mutations can also be introduced using in vitro Mutagenesis series kits.
  • ferredoxin when ferredoxin is present in an in vitro system that synthesizes alkane in a reaction solution containing a substrate by an alkane synthase, ferredoxin, which is a product of the ferredoxin gene described above, is used.
  • Ferredoxin as a protein can be obtained by a conventionally known method.
  • the ferredoxin that can be used may be in an unpurified state, in a crudely purified state, or in a purified state.
  • Ferredoxin NADPH reductase is an enzyme that catalyzes a redox reaction between ferredoxin and NADPH.
  • ferredoxin NADPH reductase is an enzyme that catalyzes a redox reaction between ferredoxin and NADPH.
  • ferredoxin-encoding genes and ferredoxin in microorganisms having alkane synthesizing ability or recombinant microorganisms having alkane synthesizing ability A gene encoding NADPH reductase may be introduced.
  • the ferredoxin NADPH reductase gene is not particularly limited, and any organism-derived gene may be used. For example, by referring to a database that stores genetic information such as the DDBJ / EMBL / GenBank international nucleotide sequence database, it is possible to specify the nucleotide sequence of ferredoxin NADPH reductase gene derived from various species and the amino acid sequence of ferredoxin NADPH reductase it can.
  • the gene can be isolated according to a standard method.
  • a ferredoxin NADPH reductase gene derived from a predetermined organism may be fully synthesized based on the specified base sequence, or a primer is designed based on the specified base sequence, and the primer is used using the predetermined organism genome as a template.
  • the ferredoxin NADPH reductase gene can also be isolated by PCR.
  • the ferredoxin NADPH reductase gene is preferably a gene derived from the microorganism.
  • the ferredoxin NADPH reductase gene is more preferably a gene derived from the same organism as the ferredoxin gene to be introduced.
  • a ferredoxin gene and a ferredoxin NADPH reductase gene derived from the yeast may be introduced into a recombinant yeast that has acquired alkane synthesis ability by introducing an alkane synthesis-related gene into a predetermined yeast.
  • ferredoxin gene derived from S. cerevisiae and a ferredoxin NADPH reductase gene derived from S. cerevisiae for a recombinant yeast (recombinant S. cerevisiae) that has acquired alkane synthesis ability.
  • the ferredoxin NADPH reductase gene derived from S. cerevisiae is known as the ARH1 gene (or Yfdr gene).
  • the nucleotide sequence of the ferredoxin NADPH reductase gene derived from S. cerevisiae and the amino acid sequence of ferredoxin NADPH reductase encoded by the gene are shown in SEQ ID NOs: 3 and 4, respectively.
  • the ferredoxin NADPH reductase gene is not limited to the one encoding the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 4, and is 70% or more identical to the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 4, preferably 80% or more. More preferably, it may be a gene encoding a protein consisting of an amino acid sequence having 90% or more identity, more preferably 95% identity, most preferably 98% or more identity and functioning as ferredoxin NADPH reductase.
  • the identity value can be calculated by a BLASTN or BLASTX program that implements the BLAST algorithm (default setting). The identity value is calculated as a ratio of the number of residues in all amino acid residues compared by calculating the amino acid residues that completely match when a pair of amino acid sequences are subjected to pairwise alignment analysis.
  • ferredoxin NADPH reductase gene is not limited to the one encoding the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 4, and is 1 to 50 amino acids, preferably 1 to 40 amino acids relative to the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 4. It may be a gene encoding a protein that consists of an amino acid sequence in which amino acids, more preferably 1 to 30 amino acids, and even more preferably 1 to 20 amino acids are deleted, substituted, added, or inserted, and functions as ferredoxin NADPH reductase.
  • ferredoxin NADPH reductase gene is not limited to the one consisting of the base acid sequence shown in SEQ ID NO: 3, but is stringent to all or part of the complementary strand of DNA consisting of the base sequence shown in SEQ ID NO: 3. It may encode a protein that hybridizes under conditions and functions as ferredoxin NADPH reductase.
  • stringent conditions means the conditions under which a so-called specific hybrid is formed and a non-specific hybrid is not formed, and is appropriately determined with reference to, for example, Molecular Cloning: A Laboratory Manual (Third Edition) can do.
  • the stringency can be set according to the temperature at the time of Southern hybridization and the salt concentration contained in the solution, and the temperature at the time of the washing step of Southern hybridization and the salt concentration contained in the solution.
  • a method for manufacturing is not particularly limited, and a conventionally known method can be appropriately used.
  • site-directed mutagenesis methods can be used to replace a given base.
  • T. ⁇ Kunkel's site-directed mutagenesis method Kunkel, T. A. Proc. Nati. Acad. Sci. U. S. A. 82, 488-492 (1985)
  • Gapped duplex method Gapped duplex method
  • mutagenesis kit for example, Mutan-K (Takara Shuzo) or Mutan-G (Takara Shuzo)
  • site-directed mutagenesis or LA PCR in (Takara Shuzo) Mutations can also be introduced using in vitro Mutagenesis series kits.
  • ferredoxin and ferredoxin NADPH reductase are present in an in vitro system that synthesizes alkane in a reaction solution containing a substrate with alkane synthase
  • ferredoxin NADPH reductase which is a product of the ferredoxin NADPH reductase gene described above
  • Ferredoxin NADPH reductase as a protein can be obtained by a conventionally known technique.
  • Usable ferredoxin NADPH reductase may be in an unpurified state, in a crudely purified state, or in a purified state.
  • the microorganism into which the ferredoxin gene or the ferredoxin NADPH reductase gene described above is introduced is a microorganism having an alkane synthesis ability or a recombinant microorganism imparted with an alkane synthesis ability.
  • microorganisms capable of synthesizing alkane include Synechococcus elongatus PCC7942, S. elongatus PCC6301, Synechocystis sp. PCC6803, Prochlorococcus marinus CCMP1986, Examples include Anabaena variabilis ATCC29413, Nostoc punctiforme PCC73102, Gloeobacter violaceus PCC7421, Nostoc sp. PCC7120, Cyanothece sp. PCC7425 and Cyanothece sp. ATCC51142 (Reference: Science 30 July 2010. Vol. -562).
  • examples of the recombinant microorganism imparted with alkane synthesizing ability include recombinant microorganisms into which an alkane synthase gene isolated from the above-described microorganism having alkane synthesizing ability is introduced.
  • the alkane synthase gene the alkS gene isolated from Nostoc sp. ATCC27347 (PCC7120), Science 30 July 2010. Vol. 329, No. 5991, pp. 559-562 and the genes described in WO 2009/140695 Can be used.
  • Nostoc punctiforme PCC73102 Synechococcus elongates PCC7942, Synechocystis sp. PCC6803, Cyanothece sp. ATCC51142, Acaryochlloris marina MBIC11017, Gleobacter violaceus PCC7421 MIT can do.
  • yeast examples include yeast. Although it does not specifically limit as yeast, Pichia genus yeasts, such as Pichia stipitis, Saccharomyces genus yeasts, such as Saccharomyces cerevisiae, Candida genus yeasts, such as Candida tropicalicalis and Candida prapsilosis, etc. can be mentioned. Of these, Saccharomyces cerevisiae is preferably used as the microorganism into which the alkane synthase gene is introduced. As an example, it is preferable to introduce a alkS gene derived from Nostoc sp. ATCC27347 into Saccharomyces cerevisiae and use recombinant Saccharomyces cerevisiae having an alkane synthesis ability.
  • Pichia genus yeasts such as Pichia stipitis
  • Saccharomyces genus yeasts such as Saccharomyces cerevisiae
  • Candida genus yeasts such as Candida tropicalicalis and Candida prap
  • a recombinant microorganism that can be used in the present invention can be produced by introducing the ferredoxin gene described above into a host microorganism genome, such as a yeast genome.
  • a host microorganism genome such as a yeast genome
  • a recombinant microorganism that can be used in the present invention such as a recombinant yeast can be produced. it can.
  • a DNA fragment containing a ferredoxin gene or a ferredoxin NADPH reductase gene is ligated with an expression vector that functions in a host microorganism, preferably a multicopy-type vector, to produce a recombinant DNA, which is introduced into the microorganism and transformed. do it.
  • the expression vector that can be used is not particularly limited, and examples thereof include a plasmid type vector and a chromosomal transfer type vector that can be integrated into the genome of the host organism.
  • the expression vector is not particularly limited, and any available expression vector may be appropriately selected according to the host microorganism. Examples of expression vectors include plasmid DNA, bacteriophage DNA, retrotransposon DNA, artificial chromosome DNA (YAC).
  • plasmid DNA for example, YCp type E. coli-yeast shuttle vector such as pRS413, pRS414, pRS415, pRS416, YCp50, pAUR112 or pAUR123, YEp type E. coli-yeast shuttle vector such as pYES2 or YEp13, pRS403, pRS404, pRS405, pRS406, YIp type E. coli-yeast shuttle vectors such as pAUR101 or pAUR135, plasmids derived from E.
  • YCp type E. coli-yeast shuttle vector such as pRS413, pRS414, pRS415, pRS416, YCp50, pAUR112 or pAUR123
  • YEp type E. coli-yeast shuttle vector such as pYES2 or YEp13, pRS403, pRS404, pRS405,
  • coli pBR322, pBR325, pUC18, pUC19, pUC118, pUC119, pTV118N, pTV119N, pBluescript, pHSG298, pHSG396 or pTrc99A, ColE-based plasmids, pACYC177 or pACYC184 P15A-type plasmids such as pMW118, pMW119, pMW101 or pMW219-type plasmids), Agrobacterium-derived plasmids (eg pBI101 etc.), Bacillus subtilis-derived plasmids (eg pUB110, pTP5 etc.), etc.
  • Agrobacterium-derived plasmids eg pBI101 etc.
  • Bacillus subtilis-derived plasmids eg pUB110, pTP5 etc.
  • phage DNA examples include ⁇ phage (Charon4A, Charon21A, EMBL3, EMBL4, ⁇ gt10, ⁇ gt11, ⁇ ZAP), ⁇ X174, M13mp18 or M13mp19. It is.
  • retrotransposons examples include Ty factor.
  • YAC vectors include pYACC2.
  • animal viruses such as retrovirus or vaccinia virus, and insect virus vectors such as baculovirus can also be used.
  • the ferredoxin gene and the ferredoxin NADPH reductase gene must be incorporated into the vector in a state where they can be expressed.
  • the expression possible state is a vector in which the ferredoxin gene or ferredoxin NADPH reductase gene and promoter are linked so that the ferredoxin gene or ferredoxin NADPH reductase gene is expressed under the control of a predetermined promoter in the host organism into which the ferredoxin gene or ferredoxin NADPH reductase gene is introduced.
  • the expression vector should be linked to promoters and terminators, cis elements such as enhancers, splicing signals, poly A addition signals, selectable markers, and ribosome binding sequences (SD sequences). Can do. Examples of selection markers include antibiotic resistance genes such as ampicillin resistance gene, kanamycin resistance gene, and hygromycin resistance gene.
  • transformation method using an expression vector a conventionally known method can be appropriately used.
  • transformation methods include calcium chloride method, competent cell method, protoplast or spheroplast method, and electric pulse method.
  • the ferredoxin gene and the ferredoxin NADPH reductase gene may be introduced so that multiple copies exist on the chromosomal DNA of the microorganism.
  • a ferredoxin gene or a ferredoxin NADPH reductase gene in multiple copies on the chromosomal DNA of a microorganism it can be carried out by homologous recombination using a sequence present on the chromosomal DNA as a target.
  • the enhancement of the expression of the ferredoxin gene or ferredoxin NADPH reductase gene can be achieved by replacing the expression control sequence such as the endogenous or introduced ferredoxin gene or the promoter of the ferredoxin NADPH reductase gene with a more highly expressible gene, a predetermined gene It can also be achieved by a method of introducing a regulator that increases the expression of.
  • the promoter capable of high expression is not particularly limited, and examples thereof include lac promoter, trp promoter, trc promoter, pL promoter and the like.
  • alkanes can be produced in an in vivo system such as a microorganism having alkane synthesizing ability or a recombinant microorganism having alkane synthesizing ability, or in a reaction solution containing a substrate by alkane synthase.
  • Alkanes can be synthesized with excellent productivity by the in vitro system.
  • a system using a microorganism having alkane synthesizing ability or a recombinant microorganism having alkane synthesizing ability it can be cultured in a medium suitable for these microorganisms, and alkane can be produced in the medium. More specifically, according to the present invention, the alkane synthesizing ability of the alkane synthase can be improved, and as a result, the alkane productivity can be improved.
  • improving the alkane synthesizing ability means including improving the activity of the alkane synthase converting aldehyde to alkane. That is, in the alkane synthesis reaction using aldehyde as a substrate by alkane synthase, the reaction efficiency is improved by the presence of ferredoxin.
  • the AlkS protein encoded by the alkS gene isolated from Nostoc sp. ATCC27347 (PCC7120) described above exhibits activity of converting tetradecanol to tetradecane, but in the presence of ferredoxin, In comparison, a larger amount of tetradecane can be synthesized. At this time, if ferredoxin NADPH reductase is present in addition to ferredoxin, a larger amount of tetradecane can be synthesized.
  • alkane productivity can be improved also in this reaction system.
  • the alkane to be produced is not particularly limited.
  • the alkane having 9 to 16 carbon atoms, preferably 13 to 16 carbon atoms is used.
  • Such an alkane can be isolated from the above-described in-vivo or in-vitro reaction system according to a conventional method and then purified.
  • Example 1 In this example, alkane-producing ability was imparted, and a recombinant yeast into which a ferredoxin gene and / or a ferredoxin NADPH reductase gene was introduced was prepared, and the effects of ferredoxin and ferredoxin NADPH reductase on the alkane production performance were confirmed.
  • Pgap is a promoter of the Glyceraldehyde-3-Phosphate Dehydrogenase (gap) gene derived from Saccharomyces cerevisiae YPH499.
  • gap Glyceraldehyde-3-Phosphate Dehydrogenase
  • KOD-Plus-Ver.2 manufactured by Toyobo
  • the following pair of primers was designed to amplify a DNA fragment containing Pgap, and the reaction solution composition and reaction cycle conditions were as shown below.
  • the PCR product was purified using a MinElute PCR purification kit manufactured by QIAGEN and then digested with restriction enzymes BamHI and EcoRI. Agarose gel electrophoresis was performed, and a 0.7 kbp fragment was excised and purified using MinElute Gel extraction kit manufactured by QIAGEN. Ligation was performed with the pESC-HIS vector digested with restriction enzymes BamHI and EcoRI. The obtained sequence was sequenced to confirm that the target plasmid was prepared. The base sequence of Pgap is shown in SEQ ID NO: 7. The plasmid thus obtained was named pESCgap-HIS.
  • Pack which is the promoter of the Saccharomyces cerevisiae YPH499-derived phosphoglycerate kinase gene (pgk).
  • pgk Saccharomyces cerevisiae YPH499-derived phosphoglycerate kinase gene
  • the PCR product was purified using MinElute PCR purification kit manufactured by QIAGEN and then digested with restriction enzymes MunI and EcoRI. Agarose gel electrophoresis was performed, and a 0.7 kbp fragment was excised and purified using MinElute Gel extraction kit manufactured by QIAGEN.
  • the plasmid was digested with the restriction enzyme EcoRI and ligated to a BES-treated pESCgap-HIS vector. It was confirmed by colony PCR that the insert was ligated in the correct direction, and a plasmid was prepared. The sequence was sequenced and it was confirmed that the target plasmid was prepared.
  • the base sequence of Ppgk is shown in SEQ ID NO: 10.
  • the plasmid thus obtained was named pESCpgkgap-HIS.
  • pESCpgkgap-URA ⁇ Preparation of pESCpgkgap-URA>
  • the pESCpgkgap-HIS prepared above was digested with the restriction enzymes Bam HI and Not I, and the resulting 1.4 kbp insert fragment was ligated to the pESC-URA vector digested with the restriction enzymes Bam HI and Not I.
  • the obtained sequence was sequenced to confirm that the target plasmid was prepared.
  • the plasmid pESCpgkgap-URA thus obtained was named.
  • Plasmid pESCpgkgap-URA was digested with restriction enzymes BamHI and XhoI, and a fragment of about 7.4 kb was excised and purified with MinElute Gel extraction kit (manufactured by QIAGEN) to obtain a Vector portion.
  • the Insert part and the Vector part were ligated using Ligation-Convenience Kit (Nippon Gene) to transform Escherichia coli HST08 (Takara Bio). Colonies grown on an LB agar medium containing 50 ⁇ g / ml ampicillin were cultured in an LB liquid medium containing 50 ⁇ g / ml ampicillin to extract a plasmid. For extraction, QIAprep spin Miniprep Kit (manufactured by QIAGEN) was used. The obtained plasmid was sequenced to confirm that the sequence was correct and named pESCpgkgap-URA-alkS (FIG. 1). The base sequence of the alkS gene and the amino acid sequence of the AlkS protein encoded by the gene are shown in SEQ ID NOs: 13 and 14, respectively.
  • agarose gel electrophoresis was performed to cut out a fragment of about 0.5kb, MinElute Gel extraction kit (QIAGEN) To obtain the Insert part.
  • the plasmid pESCpgkgap-HIS was digested with restriction enzymes BamHI and XhoI, and a fragment of about 7.4 kb was excised and purified with MinElute Gel extraction kit (QIAGEN) to obtain a Vector portion.
  • the Insert part and the Vector part were ligated using Ligation-Convenience Kit (Nippon Gene) to transform Escherichia coli HST08 (Takara Bio). Colonies grown on an LB agar medium containing 50 ⁇ g / ml ampicillin were cultured in an LB liquid culture containing 50 ⁇ g / ml ampicillin, and the plasmid was extracted. For extraction, QIAprep spin Miniprep Kit (manufactured by QIAGEN) was used. The obtained plasmid was sequenced, confirmed that the sequence was correct, and named pESCpgkgap-HIS-Yfdx (FIG. 2). The base sequence of the Yfdx gene and the amino acid sequence of ferredoxin encoded by the gene are shown in SEQ ID NOs: 1 and 2, respectively.
  • Plasmid pESCpgkgap-HIS was digested with restriction enzymes NotI and SpeI, and a fragment of about 7.4 kb was excised and purified with MinElute Gel extraction kit (manufactured by QIAGEN) to obtain a Vector portion.
  • the Insert part and the Vector part were ligated using Ligation-Convenience Kit (Nippon Gene) to transform Escherichia coli HST08 (Takara Bio). Colonies grown on an LB agar medium containing 50 ⁇ g / ml ampicillin were cultured on an LB medium containing 50 ⁇ g / ml ampicillin to extract a plasmid. For extraction, QIAprep spin Miniprep Kit (manufactured by QIAGEN) was used. The obtained plasmid was sequenced, confirmed that the sequence was correct, and named pESCpgkgap-HIS-Yfdr (FIG. 3). The base sequence of the Yfdr gene and the amino acid sequence of ferredoxin NADPH reductase encoded by the gene are shown in SEQ ID NOs: 3 and 4, respectively.
  • Plasmid pESCpgkgap-HIS-Yfdx was digested with restriction enzymes NotI and SpeI, and a fragment of about 7.9 kb was excised and purified with MinElute Gel extraction kit (QIAGEN) to obtain a Vector portion.
  • plasmid pESCpgkgap-HIS-Yfdr was digested with restriction enzymes NotI and SpeI, and a fragment of about 1.5 kb was excised and purified with MinElute Gel extraction kit (manufactured by QIAGEN) to obtain an Insert part.
  • the two fragments were ligated using Ligation-Convenience Kit (Nippon Gene) to transform E. coli HST08 (Takara Bio). Colonies grown on an LB agar medium containing 50 ⁇ g / ml ampicillin were cultured in an LB medium containing 50 ⁇ g / ml ampicillin to extract a plasmid.
  • QIAprep spin Miniprep Kit (manufactured by QIAGEN) was used for extraction.
  • the obtained plasmid was designated as pESCpgkgap-HIS-YfdxYfdr (FIG. 4).
  • a transformant introduced with alkS gene using pESCpgkgap-URA-alkS a transformant introduced with alkS gene and ferredoxin gene using pESCpgkgap-URA-alkS and pESCpgkgap-HIS-Yfdx
  • pESCpgkgap -Transformants introduced with alkS gene and ferredoxin NADPH reductase gene using URA-alkS and pESCpgkgap-HIS-Yfdr and alkS gene, ferredoxin gene using pESCpgkgap-URA-alkS and pESCpgkgap-HIS-YfdxYfdr / YPH499
  • a transformant into which the ferredoxin NADPH reductase gene was introduced was prepared.
  • ⁇ Alkane productivity evaluation> The four types of transformants prepared as described above were inoculated into 3 mL of SD-Ura, His + adenine hemisulfate liquid medium and cultured at 30 ° C. for 3 days. A part of the obtained culture solution was inoculated into 5 mL of SD-Ura, His + adenine hemisulfate liquid medium to which Tetradecanal was added so that the final concentration was 1 mM, and cultured at 30 ° C. for 3,4 days.
  • a 5 ml culture was centrifuged at 3000 rpm for 10 minutes at room temperature, the supernatant was removed, and the suspension was suspended in 500 ⁇ l of saturated saline, and then transferred to a 20 ml vial (Agilent) for GC / MS analysis.
  • the alkane (Tridecane) biosynthesized using Tetradecanal as a substrate was analyzed, and its productivity was evaluated.
  • the conditions for GC / MS analysis are as follows.
  • Headspace sampler HP7694 manufactured by Hewlett-Packard
  • Zone Temp Oven 80 °C Loop 150 °C TR.LINE 200 °C Event Time GC CYCLE TIME 10min Vial EQ TIME 15min PRESSURIZ.
  • TIME 0.50min Loop Fill TIME 0.2min Loop EQ TIME 0.2min INJECT TIME 1.00min Vial Parameter SHAKE HIGH Vial pressurization 15psi Loop size 3ml
  • ⁇ GC-MS analysis conditions > GC / MS HP6890 / 5973 GC / MS system (Hewlett-Packard, Wilmington, DE) Column used HP-INNOWAX (Agilent: 19091N-213) Inlet temperature 260 °C Detector temperature 260 ° C Injection parameter Split ratio 1/20 Carrier gas Helium 1.0ml / min Oven heating condition 60 °C 1min Heat to 260 °C at 25 °C / min 260 °C 1min PRESSURIZ. TIME 0.50min Loop Fill TIME 0.2min Loop EQ TIME 0.2min INJECT TIME 1.00min Vial Parameter SHAKE HIGH Vial pressurization 15psi Loop size 3ml
  • FIG. 5 the vertical axis indicates the amount of alkane (Tridecane) synthesized.
  • YPH499 means a host before transformation
  • YPH499 alkS means a transformant introduced with an alkS gene
  • YPH499 alkS Yfdx means transformation with an alkS gene and a ferredoxin gene introduced.
  • YPH499 alkS Yfdr means a transformant introduced with alkS gene and ferredoxin NADPH reductase gene
  • YPH499 alkS Yfdx Yfdr means a transformant introduced with alkS gene, ferredoxin gene and ferredoxin NADPH reductase gene Means the body.
  • alkS_pCDF ⁇ Preparation of alkS expression plasmid (alkS_pCDF)>
  • a DNA fragment containing an alkane synthase gene (alkS gene) was obtained by PCR using the genomic DNA of Nostoc sp. ATCC27437 as a template.
  • KOD-Plus-Ver.2 (Toyobo Co., Ltd.) was used as a polymerase.
  • the following pair of primers were designed to amplify a DNA fragment containing the alkS gene, and the reaction solution composition and reaction cycle conditions were as shown below.
  • ATCC27437 genomic DNA 100 ng / ⁇ l 1 ⁇ l 10 ⁇ buffer for KOD-Plus-Ver.2 5 ⁇ l 2 mM dNTPs 5 ⁇ l 25 mM MgSO4 4 ⁇ l Primer # 1 (10 ⁇ M) 1.5 ⁇ l Primer # 2 (10 ⁇ M) 1.5 ⁇ l KOD-Plus (1U / ⁇ l) 1 ⁇ l dH2O 31 ⁇ l 50 ⁇ l [Reaction cycle conditions] 94 ° C 2 minutes-(98 ° C 10 seconds, 55 ° C 30 seconds, 68 ° C 1 minute 30 seconds) x 30 cycles -68 ° C 3 minutes-16 ° C stock
  • the PCR product was purified using a QIAGEN MinElute PCR purification kit and then digested with restriction enzymes KpnI and XhoI. Agarose gel electrophoresis was performed, a 0.7 kbp fragment was excised and purified using MinElute Gel extraction kit manufactured by QIAGEN, and used as the Insert part. Plasmid pCDFDuet-1 (manufactured by Novagen) was digested with restriction enzymes KpnI and XhoI, and an approximately 7.4 kb fragment was excised and purified with MinElute Gel extraction kit (manufactured by QIAGEN) to obtain a Vector portion.
  • the Insert part and the Vector part were ligated using Ligation-Convenience Kit (Nippon Gene) to transform Escherichia coli HST08 (Takara Bio).
  • the obtained sequence was sequenced to confirm that the target plasmid was prepared.
  • the plasmid thus obtained was named alkS_pCDF (FIG. 6).
  • the Insert part and the Vector part were ligated using Ligation-Convenience Kit (Nippon Gene) to transform Escherichia coli HST08 (Takara Bio). Colonies grown on an LB agar medium containing 50 ⁇ g / ml ampicillin were cultured in an LB liquid culture containing 50 ⁇ g / ml ampicillin, and the plasmid was extracted. For extraction, QIAprep spin Miniprep Kit (manufactured by QIAGEN) was used. The obtained plasmid was sequenced to confirm that the sequence was correct and named Efdx-pCOLA (FIG. 7). The base sequence of the Efdx gene and the amino acid sequence of ferredoxin encoded by the gene are shown in SEQ ID NOs: 23 and 24, respectively.
  • Plasmid pCOLADuet-1 (manufactured by Novagen) was digested with restriction enzymes NcoI and BamHI, and a fragment of about 3.7 kb was excised and purified with MinElute Gel extraction kit (manufactured by QIAGEN) to obtain a Vector portion.
  • the Insert part and the Vector part were ligated using Ligation-Convenience Kit (Nippon Gene) to transform Escherichia coli HST08 (Takara Bio). Colonies grown on an LB agar medium containing 50 ⁇ g / ml ampicillin were cultured in an LB liquid culture containing 50 ⁇ g / ml ampicillin, and the plasmid was extracted. For extraction, QIAprep spin Miniprep Kit (manufactured by QIAGEN) was used. The obtained plasmid was sequenced to confirm that the sequence was correct and named Efdr-pCOLA (FIG. 8). The base sequence of the Efdr gene and the amino acid sequence of ferredoxin encoded by the gene are shown in SEQ ID NOs: 27 and 28, respectively.
  • EfdxEfdr-pCOLA Plasmid Efdx-pCOLA was digested with restriction enzymes NcoI and BamHI, and an approximately 4.1 kb fragment was excised and purified with MinElute Gel extraction kit (QIAGEN) to obtain the Vector portion.
  • plasmid Efdr-pCOLA was digested with restriction enzymes NcoI and BamHI, and a fragment of about 0.8 kb was excised and purified with MinElute Gel extraction kit (QIAGEN) to make an Insert part.
  • the two fragments were ligated using Ligation-Convenience Kit (Nippon Gene) to transform E. coli HST08 (Takara Bio). Colonies grown on an LB agar medium containing 50 ⁇ g / ml ampicillin were cultured in an LB medium containing 50 ⁇ g / ml ampicillin to extract a plasmid. QIAprep spin Miniprep Kit (manufactured by QIAGEN) was used for extraction. The resulting plasmid was named EfdxEfdr-pCOLA (FIG. 9).
  • E. coli BL21 (DE3) strain transformant Escherichia coli BL21 (DE3) strain (manufactured by Novagen) was transformed with the various expression plasmids prepared as described above. The transformation followed the attached manual. Clones grown on LB agar medium containing 50 ⁇ g / ml each of streptomycin and kanamycin were used as transformants for evaluation of alkane productivity.
  • a transformant introduced with alkS gene using alkS_pCDF a transformant introduced with alkS gene and ferredoxin gene using alkS_pCDF and Efdx-pCOLA, an alkS gene using alkS_pCDF and Efdr-pCOLA, and Using the transformants into which the ferredoxin NADPH reductase gene was introduced, alkS_pCDF and EfdxEfdr-pCOLA, transformants into which the alkS gene, ferredoxin gene, and ferredoxin NADPH reductase gene were introduced were prepared.
  • ⁇ Alkane productivity evaluation> The four types of transformants prepared as described above were inoculated into 3 mL of LB-Sm, Km (each 50 ⁇ g / ml) liquid medium and cultured at 37 ° C. overnight. Part of the obtained culture solution is inoculated into 5 mL of LB-Sm and Km (50 ⁇ g / ml each) liquid medium supplemented with Tetradecanal and IPTG so that the final concentration is 1 mM, and then at 30 ° C. for 3,4 days Cultured.
  • a 5 ml culture solution was centrifuged at 3000 rpm for 10 min at room temperature to remove the supernatant, suspended in 500 ⁇ l of saturated saline, and then transferred to a 20 ml vial (Agilent) for GC / MS analysis.
  • the alkane (Tridecane) biosynthesized using Tetradecanal as a substrate was analyzed, and its productivity was evaluated. Note that ⁇ headspace sampler analysis conditions> and ⁇ GC-MS analysis conditions> in GC / MS analysis are the same as those in Example 1.
  • FIG. 10 the vertical axis indicates the amount of alkane (Tridecane) synthesized.
  • BL21 (DE3) means a host before transformation
  • BL21 (DE3) alkS means a transformant introduced with an alkS gene
  • BL21 (DE3) alkS Efdx means alkS.
  • ⁇ BL21 (DE3) alkS Efdr '' means a transformant introduced with the alkS gene and ferredoxin NADPH reductase gene
  • ⁇ BL21 (DE3) alkS Efdx Efdr '' means It means a transformant into which the alkS gene, ferredoxin gene and ferredoxin NADPH reductase gene have been introduced.

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Abstract

　アルカン合成酵素活性によりアルカンを合成する反応系において、アルカン生産性に優れたアルカンの製造方法及び組換え微生物を提供する。アルカン合成酵素によりアルカンを合成する系においてフェレドキシンの存在下でアルカン生産性が大幅に向上する。すなわち、本発明に係るアルカンの製造方法はフェレドキシン存在下でアルカン合成酵素によりアルカンを合成するものである。

Description

アルカンの製造方法及びアルカン合成能を有する組換え微生物
　本発明は、例えばバイオディーゼル燃料に使用できるアルカンの製造方法及びアルカン合成能を有する組換え微生物に関する。
　アルカンは、石油に含まれており分留によって精製され、様々な用途に利用される。また、アルカンは、化学工業における原料物質として広く利用されるのみならず、石油から得られるディーゼル燃料の主成分でもある。アルカンをバイオ技術によって製造する技術としては、例えば特許文献１が挙げられる。特許文献１には、藍藻類由来のアルカン合成酵素遺伝子及びアシルCoAレダクターゼ遺伝子を導入した組換え大腸菌によりアルカンを合成する試みが開示されている。
　また、特許文献２には、炭素数10～25の範囲の炭化水素を生産できる微細藻類（Pseudochoricystis ellipsoidea）が開示されている。さらに、特許文献３には、アルデヒドをアルカンへ転換を触媒する脂肪酸アルデヒドデカボニラーゼ活性を有する酵母を利用して、アルカンを合成する技術が開示されている。さらに、非特許文献１には、酵素P450を用いてアルデヒドからアルカンを合成する方法が開示されている。
　一方、特許文献４には、アルカンやアルカンモノオールを含む培地にて、CYP153-アルカン-1-モノオキシゲナーゼ遺伝子、フェレドキシン遺伝子及びフェレドキシンリダクターゼ遺伝子を発現する組換え大腸菌を培養することで、α、ωアルカンジオールを生合成する方法が開示されている。
　上述のように、アルカン合成酵素遺伝子を発現する組換え微生物やアルカン合成能を有する微生物は公知であるものの、これらによるアルカン生産性は十分とは言えなかった。
WO2009/140695 WO2006/109588 特表2010-528627号公報 特開2007-74959号公報
Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91, 10000-10004 (1994)
　そこで、本発明は、上述したような実情に鑑み、アルカン合成酵素活性によりアルカンを合成する反応系において、アルカン生産性に優れたアルカンの製造方法及び組換え微生物を提供することを目的とする。
　上述した目的を達成するため、本発明者らが鋭意検討した結果、アルカン合成酵素によりアルカンを合成する系においてフェレドキシンの存在下でアルカン生産性が大幅に向上することを見いだし、本発明を完成するに至った。
　すなわち、本発明は以下を包含する。
　（１）フェレドキシン存在下でアルカン合成酵素によりアルカンを合成する、アルカンの製造方法。
　（２）アルカン合成能を有する微生物によりアルカンを合成することを特徴とする（１）記載のアルカンの製造方法。
　（３）上記微生物は、アルカン合成酵素遺伝子が導入された組換え微生物であることを特徴とする（２）記載のアルカンの製造方法。
　（４）上記微生物は、フェレドキシン遺伝子が導入された組換え微生物であることを特徴とする（２）記載のアルカンの製造方法。
　（５）上記微生物は、アルカン合成酵素遺伝子及びフェレドキシン遺伝子が導入された組換え微生物であることを特徴とする（２）記載のアルカンの製造方法。
　（６）上記フェレドキシンに加えてフェレドキシンNADPHレダクターゼの存在下でアルカンを合成する（１）記載のアルカンの製造方法。
　（７）フェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子を、アルカン合成能を有する微生物に導入した組換え微生物によりアルカンを合成することを特徴とする（６）記載のアルカンの製造方法。
　（８）上記組換え微生物は、酵母由来であることを特徴とする（３）～（５）及び（７）いずれか１記載のアルカンの製造方法。
　（９）上記アルカン合成酵素は、アルデヒドをアルカンに変換する活性を有することを特徴とする（１）記載のアルカンの製造方法。
　（１０）炭素数９～１６のアルカンを製造することを特徴とする（１）記載のアルカンの製造方法。
　（１１）　フェレドキシン遺伝子を導入した、アルカン合成能を有する組換え微生物。
　（１２）　フェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子を更に導入したことを特徴とする（１１）記載の組換え微生物。
　（１３）　上記アルカン合成能は、アルカン合成酵素遺伝子を導入することで付与されたものであることを特徴とする（１１）記載の組換え微生物。
　（１４）　組換え酵母であることを特徴とする（１１）記載の組換え微生物。
　本発明よれば、アルカン合成酵素によりアルカンを合成する反応系におけるアルカン合成の効率、すなわちアルカンの生産性を向上させることができる。すなわち、本発明に係るアルカンの製造方法は、非常に優れた生産効率でアルカンを製造することができ、アルカンの生産コスト低下に寄与することができる。また、本発明に係る組換え微生物は、従来のアルカン合成能を有する微生物と比較して、優れたアルカン合成能を有するため、アルカン製造に非常に有用である。
pESCpgkgap-URA-alkSの構成を模式的に示す図である。 pESCpgkgap-HIS-Yfdxの構成を模式的に示す図である。 pESCpgkgap-HIS-Yfdrの構成を模式的に示す図である。 pESCpgkgap-HIS-YfdxYfdrの構成を模式的に示す図である。 実施例で作製した各種形質転換体におけるアルカン（Tridecane）の合成量を示す特性図である。 alkS_pCDFの構成を模式的に示す図である。 Efdx-pCOLAの構成を模式的に示す図である。 Efdr-pCOLAの構成を模式的に示す図である。 EfdxEfdr-pCOLAの構成を模式的に示す図である。 実験例で作製した各種形質転換体におけるアルカン（Tridecane）の合成量を示す特性図である。
　以下、本発明を図面及び実施例を用いてより詳細に説明する。
　本発明は、アルカン合成酵素によりアルカンを合成する系においてフェレドキシンを存在させることで、アルカンの生産性を向上するものである。ここで、アルカン合成酵素によりアルカンを合成する系としては、アルカン合成能を有する微生物や、アルカン合成能を付与された組換え微生物といったin vivoの系、アルカン合成酵素により基質を含む反応液中でアルカンを合成するin vitroの系を含む意味である。如何なるアルカン合成系においても、フェレドキシンの存在下では、フェレドキシンの非存在下と比較して、アルカンの生産性が向上することとなる。
　また、フェレドキシンに加えてフェレドキシンNADPHレダクターゼ（フェレドキシンNADP+レダクターゼと称する場合もある）を存在させることにより、アルカンの生産性を更に顕著に向上させることができる。すなわち、アルカン合成酵素によりアルカンを合成する系においてフェレドキシンとフェレドキシンNADPHレダクターゼを存在させることで、フェレドキシンが単独で存在する場合と比較して、アルカンの生産性がより顕著に向上スルこととなる。
＜フェレドキシン＞
　フェレドキシンとは、内部に鉄-硫黄クラスター(Fe-Sクラスター)を含む鉄硫黄タンパク質であり、電子伝達体として機能するタンパク質である。アルカン合成酵素によりアルカンを合成する系においてフェレドキシンを存在させるには、一例として、アルカン合成能を有する微生物や、アルカン合成能を付与された組換え微生物にフェレドキシンをコードする遺伝子を導入すればよい。フェレドキシン遺伝子としては、特に限定されず、如何なる生物由来の遺伝子を使用しても良い。例えば、DDBJ/EMBL/GenBank 国際塩基配列データベース等の遺伝子情報を格納したデータベースを参照することで、様々な生物種由来のフェレドキシン遺伝子に関する塩基配列やフェレドキシンのアミノ酸配列を特定することができる。
　一旦、フェレドキシン遺伝子の塩基配列が特定できれば、定法に従って当該遺伝子を単離することができる。例えば、特定した塩基配列に基づいて所定の生物由来のフェレドキシン遺伝子を全合成しても良いし、特定した塩基配列に基づいてプライマーを設計し、所定の生物ゲノムを鋳型として当該プライマーを用いたPCRによりフェレドキシン遺伝子を単離することもできる。
　特に、アルカン合成能を有する微生物や、アルカン合成能を付与された組換え微生物にフェレドキシン遺伝子を導入する場合、フェレドキシン遺伝子としては当該微生物由来の遺伝子であることが好ましい。例えば、所定の酵母に対してアルカン合成関連遺伝子を導入して、アルカン合成能を獲得した組換え酵母に対しては、当該酵母由来のフェレドキシン遺伝子を導入すればよい。
　より具体的に、アルカン合成能を獲得した組換え酵母（組換えS. cerevisiae）に対しては、S. cerevisiae由来のフェレドキシン遺伝子を使用することが好ましい。なお、S. cerevisiae由来のフェレドキシン遺伝子は、YAH1遺伝子（又はYfdx遺伝子）として公知である。S. cerevisiae由来のフェレドキシン遺伝子の塩基配列及び当該遺伝子によりコードされるフェレドキシンのアミノ酸配列をそれぞれ配列番号１及び２に示す。
　なお、フェレドキシン遺伝子としては、配列番号２に示すアミノ酸配列をコードするものに限定されず、配列番号２に示すアミノ酸配列に対して７０％以上の同一性、好ましくは８０％以上の同一性、より好ましくは９０％以上の同一性、更に好ましくは９５％の同一性、最も好ましくは９８％以上の同一性を有するアミノ酸配列からなりフェレドキシンとして機能するタンパク質をコードする遺伝子でも良い。同一性の値は、BLASTアルゴリズムを実装したBLASTNやBLASTXプログラムにより算出することができる（デフォルトの設定）。なお、同一性の値は、一対のアミノ酸配列をペアワイズ・アライメント分析した際に完全に一致するアミノ酸残基を算出し、比較した全アミノ酸残基中の上記残基数の割合として算出される。
　また、フェレドキシン遺伝子としては、配列番号２に示すアミノ酸配列をコードするものに限定されず、配列番号２に示すアミノ酸配列に対して、１～２０個のアミノ酸、好ましくは１～１５個のアミノ酸、より好ましくは１～１０個のアミノ酸、更に好ましくは１～５個のアミノ酸が欠失、置換、付加又は挿入されたアミノ酸配列からなりフェレドキシンとして機能するタンパク質をコードする遺伝子でも良い。
　さらに、フェレドキシン遺伝子としては、配列番号１に示す塩基酸配列からなるものに限定されず、配列番号１に示す塩基配列からなるDNAの相補鎖の全部又は一部に対して、ストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつフェレドキシンとして機能するタンパク質をコードするものでもよい。ここでいう「ストリンジェントな条件」とはいわゆる特異的なハイブリッドが形成され、非特異的なハイブリッドが形成されない条件を意味し、例えばMolecular Cloning: A Laboratory Manual(Third Edition)を参照して適宜決定することができる。具体的には、サザンハイブリダイゼーションの際の温度や溶液に含まれる塩濃度、及びサザンハイブリダイゼーションの洗浄工程の際の温度や溶液に含まれる塩濃度によりストリンジェンシーを設定することができる。
　なお、配列番号２に示すアミノ酸配列に対して所定のアミノ酸が欠失、置換、付加又は挿入されたアミノ酸配列をコードする塩基配列や、配列番号１に示す塩基配列と異なる塩基配列からなるDNAを作製する方法としては、特に限定することなく、従来公知の手法を適宜使用することができる。例えば、部位特異的突然変異誘発方法を使用して、所定の塩基を置換することができる。部位特異的突然変異誘発方法としては、例えばT. クンケル（Kunkel）の部位特異的変異導入法（Kunkel, T. A. Proc. Nati. Acad. Sci. U. S. A. 82, 488-492 (1985)）、Gapped duplex法等が挙げられる。また、部位特異的突然変異誘発法を利用した変異導入用キット（例えばMutan-K(宝酒造社製)やMutan-G(宝酒造社製)）などを用いて、あるいは、宝酒造社製のLA PCR in vitro Mutagenesis シリーズキットを用いて変異を導入することもできる。
　一方、アルカン合成酵素により基質を含む反応液中でアルカンを合成するin vitroの系にフェレドキシンを存在させる場合、上述したフェレドキシン遺伝子の産物であるフェレドキシンを使用する。タンパク質としてのフェレドキシンは、従来公知の手法により得ることができる。使用可能なフェレドキシンは、未精製の状態でも良いし、粗精製の状態でも良いし、精製された状態のものでも良い。
＜フェレドキシンNADPHレダクターゼ＞
　フェレドキシンNADPHレダクターゼとは、フェレドキシンとNADPHとの間の酸化還元反応を触媒する酵素である。アルカン合成酵素によりアルカンを合成する系においてフェレドキシンとともにフェレドキシンNADPHレダクターゼを存在させるには、一例として、アルカン合成能を有する微生物や、アルカン合成能を付与された組換え微生物にフェレドキシンをコードする遺伝子及びフェレドキシンNADPHレダクターゼをコードする遺伝子を導入すればよい。フェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子としては、特に限定されず、如何なる生物由来の遺伝子を使用しても良い。例えば、DDBJ/EMBL/GenBank 国際塩基配列データベース等の遺伝子情報を格納したデータベースを参照することで、様々な生物種由来のフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子に関する塩基配列やフェレドキシンNADPHレダクターゼのアミノ酸配列を特定することができる。
　一旦、フェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子の塩基配列が特定できれば、定法に従って当該遺伝子を単離することができる。例えば、特定した塩基配列に基づいて所定の生物由来のフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子を全合成しても良いし、特定した塩基配列に基づいてプライマーを設計し、所定の生物ゲノムを鋳型として当該プライマーを用いたPCRによりフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子を単離することもできる。
　特に、アルカン合成能を有する微生物や、アルカン合成能を付与された組換え微生物にフェレドキシン遺伝子及びフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子を導入する場合、フェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子としては当該微生物由来の遺伝子であることが好ましい。さらに、フェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子としては、導入するフェレドキシン遺伝子と同じ生物由来の遺伝子であることがより好ましい。例えば、所定の酵母に対してアルカン合成関連遺伝子を導入して、アルカン合成能を獲得した組換え酵母に対しては、当該酵母由来のフェレドキシン遺伝子及びフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子を導入すればよい。
　より具体的に、アルカン合成能を獲得した組換え酵母（組換えS. cerevisiae）に対しては、S. cerevisiae由来のフェレドキシン遺伝子及びS. cerevisiae由来のフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子を使用することが好ましい。なお、S. cerevisiae由来のフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子は、ARH1遺伝子（又はYfdr遺伝子）として公知である。S. cerevisiae由来のフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子の塩基配列及び当該遺伝子によりコードされるフェレドキシンNADPHレダクターゼのアミノ酸配列をそれぞれ配列番号３及び４に示す。
　なお、フェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子としては、配列番号４に示すアミノ酸配列をコードするものに限定されず、配列番号４に示すアミノ酸配列に対して７０％以上の同一性、好ましくは８０％以上の同一性、より好ましくは９０％以上の同一性、更に好ましくは９５％の同一性、最も好ましくは９８％以上の同一性を有するアミノ酸配列からなりフェレドキシンNADPHレダクターゼとして機能するタンパク質をコードする遺伝子でも良い。同一性の値は、BLASTアルゴリズムを実装したBLASTNやBLASTXプログラムにより算出することができる（デフォルトの設定）。なお、同一性の値は、一対のアミノ酸配列をペアワイズ・アライメント分析した際に完全に一致するアミノ酸残基を算出し、比較した全アミノ酸残基中の上記残基数の割合として算出される。
　また、フェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子としては、配列番号４に示すアミノ酸配列をコードするものに限定されず、配列番号４に示すアミノ酸配列に対して、１～５０個のアミノ酸、好ましくは１～４０個のアミノ酸、より好ましくは１～３０個のアミノ酸、更に好ましくは１～２０個のアミノ酸が欠失、置換、付加又は挿入されたアミノ酸配列からなりフェレドキシンNADPHレダクターゼとして機能するタンパク質をコードする遺伝子でも良い。
　さらに、フェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子としては、配列番号３に示す塩基酸配列からなるものに限定されず、配列番号３に示す塩基配列からなるDNAの相補鎖の全部又は一部に対して、ストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつフェレドキシンNADPHレダクターゼとして機能するタンパク質をコードするものでもよい。ここでいう「ストリンジェントな条件」とはいわゆる特異的なハイブリッドが形成され、非特異的なハイブリッドが形成されない条件を意味し、例えばMolecular Cloning: A Laboratory Manual(Third Edition)を参照して適宜決定することができる。具体的には、サザンハイブリダイゼーションの際の温度や溶液に含まれる塩濃度、及びサザンハイブリダイゼーションの洗浄工程の際の温度や溶液に含まれる塩濃度によりストリンジェンシーを設定することができる。
　なお、配列番号４に示すアミノ酸配列に対して所定のアミノ酸が欠失、置換、付加又は挿入されたアミノ酸配列をコードする塩基配列や、配列番号３に示す塩基配列と異なる塩基配列からなるDNAを作製する方法としては、特に限定することなく、従来公知の手法を適宜使用することができる。例えば、部位特異的突然変異誘発方法を使用して、所定の塩基を置換することができる。部位特異的突然変異誘発方法としては、例えばT. クンケル（Kunkel）の部位特異的変異導入法（Kunkel, T. A. Proc. Nati. Acad. Sci. U. S. A. 82, 488-492 (1985)）、Gapped duplex法等が挙げられる。また、部位特異的突然変異誘発法を利用した変異導入用キット（例えばMutan-K(宝酒造社製)やMutan-G(宝酒造社製)）などを用いて、あるいは、宝酒造社製のLA PCR in vitro Mutagenesis シリーズキットを用いて変異を導入することもできる。
　一方、アルカン合成酵素により基質を含む反応液中でアルカンを合成するin vitroの系にフェレドキシン及びフェレドキシンNADPHレダクターゼを存在させる場合、上述したフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子の産物であるフェレドキシンNADPHレダクターゼを使用する。タンパク質としてのフェレドキシンNADPHレダクターゼは、従来公知の手法により得ることができる。使用可能なフェレドキシンNADPHレダクターゼは、未精製の状態でも良いし、粗精製の状態でも良いし、精製された状態のものでも良い。
＜組換え微生物＞
　本発明において、上述したフェレドキシン遺伝子やフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子を導入する微生物は、アルカン合成能を有する微生物又はアルカン合成能を付与された組換え微生物である。
　アルカン合成能を有する微生物としては、Synechococcus elongatus PCC7942、S. elongatus PCC6301、Synechocystis sp. PCC6803、Prochlorococcus marinus CCMP1986、
Anabaena variabilis ATCC29413、Nostoc punctiforme PCC73102、Gloeobacter violaceus PCC7421、Nostoc sp. PCC7120、Cyanothece sp. PCC7425及びCyanothece sp. ATCC51142を挙げることができる（参考：Science 30 July 2010. Vol. 329, No. 5991, pp. 559-562）。
　また、アルカン合成能を付与された組換え微生物としては、上記のアルカン合成能を有する微生物より単離したアルカン合成酵素遺伝子を導入した組換え微生物を挙げることができる。例えば、アルカン合成酵素遺伝子としては、Nostoc sp. ATCC27347（PCC7120）から単離したalkS遺伝子、Science 30 July 2010. Vol. 329, No. 5991, pp. 559-562及びWO 2009/140695に記載の遺伝子を使用することができる。より具体的には、例えば、Nostoc punctiforme PCC73102、Synechococcus elongates PCC7942、Synechocystis sp. PCC6803、Cyanothece sp. ATCC51142、Acaryochlloris marina MBIC11017、Gleobacter violaceus PCC7421及びProchlorococcus marinus str. MIT9303から単離したアルカン合成酵素遺伝子等を使用することができる。
　アルカン合成酵素遺伝子を導入する微生物としては、酵母を挙げることができる。酵母としては特に限定されないが、Pichia stipitis等のPichia属酵母、Saccharomyces cerevisiae等のSaccharomyces属酵母及びCandida tropicalisやCandida prapsilosis等のCandida属酵母等を挙げることができる。なかでも、アルカン合成酵素遺伝子を導入する微生物としてはSaccharomyces cerevisiaeを使用することが好ましい。一例としては、Nostoc sp. ATCC27347由来のalkS遺伝子をSaccharomyces cerevisiaeに導入し、アルカン合成能を有する組換えSaccharomyces cerevisiaeを使用することが好ましい。
　上述したフェレドキシン遺伝子を宿主となる微生物ゲノム、例えば酵母ゲノムに導入することにより、本発明に使用できる組換え微生物、例えば組換え酵母を作製することができる。なお、上述したフェレドキシン遺伝子に加えて、上述したフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子を宿主となる微生物ゲノム、例えば酵母ゲノムに導入することにより、本発明に使用できる組換え微生物、例えば組換え酵母を作製することができる。
　例えば、フェレドキシン遺伝子やフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子を含むＤＮＡ断片を、宿主微生物で機能する発現ベクター、好ましくはマルチコピー型のベクターと連結して組換えDNAを作製し、これを微生物に導入して形質転換すればよい。使用可能な発現ベクターは、特に限定されず、プラスミド型ベクター、又は宿主生物中のゲノムに組み込み可能な染色体導入型ベクターを挙げることができる。発現ベクターとしては、特に限定されず、入手可能な如何なる発現ベクターを宿主微生物に応じて適宜選択すればよい。なお、発現ベクターとしては、例えば、プラスミドDNA、バクテリオファージDNA、レトロトランスポゾンDNA、人工染色体DNA（YAC：yeast artificial chromosome）などが挙げられる。
　プラスミド DNAとしては、例えばpRS413、pRS414、pRS415、pRS416、YCp50、pAUR112又はpAUR123などのYCp型大腸菌-酵母シャトルベクター、pYES2又はYEp13などのYEp型大腸菌-酵母シャトルベクター、pRS403、pRS404、pRS405、pRS406、pAUR101又はpAUR135などのYIp型大腸菌-酵母シャトルベクター、大腸菌由来のプラスミド（pBR322、pBR325、pUC18、pUC19、pUC118、pUC119、pTV118N、pTV119N、pBluescript、pHSG298、pHSG396又はpTrc99AなどのColE系プラスミド、pACYC177又はpACYC184などのp15A系プラスミド、pMW118、pMW119、pMW218又はpMW219などのpSC101系プラスミド等）、アグロバクテリウム由来のプラスミド（例えばpBI101等）、枯草菌由来のプラスミド（例えばpUB110、pTP5等)などが挙げられ、ファージDNAとしてはλファージ（Charon4A、Charon21A、EMBL3、EMBL4、λgt10、λgt11、λZAP）、φX174、M13mp18又はM13mp19などが挙げられる。レトロトランスポゾンとしては、Ty因子などが挙げられる。YAC用ベクターとしてはpYACC2などが挙げられる。さらに、レトロウイルス又はワクシニアウイルスなどの動物ウイルス、バキュロウイルスなどの昆虫ウイルスベクターを用いることもできる。
　発現ベクターにおいて、フェレドキシン遺伝子やフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子は、それぞれ発現可能な状態でベクターに組み込まれることが必要である。発現可能な状態とは、フェレドキシン遺伝子やフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子が導入される宿主生物において所定のプロモーターの制御下に発現されるように、これらフェレドキシン遺伝子やフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子とプロモーターとを連結してベクターに組み込むことを意味する。発現ベクターには、フェレドキシン遺伝子やフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子のほか、プロモーター及びターミネータ、所望によりエンハンサー等のシスエレメント、スプライシングシグナル、ポリA付加シグナル、選択マーカー、リボソーム結合配列（SD配列）等を連結することができる。なお、選択マーカーとしては、例えば、アンピシリン耐性遺伝子やカナマイシン耐性遺伝子やハイグロマイシン耐性遺伝子などの抗生物質耐性遺伝子が挙げられる。
　また、発現ベクターを用いた形質転換法としても、従来公知の方法を適宜使用することができる。形質転換方法としては、塩化カルシウム法、コンピテントセル法、プロトプラスト又はスフェロプラスト法、電気パルス法等を例示することができる。
　一方、フェレドキシン遺伝子やフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子のコピー数を高めるように導入しても良い。すなわち、フェレドキシン遺伝子やフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子を微生物の染色体DNA上に多コピー存在させるように導入しても良い。微生物の染色体DNA上にフェレドキシン遺伝子やフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子を多コピーで導入するには、染色体DNA上に多コピー存在する配列を標的に利用して相同組換えにより行うことができる。
　さらに、フェレドキシン遺伝子やフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子の発現の増強は、内在する又は導入したフェレドキシン遺伝子やフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子のプロモーター等の発現調節配列を、より高発現可能なものに置換する方法、所定の遺伝子の発現を上昇させるようなレギュレーターを導入する方法などによっても達成される。高発現可能なプロモーターとしては、特に限定されないが、例えば、lacプロモーター、trpプロモーター、trcプロモーター、pLプロモーター等を挙げることができる。また、内在する又は導入したフェレドキシン遺伝子やフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子の発現制御領域に突然変異を導入し、より高発現できるものに改変することも可能である。
＜アルカン製造＞
　以上で説明したように、本発明によれば、アルカン合成能を有する微生物や、アルカン合成能を付与された組換え微生物といったin vivoの系、アルカン合成酵素により基質を含む反応液中でアルカンを合成するin vitroの系によってアルカンを優れた生産性で合成できる。
　アルカン合成能を有する微生物や、アルカン合成能を付与された組換え微生物を使用する系では、これら微生物に適した培地にて培養し、当該培地中にアルカンを生産することができる。より具体的には、本発明によれば、アルカン合成酵素によるアルカン合成能を向上させることができ、その結果、アルカンの生産性を向上することができる。
　ここで、アルカン合成能を向上させるとは、アルカン合成酵素によるアルデヒドからアルカンに変換する活性を向上させることを含む意味である。すなわち、アルカン合成酵素によるアルデヒドを基質としたアルカン合成反応は、フェレドキシンの存在によって反応効率が向上する。例えば、上述のNostoc sp. ATCC27347（PCC7120）から単離したalkS遺伝子によりコードされるAlkSタンパク質は、テトラデカノールをテトラデカンに変換する活性を示すが、フェレドキシンの存在下においてはフェレドキシンの非存在下と比較してより大量のテトラデカンを合成することができる。また、このときフェレドキシンに加えてフェレドキシンNADPHレダクターゼが存在すると、より大量のテトラデカンを合成することができる。
　同様に、アルカン合成酵素により基質を含む反応液中でアルカンを合成するin vitroの系においても、アルカン合成酵素によるアルデヒドを基質としたアルカン合成反応は、フェレドキシンの存在によって反応効率が向上する。したがって本発明によれば、この反応系においてもアルカンの生産性を向上できる。
　本発明において、生産対象のアルカンとしては特に限定されないが、例えば炭素数が９～１６の範囲、好ましくは１３～１６の範囲のアルカンとする。これらは、粘度の高い液体であり、軽油（ディーゼル油）や航空機燃料に使用することができる。このようなアルカンは、上述したin vivo或いはin vitroの反応系から定法に従って単離し、その後、精製することができる。
　以下、実施例を用いて本発明をより詳細に説明するが、本発明の技術的範囲は以下の実施例に限定されるものではない。
〔実施例１〕
　本実施例では、アルカン生産能を付与するとともに、フェレドキシン遺伝子及び/又はフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子を導入した組換え体酵母を作製し、フェレドキシン、フェレドキシンNADPHレダクターゼのアルカン生産性能に対する効果確認した。
<pESCpgkgap-HISの作製>
　クローニングした遺伝子の恒常的発現を目的とし、pESCベクター（STRATAGENE社製）への恒常性プロモーター（Ppgk及びPgap）の挿入を実施した。PgapとはSaccharomyces cerevisiae YPH499由来のGlyceraldehyde-3-Phosphate Dehydrogenase（gap）遺伝子のプロモーターである。まず酵母YPH499株からGenとるくん（タカラバイオ社製）を用いて精製したゲノムDNAを鋳型としたPCRによりPgapを含むDNA断片を取得した。ポリメラーゼはKOD-Plus-Ver.2（東洋紡社製）を用いた。Pgapを含むDNA断片を増幅するため以下の一対のプライマーを設計し、反応液組成及び反応サイクル条件は下記に示すとおりとした。
（Primer #1）EcoRI-Pgap-F, 5'-CACGGAATTCCAGTTCGAGTTTATCATTATCAA-3'（配列番号５）
（Primer #2）BamHI-Pgap-R, 5'-CTCTGGATCCTTTGTTTGTTTATGTGTGTTTATTC-3'（配列番号６）
〔反応液組成〕
YPH499 genome DNA（100 ng/μl）　　　　　　　　　1μl
10×buffer for KOD-Plus-Ver.2　　　　　　　　　　5μl
2mM dNTPs　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　5μl
25mM MgSO4　　　　　　　　　　　　　　　　　　　 4μl
Primer #1（10μM）　　　　　　　　　　　　　　 1.5μl
Primer #2（10μM）　　　　　　　　　　　　　　 1.5μl
KOD-Plus （1U/μl）　　　　　　　　　　　　　　　1μl
dH2O　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　31μl
　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50μl
〔反応サイクル条件〕
95℃ 2分-(95℃ 30秒、55℃ 30秒、72℃ 2分)×25サイクル-72℃3分-4℃ストック
　PCR産物をQIAGEN社製MinElute PCR purification kitを用いて精製後、制限酵素BamHIとEcoRIで消化した。アガロースゲル電気泳動を行ない、0.7kbpの断片を切り出してQIAGEN社製MinElute Gel extraction kitを用いて精製した。制限酵素BamHIとEcoRIで消化したpESC-HISベクターにライゲーションした。得られた配列をシークエンスし、目的とするプラスミドが作製されていることを確認した。Pgapの塩基配列を配列番号７に示す。こうして得られたプラスミドをpESCgap-HISと命名した。
　次に、Saccharomyces cerevisiae YPH499由来phosphoglycerate kinase （pgk）遺伝子のプロモーターであるPpgkについては以下のように取得した。まず、酵母 YPH499からGenとるくん（タカラバイオ社製）を用いて精製したゲノムDNAを鋳型にしてPCRによりPpgkを含むDNA断片を取得した。ポリメラーゼはKOD-Plus-Ver.2（東洋紡社製）を用いた。Ppgkを含むDNA断片を増幅するため以下の一対のプライマーを設計し、反応液組成及び反応サイクル条件は下記に示すとおりとした。
（Primer #1）MunI-Ppgk1-F, 5'-TAGGCAATTGCAAGAATTACTCGTGAGTAAGG-3'（配列番号８）
（Primer #2）EcoRI-Ppgk1-R, 5'-ATAAGAATTCTGTTTTATATTTGTTGTAAAAAGTAG-3'（配列番号９）
〔反応液組成〕
YPH499 genome DNA（100 ng/μl）　　　　　　　　　1μl
10×buffer for KOD-Plus-Ver.2　　　　　　　　　　5μl
2mM dNTPs　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　5μl
25mM MgSO4　　　　　　　　　　　　　　　　　　　 4μl
Primer #1（10μM）　　　　　　　　　　　　　　 1.5μl
Primer #2（10μM）　　　　　　　　　　　　　　 1.5μl
KOD-Plus （1U/μl）　　　　　　　　　　　　　　　1μl
dH2O　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　31μl
　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50μl
〔反応サイクル条件〕
95℃ 2分-(95℃ 30秒、55℃ 30秒、72℃ 2分)×25サイクル-72℃3分-4℃ストック
　PCR産物をQIAGEN社製MinElute PCR purification kitを用いて精製後、制限酵素MunIとEcoRIで消化した。アガロースゲル電気泳動を行ない、0.7kbpの断片を切り出してQIAGEN社製MinElute Gel extraction kitを用いて精製した。制限酵素EcoRIで消化し、BAP処理したpESCgap-HISベクターにライゲーションした。インサートが正しい方向にライゲーションされていることをコロニーPCRで確認し、プラスミドを調製した。配列をシークエンスし、目的とするプラスミドが作製されていることを確認した。Ppgkの塩基配列を配列番号１０に示す。こうして得られたプラスミドをpESCpgkgap-HISと命名した。
<pESCpgkgap-URAの作製>
　上記で作製したpESCpgkgap-HISを制限酵素Bam HIとNot Iで消化し、得られた1.4kbpのインサート断片を、制限酵素Bam HIとNot Iで消化したpESC-URAベクターにライゲーションした。得られた配列をシークエンスし、目的とするプラスミドが作製されていることを確認した。こうして得られたプラスミドpESCpgkgap-URAと命名した。
<Nostoc sp. ATCC 27347由来アルカン合成酵素遺伝子発現用プラスミド（pESCpgkgap-URA-alkS）の作製>
　Nostoc sp. AT27347のゲノムDNAを鋳型にしてPCRによりアルカン合成酵素遺伝子（alkS遺伝子）を含むDNA断片を取得した。PCRにはKOD-Plus-Ver.2 （東洋紡社製）を用いた。alkS遺伝子を含むDNA断片を増幅するため以下の一対のプライマーを設計し、反応液組成及び反応サイクル条件は下記に示すとおりとした。
（Primer #1）YalkS_F2, 5'-GAGAGGATCCAAAAATGCAGCAGGTTGCAGCCGATTTAG-3'（配列番号１１）
（Primer #2）YalkS_R2, 5'-CAGACTCGAGTTAAGCTGCTGTAAGTCCGTAGG-3'（配列番号１２）
〔反応液組成〕
Nostoc sp.PCC27347ゲノムDNA（100 ng/μl）　　　　1μl
10×buffer for KOD-Plus-Ver.2　　　　　　　　　　5μl
2mM dNTPs　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　5μl
25mM MgSO4　　　　　　　　　　　　　　　　　　　 4μl
Primer #1（10μM）　　　　　　　　　　　　　　 1.5μl
Primer #2（10μM）　　　　　　　　　　　　　　 1.5μl
KOD-Plus （1U/μl）　　　　　　　　　　　　　　　1μl
dH2O　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　31μl
　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50μl
〔反応サイクル条件〕
94℃ 2分-(98℃ 10秒、55℃ 30秒、68℃ 1分30秒)×30サイクル-68℃ 3分-16℃ストック
　PCR産物をQIAquick PCR purification kit（QIAGEN社製）で精製した後、制限酵素BamHIとXhoIで消化し、アガロースゲル電気泳動を行なって約0.7kbの断片を切り出し、MinElute Gel extraction kit（QIAGEN社製）で精製し、Insert部分とした。プラスミドpESCpgkgap-URAを制限酵素BamHIとXhoIで消化し、約7.4kbの断片を切り出し、MinElute Gel extraction kit（QIAGEN社製）で精製し、Vector部分とした。
　上記Insert部分及びVector部分をLigation-Convenience Kit（ニッポンジーン社製）を用いてライゲーションし、大腸菌HST08（タカラバイオ社製）を形質転換した。50μg/mlのアンピシリンを含むLB寒天培地上で生育したコロニーを50μg/mlのアンピシリンを含むLB液体培地で培養しプラスミドを抽出した。抽出には、QIAprep spin Miniprep Kit（QIAGEN社製）を用いた。得られたプラスミドをシークエンスし、配列が正しいことを確認し、pESCpgkgap-URA-alkSと命名した（図１）。なお、alkS遺伝子の塩基配列及び当該遺伝子がコードするAlkSタンパク質のアミノ酸配列を、それぞれ配列番号１３及び１４に示す。
<S.cerevisiae由来フェレドキシン遺伝子発現用プラスミド（pESCpgkgap-HIS-Yfdx）の作製>
　S.cerevisiae YPH499のゲノムDNAを鋳型にしてPCRによりフェレドキシン遺伝子（Yfdx遺伝子）を含むDNA断片を取得した。PCRにはKOD-Plus-Ver.2 （東洋紡社製）を用いた。Yfdx遺伝子を含むDNA断片を増幅するため以下の一対のプライマーを設計し、反応液組成及び反応サイクル条件は下記に示すとおりとした。
（Primer #1）Yfdx_F2, 5'-CACAGGATCCAAAAATGCTGAAAATTGTTACTCGGG-3'（配列番号１５）
（Primer #2）Yfdx_R2, 5'-GGAACTCGAGTTAACTAAAATCGTTGTTATTAACG-3'（配列番号１６）
〔反応液組成〕
YPH499 genome DNA（100 ng/μl）　　　　　　　　　1μl
10×buffer for KOD-Plus-Ver.2　　　　　　　　　　5μl
2mM dNTPs　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　5μl
25mM MgSO4　　　　　　　　　　　　　　　　　　　 4μl
Primer #1（10μM）　　　　　　　　　　　　　　 1.5μl
Primer #2（10μM）　　　　　　　　　　　　　　 1.5μl
KOD-Plus （1U/μl）　　　　　　　　　　　　　　　1μl
dH2O　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　31μl
　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50μl
〔反応サイクル条件〕
94℃ 2分-(98℃ 10秒、55℃ 30秒、68℃ 1分30秒)×30サイクル-68℃ 3分-16℃ストック
　PCR産物をQIAquick PCR purification kit（QIAGEN社製）で精製した後、制限酵素BamHIとXhoIで消化し、アガロースゲル電気泳動を行なって約0.5kbの断片を切り出し、MinElute Gel extraction kit（QIAGEN社製）で精製し、Insert部分とした。プラスミドpESCpgkgap-HISを制限酵素BamHIとXhoIで消化し、約7.4kbの断片を切り出し、MinElute Gel extraction kit（QIAGEN社製）で精製し、Vector部分とした。
　上記Insert部分及びVector部分をLigation-Convenience Kit（ニッポンジーン社製）を用いてライゲーションし、大腸菌HST08（タカラバイオ社製）を形質転換した。50μg/mlのアンピシリンを含むLB寒天培地上で生育したコロニーを50μg/mlのアンピシリンを含むLB液体培培養しプラスミドを抽出した。抽出には、QIAprep spin Miniprep Kit（QIAGEN社製）を用いた。得られたプラスミドをシークエンスし、配列が正しいことを確認しpESCpgkgap-HIS-Yfdxと命名した（図２）。なお、Yfdx遺伝子の塩基配列及び当該遺伝子がコードするフェレドキシンのアミノ酸配列を、それぞれ配列番号１及び２に示す。
<S.Cerevisiae由来フェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子発現用プラスミド（pESCpgkgap-HIS-Yfdr）の作製>
　S.cerevisiae YPH499のゲノムDNAを鋳型にしてPCRによりフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子（Yfdr遺伝子）を含むDNA断片を取得した。PCRにはKOD-Plus-Ver.2 （東洋紡社製）を用いた。Yfdr遺伝子を含むDNA断片を増幅するため以下の一対のプライマーを設計し、反応液組成及び反応サイクル条件は下記に示すとおりとした。
（Primer #1）Yfdr_F2, 5'-ATATGCGGCCGCAAAAATGAGCTTTGTTCAAATAAGGCAC-3'（配列番号１７）
（Primer #2）Yfdr_R2, 5'-GGCCACTAGTTTATATGCCTTCTACACCGTTCC-3'（配列番号１８）
〔反応液組成〕
YPH499 genome DNA（100 ng/μl）　　　　　　　 1μl
10×buffer for KOD-Plus-Ver.2　　　　　　　　 5μl
2mM dNTPs　　　　　　　　　　　　　　　　　　 5μl
25mM MgSO4　　　　　　　　　　　　　　　　　　4μl
Primer #1（10μM）　　　　　　　　　　　　　1.5μl
Primer #2（10μM）　　　　　　　　　　　　　1.5μl
KOD-Plus （1U/μl）　　　　　　　　　　　　　 1μl
dH2O　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　 31μl
　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　 50μl
〔反応サイクル条件〕
94℃ 2分-(98℃ 10秒、55℃ 30秒、68℃ 1分30秒)×30サイクル-68℃ 3分-16℃ストック
　PCR産物をQIAquick PCR purification kit（QIAGEN社製）で精製した後、制限酵素NotIとSpeIで消化し、アガロースゲル電気泳動を行なって約1.5kbの断片を切り出し、MinElute Gel extraction kit（QIAGEN社製）で精製し、Insert部分とした。プラスミドpESCpgkgap-HISを制限酵素NotIとSpeIで消化し、約7.4kbの断片を切り出し、MinElute Gel extraction kit（QIAGEN社製）で精製し、Vector部分とした。
　上記Insert部分及びVector部分をLigation-Convenience Kit（ニッポンジーン社製）を用いてライゲーションし、大腸菌HST08（タカラバイオ社製）を形質転換した。50μg/mlのアンピシリンを含むLB寒天培地で生育したコロニーを50μg/mlのアンピシリンを含むLB培地で培養しプラスミドを抽出した。抽出には、QIAprep spin Miniprep Kit（QIAGEN社製）を用いた。得られたプラスミドをシークエンスし、配列が正しいことを確認しpESCpgkgap-HIS-Yfdrと命名した（図３）。なお、Yfdr遺伝子の塩基配列及び当該遺伝子がコードするフェレドキシンNADPHレダクターゼのアミノ酸配列を、それぞれ配列番号３及び４に示す。
<Yfdx遺伝子及びYfdr遺伝子共発現用プラスミド（pESCpgkgap-HIS-YfdxYfdr）の作製>
　プラスミドpESCpgkgap-HIS-Yfdxを制限酵素NotIとSpeIで消化し、約7.9kbの断片を切り出し、MinElute Gel extraction kit（QIAGEN社製）で精製し、Vector部分とした。また、プラスミドpESCpgkgap-HIS-Yfdrを制限酵素NotIとSpeIで消化し、約1.5kbの断片を切り出し、MinElute Gel extraction kit（QIAGEN社製）で精製し、Insert部分とした。上記２つの断片をLigation-Convenience Kit（ニッポンジーン社製）を用いてライゲーションし、大腸菌HST08（タカラバイオ社製）を形質転換した。50μg/mlのアンピシリンを含むLB寒天培地上で生育したコロニーを50μg/mlのアンピシリンを含むLB培地で培養しプラスミドを抽出した。抽出には、QIAprep spin Miniprep Kit（QIAGEN社製）を用いた。得られた
プラスミドをpESCpgkgap-HIS-YfdxYfdrと命名した（図４）。
<S.cerevisia YPH499形質転換体の作製>
　上述したように作製した各種発現プラスミドを用いて酵母S.cerevisia YPH499株を形質転換した。形質転換にはFrozen Yeast Transformation Kit II（ZymoResearch社製）を用い、添付のマニュアルに従った。SD-Ura,His（BIO101社製）+adenine hemisulfate寒天培地上で生育したクローンを形質転換体として、アルカン生産性評価に供試した。なお、本例では、pESCpgkgap-URA-alkSを用いてalkS遺伝子を導入した形質転換体、pESCpgkgap-URA-alkS及びpESCpgkgap-HIS-Yfdxを用いてalkS遺伝子及びフェレドキシン遺伝子を導入した形質転換体、pESCpgkgap-URA-alkS及びpESCpgkgap-HIS-Yfdrを用いてalkS遺伝子及びフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子を導入した形質転換体、並びにpESCpgkgap-URA-alkS及びpESCpgkgap-HIS-YfdxYfdr/YPH499を用いてalkS遺伝子、フェレドキシン遺伝子及びフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子を導入した形質転換体を作製した。
<アルカン生産性評価>
　上述のように作製した４種類の形質転換体を3mLのSD-Ura,His+adenine hemisulfate液体培地に植菌し、30℃で3日間培養した。得られた培養液の一部を最終濃度が1mMとなるようにTetradecanalを添加した5mLのSD-Ura,His+adenine hemisulfate液体培地に植菌し、30℃で3,4日間培養した。5mlの培養液を、室温、3000rpmで10min遠心し、上清を除き、飽和食塩水500μlに懸濁した後、20ml容バイアル瓶（Agilent社製）に移して、GC/MS分析を行なった。
　Tetradecanalを基質として生合成されるアルカン（Tridecane）の分析をおこない、その生産性の評価を実施した。なお、GC/MS分析の条件は下記のとおりである。
＜ヘッドスペースサンプラー分析条件＞
　ヘッドスペースサンプラー　HP7694（Hewlett-Packard社製）
　Zone Temp　 Oven　　　　　　　　　　　 80℃
　　　　　　　Loop　　　　　　　　　　　150℃
　　　　　　　TR.LINE　　　　　　　　　 200℃
　Event Time　GC CYCLE TIME　　　　　　 10min
　　　　　　　Vial EQ TIME　　　　　　　15min
　　　　　　　PRESSURIZ. TIME　　　　 0.50min
　　　　　　　Loop Fill TIME　　　　　 0.2min
　　　　　　　Loop EQ TIME　　　　　　 0.2min
　　　　　　　INJECT TIME　　　　　　 1.00min
Vial Parameter　　　　 SHAKE　　　　　HIGH
他　　　　　　　バイアル加圧　　　　　15psi
　　　　　　　　ループサイズ　　　　　 3ml
＜GC-MS分析条件＞
GC/MS　　　HP6890/5973 GC/MSシステム（Hewlett-Packard, Wilmington, DE）
使用カラム　　 HP-INNOWAX（Agilent製：19091N-213）
インレット温度　　　　　260℃
検出器温度　　　　　　　260℃
インジェクションパラメーター
　スプリット比　　　　　　1/20
　キャリアーガス　　　　　ヘリウム1.0ml/分
　オーブン加熱条件
　　　　　　60℃　 1分
　　　　　　25℃/分で260℃まで加熱
　　　　　　260℃　1分
　　　　　　　PRESSURIZ. TIME　　　　 0.50min
　　　　　　　Loop Fill TIME　　　　　 0.2min
　　　　　　　Loop EQ TIME　　　　　　 0.2min
　　　　　　　INJECT TIME　　　　　　 1.00min
Vial Parameter　　　　 SHAKE　　　　　HIGH
他　　　　　　バイアル加圧　　　　　　　15psi
　　　　　　　　ループサイズ　　　　　　3ml
　結果を図５に示す。図５において、縦軸はアルカン（Tridecane）の合成量を示している。図５中、「YPH499」は形質転換前の宿主を意味し、「YPH499 alkS」はalkS遺伝子を導入した形質転換体を意味し、「YPH499 alkS Yfdx」はalkS遺伝子及びフェレドキシン遺伝子を導入した形質転換体を意味し、「YPH499 alkS Yfdr」はalkS遺伝子及びフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子を導入した形質転換体を意味し、「YPH499 alkS Yfdx Yfdr」はalkS遺伝子、フェレドキシン遺伝子及びフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子を導入した形質転換体を意味している。
　図５に示した結果から、alkS遺伝子を導入した全ての形質転換体はアルカン（Tridecane）合成能を有することが判る。そして、図５に示すように、フェレドキシン遺伝子を導入した形質転換体は、フェレドキシン遺伝子を導入していない形質転換体と比較すると優れたアルカン合成能を有することが判る。一方、フェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子を単独で導入しても、アルカン合成能を有意に向上させることはできないことが判る。しかしながら、フェレドキシン遺伝子とフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子を共に導入した形質転換体は、非常に優れたアルカン合成能を有することが判った。
〔実験例１〕
　本実験例では、アルカン生産能を付与するとともに、フェレドキシン遺伝子及び/又はフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子を導入した組換え体大腸菌を作製し、フェレドキシン、フェレドキシンNADPHレダクターゼのアルカン生産性能に対する効果確認した。
<alkS発現用プラスミド（alkS_pCDF）の作製>
　Nostoc sp. ATCC27437のゲノムDNAを鋳型にしてPCRによりアルカン合成酵素遺伝子（alkS遺伝子）を含むDNA断片を取得した。PCRにはポリメラーゼとしてKOD-Plus-Ver.2（東洋紡社製）を用いた。alkS遺伝子を含むDNA断片を増幅するため以下の一対のプライマーを設計し、反応液組成及び反応サイクル条件は下記に示すとおりとした。
（Primer #1）alkS_F, 5'-GCGCGCGGTACCATGCAGCAGGTTGCAGCCG-3'（配列番号１９）
（Primer #2）alkS_R, 5'-GCGCGCCTCGAGTTAAGCTGCTGTAAGTCCGTAG-3'（配列番号２０）
〔反応液組成〕
Nostoc sp. ATCC27437ゲノムDNA（100 ng/μｌ）　　 1μl
10×buffer for KOD-Plus-Ver.2　　　　　　　　　　5μl
2mM dNTPs　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　5μl
25mM MgSO4　　　　　　　　　　　　　　　　　　　 4μl
Primer #1（10μM）　　　　　　　　　　　　　　 1.5μl
Primer #2（10μM）　　　　　　　　　　　　　　 1.5μl
KOD-Plus （1U/μl）　　　　　　　　　　　　　　　1μl
dH2O　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　31μl
　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50μl
〔反応サイクル条件〕
94℃ 2分-(98℃ 10秒、55℃ 30秒、68℃ 1分30秒)×30サイクル-68℃ 3分-16℃ストック
　PCR産物をQIAGEN社製MinElute PCR purification kitを用いて精製後、制限酵素KpnIとXhoIで消化した。アガロースゲル電気泳動を行ない、0.7kbpの断片を切り出してQIAGEN社製MinElute Gel extraction kitを用いて精製し、Insert部分とした。プラスミドpCDFDuet-1（ノバジェン社製）を制限酵素KpnIとXhoIで消化し、約7.4kbの断片を切り出し、MinElute Gel extraction kit（QIAGEN社製）で精製し、Vector部分とした。
　上記Insert部分及びVector部分をLigation-Convenience Kit（ニッポンジーン社製）を用いてライゲーションし、大腸菌HST08（タカラバイオ社製）を形質転換した。得られた配列をシークエンスし、目的とするプラスミドが作製されていることを確認した。こうして得られたプラスミドをalkS_pCDFと命名した（図６）。
<大腸菌W3110株由来フェレドキシン遺伝子発現用プラスミド（Efdx-pCOLA）の作製>
　大腸菌Ｗ3110のゲノムDNAを鋳型にしてPCRによりフェレドキシン遺伝子（Efdx）遺伝子を含むDNA断片を取得した。PCRにはKOD-Plus-Ver.2 （東洋紡社製）を用いた。Efdx遺伝子を含むDNA断片を増幅するため以下の一対のプライマーを設計し、反応液組成及び反応サイクル条件は下記に示すとおりとした。
（Primer #1）Efdx_F, 5'-GAGATATACATATGCCAAAGATTGTTATTTTGCCTC-3'（配列番号２１）
（Primer #2）Efdx_R, 5'-CAGACTCGAGTTAATGCTCACGCGCATGGTTG-3'（配列番号２２）
〔反応液組成〕
W3110 genome DNA（100 ng/μｌ）　　　　　　　　　1μl
10×buffer for KOD-Plus-Ver.2　　　　　　　　　　5μl
2mM dNTPs　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　5μl
25mM MgSO4　　　　　　　　　　　　　　　　　　　 4μl
Primer #1（10μM）　　　　　　　　　　　　　　 1.5μl
Primer #2（10μM）　　　　　　　　　　　　　　 1.5μl
KOD-Plus （1U/μl）　　　　　　　　　　　　　　　1μl
dH2O　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　31μl
　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50μl
〔反応サイクル条件〕
94℃ 2分-(98℃ 10秒、55℃ 30秒、68℃ 1分30秒)×30サイクル-68℃ 3分-4℃ストック
　PCR産物をQIAquick PCR purification kit（QIAGEN社製）で精製した後、制限酵素NdeIとXhoIで消化し、アガロースゲル電気泳動を行なって約0.4kbの断片を切り出し、MinElute Gel extraction kit（QIAGEN社製）で精製し、Insert部分とした。プラスミドpCOLADuet-1（ノバジェン社製）を制限酵素NdeIとXhoIで消化し、約3.7kbの断片を切り出し、MinElute Gel extraction kit（QIAGEN社製）で精製し、Vector部分とした。
　上記Insert部分及びVector部分をLigation-Convenience Kit（ニッポンジーン社製）を用いてライゲーションし、大腸菌HST08（タカラバイオ社製）を形質転換した。50μg/mlのアンピシリンを含むLB寒天培地上で生育したコロニーを50μg/mlのアンピシリンを含むLB液体培培養しプラスミドを抽出した。抽出には、QIAprep spin Miniprep Kit（QIAGEN社製）を用いた。得られたプラスミドをシークエンスし、配列が正しいことを確認しEfdx-pCOLAと命名した（図７）。なお、Efdx遺伝子の塩基配列及び当該遺伝子がコードするフェレドキシンのアミノ酸配列を、それぞれ配列番号２３及び２４に示す。
<大腸菌W3110株由来フェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子発現用プラスミド（Efdr-pCOLA）の作製>
　大腸菌Ｗ3110のゲノムDNAを鋳型にしてPCRによりフェレドキシンNADPHレダクターゼ（Efdr）遺伝子を含むDNA断片を取得した。PCRにはKOD-Plus-Ver.2 （東洋紡社製）を用いた。Efdr遺伝子を含むDNA断片を増幅するため以下の一対のプライマーを設計し、反応液組成及び反応サイクル条件は下記に示すとおりとした。
（Primer #1）Efdr_F, 5'-ATATCCATGGCTGATTGGGTAACAGGC-3'（配列番号２５）
（Primer #2）Efdr_R, 5'-ATTCGGATCCTTACCAGTAATGCTCCGCTGTC-3'（配列番号２６）
〔反応液組成〕
W3110 genome DNA（100 ng/μｌ）　　　　　　　　　1μl
10×buffer for KOD-Plus-Ver.2　　　　　　　　　　5μl
2mM dNTPs　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　5μl
25mM MgSO4　　　　　　　　　　　　　　　　　　　 4μl
Primer #1（10μM）　　　　　　　　　　　　　　 1.5μl
Primer #2（10μM）　　　　　　　　　　　　　　 1.5μl
KOD-Plus （1U/μl）　　　　　　　　　　　　　　　1μl
dH2O　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　31μl
　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　50μl
〔反応サイクル条件〕
94℃ 2分-(98℃ 10秒、55℃ 30秒、68℃ 1分30秒)×30サイクル-68℃ 3分-4℃ストック
　PCR産物をQIAquick PCR purification kit（QIAGEN社製）で精製した後、制限酵素NcoIとBamHIで消化し、アガロースゲル電気泳動を行なって約0.8kbの断片を切り出し、MinElute Gel extraction kit（QIAGEN社製）で精製し、Insert部分とした。プラスミドpCOLADuet-1（ノバジェン社製）を制限酵素NcoIとBamHIで消化し、約3.7kbの断片を切り出し、MinElute Gel extraction kit（QIAGEN社製）で精製し、Vector部分とした。
　上記Insert部分及びVector部分をLigation-Convenience Kit（ニッポンジーン社製）を用いてライゲーションし、大腸菌HST08（タカラバイオ社製）を形質転換した。50μg/mlのアンピシリンを含むLB寒天培地上で生育したコロニーを50μg/mlのアンピシリンを含むLB液体培培養しプラスミドを抽出した。抽出には、QIAprep spin Miniprep Kit（QIAGEN社製）を用いた。得られたプラスミドをシークエンスし、配列が正しいことを確認しEfdr-pCOLAと命名した（図８）。なお、Efdr遺伝子の塩基配列及び当該遺伝子がコードするフェレドキシンのアミノ酸配列を、それぞれ配列番号２７及び２８に示す。
<Efdx遺伝子及びEfdr遺伝子共発現用プラスミド（EfdxEfdr-pCOLA）の作製>
　プラスミドEfdx-pCOLAを制限酵素NcoIとBamHIで消化し、約4.1kbの断片を切り出し、MinElute Gel extraction kit（QIAGEN社製）で精製し、Vector部分とした。また、プラスミドEfdr-pCOLAを制限酵素NcoIとBamHIで消化し、約0.8kbの断片を切り出し、MinElute Gel extraction kit（QIAGEN社製）で精製し、Insert部分とした。上記２つの断片をLigation-Convenience Kit（ニッポンジーン社製）を用いてライゲーションし、大腸菌HST08（タカラバイオ社製）を形質転換した。50μg/mlのアンピシリンを含むLB寒天培地上で生育したコロニーを50μg/mlのアンピシリンを含むLB培地で培養しプラスミドを抽出した。抽出には、QIAprep spin Miniprep Kit（QIAGEN社製）を用いた。得られたプラスミドをEfdxEfdr-pCOLAと命名した（図９）。
<大腸菌BL21(DE3)株形質転換体の作製>
　上述したように作製した各種発現プラスミドを用いて大腸菌BL21(DE3)株（ノバジェン社製）を形質転換した。形質転換は添付のマニュアルに従った。ストレプトマイシンおよびカナマイシンを各50μg/mlずつを含むLB寒天培地上で生育したクローンを形質転換体として、アルカン生産性評価に供試した。なお、本例では、alkS_pCDFを用いてalkS遺伝子を導入した形質転換体、alkS_pCDF及びEfdx-pCOLAを用いてalkS遺伝子及びフェレドキシン遺伝子を導入した形質転換体、alkS_pCDF及びEfdr-pCOLAを用いてalkS遺伝子及びフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子を導入した形質転換体、alkS_pCDF及びEfdxEfdr-pCOLAを用いてalkS遺伝子、フェレドキシン遺伝子及びフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子を導入した形質転換体を作製した。
<アルカン生産性評価>
　上述のように作製した４種類の形質転換体を3mLのLB-Sm、Km（各50μg/ml）液体培地に植菌し、37℃で一晩培養した。得られた培養液の一部を最終濃度が1mMとなるようにTetradecanalおよびIPTGを添加した5mLのLB-Sm、Km（各50μg/ml）液体培地に植菌し、30℃で3,4日間培養した。5mlの培養液を、室温、3000rpmで10min遠心して上清を除き、飽和食塩水500μlに懸濁した後、20ml容バイアル瓶（Agilent社製）に移して、GC/MS分析を行なった。
　Tetradecanalを基質として生合成されるアルカン（Tridecane）の分析をおこない、その生産性の評価を実施した。なお、GC/MS分析における＜ヘッドスペースサンプラー分析条件＞及び＜GC-MS分析条件＞は実施例１と同じである。
　結果を図５に示す。図１０において、縦軸はアルカン（Tridecane）の合成量を示している。図１０中、「BL21(DE3)」は形質転換前の宿主を意味し、「BL21(DE3) alkS」はalkS遺伝子を導入した形質転換体を意味し、「BL21(DE3) alkS Efdx」はalkS遺伝子及びフェレドキシン遺伝子を導入した形質転換体を意味し、「BL21(DE3) alkS Efdr」はalkS遺伝子及びフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子を導入した形質転換体を意味し、「BL21(DE3) alkS Efdx Efdr」はalkS遺伝子、フェレドキシン遺伝子及びフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子を導入した形質転換体を意味している。
　図１０に示した結果から、alkS遺伝子を導入した全ての形質転換体はアルカン（Tridecane）合成能を有することが判る。ただし、図１０に示すように、フェレドキシン遺伝子やフェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子を更に導入しても、アルカン合成能が向上することはなかった。

Claims (14)

  1. 　フェレドキシン存在下でアルカン合成酵素によりアルカンを合成する、アルカンの製造方法。
  2. 　アルカン合成能を有する微生物によりアルカンを合成することを特徴とする請求項１記載のアルカンの製造方法。
  3. 　上記微生物は、アルカン合成酵素遺伝子が導入された組換え微生物であることを特徴とする請求項２記載のアルカンの製造方法。
  4. 　上記微生物は、フェレドキシン遺伝子が導入された組換え微生物であることを特徴とする請求項２記載のアルカンの製造方法。
  5. 　上記微生物は、アルカン合成酵素遺伝子及びフェレドキシン遺伝子が導入された組換え微生物であることを特徴とする請求項２記載のアルカンの製造方法。
  6. 　上記フェレドキシンに加えてフェレドキシンNADPHレダクターゼの存在下でアルカンを合成する請求項１記載のアルカンの製造方法。
  7. 　フェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子を、アルカン合成能を有する微生物に導入した組換え微生物によりアルカンを合成することを特徴とする請求項６記載のアルカンの製造方法。
  8. 　上記組換え微生物は、酵母由来であることを特徴とする請求項３～請求項５及び請求項７いずれか一項記載のアルカンの製造方法。
  9. 　上記アルカン合成酵素は、アルデヒドをアルカンに変換する活性を有することを特徴とする請求項１記載のアルカンの製造方法。
  10. 　炭素数９～１６のアルカンを製造することを特徴とする請求項１記載のアルカンの製造方法。
  11. 　フェレドキシン遺伝子を導入した、アルカン合成能を有する組換え微生物。
  12. 　フェレドキシンNADPHレダクターゼ遺伝子を更に導入したことを特徴とする請求項１１記載の組換え微生物。
  13. 　上記アルカン合成能は、アルカン合成酵素遺伝子を導入することで付与されたものであることを特徴とする請求項１１記載の組換え微生物。
  14. 　組換え酵母であることを特徴とする請求項１１記載の組換え微生物。
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